WO2006051756A1 - カルモデュリンの構造変化を検出する方法、カルモデュリンの構造変化に影響を与える活性を有する物質を探索する方法 - Google Patents

カルモデュリンの構造変化を検出する方法、カルモデュリンの構造変化に影響を与える活性を有する物質を探索する方法 Download PDF

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Kaname Mogami
Hiroshi Kase
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Definitions

  • the present invention relates to a method for detecting a structural change of calmodulin and a method for searching for a substance having an activity that affects the structural change of calmodulin.
  • Calmodulin In many intracellular signal transduction systems using calcium as a second messenger, calmodulin first binds to calcium. Calmodulin is a protein with a molecular weight of 16700 consisting of 148 amino acids, and is a calcium-binding protein involved in information transmission functions. One molecule of calmodulin can bind four calciums. It is involved in the regulation of various calmodulin-dependent enzyme Z-calmodulin-binding substances. First, calcium binds to calmodulin with changes in protein conformation, followed by calmodulin-calcium complex. Binds to a calmodulin-dependent enzyme or binding substance and activates the enzyme or binding substance
  • the object of the present invention is to detect and measure the structural change of calmodulin in real time using a force sensor as changes in tension and Z or elasticity, so that the structural change of calmodulin can be easily and quickly performed. It is to develop a method to evaluate. Furthermore, by using this method, activity that affects the structural change of calmodulin among many substances can also be obtained. It is also an object of the present invention to enable efficient screening of one ligand.
  • the present inventors focused on changes in the tension and / or elasticity of a sample film made of calmodulin when a substance acting as a ligand for calmodulin was added, and as a result of various studies, It was found that the structural change of calmodulin caused by calmodulin ligand can be measured by measuring the tension and / or elasticity of the sample membrane with a force sensor. That is, the present invention forms a sample film made of calmodulin on a substrate, arranges the substrate having the sample film on a force sensor, and applies the test sample to the sample film.
  • the present invention provides a method for detecting structural change of calmodulin, which comprises detecting a change in tension and / or elasticity resulting from the change with the force sensor.
  • the present invention provides a sample film comprising a calmodulin, a calmodulin fragment, a calmodulin mutant, a tagged calmodulin, or an antibody protein against the calmodulin on a substrate, and the substrate having the sample film is a force sensor.
  • the structural change of calmodulin consists of detecting the change in tension and / or elasticity resulting from the structural change of the sample membrane when the test sample is applied to the sample membrane.
  • the present invention provides a method for searching for a substance having an activity that affects the above.
  • the present invention provides a sample film comprising a calmodulin, a calmodulin fragment, a calmodulin mutant, a tagged calmodulin, or an antibody protein against calmodulin on a substrate, and the substrate having the sample film is a force sensor.
  • the calcium / calmodulin consists of detecting the change in tension and Z or elasticity derived from the structural change of the sample membrane when the test sample is applied to the sample membrane.
  • the present invention provides a method for searching for a diagnostic or therapeutic agent for a disease in which a change occurs in the intracellular signal transduction pathway involved.
  • the present invention adds a substance whose activity is to be determined to a sample film on which calmodulin is immobilized, and can detect a change in tension and / or elasticity of the sample film compared to before adding the substance.
  • the present invention provides a method for detecting the structural change of calmodulin. According to the method of the present invention, the activity of the above-mentioned substance causing the structural change of calmodulin can be detected efficiently in a short time in real time.
  • FIG. 1 is a graph showing the effects of CaCl and EDTA on calmodulin tension and elastic changes (Example 1).
  • FIG. 2 is a graph showing the effect of Ca ion and calmodulin inhibitor W-7 on calmodulin tension and elasticity changes (Example 2).
  • FIG. 3 shows the effects of calmodulin binding site fragment of calcium-dependent protein kinase II and Ca ion on calmodulin tension and elasticity changes (Example 3).
  • the present invention allows a test substance to act on a calmodulin sample membrane, and detects a change in tension and Z or elasticity resulting from the structural change of the sample membrane by a force sensor.
  • This is a method for detecting structural changes in calmodulin. Since the method of the present invention directly observes and measures the structural change of calmodulin in real time as changes in tension and Z or elasticity, the method of the present invention is in that respect that the method of the present invention modifies the activity of force-modulin-dependent enzymes. This is different from the conventional indirect method of measuring the current. Furthermore, using the method of the present invention, a substance having an activity that affects the structural change of calmodulin can also be searched.
  • the most prominent feature of the present invention is that the structural change of calmodulin is detected by a change in mechanical properties of a sample film made of calmodulin.
  • a sample film made of calmodulin is formed on a substrate.
  • the size of the sample film formed is preferably in the range of 50 ⁇ to 1000 zm in the vertical direction, 200 zm to 2000 ⁇ m in the horizontal direction, and 0.3 ⁇ m force to 10 ⁇ m in thickness.
  • the substrate in the present invention is an appropriate film support that enables the sample film to be moved to the measuring device by forming the sample film thereon, and the material and size of the substrate.
  • the thickness is not particularly limited.
  • Calmodulin may be a fragment, mutant or tagged calmodulin as long as it retains the function as calmodulin, which is not necessarily used as a complete protein. That is, in the present specification, “a fragment of calmodulin, a mutant of calmodulin, a tagged calmodulin” means a protein that is a fragment of a part of the amino acid sequence of calmodulin, a protein in which a part of the amino acid sequence of calmodulin is mutated, Alternatively, it is a protein with a tag attached to calmodulin and retains the function of calmodulin by binding to calcium and activating calcium-dependent enzymes.
  • the present invention is not limited to forming calmodulin's own sample film, but forms a film made of an antibody protein against calmodulin or a protein activated by calmodulin, and the antibody or calmodulin activating protein Since a similar effect can be obtained by measuring the structural change upon binding to calmodulin, the mode to be applied is also within the scope of the present invention.
