TW202313963A - Ｎａｄｈ：醌氧化還原酶的表現受調控的重組微生物及使用該微生物製備ｏ－磷絲胺酸、半胱胺酸及其衍生物的方法 - Google Patents
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Abstract
本發明係關於重組微生物，其中NADH：醌氧化還原酶的表現係受調控，以及使用該微生物製備O-磷絲胺酸、半胱胺酸及其衍生物的方法。
Description
本發明係關於重組微生物，其中NADH：醌氧化還原酶的表現係受調控，以及使用該微生物製備O-磷絲胺酸、半胱胺酸及其衍生物的方法。
L-半胱胺酸為在所有活有機體中於硫代謝具有重要角色的胺基酸。其用於合成如角蛋白質之蛋白質等、穀胱甘肽、生物素、甲硫胺酸及其他含硫代謝物，也作為輔酶A生物合成之前驅物。使用微生物製備L-半胱胺酸之已知方法包括：：1)使用微生物生物性轉化D,L-2-胺基噻唑啉-4-羧酸為L-半胱胺酸的方法，2)使用大腸桿菌(E.coli)藉由直接醱酵製備L-半胱胺酸的方法(EP 0885962 B；Wada,M.and Takagi,H.,Appl.Microbiol.Biochem.,73：48-54,2006)，以及3)使用微生物藉由醱酵製備O-磷絲胺酸，及於O-磷絲胺酸巰基
化酶的催化作用下，藉由O-磷絲胺酸與硫化物反應將O-磷絲胺酸轉化為L-半胱胺酸的方法(US 2012-0190081 A1)。
特別地，對於藉由方法3)於高產率下製備半胱胺酸，該前驅物O-磷絲胺酸應過量製備之。
本發明之技術問題為提供重組微生物，其中NADH：醌氧化還原酶的表現係經調控，以及提供使用該重組微生物製備O-磷絲胺酸、半胱胺酸及半胱胺酸衍生物的方法。
本發明之一目的為提供具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性及O-磷絲胺酸製備能力之艾氏菌屬(Escherichia)的重組微生物。
本發明之另一目的為提供製備O-磷絲胺酸的方法，包括：於培養基培養本發明之該O-磷絲胺酸-製備微生物。
本發明之有另一目的係提供製備半胱胺酸或其衍生物的方法，包括：
a)於培養基中培養具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性之O-磷絲胺酸-製備微生物以製備O-磷絲胺酸或含有O-磷絲胺酸的培養基；以及
b)在O-磷絲胺酸巰基化酶(O-phosphoserine sulfhydrylase)(OPSS)或表現其的微生物的存在下，使步驟a)製備的O-磷絲胺酸或含有其的培養基與硫化物反應。
本發明之具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性的OPS-製備微生物能以高效率製備OPS。
本發明將詳細說明於後文。同時，本文揭示的各描述及實施態樣可以應用於彼此的描述及實施態樣。換言之，本文揭示的各種元件的所有組合均落入本發明的範疇。進一步地，本發明的範疇不受後文之具體描述的限制。此外，本說明書全文中引用許多文獻及專利文件。所引用的文獻及專利文獻的內容藉由引用的方式以其整體併入本文，以及本發明所屬技術領域的層級以及本發明的內容將被更清楚地描述。
本發明之一態樣為提供具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性之O-磷絲胺酸-製備微生物。
如本文所使用，術語「O-磷絲胺酸」(下稱「OPS」)意指絲胺酸的磷酸酯，其作為許多蛋白質的構成組件。特別地，OPS為L-半胱胺酸的前驅物且可藉由於OPS巰基化酶(下稱「OPSS」)的催化作用下與硫化物反應轉化為半胱胺酸，但不限於此(US 2012-0190081 A1)。
