WO2019189266A1 - 試料細菌のｒｎａを用いた細菌同定方法及びそのためのキット - Google Patents

試料細菌のｒｎａを用いた細菌同定方法及びそのためのキット Download PDF

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仰 天野
久陽 矢内
絢子 遠藤
健太郎 辻
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    • C12Q2531/10—Reactions of nucleic acids characterised by the purpose being amplify/increase the copy number of target nucleic acid
    • C12Q2531/113—PCR

Definitions

  • the present invention relates to a method for quickly identifying bacteria in a sample and a kit for the same.
  • DNA is extracted from a microorganism, gene amplification is performed by PCR or the like using a specific primer pair as a template, and then a melting temperature (Tm value) specific to the microorganism is obtained.
  • Tm value melting temperature
  • a PCR method is known in which the causative bacteria are rapidly detected and identified by analyzing combinations or differences between Tm values (Patent Document 2).
  • 1st PCR is performed using the extracted DNA as a template, the entire length of the target DNA fragment is amplified, and 2nd PCR (nested PCR) is performed using the amplified DNA fragment as a template, thereby detecting with high sensitivity. is doing.
  • 2nd PCR nested PCR
  • RNA molecules specific to the bacterial species to be detected
  • specific probes have been developed that enable detection even in the presence of non-detectable bacterial species. ing.
  • reverse transcription PCR assay cDNA is synthesized by reverse transcription using the target RNA as a template, and then the target RNA molecule is detected through amplification of the cDNA in PCR (Patent Document 3).
  • Patent Document 1 Although RNA is extracted instead of DNA and cDNA prepared based on the obtained RNA can be used, detailed examination has not been performed. It was. Patent Document 3 describes a method for directly detecting diagnostic RNA from bacteria. Patent Document 4 describes a specific detection method for RNA species in a biological sample.
  • Patent Document 4 describes a method of detecting cDNA amplified by PCR after reverse transcription of RNA into cDNA using reverse transcriptase. There are more RNAs in bacteria than DNA.
  • RNA is extracted from bacteria in the sample
  • cDNA is prepared by reverse transcription using RNA instead of the first round of PCR, and PCR is performed using the prepared cDNA as a template
  • RNA is extracted from bacteria in the sample
  • cDNA is prepared by reverse transcription using RNA instead of the first round of PCR, and PCR is performed using the prepared cDNA as a template
  • PCR is performed using the prepared cDNA as a template
  • the present invention targets a bacterial RNA in a sample, thereby enabling identification of a large number of bacteria, not a limited number of bacteria, without changing the bacteria identification reagents and conditions.
  • RNA is extracted from a sample using reverse transcriptase to prepare cDNA and PCR is performed using the prepared cDNA as a template, it has been found that it is necessary to suppress the generation of DNA fragments other than those intended during PCR. It was. This problem is an unknown thing that the person skilled in the art does not recognize in the prior art.
  • the present inventors have intensively studied to solve a completely new problem.
  • adjusting the concentration of the reverse transcription primer in the reaction system during the PCR reaction brought in from the reverse transcription reaction, and adjusting it so that it is also much lower than usual will result in unnecessary DNA.
  • the generation of fragments was remarkably suppressed, and bacteria in the sample could be detected and identified by appropriately adjusting the conditions of Tm mapping.
  • there is an optimum range for the concentration of the reverse transcription primer present in the reaction system during the PCR reaction and if the concentration of the reverse transcription primer is appropriately controlled so as to be within that range, even if the concentration in the sample is It has been found that even if the number of bacteria is extremely low, detection and identification can be performed with high sensitivity.
  • a bacteria identification method comprising the following steps (1) to (3): (1) First including reverse transcription primer for preparing cDNA containing base sequence for identification of identification target bacteria, RNA extracted from bacteria in sample, and enzyme having RNA-dependent DNA polymerase activity Performing a reverse transcription reaction using the reaction system, and obtaining a reaction mixture containing the synthesized cDNA and the reverse transcription primer, (2) Using the second reaction system comprising the reaction mixture, a primer pair for synthesizing double-stranded DNA containing a base sequence for identification of the bacterium to be identified, and an enzyme having DNA-dependent DNA polymerase activity A step of performing PCR, wherein, in the second reaction system, the concentration of the reverse transcription primer supplied from the reaction mixture is 0.08 nM or more and 20 nM or less, and (3) the second after the PCR Detecting the production of double-stranded DNA containing a base sequence for identification of the identification target bacterium from
  • [2] The method for identifying a bacterium according to the above item [1], wherein the steps (1) and (2) are sequentially performed in another reaction vessel or in the same reaction vessel.
  • [3] The item [1] above, wherein the identification base sequence of the identification target bacterium is a base sequence contained in bacterial 16S rDNA, and the RNA contains bacterial 16S rRNA in the sample. Or the bacteria identification method of the item [2].
  • [4] The bacterial identification method according to [3], wherein the reverse transcription primer comprises the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1.
  • [5] The bacterium according to [1] or [4], wherein the primer pair is at least one primer pair selected from the group consisting of the following (Group A) to (Group C): Identification method.
  • Primer pair 1a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 3
  • Primer pair 2a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 5
  • Primer pair 3a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 6 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 7
  • Primer pair 4a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 8 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 9
  • Primer pair 5a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 10 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 11
  • Primer pair 6a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO
  • (Group B) A primer pair in which one or two bases are added, deleted or substituted within a range that does not impair the function as a primer of a part of the base sequence of one or both of the primer pairs of (Group A).
  • (Group C) A primer pair comprising a complementary sequence corresponding to the base sequence of one or both of the primer pairs of (Group A) or (Group B).
  • the concentration of is adjusted to be 0.08 nM or more and 20 nM or less, Kit characterized by that.
  • primer pair 1a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 3
  • Primer pair 2a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 5
  • Primer pair 3a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 6 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 7
  • Primer pair 4a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 8 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 9
  • Primer pair 5a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO:
  • (Group B) A primer pair in which one or two bases are added, deleted or substituted within a range that does not impair the function as a primer of a part of the base sequence of one or both of the primer pairs of (Group A).
  • (Group C) A primer pair comprising a complementary sequence corresponding to the base sequence of one or both of the primer pairs of (Group A) or (Group B).
  • bacteria can be detected and identified even with a single PCR while maintaining detection sensitivity. Therefore, the burden on the operator can be reduced and the system can be automated.
  • the identification method of the present invention by appropriately adjusting the concentration of the reverse transcription primer in the second reaction system, it is possible to detect and detect bacteria with high sensitivity even for a sample containing a dilute bacterium of about 100 CFU / sample. Identification is possible.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of agarose electrophoresis of PCR products in Example 1. It is a figure which shows the result of the agarose electrophoresis of the PCR product in Example 2. It is a figure which shows the result of the agarose electrophoresis of the PCR product in Example 3.
  • the bacteria identification method includes the following steps.
  • the reverse transcription reaction in the step (I) includes a reverse transcription primer for preparing cDNA containing a base sequence for identification of the identification target bacteria, RNA extracted from the bacteria in the sample, and an RNA-dependent DNA polymerase.
  • a first reaction system containing an active enzyme is used.
  • the reaction mixture in the present invention means a mixture containing a reaction mixture obtained by performing the reverse transcription reaction in the first reaction system and an unreacted substance remaining unreacted without participating in the reaction.
  • the reverse transcription primer used in the first reaction system is consumed at the time of cDNA synthesis, but is usually used in an excess amount larger than that required for the synthesis amount of the target cDNA. Therefore, the reaction mixture obtained by the reverse transcription reaction by the first reaction system includes synthesized cDNA as a reaction product and the remaining reverse transcription primer as an unreacted product.
  • step (II) For PCR in step (II), the reaction mixture obtained in step (I), a primer pair for synthesizing double-stranded DNA containing a base sequence for identification of the bacterium to be identified, and a DNA-dependent DNA polymerase activity are included. A second reaction system containing the enzyme is used. As described above, the reaction mixture obtained in step (I) contains the reverse transcription primer that was not consumed in the reverse transcription reaction, and the amount of this reverse transcription primer in step (II) was adjusted. By doing so, highly sensitive detection can be performed.
  • the concentration of the primer for reverse transcription during the preparation of the second reaction system is selected from 0.08 nM to 20 nM, more preferably 0.4 nM to 20 nM, further preferably 0.8 nM to 20 nM, and more preferably 2 nM to 20 nM. Is done. If there is a large amount of primer for reverse transcription in the second reaction system, the amplification product by PCR contains an unintended amplification product, which reduces the identification accuracy due to increased background in bacterial identification. May occur. Therefore, the concentration of the primer for reverse transcription in the second reaction system is set in the above range. Steps (I) and (II) can be performed in order in another reaction vessel or in the same reaction vessel.
  • the kit for identifying bacteria according to the present invention has the following components (a) to (c).
  • the kit for identifying bacteria according to the present invention may further include:
  • the amount of primer for reverse transcription contained in the kit is such that the concentration when supplied to the second reaction system via the reaction mixture obtained by the reverse transcription reaction is 0.08 nM to 20 nM, more preferably 0.4 nM to 20 nM, More preferably, it is adjusted to 0.8 nM to 20 nM, and more preferably 2 nM to 20 nM.
  • the bacteria identification method and kit for the same according to the present invention can be used for a detection method for detecting the presence or absence of a detection target bacteria in a sample.
  • RNA extraction> As an RNA extraction method, an alkali dissolution method, a boiling method, a phenol extraction, and the like are known, and dedicated RNA extraction kits are also sold by manufacturers.
  • the method for extracting RNA from bacteria in a sample in the present invention is not particularly limited, and a known method can be used. Since the optimum method differs depending on the sample, it is desirable to select a method corresponding to the target sample.
  • the Roche High Pure RNA Isolation Kit used in the examples of the present application is an example of a RNA extraction method that can be suitably used.
  • RNA obtained from bacteria in the sample must be converted to cDNA by reverse transcription.
  • the reverse transcription reaction method in this invention is not specifically limited, A well-known method can be used.
  • RNA and RNA-dependent DNA polymerase to be added to the first reaction system is not particularly limited, and may be selected so that the target cDNA can be synthesized.
  • RNA and RNA-dependent DNA polymerase to be added to the first reaction system is not particularly limited, and may be selected so that the target cDNA can be synthesized.
  • RNA and RNA-dependent DNA polymerase to be added to the first reaction system is not particularly limited, and may be selected so that the target cDNA can be synthesized.
  • RNA and RNA-dependent DNA polymerase to be added to the first reaction system is not particularly limited, and may be selected so that the target cDNA can be synthesized.
  • ⁇ Primer for reverse transcription> The primer for reverse transcription is used for synthesis of cDNA containing a base sequence used for bacterial identification by reverse transcription reaction.
  • the primer for reverse transcription is not particularly limited as long as it can synthesize a cDNA (fragment) containing a base sequence complementary to a base sequence necessary for bacterial
  • a known or newly prepared primer capable of synthesizing DNA containing a base sequence for bacterial identification can be used.
  • Commercially available primers can also be used.
  • Many base sequences are known in 16S rDNA as base sequences for bacterial identification, and it is preferable to use 16S rRNA corresponding to 16S rDNA as RNA for bacterial identification.
  • a known primer complementary to the start position of cDNA synthesis containing a region that can be used for bacterial identification of 16S rRNA or a newly prepared primer is used.
  • a known primer complementary to the start position of cDNA synthesis containing a region that can be used for bacterial identification of 16S rRNA or a newly prepared primer is used.
  • a known primer complementary to the start position of cDNA synthesis containing a region that can be used for bacterial identification of 16S rRNA or a newly prepared primer is used.
  • the reverse transcription primer is preferably selected so that the cDNA synthesized by the reverse transcription primer has a region that can be amplified by a primer pair for bacterial identification described later.
  • An example of a particularly suitable reverse transcription primer is a primer comprising the following base sequence of SEQ ID NO: 1. Sequence number 1: AGACCCGGGA ACGTATTC
  • the amount of the reverse transcription primer added to the first reaction system is an amount necessary for the intended reverse transcription reaction, and the second reaction mixture for the reverse transcription reaction using the first reaction system is added.
  • the concentration of the reverse transcription primer in this reaction system is adjusted to 20 nM or less.