  • the main calmodulin-dependent enzyme / calmodulin-binding substance located downstream of the calcium calmodulin-mediated signal transduction system and controlled by calmodulin includes adenyl cyclase, brush border myosin I heavy chain, calcineurin, strength Lumodurin-dependent protein kinase II, calmodulin-dependent protein kinase IV, caldesmon, calmodulin-dependent cyclic nucleotide phosphagesterase, erythrocyte calcium-ATPase, neuronal nitric oxide synthase, nicotinamide dinucleotide kinase, faosfati Forces include dilinositol 3 kinase, phosphorylase kinase, skeletal muscle myosin light chain kinase, smooth muscle myosin light chain kinase, IQ GAP1, etc. It is not something.
  • calmodulin-dependent enzyme / calmodulin-binding substance
  • the ligand that acts on the complex of calmodulin-dependent enzyme It is also possible to That is, a sample membrane made of calmodulin is treated with a calmodulin-dependent enzyme z-calmodulin-binding substance to form a complex, or a sample membrane made of calmodulin-dependent enzyme Z-calmodulin-binding substance is treated with calmodulin to form a complex. It is also an embodiment of the present invention to perform screening on the complex. Considering that the calmodulin-dependent enzyme / calmodulin-binding substance bound to calmodulin controls the downstream signal transduction system, it is preferable for the present invention to form a complex and perform screening. This is an embodiment.
  • This calmodulin-dependent enzyme / calmodulin-binding substance does not necessarily need to be a complete protein, so long as it retains the function as a calmodulin-dependent enzyme / binding substance, its fragment, mutant, or tagging It may be a protein. That is, in the present specification, “fragment of calmodulin-dependent enzyme / binding substance, variant of the protein, and tagged protein” means a fragment consisting of a part of the amino acid sequence of the above-mentioned calmodulin-dependent enzyme / binding substance.
  • the present invention is not limited to immobilizing the calmodulin-dependent enzyme / calmodulin-binding substance itself, but the same effect can be obtained by immobilizing an antibody against the calmodulin-dependent enzyme / force-modulin-binding substance. Such embodiments are also within the scope of the present invention.
  • an electrospray can be used as a method for producing the calmodulin sample film described above.
  • the ESD method (electrostatic spray method), in which a sample is deposited by (electrostatic spray) to form a thin film, is suitable.
  • electrostatic spray method electrostatic spray method
  • Such techniques are well known to those skilled in the art, and can be appropriately modified and used for the purpose of the present invention.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 2003-136005 describes an apparatus for producing a thin film or a spot by fixing it while retaining the activity of a biopolymer or the like.
  • Special table 2002-50 Japanese Patent No. 3332 describes a method and apparatus for measuring a ligand that binds to protein or DNA.
  • mechanochemically mechanochemically
  • an intermediate layer made of a water-soluble polymer between the substrate and the sample film is provided.
  • a water-soluble polymer 1.2% polybutylpyrrolidone (PVP) is used as such an intermediate layer.
  • PVP polybutylpyrrolidone
  • the concentration of force S and PVP in which the concentration of PVP is in the range of 0.1% to 5%, preferably 0.3% to 2% is not particularly limited.
  • Other water-soluble polymers can also be used.
  • the intermediate layer As examples of materials that can be used as the intermediate layer, as described in JP-T-2002-503332, (1) a layer of a water-soluble polymer such as polyacrylamide or polyethylene glycol , (2) a polymer-strength layer with a disulfide bond reduced by mercaptoethanol, (3) a highly dispersed layer of carbon with low adhesion to deposited biological molecules, and (4 ) It is possible to mention a layer having a low melting point carbon polymer conductive composition.
  • a water-soluble polymer such as polyacrylamide or polyethylene glycol
  • a polymer-strength layer with a disulfide bond reduced by mercaptoethanol (3) a highly dispersed layer of carbon with low adhesion to deposited biological molecules
  • a layer having a low melting point carbon polymer conductive composition It is possible to mention a layer having a low melting point carbon polymer conductive composition.
  • calmodulin constituting the sample film may be further crosslinked after immobilization by the ESD method. It is not essential to perform strong crosslinking, but it is effective for the purpose of maintaining the shape and strength of the sample film.
  • Cross-linking reagents that can be used to polymerize biological molecules are well known to those skilled in the art, see, for example, Her thigh nson et al., Imm obilized Affinity Ligana fechmques Academic Press, New York, 1991. Can do.
  • Daltaraldehyde is most suitable as a reagent used to cross-link calmodulin.
  • zero-length cross-linking reagents such as 1_ethyl_3_ (3-dimethylamino) pyrrolopylcarbodiimide (EDC)
  • EDC pyrrolopylcarbodiimide
  • DMA dimethyl adipine imidate
  • SPDP succinimidyl 3 _ (2-pyridyldithio) propionate
  • SPDP 4-Azido _ 2 _Nitrophenyl biocytin
  • a trivalent cross-linking reagent such as 4-nitrophenyl ester can be mentioned, but is not limited thereto.
  • the time for performing the crosslinking reaction is not particularly limited, and optimum conditions can be appropriately selected within the range of about 0 to 3 hours.
  • Preparation of applying the test sample to the sample film by placing the sample film thus prepared in, for example, a detection device described in JP-T-2002-503332 and immersing it in an appropriate buffer solution I do.
  • the buffer used here is not limited to those which are generally used in this technical field and can use H-type es buffer or Tris buffer.
  • the pH of the buffer is not particularly limited, and an appropriate pH can be appropriately selected within the range of about pH 3 to pH 9.
  • the buffer solution may have an appropriate salt strength, and it is a preferred embodiment of the present invention to add about 0.1M sodium chloride to the buffer solution as in the following examples. However, it is considered possible to perform the measurement without adding an electrolyte for imparting salt strength, and the mode to be applied is within the scope of the present invention.
