WO2005005986A1 - Vorrichtung und verfahren zur simultanen durchführung von blutgruppenbestimmung, serumgegenprobe und antikörpersuch-test - Google Patents

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Peter Schwind
Klemens LÖSTER
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Definitions

  • the invention relates to a device for lateral diagonal flow multiparameter tests, in particular in the fields of human hematology and infectious serology, for the simultaneous, qualitative or quantitative determination of a plurality of analytes in a liquid sample, comprising at least one membrane with a task zone for Applying the liquid sample, at least two indicator zones which can interact with the analyte and at least one absorption zone which receives the liquid after passing through the indicator zones, the indicator zones being between the application zone and the absorption zone, characterized in that the flow directions from the feed zone through the respective indicator zones to the absorption area (flow marks) are substantially parallel and at least two different flow traces are present.
  • the invention further relates to a method for the determination of a plurality of analytes in a liquid sample, comprising applying the sample to the application zone of a membrane of the device according to the invention, this sample being present in sufficient quantity to cause sample flow in the direction of the absorption region to flow the indicator zones and to cause the analytes or their derivatives in the sample fluid to form a complex in the indicator zones, in particular for the simultaneous determination of cellular and plasmatic parameters, preferably for the simultaneous performance of blood group determination and serum counterpart and / or antibody
  • Such tests as well as for the simultaneous performance of blood group determination and determination of transfusion-relevant infection serological markers and for the simultaneous performance of blood group determination and determination of antibodies that are directed against blood cells other than erythrocytes, in particular anti-platelets and anti-lymphocyte antibodies.
  • various laboratory tests on the donor and patient blood are known to be made to provide components that are blood group serologically compatible with the recipient and free from known transmissible pathogens are.
  • the respective serological tests usually include the blood group determination in the donor and recipient, in particular blood groups of the blood group systems ABO, Rh and Kell, serum cross-checking the donor and recipient, antibody search for irregular antibodies, the donor and recipient as well as antibody identification in the recipient in the presence of irregular antibodies.
  • the detection of antibodies to platelets and / or lymphocytes is also performed in the context of transfusion and transplantation.
  • the isoagglutinins or regular antibodies are acquired by all humans early after birth and correspond to the respective blood group of the ABO system. They are directed against those blood group antigens A and B, respectively, which the individual himself lacks, i. H. Persons with blood group A have anti-B, persons with blood group B have anti-A, persons with blood group 0 have anti-A and anti-B; Persons with blood group AB do not have isoagglutinins.
  • the regular antibodies are also called "complete” because they can directly agglutinate erythrocytes in the NaCl environment.
  • the irregular or alloantibodies in contrast to the isoagglutinins, are acquired by subsequent immunizations, viz. a. by transfusion or pregnancy. That's why most people do not have irregular blood group antibodies.
  • the transfusion-relevant irregular antibodies are usually heat-reactive and belong mainly to the IgG class. In contrast to the regular antibodies in the NaCl environment, they are not able to directly agglutinate erythrocytes.
  • the erythrocytes of the person to be tested are combined with reagents containing blood group-specific antibodies for blood group determination.
  • These are usually fluid tests in which a test batch is prepared by mixing a red cell containing sample with a sample containing antibodies directed against a particular blood group feature. The test mixture is then incubated for a defined period of time and under defined conditions and after completion of the incubation or directly or after centrifuging. It is checked either visually or by optical methods for possible agglutination or adsorption of the erythrocytes. The predominant endpoint measurement in blood group serology is still hemagglutination. For each blood group to be determined, a separate approach must be pipetted, ie, for example, the determination of the 9 most important blood groups A, B, D, C, c, E, e, Cw and K requires 9 separate approaches without control.
  • panels consisting of normally 2 or 3 blood group 0 cells whose combined antigen profile contains the most important antigens, in particular the blood group systems Rh-Kell, Duffy, Kidd, MNS, P, Lewis, Lutheran.
  • the cell reagent is combined with the serum or plasma of the person to be tested, incubated and checked visually or with optical methods for a possible agglutination of the erythrocytes after a centrifugation step.
  • 2 to 3 batches must be pipetted.
  • panels consisting of up to 16 blood group 0 cells are used whose antigen profiles are the most important antigens, in particular the blood group systems Rh, Kell, Duffy, Kidd, MNS Cover P, Lewis, Lutheran, in a well-coordinated manner.
  • the cell reagent is brought together with the serum or plasma of the person to be tested, incubated and visually or with optical methods for a possible agglutination of erythrocytes. checked.
  • up to 16 batches must be pipetted.
  • the most common reagent in this case is a polyclonal anti-human globulin antibody reagent to which anti-complement antibodies are often added (typically anti-C3d and / or anti-C3b).
  • a common method for the detection of platelet antibodies is the so-called MAIPA test (Monoclonal Antibody Immobilization of Platelet Antigens).
  • test platelets are incubated with the serum to be tested. After a washing step with a monoclonal z.
  • mouse antibody specific for a particular platelet glycoprotein is incubated.
  • the platelets are then lysed and the diluted lysate is placed in a with z.
  • B. Goat anti-mouse antibodies coated reaction vessel of a microtiter plate.
  • the goat anti-mouse antibody binds the mouse antibody and the platelet glycoprotein-human antibody complex thereon.
  • the human antibody is detected by adding an enzyme conjugated goat anti-human IgG.
  • a lateral flow test arrangement is known to consist of a solid support, on which a task zone for the sample to be examined is applied, a separation membrane, on the binding elements, for. B. catcher antibodies or antigens are bound and on which binding reactions can be detected and an absorbent absorption region, which allows the sample to be tested to flow linearly through the separation membrane.
  • Test membranes of conventional lateral flow tests are generally described with chromatographic-like separation.
  • the analyte in the sample binds specifically to the attached in a membrane binding elements, which are usually arranged in successive or superimposed bands as indicator zones.
  • the binding complex is visualized by indicator particles, which are usually already dried in a conjugate release pad in the assembly.
  • the conjugate release pad is located between the task zone and the membrane.
  • the precoated colored indicator particles are coated with an antibody directed against the analyte of interest.
  • the usual lateral flow test format is that of a so-called “sandwich assay" in which both the indicator zone and the indicator particles are coated with ligands directed against the desired analyte, usually an antibody. immobilized on the membrane
  • the detector reagent usually an antibody bound to colored polystyrene particles or colloidal metals, is leachable in the conjugate release pad, which acts as an indicator particle and wets after application of the sample to be examined
  • the indicator particles migrate with the liquid front along the porous membrane, and an analyte in the sample is bound by the antibody that is coupled to the indicator particle Indicator zone passes, the analyte / indicator article comp lex is immobilized in the indicator zone by reaction of the analyte with the antibody bound in the indicator zone, resulting in a visible signal.
  • the indicator reagent bound to the indicator particles is usually an identical or analogous molecule to the analyte
  • the indicator particles are deposited in the conjugate release pad
  • the indicator particles migrate along the porous membrane with the liquid front the sample containing analyte, and the indicator particles (which effectively also contain analyte) pass through the indicator zone, bind some of the analyte molecules in the sample and some of the indicator particles, the more analyte in the sample, the more effective it becomes Compete with the binding of indicator particles, the weaker the signal.
  • these indicator particles are predominantly of colloidal gold or of polystyrene, which are produced and coated by methods known to the person skilled in the art.
  • the analytes are determined indirectly. Direct determination of an analyte means here that the analyte is already naturally bound to the indicator particle (eg erythrocyte).
  • the sample to be tested usually contains a non-cell bound, eg. B. plasmatic component as an analyte and it will be required in addition to the sample to be tested two reagent components, namely indicator particles and binding element.
  • the analyte first binds to the indicator particles leached out of the conjugate release pad before this complex is then immobilized in the indicator zones by a second reaction with the binding element.
  • the object of the invention is the disadvantages mentioned in relation to the prior art, in particular those of the successive or superimposing indicator or detection zones of conventional lateral flow tests, for a simultaneous measurement of different sample parameters, in particular of cellular and plasmatic parameters, overcome.
  • a device for simultaneous, qualitative or quantitative determination of one or more analytes in a liquid sample or more liquid samples comprising at least one membrane with a task zone for applying the liquid sample, at least one group of at least two Indicator zones that can interact with the analyte (s) and analyte (s), and an absorption area that traps the liquid after passing through the indices.
  • katorzonen receives, wherein the indicator zones between the task zone and the absorption area, characterized in that the flow directions from the task zone through the respective Tzikatorzonen a group to an absorption area, which are flow marks, are substantially parallel and at least two different flow traces.
  • the indicator zones of the device according to the invention are located on the membrane and comprise binding elements which trap or bind the analytes to be determined in the sample. In the indicator zones, the binding reactions between analyte and binding element are detected. Particularly preferred binding elements are antibodies or antibody fragments, lectins, antigens or antigenic epitopes and / or cells or cell fragments attached to the porous membrane.
  • the indicator zones preferably each comprise a binding element against an analyte to be examined.
  • the indicator zones are arranged such that the sample flow per flow track does not flow through more than one indicator zone.
  • the indicator zones are arranged offset on the membrane.
  • the arrangement of the indicator zones is preferably configured in a row extending from proximal to distal or vice versa.
  • Particular embodiments are V-shaped, W-, M-, or N-shaped or vice versa V-shaped, W-, M-, or N-shaped configured.
  • the indicator zones are arranged parallel to one another and offset in a linear row. The introduction of staggered indicator zones makes multiparameter testing with erythrocytes as indicator particles in a lateral arrangement possible in the first place.
  • the particularly preferred embodiment of a diagonal arrangement has the advantage that the designation of the results can be applied to the arrangement according to the invention particularly practical and easy to read, since each parameter to be detected has a defined X and Y position, considering the arrangement of the device according to the invention as a coordinate system with ordinate (plane of flow direction) and abscissa (plane of order zone).
  • more than one such series of indicator zones preferably each from proximal to distal or vice versa diagonal, or for example also V-shaped, W, M, or N-shaped or vice versa V-shaped, W -, M-, or N-shaped, arranged one behind the other in flow direction and / or laterally offset and the indicator zones of different rows either to each other on the gap, so that the sample flow per flow track does not flow through more than one indicator zone, or not to each other gap arranged so that the sample flow per flow track flows through more than one indicator zone.
  • More than one such series of indicator zones are particularly advantageous if it is intended to determine cellular and plasmatic parameters from a whole blood sample.
  • the binding elements are chosen such that the analytes contained in the plasma, for example any kind of antibodies that flow through the device from the application zone to the absorption zone through the indicator zones, in the proximal bind to the task zone arranged array of indicator zones to the binding elements.
  • the binding elements for detecting the cell-bound analytes for example erythrocytic antigens, are selected such that they bind to the binding elements in the row of indicator zones arranged distally to the task zone.
  • indicator particles preferably of colloidal gold or polystyrene or fixed erythrocytes
  • these indicator particles are used, in particular, to make non-erythrocyte-bound analytes, for example free-floating antibodies, visible in the binding complex in an indicator zone.
  • the indices may katorzonen of the two rows to each other not be arranged on the gap or in a flow track behind the other.
  • analytes detected from the plasma are detected in the proximal indicator zones and in which the erythrocyte-bound analytes are detected in the distal indicator zones.
  • An embodiment of the invention having more than one row of indicator zones, as described above, of which the binding members of each row react with erythrocytes as indicator particles, the rows of indicator zones are spaced one behind the other or in a flow track one behind the other.
  • a further and particularly preferred embodiment of the invention are more than one such series of indicator zones, preferably in a proximal to distal or reverse diagonal row, or for example in a V-shaped, W-, M- or N-shaped or inverted V-shaped, W-, M-, or N-shaped extending row, or arranged for example in a parallel juxtaposed row, bidirectional (eg., To a 180 ° angle) to a central task zone.
  • bidirectional eg., To a 180 ° angle
  • the binding elements are selected such that the analytes contained in the plasma, for example any kind of antibodies that flow through the device from the application zone to the absorption zone through the indicator zones, in the one side to the task zone arranged array of indicator zones bind to the binding elements.
  • the binding elements for detecting the cell-bound analytes for example erythrocytic antigens, are chosen such that they bind to the binding elements in the row of indicator zones arranged on the opposite side to the application zone.
  • another type of indicator particles preferably of colloidal gold or polystyrene, is preferably used in addition to the erythrocytes.
  • these indicator particles become used to visualize non-erythrocyte-bound analytes, for example, freely occurring in the plasma antibodies in the binding complex in an indicator zone.
  • the one application zone further comprises two different membranes of different porosity.
  • These indicator particles are used, in particular, to make non-erythrocyte-bound analytes, for example free-floating antibodies, visible in the binding complex in an indicator zone.
  • the one application zone comprises one membrane or two different membranes of different porosity.
  • one of the two membranes comprises a conjugate pad, which is arranged between sealing element and indicator zones.
  • indicator particles preferably of colloidal gold or polystyrene
  • these indicator particles are used in particular to visualize non-erythrocyte-bound analytes, for example antibodies that occur freely in the plasma, in the binding complex in an indicator zone.
  • This further type of indicator particles used in addition to the erythrocytes is preferably dried in the conjugate pad.
  • the conjugate pad ensures that the flow of erythrocytes is slowed down.
  • the device according to the invention provides a lateral flow test, in particular for blood group serology diagnostics, with which erythrocytes are used as indicator particles and in a test batch simultaneously several cellular parameters, in particular erythrocytic antigens or antigenic epitopes, plasmatic parameters and / or Blood cell properties, in particular from whole blood components, can be determined per sample to be examined.
  • a test system which can be produced as simply as possible and is easy to handle, in particular with few test series and without sample preparation, and which can be used simultaneously to determine various cellular parameters and / or plasmatic parameters of a sample or several samples to be examined.
  • any medical diagnostic field in which simultaneously different cellular parameters and plasmatic parameters to be determined, especially in the field of blood group and infection serology, especially for any diagnostics in the context of transfusion medicine, eg. B.
  • blood group determination in particular erythrocyte-bound antigens or antigenic epitopes are determined, and serum cross-checking, in particular regular antibodies (isoagglutinins) are determined, and / or antibody search test, in particular irregular antibodies be determined, as well as for the simultaneous performance of blood group determination and determination of transfusion-relevant infection serological markers, for example antibodies against H ⁇ V-1, HIV-2, HCN, Treponema pallidum, as well as the surface antigen of the hepatitis B virus (HbsAg), and for the simultaneous performance of blood group determination and determination of antibodies to blood cells other than erythrocytes, in particular anti-platelet and anti-lymphocytic antibodies.
  • HbsAg hepatitis B virus
  • anticoagulated or native whole blood may be used, in which prior to the determination, erythrocytes and serum or Plasma fraction must be separated from each other.
  • the determination can be done in a manual format that works completely without any devices (including electricity).
  • the indicator zones preferably in a distal to the task zone array of Lhdikatorzonen, antibodies or antibody fragments or lectins that intercept the blood group antigens to be determined all conceivable blood group systems and thus the cells carrying them in the sample or tie.
  • preferred binding elements are Antikö ⁇ er or antibody fragments or lectins against antigens or antigenic epitopes, in particular the blood group systems ABO, Rh and Kell, for example anti-A, anti-B, anti-D and anti-K, in the indicator zones on the porous Membrane, preferably in a distal to other indicator zones arranged row attached.
  • the control binding element is preferably a polyclonal anti-erythrocyte Antikö ⁇ er.
  • This preferred embodiment of the device according to the invention comprises, in a further row of indicator zones, preferably arranged proximally to the task zone, antigens or antigenic epitopes which trap or bind regular antibodies in the sample.
  • antigens or antigenic epitopes which trap or bind regular antibodies in the sample.
  • AI, A2, B, 0 blood group antigens or antigenic epitopes for example erythrocyte membranes of erythrocyte-defined blood groups (AI, A2, B, 0) or synthetically produced blood group substances, are attached to the porous membrane.
  • the control binding element is preferably an anti-IgG Antikö ⁇ er.
  • This preferred embodiment of the device according to the invention may comprise antigens or antigenic epitopes in a further row of indicator zones, preferably arranged proximally to the task zone, which trap or bind irregular antibodies or fragments thereof in the sample.
  • Preferred binding elements for this purpose are the cell membranes of different blood group 0 erythrocyte preparations, whose combined antigen profile covers those antigens that are directed against the most important transfusion-relevant irregular antibodies, attached to the porous membrane.
  • the control binding element is preferably an anti-IgG Antikö ⁇ er.
  • the indicator zones preferably in a row of indicator zones arranged distally to the application zone, comprise antibodies, e.g. Antibody fragments or lectins which trap or bind the blood group antigens to be determined in the blood group determination and thus the cells carrying them in the sample.
  • antibodies e.g. Antibody fragments or lectins which trap or bind the blood group antigens to be determined in the blood group determination and thus the cells carrying them in the sample.
  • preferred binding elements are Antikö ⁇ er or antikö ⁇ erfragmente or lectins against antigens or antigenic epitopes of the ABO blood group system, for example anti-A, anti-B, anti-A and anti-B, in the indicator zones on the porous membrane, preferably in a distal to the Aufgäbezone and other indicator rows arranged row attached.
  • control binding element is preferably a polyclonal anti-red cell anticler.
  • This preferred embodiment of the device according to the invention comprises thrombocyte and / or lymphocyte membranes or membrane constituents as binding elements for detecting antithrombocytic / lymphocytic antibodies in a further row of indicator zones, preferably arranged proximally to the application zone.
  • the indicator zones preferably in a row of indicator zones arranged distal to the task zone, comprise antibodies or antibody fragments or lectins which contain the blood group antigens to be determined during the blood group determination and thus the cells carrying them in the sample intercept or bind.
  • preferred binding elements are Antikö ⁇ er or antikö ⁇ erfragmente or lectins against antigens or antigenic epitopes of the ABO blood group system, for example anti-A, anti-B, anti-A and anti-B, in the lhdikatorzonen on the porous membrane, preferably in a distal to the task area and other indicator rows arranged row attached.
  • the control binding element is preferably a polyclonal anti-erythrocyte Antikö ⁇ er.
  • This preferred embodiment of the device according to the invention comprises binding elements for the detection of infectious agents, in particular synthetically produced peptides or with recombinant DNA, in a further row of indicator zones, preferably arranged proximally to the task zone.
  • Methods expressed recombinant antigens that include diagnostically significant sequences of surface proteins of the respective markers (Antikö ⁇ er- proof), or Antikö ⁇ er which are directed against (surface) proteins of infectious agents (antigen detection).
  • the device according to the invention no longer needs to be separately pipetted for each determination for the simultaneous determination of cellular and plasmatic parameters from a sample, but all desired parameters can be simultaneously determined on a sample, in particular in the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-check and / or or Antikö ⁇ ersuch test as well as in the simultaneous performance of blood group determination and determination of transfusion-relevant infection serological markers, wherein the blood group determination can be combined with the detection of any infection serological markers, as well as in the simultaneous performance of blood group determination and determination of Antikö ⁇ ern against other blood cells than erythrocytes, especially anti-erythrocytes Platelets and anti-lymphocytes Antikö ⁇ er.
  • the two-dimensional, planar result and the stable end point of the reaction favor both the reading with the naked eye as well as an automated reading of the results with conventional image analysis methods, such. B. CCD cameras.
  • the workload is reduced, even with manual processing.
  • the device according to the invention also leads to a reduction of the environmental impact and to low-cost effects. Even in emergency situations with time pressure, for example, a complete ABO blood group determination with serum cross-check and antibody test for irregular antibodies can be carried out in a short time, for example a complete ABO blood group determination with infection serological marker determination or anti-platelets / lymphocytes Antikö ⁇ er determination can be performed.
  • the lateral diagonal flow structure has significant advantages over the prior art in that it significantly reduces the consumption of the reagents used and provides a large number of test parameters, which until now must be separately tested, in a single device.
  • the device according to the invention provides a lateral-flow test, in particular for immunohematological and infection-serological diagnostics, with which several cellular, in particular erythrocytic antigens or antigenic epitopes, plasmatic parameters and / or blood cell properties, in particular, are present in one test batch from whole blood constituents, per sample to be tested, using at least two types of indica- tate particles, of which at least one is erythrocytes.
  • a test system which can be produced as simply as possible and is easy to handle, in particular with a few test series and without sample preparation, is provided, with which simultaneously various cellular parameters and / or plasmatic parameters of a sample, in particular blood group characteristics, detection of regular and irregular antibodies.
  • Antikö ⁇ er against platelets and / or lymphocytes and / or infection serological markers especially those with transfusion medical relevance, can be determined.
  • the membrane of the device according to the invention is a porous membrane.
  • Preferred membrane materials are, for example, nitrocellulose (eg UniSart from Sartorius, HiFlow from Millipore, Whatman, AE99 or FF85 / 100 from Schleicher & Schnell), polyethylene (lateral flo from Porex Co ⁇ oration) or nylon (Novylon from CUNO ).
  • the membrane has the largest possible pore size, since a high porosity of the membrane, the penetration of particular cellular components of the sample to be determined, for. B. erythrocytes, favors in the porous structure.
  • the erfmdungs contemporary device is not limited to these properties.
  • Preferred are all membranes with a high capillary flow rate, where the capillary flow rate is the time it takes for a dye solution to travel 40 mm on a given membrane.
  • Particularly preferred are membranes whose capillary flow rate is ⁇ 100.
  • one membrane preferably has a high capillary flow rate, preferably ⁇ 100, the other membrane preferably has a lower capillary flow rate, preferably> 100.
  • a sealing element is arranged in the flow direction behind the application zone of the device according to the invention on the porous membrane.
  • Two- or three-dimensional sealing elements are used, which are placed on the porous membrane and with which a sample application zone separated from the remaining surface of the porous membrane is created.
  • the sealing element according to the invention has primarily the Effect of a liquid barrier and allows the directional distribution of sample flow and test reagents into the porous membrane. Furthermore, according to the invention, the sealing element seals the sample application zone to prevent unwanted liquid transfer to the other regions of the lateral flow device arrangement.
  • Preferred embodiments of the sealing element are the web or Trogtial. Funnel-shape.
  • the shaping of the sealing element takes place by cutting processes from the material used to produce the sealing element.
  • the sealing element receives an inner opening, the preferred embodiments are round, square or rectangular, in the case of the funnel shape to the bottom (membrane contact side) of the sealing element tapered shapes.
  • Preferred materials for the sealing element are materials that are not water absorbent (hydrophobic).
  • the materials are coated on one side with an adhesive film, for example a pressure-sensitive or self-adhesive acrylic adhesive.
  • the sealing element can be bonded directly to the surface of the porous membrane.
  • the sealing element may be connected to the lateral flow housing, for example adhesively bonded, wherein in this embodiment the lateral flow housing presses the sealing element onto the surface of the porous membrane and thus the functions of the sealing element are achieved.
  • Preferred materials for the formation of two-dimensional sealing elements are any form of adhesive tapes or adhesive films (eg Tesa 4124 from Beiersdorf AG, ARcare 7815 from Adhesives Research).