  • the lower limit of the concentration of the reverse transcription primer in the second reaction system is a concentration at which cDNA can be synthesized from RNA to such an extent that bacteria present in the sample can be detected and identified.
  • the concentration of the primer for reverse transcription in the second reaction system is preferably 0.08 nM to 20 nM, more preferably 0.4 nM to 20 nM, still more preferably 0.8 nM to 20 nM, and still more preferably 2 nM to It is good to adjust it to be in the range of 20nM.
  • the following method can be used for adjusting the amount of the reverse transcription primer. (A) When the reaction mixture obtained by the reverse transcription reaction in the first reaction system is used as it is alone for PCR in the second reaction system, the amount of the reaction mixture obtained in the first reaction system, and this reaction The concentration of the reverse transcription primer brought into the reaction mixture relative to the total amount of the second reaction system including the mixture is calculated.
  • the amount of the primer for reverse transcription consumed in the reverse transcription reaction is not considered in the calculation of this concentration. Therefore, the amount of the reverse transcription primer used in the calculation of the concentration is obtained based on the amount of the reverse transcription primer added to the first reaction system.
  • the concentration of the reverse transcription primer added to the first reaction system is set so that the calculated concentration of the reverse transcription primer brought into the second reaction system falls within the above-described range. Based on the concentration of the primer for reverse transcription of the first reaction system set as described above, the composition of the first reaction system and the reverse transcription reaction can be performed so that the target reverse transcription reaction can be performed. It is preferable to set conditions.
  • the concentration of the reverse transcription primer added to the first reaction system May be set to 10 times the concentration of the primer for reverse transcription contained in the second reaction system.
  • the concentration of the reverse transcription primer in the second reaction system is set to 0.08 nM to 20 nM as the above-mentioned preferable range
  • the concentration of the reverse transcription primer in the first reaction system is in the range of 0.8 nM to 200 nM. Set to.
  • the present invention is characterized in that the upper limit value of the amount of the reverse transcription primer brought into the second reaction system is set as a threshold for obtaining the effects of the present invention.
  • the reaction mixture obtained by the reverse transcription reaction is directly as it is, i.e., without adding anything and without separating from the reaction mixture, the second directly Used to prepare reaction system.
  • the primer for reverse transcription necessary for carrying out the desired reverse transcription reaction
  • the concentration of the reverse transcription primer in the second reaction system is 20 nM.
  • the reaction organism obtained from a 1st reaction system is diluted so that it may become the density
  • the dilution rate in this dilution can be set based on the concentration of the primer for reverse transcription in the first reaction system, the amount of the reaction mixture obtained from the first reaction system, and the amount of the second reaction system. In the calculation of the concentration of the reverse transcription primer in this adjustment method (B), the amount of primer consumed in the reverse transcription reaction in the first reaction system can be ignored.
  • a liquid medium such as a buffer solution for diluting the primer solution or a liquid medium such as a buffer solution used for preparing the second reaction system for PCR can be used.
  • a primer pair for PCR that is, a combination of a forward primer and a reverse primer is not limited as long as it can amplify double-stranded DNA containing a base sequence for bacterial identification.
  • the primer pair can be selected according to the bacterial species of the identification target bacteria.
  • a primer pair capable of amplifying the bacterial identification base sequence in 16S rDNA can be used for bacterial identification.
  • Various base sequences for bacterial identification are known in 16S rDNA, and primer pairs that can amplify double-stranded DNA containing a known base sequence for bacterial identification can be used.
  • primer pairs that amplifies double-stranded DNA each including Journal of Microbiological Methods 2007, 69, 330-339.
  • One or more kinds of primer pairs for PCR can be used. When using multiple types of primer sets, it is preferable to use 4 to 7 primer pairs individually to increase the number of identified bacterial species or to improve identification accuracy.
  • Preferred primer pairs include at least one primer pair selected from the group consisting of the following (Group A) to (Group C).
  • Primer pair 1a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 3
  • Primer pair 2a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 5
  • Primer pair 3a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 6 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 7
  • Primer pair 4a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 8 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 9
  • Primer pair 5a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 10 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 11
  • Primer pair 6a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO
  • a primer pair comprising a primer and / or a modified reverse primer, and a primer pair comprising a complementary sequence corresponding to the base sequence of one or both of the primer pairs of (Group C) (Group A) or (Group B) .
  • Primer pair first group (1a) In combination with a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 3, (1b-1) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer comprising SEQ ID NO: 3. (1b-2) A primer pair consisting of a combination of a forward primer consisting of SEQ ID NO: 2 and a modified reverse primer consisting of a modified base sequence of SEQ ID NO: 3.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a modified reverse primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 3.
  • (1c-1) A primer pair consisting of a combination of a forward primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 3.
  • (1c-2) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer composed of a complementary sequence of SEQ ID NO: 3.
  • a primer pair comprising a combination of a forward primer composed of a complementary sequence of SEQ ID NO: 2 and a modified reverse primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 3.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a modified reverse primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 3.
  • Primer pair second group (2a) In combination with a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 5, (2b-1) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer comprising SEQ ID NO: 5. (2b-2) A primer pair consisting of a combination of a forward primer consisting of SEQ ID NO: 4 and a modified reverse primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5. (2b-3) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a modified reverse primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 5.
  • (2c-1) A primer pair comprising a combination of a forward primer comprising a complementary sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer comprising a complementary sequence of SEQ ID NO: 5.
  • (2c-2) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer composed of a complementary sequence of SEQ ID NO: 5.
  • (2c-3) A primer pair comprising a combination of a forward primer comprising a complementary sequence of SEQ ID NO: 4 and a modified reverse primer comprising a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a modified reverse primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a reverse primer composed of a complementary sequence of SEQ ID NO: 7.
  • a primer pair comprising a combination of a forward primer comprising a complementary sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified reverse primer comprising a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 7.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified reverse primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 7.
  • Primer pair group 4 (4a) In combination with a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 8 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 9, (4b-1) A primer pair consisting of a combination of a modified forward primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 8 and a reverse primer consisting of SEQ ID NO: 9. (4b-2) A primer pair comprising a combination of a forward primer consisting of SEQ ID NO: 8 and a modified reverse primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9. (4b-3) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 8 and a modified reverse primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • Primer pair group 5 In combination with a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 10 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 11, (5b-1) A primer pair consisting of a combination of a modified forward primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 10 and a reverse primer consisting of SEQ ID NO: 11. (5b-2) A primer pair consisting of a combination of a forward primer consisting of SEQ ID NO: 10 and a modified reverse primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • a primer pair comprising a combination of a forward primer composed of a complementary sequence of SEQ ID NO: 10 and a modified reverse primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 10 and a modified reverse primer comprising a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • Primer pair group 6 (6a) In combination with a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 12 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 13, (6b-1) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 12 and a reverse primer comprising SEQ ID NO: 13. (6b-2) A primer pair consisting of a combination of a forward primer consisting of SEQ ID NO: 12 and a modified reverse primer consisting of a modified base sequence of SEQ ID NO: 13. (6b-3) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 12 and a modified reverse primer comprising the modified base sequence of SEQ ID NO: 13.
  • (6c-1) A primer pair comprising a combination of a forward primer comprising the complementary sequence of SEQ ID NO: 12 and a reverse primer comprising the complementary sequence of SEQ ID NO: 13.
  • (6c-2) A primer pair comprising a combination of a modified forward primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12 and a reverse primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 13.
  • (6c-3) A primer pair comprising a combination of a forward primer comprising a complementary sequence of SEQ ID NO: 12 and a modified reverse primer comprising a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 13.
  • a primer pair comprising a combination of a modified forward primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12 and a modified reverse primer composed of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 13.
  • Sequence number 2 GCAGGCTTAA CACATGCAAG TCG Sequence number 3: CGTAGGAGTC TGGACCGT Sequence number 4: GTCCAGACTC CTACGGGAG Sequence number 5: CCTACGTATT ACCGCGG Sequence number 6: AGCAGCCGCG GTAATA Sequence number 7: GGACTACCAG GGTATCTAAT CCT Sequence number 8: AACAGGATTA GATACCCTGG TAG Sequence number 9: AATTAAACCA CATGCTCCAC C Sequence number 10: TGGTTTAATT CGATGCAACG C Sequence number 11: GAGCTGACGA CAGCCAT Sequence number 12: GTTAAGTCCC GCAACGAG Sequence number 13: CCATTGTAGC ACGTGTAG CC Sequence number 14: GGCTACACAC GTGCTACAAT GG Sequence number 15: AGACCCGGGA ACGTATTC
  • Reagents other than the primer pair used for PCR analysis in the present invention can be used in a known combination.
  • Reagents necessary for the measurement include PCR enzymes, pH buffer solution, dNTP, Mg 2+ source, sterilized water purified by filtration treatment and the like.
  • a fluorescent dye is required in addition to the above.
  • Enzymes for PCR> The PCR enzyme used in the present invention is a DNA-dependent DNA polymerase, and various commercially available ones can be used. However, the cause of false positives particularly in a test that targets a negative sample. It is preferable to use a DNA-dependent thermostable DNA polymerase that minimizes the amount of contaminating bacterial DNA.
  • PCR analysis> The cDNA and primer pair as reaction products obtained by the reverse transcription reaction are used in the PCR method.
  • various PCR methods can be used as long as they are PCR methods for amplifying double-stranded DNA containing a base sequence used for bacterial identification.
  • a preferred analysis method is real-time PCR, more preferably a combination of real-time PCR and melting curve analysis for measuring Tm values.
  • the conditions of the temperature cycle in PCR are not particularly limited, but the conditions used in the examples described later are “95 ° C., 5 minutes ⁇ 94 ° C., 10 seconds / 60 ° C., 20 seconds / 72 ° C., 10 seconds / 85 An example is “40 ° C for 2 seconds ⁇ 95 ° C for 10 seconds”.
  • the Tm value of the amplified DNA can be measured by melting curve analysis after completion of the DNA amplification step. Such measurement can be performed by many types of real-time PCR apparatuses, and can be performed according to the method of using the instrument.
  • the Tm value of a double-stranded DNA fragment contained in an amplification product obtained from a reaction mixture containing cDNA using the primer pair according to the present invention can be used.
  • the following method can be mentioned as a preferable identification method.
  • the identification method according to the present invention or a part of the method according to the present invention is used. In this way, the double-stranded DNA fragment and its Tm value are obtained in advance, and the Tm value (measured value itself) or the data obtained secondarily from the measured Tm value is obtained and stored. Keep it.
  • comparison data is data in which “relative value of Tm value” of a double-stranded DNA fragment obtained from a known bacterium is acquired in advance.
  • the database of comparison data stores data obtained by comprehensively obtaining the above comparison data for double-stranded DNA fragments from a plurality of bacteria.
  • the Tm value obtained from the bacteria in the sample or “relative value of Tm value” can be compared with the stored comparison data or database to identify bacteria with unknown species in the sample. .
  • this is a method for identifying the arrangement of combinations of Tm values as “shape”.
  • the “shape” that shows the arrangement of the combination of Tm values in two dimensions is not affected by the measurement error.
  • a combination of Tm values specific to the detection bacteria n (n is an integer of 4 or more and 7 or less)
  • T1db to Tndb db is database
  • the relative values from the average values are d1db to dndb, respectively.
  • Tm values (n (n is an integer not less than 4 and not more than 7)
  • Tnref Tnref (ref is a reference)
  • a relative value from the average value Are d1ref to dnref, respectively.
  • the identification algorithm is used as the identification algorithm.
  • a method (Equation 1) for calculating the distance between two points in the Euclidean space is mentioned, but this is not restrictive.
  • the thing with the Dist. Value obtained by this calculation formula closest to 0 is identified as the detected bacterial species.
  • the allowable range of the Dist. Value is 0 to 0.37, preferably 0 to 0.30, depending on the temperature control specifications of the device and the number of primers because of the measurement error of the PCR device used.
  • the above algorithm can be used as database type identification software on a computer.
  • the identification of the bacterial species using the relative value of the above Tm value, that is, the identification of the bacterial species by the Tm mapping method is, for example, described in Patent Document 2, paragraph [0237] of WO2010 / 082640 or WO2015 / 053293.