  • the electrolyte to be added is not limited to sodium chloride.
  • the sample membrane is replaced with a buffer solution containing a test sample, which is an object to be tested, and allowed to act on the sample membrane.
  • the tension and Z or elastic change of the sample film before and after the test sample is added are measured with a force sensor to evaluate the effect of calmodulin on the structural change. Changes in tension and / or elasticity can be measured with force sensors, preferably with mechanochemical sensors. It is a particularly preferred aspect of the present invention to perform measurement with a mechanochemical sensor using an apparatus described in JP-T-2002-503332.
  • calmodulin tension and Z or elasticity changes can be detected quickly and in real time. Therefore, since the structural change of calmodulin in many samples can be evaluated efficiently, the time spent searching for a substance that inhibits the structural change of calmodulin can be greatly reduced, and it is easy to select from a large number of substances. Substances with strong activity can be selected.
  • US6033913 having a mechanochemical sensor, and a 10 mM Hepes pH7.4 buffer solution containing 0.1 M NaCl ( Hereinafter, it was immersed in a buffer solution). Buffer was flowed over the membrane present on the detector at a flow rate of 0.1 to 0.2 mL / min to stabilize the tension. Then, at the same flow rate, a CaCl solution dissolved in the above buffer is flowed, and tension and A change in elasticity was detected (Fig. 1).
  • This graph shows that CaCl significantly increases the isotropic tension of the calmodulin membrane.
  • this action has been shown to reversibly recover because the buffer solution returns to the state prior to the addition of the CaCl solution.
  • the decrease in tension due to the addition of EDTA, a chelator indicates that only a small amount of Ca ions in the buffer can be detected.
  • the place where the horizontal line indicating the initial state rises shows the point in time when tension is applied to the sample film, and the place where it vibrates shows the measurement of compliance.
  • This example shows the structural change of calmodulin caused by Ca 2+ due to the interaction between calmodulin and CaCl, which can be detected in a few minutes in real time using the present invention. is there.
  • the structural changes of calmodulin can be referred to the following review article (Vetter SW and Leclerc, E. (2003). Novel aspects of calmodulin target recognition and activation. Eur. J. Biochem. 270, 404- 414
  • a calmodulin membrane produced by the same material and method as in Example 1 was immersed in lOmM MOPS buffer ⁇ 7.2 containing 0.1M KC1 and 10 mM EGTA. Calcium buffer solutions with free calcium ion concentrations of 151 ⁇ 352, 352 ⁇ , and 1360 ⁇ were prepared, and either alone or 50 ⁇ of calmodulin inhibitor W-7 was added to detect changes in tension and elasticity (Fig. 2).