  • Preferred materials for the formation of three-dimensional sealing elements are flexible, closed-cell elastomeric materials or flexible silicone materials with different material thicknesses, preferably 3-5 mm (eg Pitzner cellular rubber EPDM140, silicone rubber or solid rubber, hardness 40 ° or less, from Castan).
  • the device according to the invention is capable of taking up liquid samples containing cells, such as whole blood, without filtering off the cells in the process.
  • the sealing element allows the application of large sample volumes on the porous membrane (task zone), without being flooded.
  • the sealing element supports the utilization of the receiving properties of the porous membrane.
  • the sealing element guarantees a directed sample flow.
  • the device according to the invention can work well with or without a sealing element.
  • the absorption region (absorption pad) of the device according to the invention mechanically stable materials are preferred, preferably with water absorption capacities of 20-30 g / 100 cm 2 (eg Wicking paper, type 300, Schleicher and Schuell).
  • the contact between the absorption pad and the lateral flow membrane of the device according to the invention is produced by pressure and overlapping with the porous membrane.
  • the exact positioning of the absorption pad on the membrane is achieved by bonding the absorption pad to the backing sheet-supporting backing sheet.
  • the conjugate pad is preferably made of glass fiber or cellulose and preferably has the property of delaying the flow of native erythrocytes.
  • the components of the device according to the invention are applied to a substrate or carrier layer for the purpose of mechanical reinforcement.
  • the device according to the invention can function with or without a carrier layer.
  • a pressure-sensitive or self-adhesive acrylate adhesive coated eg 0.005 "Polyester W / GL-187, G & L
  • the porous membrane and the absorption pad are fixed on the carrier layer, in the case of the double-sided adhesive carrier layer, the adhesive second side is fixed on further surfaces, eg Inserted inside the lateral flow housing.
  • the device according to the invention either with or without a carrier layer, on which the components of the device according to the invention are applied, integrated in a housing, whereby the membrane components are pressed together and the housing supports the sealing element function.
  • the device according to the invention can work just as well with or without housing.
  • Another object of the invention is the use of the device according to the invention for the analysis of blood, in particular for the simultaneous performance of the blood group determination and serum cross-check and / or Antikö ⁇ ersuch test and / or for simultaneous performance of the blood group determination and the detection of Antikö ⁇ ern against infectious, especially bacterial and / or viral agents or fragments thereof or of antigens of infectious agents and / or for the simultaneous performance of the blood group determination and the detection of Antikö ⁇ ern against other blood cells as erythrocytes, in particular anti-thrombocytic or anti-lymphocytic Antikö ⁇ er, or fragments thereof.
  • the object is achieved according to the invention on the other hand by a method for determining a plurality of analytes or their derivatives in a liquid sample, which comprises applying the sample to the application zone of a membrane of the device according to the invention, this sample is present in sufficient quantity to the Probenpoundtechnik to to flow in the direction of the absorption zone through the indicator zones and to detect the analytes or their derivatives. in the sample fluid, to bind to the respective indicator zones or to form a complex in the indicator zones.
  • a particular embodiment of the method according to the invention simultaneously carries out a blood group determination and serum counterpart and / or antibody test.
  • whole blood or a dilution thereof is applied to the application zone of the device.
  • All components penetrate the porous membrane, guided by the sealing element, and when migrating in the direction of the absorption pad, first pass through the indicator zone region of serum cross-comparison comprising fragments of cells AI, A2, B, O and the control indicator zone with anti-IgG / IgM.
  • the isoagglutinins present in the serum bind to the corresponding cell-bound antigens.
  • Serum IgG binds to the control binding element (serum cross-check: sensitization).
  • the cell-bound antigens further migrate into the indicator zone region of the indicator zone zone distal to the indicator zone region, in which zone an antibody is immobilized against another blood group feature in each indicator zone (eg, anti-A, anti-B, anti-AB).
  • the indicator zone of this area which is the most distal to the task zone, has polyclonal anti-erythrocyte antibodies as binding element by way of example.
  • the erythrocytes bind to the binding elements that correspond to the respective blood group characteristics.
  • the erythrocytes of each blood group bind to the control binding element (blood group determination). In a subsequent washing step, unbound material is washed out of the membrane.
  • synthetic particles which have been coated with anti-IgG IgM are used to visualize the isoagglutinins and control antibodies immobilized on the binding elements of the proximal row of indicator zones (serum cross-check: detection).
  • serum cross-check detection
  • the blood group characteristics are determined directly as described above, whereas serum cross-comparison and / or anticorrosive test are carried out as a competition test:
  • whole blood or a dilution thereof is applied to the application zone of the device. All components penetrate into the porous membrane, guided by the sealing element, and when migrating in the direction of the absorption pad, first pass the indicator zone region serum counterpart comprising fragments of cells of blood groups A and B as well as the control indicator zone, the fragments of cells of the Blood group 0 includes.
  • the isoagglutinins present in the serum bind to the corresponding cell-bound antigens. (Serum counterpart: sensitization).
  • the cell-bound antigens continue to migrate to the indicator zone area blood grouping distal to the indicator zone area of the serum counterpart sample in which one antibody is immobilized in each indicator zone against another blood group feature (eg anti-A, anti-B, anti-D).
  • the indicator zone of this area which is the most distal to the task zone, has, for example, polyclonal anti-erythrocyte antibodies as a binding element.
  • the erythrocytes bind to the binding elements that correspond to the respective blood group characteristics.
  • the erythrocytes of each blood group bind to the control binding element (blood group determination). In a subsequent washing step, unbound material is washed out of the membrane.
  • a suspension of different synthetic particles, each coated with anti-A, anti-B or anti-H, is applied to the application zone.
  • the particles can only bind to those binding elements in the indicator zone region of serum counterpart which had not come into contact with the senim-isoagglutinines in the sensitization step, ie a colored band in this case indicates the absence of the corresponding isoagglutinin.
  • a blood group A persons with isoagglutinins anti-B
  • the cell fragments of the B cells are blocked by the isoagglutinins, resulting in the cell fragments of the A cells being stained by the subsequently applied mixture of synthetic particles by the anti-A particles present therein.
  • the blood group 0 fragments are stained in all conceivable constellations since they are not blocked by isoagglutinins and are therefore always free for reaction with the stained anti-H particles, whereby a control element is also provided in the variant of the competition assay (serum cross-check: detection) ,
  • “Membrane only side” All components pass through the indicator zone region Blood group determination during the migration in the direction of the associated absorption pad, in which an antibody is immobilized in each indicator zone against another blood group feature (eg anti-A, anti B, anti-D)
  • the indicator zone of this range which is the most distal to the application zone, has polyclonal anti-erythrocyte antibodies as the binding element in this indicator zone area, where the erythrocytes bind to the binding elements corresponding to the respective binding zones Blood group characteristics correspond. Erythrocytes of any blood group bind to the control binding element.
  • Membrane / conjugate pad side All components come after penetration into the membrane and passing the sealing element with the conjugate pad in contact, while the cellular components are held or braked and the liquid components (plasma) can continue to flow unhindered. The latter dissolve the anti-A / anti-B / anti-H particles from the conjugate pad
  • the counterpart zone serum counter sample comprises fragments of cells of blood groups A and B and as control element fragments of cells of blood group 0.
  • the isoagglutinins present in the serum bind the corresponding cell-bound antigens and thus compete for a binding of the colored anti-A, anti-B particles, which means that the particles can only bind if the particular isoagglutinin is absent, for example, a blood group A person has anti-B isoagglutinins which causes the blood group B fragments in the indicator zone area to be blocked and only the blood group AF can be stained by the colored anti-A particles.
  • the control element, against which no isoagglutinins exist thus always remains unblocked and is stained by the anti-H particles contained in the particle mixture of the conjugate pad as a visible band.
  • Another particular embodiment of the method according to the invention simultaneously performs a blood group determination and a determination of anti-platelets and / or anti-lymphocyte Antikö ⁇ er or fragments thereof.
  • the indicator zones in the region proximal to the task zone comprise platelet fragments as binding elements to which anti-platelet antibodies contained in the serum, if present in the sample, bind.
  • the rest of the method is as described in the above embodiment of the method according to the invention, in particular the blood group determination is carried out as described there.
  • Another particular embodiment of the method according to the invention simultaneously carries out a blood group determination and a determination of transfusion-relevant infection-somatological markers.
  • the indicator zones of the first, proximal indicator zone region as binding elements comprise synthetic peptides and / or recombinant proteins which correspond to the sequences of proteins of viral or bacterial agents (determination of antibodies against infection markers, eg anti-HIV). 1), as well as antibodies which are directed against proteins of infection markers (determination of antigens, eg HbsAg).
  • determination of antigens eg HbsAg
  • antigens eg HbsAg
  • the analytes to be determined are, in particular, blood group antigens or antigenic epitopes, preferably those of the blood group systems ABO, Rh, Kell, antibodies or fragments thereof directed against blood group antigens or antigenic epitopes, preferably regular antibodies, irregular antibodies, antibodies against infectious agents, (surface) antigens of infectious agents and / or anti-platelet or anti-lymphocytic antibodies or fragments thereof.
  • the sample to be tested for example native or anticoagulated whole blood or erythrocyte concentrates or diluted erythrocyte suspensions, blood components or test liquids, such as control serum or control cells, is applied to the application zone of the device according to the invention.
  • the erythrocytes in the sample that carry the analyte (s) also serve as indicator particles.
  • two groups of mdikato ⁇ artikebi are used. One is represented by erythrocytes alone for the direct detection of erythrocyte-bound analytes.
  • the other group consists of particles of every conceivable type and combination with which binding reactions can be detected, preferably particles of colloidal gold or of polystyrene or fixed erythrocytes.
  • different indicator particles are used per test run, of which at least one kind is native erythrocytes.
  • FIG. 1 shows a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-checking;
  • FIG. 2 shows an exploded view of the device according to the invention for lateral flow tests shown in FIG. 1;
  • FIG. 3 is a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-checking carried out with a three-dimensional sealing element in web form;
  • FIG. 4 shows an exploded view of the device according to the invention for lateral flow tests shown in FIG. 3
  • FIG. 5 shows a perspective illustration of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-checking carried out with a three-dimensional sealing element in trough form;
  • FIG. 6 is an exploded view of the lateral flow tester of the invention shown in FIG. 5; FIG.
  • Figure 7 is a perspective view of a lateral flow assay device of the present invention for the simultaneous performance of blood grouping, serum cross-checking and antibody testing for recipients;
  • Fig. 8 is a perspective view of a lateral flow assay device according to the invention for the simultaneous performance of blood grouping, serum cross-checking and antibody testing in donors;
  • FIG. 9 is a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of Blutmaschinebe- mood and the detection of infection markers.
  • FIG. 10 is a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and the detection of Antikö ⁇ ern against platelet antigens.
  • FIG. 11 is a perspective view of a bi-directional flow lateral flow test device of the invention for the simultaneous determination of blood grouping and serum cross-checking;
  • FIG. 12 shows an exploded view of the device according to the invention for lateral flow tests shown in FIG. 17.
  • FIG. 1 shows, by way of example, a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-checking.
  • the device consists of a carrier layer 1, the porous membrane 2, the Abso ⁇ tions pad 3 and the two-dimensional, embodied in web form sealing element 4.
  • the porous membrane 2 is fixed on the provided with a pressure-sensitive acrylate adhesive support layer 1.
  • the Abso ⁇ tions- pad 3 is fixed on the carrier layer 1, wherein a portion of the Abso ⁇ tions pad 3 overlaps with the porous membrane 2.
  • the sealing element 4 fixed on the upper side of the porous membrane 2 separates the application zone 5 from the remainder of the membrane surface and permits the directed distribution of sample flow and test reagents into the porous membrane 2.
  • the indicator zone region 6 is arranged between the application zone 5 and the region of the porous membrane 2 the Abso ⁇ tions pad 3 is in contact.
  • This is formed of diagonally offset, point-shaped indicator zones I-IX arranged in defined X and Y positions, wherein the indicator zones IV include the indicator zone area "serum counterpart" and the indicator zones VI-IX the indicator zone area "blood group determination" and the following Binding elements consist of:
  • Indicator zone region Blood group determination
  • Indicator zone V is the control (ctl) for the serum cross-match and contains anti-human IgG / IgM antibodies.
  • Indicator zone IX is the control (ctl) for blood typing and contains polyclonal anti-erythrocyte antibodies. It is located distally to all other indicator zones.
  • Fig. 2 is an exploded view of the device according to the invention for lateral flow tests shown in Fig. 1, which consists of the components carrier layer 1, porous membrane 2, Abso ⁇ tions pad 3 and sealing element 4, which the task zone 5 of the rest Membrane separated, which in turn contains the indicator zone area 6, consisting of the indicator zone areas "random check" and "blood group determination" with the diagonally offset indicator zones I-LX.
  • FIG. 3 shows by way of example a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-checking.
  • the components of the device correspond to the components of the device shown in FIG. 1, with the exception of the sealing element which is fixed on the upper side of the porous membrane 2 and designed in three-dimensional web form
  • Fig. 4 is an exploded view of the device according to the invention shown in Fig. 3 for lateral flow tests with the components carrier layer 1, porous membrane 2, Abso ⁇ tions pad 3 and executed in three-dimensional web shape sealing element 4 is shown, which the task zone 5 of the the remaining membrane, which in turn contains the indicator zone region 6, consisting of the indicator zone regions "serum cross-check” and "blood group determination” with the diagonally offset indicator zones I-LX.
  • FIG. 5 shows by way of example a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and serum cross-checking.
  • the components of the device correspond to the components of the device shown in FIG. 1, with the exception of the sealing element 4 which is fixed on the upper side of the porous membrane 2 and designed in three-dimensional trough form.
  • FIG. 6 shows an exploded view of the device according to the invention for lateral flow tests shown in FIG. 5 with components carrier layer 1, porous membrane 2, absorption pad 3 and sealing element 4 embodied in a three-dimensional trough form, which is the task zone 5 separated from the remainder of the membrane, which in turn contains the indicator zone region 6, consisting of the indicator zone regions "serum counterpart" and "blood group determination” with the diagonally offset indicator zones I-IX.
  • FIG. 7 shows, by way of example, a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination, serum cross-checking and antibody testing in recipients.
  • the device consists of a carrier layer 1, the porous membrane 2, the absorption pad 3 and the two-dimensional sealing element 4 in the form of a web.
  • the porous membrane 2 is on the carrier layer provided with a pressure-sensitive acrylate adhesive 1 fixed.
  • the Abso ⁇ tions pad 3 is fixed on the support layer 1, wherein a portion of the Abso ⁇ tions pad 3 overlaps with the porous membrane 2.
  • the sealing element 4 fixed on the upper side of the porous membrane 2 separates the application zone 5 from the remainder of the membrane surface and permits the directed distribution of sample flow and test reagents into the porous membrane 2.
  • the indicator zone region 6 is arranged.
  • This 15 is formed of diagonally offset, in defined X and Y positions, dot-shaped indicator zones I-XII, wherein the indicator zones I-VHI the indicator zone area "serum counterpart / Antikö ⁇ ersuchtest” and the lhdikatorzonen IX-XII the indicator zone area "blood grouping" include consist of the following binding elements:
  • Indicator zone area serum cross-match / antibody search
  • N erythrocyte ghosts search cell 1 blood group 0, Rh formula R ⁇ R ⁇ W
  • Indicator zone area blood group determination
  • Indicator zone VIII is the control (ctl) for the serum cross-match and antibody screening test and contains anti-human IgG / IgM antibodies.
  • Indicator zone XII is the control (ctl) for blood typing and contains polyclonal anti-erythrocyte antibodies. It is located distally to all other indicator zones.
  • FIG. 8 shows, by way of example, a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination, serum cross-checking and antibody testing in blood donors.
  • the device consists of a carrier layer 1, the porous membrane 2, the absorption pad 3 and the two-dimensional sealing element 4 in web form.
  • the porous membrane 2 is on the carrier layer provided with a pressure-sensitive acrylate adhesive 1 fixed.
  • the absorption pad 3 is fixed on the carrier layer 1, whereby a part of the absorption pad 3 with the porous membrane 2 overlaps. overlaps.
  • the sealing element 4 fixed on the upper side of the porous membrane 2 separates the application zone 5 from the remainder of the membrane surface and permits the directional distribution of sample flow and test reagents into the porous membrane 2.
  • the indicator zone region 6 is arranged. This is formed from diagonally offset, in defined X and Y positions, dot-shaped indicator zones IX, wherein the indicator zones I-VI the indicator zone area "serum counterpart / Antikö ⁇ ersuchtest" and the lhdikatorzonen VII-X the indicator zone area
  • Indicator zone area serum cross-match / antibody search
  • Indicator zone VI is the control (ctl) for the serum cross-match and anti-colony assay and contains anti-human IgG / IgM antibodies.
  • Indicator zone X is the control (ctl) for blood typing and contains polyclonal anti- erythrocyte antibodies. It is located distally to all other indicator zones.
  • FIG. 9 shows by way of example a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous performance of blood group determination and detection of infection markers.
  • the device consists of a carrier layer 1, the porous
  • the porous membrane 2 is fixed on the provided with a pressure-sensitive acrylate adhesive support layer 1.
  • the absorption pad 3 is fixed on the carrier layer 1, wherein a part of the absorption pad 3 overlaps with the porous membrane 2. That on the top of the po-
  • V recombinant antigen syphilis (TpN 15, TpN 17, TpN 47)
  • Indicator zone area blood group determination
  • Indicator zone VI is the control (ctl) for the determination of antibodies to infectious agents and contains anti-human IgG / IgM antibodies.
  • Indicator zone XII is the control (ctl) for blood typing and contains polyclonal anti-erythrocyte antibodies. It is located distally to all other indicator zones.
  • Fig. 10 is an example of a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests for the simultaneous implementation of Blood grouping and detection of antibodies to platelet antigens.
  • the device consists of a carrier layer 1, the porous membrane 2, the Abso ⁇ tions pad 3 and the two-dimensional, embodied in web form sealing element 4.
  • the porous membrane 2 is fixed on the provided with a pressure-sensitive acrylate adhesive support layer 1.
  • the Abso ⁇ tions pad 3 is fixed on the support layer 1, wherein a portion of the Abso ⁇ tions pad 3 overlaps with the porous membrane 2.
  • the sealing element 4 fixed on the upper side of the porous membrane 2 separates the application zone 5 from the remainder of the membrane surface and allows the directed distribution of sample flow and test reagents into the porous membrane 2.
  • the indicator zone region 6 is arranged. This is formed from diagonally offset, in defined X and Y positions, punctiform lhdikatorzonen I-IX, the indicator zones I-III the indicator zone area "detection of antibodies against thrombocytic antigens" and the lhdikatorzonen TV-IX the indicator zone area "blood group determination" and consist of the following binding elements:
  • Indicator zone area Detection of antibodies to platelet antigens
  • Indicator zone area blood group determination rv Antikö ⁇ er Anti-A (monoclonal)
  • Indicator zone III is the control (ctl) for the detection of antibodies to platelet antigens and contains anti-human IgG / IgM antibodies.
  • Indicator zone LX is the control (ctl) for blood typing and contains polyclonal anti-erythrocyte antibodies. It is located distally to all other indicator zones.
  • FIG. 11 shows, by way of example, a perspective view of a device according to the invention for lateral flow tests with bidirectional flow for the simultaneous determination of blood group determination and serum cross-check.
  • the device consists of a carrier layer 1, a porous membrane 2 a for blood group determination, a membrane 2 b for the serum cross-comparison, a porous membrane 2 b, the Abso ⁇ tions pads 3 a and 3 b, a three-dimensional, executed in trough sealing element 4, and a conjugate pad 6.
  • the porous membranes 2a and 2b are fixed on the support layer 1 provided with a pressure-sensitive acrylate adhesive.
  • the absorption pads 3 a and 3 b are fixed on the carrier layer 1, wherein each part of the Abso ⁇ tions pads 3 a and 3 b overlap with the porous membranes 2 a and 2 b.
  • the sealing element 4 fixed on the upper side of the porous membrane 2 a and 2 b separates the application zones 5 a and 5 b from the remaining membrane surfaces and permits the directed distribution of sample fluid and test reagents into the porous membranes 2 a and 2 b.
  • the indicator zone region 7a blood group determination
  • This is formed from diagonally offset, point-shaped indicator zones I-VI arranged in defined X and Y positions, wherein the indicator zones of the indicator zone area 7a consist of the following binding elements:
  • the indicator zone VI is the control (ctl) for the blood group determination and contains polyclonal anti-erythrocyte Antikö ⁇ er. It is located distally to the indicator zones I-V.
  • the indicator zone region 7b (serum cross-check) is arranged. This is formed from diagonally offset, point-shaped indicator zones VII-IX arranged in defined X and Y positions, the indicator zones of the indicator zone area 7b consisting of the following binding elements: Indicator zone binding element specification
  • FIG. 12 shows an exploded view of the device according to the invention for lateral flow tests with bidirectional flow shown in FIG. 11, which consists of the components carrier layer 1, a porous membrane 2 a for blood group determination, a porous membrane 2 a different Membrane 2b for the serum cross-comparison, the Abso ⁇ tions-Pads 3a and 3b, a three-dimensional, formed in the trough sealing element 4, and a conjugate pad 6 consist.
  • the sample application zone extends over both porous membranes with the sample application zone 5a of the membrane 2a and the sample application zone 5b of the membrane 2b and is separated from the remaining surfaces of the membranes 2a and 2b by the trough-shaped sealing element 4.
  • the membrane 2a contains the indicator zone region 7a with the indicator zones I-VI offset diagonally from the distal to the distal, while the membrane 2b contains the indicator zone region 7b with the spacer zones NII-IX arranged diagonally offset from proximal to distal.
  • Example 1 Simultaneous blood group determination (direct assay) and serum counterpart (direct binding assay)
  • the test strips consist of a task zone, an indicator zone area and an absorption area.
  • Millipore HiFlow Plus 065 membranes are cut into strips of 15 mm x 35 mm (width / length; x / y) and glued to a backing sheet (eg from G & L).
  • a backing sheet eg from G & L.
  • Diagonally offset in the indicator zone area which is divided into the indicator zone areas “serum cross-check" (located proximal to the task zone) and blood group determination (distal to the task zone), 0.2 ⁇ .1 points each of the different binding elements using a dispenser, eg AD3200 (Biodot ):
  • Indicator zone area "serum counterpart" suspensions of erythrocyte ghosts of the specification blood group AI, blood group A2, blood group B and blood group 0 (prepared from erythrocyte concentrates) as well as anti-human IgG / IgM antibodies (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma , 1-3382, 1-0759) as a Control Indicator Zone Area "Blood Grouping" - Anti-A Antibody - Clone Burma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antikö ⁇ er - clone ES-4 (Serologicals, NCA0201); Anti-AB antibodies - clones AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); anti-erythrocyte antibody (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139).