  • the method disclosed in paragraphs [0111] to [0116] may be performed according to the methods disclosed therein or by appropriately modifying the methods disclosed therein.
  • identification of bacterial species by the Tm mapping method a combination of Tm values of a plurality of amplification products amplified by a plurality of specific primer pairs obtained from a bacterium having a known bacterial species, or a difference between a plurality of Tm values Data for identification relating to the combination is used.
  • the combination of Tm values of amplification products obtained from the same bacterial primer sample collected from the specimen using the same multiple primer pairs, or the combination of differences between Tm values, is checked against the identification database to determine the consistency. Identify unknown bacteria in the sample.
  • the kit for identifying bacteria has the following components (a) to (c).
  • a primer for reverse transcription for preparing a cDNA containing a base sequence for identification of a bacterium to be identified, for preparing a first reaction system for reverse transcription reaction.
  • B A primer pair for synthesizing a double-stranded DNA containing a base sequence for identification of an identification target bacterium for the preparation of a second reaction system for PCR.
  • C An enzyme having RNA-dependent DNA polymerase activity for preparing the first reaction system. In addition to these components, the following (d) may be included.
  • D An enzyme having DNA-dependent DNA polymerase activity for use in preparing the second reaction system.
  • an instruction manual describing the procedures for reverse transcription reaction and PCR, for example, the steps (I) to (III) mentioned above may be attached to the kit.
  • the concentration of the primer for reverse transcription contained in the second reaction system is 20 nM or less, preferably 0.08 nM to 20 nM, more preferably 0.4 nM to 20 nM, still more preferably 0.8 nM to 20 It is preferable that the procedure, for example, the adjustment methods (A) and (B) mentioned above is described so as to be nM, more preferably 2 nM to 20 nM.
  • the instruction manual states that the reaction using the first reaction system and the reaction using the second reaction system can be performed in this order in different reaction containers or in the same reaction container.
  • Bacterial identification kits include the reagents listed above in ⁇ Reagents for PCR>, for example, PCR enzymes, pH buffer, dNTP, Mg 2+ source, sterile water purified by filtration, Moreover, you may have at least 1 sort (s), such as fluorescent dye for real-time PCR analysis. Furthermore, when identifying a bacterial species using the Tm values listed above, a Tm value obtained from a known bacterial species, or a medium storing comparison data or a database may be added to the kit. These stored data may be provided to the user via the Internet, and the instruction manual explains this point and the database type identification software available on the computer mentioned above. May be included.
  • the kit may further include a positive control for identification and a negative control.
  • the identifiable microorganisms are classified as bacteria, they can be detected by mechanism and identified as bacterial species.
  • Specific bacterial species Achromobacter denitrificans, Achromobacter xylosoxidans, Acinetobacter baumannii, Acinetobacter calcoaceticus, Actinomyces israelii, Aerococcus christensenii, Aeromonas hydrophila, Aeromonas sobria, Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Alcaligenes faecalis, Alistipes onderdonkii, Anaerococcus vaginalis, Anaeroglobus geminatus, Arcanobacterium haemolyticum, Arcanobacterium pyogenes, Arthrobacter cumminsii, Atopobium vaginae, Bacillus anthracis, Bacillus cereus, Bacillus coagulans, Bacillus licheniformis, Bacillus megaterium, Bacill
  • Microbial strain MRSA (Methicillin-resistant Staphylococcus aureus): JMC16555 strain (catalog number), Escherichia coli: JCM1649T (catalog number), Pseudomonas aeruginosa: JCM5962T strain (catalog number) used in the following examples are all RIKEN BioResource Center microorganisms It is publicly available from the Materials Development Office (JCM) (Address: 3-1-1 Takanodai, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture 305-0074).
  • JCM Materials Development Office
  • Example 1 MRSA Metal-resistant Staphylococcus aureus
  • MRSA Method of Bactet Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bact Bactasaccharide
  • MRSA Method of Bactaphylococcus aureus
  • the column was set in a new 1.5 ml Eppendorf tube, 50 ⁇ l of Elution Buffer attached to High Pure RNA Isolation Kit (Roche) was added, and centrifuged at 8,000 ⁇ g for 1 minute to collect the RNA solution.
  • the final concentration of the primer for reverse transcription, which was 0.2 nM to 4000 nM during the reverse transcription reaction, in the second reaction system (solution) for PCR is 0.02 nM to 400 nM.
  • the PCR solution as the second reaction system for PCR was 2 ⁇ l of 10 ⁇ Buffer (Nippon Gene), 2 ⁇ l of 2.0 mM CleanAMP TM Hot Start PCR (TriLink), 2 ⁇ l of 25 mM MgCl 2 (Nippon Gene), and a primer pair (invitrogen) for 5 ⁇ M PCR.
  • Primer pair 1a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 3
  • Primer pair 2a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 5
  • Primer pair 3a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 6 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 7
  • Primer pair 4a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 8 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 9
  • Primer pair 5a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 10 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 11
  • Primer pair 6a a combination of a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO
  • PCR reaction conditions were 95 ° C., 5 minutes ⁇ 94 ° C., 10 seconds / 60 ° C., 20 seconds / 72 ° C., 10 seconds / 85 ° C., 2 seconds 40 cycles ⁇ 95 ° C., 10 seconds.
  • Bacteria were identified from the Tm value (melting temperature) of each PCR product obtained from the analysis data by collating with the Mitsui Chemicals database (prepared by the method described in paragraphs 0022 to 0030 of Patent Document 2). The results identified by the method described above are shown in Table 1. The evaluation in Table 1 was performed as follows.
  • FIG. 1 (A) shows the result of agarose gel electrophoresis for the PCR product when the added reverse transcription primer concentration was 2 ⁇ M.
  • FIG. 1 (B) shows the result of agarose gel electrophoresis for the PCR product when the added reverse transcription primer concentration was 5 ⁇ M.
  • FIG. 1C shows the result of agarose gel electrophoresis for the PCR product when the added reverse transcription primer concentration was 10 ⁇ M.
  • FIGS. 1 (A) shows the result of agarose gel electrophoresis for the PCR product when the added reverse transcription primer concentration was 2 ⁇ M.
  • FIG. 1 (B) shows the result of agarose gel electrophoresis for the PCR product when the added reverse transcription primer concentration was 5 ⁇ M.
  • FIG. 1C shows the result of agarose gel electrophoresis for the PCR product when the added reverse transcription primer concentration was 10 ⁇ M.
  • 1A to 1C shows the results of electrophoresis of the following products and compounds.
  • (1) PCR product of primer pair 1a (2) PCR product of primer pair 2a (3) PCR product of primer pair 3a (4) PCR product of primer pair 4a (5) PCR product of primer pair 5a (6) Primer pair PCR product of 6a (7) PCR product of primer pair 7a (8) Marker
  • Example 2 The primer concentration and the number of bacteria were examined using E. coli. Same as Example 1 except that the bacteria is E. coli. The identification results are shown in Table 2.
  • the results of agarose gel electrophoresis are shown in FIG. 2A to 2C show the results of agarose electrophoresis when the primer concentrations of the reverse transcription primer solution added in the same manner as in FIG. 1 are 2 ⁇ M, 5 ⁇ M, and 10 ⁇ M, respectively.
  • Each lane indicated by the numbers in FIGS. 2A to 2C shows the results of electrophoresis of the following products and compounds.
  • FIG. 2 (A) (1) Marker (2) PCR product of primer pair 1a (3) PCR product of primer pair 2a (4) PCR product of primer pair 3a (5) PCR product of primer pair 4a (6) PCR product of primer pair 5a ( 7) PCR product of primer pair 6a (8) PCR product of primer pair 7a
  • FIG. 2 (B) (1) Marker (2) PCR product of primer pair 1a (3) PCR product of primer pair 2a (4) PCR product of primer pair 3a (5) PCR product of primer pair 4a (6) PCR product of primer pair 5a ( 7) PCR product of primer pair 6a (8) PCR product of primer pair 7a (9) Marker FIG.
  • Example 3 Using P. aeruginosa, the primer concentration and the number of bacteria were examined. Same as Example 1 except that the bacterium was P. aeruginosa. The identification results are shown in Table 3. The results of agarose gel electrophoresis are shown in FIG. FIGS. 3A to 3C show the results of agarose electrophoresis when the primer concentrations of the reverse transcription primer solution added in the same manner as in FIG. 1 were 2 ⁇ M, 5 ⁇ M, and 10 ⁇ M, respectively. Each lane indicated by the numbers in FIGS. 3A to 3C shows the results of electrophoresis of the following products and compounds.
  • FIG. 3 (A) (1) Marker (2) PCR product of primer pair 1a (3) PCR product of primer pair 2a (4) PCR product of primer pair 3a (5) PCR product of primer pair 4a (6) PCR product of primer pair 5a ( 7) PCR product of primer pair 6a (8) PCR product of primer pair 7a (9) Marker FIG. 3 (B) and (C) (1) PCR product of primer pair 1a (2) PCR product of primer pair 2a (3) PCR product of primer pair 3a (4) PCR product of primer pair 4a (5) PCR product of primer pair 5a (6) Primer pair PCR product of 6a (7) PCR product of primer pair 7a (8) Marker
  • Example 4 Using MRSA used in Example 1, the detection sensitivity in this method was confirmed. The procedure was carried out except that the number of bacteria per sample was 20 CFU and 40 CFU, a primer solution for reverse transcription with a primer concentration of 1 ⁇ M was used, and the final concentration of the primer for reverse transcription in the second reaction system was 4 nM. An identification test was conducted in the same manner as in Example 1. Table 4 shows the Tm values and identification results obtained for the primer pairs 1a to 7a.
  • infection-causing bacteria particularly sepsis-causing bacteria
  • a rapid diagnosis method for sepsis is realized. That is, according to the present invention, it is possible to construct a system for identifying the causative bacteria by one PCR, so that the work load can be reduced and the inspection can be fully automated.