  • W-7 alone is a force that generates tension in the calmodulin membrane. In the presence of calcium, it increased the tension more and was restored by removing W-7. Since W-7 is known to bind to calmodulin that has undergone structural changes by calcium and to make the structure compact (Osawa, M. et al, (1999). Evidense ror calmodulin mter-domain compaction m FEBS Letters 442, 173-177), this example shows that the strength of calmodulin membrane due to strength modulin inhibitor corresponds to the structural change of calmodulin, and this system is effective in detecting calmodulin inhibitor. It is shown that.
  • a calmodulin membrane produced by the same material and method as in Example 1 was prepared using 0.1M KC1, 10m. It was immersed in lOmM HEPES buffer pH 7.2 containing M EGTA. Then, a solution containing the calmodulin binding site fragment of calcium-dependent protein kinase II was prepared, and this was contacted with a force modulin membrane to detect changes in tension and elasticity (Fig. 3).
  • a method for detecting a structural change of calmodulin using a mechanochemical sensor has been provided. Furthermore, a method for searching for a substance having an activity that affects the structural change of calmodulin was provided using the above detection method.
  • the method of the present invention is considered to contribute to the purpose of obtaining a therapeutic or diagnostic agent for a disease in which an information transmission system via forceful modulin is involved.

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Abstract

 定量的かつリアルタイムに、カルモデュリンの構造変化を簡便に短時間で検出することができる方法、および、多数の物質の中からカルモデュリンの構造変化に影響を与える活性を有する物質を効率良く探索できる方法を提供することが本発明の課題である。上記課題を解決するために、カルモデュリンよりなる試料膜に、活性を検出するべき被験物質を作用させ、上記被験物質を作用させる前と比べた試料膜の張力及び/または弾性の変化をメカノケミカル式センサーで検出することにより、上記被験物質が有するカルモデュリンの構造変化を誘導または阻害する活性をリアルタイムに短時間で測定できる方法が提供された。

Description

明 細 書
カルモデュリンの構造変化を検出する方法、カルモデュリンの構造変化に 影響を与える活性を有する物質を探索する方法
技術分野
[0001] 本発明はカルモデュリンの構造変化を検出する方法、およびカルモデュリンの構造 変化に影響を与える活性を有する物質を探索する方法に関する。
背景技術
[0002] カルシウムをセカンドメッセンジャーとする細胞内情報伝達系の多くにおいて、最初 にカルシウムと結合するのはカルモデュリンである。カルモデュリンは 148個のアミノ 酸からなる分子量 16700の蛋白質であり、情報伝達機能に関与するカルシウム結合 蛋白質である。カルモデュリン 1分子は 4個のカルシウムを結合することができる。力 ルモデュリンは種々のカルモデュリン依存性酵素 Zカルモデュリン結合物質の調節 に関与しており、まず蛋白質のコンフオメーシヨン変化を伴うカルシウムのカルモデュ リンへの結合が起こり、それに続レ、てカルモデュリン カルシウム複合体がカルモデ ュリン依存性酵素または結合物質に結合してその酵素または結合物質が活性化する
[0003] 従来のカルモデュリン阻害剤のスクリーニングは、カルモデュリン依存性酵素の活 性を計測することによって行われていた。この方法はカルモデュリンに対する物質の 作用を直接的に測定するものではなぐカルモデュリン依存性酵素の活性をカルシゥ ム 'カルモデュリンの存在下および非存在下で測定して間接的に測定するため、煩 雑で時間がかかる。また、間接的に測定しているためにカルモデュリンに対する作用 を正確に測定してレ、るとはレ、えなレ、。
発明の簡単な説明
[0004] よって本発明の課題は、張力及び Z又は弾性の変化として、カルモデュリンの構造 変化の過程を力センサーを用いてリアルタイムに検出測定することにより、カルモデ ュリンの構造変化を簡便かつ短時間で評価する方法を開発することである。更にその 方法を用いて、多数の物質の中からカルモデュリンの構造変化に影響する活性をも つリガンドの効率良レ、スクリーニングを可能とする事も、本発明の課題である。
[0005] 本発明者らは、カルモデュリンのリガンドとして作用する物質を添カ卩したときのカル モデュリンよりなる試料膜の張力及び/又は弾性変化に着目し、種々の検討を重ね た結果、カルモデュリンの試料膜の張力及び/又は弾性変化を力センサーで測定 することにより、カルモデュリンリガンドにより引き起こされたカルモデュリンの構造変 化を測定できることを見出した。すなわち本発明は、カルモデュリンよりなる試料膜を 基板上に形成し、当該試料膜を有する当該基板を力センサーに配置し、披験サンプ ルを当該試料膜に作用させた際の当該試料膜の構造変化に由来する張力及び/ 又は弾性の変化を当該力センサーで検出することからなる、カルモデュリンの構造変 化を検出する方法を提供するものである。
[0006] 更に本発明は、カルモデュリン、カルモデュリンの断片、カルモデュリンの変異体、 タグ化したカルモデュリン、又はカルモデュリンに対する抗体蛋白質よりなる試料膜を 基板上に形成し、当該試料膜を有する当該基板を力センサーに配置し、披験サンプ ルを当該試料膜に作用させた際の当該試料膜の構造変化に由来する張力及び/ 又は弾性の変化を当該力センサーで検出することからなる、カルモデュリンの構造変 化に影響を与える活性を有する物質を探索する方法を提供するものである。