  • the erythrocyte ghosts are prepared as 0.1-0.5% (v / v) suspensions in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol, the anti-human IgG / IgM Antikö ⁇ er as a 1: 1 mixture in concentration of 50 ⁇ g / ml in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol.
  • the membranes are dried after dispensing the binding elements for 20 min at 40 ° C and then stored at constant humidity until the test is carried out.
  • a 15x15 mm Abso ⁇ tions pad (Schleicher & Schull, 300) overlapping with the membrane by 3 mm is glued on.
  • the blood samples used are anticoagulated whole blood.
  • 100 ⁇ l of undiluted or 1: 3 or 1: 6 diluted blood in Dilution Buffer (Elisst ⁇ , Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed) are applied to the application zone.
  • Dilution Buffer Elisst ⁇ , Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed
  • the blood has left the task zone, it is washed twice with 100 ⁇ l of Enlisst ⁇ to remove unbound erythrocytes from the membrane.
  • 50 ⁇ l of anti-IgG / A / M conjugated gold particles (20 to 40 nm, Arista Biologicals, CGIGA-0800, CGIGG-0800, CGIGM-0800), 1:10 (v / v) diluted in TBS, 0.08%.
  • Gelatin 0.5% albumin, applied to the application zone.
  • gold particles it is also possible to use colored, 100 to 400 nm polystyrene particles, for example from Merck Eurolab France / Estapor. If the gold particles have left the application zone, the membrane is washed once or twice with 100 .mu.l Enlisstll. Result:
  • the test strips consist of a task zone, two indicator zone areas on both sides of the task zone and two absorption zones.
  • Millipore HiFlow Plus 065 and HiFlow Plus 140 membranes are cut into strips of 15 mm x 20 mm (width / length; x / y) and bonded side by side to a backing sheet (eg from G & L) ,
  • a conjugate pad in which anti-A anti-B / anti-H conjugated gold particles are dried, is additionally applied so that it lies between the sealing element (adhesive strip) and indicator zones.
  • gold particles it is also possible to use colored, 100 to 400 nm polystyrene particles, for example from Merck Eurolab France Estapor.
  • Diagonally offset in the indicator zone area "blood group determination", which is located on the HiFlow Plus 065 membrane, 0.2 ⁇ l of points of the following binding elements are applied using a dispenser, eg AD3200 (Biodot): Anti-A Antikö ⁇ er - Clone Burma-1 (Serologicals Anti-B Antikö ⁇ er - clone ES-4 (Serologicals, NCA0201); anti-AB Antikö ⁇ er - clones AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); anti-erythrocyte Antikö ⁇ er (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139).
  • a dispenser eg AD3200 (Biodot): Anti-A Antikö ⁇ er - Clone Burma-1 (Serologicals Anti-B Antikö ⁇ er - clone ES-4 (Serologicals, NCA0201); anti-AB Antikö ⁇ er - clones AB6, AB
  • the erythrocyte ghosts are dispensed as 0.1-0.5% (v / v) suspensions in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol.
  • the anti-A antibodies are diluted in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol as follows: anti-A Antikö ⁇ er 1: 3, anti-B Antikö ⁇ er 1: 2 , anti-AB Antikö ⁇ er 1: 4, anti-RBC Antikö ⁇ er 1: 3.
  • the membranes are dried for 20 min at 40 ° C. and then at constant atmospheric humidity until the test preserved.
  • a 15x15 mm Abso ⁇ tions pad (Schleicher & Schull, 300) overlapping with the membrane by 3 mm is glued on.
  • the blood samples used are anticoagulated whole blood.
  • 100 ⁇ l of undiluted or 1: 3 or 1: 6 diluted blood in dilution buffer (Enlistll, Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed) are applied to the application zone.
  • dilution buffer Enlistll, Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed
  • the test strips consist of a task zone, an indicator zone area and an absorption area.
  • Millipore HiFlow Plus 065 membranes are cut into strips of 20 mm x 35 mm (width / length; x / y) and glued to a backing layer (eg from G & L).
  • a backing layer eg from G & L.
  • Diagonally offset in the indicator zone area which is divided into the indicator zone areas “serum counterpart / antibody search” (arranged proximal to the application zone) and "blood group determination” (located distally to the application zone), 0.2 ⁇ l each of the points of the different binding elements using a dispenser, eg AD3200 (Biodot) applied:
  • Indicator zone area "serum counterpart / antibody search” suspensions of erythrocyte ghosts of the specification blood group AI, blood group A2, blood group B, blood group 0, blood group 0 Rh formula RtR 1 (search cell 1), blood group 0 Rh formula R 2 R 2 ( Search cell 2), blood group 0 Rh-formula RiRi (search cell 3), and anti-human IgG / IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, I-3382, 1-0759) as control; indicator zone area "blood group determination” - Anti-A Antikö ⁇ er - Clone Burma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antikö ⁇ er - clone ES-4 (Serologicals, NCA0201); Anti-AB antibodies (clones AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); anti-erythrocyte antibodies (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209
  • the erythrocyte ghosts are prepared as 0J-0.5% (v / v) suspensions in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol, the anti-human IgG / IgM Antikö ⁇ er as a 1: 1 mixture in concentration of 50 ⁇ g / ml in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol.
  • the membranes are dried after dispensing the binding elements for 20 min at 40 ° C and then stored at constant humidity until the test is carried out.
  • a 20x15 mm Abso ⁇ tions pad (Schleicher & Schull, 300) overlapping with the membrane by 3 mm is glued on.
  • Blood samples are anticoagulated whole blood.
  • 120 ⁇ l of undiluted or 1: 3 or 1: 6 diluted blood in dilution buffer (Enlistll, Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed) are applied to the application zone.
  • Enlistll Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed
  • the blood is washed twice with 120 ⁇ l EnlissfH to remove unbound erythrocytes from the membrane.
  • 75 ⁇ l of anti-IgG / A / M conjugated gold particles (20 to 40 nm, Arista Biologicals, CGIGA-0800, CGIGG-0800, CGIGM-0800), 1:10 (v / v) diluted in TBS, 0.08%.
  • Gelatin 0.5% albumin, applied to the application zone.
  • gold particles it is also possible to use colored, 100 to 400 nm polystyrene particles, for example from Merck Eurolab France. ce / Estapor®. Once the gold particles have left the application zone, the membrane is washed once or twice more with 120 ⁇ l EnlisstLI.
  • Controls The test is valid if the anti-RBC control (indicator zone XII, indicator zone area "blood grouping”) shows a clearly positive signal (red dot) and if the anti-IgG / IgM control (indicator zone VIII, indicator zone area) Serum Jacobsprobe / Antikö ⁇ ersuche ”) is characteristic pupurn (gold particles) or colored in the color of the polystyrene particles used.
  • the anti-IgG / IgM control must be stained in any case, so that in a person with blood group AB, which has no irregular antibodies, the staining of this indicator zone in complete absence of other signals in the indicator zone range "serum counterpart / Antikö ⁇ scheuche" Indicator zone IN (erythrocyte ghosts blood group 0) is a negative control for isoagglutinins, staining of this indicator zone means that besides isoagglutinins, irregular antibodies must also be present, ie at least one of the three indicator zones V, VI, VII must also be stained, if this is not the case then the test is invalid.
  • Example 4 Simultaneous blood group determination, serum cross-comparison and antibody test for donors
  • the basic structure of the test strips corresponds to the test strip construction in Example 2.
  • the format of the Millipore HiFlow Plus 065 membrane is 15 mm x 35 mm (width / length; x / y).
  • the indicator zones of the Indicator Zone "Blood Grouping" are the same as Example 2.
  • 0.2 ⁇ l of each of the following binding elements are prepared using a dispenser, e.g. AD3200 (Biodot) dispensed:
  • the erythrocyte ghosts are prepared as 0J-0.5% (v / v) suspensions in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol containing anti-human IgG / IgM antibodies as a 1: 1 mixture in concentrated ration of 50 ⁇ g / m
  • the membranes are dried after dispensing the binding elements for 20 min at 40 ° C and then stored at constant humidity until the test is carried out.
  • a 15x15 mm Abso ⁇ tions pad (Schleicher & Schull, 300) overlapping with the membrane by 3 mm is glued on.
  • test batch corresponds to the batch in Example 1.
  • the anti-IgG / IgM control must be stained in any case, so that in a person with blood group AB, which has no irregular antibodies, the staining of this indicator zone in the complete absence of other signals in the indi- Indicator zone IV (erythrocyte ghosts blood group 0) is a negative control, staining of this indicator zone means that in addition to isoagglutinins, irregular antibodies must also be present, ie at least one of the three indicator zones V, VI, VII must also be stained, if this is not the case the test is invalid.
  • one, two or all three of the indicator zones with the erythrocyte ghosts of the search cells 1, 2 or 3 are stained by the characteristic impurity of the gold particles or are recognizable in the color of the polystyrene particles used.
  • Example 5 Simultaneous blood group determination and detection of infection markers
  • the test strips consist of a task zone, an indicator zone area and an absorption area.
  • Millipore HiFlow Plus 065 membranes are supplied in strips of 15 mm x 35 mm (width / length; x / y) right-hand cut and glued to a carrier layer (backing sheet eg from G & L).
  • a carrier layer backing sheet eg from G & L.
  • Diagonally offset in the indicator zone area which divides into the indicator zone areas "detection of infection markers" (located proximal to the task zone) and "blood group determination” (distal to the application zone), each 0.2 ⁇ l points of the different binding elements using a dispenser, eg AD3200 (Biodot) applied:
  • Indicator zone area "detection of infection markers” solutions of recombinant antigens (syphilis, TpN 15, TpN 17, TpN 47), synthetic peptides from sequences of the glycoproteins gp-14, gp-41 (HJN-1, HTV-O) and gp- 36 (HIV-2), recombinant HCV antigens (C-100, C-200, C33c, C22), monoclonal antibodies (HBsAg) as well as anti-human IgG / IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, 1 -3382, 1-0759) as a Control Indicator Zone Area "Blood Grouping" - Anti-A Antibody - Clone Burma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B antibody - clone ES-4 (Serologicals, ⁇ CA0201); Anti-AB Antibodies - Clones AB6, AB
  • the binding elements of indicator zones IV are incubated in appropriate concentrations in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol, anti-human IgG / IgM Antikö ⁇ er in a concentration of 50 ug / ml in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol dispensed.
  • the dilutions of the Antikö ⁇ er carried out in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol) as follows: anti-A Antikö ⁇ er 1: 3, anti-B Antikö ⁇ er 1: 2, anti-AB Antikö ⁇ er 1: 4, anti-RBC Antikö ⁇ er 1: 3.
  • the membranes are dried after dispensing the binding elements for 20 min at 40 ° C and then stored at constant humidity until the test is carried out.
  • a 15x15 mm Abso ⁇ tions pad (Schleicher & Schull, 300) overlapping with the membrane by 3 mm is glued on.
  • Blood samples are anticoagulated whole blood.
  • 100 ⁇ l of undiluted or 1: 3 or 1: 6 dilution buffer (Elstill, Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed) are applied to the application zone.
  • Whom the blood has left the task zone is washed twice with 100 ⁇ l Enlissffl to wash unbound erythrocytes from the membrane.
  • the test is valid if the anti-RBC control (indicator zone XII, indicator zone area "blood grouping”) shows a clearly positive signal (red dot) and if the anti-IgG / IgM control (indicator zone VI, indicator zone area "detection of infection markers”) characteristically pupurn (gold particle) or colored in the color of the polystyrene particles used. Depending on the presence or absence of the respective blood group antigens, red dots (positive) or the almost white background color of the membrane (negative) appear at the corresponding positions.
  • the basic structure and format of the test strips corresponds to the test strip construction in Example 4.
  • the indicator zone area is subdivided into the indicator zone areas "blood group determination” and “detection of antibodies to platelet antigens”.
  • 0.2 ⁇ l each of the following binding elements are dispensed using a dispenser, eg AD3200 (Biodot): Hidikatorzone Colour "Detection of antibodies against thrombocytic antigens" - membrane proteins of thrombocytes of blood group 0 with distinct HPA antigen profiles such as HPA Ibb3aa5bb and HPA Iaa3bb5aa and anti-human IgG / IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, 1-3382 , 1-0759) as a Control Indicator Zone Area "Blood Grouping" - Anti-A Antibody - Clone Burma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antikö ⁇ er
  • the binding elements of the indicator zones I and II are incubated in appropriate concentrations in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol, the anti-human IgG / IgM antibodies in a concentration of 50 ⁇ g / ml in 15 mM potassium phosphate buffer pH 7.5, 10% (v / v) methanol.
  • the membranes are dried after dispensing the binding elements for 20 min at 40 ° C and then stored at constant humidity until the test is carried out.
  • a 15x15 mm Abso ⁇ tions pad (Schleicher & Schull, 300) overlapping with the membrane by 3 mm is glued on.
  • Blood samples are anticoagulated whole blood.
  • 100 ⁇ l of undiluted or 1: 3 or 1: 6 dilution buffer (Elstill, Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed) are applied to the application zone.
  • dilution buffer Elstill, Medion Diagnostics or Diluent 1, DiaMed
  • the blood leaves the task zone wash twice with 100 ⁇ l of Enliss® to wash unbound erythrocytes from the membrane.
  • the test is valid if the anti-RBC control (indicator zone IX, indicator zone area "blood grouping”) shows a clearly positive signal (red dot) and if the anti-IgG / IgM control (indicator zone III, indicator zone area "detection of antibodies to platelet Antigens ”) is characteristic pupurn (gold particles) or colored in the color of the polystyrene particles used. Depending on the presence or absence of the respective blood group antigens, red dots (positive) or the almost white background color of the membrane (negative) appear at the corresponding positions. In the presence of Antikö ⁇ ern against platelet antigens, the respective position is stained by the characteristic of gold particles Pu ⁇ ur and recognizable as pu ⁇ urmaschinee spots. When polystyrene particles as indicator particles are used, the respective position in the color of the polystyrene particles used is colored.

Abstract

Die Erfindung betrifft eine Vorrichtung zum gleichzeitigen, qualitativen oder quantitativen Bestimmen mehrerer Analyten in einer flüssigen Probe, umfassend eine Membran (2) mit einer Aufgabezone (5) zum Auftragen der flüssigen Probe, mindestens zwei Indikatorzonen, die mit dem/den Analyten in Wechselwirkung treten können und mindestens einem Absorptionsbereich (3), welcher die Flüssigkeit nach Passieren der Indikatorzonen aufnimmt, wobei die Indikatorzonen zwischen der Aufgabezone (5) und einem Absorptionsbereich (3) liegen, dadurch gekennzeichnet, dass die Fliessrichtungen von der Aufgabezone (5) durch die jeweiligen Indikatorzonen zu einem Absorptionsbereich (3) (Fliessspuren) im Wesentlichen parallel sind und mindestens zwei unterschiedliche Fliessspuren vorliegen. Desweiteren betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Bestimmung mehrer Analyten oder deren Derivate in einer flüssigen Probe, umfassend: das Auftragen der Probe auf die Aufgabenzone (5) einer Membran (2) der Vorrichtung nach einem der vorangegangenen Ansprüche 1 bis 8, wobei diese Probe in ausreichender Menge vorliegt, um die Probenflüssigkeit dazu zu veranlassen, in Richtung Absorptionsbereich (3) durch die Indikatorzonen zu fliessen und um die Analyten oder ihre Derivate in der Probenflüssigkeit dazu zu veranlassen, in den Indikatorzonen einen Komplex zu bilden.

Description

Vorrichtung und Verfahren zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung- Serumgegenprobe und Antikörpersuch-Test
Die Erfindung betrifft eine Vorrichtung für Lateral-Diagonal-Fluss Multiparame- ter Tests, insbesondere auf den Gebieten der jjmmunhämatologie und der Infekti- onsserologie, zum gleichzeitigen, qualitativen oder quantitativen Bestimmen mehrerer Analyten in einer flüssigen Probe, umfassend mindestens eine Membran mit einer Aufgabezone zum Auftragen der flüssigen Probe, mindestens zwei Indikatorzonen, die mit dem/den Analyten in Wechselwirkung treten können und mindestens einem Absorptionsbereich, welcher die Flüssigkeit nach Passieren der Indikatorzonen aufnimmt, wobei die Indikatorzonen zwischen der Aufgabezone und dem Absorptionsbereich liegen, dadurch gekennzeichnet, dass die Fließrichtungen von der Aufgabezone durch die jeweiligen Indikatorzonen zum Absorptionsbereich (Fließspuren) im Wesentlichen parallel sind und mindestens zwei unterschiedliche Fließspuren vorliegen.
Die Erfindung betrifft weiter ein Verfahren zur Bestimmung mehrerer Analyten in einer flüssigen Probe, umfassend das Auftragen der Probe auf die Aufgabezone einer Membran der erfindungsgemäßen Vorrichtung, wobei diese Probe in ausreichender Menge vorliegt, um die Probenflussigkeit dazu zu veranlassen, in Rich- tung Absorptionsbereich durch die Indikatorzonen zu fließen und um die Analyten oder ihre Derivate in der Probenflussigkeit dazu zu veranlassen, in den Indikatorzonen einen Komplex zu bilden, insbesondere zur simultanen Bestimmung von zellulären und plasmatischen Parametern, vorzugsweise zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antikörper- such-Test sowie zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Bestimmung transfusionsrelevanter infektionsserologischer Marker sowie zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Bestimmung von Antikörpern, die gegen andere Blutzellen als Erythrozyten gerichtet sind, insbe- sondere anti-Thrombozyten und anti-Lymphozyten Antikörper.
Um Komplikationsrisiken z. B. bei einer Transfusion, insbesondere Blutgruppenunverträglichkeiten, viralen und/oder bakteriellen Kontaminationen, vorzubeugen, werden bekanntermaßen verschiedene Labortests am Spender- und Patien- tenblut vorgenommen zur Bereitstellung von Komponenten, die mit dem Rezi- pienten blutgruppenserologisch kompatibel sind und frei von bekannten übertragbaren Pathogenen sind. Die jeweiligen serologischen Tests beinhalten in der Regel die Blutgruppenbestimmung beim Spender und Empfänger, insbesondere von Blutgruppen der Blutgruppensysteme ABO, Rh und Kell, Serumgegenprobe beim Spender und Empfänger, Antikörpersuche nach irregulären Antikörpern, beim Spender und Empfänger sowie Antikörperidentifizierung beim Empfänger bei Vorliegen irregulärer Antikörper. Der Nachweis von Antikörpern gegen Thrombozyten und/oder Lymphozyten wird im Zusammenhang mit Transfusionen und Transplantationen ebenfalls durchgeführt. Infektionsserologische Tests am Spender umfassen bekanntermaßen die routinemäßige Bestimmung von Antikörpern insbesondere gegen HIV-1, HTV-2, gegen HCV, gegen Treponema pallidum (Syphilis), sowie die Bestimmung des Hepatitis B Oberflächen-Antigens (= HbsAg: Hepatitis surface Antigen).
In der blutgruppenserologischen Diagnostik werden allgemein Parameter nachgewiesen, die besonders im Zusammenhang mit Transfusionen bzw. dem Morbus Hämolyticus Neonatorum (Mhn) von Bedeutung sind. Dabei handelt es sich unter anderem um den Nachweis von Antigenen auf der Oberfläche der Erythrozyten, die für die Blutgruppen charakteristisch sind (Blutgrappenbestimmung). Weitere wichtige Antigensysteme befinden sich auch auf Thrombozyten, Granulozyten, Lymphozyten, die ebenfalls bei Transfusion und Transplantation eine Rolle spielen. Bei Thrombozyten-und Granulozyten-Antigenungleichheit zwischen Mutter und Fötus kann es zu Mhn vergleichbaren Krankheitsbildern am Neugeborenen kommen. Ferner handelt es sich um den Nachweis von regulären Blutgruppen- Antikörpern (Isoagglutinine) und um den Nachweis von irregulären Blutgruppen- Antikörpern im Serum oder Plasma.
Die Isoagglutinine oder regulären Antikörper werden von allen Menschen frühzeitig nach der Geburt erworben und korrespondieren zur jeweiligen Blut- gruppe des ABO-Systems. Sie sind gegen diejenigen Blutgruppenantigene A bzw. B, die dem Individuum selbst fehlen, gerichtet, d. h. Personen mit Blutgruppe A haben anti-B, Personen mit Blutgruppe B haben anti-A, Personen mit Blutgruppe 0 haben anti-A und anti-B; Personen mit Blutgruppe AB haben keine Isoagglutinine. Die regulären Antikörper werden auch „komplett" genannt, weil sie E- rythrozyten im NaCl-Milieu direkt agglutinieren können.
Die irregulären- oder Alloantikörper werden im Gegensatz zu den Isoagglutini- nen durch spätere Immunisierungen erworben, v. a. durch Transfusion oder Schwangerschaft. Deshalb haben die meisten Menschen keine irregulären Blutgruppenantikörper. Die transfusionsrelevanten irregulären Antikörper sind in der Regel wärmereaktiv und gehören überwiegend der IgG-Klasse an. Sie sind im Gegensatz zu den regulären Antikörpern im NaCl-Milieu nicht in der Lage, E- rythrozyten direkt zu agglutinieren.
Bekanntermaßen werden zur Blutgruppenbestimmung die Erythrozyten der zu testenden Person (Spender oder Empfänger) mit Reagenzien, welche blutgruppenspezifische Antikörper enthalten, zusammengebracht. Üblicherweise handelt es sich um Flüssigkeitstests, bei denen durch Mischen einer Erythrozyten-haltigen Probe mit einer Probe, welche Antikörper enthält, die gegen ein bestimmtes Blutgruppenmerkmal gerichtet sind, ein Testansatz hergestellt wird. Der Testansatz wird dann über einen definierten Zeitraum und unter definierten Bedingungen inkubiert und nach Abschluss der Inkubation oder direkt oder nach einem Zentri- fugationsschritt entweder visuell oder mit optischen Methoden auf eine eventuelle Agglutination oder Adsorption der Erythrozyten überprüft. Die vorherrschende Endpunktmessung in der Blutgruppenserologie ist nach wie vor die Hämaggluti- nation. Für jede zu bestimmende Blutgruppe muss ein eigener Ansatz pipettiert werden, d. h. z. B. die Bestimmung der 9 wichtigsten Blutgruppen A, B, D, C, c, E, e, Cw und K erfordert ohne Kontrolle 9 getrennte Ansätze.
Für die Serumgegenprobe werden bekanntermaßen Zellreagenzien mit bekannter ABO-Blutgruppe (AI, A2, B, 0) verwendet, welche mit dem Serum oder Plasma der zu testenden Person inkubiert werden. Nach einem Zentrifugationsschritt wird visuell bzw. mit optischen Methoden auf eine eventuelle Agglutination der E- rythrozyten hin überprüft. Für eine Serumgegenprobe mit den 4 genannten Testzellen müssen herkömmlicherweise 4 Ansätze pipettiert werden.