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Abstract

本発明の目的は、限定的な数種の細菌ではなく、多くの細菌を、同定用の試薬や条件を変えることなく同定可能な同定方法を提供すること。また、１回のPCRのみで高感度に検出・同定し、煩雑な操作および作業者の負担を軽減することを可能とする同定方法を提供することにある。　本発明においては、細菌の同定に、以下の工程を有する方法を用いる。（１）同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAを調製するための逆転写用のプライマー、試料中の細菌から抽出されたRNA、及びRNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第一の反応系を用いて、逆転写反応を行い、合成されたcDNA及び前記逆転写用のプライマーを含む反応混合物を得る工程、（２）前記反応混合物、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア、及びDNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第二の反応系を用いて、PCRを行う工程、但し、第二の反応系において、前記反応混合物から供給される前記逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下である、及び（３）ＰＣＲ後の前記第二の反応系から、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAの生成を検出する工程。

Description

試料細菌のＲＮＡを用いた細菌同定方法及びそのためのキット
　本発明は、試料中の細菌の迅速な同定方法及びそのためのキットに関する。
　重篤な全身感染症で、確定診断には血液中の起因微生物の検出・同定が必須である敗血症の患者数は、近年、癌治療や臓器移植など医療の高度化に伴って増加している。院内感染の観点からメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（MRSA：methicillin-resistant Staphylococcus aureus）をはじめとする多剤耐性菌が敗血症の起因菌となることも多く、適切な抗生剤を選択し患者を救命するためには、血液中の起因微生物を可能な限り迅速に検出・同定することが臨床上重要である（特許文献１）。
　このような背景から、敗血症の迅速な検査方法として、PCR（ポリメラーゼ連鎖反応）を用いた検査システムが検討されている。このような検査方法としては、微生物からDNAを抽出し、これを鋳型として、特定のプライマーペアを使用してPCRなどで遺伝子増幅を行い、次いで、微生物に特異的な融解温度（Tm値）の組合せ、或いは各Tm値間の差を解析することにより起因菌の検出・同定を迅速に行うPCR法が知られている（特許文献２）。
　上記PCR法では、抽出したDNAを鋳型に1st PCRを行い、目的とするDNA断片の全長を増幅し、増幅されたDNA断片を鋳型に2nd PCR (nested PCR)を行うことで、高感度に検出している。しかしながら、二段階のPCRが必要であることは、検査時間や作業性において課題である。特に作業性においては、２回のPCRは煩雑であり、作業者の負担軽減、および作業の全自動化に向けて、改良が必要であった。
　様々な臨床、食品、環境、またはその他の実験的サンプル中の細菌RNAを検出し、汚染物または病原体を同定することも行われている。いくつかの重要な細菌種を検出対象とし、検出対象細菌種に特有のRNA分子を検出することにより、検出対象外の細菌種の存在下でさえその検出を可能にする特異的プローブが開発されている。逆転写PCRアッセイ法において、目的RNAを鋳型とした逆転写反応によりcDNAを合成し、それに続くPCRにおけるcDNAの増幅を通じて、目的RNA分子を検出する方法も行われている（特許文献３）。
　Tm値に基づく細菌同定法についても、特許文献１において、DNAの代わりにRNAを抽出し、得られたRNAに基づいて調製されたcDNAも利用できるとしているが、詳細な検討は行われていなかった。
　特許文献３には、細菌から診断用ＲＮＡを直接検出するための方法が記載されている。
　特許文献４には、生物学的試料中のＲＮＡ種の特異的検出方法が記載されている。
国際公開第２０１０／０８２６４０号 国際公開第２００７／０９７３２３号 特開２０１２－３４７０５号公報 国際公開第２０１０／０５４８１９号
　特許文献２に開示される技術に基づけば、短時間のうちに高感度で微生物の検出および同定が可能である。しかしながら、先に述べたとおり、上記の方法はPCRを２回行わなければならず、操作が煩雑で作業者の負担になるだけでなく、作業の全自動化の障害となる場合があると考えられる。
　また、特許文献４には逆転写酵素を使ってRNAをcDNAに逆転写した後、PCRによって増幅されたcDNAを検出する方法が記載されている。
　細菌中にはDNAよりもRNAの方がより多く存在する。試料中の細菌からRNAを抽出し、一段回目のPCRの代わりにRNAを用いた逆転写反応によりcDNAを調製し、調製したcDNAを鋳型にしてPCRを行う方が、論理的に考えれば、細菌の検出感度を向上させることが期待できる。
　しかしながら、本発明者らの検討により、特許文献４に記載の様な反応を行った場合、PCR中に逆転写反応により余計な反応が起こり、目的とするDNA断片以外の不必要なDNA断片が多数得られるため、事実上細菌の同定が出来ないことがわかった。
　本発明は、試料中の細菌のRNAをターゲットとすることで、限定的な数種の細菌ではなく、多くの細菌を、細菌同定用の試薬や条件を変えることなく細菌同定可能な細菌同定方法及びそのためのキットを提供することを課題とする。また、本発明は、１回のPCRのみでも高感度に検出・同定し、煩雑な操作および作業者の負担を軽減することを可能とする同定方法及びそれに用いるキットを提供することを課題とする。
　本願発明の別の課題は、上記の課題を解決するために必要な細菌同定方法を見出すことにある。
　上記のとおり、試料中のRNAを用いるという従来の発想だけでは細菌の検出、同定は達成できない場合があることは発明者らの検討により明らかである。本発明者らは、標的cDNAを検出するためのPCR工程に持ち込まれる逆転写用のプライマーの濃度が高すぎることが、特許文献４に記載される方法において事実上細菌の同定が出来ない場合の原因であることを突き止めた。
　本発明者らはこの実験事実を出発点として検討を重ね、更にその先に、当業者が従来認識していなかった新たな解決課題が存在することを初めて見出した。即ち、試料から抽出したRNAを逆転写酵素によりcDNAを調製し、調製されたcDNAを鋳型としてPCRする場合、PCR中に生じる目的以外のDNA断片の生成を抑制する必要があることが見出された。この課題は、課題そのものが、従来技術において従来当業者が認識していない未知のものである。
　上記のとおり、本発明者らは全く新規な課題を解決するため鋭意検討を重ねた。
　その結果、逆転写反応から持ち込まれる、PCR反応時の反応系内の逆転写用プライマーの濃度を調整すること、それも通常考えられるよりも極めて低い濃度になるように調整すると、不必要なDNA断片の生成が顕著に抑制され、Ｔｍマッピングの条件を適正に調整することにより、試料中の細菌を検出、同定できることを見出した。
　更に、PCR反応時の反応系内に存在する逆転写用プライマーの濃度には最適域が存在し、その範囲内になるように逆転写用プライマーの濃度を適正に制御すれば、たとえ試料中の菌数が極めて低濃度であっても、感度良く検出、同定が可能であることを見出した。
　本発明は以上のような全く新しい知見に基づいて完成されたものである。
　即ち、本発明は以下のとおりである。
［１］以下の工程（１）～（３）を有することを特徴とする細菌同定方法。
（１）同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAを調製するための逆転写用のプライマー、試料中の細菌から抽出されたRNA、及びRNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第一の反応系を用いて、逆転写反応を行い、合成されたcDNA及び前記逆転写用のプライマーを含む反応混合物を得る工程、
（２）前記反応混合物、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア、及びDNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第二の反応系を用いて、PCRを行う工程、但し、第二の反応系において、前記反応混合物から供給される前記逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下である、及び
（３）ＰＣＲ後の前記第二の反応系から、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAの生成を検出する工程。
［２］　前記工程（１）及び（２）を、別の反応容器内で、あるいは、同一の反応容器内で、順に行なうことを特徴とする上記［１］項に記載の細菌同定方法。
［３］　前記同定対象細菌の同定用の塩基配列が、細菌の16S rDNAに含まれる塩基配列であり、前記RNAが前記試料中の細菌の16S rRNAを含むことを特徴とする上記［１］項または［２］項に記載の細菌同定方法。
［４］　前記逆転写用のプライマーが配列番号１の塩基配列からなることを特徴とする［３］に記載の細菌同定方法。
［５］　前記プライマーペアが、以下の（Ａ群）～（Ｃ群）からなる群から選択された少なくとも１つのプライマーペアであることを特徴とする上記［１］または［４］に記載の細菌同定方法。
（Ａ群）
・プライマーペア１ａ：配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア２ａ：配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア３ａ：配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア４ａ：配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア５ａ：配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア６ａ：配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア７ａ：配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ。
（Ｂ群）前記（Ａ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、及び
（Ｃ群）前記（Ａ群）又は（Ｂ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
［６］　前記工程（３）において、生成された二本鎖DNAのTm値を測定し、得られたTm値と予め測定しておいた同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAのTm値またはそれらから二次的に得られるデータを比較して、前記試料中の細菌を同定することを特徴とする上記［１］乃至［５］のいずれか１項に記載の細菌同定方法。
［７］　前記工程（１）の後、前記反応混合物を単独で直接又は希釈し、前記工程（２）に用いることを特徴とする上記［１］乃至［６］のいずれか１項に記載の細菌同定方法。
［８］　試料中の細菌から抽出されたRNAの逆転写反応による反応混合物に含まれるcDNAを鋳型とするPCRにより前記試料中の細菌を同定するためのキットであって、
　下記（ａ）乃至（ｃ）を有し、
（ａ）前記逆転写反応のための第一の反応系の調製用としての、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAを調製するための逆転写用のプライマー、
（ｂ）前記PCRのための第二の反応系の調製用としての、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア、及び
（ｃ）RNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素、
　前記第二の反応系が前記逆転写反応による反応混合物を含み、前記逆転写用のプライマーの量が、該反応混合物を介して前記第二の反応系に供給された際の逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下となるように調整されている、
ことを特徴とするキット。
［９］　前記逆転写反応と前記PCRの手順が記載されている取扱説明書をさらに有することを特徴とする上記［８］に記載のキット。
［１０］　前記取扱説明書には、前記第二の反応系に含まれる前記逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下となるように手順が記載されていることを特徴とする上記［９］に記載のキット。
［１１］　前記同定対象細菌の同定用の塩基配列が、細菌の16S rDNAに含まれる塩基配列であり、前記RNAが前記試料中の細菌の16S rRNAを含むことを特徴とする上記［８］乃至［１０］のいずれか１に記載のキット。
［１２］　前記逆転写用のプライマーが配列番号１の塩基配列からなることを特徴とする上記［１１］に記載のキット。
［１３］　前記プライマーペアが、以下の（Ａ群）～（Ｃ群）からなる群から選択された少なくとも１つのプライマーペアであることを特徴とする上記［１１］または［１２］に記載のキット。
（Ａ群）
・プライマーペア１ａ：配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア２ａ：配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア３ａ：配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア４ａ：配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア５ａ：配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア６ａ：配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア７ａ：配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ。
（Ｂ群）前記（Ａ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、及び
（Ｃ群）前記（Ａ群）又は（Ｂ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
　本発明により、検出感度を維持したまま1回のPCRでも細菌の検出および同定を行うことができる。このため作業者の負担の軽減およびシステムの自動化を行うことができる。
　本発明の同定方法は、第二の反応系における逆転写用プライマーの濃度を適正に調整することにより、菌数１００ＣＦＵ／検体程度の希薄な菌を含む試料に対しても感度良く細菌の検出・同定が可能である。
実施例１におけるPCR産物のアガロース電気泳動の結果を示す図である。 実施例２におけるPCR産物のアガロース電気泳動の結果を示す図である。 実施例３におけるPCR産物のアガロース電気泳動の結果を示す図である。
　本発明にかかる細菌同定方法は、以下の工程を有する。
（I）試料中の細菌から抽出されたRNAを用いて逆転写反応によりcDNAを含む反応混合物を得る工程。
（II）cDNAを含む反応混合物と、細菌同定用のプライマーペアを用いてPCRを行う工程。
（III）細菌同定用のプライマーペアによりPCRで増幅した二本鎖DNAの生成を検出する工程。
　工程（I）における逆転写反応には、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAを調製するための逆転写用のプライマー、試料中の細菌から抽出されたRNA、及びRNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第一の反応系が用いられる。
　本発明における反応混合物は、第一の反応系での逆転写反応を行って得られる反応混合物と反応に関与せずに未反応のまま残存した未反応物とを含む混合物を意味する。
　第一の反応系に用いる逆転写用のプライマーはcDNAの合成時に消費されるが、通常、目的とするcDNAの合成量に必要な量よりも多い過剰量で用いられる。そのため、第一の反応系による逆転写反応による反応混合物には、反応生成物としての合成されたcDNAと、未反応物としての残存する逆転写用のプライマーが含まれる。
　工程（II）におけるPCRには、工程（I）で得られた反応混合物、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア及びDNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第二の反応系が用いられる。
　上記のとおり、工程（I）で得られた反応混合物には逆転写反応に消費されなかった逆転写用のプライマーが含まれており、工程(II)におけるこの逆転写用のプライマーの量を調整することによって高感度検出を行うことができる。そのために、第二の反応系の調製時の逆転写用のプライマーの濃度は、0.08nM～20nM、より好ましくは0.4nM～20nM、更に好ましくは0.8nM～20nM、更に好ましくは2nM～20nMから選択される。
　第二の反応系への逆転写用のプライマーの持込量が多い場合には、PCRによる増幅産物中に目的としない増幅産物が含まれ、細菌同定におけるバックグランドの上昇による同定精度の低下を生じる場合がある。そこで、第二の反応系における逆転写用のプライマーの濃度を上記の範囲に設定する。
　工程（I）及び（II）は、別の反応容器内で、あるいは、同一の反応容器内で、順に行なうことができる。
　本発明にかかる細菌同定用のキットは以下の構成成分（ａ）乃至（ｃ）を有する。
（ａ）逆転写反応のための第一の反応系の調製用としての、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAの調製のための逆転写用のプライマー、
（ｂ）PCRのための第二の反応系の調製用としての、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア、及び