[0007] 更に本発明は、カルモデュリン、カルモデュリンの断片、カルモデュリンの変異体、 タグ化したカルモデュリン、又はカルモデュリンに対する抗体蛋白質よりなる試料膜を 基板上に形成し、当該試料膜を有する当該基板を力センサーに配置し、披験サンプ ルを当該試料膜に作用させた際の当該試料膜の構造変化に由来する張力及び Z 又は弾性の変化を当該力センサーで検出することからなる、カルシウム/カルモデュ リンが関与する細胞内情報伝達経路に変化が生じる疾患の診断薬または治療薬を 探索する方法を提供するものである。
[0008] 本発明は、カルモデュリンを固定化した試料膜に活性を判定すべき物質を添加し、 その物質を添加する前と比べた試料膜の張力及び/又は弾性変化を検出すること 力もなる、カルモデュリンの構造変化を検出する方法を与えるものであり、本発明の 方法によれば、上記物質のカルモデュリンの構造変化を引き起こす活性をリアルタイ ムに短時間で効率良く検出できる。 図面の簡単な説明
[0009] [図 1]図 1は、カルモデュリンの張力および弾性変化に対する CaClおよび EDTAの効 果を示す図である(実施例 1)。
[図 2]図 2は、カルモデュリンの張力および弾性変化に対する Caイオンおよびカルモ デュリン阻害剤 W-7の効果を示す図である(実施例 2)。
[図 3]図 3は、カルモデュリンの張力および弾性変化に対するカルシウム依存性プロ ティンキナーゼ IIのカルモデュリン結合部位断片および Caイオンの効果を示す図で ある(実施例 3)。
発明の詳細な説明
[0010] 上記において述べたように本発明は、カルモデュリンの試料膜に披験物質を作用さ せ、その試料膜の構造変化に由来する張力及び Z又は弾性の変化を力センサーで 検出することにより、カルモデュリンの構造変化を検出する方法である。本発明の方 法は、カルモデュリンの構造変化を張力及び Z又は弾性の変化としてリアルタイムで 直接的に観察および測定するものであるので、その点において本発明の方法は、力 ルモデュリン依存性酵素の活性を測定するという従来の間接的な手段とは異なって いる。更には本発明の方法を用いて、カルモデュリンの構造変化に影響を与える活 性を有する物質を探索することもできる。本発明の方法でカルモデュリンの構造変化 に影響を与える活性を有する物質を直接的に探索することができると共に、スクリー ユングに費やす時間を大幅に短縮することができ、多数の物質の中から効率良くスク リーニングを行うことができる。
[0011] そして力かるカルモデュリンの構造変化を、カルモデュリンからなる試料膜の機械的 特性の変化により検出する点に本発明の最も顕著な特徴がある。本発明において試 料膜の機械的特性の変化を、張力のみ、弾力のみあるいは張力と弾力の両者を指 標として測定する態様が可能であるが、本発明は上記の特定の態様に限定されるも のではない。
[0012] 本発明においてはまず、カルモデュリンからなる試料膜を基板上に形成する。形成 される試料膜の大きさは、好ましくは、縦は 50 μ πιから 1000 z m、横は 200 z mから 200 0 μ m、厚さは 0.3 μ m力 10 μ mの範囲内であるが、その範囲内に特に限定されるも のではない。また本発明における基板とは、その上に試料膜が作製されることによつ て試料膜を測定装置に移動することを可能とする適切な膜の支持体であり、該基板 の材料や大きさは特に限定されるものではない。
[0013] カルモデュリンは必ずしも完全な蛋白質として使用する必要がある訳ではなぐカル モデュリンとしての機能を保持する限り、その断片、変異体またはタグ化したカルモデ ュリンであってもよい。即ち本願明細書において「カルモデュリンの断片、カルモデュ リンの変異体、タグ化したカルモデュリン」とは、カルモデュリンのアミノ酸配列の一部 分からなる断片である蛋白質、カルモデュリンのアミノ酸配列の一部分が変異した蛋 白質、またはカルモデュリンにタグを付した蛋白質であって、且つ、カルシウムと結合 してカルシウム依存性酵素を活性化するというカルモデュリンとしての機能を保持して レ、るものを意味するものである。また本発明はカルモデュリン自身の試料膜を形成す る事に限定されるものではなぐカルモデュリンに対する抗体蛋白質あるいはカルモ デュリンにより活性化される蛋白質よりなる膜を形成し、その抗体あるいはカルモデュ リン活性化蛋白質がカルモデュリンと結合した際の構造変化を測定することによって 同様の効果を得ることができるので、力かる態様も本発明の範囲内である。
[0014] なおカルシウム カルモデュリンを介する情報伝達系の下流に位置し、カルモデュ リンにより制御を受ける主なカルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結合物質とし ては、アデニルシクラーゼ、ブラッシュボーダーミオシン I重鎖、カルシニューリン、力 ルモデュリン依存性プロテインキナーゼ II、カルモデュリン依存性プロテインキナーゼ I V、カルデスモン、カルモデュリン依存性サイクリックヌクレオチドフォスフオジェステラ ーゼ、赤血球カルシウム- ATPァーゼ、ニューロナルー酸化窒素シンターゼ、ニコチ ナミドジヌクレオチドキナーゼ、ファオスファチヂルイノシトール 3キナーゼ、フォスフォ リレースキナーゼ、骨格筋ミオシン軽鎖キナーゼ、平滑筋ミオシン軽鎖キナーゼ、 IQ GAP1などが挙げられる力 それらに限定されるものではない。
[0015] なお本発明の方法によれば、カルモデュリン単独の状態でカルモデュリンの構造変 化を弓 Iき起こすリガンドをスクリーニングできるのみならず、カルモデュリンと上記で述 ベたカルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結合物質を結合させることにより、力 ルモデュリン カルモデュリン依存性酵素の複合体に作用するリガンドをスタリーニン グすることも可能である。即ち、カルモデュリンよりなる試料膜をカルモデュリン依存性 酵素 zカルモデュリン結合物質で処理して複合体を形成し、あるいはカルモデュリン 依存性酵素 Zカルモデュリン結合物質よりなる試料膜をカルモデュリンで処理して複 合体を形成し、その複合体においてスクリーニングを行うことも本発明の一態様であ る。カルモデュリンと結合したカルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結合物質 が下流の情報伝達系を制御している点を考えると、複合体を形成してスクリーニング を行うことは、本発明におレ、て好ましレ、態様である。
[0016] このカルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結合物質は、必ずしも完全な蛋白 質である必要がある訳ではなぐカルモデュリン依存性酵素/結合物質としての機能 を保持する限り、その断片、変異体またはタグ化蛋白質であってもよい。即ち本願明 細書において「カルモデュリン依存性酵素/結合物質の断片、前記蛋白質の変異体 、タグ化した前記蛋白質」とは、上記で述べたカルモデュリン依存性酵素/結合物質 のアミノ酸配列の一部分からなる断片である蛋白質、カルモデュリン依存性酵素/結 合物質のアミノ酸配列の一部分が変異した蛋白質、またはカルモデュリン依存性酵 素/結合物質にタグを付した蛋白質であって、且つカルモデュリンと結合して活性化 されるというカルモデュリン依存性酵素/結合物質の機能を保持しているものを意味 するものである。また本発明はカルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結合物質 そのものを固定化する事に限定されるものではなぐカルモデュリン依存性酵素/力 ルモデュリン結合物質に対する抗体を固定化する事によっても同様の効果を得ること ができるので、かかる態様も本発明の範囲内である。