Für die Suche nach irregulären Antikörpern werden bekanntermaßen Panel bestehend aus normalerweise 2 oder 3 Blutgruppe 0-Zellen verwendet, deren kombiniertes Antigenprofil die wichtigsten Antigene, insbesondere der Blutgruppensysteme Rh- Kell, Duffy, Kidd, MNS, P, Lewis, Lutheran enthält. Das Zellreagenz wird mit dem Serum oder Plasma der zu testenden Person zusammenge- bracht, inkubiert und nach einem Zentrifugationsschritt visuell bzw. mit optischen Methoden auf eine eventuelle Agglutination der Erythrozyten überprüft. Für die Bestimmung einer Patientenprobe müssen 2 bis 3 Ansätze pipettiert werden.
Für die Identifikation der irregulären Antikörper, die in der Regel nach einem positiven Antikörper-Suchtest erfolgt, werden Panel bestehend aus bis zu 16 Blutgruppe 0-Zellen verwendet, deren Antigenprofile die wichtigsten Antigene, insbesondere der Blutgruppensysteme Rh, Kell, Duffy, Kidd, MNS, P, Lewis, Lutheran, in genau abgestimmter Weise abdecken. Das Zellreagenz wird mit dem Serum oder Plasma der zu testenden Person zusammengebracht, inkubiert und visu- eil bzw. mit optischen Methoden auf eine eventuelle Agglutination der Erythro- zyten überprüft. Für die Bestimmung einer Patientenprobe müssen bis zu 16 Ansätze pipettiert werden.
Da die meisten transfusionsrelevanten irregulären Antikörper vom IgG-Typ und deshalb inkomplett sind, müssen die für die Antikörpersuche und-identifikation beschriebenen Reaktionen in der Regel verstärkt werden, um den Endpunkt Hä- magglutination nachweisen zu können. Gebräuchlichstes Reagenz ist hierbei ein polyklonales anti-Humanglobulin-Antikörperreagenz, dem häufig antiKomplement Antikörper zugesetzt sind (typischerweise anti-C3d und/oder anti- C3b).
Eine gebräuchliche Methode zum Nachweis von Thrombozyten-Antikörpern ist der sogenannte MAIPA-Test (Monoclonal Antibody Immobilisation of Platelet Antigens). Hierbei werden Test-Thrombozyten mit dem zu testenden Serum inkubiert. Nach einem Waschschritt wird mit einem monoklonalen z. B. Maus- Antikörper, der für ein bestimmtes Thrombozyten-Glykoprotein spezifisch ist, inkubiert. Die Thrombozyten werden daraufhin lysiert und das verdünnte Lysat wird in ein mit z. B. Ziege anti-Maus Antikörpern beschichtetes Reaktionsgefäss einer Mikrotiterplatte gegeben. Der Ziege anti-Maus Antikörper bindet den Maus- Antikörper und den daran befindlichen Thrombozytenglykoprotein- Humanantikörper-Komplex. Der humane Antikörper wird durch Zugabe eines Enzym konjugierten Ziege anti-human IgG nachgewiesen.
Mit herkömmlichen diagnostischen Tests können nur entweder zelluläre oder plasmatische Parameter bestimmt werden. Zur Bestimmung von Blutbestandteilen müssen grundsätzlich zuvor Zellen und Plasma getrennt werden.
Lateral-Fluss-Tests finden heute vielfach Anwendung als Schnelltests, z. B. als Schwangerschaftstests, zur Bestimmung von Infektionsmarkern oder als Drogen- screen. Eine Lateral-Fluss-Test Anordnung besteht bekanntermaßen aus einem festen Träger, auf dem eine Aufgabezone für die zu untersuchende Probe aufgebracht ist, eine Trennmembran, auf der Bindungselemente, z. B. Fängerantikörper bzw. -antigene gebunden sind und auf der sich Bindungsreaktionen nachweisen lassen und ein saugfähiger Absorptionsbereich, der die zu untersuchende Probe linear durch die Trennmembran fließen lässt.
Testmembranen herkömmlicher Lateral-Fluss-Tests werden in der Regel mit chromatographie-ähnlicher Auftrennung beschrieben. Der Analyt in der Probe bindet spezifisch an die in einer Membran befestigten Bindungselemente, die in der Regel in hintereinanderliegenden bzw. übereinanderstehenden Banden angeordnet als Indikatorzonen vorliegen. Der Bindungskomplex wird durch Indikatorpartikel sichtbar gemacht, welche in der Regel in einem Konjugat-Freisetzungs- Pad eingetrocknet in der Anordnung bereits vorliegen. Das Konjugat- Freisetzungs-Pad ist zwischen Aufgabezone und Membran angebracht. Die vorbeschichteten farbigen Indikatorpartikel sind beispielsweise mit einem gegen den gesuchten Analyten gerichteten Antikörper beschichtet.
Das übliche Lateral-Fluss-Test-Format ist das eines sogenannten „Sandwich- Assays", bei dem sowohl die Indikatorzone als auch die Indikatorpartikel mit gegen den gesuchten Analyten gerichteten Liganden, normalerweise ein Antikörpern, belegt sind. Dabei ist der Ligand (Bindungselement) an die Membran immobilisiert. Das Detektor-Reagenz, normalerweise ein Antikörper, welcher an gefärbte Polystyrol-Partikel oder kolloidale Metalle gebunden ist, ist im Konjugat- Freisetzungs-Pad auswaschbar deponiert. Dieser Bindungskomplex dient als Indikatorpartikel. Nach Auftragen der zu untersuchenden Probe benetzt diese sehr schnell das Konjugat-Freisetzungs-Pad, wodurch die Indikatorpartikel mobilisiert werden. Die Indikatorpartikel migrieren mit der Flüssigkeitsfront entlang der porösen Membran. Ein in der Probe befindlicher Analyt wird durch den Antikörper, der an das Indikatorpartikel gekoppelt ist, gebunden. Wenn die Probe die Indikatorzone passiert, wird der Analyt/Indikato artikel-Komplex in der Indikatorzone durch Reaktion des Analyten mit dem in der Indikatorzone gebundenen Antikörper immobilisiert, was zu einem sichtbaren Signal führt.
Ein weiteres bekanntes Testformat für kleine Analyten mit nur einer einzigen an- tigenen Determinante, die nicht gleichzeitig zwei Antikörper binden kann, ist der sogenannte „Kompetitions-Assay". Das an die Indikatorpartikel gebundene Detektor-Reagenz ist normalerweise ein dem Analyten identisches oder analoges Molekül. Die Indikatorpartikel sind im Konjugat-Freisetzungs-Pad deponiert. Die Indikatorpartikel migrieren mit der Flüssigkeitsfront entlang der porösen Mem- bran. Wenn die Probe, die Analyt enthält, und die Indikatorpartikel (die effektiv ebenfalls Analyt enthalten) die Indikatorzone passieren, bindet ein Teil der Ana- lytmoleküle in der Probe und ein Teil der Indikatorpartikel. Je mehr Analyt sich in der Probe befindet, umso effektiver wird er mit der Bindung der Indikatorpartikel kompetieren, umso schwächer wird das Signal.
Bekanntermaßen sind diese Indikatorpartikel überwiegend aus kolloidalem Gold oder aus Polystyrol, die mit dem Fachmann bekannten Methoden hergestellt und beschichtet werden. In den typischen Lateral-Fluss-Tests Formaten werden die Analyten indirekt bestimmt. Unter direkter Bestimmung eines Analyten wird hier verstanden, dass der Analyt bereits an das Indikatorpartikel (z. B. Erythrozyt) natürlich gebunden ist. In dem gebräuchlicheren Fall der indirekten Bestimmung des Analyten enthält die zu testende Probe in der Regel eine nicht zellulär gebundene, z. B. plasmatische Komponente als Analyten und es werden neben der zu testenden Probe zwei Reagenz-Komponenten benötigt, nämlich Indikatorpartikel und Bindungselement. Bei der indirekten Bestimmung bindet der Analyt zunächst an die aus dem Konjugat-Freisetzungs-Pad herausgelösten Indikator-Partikel, bevor dieser Komplex dann durch eine zweite Reaktion mit dem Bindungselement in den Indikatorzonen immobilisiert wird.
Bei der Verwendung herkömmlicher Lateral-Fluss-Tests mit Erythrozyten als Indikatorpartikeln, die die zu bestimmenden Analyten, beispielsweise Blutgruppen-spezifische Antigene, gebunden haben, werden bislang in den Indikatorzonen Antikörper gegen korrespondierende Blutgruppenantigene als Bindungselemente in hintereinanderliegenden bzw. übereinanderstehenden Banden nur einer Fließspur angeordnet, wie zum Beispiel anti-A, anti-B gegen die Blutgrup- pen-Antigene A bzw. B oder Antikörper gegen Antigene des Rh Blutgruppensystems. Dabei weisen herkömmliche Lateral-Fluss-Tests den Nachteil auf, dass die an die Antikörper gebundenen Erythrozyten eine Flussbarriere für die weiter zu untersuchenden Analyte, beispielsweise weitere Zell-assoziierte Antigene, in einer Probe bilden. Durch Agglutination oder Adsorption von Zellen in einer proximal zur Aufgabezone liegenden Bande von Bindungselementen können sich weitere Analyten, insbesondere Zellen bzw. Zellfragmente, in der zu untersuchenden Probe nicht weiter ungehemmt und sichtbar auftrennen und können folglich nicht eindeutig bzw. vollständig nachgewiesen werden. Dies kann z. B. bei einer Per- son, die Blutgruppe AB Rh D positiv ist, zu einer Abschwächung bzw. Eliminierung der B- und der D-Bande führen, was zu einer Fehlinterpretation im Sinne von Blutgruppe A Rh negativ führen könnte. Bislang konnten deshalb speziell in der blutgruppenserologischen Diagnostik keine Lateral-Fluss-Test mit mehr als einer Indikatorzone angewendet werden. Für die Messung mehrerer, insbesondere zellulärer und plasmatischer Blutgruppenparameter müssen bislang Einzelparameter-Tests separat durchgeführt werden.
Aufgabe der Erfindung ist es, die im Hinblick auf den Stand der Technik angeführten Nachteile, insbesondere die der hintereinanderliegenden bzw. überlagern- den Indikator- bzw. Nachweiszonen herkömmlicher Lateral-Fluss-Tests, für eine gleichzeitige Messung verschiedener Proben-Parameter, insbesondere von zellulären und plasmatischen Parametern, zu überwinden.
Die Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst zum einen durch eine Vorrichtung zum gleichzeitigen, qualitativen oder quantitativen Bestimmen eines oder mehrerer Analyten in einer flüssigen Probe oder mehrerer flüssiger Proben, die mindestens eine Membran umfasst mit einer Aufgabezone zum Auftragen der flüssigen Probe, mindestens eine Gruppe von mindestens zwei Indikatorzonen, die mit den/dem Analyten bzw. mit denen Analyten in Wechselwirkung treten können und einem Absorptionsbereich, welcher die Flüssigkeit nach Passieren der Indi- katorzonen aufnimmt, wobei die Indikatorzonen zwischen der Aufgabezone und dem Absorptionsbereich liegen, dadurch gekennzeichnet, dass die Fließrichtungen von der Aufgabezone durch die jeweiligen tndikatorzonen einer Gruppe zu einem Absorptionsbereich, welche Fließspuren darstellen, im Wesentlichen parallel sind und mindestens zwei unterschiedliche Fließspuren vorliegen.
Die Indikatorzonen der erfindungsgemäßen Vorrichtung befinden sich auf der Membran und umfassen Bindungselemente, die die zu bestimmenden Analyte in der Probe abfangen bzw. binden. In den Indikatorzonen werden die Bindungsre- aktionen zwischen Analyt und Bindungselement nachgewiesen. Als besonders bevorzugte Bindungselemente werden Antikörper bzw. Antikörperfragmente, Lektine, Antigene bzw. Antigen-Epitope und oder Zellen bzw. Zellfragmente an der porösen Membran angebracht. Die Indikatorzonen umfassen vorzugsweise jeweils ein Bindungselement gegen einen zu untersuchenden Analyten.
In einer Ausführungsform der Erfindung sind die lhdikatorzonen so angeordnet, dass die Probenflussigkeit pro Fließspur nicht mehr als eine Indikatorzone durchströmt. Beispielhaft sind die Indikatorzonen versetzt auf der Membran angeordnet. Die Anordnung der Indikatorzonen ist dabei vorzugsweise in einer von proximal nach distal oder umgekehrt diagonal verlaufenden Reihe ausgestaltet. Besondere Ausführungsformen sind V-förmig, W-, M-, oder N-förmig oder umgekehrt V-förmig, W-, M-, oder N-förmig ausgestaltet. In einer weiteren Ausführungsform sind die Indikatorzonen parallel nebeneinander versetzt in einer linearen Reihe angeordnet. Die Einführung versetzter lhdikatorzonen macht eine Multiparametertestung mit Erythrozyten als Indikatorpartikeln in einer lateralen Anordnung erst möglich. Die besonders bevorzugte Ausführungsform einer diagonalen Anordnung hat den Vorteil, dass die Bezeichnung der Ergebnisse besonders praktisch und leicht ablesbar auf die erfindungsgemäße Anordnung aufgebracht werden kann, da jeder nachzuweisende Parameter eine definierte X- und Y-Position aufweist, betrachtet man die Anordnung der erfindungsgemäßen Vorrichtung als ein Koordinatensys- tem mit Ordinate (Ebene der Fließrichtung) und Abszisse (Ebene der Auftragszone).
In einer weiteren Ausführungsform der Erfindung sind mehr als eine solche Reihe von Indikatorzonen, vorzugsweise jeweils von proximal nach distal oder umgekehrt diagonal verlaufend, oder beispielsweise auch V-förmig, W-, M-, oder N-förmig oder umgekehrt V-förmig, W-, M-, oder N-förmig verlaufend, in Fließrichtung hintereinander und/oder seitlich versetzt angeordnet und die Indikatorzonen der verschiedenen Reihen entweder zueinander auf Lücke angeordnet, so dass die Probenflussigkeit pro Fließspur nicht mehr als eine Indikatorzone durchströmt, oder zueinander nicht auf Lücke angeordnet, so dass die Probenflussigkeit pro Fließspur mehr als eine Indikatorzone durchströmt. Mehr als eine solche Reihe von lhdikatorzonen, beispielsweise zwei Reihen von Indikatorzonen, mit unterschiedlicher Distanz zur Aufgabezone sind insbesondere dann vorteilhaft, wenn aus einer Vollblutprobe zelluläre und plasmatische Parameter bestimmt werden sollen. In einer Ausführungsform, beispielhaft in einem Testansatz mit Vollblut als Probe, werden die Bindungselemente so gewählt, dass die im Plasma enthaltenen Analyten, zum Beispiel jede Art von Antikörpern, die durch die Vorrichtung von der Aufgabezone zum Absorptionsbereich durch die Indikatorzonen fließen, in der proximal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von Indikatorzonen an die Bindungselemente binden. Die Bindungselemente zum Nachweis der zellulär gebundenen Analyten, beispielsweise erythrozytäre Antigene, werden dagegen so gewählt, dass diese in der distal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von Indikatorzonen an die Bindungselemente binden. Bei dieser bevorzugten Ausfuhrungsform wird vorzugsweise mit einer zusätzlich zu den E- rythrozyten weiteren Sorte von Indikatorpartikeln, vorzugsweise aus kolloidalem Gold oder Polystyrol oder fixierten Erythrozyten, gearbeitet. Diese Indikatorpartikel werden insbesondere eingesetzt, um nicht erythrozytär gebundene Analyten, beispielsweise frei im Plasma vorkommende Antikörper, im Bindungskomplex in einer Indikatorzone sichtbar zu machen. Werden beispielhaft zwei Arten von Indikatorpartikeln verwendet, wovon eine nicht Erythrozyten sind, können die Indi- katorzonen der beiden Reihen zueinander nicht auf Lücke bzw. in einer Fließspur hintereinander angeordnet sein. Vorteilhaft ist hierbei die Anordnung, bei der die aus dem Plasma nachgewiesenen Analyten in den proximalen Indikatorzonen nachgewiesen werden und bei der die Erythrozyten-gebundenen Analyten in den distalen lhdikatorzonen nachgewiesen werden. Eine Ausführungsform der Erfindung mit mehr als einer, wie vorbeschriebenen Reihe von lhdikatorzonen, von denen die Bindungselemente jeder Reihe mit Erythrozyten als Indikatorpartikel reagieren bzw. binden, sind die Reihen von Indikatorzonen zueinander auf Lücke bzw. in einer Fließspur nicht hintereinander angeordnet.
In einer weiteren und besonders bevorzugten Ausführungsform der Erfindung sind mehr als eine solche Reihe von Indikatorzonen, vorzugsweise in einer von proximal nach distal oder umgekehrt diagonal verlaufenden Reihe, oder beispielsweise in einer V-förmig, W-, M-, oder N-förmig oder umgekehrt V-förmig, W-, M-, oder N-förmig verlaufenden Reihe, oder beispielsweise auch in einer parallel nebeneinander versetzt verlaufenden Reihe, bidirektional (z. B. zu einem 180° Winkel) zu einer zentralen Aufgabezone angeordnet. Eine solche Anordnung ist insbesondere dann vorteilhaft, wenn aus einer Vollblutprobe zelluläre und plasmatische Parameter bestimmt werden sollen. In einer Ausführungsform, beispielhaft in einem Testansatz mit Vollblut als Probe, werden die Bindungselemente so gewählt, dass die im Plasma enthaltenen Analyten, zum Beispiel jede Art von Antikörpern, die durch die Vorrichtung von der Aufgabezone zum Absorptionsbereich durch die Indikatorzonen fließen, in der auf der einen Seite zur Aufgabezone angeordneten Reihe von Indikatorzonen an die Bindungselemente binden. Die Bindungselemente zum Nachweis der zellulär gebundenen Analyten, beispielsweise erythrozytäre Antigene, werden dagegen so gewählt, dass diese in der auf der gegenüberliegenden Seite zur Aufgabezone angeordneten Reihe von lhdikatorzonen an die Bindungselemente binden. Bei dieser bevorzugten Ausführungsform wird vorzugsweise mit einer zusätzlich zu den E- rythrozyten weiteren Sorte von Indikatorpartikeln, vorzugsweise aus kolloidalem Gold oder Polystyrol, gearbeitet. Diese Indikatorpartikel werden insbesondere eingesetzt, um nicht erythrozytär gebundene Analyten, beispielsweise frei im Plasma vorkommende Antikörper, im Bindungskomplex in einer Indikatorzone sichtbar zu machen. In einer bevorzugten Ausführungsform umfasst die eine Aufgabezone ferner zwei verschiedene Membranen unterschiedlicher Porosität. Bei dieser bevorzugten Ausführungsform wird vorzugsweise mit einer zusätzlich zu den Erythrozyten weiteren Sorte von Indikatorpartikeln, vorzugsweise aus kolloidalem Gold oder Polystyrol, gearbeitet. Diese lhdikatorpartikel werden insbesondere eingesetzt, um nicht erythrozytär gebundene Analyten, beispielsweise frei im Plasma vorkommende Antikörper, im Bindungskomplex in einer Indikatorzone sichtbar zu machen.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform umfasst die eine Aufgabezone eine Membran oder zwei verschiedene Membranen unterschiedlicher Porosität. Ferner umfasst eine der beiden Membranen ein Konjugat-Pad, welches zwischen Dichtelement und Indikatorzonen angeordnet ist. Bei dieser bevorzugten Ausführungsform wird vorzugsweise mit einer zusätzlich zu den Erythrozyten weiteren Sorte von Indikatoφartikeln, vorzugsweise aus kolloidalem Gold oder Polystyrol, gearbeitet. Diese Indikatoφartikel werden insbesondere eingesetzt, um nicht e- rythrozytär gebundene Analyten, beispielsweise frei im Plasma vorkommende Antikörper, im Bindungskomplex in einer Indikatorzone sichtbar zu machen. Diese weitere zusätzlich zu den Erythrozyten eingesetzte Sorte von Indikatorpartikeln liegt vorzugsweise in das Konjugat-Pad eingetrocknet vor. Weiterhin sorgt das Konjugat-Pad dafür, dass der Fluss der Erythrozyten verlangsamt wird. Dies führt dazu, dass in der bidirektionalen Anordnung bei einer einzigen gemeinsamen Aufgabezone in der einen Richtung optimierte Bedingungen für den Nachweis zellulärer Eigenschaften und in der anderen Richtung optimierte Bedingungen für den Nachweis plasmatischer Eigenschaften bereitgestellt werden. Durch die erfindungsgemäße Vorrichtung wird ein Lateral-Fluss-Test, insbesondere für die blutgruppenserologische Diagnostik, bereitgestellt, mit dem Erythrozyten als Indikatorpartikel verwendet werden und in einem Testansatz gleichzeitig mehrere zelluläre Parameter, insbesondere erythrozytäre Antigene bzw. Antigen- Epitope, plasmatische Parameter und/oder Blutzelleigenschaften, insbesondere aus Vollblutbestandteilen, pro zu untersuchender Probe bestimmt werden können. Des weiteren wird damit ein möglichst einfach herzustellendes und einfach, insbesondere mit wenigen Versuchsreihen und ohne Probenvorbereitung, zu handha- bendes und kostengünstiges Testsystem bereitgestellt, mit dem gleichzeitig verschiedene zelluläre Parameter und/oder plasmatische Parameter einer Probe oder mehrerer zu untersuchender Proben bestimmt werden können.
Diese Vorteile bietet die erfindungsgemäße Vorrichtung auf jedem medizinischdiagnostischen Gebiet, bei dem gleichzeitig verschiedene zelluläre Parameter und plasmatische Parameter bestimmt werden sollen, insbesondere auch auf dem Gebiet der Blutgruppen- und Infektionsserologie, insbesondere für jegliche Diagnostik im Rahmen der Transfusionsmedizin, z. B. zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung, wobei insbesondere Erythrozyten-gebundene Antigene bzw. Antigen-Epitope bestimmt werden, und Serumgegenprobe, wobei insbeson- dere reguläre Antiköψer (Isoagglutinine) bestimmt werden, und/oder Antikörper- such-Test, wobei insbesondere irreguläre Antikörper bestimmt werden, sowie zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Bestimmung transfusionsrelevanter infektionsserologischer Marker, beispielhaft Antiköφer gegen HΓV-1, HIV-2, HCN, Treponema pallidum, sowie das Oberflächen-Antigen des Hepatitis B Virus (HbsAg), sowie zur simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Bestimmung von Antiköφern gegen andere Blutzellen als Erythrozyten, insbesondere anti-thrombozytäre und anti-lymphozytäre Antikörper.