如本文所使用，術語「NADH：醌氧化還原酶」(下稱「Nuo」)意指藉由氧化微生物之電子傳遞鏈中的NADH以還原細胞中的醌的酵素。該酵素蛋白質亦可命名為NADH脫氫酶-1(NDH-1)。編碼該蛋白質的基因，例如，可為nuoABCEFGHIJKLMN基因簇，但不限於此。該nuoABCEFGHIJKLMN基因簇構成nuo操縱子，且其表現可由操縱子前面的啟動子及核糖體結合位點之
多核苷酸予以調控。本發明中，該「nuoABCEFGHIJKLMN基因」可與「編碼NADH：醌氧化還原酶的基因」、「nuoABCEFGHIJKLMN基因」、「nuo操縱子」及「nuo基因」互換使用。
本發明中，「操縱子」意指DNA的功能單位，該功能單位包括其表現受到一個表現調控序列，特別是一個啟動子調控之基因群。由該操縱子所轉錄之mRNA可為多順反子mRNA，其中單一mRNA核酸編碼一個或多個蛋白質，或可為單順反子mRNA，其中單一mRNA分子編碼一個蛋白質。
Nuo係13個次單元蛋白質(NuoA、NuoB、NuoC、NuoE、NuoF、NuoG、NuoH、NuoI、NuoJ、NuoK、NuoL、NuoM、NuoN)的複合體。兩類操縱子，nuoABCEFGHIJKL及nuoMN，係於各次單元蛋白質的轉譯中作為模板。該nuo操縱子的結構可見於EcoCyc(www.biocyc.org)(讀取號EG12082)。已知nuo操縱子包括結構基因及表現調控區。該nuo操縱子的「表現調控區」意指存在於構成nuo操縱子的結構基因的上游區且因而可調控該結構基因的表現。該nuo操縱子的表現調控區可包括結構基因及啟動子除外之啟動子(nuoA啟動子及/或nuoM啟動子)，且可具體地包括啟動子。
該nuo操縱子可包括編碼與SEQ ID NO：26至SEQ ID NO：38的胺基酸序列具有70%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%或99%或更多同源性或同一性之胺基酸序列的核苷酸序列。具體地，該nuo操縱子可包括編碼SEQ ID NO：26至38之胺基酸序列或其同源性或同一性且展現相應功能之結構基因；以及調控該結構基因序列之表現的表現調控區。SEQ ID NO：26至38的序列可於已知數據庫NCBI Genbank中確認。
具體地，該nuo操縱子可為具有SEQ ID NO：1之核苷酸序列及/或對於SEQ ID NO：1具有70%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%或99%或更多同源性或同一性之核苷酸序列。此外，只要核苷酸序列具有該同源性或同一性且展現相應於nuo操縱子的功能者，明顯地，其中部分序列經刪除、修改、取代或添加的任意核苷酸序列，亦可落入本發明的範疇。
如本文所使用，術語「同源性及同一性」意指二個指定的胺基酸序列或核苷酸序列之間的相關性程度，且以百分比表示。術語同源性及同一性通常可彼此互換使用。
保守多核苷酸或多肽的序列同源性或同一性可藉由標準的對準演算法測定且可使用藉由欲使用的軟體所建立的預設間隙罰分。實質上，同源性或同一性序列通常預期於中度或高度嚴苛條件下與全長序列之全部或至少約50%、60%、70%、80%或90%雜交。於雜交多核苷酸中也可考慮含有簡併密碼子的多核苷酸而非含有密碼子者。
測定多肽或多核苷酸的同源性或同一性可藉由，例如根據文獻之BLAST演算法(參照Karlin and Altschul,Pro.Natl.Acad.Sci.USA,90,5873(1993))或Pearson之FASTA(參照Methods Enzymol.,183,63,1990)。已開發基於演算法BLAST之已知為BLASTN或BLASTX之軟體(參照：http：//www.ncbi.nlm.nih.gov)。進一步地，任何胺基酸或多核苷酸序列彼此是否具有同源性、類似性或單一性，可藉由於所定義之嚴苛條件下之南方雜交試驗比較序列，以及合適的雜交條件係定義於所屬技術領域，且可藉由所屬技術領域中具有通常知識者習知的方法予以測定(例如，J.Sambrook等人，Molecular Cloning,A Laboratory Manual,2nd Edition,Cold Spring Harbor Laboratory press,Cold Spring