[0017] 上記で述べたカルモデュリンの試料膜を作製する方法としては、エレクトロスプレー
(静電噴霧)により試料を堆積させて薄膜を形成させる ESD法 (静電噴霧法)が好適 である。力かる技術は当業者にとって周知のものであり、適宜改変して本発明の目的 に使用することができる。そのような技術を開示した文献の一例として、特表 2002— 511792号公報に記載されている、巨大生体分子を含む不揮発性物質の堆積物を 、静電噴霧によって製造する方法を挙げることができる。
[0018] また特開 2003— 136005号公報には、生体高分子などの活性を保持したまま固 定して薄膜やスポットを作製するための装置が記載されている。更に特表 2002— 50 3332号公報には、プロテインや DNAと結合するリガンドを測定するための方法及び 装置が記載されている。特表 2002— 503332号公報に記載されている装置によると 、生体高分子など力 構成された試料膜に対する化学物質の作用を機械化学的 (メ カノケミカル的)に測定することが可能である。よって、特表 2002— 503332号公報 に記載されている装置により、試料膜の張力及び Z又は弾性の変化を検出すること は、本発明において好ましい態様である。
[0019] なお、蛋白質とリガンドの相互作用を測定するために、蛋白質膜の弾力特性を測定 するメカノケミカル的な方法は、 V.N,Morozov and T Ya Morozova (1992) Anal.Bioch em. , 201 :68— 79及び V.N'Morozov and T Ya Morozova (1984) FEBS Letters, 175:29 9-302に記載されており、当業者はこれらの文献の記載を参考にして適宜改変を行 レ、、本発明を実施することができる。
[0020] また上記基板と試料膜との間に水溶性ポリマーからなる中間層を設けることは本発 明において好ましい態様である。下記の実施例においては 1.2%ポリビュルピロリドン( PVP)をこのような中間層として用いている。力かる中間層を設けることにより、基板か ら試料膜を取り外すことが容易となる。中間層として PVPを用いる場合には、 PVPの濃 度は 0.1 %から 5%、好ましくは 0.3%から 2%の範囲内である力 S、 PVPの濃度は特に限定 されるものではない。また、他の水溶性ポリマーを使用することも可能である。
[0021] なおこの中間層として使用することができる材料の例として、特表 2002— 503332 号公報に記載されているように、 (1)ポリアクリルアミド又はポリエチレングリコールの ような水溶性のポリマーの層、(2)メルカプトエタノールにより還元される二硫化物の ボンドを有するポリマー力 成る層、(3)堆積される生物学的分子に対する接着性が 低ぐ炭素を相当に分散させた層、および (4)低融点のカーボンポリマーの導電性の 組成の層、を挙げること力できる。
[0022] 必要ならば、 ESD法により固定化した後に、上記試料膜を構成するカルモデュリン を更に架橋することもできる。力 る架橋を行うことは必須ではないが、試料膜の膜と しての形態や強度を保つ目的において有効である。生物学的分子を重合するため に利用できる架橋試薬は当業者に良く知られており、例えば、 Her腿 nson et al., Imm obilized Affinity Ligana fechmques Academic Press, New York, 1991を蔘照すること ができる。
[0023] カルモデュリンを架橋するために使用する試薬としてダルタルアルデヒドは最も好適 であるが、その他に、 1 _ェチル _ 3 _ (3—ジメチルァミノ)ピロピルカルボジイミド(E DC)などのゼロ長架橋試薬、ジメチルアジピンイミデート(DMA)などのホモ二価性架 橋試薬、スクシンィミジル 3 _ (2—ピリジルジチォ)プロピオネート(SPDP)などのへテ ロニ価性架橋試薬、 4-アジド _ 2 _ニトロフエ二ルビオシチン- 4-ニトロフエニルエス テルなどの三価性架橋試薬を挙げることができるが、それらに限定されるものではな い。また架橋反応を行う時間も特に限定されるものではなぐ 0から 3時間程度の範囲 内で最適の条件を適宜選択することができる。
[0024] その様にして作製した試料膜を、例えば特表 2002— 503332号公報記載の検出 装置に配置し、適切な緩衝液中に浸すことにより、試料膜に披験サンプルを作用さ せる準備を行う。ここで使用する緩衝液としては、本技術分野で一般的に使用されて レ、る H印 es緩衝液や Tris緩衝液などを使用することができる力 それらに限定されるも のではない。緩衝液の pHも特に限定されるものではなぐ pH3から pH9程度の範囲内 で適切な pHを適宜選択することができる。
[0025] また上記緩衝液は適切な塩強度を有することも可能であり、下記の実施例のように 0.1M程度の塩化ナトリウムを緩衝液に添加することは本発明において好ましい態様 である。しかし塩強度を与えるための電解質を添加しなレ、で測定を行うことも可能で あると考えられ、力かる態様も本発明の範囲内である。また添加する電解質も塩化ナ トリウムに限定されるものではない。
[0026] 上記の緩衝液を一定流速で流して試料膜の張力を安定化させた後に、試験を行う 対象である披験サンプノレを含む緩衝液に置換して試料膜に作用させる。披験サンプ ル添加前と後における試料膜の張力及び Z又は弾性変化を力センサーにより測定 し、カルモデュリンの構造変化への影響を評価する。張力及び/又は弾性の変化は 力センサーにより、好ましくはメカノケミカル式センサーにより測定することが可能であ る。なおメカノケミカル式センサーによる測定を、特表 2002— 503332号公報に記載 されてレ、る装置を用いて行うことは、本発明におレ、て特に好ましレ、態様である。
[0027] なおカルモデュリンの構造変化に対する影響を検討するための披験サンプノレとして 、種々の物質を採用することができる。その様な披験サンプルとなる物質の例として、 蛋白質、ペプチド、アミノ酸、糖、脂質、核酸、金属及び有機化合物などを挙げること ができるが、それらに特に限定されるものではない。
[0028] 本発明の方法により、カルモデュリンの張力及び Z又は弾性変化を、速やかに且 つリアルタイムで検出することができる。よって、多くのサンプルにおけるカルモデユリ ンの構造変化を効率的に評価できるために、カルモデュリンの構造変化を阻害する 物質の探索に費やす時間を大幅に短縮することができ、容易に多数の物質の中から 力かる活性を有する物質を選別することができる。