Hierzu kann antikoaguliertes oder natives Vollblut verwendet werden, bei dem vor der Bestimmung nicht in aufwendiger Weise Erythrozyten und Serum- bzw. Plasma-Fraktion von einander separiert werden müssen. Die Bestimmung kann in einem manuellen Format erfolgen, das komplett ohne Geräte (inklusive elektrischen Strom) auskommt.
In einer bevorzugten Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfassen die Indikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von lhdikatorzonen, Antikörper bzw. Antikörperfragmente bzw. Lektine, die die zu bestimmenden Blutgruppenantigene aller denkbaren Blutgruppensysteme und damit die sie tragenden Zellen in der Probe abfangen bzw. binden. Als bevorzugte Bindungselemente werden Antiköφer bzw. Antikörperfragmente bzw. Lektine gegen Antigene oder Antigen-Epitope, insbesondere der Blutgruppensysteme ABO, Rh und Kell, beispielhaft anti-A, anti-B, anti-D und anti-K, in den Indikatorzonen an der porösen Membran, vorzugsweise in einer distal zu anderen Indikatorzonenreihen angeordneten Reihe, angebracht. Vorzugsweise wird in einer Indikatorzone dieser Reihe von lhdikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zu allen übrigen lhdikatorzonen dieser Reihe gelegenen Indikatorzone, ein Kontroll-Bindungselement (Kontrolle = ctl) angebracht, das den Durchfluss der Probe durch die Indikatorzonen positiv anzeigt. Das Kontroll- Bindungselement ist vorzugsweise ein polyklonaler anti-Erythrozyten- Antiköφer.
Diese bevorzugte Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfasst in einer weiteren, vorzugsweise proximal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von Indikatorzonen Antigene bzw. Antigen-Epitope, die reguläre Antikörper in der Probe abfangen bzw. binden. Als bevorzugte Bindungselemente werden dafür AI, A2, B, 0 Blutgruppenantigene bzw. -antigen-Epitope, beispielsweise Erythrozytenmembranen von Erythrozyten definierter Blutgruppen (AI, A2, B, 0) oder synthetisch hergestellte Blutgruppensubstanzen, an der porösen Membran angebracht. Vorzugsweise wird in einer Indikatorzone dieser Reihe von lhdikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zu allen übrigen lhdikatorzonen dieser Reihe gelegenen Indikatorzone, ein Kontroll-Bindungselement (Kontrolle = ctl) ange- bracht, das den Durchfluss der Probe durch die lhdikatorzonen positiv anzeigt. Das Kontroll-Bindungselement ist vorzugsweise ein anti-IgG Antiköφer.
Diese bevorzugte Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung kann in einer weiteren, vorzugsweise proximal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von lhdikatorzonen Antigene bzw. Antigen-Epitope umfassen, die irreguläre Antikörper bzw. Fragmente davon in der Probe abfangen bzw. binden. Als bevorzugte Bindungselemente werden dafür die Zellmembranen verschiedener Blutgruppe 0 Erythrozyten-Präperationen, deren kombiniertes Antigenprofil diejeni- gen Antigene abdeckt, die gegen die wichtigsten Transfusions-relevanten irregulären Antiköφer gerichtet sind, an der porösen Membran angebracht. Vorzugsweise wird in einer Indikatorzone dieser Reihe von Indikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zu allen übrigen Indikatorzonen dieser Reihe gelegenen Indikatorzone, ein Kontroll-Bindungselement (Kontrolle = ctl) angebracht, das den Durchfluss der Probe durch die lhdikatorzonen positiv anzeigt. Das Kontroll- Bindungselement ist vorzugsweise ein anti-IgG Antiköφer.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfassen die Indikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zur Aufga- bezone angeordneten Reihe von lhdikatorzonen, Antikörper bsw. Antikörperfragmente bzw. Lektine, die die bei der Blutgruppenbestimmung zu bestimmenden Blutgruppenantigene und damit die sie tragenden Zellen in der Probe abfangen bzw. binden. Als bevorzugte Bindungselemente werden Antiköφer bzw. An- tiköφerfragmente bzw. Lektine gegen Antigene oder Antigen-Epitope des AB0- Blutgruppensystems, beispielhaft anti-A, anti-B, anti-A und anti-B, in den Indikatorzonen an der porösen Membran, vorzugsweise in einer distal zur Aufgäbezone und zu anderen Indikatorzonenreihen angeordneten Reihe, angebracht. Vorzugsweise wird in einer Indikatorzone dieser Reihe von lhdikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zu allen übrigen lhdikatorzonen dieser Reihe gelegenen Indikatorzone, ein Kontroll-Bmdungselement (Kontrolle = ctl) angebracht, das den Durchfluss der Probe durch die lhdikatorzonen positiv anzeigt. Das Kontroll- Bindungselement ist vorzugsweise ein polyklonaler anti-Erythrozyten- Antikö er.
Diese bevorzugte Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfasst in einer weiteren, vorzugsweise proximal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von lhdikatorzonen Thrombozyten- und/oder Lymphozytenmembranen bzw. Membranbestandteile als Bindungselemente zum Nachweis von anti- thrombozytären/lymphozytären Antiköφern.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfassen die Indikatorzonen, vorzugsweise in einer distal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von Indikatorzonen, Antikörper bzw. Antikörperfragmente bzw. Lektine, die die bei der Blutgruppenbestimmung zu bestimmen- den Blutgruppenantigene und damit die sie tragenden Zellen in der Probe abfangen bzw. binden. Als bevorzugte Bindungselemente werden Antiköφer bzw. An- tiköφerfragmente bzw. Lektine gegen Antigene oder Antigen-Epitope des AB0- Blutgruppensystems, beispielhaft anti-A, anti-B, anti-A und anti-B, in den lhdikatorzonen an der porösen Membran, vorzugsweise in einer distal zur Aufgabezo- ne und zu anderen Indikatorzonenreihen angeordneten Reihe, angebracht.
Vorzugsweise wird in einer Indikatorzone dieser Reihe von Indikatorzohen, vorzugsweise in einer distal zu allen übrigen lhdikatorzonen dieser Reihe gelegenen Indikatorzone, ein Kontroll-Bindungselement (Kontrolle = ctl) angebracht, das den Durchfluss der Probe durch die lhdikatorzonen positiv anzeigt. Das Kontroll- Bindungselement ist vorzugsweise ein polyklonaler anti-Erythrozyten- Antiköφer.
Diese bevorzugte Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfasst in einer weiteren, vorzugsweise proximal zur Aufgabezone angeordneten Reihe von lhdikatorzonen Bindungselemente zum Nachweis von infektiösen Agenzien, insbesondere synthetisch hergestellte Peptide oder mit rekombinanten DNA- Methoden exprimierte rekombinante Antigene, die diagnostisch bedeutsame Sequenzen von Oberflächenproteinen der jeweiligen Marker umfassen (Antiköφer- Nachweis), oder Antiköφer, welche gegen (Oberflächen-)Proteine infektiöser Agenzien gerichtet sind (Antigen-Nachweis).
Durch die erfindungsgemäße Vorrichtung muss für die gleichzeitige Bestimmung von zellulären und plasmatischen Parametern aus einer Probe nicht mehr für jede einzelne Bestimmung separat pipettiert werden, sondern an einer Probe können gleichzeitig sämtliche gewünschte Parameter bestimmt werden, insbesondere bei der simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuch-Test sowie bei der simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Bestimmung transfusionsrelevanter infektionsserologischer Marker, wobei die Blutgruppenbestimmung mit dem Nachweis jeglicher infektionsserologischer Marker kombiniert werden kann, sowie bei der simultanen Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Bestimmung von Antiköφern gegen andere Blutzellen als Erythrozyten, insbesondere anti-Thrombozyten und anti-Lymphozyten Antiköφer.
Dies stellt eine außerordentliche Rationalisierung der Arbeitsabläufe dar. Neben dem Vorteil der Simultanbestimmung vieler serologischer Parameter ist hier der praktisch vollständige Wegfall der Probenvorbereitung im Vergleich zu herkömmlichen Tests zu nennen. Auch die Ablesung der in diagonaler Anordnung dargestellten Ergebnisse ist wesentlich günstiger. So lassen sich in der erfindungsgemäßen Vorrichtung beispielsweise Blutgruppen-, insbesondere AB0- Eigenschaften und Serumgegenprobe und Antiköφersuch-Test, oder Blutgrap- pen-, insbesondere ABO-Eigenschaften und andere immunhämatologische' Parameter, insbesondere anti-thrombozytäre und/oder anti-lymphozytäre Antiköφer bzw. Fragmente davon, oder Blutgruppen-, insbesondere ABO-Eigenschaften und infektionsserologische Marker, insbesondere Antiköφer gegen bakterielle und/oder virale Agenzien bzw. Fragmente davon oder virale oder bakterielle An- tigene bzw. -Epitope in einer Vorrichtung nebeneinander bestimmen und ablesen. Das zweidimensionale, flächige Ergebnis sowie der stabile Endpunkt der Reaktion begünstigen sowohl die Ablesung mit dem bloßen Auge als auch eine automatisierte Ablesung der Ergebnisse mit gängigen Bildanalyseverfahren, wie z. B. CCD-Kameras. Der Arbeitsaufwand ist vermindert, selbst bei manueller Abar- beitung. Die erfindungsgemäße Vorrichtung führt zudem zu einer Reduktion der Umweltbelastung und zu kostengünstigen Effekten. Selbst in Notsituationen mit Zeitdruck kann in kurzer Zeit in einer einzigen Versuchsanordnung beispielsweise eine komplette ABO-Blutgruppenbestimmung mit Serumgegenprobe und Antikör- persuch-Test nach irregulären Antiköφern durchgeführt werden, beispielsweise eine komplette ABO-Blutgruppenbestimmung mit infektionsserologischen Marker-Bestimmung oder anti-Thrombozyten/Lymphozyten Antiköφer-Bestimmung durchgeführt werden.
Produktionstechnisch hat der Lateral-Diagonal-Fluss- Aufbau wesentliche Vorteile gegenüber dem Stand der Technik, indem es zu einem erheblich geringeren Verbrauch der verwendeten Reagenzien kommt und durch die Bereitstellung einer Vielzahl von Testparametern, welche bisher separat getestet werden müssen, in einer einzigen Vorrichtung.
Durch die erfindungsgemäße Vorrichtung wird ein Lateral-Fluss-Test, insbeson- dere für die immunhämatologische und infektionsserologische Diagnostik, bereitgestellt, mit dem in einem Testansatz gleichzeitig mehrere zelluläre, insbesondere erythrozytäre Antigene bzw. Antigen-Epitope, plasmatische Parameter und/oder Blutzelleigenschaften, insbesondere aus Vollblutbestandteilen, pro zu untersuchender Probe bestimmt werden können, wobei mindestens zwei Sorten von Indi- katoφartikeln, von denen mindestens eine Sorte Erythrozyten sind, verwendet werden. Des weiteren wird damit ein möglichst einfach herzustellendes und einfach, insbesondere mit wenigen Versuchsreihen und ohne Probenvorbereitung, zu handhabendes und kostengünstiges Testsystem bereitgestellt, mit dem gleichzeitig verschiedene zelluläre Parameter und/oder plasmatische Parameter einer Probe, insbesondere Blutgruppenmerkmale, Nachweis regulärer und irregulärer Antikör- per, Antiköφer gegen Thrombozyten und/oder Lymphozyten und/oder infektionsserologischer Marker, insbesondere solcher mit transfusionsmedizinischer Relevanz, bestimmt werden können.
Die Membran der erfmdungsgemäßen Vorrichtung ist eine poröse Membran. Bevorzugte Membran-Materialien sind beispielsweise Nitrozellulose (z. B. UniS- art von Sartorius, HiFlow von Millipore, Whatman, AE99 bzw. FF85/100 von Schleicher & Schnell), Polyethylen (Lateral Flo von Porex Coφoration) oder Nylon (Novylon von CUNO). Vorzugsweise weist die Membran eine möglichst große Porengröße auf, da eine hohe Porosität der Membran das Eindringen insbesondere von zellulären Komponenten der zu bestimmenden Probe, z. B. von E- rythrozyten, in die poröse Struktur begünstigt. Von besonderem Vorteil ist der Einsatz aufnehmender Membranen. Die erfmdungs gemäße Vorrichtung ist jedoch nicht auf diese Eigenschaften beschränkt. Bevorzugt werden alle Membranen mit einer hohen kapillaren Flussrate (Capillary Speed), wobei die kapillare Flussrate die Zeit ist, die eine Farblösung braucht, um 40 mm auf einer gegebenen Membran zurückzulegen. Besonders bevorzugt sind Membranen, deren kapillare Flussrate < 100 ist.
In der bidirektionalen Ausführungsform mit zwei unterschiedlichen Membranen hat die eine Membran vorzugsweise eine hohe kapillare Flussrate, vorzugsweise < 100, die andere Membran vorzugsweise eine geringere kapillare Flussrate, vorzugsweise > 100.
In einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung ist in Fließrichtung hinter der Aufgabezone der erfindungsgemäßen Vorrichtung auf der porösen Membran ein Dichtelement angeordnet. Zur Anwendung kommen zwei- oder dreidimensionale Dichtelemente, die auf der porösen Membran platziert werden und mit denen eine von der übrigen Fläche der porösen Membran separierte Probenauftragszone geschaffen wird. Das Dichtelement hat erfindungsgemäß primär die Wirkung einer Flüssigkeitsbarriere und erlaubt die gerichtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testreagenzien in die poröse Membran. Weiterhin dichtet das Dichtelement erfindungsgemäß die Probenauftragszone ab zur Verhinderung eines unerwünschten Flüssigkeitsübertritts in die anderen Bereiche der Lateral- Fluss-Vorrichtungsanordnung.
Bevorzugte Ausführungsformen des Dichtelementes sind die Steg- oder Trogbzw. Trichter-Form. Die Ausformung des Dichtelementes erfolgt durch Schneideprozesse aus dem zur Herstellung des Dichtelementes verwendeten Material. Im Fall der Trichter- bzw. Trogform erhält das Dichtelement eine innere Öffnung, deren bevorzugte Ausführungsvarianten runde, quadratische oder rechteckige, im Fall der Trichterform sich zur Unterseite (Membrankontaktseite) des Dichtelementes verjüngende Formen sind.
Bevorzugte Materialien für das Dichtelement sind Materialien, die nicht wasser- aufnehmend (hydrophob) sind. In einer besonderen Ausfuhrungsform sind die Materialien einseitig mit einem Klebstofffilm, beispielsweise einem drucksensitiven bzw. selbsthaftenden Acrylafklebstoff, beschichtet. Somit kann das Dichtelement direkt auf die Oberfläche der porösen Membran geklebt werden. Alternativ kann das Dichtelement mit dem Lateral-Fluss-Gehäuse verbunden, beispielsweise verklebt sein, wobei in dieser Ausführungsform das Lateral-Fluss-Gehäuse das Dichtelement auf die Oberfläche der porösen Membran drückt und damit die Funktionen des Dichtelementes erzielt werden.
Bevorzugte Materialien für die Ausbildung von zweidimensionalen Dichtelementen sind jede Form von Klebebändern oder Klebefolien (z. B. Tesa 4124 von Beiersdorf AG, ARcare 7815 von Adhesives Research).
Bevorzugte Materialien für die Ausbildung von dreidimensionalen Dichtelementen sind flexible, geschlossenporige Elastomermaterialien oder flexible Silikonmaterialien mit unterschiedlichen Materialstärken, vorzugsweise 3-5 mm (z. B. Zellkautschuk EPDM140 von Pitzner, Silikonkautschuk oder Vollkautschuk, Härte 40° oder weniger, von Castan). Durch diese erfindungsgemäße Ausgestaltung ist die erfmdungsgemäße Vorrichtung in der Lage, flüssige Proben, die Zellen enthalten, wie beispielsweise Vollblut, aufzunehmen, ohne die Zellen dabei abzufiltern. Weiterhin erlaubt das Dichtelement das Auftragen großer Probenvolumina auf die poröse Membran (Aufgabezone), ohne dass diese überschwemmt wird. Somit unterstützt das Dichtelement die Nutzung der aufnehmenden Eigenschaften der porösen Membran. Weiter garantiert das Dichtelement einen gerichteten Probenfluss. Die erfindungsgemäße Vorrichtung kann jedoch mit oder ohne Dichtelement gut funktionieren.
Für den Absorptionsbereich (Absoφtions-Pad) der erfindungsgemäßen Vorrichtung werden mechanisch stabile Materialien bevorzugt, vorzugsweise mit Wasserabsoφtionskapazitäten von 20-30 g/100 cm2 (z. B. Wicking Papier, Typ 300, Schleicher und Schüll). Der Kontakt zwischen dem Absoφtions-Pad und der Lateral Fluss-Membran der erfmdungsgernäßen Vorrichtung wird durch Andruck und Überlappung mit der porösen Membran hergestellt. Die genaue Positionierung des Absoφtions-Pads auf der Membran wird durch Verkleben des Absoφti- ons-Pads mit der, die Lateral Fluss-Membran tragenden Trägerschicht (backing sheet), erzielt.
Das Konjugat-Pad besteht vorzugsweise aus Glasfaser oder Cellulose und hat vorzugsweise die Eigenschaft, den Fluss nativer Erythrozyten zu verzögern.
In einer weiteren Ausführungsform sind die Komponenten der erf dungsgemä- ßen Vorrichtung zum Zwecke der mechanischen Verstärkung auf eine Unterlage bzw. Trägerschicht aufgebracht. Die erfindungsgemäße Vorrichtung kann jedoch mit oder ohne Trägerschicht funktionieren. Bevorzugt werden mechanisch stabile und nicht wasseraufnehmende Materialien, vorzugsweise mit Materialstärken von 100 μm oder mehr, die ein- oder zweiseitig mit einem Klebstofffilm, z. B. einem drucksensitiven bzw. selbsthaftenden Acrylatklebstoff, beschichtet sind (z.B. 0.005" Polyester W/ GL-187, G & L). Auf der Trägerschicht werden die poröse Membran und das Absoφtions-Pad fixiert. Im Fall der doppelseitig klebenden Trägerschicht wird die klebende zweite Seite zur Fixierung des Stapels auf weiteren Flächen, z. B. innerhalb der Lateral-Fluss-Gehäuse, eingesetzt.
In einer weiteren Ausführungsform ist die erfindungsgemäße Vorrichtung, entweder mit oder ohne Trägerschicht, auf der die Komponenten der erfindungsgemäßen Vorrichtung aufgebracht sind, in einem Gehäuse integriert, wodurch die Membran-Komponenten aneinander gedrückt werden und das Gehäuse die Dicht- elementfunktion unterstützt. Dabei kann die erfindungsgemäße Vorrichtung jedoch mit oder ohne Gehäuse genauso gut funktionieren.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist die Verwendung der erfindungsgemä- ßen Vorrichtung zur Analyse von Blut, insbesondere zur simultanen Durchführung der Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuch-Test und/oder zur simultanen Durchführung der Blutgruppenbestimmung und des Nachweises von Antiköφern gegen infektiöse, insbesondere bakterielle und/oder virale Agenzien bzw. Fragmenten davon oder von Antigenen infektiöser Agenzien und/oder zur simultanen Durchführung der Blutgruppenbestimmung und des Nachweises von Antiköφern gegen andere Blutzellen als Erythrozyten, insbesondere anti-thrombozytärer oder anti-lymphozytärer Antiköφer, bzw. Fragmenten davon.
Die Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst zum anderen durch ein Verfahren zur Bestimmung mehrerer Analyten oder deren Derivaten in einer flüssigen Probe, welches das Auftragen der Probe auf die Aufgabezone einer Membran der erfindungsgemäßen Vorrichtung umfasst, wobei diese Probe in ausreichender Menge vorliegt, um die Probenflussigkeit dazu zu veranlassen, in Richtung Absoφtions- bereich durch die Indikatorzonen zu fließen und um die Analyten oder ihre Deri- vate in der Probenflussigkeit dazu zu veranlassen, an die jeweiligen Indikatorzonen zu binden bzw. in den Indikatorzonen einen Komplex zu bilden.
Eine besondere Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens führt si- multan eine Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuch-Test durch.
Beispielhaft wird Vollblut oder eine Verdünnung davon auf die Aufgabezone der Vorrichtung aufgetragen. Alle Komponenten dringen, geführt durch das Dichtelement, in die poröse Membran ein und passieren bei der Migration in Richtung Absoφtions-Pad zunächst den Indikatorzonenbereich Serumgegenprobe, der Fragmente der Zellen AI, A2, B, 0 umfassen sowie die Kontroll-Indikatorzone mit anti-IgG/IgM. Die im Serum vorhandenen Isoagglutinine binden an die korrespondierenden zellulär gebundenen Antigene. Serum-IgG bindet an das Kon- trollbindungselement (Serumgegenprobe: Sensibilisierung). Die zellulär gebundenen Antigene migrieren weiter in den distal zum Indikatorzonenbereich Serumgegenprobe gelegenen Indikatorzonenberecich Blutgruppenbestimmung, in dem in jeder Indikatorzone ein Antiköφer gegen ein anderes Blutgruppenmerkmal immobilisiert ist (z. B. anti-A, anti-B, anti-AB). Die zur Aufgabezone distalste Indikatorzone dieses Bereiches hat beispielhaft polyklonale anti- Erythrozyten-Antiköφer als Bindungselement. In diesem Indikatorzonenbereich binden die Erythrozyten an die Bindungselemente, die zu den jeweiligen Blutgruppenmerkmalen korrespondieren. An das Kontrollbindeelement binden E- rythrozyten jedweder Blutgruppe (Blutgruppenbestimmung). In einem folgenden Waschschritt wird ungebundenes Material aus der Membran ausgewaschen. Im nachfolgenden Detektionsschritt werden mit Hilfe von synthetischen Partikeln, welche mit anti-IgG IgM beschichtet sind, die an den Bindungselementen der proximalen Reihe von Indikatorzonen immobiliserten Isoagglutinine und Kontrollantiköφer sichtbar gemacht (Serumgegenprobe: Detektion). In einer anderen Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens zur simultanen Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuch- Test werden die Blutgruppenmerkmale wie oben beschrieben direkt bestimmt, hingegen Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuchtest als Kompetitionstest durchgeführt:
Beispielhaft wird Vollblut oder eine Verdünnung davon auf die Aufgabezone der Vorrichtung aufgetragen. Alle Komponenten dringen, geführt durch das Dichtelement, in die poröse Membran ein und passieren bei der Migration in Richtung Absoφtions-Pad zunächst den Indikatorzonenbereich Serumgegenprobe, der Fragmente von Zellen der Blutgruppen A und B umfasst sowie die Kontroll- Indikatorzone, die Fragmente von Zellen der Blutgruppe 0 umfasst. Die im Serum vorhandenen Isoagglutinine binden an die korrespondierenden zellulär gebundenen Antigene. (Serumgegenprobe: Sensibilisierung). Die zellulär gebundenen Antigene migrieren weiter in den distal zum Indikatorzo- nenbereich Serumgegenprobe gelegenen Indikatorzonenbereich Blutgruppenbestimmung, in dem in jeder Indikatorzone ein Antiköφer gegen ein anderes Blutgruppenmerkmal immobilisiert ist (z. B. anti-A, anti-B, anti-D). Die zur Aufgabezone distalste Indikatorzone dieses Bereiches hat beispielhaft polyklonale anti- Erythrozyten- Antiköφer als Bindungselement. In diesem Indikatorzonenbereich binden die Erythrozyten an die Bindungselemente, die zu den jeweiligen Blutgruppenmerkmalen korrespondieren. An das Kontrollbindeelement binden E- rythrozyten jedweder Blutgruppe (Blutgruppenbestimmung). In einem folgenden Waschschritt wird ungebundenes Material aus der Membran ausgewaschen. Im nachfolgenden Schritt wird eine Suspension von unterschiedli- chen synthetischen Partikeln, welche jeweils mit anti-A, anti-B oder anti-H beschichtet sind, auf die Aufgabezone aufgetragen. Die Partikel können jeweils nur an diejenigen Bindungselemente im Indikatorzonenbereich Serumgegenprobe binden, die im Sensibilisierungsschritt nicht mit den Senim-Isoagglutininen in Kontakt gekommen waren, d. h. eine farbige Bande zeigt in diesem Falle die Ab- Wesenheit des entsprechenden Isoagglutinins an. Beispielhaft werden im Falle einer Blutgruppe A (Personen mit Isoagglutininen anti-B) die Zellfragmente der B-Zellen durch die Isoagglutinine blockiert, was dazu führt, dass die Zellfragmente der A-Zellen durch das nachfolgend aufgetragene Gemisch synthetischer Partikel durch die darin vorhandenen anti-A Partikel angefärbt werden. Die Blutgruppe 0 Fragmente werden in allen denkbaren Konstellationen angefärbt, da sie nicht durch Isoagglutinine blockiert werden und dadurch immer frei sind für eine Reaktion mit den gefärbten anti-H Partikeln, wodurch auch in der Variante des Kompetitionsassays ein Kontrollelement bereitgestellt wird (Serumgegenprobe: Detektion).