（ｃ）第一の反応系の調製用としての、RNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素。
　本発明にかかる細菌同定用のキットは、さらに所望により、
（ｄ）第二の反応系の調製用としての、DNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を有していてもよい。
　キットに含まれる逆転写用のプライマーの量は、逆転写反応により得られる反応混合物を介して第二の反応系に供給された際の濃度が0.08nM～20nM、より好ましくは0.4nM～20nM、更に好ましくは0.8nM～20nM、更に好ましくは2nM～20nMとなるように、調整される。
　なお、本発明にかかる細菌同定方法及びそのためのキットは、試料中における検出対象菌の有無を検出する検出方法にも利用することができる。
　以下、本発明にかかる細菌同定方法及びそのためのキットの好ましい形態について説明する。
＜RNA抽出＞
　RNA抽出方法としては、アルカリ溶解法、ボイリング法、フェノール抽出などが知られており、また、メーカー各社から専用のRNA抽出キットも販売されている。
　本発明における試料中の細菌からのRNAの抽出方法は特に限定されず、公知の方法を用いることができる。検体により最適な方法は異なるため、対象検体に相応した方法を選択することが望ましい。なお、本願実施例において使用しているロシュ社製High Pure RNA Isolation Kitは好適に使用可能なRNA抽出方法の一例である。
＜逆転写反応＞
　試料中の細菌から得られたRNAを、逆転写反応によりcDNAとする必要がある。本発明における逆転写反応方法は特に限定されず、公知の方法を用いることができる。後述する実施例において使用しているプロメガ社製M-MLV Reverse Transcriptase, RNase (H-), Point Mutantは好適に使用可能な逆転写反応方法の一例である。
　第一の反応系に添加するRNA及びRNA依存型DNAポリメラーゼの量は、特に限定されず、目的とするcDNAの合成が可能となる量を選択すればよい。
＜逆転写用のプライマー＞
　逆転写用のプライマーは、細菌同定のために利用する塩基配列を含むcDNAの、逆転写反応による合成用として利用される。逆転写用のプライマーは、試料中の細菌から抽出されたRNA中の細菌同定に必要な塩基配列と相補的な塩基配列を含むcDNA（断片）を合成できるプライマーであれば特に制限されない。細菌同定用の塩基配列を含むDNAを合成可能とされる公知の、あるいは新たに調製したプライマーを用いることができる。また、市販のプライマーも利用できる。
　細菌同定用の塩基配列としては、16S rDNA中に多くの塩基配列が知られており、16S rDNAに対応する16S rRNAを細菌同定用のRNAとして利用することが好ましい。
　細菌の16S rRNAをターゲットとする場合は、逆転写用プライマーとして、16S rRNAの、細菌同定に利用し得る領域を含むcDNAの合成の開始位置に相補的な公知のプライマーや新たに調製したプライマーを用いることができる。また、市販のプライマーも利用できる。
　なお、逆転写用プライマーによって合成されるcDNAが、後述する細菌同定用のプライマーペアによる増幅が可能な領域を有するように、逆転写用プライマーを選択することが好ましい。
　特に好適な逆転写用プライマーの例として以下の配列番号１の塩基配列からなるプライマーが挙げられる。
　配列番号１：AGACCCGGGA ACGTATTC
　第一の反応系に添加する逆転写用プライマーの量は、目的とする逆転写反応に必要な量であり、かつ、第一の反応系を用いた逆転写反応の反応混合物を添加する第二の反応系での逆転写用プライマーの濃度が20nM以下となるように調整される。また、第二の反応系での逆転写用のプライマーの濃度の下限値は、試料中に存在する細菌を検出、同定できる程度にRNAからcDNAを合成できる程度の濃度である。このような観点から、第二の反応系の逆転写用のプライマーの濃度は、好ましくは0.08nM～20nM、より好ましくは0.4nM～20nM、更に好ましくは0.8 nM～20nM、更に一層好ましくは2nM～20nMの範囲となるように調整するとよい。
　この逆転写用プライマーの量の調整には、以下の方法を利用することができる。
（Ａ）第一の反応系での逆転写反応により得られた反応混合物をそのまま単独で第二の反応系によるPCRに用いる場合
　第一の反応系において得られた反応混合物の量と、この反応混合物を含む第二の反応系の量の合計量に対する反応混合物による逆転写用のプライマーの持込濃度を算出する。ただし、この濃度の算出において逆転写反応で消費された逆転写用のプライマーの量は考慮しない。従って、この濃度の算出において用いる逆転写用プライマーの量は、第一の反応系に添加した逆転写プライマーの量に基づいて求める。こうして算出された第二の反応系に持ち込まれた逆転写用のプライマーの濃度が、上述した範囲となるように、第一の反応系に添加する逆転写用のプライマーの濃度を設定する。
　上記のように設定された第一の反応系の逆転写用のプライマーの濃度に基づいて、目的とする逆転写反応を行うことができるように、第一の反応系の組成や逆転写反応の条件を設定することが好ましい。
　例えば、第一の反応系から得られた反応混合物の量に対して、第２の反応系の量が１０倍量である場合は、第一の反応系に添加する逆転写用のプライマーの濃度を、第二の反応系に含まれる逆転写用のプライマーの濃度の１０倍に設定すればよい。第二の反応系における逆転写用のプライマーの濃度を上述の好ましい範囲としての0.08nM～20nMに設定する場合は、第一の反応系における逆転写用のプライマーの濃度を0.8nM～200nMの範囲に設定する。
　なお、逆転写用のプライマー濃度を逆転写反応に必要とされる量よりも十分に過剰量としておくことで、上述の逆転写用のプライマーの第二の反抗系への持込量の算出において逆転写反応で消費されたプライマーの量を考慮しなくても、近似的にこの持込量を算出することができる。
　また、本発明は、第二の反応系に持ち込まれる逆転写用のプライマーの量の上限値を、本発明の効果を得るための閾値として設定することを特徴としている。上述のように逆転写反応において消費されたプライマーの量を考慮せずに第一の反応系に添加する逆転写用のプライマーの濃度を設定しておくことで、逆転写反応での消費分を差し引いた逆転写用のプライマーの第二の反応系への持込量は自動的に上述した閾値以下となる。
　上記の調整方法（Ａ）では、逆転写反応により得られる反応混合物は、そのまま単独で、すなわち、なにも添加せず、かつ、反応混合物からなにも分離せずに、そのまま直接第二の反応系の調製に用いられる。
（Ｂ）第一の反応系での逆転写反応により得られた反応混合物を希釈して第二の反応系によるPCRに用いる場合
　目的とする逆転写反応を行う上で必要な逆転写用プライマーの濃度を用いた場合に、逆転写反応による反応混合物を上記の調整方法（Ａ）に従って第二の反応液の調製に用いると、逆転写用のプライマーの第二の反応系での濃度が20nMを超えてしまう場合には、上述した第二の反応系における逆転写用のプライマーの濃度となるように、第一の反応系から得られる反応生物を希釈する。この希釈における希釈率は、第一の反応系における逆転写用のプライマーの濃度、第一の反応系から得られる反応混合物の量、第二の反応系の量に基づいて設定することができる。
　なお、この調整方法（Ｂ）における逆転写用のプライマーの濃度の算出においても、第一の反応系での逆転写反応において消費されるプライマーの量は無視することができる。
　また、反応混合物の希釈には、プライマー溶液の希釈用の緩衝液等の液媒体やPCR用の第二の反応系の調製に利用される緩衝液等の液媒体を利用することができる。
＜PCR用のプライマー＞
　PCR用のプライマーペア、すなわち、フォワードプライマーとリバースプライマーとの組合せとしては、細菌同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを増幅できるものであればよく、限定されない。プライマーペアは、同定対象細菌の菌種に応じて選択することができる。
　細菌の16S rDNAをターゲットとする場合は、細菌同定用として16S rDNAにある細菌同定用の塩基配列を増幅可能なプライマーペアを利用することができる。16S rDNA中には種々の細菌同定用の塩基配列が知られており、プライマーペアとしては、公知の細菌同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを増幅できるプライマーペアを用いることができる。
　後述する通り、cDNAから複数DNA断片をPCRで増幅し、それらDNA断片のTm値をもとに、細菌を同定する場合は、16S rDNA上に存在する可変領域（S. Chakravorty, et al., Journal of Microbiological Methods 2007, 69, 330-339参照）を各々含む二本鎖DNAが増幅されるプライマーペアを用いることが好ましい。
　PCR用のプライマーペアは、１種または複数種の組合せを用いることができる。複数種のプラーマーセットを用いる場合は、同定菌種の数を増やす上で、あるいは同定精度の向上を図る上で、４～７種のプライマーペアをそれぞれ個々に用いることが好ましい。
　好ましいプライマーペアとしては、以下の（Ａ群）～（Ｃ群）からなる群から選択された少なくとも１つのプライマーペアを挙げることができる。
（Ａ群）
・プライマーペア１ａ：配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア２ａ：配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア３ａ：配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア４ａ：配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア５ａ：配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア６ａ：配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア７ａ：配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ。
（Ｂ群）前記（Ａ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換した改変フォワードプライマー及び／または改変リバースプライマーを含むプライマーペア、及び
（Ｃ群）前記（Ａ群）又は（Ｂ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
　上述のPCR用プライマーの具体例としては、以下の第１群～第７群に記載されるプライマーペアを挙げることができる。これらの７つの群のそれぞれから選択された７つのプライマーペアのうちの４～７つのプライマーペアをそれぞれ個々に用いることがより好ましい。
（１）プライマーペア第１群：
　（１ａ）配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（１ｂ－１）配列番号２の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号３からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（１ｂ－２）配列番号２からなるフォワードプライマーと、配列番号３の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（１ｂ－３）配列番号２の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号３の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（１ｃ－１）配列番号２の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号３の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（１ｃ－２）配列番号２の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号３の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（１ｃ－３）配列番号２の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号３の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（１ｃ－４）配列番号２の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号３の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（２）プライマーペア第２群：
　（２ａ）配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（２ｂ－１）配列番号４の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号５からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（２ｂ－２）配列番号４からなるフォワードプライマーと、配列番号５の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（２ｂ－３）配列番号４の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号５の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（２ｃ－１）配列番号４の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号５の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（２ｃ－２）配列番号４の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号５の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（２ｃ－３）配列番号４の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号５の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（２ｃ－４）配列番号４の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号５の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（３）プライマーペア第３群：
　（３ａ）配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（３ｂ－１）配列番号６の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号７からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（３ｂ－２）配列番号６からなるフォワードプライマーと、配列番号７の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（３ｂ－３）配列番号６の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号７の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（３ｃ－１）配列番号６の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号７の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（３ｃ－２）配列番号６の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号７の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（３ｃ－３）配列番号６の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号７の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（３ｃ－４）配列番号６の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号７の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（４）プライマーペア第４群：
　（４ａ）配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（４ｂ－１）配列番号８の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号９からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（４ｂ－２）配列番号８からなるフォワードプライマーと、配列番号９の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（４ｂ－３）配列番号８の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号９の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（４ｃ－１）配列番号８の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号９の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（４ｃ－２）配列番号８の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号９の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（４ｃ－３）配列番号８の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号９の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（４ｃ－４）配列番号８の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号９の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（５）プライマーペア第５群：