[0029] なお、カルシウム カルモデュリンの情報伝達系の下流に異常が起きている事が疑 われる疾患としては、統合失調症、心肥大、記憶障害、高血圧、炎症、アレルギー、 糖尿病および癌などがある。また、シクロスポリン Aやタクロムリスなどの免疫抑制剤の 標的がカルシニューリンであることが知られている。よってカルモデュリンの阻害剤を 新たに探索し、更に上記阻害剤の安全性などを検討することにより、これらの疾患の 診断薬および治療薬を開発できる可能性がある。よって本発明は、かかる有用な診 断薬および治療薬を得るための新たな途を提供するものである。
実施例
[0030] 下記の実施例や図面を用いて本発明を更に詳しく説明するが、その記載は本発明 の範囲を何ら限定するものではない。
[0031] (実施例 1)
ゥシ脳由来カルモデュリン (Sigma)を 2 mg/mLの濃度で純水に溶解し、その溶液を 特表 2002-511792号公報に記載された静電噴霧を行う装置、あるいは特開 2003-136 005号公報に記載された固定化装置を用いて乾燥空気中で噴霧し、縦 400 μ m横 800 μ πιの孔をもつマスクを透過させ、静電噴霧法(ESD法)により 1.2%ポリビュルピロリド ン上に膜を作成した。この膜を、メカノケミカル式センサーを有する特表 2002-503332 号公報あるいは米国特許 US6033913号公報に記載されてレ、る装置上に配置し、 0.1 M NaClを含む 10 mM Hepes pH7.4緩衝液(以下、緩衝液と略す)中に浸した。緩衝 液を、検出装置上に存在する膜上に 0.1から 0.2 mL/minの流速で流し、張力を安定 させた。その後、同じ流速で、上記緩衝液中に溶解した CaCl溶液を流し、張力およ び弾性の変化を検出した(図 1)。
[0032] このグラフは、 CaClによりカルモデュリン膜の等方性張力が著しく増加することを示 している。一方、この作用は、緩衝液により CaCl溶液添加前の状態に戻ることから、 可逆的に回復することを示している。さらにキレーターである EDTA添加によって張力 力 り減少することは、緩衝液に混入しているごくわずかな Caイオンをも検出できるこ とを示している。最初の状態を示す水平線が立ち上がるところは、試料膜に張力が加 わった時点を示し、振動しているところはコンプライアンスの測定を示したものである。 この実施例は、カルモデュリンと CaClとの相互作用により、 Ca2+が引き起こすカルモ デュリンの構造変化であり、それが本発明を使用してリアルタイムに数分で検出する ことができることを示したものである。なおカルモデュリンの構造変化については例え ば次の総説を参照することができる(Vetter S. W. and Leclerc, E. (2003). Novel asp ects of calmodulin target recognition and activation. Eur. J. Biochem. 270, 404-414
[0033] (実施例 2)
実施例 1と同一の材料および方法で作成したカルモデュリン膜を、 0.1M KC1、 10m M EGTAを含む lOmM MOPS緩衝液 ρΗ7·2中に浸した。遊離カルシウムイオン濃度 が 151ηΜ、 352ηΜ、 1360ηΜのカルシウムバッファー溶液を作成し、それら単独あるい は 50 μ Μのカルモデュリン阻害剤 W-7を加えた溶液を流し、張力および弾性の変化 を検出した(図 2)。
[0034] W-7は単独でもカルモデュリン膜に張力を生じる力 カルシウム存在下ではより張 力を増大させ、 W-7の除去によりもとにもどった。 W-7はカルシウムによって構造変化 をおこしたカルモデュリンに結合して、その構造をコンパクトにすることが知られている ので (Osawa, M. et al , (1999). Evidense ror calmodulin mter- domain compaction m solution induced by W-7 binding. FEBS Letters 442, 173-177)、この実施例は力 ルモデュリン阻害剤によるカルモデュリン膜の張力変化がカルモデュリンの構造変化 に対応し、本系がカルモデュリン阻害剤の検出に有効であることを示している。
[0035] (実施例 3)
実施例 1と同一の材料および方法で作成したカルモデュリン膜を、 0.1M KC1、 10m M EGTAを含む lOmM HEPES緩衝液 pH7.2中に浸した。そしてカルシウム依存性 プロテインキナーゼ IIのカルモデュリン結合部位断片を含む溶液を作成し、これを力 ルモデュリン膜と接触させて張力および弾性の変化を検出した(図 3)。
産業上の利用可能性
本発明により、メカノケミカル式センサーを用いてカルモデュリンの構造変化を検出 する方法が提供された。更に上記検出方法を用いて、カルモデュリンの構造変化に 影響を与える活性を有する物質を探索する方法が提供された。本発明の方法は、力 ルシゥムーカルモデュリンを介した情報伝達系が関与している疾患の治療薬や診断 薬を得る目的に資するものであると考えられる。

Claims

請求の範囲
[1] カルモデュリン、カルモデュリンの断片、カルモデュリンの変異体、タグ化したカルモ デュリン、又はカルモデュリンに対する抗体蛋白質よりなる試料膜を基板上に形成し 、当該試料膜を有する当該基板を力センサーに配置し、披験サンプルを当該試料膜 に作用させた際の当該試料膜の構造変化に由来する張力及び/又は弾性の変化 を当該力センサーで検出することからなる、カルモデュリンの構造変化を検出する方 法。
[2] 前記力センサーがメカノケミカル式センサーである、請求項 1記載の方法。
[3] 基板上に形成した前記試料膜に、カルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結 合物質、前記蛋白質の断片、前記蛋白質の変異体、タグ化した前記蛋白質、又は前 記蛋白質に対する抗体蛋白質を結合させる工程を更に含む、請求項 1記載の方法。
[4] 前記カルモデュリン依存性酵素 Zカルモデュリン結合物質は、アデニルシクラーゼ 、ブラッシュボーダーミオシン I重鎖、カルシニューリン、カルモデュリン依存性プロテ インキナーゼ II、カルモデュリン依存性プロテインキナーゼ IV、カルデスモン、カルモ デュリン依存性サイクリックヌクレオチドフォスフォジエステラーゼ、赤血球カルシウム-
ATPァーゼ、ニューロナルー酸化窒素シンターゼ、ニコチナミドジヌクレオチドキナー ゼ、ファオスファチヂルイノシトール 3キナーゼ、フォスフオリレースキナーゼ、骨格筋ミ オシン軽鎖キナーゼ、平滑筋ミオシン軽鎖キナーゼおよび IQGAP1からなる群から選 択された蛋白質である、請求項 3記載の方法。
[5] カルモデュリン、カルモデュリンの断片、カルモデュリンの変異体、タグ化したカルモ デュリン、又はカルモデュリンに対する抗体蛋白質よりなる試料膜を基板上に形成し 、当該試料膜を有する当該基板を力センサーに配置し、披験サンプルを当該試料膜 に作用させた際の当該試料膜の構造変化に由来する張力及び/又は弾性の変化 を当該力センサーで検出することからなる、カルモデュリンの構造変化に影響を与え る活性を有する物質を探索する方法。