In einer weiteren Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens zur simultanen Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuch-Test mit direkter Bestimmung der Blutgruppenmerkmale und Bestimmung der Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuchtest als Kompetitionstest wird wie folgt vorgegangen: Vollblut oder eine Verdünnung davon wird auf die asymmetrische Aufgabezone der Vorrichtung mit zwei unterschiedlichen porösen Membranenaufgetragen. Eine poröse Membran weist dabei eine geringere kapillare Flussrate als die andere Membran auf. Bei letzterer ist zwischen dem Dichtelement und den lhdikatorzonen ein Konjugat-Pad, das aufgetrocknete anti-A/anti-B/anti-H-Partikel enthält, auf der Membran aufgebracht. Alle Komponenten dringen, geführt durch das Dichtelement, in beide poröse Membranen ein, was folgende Flussverhalten bewirkt:
„Nur-Membran-Seite": Alle Komponenten passieren bei der Migration in Richtung des dazugehörenden Absoφtions-Pads den Indikatorzonenbereich Blutgrup- penbestimmung, in dem in jeder Indikatorzone ein Antiköφer gegen ein anderes Blutgruppenmerkmal immobilisiert ist (z. B. anti-A, anti-B, anti-D). Die zur Aufgabezone distalste Indikatorzone dieses Bereiches hat beispielhaft polyklonale anti-Erythrozyten-Antiköφer als Bindungselement. In diesem Indikatorzonenbereich binden die Erythrozyten an die Bindungselemente, die zu den jeweiligen Blutgruppenmerkmalen korrespondieren. An das Kontrollbindeelement binden Erythrozyten jedweder Blutgruppe.
„Membran/Konjugat-Pad-Seite": Alle Komponenten kommen nach Eindringen in die Membran und Passieren des Dichtelements mit dem Konjugat-Pad in Kontakt, wobei die zellulären Bestandteile festgehalten bzw. gebremst werden und die flüssigen Komponenten (Plasma) ungehindert weiterfliessen können. Letztere lösen die anti-A/anti-B/anti-H Partikel aus dem Konjugat-Pad. Der Indikatorzonenbereich Serumgegenprobe umfasst Fragmente von Zellen der Blutgruppen A und B sowie als Kontrollelement Fragmente von Zellen der Blutgruppe 0. Die im Serum vorhandenen Isoagglutinine binden an die korrespondierenden zellulär gebundenen Antigene und kompetieren damit um eine Bindung der farbigen anti-A, anti-B Partikel. Das bedeutet, dass die Partikel nur binden können, wenn das jeweilige Isoagglutinin nicht vorhanden ist. Beispielsweise hat eine Blutgruppe A Person anti-B Isoagglutinine, was dazu führt, dass die Blutgruppe-B Fragmente im Indi- katorzonenbereich blockiert werden und nur die Blutgruppe A Fragmente durch die farbigen anti-A Partikel angefärbt werden können. Das Kontrollelement, gegen das keine Isoagglutinine existieren, bleibt damit immer unblockiert und wird durch die in der Partikelmischung des Konjugat-Pads enthaltenen anti-H Partikel als sichtbare Bande angefärbt.
Eine weitere besondere Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens führt simultan eine Blutgruppenbestimmung und eine Bestimmung von anti- Thrombozyten und/oder anti-Lymphozyten Antiköφer bzw. Fragmenten davon durch. Beispielhaft umfassen für die Bestimmung der anti-thrombozytären Antiköφer die Indikatorzonen im zur Aufgabezone proximalen Bereich Thrombozytenfrag- mente als Bindungselemente, an die -falls in der Probe vorhanden- im Serum enthaltene anti-thrombozytäre Antiköφer binden. Das übrige Verfahren ist wie in der vorstehenden Ausfuhrungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens beschrieben, insbesondere erfolgt die Blutgruppenbestimmung wie dort beschrieben. Eine weitere besondere Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens führt simultan eine Blutgruppenbestimmung und eine Bestimmung transfusionsrelevanter infektionsserologischer Marker durch. Beispielhaft umfassen für die Bestimmung von Infektionsmarkern die Indikatorzonen des ersten, proximalen Indikatorzonenbereichs als Bindungselemente synthetische Peptide und/oder rekombinante Proteine, die den Sequenzen von Proteinen viraler oder bakterieller Agenzien entsprechen, (Bestimmung von Antikörpern gegen Infektionsmarker, z. B. anti-HIV-1), sowie Antiköφer, die gegen Proteine von Infektionsmarkern gerichtet sind (Bestimmung von Antigenen, z. B. HbsAg). Im Serum enthaltene Antiköφer bzw. Antigene binden im ersten Schritt an die korrespondierenden Antigene bzw. Antiköφer. Das übrige Verfahren ist wie in der vorstehenden Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens beschrieben, insbesondere erfolgt die Blutgruppenbestimmung wie dort beschrie- ben.
Bei dem erfmdungsgemäßen Verfahren handelt es sich bei den zu bestimmenden Analyten insbesondere um Blutgruppen-Antigene bzw. Antigen-Epitope, vor- zugsweise solche der Blutgruppensysteme ABO, Rh, Kell, um gegen Blutgruppenantigene oder -antigen-Epitope gerichtete Antiköφer bzw. Fragmente davon, vorzugsweise reguläre Antiköφer, irreguläre Antiköφer, um Antiköφer gegen infektiöse Agenzien, um (Oberflächen-)Antigene infektiöser Agenzien und/oder um anti-thrombozytäre oder anti-lymphozytäre Antiköφer bzw. Fragmente davon.
Die zu untersuchende Probe, beispielsweise natives oder antikoaguliertes Vollblut oder Erythrozytenkonzentrate oder verdünnte Erythrozyten-Suspensionen, Blutbestandteile oder Testflüssigkeiten, wie Kontrollserum oder Kontrollzellen, wird auf die Aufgabezone der erfindungsgemäßen Vorrichtung aufgetragen. Die in der Probe enthaltenen Erythrozyten, die den/die Analyten tragen, dienen gleichzeitig als Indikatoφartikel. Es werden insbesondere zwei Gruppen von mdikatoφartikebi verwendet. Die eine wird alleine durch Erythrozyten zum direkten Nachweis von Erythrozyten- gebundenen Analyten repräsentiert. Die andere Gruppe besteht aus Partikeln jeder denkbaren Art und Kombination, mit denen sich Bindungsreaktionen nachweisen lassen, vorzugsweise Partikel aus kolloidalem Gold oder aus Polystyrol oder fixierte Erythrozyten. In einer bevorzugten Ausführungsform werden pro Testlauf verschiedene Indikatoφartikel verwendet, von denen mindestens eine Sorte native Erythrozyten sind.
Im folgenden wird die Erfindung durch Figuren und Beispiele näher erläutert, ohne sie einzuschränken. Es zeigen:
Fig. 1 eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe;
Fig. 2 eine Explosionsdarstellung der in Fig. 1 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests;
Fig. 3 eine perspektivische Darstellung einer erfmdungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe, ausgeführt mit einem dreidimensionalen Dichtelement in Stegform;
Fig. 4 eine Explosionsdarstellung der in Fig. 3 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests; Fig. 5 eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe, ausgeführt mit einem dreidimensionalen Dichtelement in Trogform;
Fig. 6 eine Explosionsdarstellung der in Fig. 5 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests;
Fig. 7 eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung, Serumgegenprobe und Antiköφersuchtest für Empfänger;
Fig. 8 eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung, Serumgegenprobe und Antiköφersuchtest bei Spendern;
Fig. 9 eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbe- Stimmung und dem Nachweis von Infektionsmarkern;
Fig. 10 eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und dem Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene.
Fig. 11 zeigt eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests mit bidirektionalem Fluss für die simultane Bestimmung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe; Fig. 12 zeigt eine Explosionsdarstellung der in Fig. 17 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests.
In Fig. 1 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsge- mäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe gezeigt. Im vorliegenden Beispiel besteht die Vorrichtung aus einer Trägerschicht 1, der porösen Membran 2, dem Absoφtions-Pad 3 und dem zweidimensionalen, in Stegform ausgeführten Dichtelement 4. Dabei ist die poröse Membran 2 auf der mit einem drucksensitiven Acrylatklebstoff versehenen Trägerschicht 1 fixiert. Ebenso ist das Absoφtions- Pad 3 auf der Trägerschicht 1 fixiert, wobei ein Teil des Absoφtions-Pad 3 mit der porösen Membran 2 überlappt. Das auf der Oberseite der porösen Membran 2 fixierte Dichtelement 4 separiert die Aufgabezone 5 von der übrigen Membranfläche und ermöglicht die gerichtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testrea- genzien in die poröse Membran 2. Zwischen der Aufgabezone 5 und dem Bereich der porösen Membran 2, der mit dem Absoφtions-Pad 3 in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 6, angeordnet. Dieser wird aus diagonal versetzten, in definierten X- und Y-Positionen angeordneten, punktförmigen Indikatorzonen I-IX gebildet, wobei die lhdikatorzonen I-V den Indikatorzonenbereich „Serumgegen- probe" und die Indikatorzonen VI-IX den Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" umfassen und aus den folgenden Bindungselementen bestehen:
Indikatorzone Bindungselement Spezifikation
Indikatorzonenbereich: Serumgegenprobe
I Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe AI II Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe A2
HI Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe B
IV Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0
V Antiköφer Anti-human IgG/IgM
Indikatorzonenbereich:Blutgruppenbestimmung
VI Antiköφer Anti-A (monoklonal)
VII Antiköφer Anti-B (monoklonal)
VIII Antiköφer Anti-AB (monoklonal)
IX Antiköφer Anti-Erythrozyten (polyklonal)
Indikatorzone V ist die Kontrolle (ctl) für die Serumgegenprobe und enthält antihuman IgG/IgM Antiköφer. Indikatorzone IX ist die Kontrolle (ctl) für die Blutgruppenbestimmung und enthält polyklonale anti-Erythrozyten Antiköφer. Sie befindet sich distal angeordnet zu allen übrigen lhdikatorzonen. In Fig. 2 wird eine Explosionsdarstellung der in Fig. 1 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests gezeigt, die aus den Komponenten Trägerschicht 1, poröse Membran 2, Absoφtions-Pad 3 und Dichtelement 4 besteht, welches die Aufgabezone 5 von der übrigen Membran separiert, die wiederum den Indikatorzonenbereich 6, bestehend aus den Indikatorzonenbereichen „Se- rumgegenprobe" und „Blutgruppenbestimmung" mit den diagonal versetzt angeordneten Indikatorzonen I-LX enthält.
In Fig. 3 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe gezeigt. Im vorliegenden Beispiel entsprechen die Komponenten der Vorrichtung den Komponenten der in Fig. 1 dargestellten Vorrichtung mit Ausnahme des auf der Oberseite der porösen Membran 2 fixierten, in dreidimensionaler Stegform ausgeführten Dichtelements
4.
In Fig. 4 wird eine Explosionsdarstellung der in Fig. 3 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests mit den Komponenten Trägerschicht 1, poröse Membran 2, Absoφtions-Pad 3 und in dreidimensionaler Stegform ausgeführtes Dichtelement 4 gezeigt, welches die Aufgabezone 5 von der übrigen Membran separiert, die wiederum den Indikatorzonenbereich 6, bestehend aus den Indikatorzonenbereichen „Serumgegenprobe" und „Blutgruppenbestimmung" mit den diagonal versetzt angeordneten Indikatorzonen I-LX enthält.
In Fig. 5 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe gezeigt. Im vorliegenden Beispiel entsprechen die Komponenten der Vorrichtung den Komponenten der in Fig. 1 dargestellten Vorrichtung mit Ausnahme des auf der Oberseite der porösen Membran 2 fixierten, in dreidimensionaler Trogform ausgeführten Dichtelements 4.
In Fig. 6 wird eine Explosionsdarstellung der in Fig. 5 dargestellten erfindungs- gemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests mit den Komponenten Trägerschicht 1, poröse Membran 2, Absoφtions-Pad 3 und in dreidimensionaler Trogform ausgeführtes Dichtelement 4 gezeigt, welches die Aufgabezone 5 von der übrigen Membran separiert, die wiederum den Indikatorzonenbereich 6, bestehend aus den Indikatorzonenbereichen „Serumgegenprobe" und „Blutgruppenbesti - mung" mit den diagonal versetzt angeordneten lhdikatorzonen I-IX enthält. In Fig. 7 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung, Serumgegenprobe und Antiköφersuchtest bei Empfängern gezeigt. Im vorliegenden Beispiel besteht die Vorrichtung aus einer Träger- 5 Schicht 1, der porösen Membran 2, dem Absoφtions-Pad 3 und dem zweidimen- sionalen, in Stegform ausgeführten Dichtelement 4. Dabei ist die poröse Membran 2 auf der mit einem drucksensitiven Acrylatklebstoff versehenen Trägerschicht 1 fixiert. Ebenso ist das Absoφtions-Pad 3 auf der Trägerschicht 1 fixiert, wobei ein Teil des Absoφtions-Pad 3 mit der porösen Membran 2 überlappt. Das auf der 10 Oberseite der porösen Membran 2 fixierte Dichtelement 4 separiert die Aufgabezone 5 von der übrigen Membranfläche und ermöglicht die gerichtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testreagenzien in die poröse Membran 2. Zwischen der Aufgabezone 5 und dem Bereich der porösen Membran 2, der mit dem Absoφti- ons-Pad 3 in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 6 angeordnet. Dieser 15 wird aus diagonal versetzten, in definierten X- und Y-Positionen angeordneten, punktförmigen Indikatorzonen I-XII gebildet, wobei die Indikatorzonen I-VHI den Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe/ Antiköφersuchtest" und die lhdikatorzonen IX-XII den Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" umfassen und aus den folgenden Bindungselementen bestehen:
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Indikatorzone Bindungselement Spezifikation
Indikatorzonenbereich: Serumgegenprobe/Antikörpersuche
I Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe AI
II Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe A2
III Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe B IV Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0
N Erythrozyten-Ghosts Suchzelle 1, Blutgruppe 0, Rh-Formel RιRιW
NI Erythrozyten-Ghosts Suchzelle 2, Blutgruppe 0, Rh-Formel R2R2
VII Erythrozyten-Ghosts Suchzelle 3, Blutgruppe 0, Rh-Formel RiRi
VIII Antiköφer Anti-human IgG/IgM
Indikatorzonenbereich: Blutgruppenbestimmung
IX Antiköφer Anti-A (monoklonal)
X Antiköφer Anti-B (monoklonal)
XI Antiköφer Anti-AB (monoklonal)
XII Antiköφer Anti-Erythrozyten (polyklonal)
Indikatorzone VIII ist die Kontrolle (ctl) für die Serumgegenprobe und Antikörpersuchtest und enthält anti-human IgG/IgM Antiköφer. Indikatorzone XII ist die Kontrolle (ctl) für die Blutgruppenbestimmung und enthält polyklonale anti- Erythrozyten Antiköφer. Sie befindet sich distal angeordnet zu allen übrigen In- 5 dikatorzonen.
In Fig. 8 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung, Serumgegenprobe und Antiköφersuchtest bei Blutspendern gezeigt. Im vorliegenden Beispiel besteht die Vorrichtung aus einer Trä- 10 gerschicht 1, der porösen Membran 2, dem Absoφtions-Pad 3 und dem zweidi- mensionalen, in Stegform ausgeführten Dichtelement 4. Dabei ist die poröse Membran 2 auf der mit einem drucksensitiven Acrylatklebstoff versehenen Trägerschicht 1 fixiert. Ebenso ist das Absoφtions-Pad 3 auf der Trägerschicht 1 fixiert, wobei ein Teil des Absoφtions-Pad 3 mit der porösen Membran 2 über- lappt. Das auf der Oberseite der porösen Membran 2 fixierte Dichtelement 4 separiert die Aufgabezone 5 von der übrigen Membranfläche und ermöglicht die gerichtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testreagenzien in die poröse Membran 2. Zwischen der Aufgabezone 5 und dem Bereich der porösen Membran 5 2, der mit dem Absoφtions-Pad 3 in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 6 angeordnet. Dieser wird aus diagonal versetzten, in definierten X- und Y- Positionen angeordneten, punktförmigen Indikatorzonen I-X gebildet, wobei die Indikatorzonen I-VI den Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe/ Antiköφersuchtest" und die lhdikatorzonen VII-X den Indikatorzonenbereich
10 „Blutgruppenbestimmung" umfassen und aus den folgenden Bindungselementen bestehen:
Indikatorzone Bindungselement Spezifikation
Indikatorzonenbereich: Serumgegenprobe/Antikörpersuche
I Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe AI
11 Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe A2 III Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe B TV Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0
V Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0, Pool der Suchzellen 1, 2, 3 (siehe Beschreibung Fig. 8)
VI Antiköφer Anti-human IgG/IgM Indikatorzonenbereich: Blutgruppenbestimmung
VII Antiköφer Anti-A (monoklonal)
VIII Antiköφer Anti-B (monoklonal) IX Antiköφer Anti-AB (monoklonal)
X Antiköφer Anti-Erythrozyten (polyklonal)
Indikatorzone VI ist die Kontrolle (ctl) für die Serumgegenprobe und Antiköφersuchtest und enthält anti-human IgG/IgM Antiköφer. Indikatorzone X ist die Kontrolle (ctl) für die Blutgruppenbestimmung und enthält polyklonale anti- Erythrozyten Antiköφer. Sie befindet sich distal angeordnet zu allen übrigen In- 5 dikatorzonen.
In Fig. 9 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfmdungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und Nachweis von Infektionsmarkern gezeigt. Im vorliegenden Beispiel besteht die Vorrichtung aus einer Trägerschicht 1, der porösen
10 Membran 2, dem Absoφtions-Pad 3 und dem zweidimensionalen, in Stegform ausgeführten Dichtelement 4. Dabei ist die poröse Membran 2 auf der mit einem drucksensitiven Acrylatklebstoff versehenen Trägerschicht 1 fixiert. Ebenso ist das Absoφtions-Pad 3 auf der Trägerschicht 1 fixiert, wobei ein Teil des Absoφ- tions-Pad 3 mit der porösen Membran 2 überlappt. Das auf der Oberseite der po-
15 rösen Membran 2 fixierte Dichtelement 4 separiert die Aufgabezone 5 von der übrigen Membranfläche und ermöglicht die gerichtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testreagenzien in die poröse Membran 2. Zwischen der Aufgabezone 5 und dem Bereich der porösen Membran 2, der mit dem Absoφtions-Pad 3 in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 6 angeordnet. Dieser wird aus diago-
20 nal versetzten, in definierten X- und Y-Positionen angeordneten, punktförmigen Indikatorzonen I-XII gebildet, wobei die lhdikatorzonen I-VI den Indikatorzonen- bereich „Nachweis von Infektionsmarkern" und die Indikatorzonen VII-XII den Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" umfassen und aus den folgenden Bindungselementen bestehen:
Indikatorzone Bindungselement Spezifikation Indϊkatorzonenbereich: Nachweis von Infektionsmarkern
I Synthetische Peptide HIV-1 (gρ-14, gp-41)
II Synthetische Peptide HIV-2 (gp-36)
III Antiköφer Anti-HBsAg (monoklonal)
TV Rekombinantes Antigen HCV (C-100, C-200, C33c, C22)
V Rekombinantes Antigen Syphilis (TpN 15, TpN 17, TpN 47)
VI Antiköφer Anti-human IgG/IgM
Indikatorzonenbereich : Blutgruppenbestimmung
VII Antiköφer Anti-A (monoklonal)
VIII Antiköφer Anti-B (monoklonal)
IX Antiköφer Anti-AB (monoklonal)
X Antiköφer Anti-D (monoklonal)
XI Antiköφer Anti-CDE (monoklonal)
XII Antiköφer Anti-Erythrozyten (polyklonal)
Indikatorzone VI ist die Kontrolle (ctl) für die Bestimmung von Antiköφern gegen infektiöse Agenzien und enthält anti-human IgG/IgM Antiköφer. Indikatorzone XII ist die Kontrolle (ctl) für die Blutgruppenbestimmung und enthält po- lyklonale anti-Erythrozyten Antiköφer. Sie befindet sich distal angeordnet zu allen übrigen lhdikatorzonen.