　（５ａ）配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（５ｂ－１）配列番号１０の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１１からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（５ｂ－２）配列番号１０からなるフォワードプライマーと、配列番号１１の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（５ｂ－３）配列番号１０の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１１の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（５ｃ－１）配列番号１０の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号１１の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（５ｃ－２）配列番号１０の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１１の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（５ｃ－３）配列番号１０の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号１１の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（５ｃ－４）配列番号１０の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１１の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（６）プライマーペア第６群：
　（６ａ）配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（６ｂ－１）配列番号１２の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１３からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（６ｂ－２）配列番号１２からなるフォワードプライマーと、配列番号１３の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（６ｂ－３）配列番号１２の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１３の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（６ｃ－１）配列番号１２の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号１３の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（６ｃ－２）配列番号１２の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１３の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（６ｃ－３）配列番号１２の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号１３の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（６ｃ－４）配列番号１２の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１３の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（７）プライマーペア第７群：
　（７ａ）配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
　（７ｂ－１）配列番号１４の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１５からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（７ｂ－２）配列番号１４からなるフォワードプライマーと、配列番号１５の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（７ｂ－３）配列番号１４の改変塩基配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１５の改変塩基配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（７ｃ－１）配列番号１４の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号１５の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（７ｃ－２）配列番号１４の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１５の相補配列からなるリバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（７ｃ－３）配列番号１４の相補配列からなるフォワードプライマーと、配列番号１５の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　（７ｃ－４）配列番号１４の改変塩基配列の相補配列からなる改変フォワードプライマーと、配列番号１５の改変塩基配列の相補配列からなる改変リバースプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　配列番号２～１５の塩基配列を以下に示す。
配列番号２：GCAGGCTTAA CACATGCAAG TCG
配列番号３：CGTAGGAGTC TGGACCGT
配列番号４：GTCCAGACTC CTACGGGAG
配列番号５：CCTACGTATT ACCGCGG
配列番号６：AGCAGCCGCG GTAATA
配列番号７：GGACTACCAG GGTATCTAAT CCT
配列番号８：AACAGGATTA GATACCCTGG TAG
配列番号９：AATTAAACCA CATGCTCCAC C
配列番号１０：TGGTTTAATT CGATGCAACG C
配列番号１１：GAGCTGACGA CAGCCAT
配列番号１２：GTTAAGTCCC GCAACGAG
配列番号１３：CCATTGTAGC ACGTGTGTAG CC
配列番号１４：GGCTACACAC GTGCTACAAT GG
配列番号１５：AGACCCGGGA ACGTATTC
＜PCR用の試薬＞
　本発明でPCR分析のために使用されるプライマーペア以外の試薬は、公知のものを公知の組合せにより使用することができる。測定に必要な試薬としては、PCR用の酵素、pH緩衝液、dNTP、Mg2+源、ろ過処理などにより精製された滅菌水が挙げられる。また、リアルタイムPCR分析においては蛍光色素が上記に加えて必要となる。
＜PCR用の酵素＞
　本発明において使用されるPCR用の酵素は、DNA依存型DNAポリメラーゼであり、市販の様々なものを用いることができるが、特に陰性となるような検体が対象となる試験では、偽陽性の原因となる細菌由来のDNA混入量を最小限にとどめたDNA依存型耐熱性DNAポリメラーゼを用いることが好ましい。具体的には、真核生物で生産されたもの、高度精製処理されたもの、又は選択的膜透過性色素であるＥＭＡ（ethidium monoazide）やPMA（propidium monoazide）により処理されたものが挙げられるが、この限りではない。
＜PCR分析＞
　逆転写反応により得られた反応生成物としてのcDNAおよびプライマーペアは、PCR法において使用される。PCR法としては、細菌の同定に利用する塩基配列を含む二本鎖DNAの増幅のためのPCR法であれば種々のPCR法を利用できる。好ましい分析法としては、リアルタイムPCRであり、より好ましくはリアルタイムPCRとTm値測定のための融解曲線分析の組み合わせである。
　PCRにおける温度サイクルの条件は、特に限定されないが、後述する実施例において実施している条件、「95℃, 5分→94℃, 10秒・60℃, 20秒・72℃, 10秒・85℃, 2秒を40サイクル→95℃, 10秒」が一例である。
　リアルタイムPCRにおいては、DNA増幅工程終了後、融解曲線解析により、増幅されたDNAのTm値を測定できる。こうした測定は、リアルタイムPCR装置の多くの機種で可能であり、機器の使用方法に準じて実施可能である。
＜同定方法＞
　試料中の細菌を同定するために、本発明にかかるプライマーペアを用いてcDNAを含む反応混合物から得られる増幅産物に含まれる二本鎖DNA断片のTm値を利用することができる。
　好ましい同定方法として以下の方法を挙げることができる。
　まず、試料に含まれる可能性が考えられる複数種の、好ましくは多数種の細菌の16S rRNAまたは16S rDNAを用いて、本発明にかかる同定方法により、あるいは本発明にかかる方法の一部を利用した方法により、二本鎖DNA断片とそのTm値をあらかじめ取得しておき、それらのTm値（測定値そのもの）ないしは、測定されたTm値から二次的に得られるデータを取得して保存しておく。例えば、後述する“Tm値の相対値”を、比較データないしはデータベースとして保存しておく。この比較データは、既知の細菌から得られた二本鎖DNA断片の“Tm値の相対値”を予め取得しておいたデータである。また、この比較データのデータベースは、上記の比較データを複数の細菌からの二本鎖DNA断片について網羅的に取得したデータを格納するものである。
　次に、試料中の細菌から得られたTm値ないしは“Tm値の相対値”と、この保存された比較データないしデータベースを比較して、試料中の種が不明な細菌を同定することができる。
　同定するためのアルゴリズムとしては、上述したTm値そのものの組合せだけでなく、各Tm値間の差の組合せを利用して同定することで、例えば機器の試行回毎の測定誤差といった測定誤差の影響を最小限とする工程を付加することができる。
　上記の、機器の試行回毎の測定誤差を補正する方法として、複数のプライマーペア毎に得られた“Tm値の組合せの平均値”を算出し、その平均値からの各Tm値の“相対値の組合せ”を利用することが出来る。この相対値としては、平均値からの各Tm値の差を取った値を用いることができ、この相対値が、前述した“Tm値の相対値”である。つまり、Tm値の組合せの配置を“形”として同定する方法である。Tm値の組合せの配置を２次元で示した“形”は測定誤差に影響されない。例えば、検出細菌に特異的なTm値の組合せ（ｎ個（ｎは4以上、7以下の整数））をＴ１db～Ｔｎdbとし（dbはdatabase）、その平均値からの相対値をそれぞれｄ１db～ｄｎdbとする。同様に検体から得られた未知の検出対象生物のTm値の組合せ（ｎ個（ｎは4以上、7以下の整数））をＴ１ref～Ｔｎrefとし（refはreference）、その平均値からの相対値をそれぞれｄ１ref～ｄｎrefとする。そうしてdatabaseと比較し、「相対値の組合せが近似したもの＝Tm値の組合せの配置の“形”が近いもの」、を同定アルゴリズムとして利用する。
　具体的な計算方法としては、例えば、ユークリッド空間上の２点間距離を算出する方法（式１）が挙げられるが、この限りではない。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000001
　式１による計算方法であれば、この計算式によって得られるDist.値が0に最も近いものが求める検出細菌種として同定される。ただし、使用するPCR機器の測定誤差の関係上、機器の温度制御スペックやプライマーの数にもよるが、Dist.値の許容範囲としては、0～0.37、好ましくは0～0.30である。
　以上のアルゴリズムは、コンピュータ上でデータベース型同定ソフトウェアとして利用できる。
　上記のTm値の相対値を用いた細菌種の同定、すなわちＴｍマッピング法による細菌種の同定は、例えば特許文献２、国際公開２０１０／０８２６４０号の段落［０２３７］または国際公開２０１５／０５３２９３号の段落［０１１１］～［０１１６］に開示の方法に従って、あるいはそれらに開示の方法を適宜改変して行なってもよい。Ｔｍマッピング法による細菌種の同定の一例では、菌種が既知である細菌から得られる複数の特定のプライマーペアにより増幅された複数の増幅産物のTm値の組合せ、あるいは複数のTm値間の差の組合せに関する同定用データが利用される。検体から集めた未知の菌体試料から同じ複数のプライマーペアによって得られる増幅産物のTm値の組合せ、あるいはTm値間の差の組合せを、同定用データベースと照合し、その一致性を判断して、検体中の未知の細菌の同定を行う。
＜細菌同定用のキット＞
　本発明にかかる細菌同定用のキットは、前出した以下の（ａ）乃至（ｃ）の各構成成分を有する。
（ａ）逆転写反応のための第一の反応系の調製用としての、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAの調製のための逆転写用のプライマー。
（ｂ）PCRのための第二の反応系の調製用としての、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア。
（ｃ）第一の反応系の調製用としての、RNA依存型DN Aポリメラーゼ活性を有する酵素。
　これらの構成成分に加えて、以下の（ｄ）を有してもよい。
（ｄ）第二の反応系の調製用としての、DNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素。
　さらに、逆転写反応とPCRの手順、例えば、先に挙げた工程(I)～（III）についての手順が記載されている取扱説明書をキットに添付してもよい。
　また、この取扱説明書には、第二の反応系に含まれる逆転写用のプライマーの濃度が20nM以下、好ましくは0.08nM～20nM、より好ましくは0.4nM～20nM、更に好ましくは0.8 nM～20 nM、更に好ましくは2nM～20nMとなるように手順、例えば先に挙げた調整方法（Ａ）及び（Ｂ）が記載されていることが好ましい。
　取扱説明書には、第一の反応系を用いた反応と、第二の反応系を用いた反応を、異なる反応容器内で、あるいは同一の反応容器内で、この順に行なうことができる点の説明が含まれていてもよい。
　細菌同定用のキットは、先に＜PCR用の試薬＞の項で挙げた各試薬、例えばPCR用の酵素、pH緩衝液、dNTP、Mg2+源、ろ過処理などにより精製された滅菌水、並びにリアルタイムPCR分析用の蛍光色素等の少なくとも１種を有してもよい。更に、先に挙げたTm値を用いて細菌種を同定する場合は、既知の細菌種から得られたTm値、あるいは比較データもしくはデータベースを格納した媒体をキットに追加してもよい。また、これらの格納データを、インターネットを経由して使用者に提供するようにしてもよく、取り扱い説明書はこの点の説明や先に挙げたコンピュータ上で利用可能なデータベース型同定ソフトウェアについての説明を含んでいてもよい。
　また、キットは同定用のポジティブコントロール、ネガティブコントロールを更に含んでも良い。
＜同定可能な細菌種＞