[6] 前記力センサーがメカノケミカル式センサーである、請求項 5記載の方法。
[7] 基板上に形成した前記試料膜に、カルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結 合物質、前記蛋白質の断片、前記蛋白質の変異体、タグ化した前記蛋白質、又は前 記蛋白質に対する抗体蛋白質を結合させる工程を更に含む、請求項 5記載の方法。
[8] 前記カルモデュリン依存性酵素 Zカルモデュリン結合物質は、アデニルシクラーゼ 、ブラッシュボーダーミオシン I重鎖、カルシニューリン、カルモデュリン依存性プロテ インキナーゼ II、カルモデュリン依存性プロテインキナーゼ IV、カルデスモン、カルモ デュリン依存性サイクリックヌクレオチドフォスフォジエステラーゼ、赤血球カルシウム- ATPァーゼ、ニューロナルー酸化窒素シンターゼ、ニコチナミドジヌクレオチドキナー ゼ、ファオスファチヂルイノシトール 3キナーゼ、フォスフオリレースキナーゼ、骨格筋ミ オシン軽鎖キナーゼ、平滑筋ミオシン軽鎖キナーゼおよび IQGAP1からなる群から選 択された蛋白質である、請求項 7記載の方法。
[9] カルモデュリン、カルモデュリンの断片、カルモデュリンの変異体、タグ化したカルモ デュリン、又はカルモデュリンに対する抗体蛋白質よりなる試料膜を基板上に形成し 、当該試料膜を有する当該基板を力センサーに配置し、披験サンプルを当該試料膜 に作用させた際の当該試料膜の構造変化に由来する張力及び/又は弾性の変化 を当該力センサーで検出することからなる、カルシウム/カルモデュリンが関与する 細胞内情報伝達経路に変化が生じる疾患の診断薬または治療薬を探索する方法。
[10] 前記力センサーがメカノケミカル式センサーである、請求項 9記載の方法。
[11] 基板上に形成した前記試料膜に、カルモデュリン依存性酵素/カルモデュリン結 合物質、前記蛋白質の断片、前記蛋白質の変異体、タグ化した前記蛋白質、又は前 記蛋白質に対する抗体蛋白質を結合させる工程を更に含む、請求項 9記載の方法。
[12] 前記カルモデュリン依存性酵素 Zカルモデュリン結合物質は、アデニルシクラーゼ 、ブラッシュボーダーミオシン I重鎖、カルシニューリン、カルモデュリン依存性プロテ インキナーゼ II、カルモデュリン依存性プロテインキナーゼ IV、カルデスモン、カルモ デュリン依存性サイクリックヌクレオチドフォスフォジエステラーゼ、赤血球カルシウム- ATPァーゼ、ニューロナルー酸化窒素シンターゼ、ニコチナミドジヌクレオチドキナー ゼ、ファオスファチヂルイノシトール 3キナーゼ、フォスフオリレースキナーゼ、骨格筋ミ オシン軽鎖キナーゼ、平滑筋ミオシン軽鎖キナーゼおよび IQGAP1からなる群から選 択された蛋白質である、請求項 11記載の方法。
[13] カルモデュリン蛋白質からなる試料膜。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH05508079A (ja) * 1991-04-19 1993-11-18 ザ ボード オブ リージェンツ オブ ザ ユニヴァーシティ オブ ワシントン 哺乳類ホスホジエステラーゼをコードするdna
JP2002503332A (ja) * 1996-06-20 2002-01-29 ニューヨーク ユニヴァーシティ ポリマ材料と相互作用するリガンドの検出
JP2003522946A (ja) * 2000-02-10 2003-07-29 エボテック オーアーイー アクチェンゲゼルシャフト 蛍光強度及び寿命分布分析
JP2004510145A (ja) * 2000-09-20 2004-04-02 モレキュラー・リフレクションズ 共鳴センサーとして使用するための微細加工された超音波アレイ

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0988112B1 (en) * 1997-06-20 2010-04-14 New York University Electrospraying solutions of substances for mass fabrication of chips and libraries
AU2001280552A1 (en) * 2000-07-13 2002-01-30 The Ohio State University Research Foundation Multimeric biopolymers as structural elements, sensors and actuators in microsystems
KR100442822B1 (ko) * 2001-10-23 2004-08-02 삼성전자주식회사 전단응력 측정을 이용한 생분자들간의 결합 여부 검출 방법
CA2463301A1 (en) * 2004-04-22 2005-10-22 Atanas Iliev Lalev Method for detecting protein interactions - affinity purification with switching the ligand
CA2561246A1 (en) * 2004-03-25 2005-10-06 Fuence Co., Ltd. Method of detecting conformational change of an amyloid protein, a method of searching a substance having an activity that affects to conformational change of an amyloid protein, and a method of searching a therapeutic or diagnostic agent for amyloid-related diseases
JP2006090782A (ja) * 2004-09-22 2006-04-06 Fyuuensu:Kk 基板上に固定化した蛋白質の構造変化を検出する方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH05508079A (ja) * 1991-04-19 1993-11-18 ザ ボード オブ リージェンツ オブ ザ ユニヴァーシティ オブ ワシントン 哺乳類ホスホジエステラーゼをコードするdna
JP2002503332A (ja) * 1996-06-20 2002-01-29 ニューヨーク ユニヴァーシティ ポリマ材料と相互作用するリガンドの検出
JP2003522946A (ja) * 2000-02-10 2003-07-29 エボテック オーアーイー アクチェンゲゼルシャフト 蛍光強度及び寿命分布分析
JP2004510145A (ja) * 2000-09-20 2004-04-02 モレキュラー・リフレクションズ 共鳴センサーとして使用するための微細加工された超音波アレイ

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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