In Fig. 10 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests für die simultane Durchführung von Blutgruppenbestimmung und dem Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytä- re Antigene, gezeigt. Im vorliegenden Beispiel besteht die Vorrichtung aus einer Trägerschicht 1, der porösen Membran 2, dem Absoφtions-Pad 3 und dem zweidimensionalen, in Stegform ausgeführten Dichtelement 4. Dabei ist die poröse Membran 2 auf der mit einem drucksensitiven Acrylatklebstoff versehenen Trägerschicht 1 fixiert. Ebenso ist das Absoφtions-Pad 3 auf der Trägerschicht 1 fixiert, wobei ein Teil des Absoφtions-Pad 3 mit der porösen Membran 2 überlappt. Das auf der Oberseite der porösen Membran 2 fixierte Dichtelement 4 separiert die Aufgabezone 5 von der übrigen Membranfläche und ermöglicht die ge- richtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testreagenzien in die poröse Membran 2. Zwischen der Aufgabezone 5 und dem Bereich der porösen Membran 2, der mit dem Absoφtions-Pad 3 in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 6 angeordnet. Dieser wird aus diagonal versetzten, in definierten X- und Y- Positionen angeordneten, punktförmigen lhdikatorzonen I-IX gebildet, wobei die Indikatorzonen I-III den Indikatorzonenbereich „Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene" und die lhdikatorzonen TV-IX den Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" umfassen und aus den folgenden Bindungselementen bestehen:
Indikatorzone Bindungselement Spezifikation
Indikatorzonenbereich: Nachweis von Antikörpern gegen thrombozytäre Antigene
I Membranproteine Thrombozyten, HPA Ibb3aa5bb
II Membranproteine Thrombozyten, HPA Iaa3bb5aa
III Antiköφer Anti-human IgG/IgM
Indikatorzonenbereich: Blutgruppenbestimmung rv Antiköφer Anti-A (monoklonal)
V Antiköφer Anti-B (monoklonal)
VI Antiköφer Anti-AB (monoklonal)
VII Antiköφer Anti-D (monoklonal) vπi Antiköφer Anti-CDE (monoklonal)
IX Antiköφer Anti-Erythrozyten (polyklonal)
Indikatorzone III ist die Kontrolle (ctl) für den Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene und enthält anti-human IgG/IgM Antiköφer. Indikatorzone LX ist die Kontrolle (ctl) für die Blutgruppenbestimmung und enthält po- lyklonale anti-Erythrozyten Antiköφer. Sie befindet sich distal angeordnet zu allen übrigen Indikatorzonen.
In Fig. 11 wird beispielhaft eine perspektivische Darstellung einer erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests mit bidirektionalem Fluss für die simultane Bestimmung von Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe ge- zeigt. Im vorliegenden Beispiel besteht die Vorrichtung aus einer Trägerschicht 1, einer porösen Membran 2a für die Blutgruppenbestimmung, einer von Membran 2a sich unterscheidenden porösen Membran 2b für die Serumgegenprobe, den Absoφtions-Pads 3 a und 3b, einem dreidimensionalen, in Trogform ausgeführten Dichtelement 4, und einem Konjugat-Pad 6. Dabei sind die porösen Membranen 2a und 2b auf der mit einem drucksensitiven Acrylatklebstoff versehenen Trägerschicht 1 fixiert. Ebenso sind die Absoφtions-Pads 3 a und 3b auf der Trägerschicht 1 fixiert, wobei je ein Teil der Absoφtions-Pads 3a und 3b mit den porösen Membranen 2a und 2b überlappen. Das auf der Oberseite der porösen Membran 2a und 2b fixierte Dichtelement 4 separiert die Aufgabezonen 5 a bzw. 5b von den übrigen Membranflächen und ermöglicht die gerichtete Verteilung von Probenflussigkeit und Testreagenzien in die porösen Membranen 2a und 2b. Zwi- sehen der Aufgabezone 5a und dem Bereich der porösen Membran 2a, der mit dem Absoφtions-Pad 3a in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 7a (Blutgruppenbestimmung) angeordnet. Dieser wird aus diagonal versetzten, in definierten X- und Y-Positionen angeordneten, punktförmigen Indikatorzonen I - VI gebildet, wobei die lhdikatorzonen des Indikatorzonenbereiches 7a aus den folgenden Bindungselementen bestehen:
Indikatorzone Bindungselement Spezifikation
I Antiköφer Anti-A (monoklonal)
II Antiköφer Anti-B (monoklonal)
III Antiköφer Anti-AB (monoklonal) rv Antiköφer Anti-D (monoklonal)
V Antiköφer Anti-CDE (monoklonal)
VI Antiköφer Anti-Erythrozyten (polyklonal)
Die Indikatorzone VI ist die Kontrolle (ctl) für die Blutgruppenbestimmung und enthält polyklonale anti-Erythrozyten Antiköφer. Sie befindet sich distal angeordnet zu den lhdikatorzonen I-V.
Zwischen der Aufgabezone 5b und dem Bereich der porösen Membran 2b, der mit dem Absoφtions-Pad 3b in Kontakt steht, ist der Indikatorzonenbereich 7b (Serumgegenprobe) angeordnet. Dieser wird aus diagonal versetzten, in definierten X- und Y-Positionen angeordneten, punktförmigen Indikatorzonen VII - IX gebildet, wobei die Indikatorzonen des Indikatorzonenbereiches 7b aus den folgenden Bindungselementen bestehen: Indikatorzone Bindungselement Spezifikation
VII Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe A
VIII Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe B
IX Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0 (Kontrolle)
In Fig. 12 wird eine Explosionsdarstellung der in Fig. 11 dargestellten erfindungsgemäßen Vorrichtung für Lateral-Fluss-Tests mit bidirektionalem Fluss ge- zeigt, die aus den Komponenten Trägerschicht 1, einer porösen Membran 2a für die Blutgruppenbestimmung, einer von Membran 2a sich unterscheidenden porösen Membran 2b für die Serumgegenprobe, den Absoφtions-Pads 3a und 3b, einem dreidimensionalen, in Trogform ausgeführten Dichtelement 4, und einem Konjugat-Pad 6 bestehen. Die Probenaufgabezone erstreckt sich über beide porö- sen Membranen mit der Probenaufgabezone 5 a der Membran 2a und der Probenaufgabezone 5b der Membran 2b und wird durch das in Trogform ausgeführte Dichtelement 4 von den übrigen Flächen der Membranen 2a und 2b separiert. Die Membran 2a enthält den Indikatorzonenbereich 7a mit den von proximal nach distal diagonal versetzt angeordneten Indikatorzonen I-VI, während die Membran 2b den Indikatorzonenbereich 7b mit den von proximal nach distal diagonal versetzt angeordneten lhdikatorzonen NII-IX enthält.
Beispiele Beispiel 1: Simultane Blutgruppenbestimmung (direkter Assay) und Serumgegenprobe (direkter Bindungsassay)
Herstellung der Teststreifen:
Die Teststreifen bestehen aus einer Aufgabezone, einem Indikatorzonenbereich und einem Absoφtionsbereich. Membranen der Sorte Millipore HiFlow Plus 065 werden in Streifen auf eine Größe von 15 mm x 35 mm (Breite/Länge; x/y) zu- rechtgeschnitten und auf eine Trägerschicht (Backing Sheet, z. B. von G&L) aufgeklebt. Diagonal versetzt werden im Indikatorzonenbereich, der sich in die Indikatorzonenbereiche „Serumgegenprobe" (proximal zur Aufgabezone angeordnet) und Blutgruppenbestimmung (distal zur Aufgabezone angeordnet) aufteilt, je 0,2 μ.1 Punkte der verschiedenen Bindungselemente unter Verwendung eines Dispensers, z.B. AD3200 (Biodot) aufgetragen:
Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe" - Suspensionen von Erythrozyten- Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI, Blutgruppe A2, Blutgruppe B und Blut- gruppe 0 (hergestellt aus Erythrozytenkonzentraten) sowie Anti-human IgG/IgM Antiköφer (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, 1-3382, 1-0759) als Kontrolle; Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" - Anti-A Antiköφer - Klon Birma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antiköφer - Klon ES-4 (Serologicals, NCA0201); Anti-AB Antiköφer - Klone AB6, AB26, AB92 (Me- dion Diagnostics, 010062); anti-Erythrozyten Antiköφer (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139).
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Serumgegenprobe" startet mit Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI in Position x=2,5 mm/ y=10 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=2,5 mm/ y=l,5 mm zur Position der Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI dispensiert. Die Erythrozyten-Ghosts werden als 0.1- 0.5 %ige (v/v) Suspensionen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol, die anti-human IgG/IgM Antiköφer als 1:1 Gemisch in Konzentration von 50 μg/ml in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol dispensiert.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Blutgruppenbestimmung" startet mit dem Anti-A Antiköφer in Position x=3 mm/ y=20 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=3 mm y=l,5 mm zur Position des anti-A Antiköφers dispensiert. Die Verdünnungen der Antiköφer erfolgen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol) wie folgt: Anti-A Antiköφer 1:3, anti-B Antiköφer 1:2, anti- AB Antiköφer 1:4, anti-RBC Antiköφer 1:3.
Die Membranen werden nach dem Dispensieren der Bindungselemente für 20 min bei 40°C getrocknet und anschließend bei konstanter Luftfeuchte bis zur Testdurchführung aufbewahrt. Am zur Aufgabezone distalen Ende wird ein mit der Membran um 3 mm überlappendes 15x15 mm großes Absoφtions-Pad (Schleicher & Schüll, 300) aufgeklebt. Die Aufgabezone wird durch Aufkleben eines 1-2 mm breiten Klebestreifens (Tesa 4124) in Position y=5 mm über die gesamte Membranbreite von der übrigen Membran separiert.
Testansatz:
Als Blutproben werden antikoagulierte Vollblute verwendet. Für den eigentlichen Test werden 100 μl unverdünntes bzw. 1:3 oder 1:6 in Verdünnungspuffer (En- lisstπ, Medion Diagnostics oder Diluent 1, DiaMed) verdünntes Blut in die Aufgabezone aufgetragen. Wenn das Blut die Aufgabezone verlassen hat, wird zweimalig mit 100 μl Enlisstπ gewaschen, um ungebundene Erythrozyten aus der Membran zu entfernen. Im Anschluß werden 50 μl anti-IgG/A/M konjugierte Goldpartikel (20 bis 40 nm, Arista Biologicals, CGIGA-0800, CGIGG-0800, CGIGM-0800), 1:10 (v/v) verdünnt in TBS , 0.08 % Gelatine, 0.5 % Albumin, auf die Aufgabezone aufgetragen. Anstelle der Goldpartikel können auch farbige, 100 bis 400 nm Polystyrolpartikel verwendet werden, z.B. von Merck Eurolab Fran- ce/Estapor. Wenn die Goldpartikel die Aufgabezone verlassen haben, wird die Membran nochmals ein- oder zweimalig mit 100 μl Enlisstll gewaschen. Ergebnis:
(a Kontrollen: Der Test ist gültig, wenn die anti-RBC Kontrolle (Indikatorzone IX, Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung") ein deutlich positives Signal (Roter Punkt) zeigt und wenn die anti-IgG/IgM-Kontrolle (Indikatorzone V, Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe") charakteristisch puφurn (Goldpartikel) oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt ist.
(b) Testergebnisse: Je nach Anwesenheit oder Abwesenheit der jeweiligen Blutgruppenantigene erscheinen an den entsprechenden Positionen im Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" rote Punkte (positiv) oder die fast weisse Hintergrundfärbung der Membran (negativ). Die korrespondierenden Isoagglutinine sind im Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe" durch das charakteristische Puφur der Goldpartikel als puφurfarbene Punkte oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel erkennbar. Bei Abwesenheit eines Isoagglutinins sind keine sich vom Hintergrund unterscheidenden Signale in diesen Positionen zu erkennen.
Beispiel 2: Simultanbesti mung von Blutgruppen (direkter Assay) und Serumgegenprobe (Kompetitionsassay)
Herstellung der Teststreifen:
Die Teststreifen bestehen aus einer Aufgabezone, zwei Indikatorzonenbereichen zu beiden Seiten der Aufgabezone und zwei Absoφtionsbereichen. Membranen der Sorte Millipore HiFlow Plus 065 und HiFlow Plus 140 werden in Streifen auf eine Größe von 15 mm x 20 mm (Breite/Länge; x/y) zurechtgeschnitten und nebeneinander auf eine Trägerschicht (Backing Sheet, z. B. von G&L) aufgeklebt. Auf der HiFlow Plus 140 Membran wird zusätzlich ein Konjugat Pad, in das anti- A anti-B/anti-H konjugierte Goldpartikel eingetrocknet sind, so aufgebracht, dass es sich zwischen Dichtelement (Klebestreifen) und Indikatorzonen befindet. An- stelle der Goldpartikel können auch farbige, 100 bis 400 nm Polystyrolpartikel verwendet werden, z.B. von Merck Eurolab France Estapor. Diagonal versetzt werden im Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung", der sich auf der HiFlow Plus 065 Membran befindet, je 0,2 μl Punkte folgender Bindungselemente unter Verwendung eines Dispensers, z.B. AD3200 (Biodot) aufgetragen: Anti-A Antiköφer - Klon Birma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antiköφer - Klon ES-4 (Serologicals, NCA0201); Anti- AB Antiköφer - Klone AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); anti-Erythrozyten Antiköφer (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139).
In gleicher Weise werden im Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe", der sich auf der HiFlow Plus 140 Membran befindet, - Suspensionen von Erythrozyten- Ghosts der Blutgruppe A, Blutgruppe B und Blutgruppe 0 (hergestellt aus E- rythrozytenkonzentraten) aufgetragen.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Serum- gegenprobe" startet mit Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe A in Position x=3 mm/ y=10 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=3 mm/ y=l,5 mm zur Position der Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe A dispensiert. Die Erythrozyten-Ghosts werden als 0.1- 0.5 %ige (v/v) Suspensionen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol dispensiert.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Blutgruppenbestimmung" startet mit dem Anti-A Antiköφer in Position x=2,5 mm/ y=20 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=2 _____ y=l,5 mm zur Position des anti-A Antiköφers dispensiert. Die Verdün- nungen der Antiköφer erfolgen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol) wie folgt: Anti-A Antiköφer 1:3, anti-B Antiköφer 1:2, anti- AB Antiköφer 1:4, anti-RBC Antiköφer 1:3.
Die Membranen werden nach dem Dispensieren der Bindungselemente für 20 min bei 40°C getrocknet und anschließend bei konstanter Luftfeuchte bis zur Test- durchführung aufbewahrt. An den beiden zur Aufgabezone distalen Enden wird ein mit der Membran um 3 mm überlappendes 15x15 mm großes Absoφtions-Pad (Schleicher & Schüll, 300) aufgeklebt. Die Aufgabezone wird durch Aufkleben eines 1-2 mm breiten Klebestreifens (Tesa 4124) in Position y=5 mm über die gesamte Membranbreite von der übrigen Membran separiert.
Testansatz:
Als Blutproben werden antikoagulierte Vollblute verwendet. Für den eigentlichen Test werden 100 μl unverdünntes bzw. 1:3 oder 1:6 in Verdünnungspuffer (En- lisstll, Medion Diagnostics oder Diluent 1, DiaMed) verdünntes Blut in die Auf- gabezone aufgetragen. Wenn das Blut die Aufgabezone verlassen hat, wird zweimalig mit 100 μl EnlisstU gewaschen, um ungebundene Erythrozyten aus der Membran zu entfernen.
Ergebnis:
(a Kontrollen: Der Test ist gültig, wenn die anti-RBC Kontrolle (Indikatorzonen- bereich „Blutgruppenbestimmung") ein deutlich positives Signal (Roter Punkt) zeigt und wenn die Erythrozyten-Blutgruppe 0 Kontrolle (Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe") charakteristisch puφurn (Goldpartikel) oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt ist.
(b) Testergebnisse: Je nach Anwesenheit oder Abwesenheit der jeweiligen Blut- gruppenantigene erscheinen an den entsprechenden Positionen im Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" rote Punkte (positiv) oder die fast weisse Hintergrundfärbung der Membran (negativ). Die korrespondierenden Isoagglutinine sind im Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe" durch das Fehlen der entsprechenden Bande gekennzeichnet. Bei Abwesenheit eines Isoagglutinins ist die entsprechende Bande charakteristisch angefärbt. Beispiel 3: Simultane Blutgruppenbestimmung, Serumgegenprobe und Antikör- persuch-Test bei Empfängern
Herstellung der Teststreifen:
Die Teststreifen bestehen aus einer Aufgabezone, einem Indikatorzonenbereich und einem Absoφtionsbereich. Membranen der Sorte Millipore HiFlow Plus 065 werden in Streifen auf eine Größe von 20 mm x 35 mm (Breite/Länge; x/y) zu- rechtgeschnitten und auf eine Trägerschicht (Backing Sheet, z. B. von G&L) aufgeklebt. Diagonal versetzt werden im Indikatorzonenbereich, der sich in die Indikatorzonenbereiche „Serumgegenprobe/ Antiköφersuche" (proximal zur Aufga- bezone angeordnet) und „Blutgruppenbestimmung" (distal zur Aufgabezone angeordnet) aufteilt, je 0,2 μl Punkte der verschiedenen Bindungselemente unter Verwendung eines Dispensers, z.B. AD3200 (Biodot) aufgetragen:
Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe/Antiköφersuche" - Suspensionen von Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI, Blutgruppe A2, Blutgrap- pe B, Blutgruppe 0, Blutgruppe 0 Rh-Formel RtR^ (Suchzelle 1), Blutgruppe 0 Rh-Formel R2R2 (Suchzelle 2), Blutgruppe 0 Rh-Formel RiRi (Suchzelle 3), sowie Anti-human IgG/IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, I- 3382, 1-0759) als Kontrolle; Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" - Anti-A Antiköφer - Klon Birma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antiköφer - Klon ES-4 (Serologicals, NCA0201); Anti-AB Antiköφer- (Klone AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); anti-Erythrozyten Antiköφer (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139).
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Serumgegenprobe" startet mit Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI in Position x=3 mm/ y=10 mm, die Positionierung der Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe A2, B, 0 folgt iterierend in Abständen von x=2 mm/ y=l,5 mm. Die Positionierung der Erythrozyten-Ghosts der Suchzelle 1 erfolgt in Position x=l l mm/ y=10 mm, die Positionierung der Erythrozyten-Ghosts der Suchzellen 2 und 3 sowie des humanen IgG/IgM iterierend in Abständen von x=2 mm/ y=l,5 mm. Die Erythrozyten-Ghosts werden als 0J-0.5%ige (v/v) Suspensionen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol, die anti-human IgG/IgM Antiköφer als 1:1 Gemisch in Konzentration von 50 μg/ml in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol dispensiert.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Blutgruppenbestimmung" startet mit dem Anti-A Antiköφer in Position x=4 mm/ y=20 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=4 mm/ y=l,5 mm zur Position des anti-A Antiköφers dispensiert. Die Verdünnungen der Antiköφer erfolgen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol) wie folgt: Anti-A Antiköφer 1:3, anti-B Antiköφer 1:2, anti-AB Antiköφer 1:4, anti-RBC Antiköφer 1:3.
Die Membranen werden nach dem Dispensieren der Bindungselemente für 20 min bei 40° C getrocknet und anschließend bei konstanter Luftfeuchte bis zur Testdurchführung aufbewahrt. Am zur Aufgabezone distalen Ende wird ein mit der Membran um 3 mm überlappendes 20x15 mm großes Absoφtions-Pad (Schleicher & Schüll, 300) aufgeklebt. Die Aufgabezone wird durch Aufkleben eines 1-2 mm breiten Klebestreifens (Tesa 4124) in Position y=5 mm über die gesamte Membranbreite von der übrigen Membran separiert.
Testansatz:
Als Blutproben werden antikoaguherte Vollblute verwendet. Für den eigentlichen Test werden 120 μl unverdünntes bzw. 1:3 oder 1:6 in Verdünnungspuffer (En- lisstll, Medion Diagnostics oder Diluent 1, DiaMed) verdünntes Blut in die Aufgabezone aufgetragen. Wenn das Blut die Aufgabezone verlassen hat, wird zweimalig mit 120 μl EnlissfH gewaschen, um ungebundene Erythrozyten aus der Membran zu entfernen. Im Anschluß werden 75 μl anti-IgG/ A/M konjugierte Goldpartikel (20 bis 40 nm, Arista Biologicals, CGIGA-0800, CGIGG-0800, CGIGM-0800), 1:10 (v/v) verdünnt in TBS , 0.08 % Gelatine, 0.5 % Albumin, auf die Aufgabezone aufgetragen. Anstelle der Goldpartikel können auch farbige, 100 bis 400 nm Polystyrolpartikel verwendet werden, z.B. von Merck Eurolab Fran- ce/Estapor. Wenn die Goldpartikel die Aufgabezone verlassen haben, wird die Membran nochmals ein- oder zweimalig mit 120 μl EnlisstLI gewaschen.
Ergebnis:
(a) Kontrollen: Der Test ist gültig, wenn die anti-RBC Kontrolle (Indikatorzone XII, Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung") ein deutlich positives Signal (Roter Punkt) zeigt und wenn die anti-IgG/IgM-Konholle (Indikatorzone VIII, Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe/Antiköφersuche") charakteristisch pupurn (Goldpartikel) oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt ist. Die anti-IgG/IgM-Kontrolle muss in jedem Fall angefärbt sein, so dass bei einer Person mit Blutgruppe AB, die keine irregulären Antiköφer hat, die An- färbung dieser Indikatorzone bei völliger Abwesenheit anderer Signale im Indi- katorzonenbreich „Serumgegenprobe/Antiköφersuche" auf eine korrekte Testdurchführung verweist. Die Indikatorzone IN (Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0) ist eine negative Kontrolle für Isoagglutinine. Eine Anfärbung dieser Indikatorzo- ne bedeutet, dass neben Isoagglutininen auch irreguläre Antiköφer vorhanden sein müssen, d. h. dass mindestens eine der drei lhdikatorzonen V, VI, VII ebenfalls angefärbt sein muss. Ist dies nicht der Fall, so ist der Test ungültig.
(b Testergebnisse: Je nach Anwesenheit oder Abwesenheit der jeweiligen Blut- gruppenantigene erscheinen an den entsprechenden Positionen im Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" rote Punkte (positiv) oder die fast weisse Hintergrundfärbung der Membran (negativ). Die korrespondierenden Isoagglutinine sind im Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe" durch das charakteristische Puφur der Goldpartikel als puφurfarbene Punkte oder in der Farbe der ver- wendeten Polystyrolpartikel erkennbar. Bei Abwesenheit eines Isoagglutinins sind keine sich vom Hintergrund unterscheidenden Signale in diesen Positionen zu erkennen. Bei Vorhandensein eines irregulären Antiköφers sind ein, zwei oder alle drei der lhdikatorzonen mit den Erythrozyten-Ghosts der Suchzellen 1, 2 oder 3 durch das charakteristische Puφur der Goldpartikel angefärbt oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel erkennbar.