　同定可能な微生物は、分類上細菌に該当するものであれば、機構上検出及び細菌種の同定が可能である。具体的な細菌種としては、Achromobacter denitrificans、Achromobacter xylosoxidans、Acinetobacter baumannii、Acinetobacter calcoaceticus、Actinomyces israelii、Aerococcus christensenii、Aeromonas hydrophila、Aeromonas sobria、Aggregatibacter actinomycetemcomitans、Alcaligenes faecalis、Alistipes onderdonkii、Anaerococcus vaginalis、Anaeroglobus geminatus、Arcanobacterium haemolyticum、Arcanobacterium pyogenes、Arthrobacter cumminsii、Atopobium vaginae、Bacillus anthracis、Bacillus cereus、Bacillus coagulans、Bacillus licheniformis、Bacillus megaterium、Bacillus pumilus、Bacillus sphaericus、Bacillus subtilis、Bacteroides dorei、Bacteroides finegoldii、Bacteroides fragilis、Bacteroides nordii、Bacteroides salyersiae、Bacteroides thetaiotaomicron、Bacteroides uniformis、Bacteroides vulgatus、Bartonella henselae、Bartonella quintana、Bifidobacterium bifidum、Bifidobacterium breve、Bilophila wadsworthia、Bordetella pertussis、Borrelia burgdorferi、Borrelia recurrentis、Brevibacillus laterosporus、Brucella abortus、Brucella melitensis、Brucella suis、Burkholderia cepacia、Burkholderia mallei、Burkholderia pseudomallei、Campylobacter coli、Campylobacter curvus、Campylobacter jejuni、Campylobacter rectus、Capnocytophaga gingivalis、Capnocytophaga granulosa、Capnocytophaga haemolytica、Capnocytophaga sputigena、Cardiobacterium hominis、Chryseobacterium meningosepticum、Citrobacter amalonaticus、Citrobacter freundii、Citrobacter koseri、Clostridium butyricum、Clostridium difficile、Clostridium histolyticum、Clostridium hylemonae、Clostridium paraputrificum、Clostridium perfringens、Clostridium septicum、Clostridium sporogenes、Clostridium subterminale、Clostridium tertium、Clostridium tetani、Corynebacterium amycolatum、Corynebacterium confusum、Corynebacterium diphtheriae、Corynebacterium glucuronolyticum、Corynebacterium jeikeium、Corynebacterium kroppenstedtii、Corynebacterium macginleyi、Corynebacterium minutissimum、Corynebacterium pseudodiphtheriticum、Corynebacterium pseudotuberculosis、Corynebacterium riegelii、Corynebacterium tuberculostearicum、Corynebacterium ulcerans、Corynebacterium xerosis、Edwardsiellatarda、Eggerthella lenta、Eikenella corrodens、Elizabethkingia meningoseptica、Empedobacter brevis、Enterobacter aerogenes、Enterobacter aerogenes、Enterobacter cloacae、Enterobacter sakazakii、Enterococcus avium、Enterococcus bovis、Enterococcus casseliflavus、Enterococcus cecorum、Enterococcus dispar、Enterococcus durans、Enterococcus faecium、Enterococcus flavescens、Enterococcus gallinarum、Enterococcus gilvus、Enterococcus hirae、Enterococcus italicus、Enterococcus malodoratus、Enterococcus mundtii、Enterococcus pallens、Enterococcus pseudoavium、Enterococcus raffinosus、Enterococcus sanguinicola、Erysipelothrix rhusiopathiae、Escherichia albertii、Escherichia coli、Eubacterium lentum、Eubacterium limosum、Finegoldia magna、Francisella tularensis、Fusobacterium necrophorum、Fusobacterium nucleatum、Fusobacterium periodonticum、Fusobacterium varium、Gardnerella vaginalis、Gemella morbillorum、Geobacillus stearothermophilus、Granulicatella adiacens、Haemophilus ducreyi、Haemophilus influenzae、Haemophilus parainfluenzae、Hafnia alvei、Halomonas venusta、Helicobacter cinaedi、Helicobacter pylori、Kingella kingae、Klebsiella granulomatis、Klebsiella oxytoca、Klebsiella pneumoniae、Lactobacillus acidophilus、Lactobacillus crispatus、Lactobacillus delbrueckii、Lactobacillus jensenii、Lactococcus garvieae、Legionella pneumophila、Leptospira interrogans、Listeria monocytogenes、Micrococcus luteus、Moraxella catarrhalis、Morganella morganii、Mycoplasma genitalium、Mycoplasma hominis、Neisseria gonorrhoeae、Neisseria meningitidis、Nocardia cyriacigeorgica、Odoribacter splanchnicus、Pantoea agglomerans、Parabacteroides distasonis、Parvimonas micra、Pasteurella multocida、Pediococcus damnosus、Peptoniphilus asaccharolyticus、Peptoniphilus gorbachii、Peptostreptococcus anaerobius、Plesiomonas shigelloides、Porphyromonas asaccharolytica、Porphyromonas gingivalis、Prevotella bivia、Prevotella bivia、Prevotella corporis、Prevotella intermedia、Prevotella melaninogenica、Prevotella nigrescens、Prevotella timonensis、Prevotella veroralis、Propionibacterium acnes、Propionibacterium avidum、Propionibacterium granulosum、Proteus mirabilis、Proteus vulgaris、Providencia rettgeri、Providencia stuartii、Pseudomonas aeruginosa、Pseudomonas fluorescens、Pseudomonas putida、Rothia dentocariosa、Rothia mucilaginosa、Salmonella enterica、Serratia marcescens、Serratia plymuthica、Shigella boydii、Shigella dysenteriae、Shigella flexneri、Shigella sonnei、Spirillum minus、Staphylococcus aureus、Staphylococcus auricularis、Staphylococcus capitis、Staphylococcus caprae、Staphylococcus carnosus、Staphylococcus cohnii、Staphylococcus epidermidis、Staphylococcus haemolyticus、Staphylococcus hominis、Staphylococcus lugdunensis、Staphylococcus pasteuri、Staphylococcus pettenkoferi、Staphylococcus pulvereri、Staphylococcus saccharolyticus、Staphylococcus saprophyticus、Staphylococcus schleiferi、Staphylococcus simulans、Staphylococcus warneri、Staphylococcus xylosus、Stenotrophomonas maltophilia、Streptobacillus moniliformis、Streptococcus agalactiae、Streptococcus anginosus、Streptococcus bovis、Streptococcus canis、Streptococcus constellatus、Streptococcus dysgalactiae、Streptococcus equi、Streptococcus gallolyticus、Streptococcus gordonii、Streptococcus infantarius、Streptococcus iniae、Streptococcus intermedius、Streptococcus lutetiensis、Streptococcus mitis、Streptococcus mutans、Streptococcus oralis、Streptococcus pasteurianus、Streptococcus pneumoniae、Streptococcus porcinus、Streptococcus pyogenes、Streptococcus salivarius、Streptococcus salivarius、Streptococcus sanguinis、Streptococcus sobrinus、Streptococcus suis、Streptococcus vestibularis、Sutterella wadsworthensis、Treponema pallidum、Ureaplasma parvum、Vagococcus fluvialis、Veillonella atypica、Veillonella parvula、Vibrio alginolyticus、Vibrio cholerae、Vibrio fluvialis、Vibrio parahaemolyticus、Vibrio vulnificus、Yersinia enterocolitica、Yersinia pestis、Yersinia pseudotuberculosisなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
（製造例１）
　本発明に使用したDNAポリメラーゼは、特許文献１の段落0195～0205に記載の方法で生産した。
（製造例２）
　本発明で使用した三井化学製データベースは、特許文献２の段落0022～0030に記載の方法で作成した。
（微生物株）
　以下の実施例で使用したMRSA（Methicillin-resistant Staphylococcus aureus）：JMC16555株（カタログ番号）、Escherichia coli：JCM1649T（カタログ番号）、Pseudomonas aeruginosa：JCM5962T株（カタログ番号）はいずれも理化学研究所　バイオリソースセンター　微生物材料開発室(JCM)（住所：〒３０５－００７４　茨城県つくば市高野台３－１－１）から公的に入手可能である。
（実施例１）
　MRSA（Methicillin-resistant Staphylococcus aureus）をLB寒天培地に播種し、30℃で一晩培養し、コロニー形成後４℃で保存した。コロニーを、２mlのLB液体培地に植菌し、30℃, 180 rpmで16時間振とう培養した。培養液は、CytoFLEX（Beckman Coulter）を用いて細菌数の計測を行い、原液の細菌濃度を決定した。
　上記で得られたMRSA培養液の原液を、１×PBSを用いて、200μlあたりの細菌数が、100CFU、500 CFU、1,000 CFU、5,000 CFU、10,000 CFUとなるように希釈した。それぞれの希釈培養液200μlを、Pathogen Lysis Tubes（Qiagen）に加えた。さらに、製品に付属のReagent DX 100μl、およびHigh Pure RNA Isolation Kit（Roche）に付属のLysis/- Binding Buffer 400μlを加え、デルタミキサー Se-08（タイテック）にセットし、10分間ボルテックスを行った。
　High Pure RNA Isolation Kit（Roche）に付属のカラムをリザーバーにセットし、上記細菌破砕液の上清550μl をカラムに移液し、卓上微量高速遠心機CT15E（日立工機）にて8,000×g、１分間遠心した。カラムを新しいリザーバーにセット後、High Pure RNA Isolation Kit（Roche）に付属のWash Buffer Iを500μl 加え、8,000×g、１分間遠心した。再びカラムを新しいリザーバーにセットし、High Pure RNA Isolation Kit（Roche）に付属のWash Buffer IIを500 μl 加え、8,000×g、１分間遠心した。カラムを新しいリザーバーにセットし、High Pure RNA Isolation Kit（Roche）に付属のWash Buffer IIを200μl加え、13,000×g、２分間遠心した。カラムを新しい1.5mlエッペンドルフチューブにセットし、High Pure RNA Isolation Kit（Roche）に付属のElution Bufferを50 μl加え、8,000×g、１分間遠心し、RNA溶液を回収した。
　回収したRNA溶液 10.75 μlと、0.005μM～100μMの各濃度の逆転写用のプライマー（配列番号１の塩基配列からなる）（invitrogen）１μlを混合し、70℃で５分間インキュベートし、その後４℃で５分間インキュベートした。逆転写反応用の第一の反応系における逆転写用のプライマーの終濃度は0.2nM～4000nMとなる。インキュベート後、RNAと逆転写用プライマーとの混合物に、M-MLV Reverse Transcriptase, RNase (H-), Point Mutant（プロメガ）に付属のM-MLV RT (H-) Point Mutant 1 μlおよびM-MLV RT 5× Reaction Buffer 5 μl、dNTP（ニッポンジーン） 6.25 μl、RNase Inhibitor Recombinant type（ToYoBo）0.2 μl、1×PBS 0.8 μlを加え、第一の反応系（溶液）を得た。得られた第一の反応系を、50℃で20分間インキュベートすることで、合成されたcDNAを含む液状の反応混合物を得た。
　こうして得られた反応混合物中のcDNA（２μl）を鋳型としてPCRを行った。逆転写反応時0.2nM～4000nMであった逆転写用のプライマーのPCR用の第二の反応系（溶液）での終濃度は0.02 nM～400nMとなる。PCR用の第二の反応系としてのPCR溶液は、10×Buffer（ニッポンジーン）２μl、2.0 mM CleanAMPTMHot Start PCR（TriLink）２μl、25mM MgCl2（ニッポンジーン）２μl、５μM PCR用のプライマーペア（invitrogen）1.2 μl、1U/μl DNAポリメラーゼ（特許文献１の段落0195～0205に記載の方法で生産）１μl、Evagreen（Biotium）１μl、DW（ナカライテスク）8.8μlからなる。
　なお、PCR用のプライマーペアとしては、以下のプライマーペアをそれぞれ個々に用いた。
・プライマーペア１ａ：配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア２ａ：配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア３ａ：配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア４ａ：配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア５ａ：配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア６ａ：配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
・プライマーペア７ａ：配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ。
　PCR溶液調製後、 PCRチューブをRotor-Gene Q（Qiagen）にセットし、リアルタイムPCRを実施した。PCRの反応条件は、95℃, 5分→94℃, 10秒・60℃, 20秒・72℃, 10秒・85℃, 2秒を40サイクル→95℃, 10秒、とした。解析データから得られる各PCR産物のTm値（融解温度）から、三井化学製データベース（特許文献２の段落0022～0030に記載の方法で調製）に照合することで細菌を同定した。
　上記記載の方法で同定した結果を表１に示す。なお表１における評価は以下のようにして行った。
〇：同定可能
△：同定可能だがピーク汚い
×：同定不能
―：試験未実施
　また、添加したプライマー濃度が、２、５、10μMの100CFUのPCR産物について、アガロースゲル電気泳動を行った結果を、図１に示す。図１（Ａ）は添加した逆転写用のプライマー濃度が２μMのときのPCR産物について、アガロースゲル電気泳動を行った結果である。図１（Ｂ）は添加した逆転写用のプライマー濃度が５μMのときのPCR産物について、アガロースゲル電気泳動を行った結果である。図１（Ｃ）は添加した逆転写用のプライマー濃度が１０μMのときのPCR産物について、アガロースゲル電気泳動を行った結果である。なお、図１（Ａ）～（Ｃ）の番号で示される各レーンは以下の産物及び化合物の電気泳動の結果を示す。
（１）プライマーペア１ａのＰＣＲ産物
（２）プライマーペア２ａのＰＣＲ産物
（３）プライマーペア３ａのＰＣＲ産物
（４）プライマーペア４ａのＰＣＲ産物
（５）プライマーペア５ａのＰＣＲ産物
（６）プライマーペア６ａのＰＣＲ産物
（７）プライマーペア７ａのＰＣＲ産物
（８）マーカー
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表１に示したとおり、各菌数とも、細菌が同定できるか否かは、逆転写用プライマー濃度に依存することが分かった。