Beispiel 4: Simultane Blutgruppenbestimmung, Serumgegenprobe und Antikör- persuch-Test für Spender
Herstellung der Teststreifen:
Der grundsätzliche Aufbau der Teststreifen entspricht dem Teststreifenaufbau in Beispiel 2. Das Format der Millipore HiFlow Plus 065 Membran beträgt 15 mm x 35 mm (Breite/Länge; x/y). Der lhdikatorzonen des Indikatorzonenbereiches „Blutgruppenbestimmung" entsprechen dem Beispiel 2. Im Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe/Antiköφersuche" werden je 0,2 μl Punkte der folgenden Bindungselemente unter Verwendung eines Dispensers, z.B. AD3200 (Biodot) dispensiert:
Suspensionen von Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI, Blutgruppe A2, Blutgruppe B, Blutgruppe 0, Erythrozytenghosts aus einem Gemisch der Suchzellen 1-3 (siehe Beispiel 2), sowie Anti-human IgG/IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, 1-3382, 1-0759) als Kontrolle.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Serum- gegenprobe/ Antiköφersuche" startet mit Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe AI in Position x=2,5 mm/ y=10 mm, die Positionierung der Erythrozyten-Ghosts der Spezifikation Blutgruppe A2, B, 0 iterierend in Abständen von x=2 mm/ y=l,5 mm. Die Positionierung der Erythrozyten-Ghosts des Gemisches der Suchzellen 1-3 erfolgt in Position x=10,5 mm/ y=13 mm, die des humanen IgG/IgM in Position x=12,5 mm/ y=14,5 mm. Die Erythrozyten-Ghosts werden als 0J-0.5%ige (v/v) Suspensionen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol, die anti-human IgG/IgM Antiköφer als 1:1 Gemisch in Konzent- ration von 50 μg/ml in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol dispensiert.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzoneribereiches „Blutgruppenbestimmung" startet mit dem Anti-A Antiköφer in Position x=3 mm y=20 mm. Alle anderen Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches werden iterierend in Abständen von x=3 mm y=l,5 mm zur Position des anti-A Antikörpers dispensiert. Die Verdünnungen der Antiköφer erfolgen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol) wie folgt: Anti-A Antiköφer 1:3, anti-B Antiköφer 1:2, anti-AB Antiköφer 1:4, anti-RBC Antiköφer 1:3.
Die Membranen werden nach dem Dispensieren der Bindungselemente für 20 min bei 40°C getrocknet und anschließend bei konstanter Luftfeuchte bis zur Testdurchführung aufbewahrt. Am zur Aufgabezone distalen Ende wird ein mit der Membran um 3 mm überlappendes 15x15 mm großes Absoφtions-Pad (Schleicher & Schüll, 300) aufgeklebt. Die Aufgabezone wird durch Aufkleben eines 1-2 mm breiten Klebestreifens (Tesa 4124) in Position y=6 mm über die gesamte Membranbreite von der übrigen Membran separiert.
Testansatz:
Der Testansatz entspricht dem Ansatz in Beispiel 1.
Ergebnis:
(a) Kontrollen: Der Test ist gültig, wenn die anti-RBC Kontrolle (Indikatorzone X, Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung") ein deutlich positives Signal (Roter Punkt) zeigt und wenn die anti-IgG/IgM-Kontrolle (Indikatorzone VI, Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe/Antiköφersuche") charakteristisch pupurn (Goldpartikel) oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel ge- färbt ist. Die anti-IgG/IgM-Kontrolle muss in jedem Fall angefärbt sein, so dass bei einer Person mit Blutgruppe AB, die keine irregulären Antiköφer hat, die An- farbung dieser Indikatorzone bei völliger Abwesenheit anderer Signale im Indi- katorzonenbreich „Serumgegenprobe/Antiköφersuche" auf eine korrekte Testdurchführung verweist. Die Indikatorzone IV (Erythrozyten-Ghosts Blutgruppe 0) ist eine negative Kontrolle. Eine Anfärbung dieser Indikatorzone bedeutet, dass neben Isoagglutininen auch irreguläre Antiköφer vorhanden sein müssen, d. h. dass mindestens eine der drei lhdikatorzonen V, VI, VII ebenfalls angefärbt sein muss. Ist dies nicht der Fall, so ist der Test ungültig.
(b) Testergebnisse: Je nach Anwesenheit oder Abwesenheit der jeweiligen Blutgruppenantigene erscheinen an den entsprechenden Positionen im Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" rote Punkte (positiv) oder die fast weisse Hintergrundfärbung der Membran (negativ). Die korrespondierenden Isoagglutinine sind im Indikatorzonenbereich „Serumgegenprobe" durch das charakteristische Puφur der Goldpartikel als puφurfarbene Punkte oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel erkennbar. Bei Abwesenheit eines Isoagglutinins sind keine sich vom Hintergrund unterscheidenden Signale in diesen Positionen zu erkennen. Bei Vorhandensein eines irregulären Antiköφers sind ein, zwei oder alle drei der lhdikatorzonen mit den Erythrozyten-Ghosts der Suchzellen 1, 2 oder 3 durch das charakteristische Pmpur der Goldpartikel angefärbt oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel erkennbar.
Beispiel 5: Simultane Blutgruppenbestimmung und Nachweis von Infektionsmarkern
Herstellung der Teststreifen:
Die Teststreifen bestehen aus einer Aufgabezone, einem Indikatorzonenbereich und einem Absoφtionsbereich. Membranen der Sorte Millipore HiFlow Plus 065 werden in Streifen auf eine Größe von 15 mm x 35 mm (Breite/Länge; x/y) zu- rechtgeschnitten und auf eine Trägerschicht (Backing Sheet z. B. von G&L) aufgeklebt. Diagonal versetzt werden im Indikatorzonenbereich, der sich in die Indikatorzonenbereiche „Nachweis von Infektionsmarkern" (proximal zur Aufgabezone angeordnet) und „Blutgruppenbestimmung" (distal zur Aufgäbezone ange- ordnet) aufteilt, je 0,2 μl Punkte der verschiedenen Bindungselemente unter Verwendung eines Dispensers, z.B. AD3200 (Biodot) aufgetragen:
Indikatorzonenbereich „Nachweis von Infektionsmarkern" - Lösungen rekombi- nanter Antigene (Syphilis; TpN 15, TpN 17, TpN 47), synthetischer Peptide aus Sequenzen der Glykoproteine gp-14, gp-41 (HJN-1; HTV-O) und gp-36 (HIV-2), rekombinante HCV Antigene (C-100, C-200, C33c, C22), monoklonale Antikörper (HBsAg) sowie Anti-human IgG/IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, 1-3382, 1-0759) als Kontrolle; Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" - Anti-A Antiköφer - Klon Birma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti- B Antiköφer - Klon ES-4 (Serologicals, ΝCA0201); Anti-AB Antiköφer - Klone AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); Anti-D Antiköφer - Klone LDM3/ESD1 (SNBTS), Anti-CDE Antiköφer - Klone MS-24/MS-201/MS 80/MS-258 (Serologicals), Anti-Erythrozyten Antiköφer (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139).
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Nachweis von Infektionsmarkern" startet mit synthetischen Peptiden der Spezifität HIV-1 (gp-14, gp-41) in Position x=2,5 mm/ y=10 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=2 mm/ y=l,5 mm zur Position der Indikatorzone I dispensiert. Die Bindungselemente der Indikatorzonen I-V werden in geeigneten Konzentrationen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol, die anti-human IgG/IgM Antiköφer in einer Konzentration von 50 μg/ml in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol dispensiert.
Die Positioniemng der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Blutgruppenbestimmung" startet mit dem Anti-A Antiköφer in Position x=2,5 mm/ y=:20 mm. Alle anderen Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches werden iterierend in Abständen von x=2 mm/ y=l,5 mm zur Position des anti-A Antikörpers dispensiert. Die Verdünnungen der Antiköφer erfolgen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol) wie folgt: Anti-A Antiköφer 1:3, anti-B Antiköφer 1:2, anti-AB Antiköφer 1:4, anti-RBC Antiköφer 1:3.
Die Membranen werden nach dem Dispensieren der Bindungselemente für 20 min bei 40°C getrocknet und anschließend bei konstanter Luftfeuchte bis zur Testdurchführung aufbewahrt. Am zur Aufgabezone distalen Ende wird ein mit der Membran um 3 mm überlappendes 15x15 mm großes Absoφtions-Pad (Schleicher & Schüll, 300) aufgeklebt. Die Aufgabezone wird durch Aufkleben eines 1-2 mm breiten Klebestreifens (Tesa 4124) in Position y=6 mm über die gesamte Membranbreite von der übrigen Membran separiert.
Testansatz:
Als Blutproben werden antikoaguherte Vollblute verwendet. Für den eigentlichen Test werden 100 μl unverdünntes bzw. 1:3 bzw. 1:6 in Verdünnungspuffer (En- lisstll, Medion Diagnostics oder Diluent 1, DiaMed) verdünntes Blut in die Aufgabezone aufgetragen. Wemi das Blut die Aufgabezone verlassen hat, wird zweimalig mit 100 μl Enlissffl gewaschen, um ungebundene Erythrozyten aus der Membran zu waschen.
Im Anschluß werden 50 μl eines Gemisches aus anti-IgG/A/M konjugierten Goldpartikeln (20 bis 40 nm, Arista Biologicals, CGIGA-0800, CGIGG-0800, CGIGM-0800), 1:10 (v/v) verdünnt in TBS , 0.08 % Gelatine, 0.5 % Albumin, sowie anti-HbsAg konjugierten Goldpartikeln (Arista Biologicals, ABHBS-0500) in geeigneter Verdünnung auf die Aufgabezone aufgetragen. Anstelle der Goldpartikel können auch farbige, 100 bis 400 nm Polystyrolpartikel verwendet wer- den, z.B. von Merck Eurolab France/Estapor. Wenn diese die Aufgabezone verlassen haben, wird die Membran nochmals ein- oder zweimalig mit 100 μl Enlissffl gewaschen.
Ergebnis: Der Test ist gültig, wenn die anti-RBC Kontrolle (Indikatorzone XII, Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung") ein deutlich positives Signal (Roter Punkt) zeigt und wenn die anti-IgG/IgM-Kontrolle (Indikatorzone VI, Indikatorzonenbereich „Nachweis von Infektionsmarkern") charakteristisch pupurn (Gold- partikel) oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt ist. Je nach Anwesenheit oder Abwesenheit der jeweiligen Blutgruppenantigene erscheinen an den entsprechenden Positionen rote Punkte (positiv) oder die fast weisse Hintergrundfärbung der Membran (negativ). Bei Vorhandensein von Antiköφern gegen HIV-1, HΓV-2, Syphilis bzw. von Hepatitis B surface Antigen (HBsAg) ist die jeweilige Position durch das für Gold-Partikel charakteristische Puφur angefärbt und als puφurfarbene Punkte erkennbar. Wenn Polystyrolpartikel als Indikator- Partikel verwendet werden, ist die jeweilige Position in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt. Im weitaus häufigsten Fall, nämlich einer negativen Reaktion für alle Infektionsmarker, wird nur die anti-IgG/IgM-Kontrolle (Indika- torzone VI, Indikatorzonenbereich „Nachweis von Infektionsmarkern") angefärbt.
Beispiel 6: Simultane Blutgruppenbestimmung und Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene
Herstellung der Teststreifen:
Der grundsätzliche Aufbau und das Format der Teststreifen entspricht dem Test- streifenaufbau in Beispiel 4. Der Indikatorzonenbereich untergliedert sich in die Indikatorzonenbereiche „Blutgruppenbestimmung" und „Nachweis von Antikörpern gegen thrombozytäre Antigene". Es werden je 0,2 μl Punkte der folgenden Bindungselemente unter Verwendung eines Dispensers, z.B. AD3200 (Biodot) dispensiert: hidikatorzonenbereich „Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene" - Membranproteine von Thrombozyten der Blutgruppe 0 mit distinkten HPA- Antigenprofilen wie HPA Ibb3aa5bb und HPA Iaa3bb5aa sowie Anti-human IgG/IgM (Goat anti human IgG, Goat anti human IgM, Sigma, 1-3382, 1-0759) als Kontrolle; Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung" - Anti-A Antiköφer - Klon Birma-1 (Serologicals, TLJ0105); Anti-B Antiköφer - Klon ES-4 (Serologicals, NCA0201); Anti-AB Antiköφer - Klone AB6, AB26, AB92 (Medion Diagnostics, 010062); Anti-D Antiköφer - Klone LDM3/ESD1 (SNBTS), Anti- CDE Antiköφer - Klone MS-24/MS-201/MS 80/MS-258 (Serologicals), Anti- Erythrozyten Antiköφer (Rabbit IgG Fraction of anti Human RBC, Rockland, 209-4139). Als Alternative zu den Membranproteinen der Thrombozyten können auch rekombinante Antigene mit den entsprechenden Merkmalsausprägungen (HPA-Antigenprofile) aufgetragen werden.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene" startet mit Membranproteinen Antigenprofil HPA Ibb3aa5bb in Position x=4 mm/ y=10 mm. Alle anderen Bindungselemente werden iterierend in Abständen von x=3,5 mm/ y=2 mm zur Position der Indikatorzone I dispensiert. Die Bindungselemente der lhdikatorzonen I und II werden in geeigneten Konzentrationen in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol, die anti-human IgG/IgM Antiköφer in einer Konzentration von 50 μg/ml in 15 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 10% (v/v) Methanol dispensiert.
Die Positionierung der Bindungselemente des Indikatorzonenbereiches „Blutgruppenbestimmung" entspricht dem Beispiel 4.
Die Membranen werden nach dem Dispensieren der Bindungselemente für 20 min bei 40°C getrocknet und anschließend bei konstanter Luftfeuchte bis zur Testdurchführung aufbewahrt. Am zur Aufgabezone distalen Ende wird ein mit der Membran um 3 mm überlappendes 15x15 mm großes Absoφtions-Pad (Schleicher & Schüll, 300) aufgeklebt. Die Aufgabezone wird durch Aufkleben eines 1-2 mm breiten Klebestreifens (Tesa 4124) in Position y=6 mm über die gesamte Membranbreite von der übrigen Membran separiert.
Testansatz:
Als Blutproben werden antikoaguherte Vollblute verwendet. Für den eigentlichen Test werden 100 μl unverdünntes bzw. 1:3 bzw. 1:6 in Verdünnungspuffer (En- lisstll, Medion Diagnostics oder Diluent 1, DiaMed) verdünntes Blut in die Aufgabezone aufgetragen. Wenn das Blut die Aufgabezone verlassen hat, wird zweimalig mit 100 μl EnlisstJJ gewaschen, um ungebundene Erythrozyten aus der Membran zu waschen.
Im Anschluß werden 50 μl eines Gemisches aus anti-IgG/A/M konjugierten Goldpartikeln (20 bis 40 nm, Arista Biologicals, CGIGA-0800, CGIGG-0800, CGIGM-0800), 1:10 (v/v) verdünnt in TBS , 0.08 % Gelatine, 0.5 % Albumin, auf die Aufgabezone aufgetragen. Anstelle der Goldpartikel können auch farbige, 100 bis 400 nm Polystyrolpartikel verwendet werden, z.B. von Merck Eurolab Fran- ce/Estapor. Wenn die Goldpartikel die Aufgabezone verlassen haben, wird die Membran nochmals ein- oder zweimalig mit 100 μl EnlisstU gewaschen.
Ergebnis:
Der Test ist gültig, wenn die anti-RBC Kontrolle (Indikatorzone IX, Indikatorzonenbereich „Blutgruppenbestimmung") ein deutlich positives Signal (Roter Punkt) zeigt und wenn die anti-IgG/IgM-Kontrolle (Indikatorzone III, Indikatorzonenbereich „Nachweis von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene") charakteristisch pupurn (Goldpartikel) oder in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt ist. Je nach Anwesenheit oder Abwesenheit der jeweiligen Blutgruppenantigene erscheinen an den entsprechenden Positionen rote Punkte (positiv) oder die fast weisse Hintergrundfärbung der Membran (negativ). Bei Vorhandensein von Antiköφern gegen thrombozytäre Antigene ist die jeweilige Position durch das für Gold-Partikel charakteristische Puφur angefärbt und als puφurfarbene Spots erkennbar. Wenn Polystyrolpartikel als Indikator-Partikel verwendet werden, ist die jeweilige Position in der Farbe der verwendeten Polystyrolpartikel gefärbt.

Claims

Patentansprüche
1. Vorrichtung zum gleichzeitigen und qualitativen oder quantitativen Bestimmen mehrerer Analyten in einer flüssigen Probe, umfassend mindestens eine Membran (2) mit einer Aufgabezone (5) zum Auftragen der flüssigen Probe, mindestens einer Gruppe von mindestens zwei Indikatorzonen, die mit dem/den Analyten in Wechselwirkung treten können und mindestens einem Absoφtionsbereich (3), welcher die Flüssigkeit nach Passieren der lhdikatorzonen aufnimmt, wobei die lhdikatorzonen zwischen der Aufgabezone (5) und dem Absoφtionsbereich (3) liegen, dadurch gekennzeichnet, dass die Fließrichtungen von der Aufgabezone (5) durch die jeweiligen Indikatorzonen einer Gruppe zu einem Absoφtionsbereich (3) (Fließspuren) im Wesentlichen parallel sind und mindestens zwei unterschiedliche Fließspuren vorliegen.
2. Vorrichtung nach Anspruch 1, wobei die Indikatorzonen so angeordnet sind, dass die Probenflussigkeit pro Fließspur nicht mehr als eine Indikatorzone durchströmt.
3. Vorrichtung nach Anspruch 1, wobei die lhdikatorzonen in einer diagonalen, V-, W-, M-, N-förmigen oder linearen Reihe angeordnet sind.
4. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei mindestens zwei Reihen von Indikatorzonen in Fließrichtung hintereinander und/oder seitlich versetzt angeordnet sind und die Indikatorzonen der verschiedenen Reihen zuein- ander auf Lücke angeordnet sind, so dass die Probenflussigkeit pro Fließspur nicht mehr als eine Indikatorzone durchströmt.
5. Vorrichtung nach Anspruch 1 oder 3, wobei mindestens zwei Reihen von In- dikatorzonen in Fließrichtung hintereinander und/oder seitlich angeordnet sind und die Indikatorzonen der verschiedenen Reihen zueinander nicht auf Lücke angeordnet sind, so dass die Probenflussigkeit pro Fließspur mehr als eine Indikatorzone durchströmt.
6. Vorrichtung nach Anspruch 1 bis 3, wobei mindestens 2 Gruppen von Indi- katorzonen angeordnet sind, welche von der Aufgabezone her in unterschiedlichen Fliessrichtungen liegen.
7. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 6, wobei die lhdikatorzonen Antiköφer bzw. Antiköφerfragmente bzw. Lektine, Antigene bzw. Antigen- Epitope und/oder Zellen bzw. Zellfragmente umfassen.
8. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 7, wobei die Indikatorzonen insbesondere Antiköφer bzw. Antiköφer-Fragmente gegen Blutgruppenantigene bzw. -antigen-Epitope und Membranen bzw. Zellfragmente von Blutgruppe AI, A2, B und/oder 0 Erytlrrozyten umfassen.
9. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 7, wobei die Indikatorzonen insbesondere Antiköφer bzw. Antiköφer-Fragmente gegen Blutgruppenantigene bzw. -antigen-Epitope und synthetische Peptide, rekombinante Antigene und/oder Antiköφer bzw. Antiköφer-Fragmente gegen infektiöse Marker umfassen.
10. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 7, wobei die lhdikatorzonen insbesondere Antiköφer bzw. Antiköφer-Fragmente gegen Blutgruppenantigene bzw. -antigen-Epitope und Fragmente von Thrombozyten und/oder Lympho- zyten umfassen.
11. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 10, wobei die Membran oder die Membranen (2) vorzugsweise aus Polyethylen, Nitrozellulose oder Nylon, bestehen.
12. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 11, wobei hinter der Aufgabezone (5) und vor den Indikatorzonen auf der Membran (2) mindestens ein Dichtelement (4) angeordnet ist.
13. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 12, wobei hinter dem Dichtele- ment (4) und vor den lhdikatorzonen mindestens ein Konjugat-Pad aufgebracht ist.
14. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 13, wobei die Komponenten der Vorrichtung zur mechanischen Verstärkung auf eine Trägerschicht (1) aufge- bracht sind.
15. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 14, wobei die Komponenten der Vorrichtung in einem Gehäuse integriert sind.
16. Verwendung der Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 11 zur Analyse von Blut, insbesondere zur simultanen Durchführung der Blutgruppenbestimmung und Serumgegenprobe und/oder Antiköφersuch-Test.
17. Verwendung der Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 11 zur Analyse von Blut, insbesondere zur simultanen Durchftihrung der Blutgruppenbestimmung und des Nachweises von infektionsserologischen Markern bzw. Fragmenten davon.
18. Verwendung der Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 11 zur Analyse von Blut, insbesondere zur simultanen Durchführung der Blutgruppenbestimmung und des Nachweises von Antiköφem gegen Blutzellen, insbesondere anti-Thrombozyten oder anti-Lymphozyten Antiköφer, bzw. jeweils Fragmenten davon.
19. Verfahren zur Bestimmung mehrerer Analyten oder deren Derivate in einer flüssigen Probe, umfassend: das Auftragen der Probe auf die Aufgabezone (5) mindestens einer Membran (2) der Vorrichtung nach einem der vorangegangenen Ansprüche 1 bis 15, wobei diese Probe in ausreichender Menge vorliegt, um die Proben- flüssigkeit dazu zu veranlassen, in Richtung Absoφtionsbereich (3) durch die Indikatorzonen zu fließen und um die Analyten oder ihre Derivate in der Probenflussigkeit dazu zu veranlassen, in den lhdikatorzonen einen Komplex zu bilden.
20. Verfahren nach Anspruch 19, wobei die Analyte oder deren Derivate Blutgruppenantigene bzw. -antigen-Epitope, gegen Blutgruppenantigene gerichtete Antiköφer bzw. Fragmente davon, gegen Thrombozyten- oder Leukozyten gerichtete Antiköφer bzw. Fragmente davon oder gegen infektiöse Agenzien gerichtete Antiköφer bzw. Fragmente davon oder Antigene infektiöser Agen- zien bzw. Antigen-Epitope sind.
21. Verfahren nach Anspruch 19 oder 20, wobei die Analyte oder deren Derivate insbesondere Antigene bzw. Antigen-Epitope der Blutgruppensysteme ABO, Rh und Kell umfassen.
22. Verfahren nach Anspruch 19 oder 20, wobei die Analyte oder deren Derivate insbesondere Antiköφer bzw. Fragmente davon gegen Thrombozyten und/oder Lymphozyten umfassen.
23. Verfahren nach Anspruch 19 oder 20, wobei die Analyte oder deren Derivate insbesondere Antiköφer bzw. Fragmente davon gegen bakterielle und/oder vi- rale Agenzien bzw. virale oder bakterielle Antigene bzw. Antigen-Epitope umfassen.
24. Verfahren nach einem der Ansprüche 19 bis 23, wobei die flüssigen Proben vorzugsweise aus Vollblut, Blutzell-Konzentrat, Serum, Plasma und/oder Testflüssigkeit, beispielsweise Kontrollserum oder Kontrollzellen, bestehen.
25. Verfahren nach einem der Ansprüche 19 bis 24, wobei mindestens zwei Sorten Indikatoφartikel verwendet werden, von denen mindestens eine Sorte E- rythrozyten sind.
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