　また、反応条件を適正に調整することにより、少ない菌数でも十分に感度良く同定が可能であることも分かった。
（実施例２）
　E. coliを用いて、プライマー濃度と菌数について検討した。細菌をE. coliとしたこと以外、実施例１と同様である。同定結果を表２に示す。また、アガロースゲル電気泳動の結果を図２に示す。図２（Ａ）～（Ｃ）は図１と同様に添加した逆転写用プライマー溶液のプライマー濃度が２μM、５μM、10μMでのアガロース電気泳動の結果をそれぞれ示す。なお、図２（Ａ）～（Ｃ）の番号で示される各レーンは以下の産物及び化合物の電気泳動の結果を示す。
・図２（Ａ）
（１）マーカー
（２）プライマーペア１ａのＰＣＲ産物
（３）プライマーペア２ａのＰＣＲ産物
（４）プライマーペア３ａのＰＣＲ産物
（５）プライマーペア４ａのＰＣＲ産物
（６）プライマーペア５ａのＰＣＲ産物
（７）プライマーペア６ａのＰＣＲ産物
（８）プライマーペア７ａのＰＣＲ産物
・図２（Ｂ）
（１）マーカー
（２）プライマーペア１ａのＰＣＲ産物
（３）プライマーペア２ａのＰＣＲ産物
（４）プライマーペア３ａのＰＣＲ産物
（５）プライマーペア４ａのＰＣＲ産物
（６）プライマーペア５ａのＰＣＲ産物
（７）プライマーペア６ａのＰＣＲ産物
（８）プライマーペア７ａのＰＣＲ産物
（９）マーカー
・図２（Ｃ）
（１）プライマーペア１ａのＰＣＲ産物
（２）プライマーペア２ａのＰＣＲ産物
（３）プライマーペア３ａのＰＣＲ産物
（４）プライマーペア４ａのＰＣＲ産物
（５）プライマーペア５ａのＰＣＲ産物
（６）プライマーペア６ａのＰＣＲ産物
（７）プライマーペア７ａのＰＣＲ産物
（８）マーカー
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　表２に示したとおり、各菌数とも、細菌が同定できるか否かは、逆転写用プライマー濃度に依存することが分かった。
　また、反応条件を適正に調整することにより、少ない菌数でも十分に感度良く同定が可能であることも分かった。
（実施例３）
　P. aeruginosaを用いて、プライマー濃度と菌数について検討した。細菌をP. aeruginosaとしたこと以外、実施例１と同様である。同定結果を表３に示す。また、アガロースゲル電気泳動の結果を図３に示す。図３（Ａ）～（Ｃ）は図１と同様に添加した逆転写用のプライマー溶液のプライマー濃度が２μM、5μM、10μMでのアガロース電気泳動の結果をそれぞれ示す。なお、図３(Ａ）～（Ｃ）の番号で示される各レーンは以下の産物及び化合物の電気泳動の結果を示す。
・図３（Ａ）
（１）マーカー
（２）プライマーペア１ａのＰＣＲ産物
（３）プライマーペア２ａのＰＣＲ産物
（４）プライマーペア３ａのＰＣＲ産物
（５）プライマーペア４ａのＰＣＲ産物
（６）プライマーペア５ａのＰＣＲ産物
（７）プライマーペア６ａのＰＣＲ産物
（８）プライマーペア７ａのＰＣＲ産物
（９）マーカー
・図３（Ｂ）及び（Ｃ）
（１）プライマーペア１ａのＰＣＲ産物
（２）プライマーペア２ａのＰＣＲ産物
（３）プライマーペア３ａのＰＣＲ産物
（４）プライマーペア４ａのＰＣＲ産物
（５）プライマーペア５ａのＰＣＲ産物
（６）プライマーペア６ａのＰＣＲ産物
（７）プライマーペア７ａのＰＣＲ産物
（８）マーカー
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　表３に示したとおり、各菌数とも、細菌が同定できるか否かは、逆転写用プライマー濃度に依存することが分かった。
　また、反応条件を適正に調整することにより、少ない菌数でも十分に感度良く同定が可能であることも分かった。
（実施例４）
　実施例１で使用したMRSAを用いて、本手法における検出感度を確認した。検体当たりの菌数を、20 CFU、40 CFUとして、１μMのプライマー濃度の逆転写用のプライマー溶液を用い、第二の反応系における逆転写用のプライマーの終濃度を４nMとする以外は、実施例１と同様に同定試験を行った。プライマーペア１ａ～７ａについて、得られたＴｍ値および同定結果を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　本発明の方法により、感染症起因菌、とりわけ敗血症の起因菌を迅速に検出・同定することができ、敗血症の迅速診断法が実現する。
　即ち、本発明により起因菌を１回のPCRで同定するシステム構築が可能となるため、作業負担の軽減、検査の全自動化が可能となる。

Claims (13)

  1. 　以下の工程（１）～（３）を有することを特徴とする細菌同定方法。
    （１）同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAを調製するための逆転写用のプライマー、試料中の細菌から抽出されたRNA、及びRNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第一の反応系を用いて、逆転写反応を行い、合成されたcDNA及び前記逆転写用のプライマーを含む反応混合物を得る工程、
    （２）前記反応混合物、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア、及びDNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素を含む第二の反応系を用いて、PCRを行う工程、但し、第二の反応系において、前記反応混合物から供給される前記逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下である、及び
    （３）ＰＣＲ後の前記第二の反応系から、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAの生成を検出する工程。
  2. 　前記工程（１）及び（２）を、別の反応容器内で、あるいは、同一の反応容器内で、順に行なうことを特徴とする請求項１に記載の細菌同定方法。
  3. 　前記同定対象細菌の同定用の塩基配列が、細菌の16S rDNAに含まれる塩基配列であり、前記RNAが前記試料中の細菌の16S rRNAを含むことを特徴とする請求項１または２に記載の細菌同定方法。
  4. 　前記逆転写用のプライマーが配列番号１の塩基配列からなることを特徴とする請求項３に記載の細菌同定方法。
  5. 　前記プライマーペアが、以下の（Ａ群）～（Ｃ群）からなる群から選択された少なくとも１つのプライマーペアであることを特徴とする請求項３または４に記載の細菌同定方法。
    （Ａ群）
    ・プライマーペア１ａ：配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア２ａ：配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア３ａ：配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア４ａ：配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア５ａ：配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア６ａ：配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア７ａ：配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ。
    （Ｂ群）前記（Ａ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、及び
    （Ｃ群）前記（Ａ群）又は（Ｂ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
  6. 　前記工程（３）において、生成された二本鎖DNAのTm値を測定し、得られたTm値と予め測定しておいた同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAのTm値またはそれらから二次的に得られるデータを比較して、前記試料中の細菌を同定することを特徴とする請求項１乃至５のいずれか１項に記載の細菌同定方法。
  7. 　前記工程（１）の後、前記反応混合物を単独で直接又は希釈し、前記工程（２）に用いることを特徴とする請求項１乃至６のいずれか１項に記載の細菌同定方法。
  8. 　試料中の細菌から抽出されたRNAの逆転写反応による反応混合物に含まれるcDNAを鋳型とするPCRにより前記試料中の細菌を同定するためのキットであって、
    　下記（ａ）乃至（ｃ）を有し、
    （ａ）前記逆転写反応のための第一の反応系の調製用としての、同定対象細菌の同定用の塩基配列を含むcDNAを調製するための逆転写用のプライマー、
    （ｂ）前記PCRのための第二の反応系の調製用としての、前記同定対象細菌の同定用の塩基配列を含む二本鎖DNAを合成するためのプライマーペア、及び
    （ｃ）RNA依存型DNAポリメラーゼ活性を有する酵素、
    　前記第二の反応系が前記逆転写反応による反応混合物を含み、前記逆転写用のプライマーの量が、該反応混合物を介して前記第二の反応系に供給された際の逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下となるように調整されている、
    ことを特徴とするキット。
  9. 　前記逆転写反応と前記PCRの手順が記載されている取扱説明書をさらに有することを特徴とする請求項８に記載のキット。
  10. 　前記取扱説明書には、前記第二の反応系に含まれる前記逆転写用のプライマーの濃度が0.08nM以上20nM以下となるように手順が記載されていることを特徴とする請求項９に記載のキット。
  11. 　前記同定対象細菌の同定用の塩基配列が、細菌の16S rDNAに含まれる塩基配列であり、前記RNAが前記試料中の細菌の16S rRNAを含むことを特徴とする請求項８乃至１０のいずれか１に記載のキット。
  12. 　前記逆転写用のプライマーが配列番号１の塩基配列からなることを特徴とする請求項１１に記載のキット。
  13. 　前記プライマーペアが、以下の（Ａ群）～（Ｃ群）からなる群から選択された少なくとも１つのプライマーペアであることを特徴とする請求項１１または１２に記載のキット。
    （Ａ群）
    ・プライマーペア１ａ：配列番号２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア２ａ：配列番号４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア３ａ：配列番号６の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号７の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア４ａ：配列番号８の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号９の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア５ａ：配列番号１０の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア６ａ：配列番号１２の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ、
    ・プライマーペア７ａ：配列番号１４の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号１５の塩基配列からなるリバースプライマーと組合せ。
    （Ｂ群）前記（Ａ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、及び
    （Ｃ群）前記（Ａ群）又は（Ｂ群）の各プライマーペアの一方又は両方のプライマーの塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
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Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SG11202009337QA (en) * 2018-03-26 2020-10-29 Mitsui Chemicals Inc Bacterial identification method using rna of sample bacteria, and kit therefor

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007097323A1 (ja) 2006-02-21 2007-08-30 National University Corporation University Of Toyama 感染症起因菌の迅速同定方法
WO2010054819A1 (en) 2008-11-14 2010-05-20 Baxter International Inc. Method for the specific detection of low abundance rna species in a biological sample
WO2010082640A1 (ja) 2009-01-15 2010-07-22 北海道三井化学株式会社 耐熱性dnaポリメラーゼを含む酵素調製物およびその製造方法、並びに検出対象生物の検出方法
JP2010162042A (ja) * 2001-03-02 2010-07-29 Univ Of Pittsburgh Of The Commonwealth System Of Higher Education Ｐｃｒ法
JP2012034705A (ja) 2004-05-27 2012-02-23 E I Du Pont De Nemours & Co 診断用ｒｎａの直接検出方法
WO2015053293A1 (ja) 2013-10-07 2015-04-16 三井化学株式会社 細菌ｄｎａ増幅用のｐｃｒ用プライマーセット、細菌種の検出及び／または同定用キット及び細菌種の検出及び／または同定方法
JP2018011590A (ja) * 2011-07-25 2018-01-25 クヴェッラ コーポレーション 電気的な試料調製のための方法及びデバイス

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007097323A (ja) 2005-09-29 2007-04-12 Kokusan Denki Co Ltd 磁石界磁回転形回転電機
KR101226426B1 (ko) 2008-09-17 2013-01-24 시너스 테크놀리지, 인코포레이티드 플라즈마를 이용한 기상 증착 반응기 및 이를 이용한 박막 형성 방법
JP5133185B2 (ja) 2008-09-30 2013-01-30 株式会社ダイヘン アーク溶接ロボット装置
CN102251036A (zh) * 2011-07-07 2011-11-23 中国人民解放军总医院 一种同时检测17个基因的方法
CN103074451B (zh) * 2013-01-25 2014-04-23 海尔施生物医药股份有限公司 一种同步检测二十二种呼吸道病原体的试剂盒及其检测方法
WO2016191644A1 (en) * 2015-05-28 2016-12-01 Lucigen Corporation Molecular detection of rna
SG11202009337QA (en) * 2018-03-26 2020-10-29 Mitsui Chemicals Inc Bacterial identification method using rna of sample bacteria, and kit therefor

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010162042A (ja) * 2001-03-02 2010-07-29 Univ Of Pittsburgh Of The Commonwealth System Of Higher Education Ｐｃｒ法
JP2012034705A (ja) 2004-05-27 2012-02-23 E I Du Pont De Nemours & Co 診断用ｒｎａの直接検出方法
WO2007097323A1 (ja) 2006-02-21 2007-08-30 National University Corporation University Of Toyama 感染症起因菌の迅速同定方法
WO2010054819A1 (en) 2008-11-14 2010-05-20 Baxter International Inc. Method for the specific detection of low abundance rna species in a biological sample
WO2010082640A1 (ja) 2009-01-15 2010-07-22 北海道三井化学株式会社 耐熱性dnaポリメラーゼを含む酵素調製物およびその製造方法、並びに検出対象生物の検出方法
JP2018011590A (ja) * 2011-07-25 2018-01-25 クヴェッラ コーポレーション 電気的な試料調製のための方法及びデバイス
WO2015053293A1 (ja) 2013-10-07 2015-04-16 三井化学株式会社 細菌ｄｎａ増幅用のｐｃｒ用プライマーセット、細菌種の検出及び／または同定用キット及び細菌種の検出及び／または同定方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DRESES-WERRINGLOER, U. ET AL.: "Presistence of Chlamydia trachomatis is induced by ciprofloxacin and olfloxacin in vitro", ANTIMICROB. AGENTS CHEMOTHER., vol. 44, no. 12, 1 December 2000 (2000-12-01), pages 3288 - 3297, XP055639199 *
S. CHAKRAVORTY ET AL., JOURNAL OF MICROBIOLOGICAL METHODS, vol. 69, 2007, pages 330 - 339

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