Harbor,New York,1989；F.M.Ausubel等人，Current Protocols in Molecular Biology)。
本發明之微生物只要可製備OPS，不限定其類型，且可為原核或真核微生物，具體地為原核微生物。原核微生物可包括屬於艾氏菌(Escherichia)屬、伊文氏桿菌(Erwinia)屬、鋸桿菌(Serratia)屬、普羅維登菌(Providencia)屬、棒狀桿菌(Corynebacterium)屬、及短桿菌(Brevibacterium)屬，具體地為屬於艾氏菌屬的微生物，更具體地為大腸桿菌(Escherichia coli)，但不限於此。特別地，在微生物屬於艾氏菌屬的情況，OPS及L-絲胺酸可經由L-絲胺酸生物核成途徑的酵素之SerA、SerC及SerB製備(Ahmed Zahoor,Computational and structural biotechnology journal,Vol.3,2012 October；Wendisch V.F.等人，Curr Opin Microbiol.2006 Jun；9(3)：268-74；Peters-Wendisch P.等人，Appl Environ Microbiol.2005 Nov；7 1(ll)：7 139-44.)。
本發明之「O-磷絲胺酸-製備微生物」意指具有天然製備O-磷絲胺酸能力的微生物，或對不具有製備O-磷絲胺酸能力的親代菌株賦予O-磷絲胺酸製備能力的微生物。具體地，該微生物可為因天然或人工基因修改而具有增強的Nuo活性的O-磷絲胺酸-製備微生物。為了本發明之目的，O-磷絲胺酸-製備微生物可為藉由本發明揭示的方法增強Nuo活性之能製備O-磷絲胺酸的微生物。本發明中，該「O-磷絲胺酸-製備微生物」可與「製備O-磷絲胺酸的微生物」或「具有O-磷絲胺酸製備能力的微生物」互換使用。
一實施態樣中，本發明的O-磷絲胺酸-製備微生物可為基因修改微生物或重組微生物，其中Nuo活性係經增強的，藉此增加所欲之O-磷絲胺酸製備能力，但不限於此。
如本文所使用，術語蛋白質的「活性增強」意指相較於蛋白質內源的活性，蛋白質的活性係經增加的。「內源的活性」意指當性狀因天然或人工因素經由基因修改而改變時，轉形前的親代菌株或未經修改微生物原始擁有的特定蛋白質活性，且可與「修改前活性」互換使用。相較於內源的活性之蛋白質活性「增加」意味相較於轉形前的親代菌株或未經修改微生物原始擁有的特定蛋白質活性，該蛋白質活性係增強的。舉例而言，親代菌株可為大腸桿菌ATCC27325。作為另一實例，親代菌株可為包括增加OPS製備能力的修改之菌株，舉例而言，CA07-0012(KCCM 11212P；US 2012-0190081 A)或CA07-4821，但不限於此。
「活性的增強」可藉由導入外來蛋白質或藉由增強內源的蛋白質活性而達成，且可具體地藉由增強內源的蛋白質活性而達成。蛋白質活性的增強可藉由蛋白質活性高低、表現量多寡或由蛋白質製備的產物量的增加予以確認。
活性的增強可藉由所屬技術領域中習知的多種方法應用，且相較於修改前微生物的活性，只要該方法可增強靶蛋白質的活性，則無限制。具體地，可使用習知於所屬技術領域中具有通常知識者之基因工程及/或蛋白質工程，其為分子生物學常見方法，但該方法不限於彼等(例如，Sitnicka等人Functional Analysis of Genes.Advances in Cell Biology.2010,Vol.2.1-16,Sambrook等人Molecular Cloning 2012,etc.)。
本發明中，靶向活性增強的蛋白質，亦即靶蛋白質，可為Nuo，但不限其該蛋白質只要其為「藉由消耗NADH形成質子驅動力的蛋白質」或「消耗NADH的蛋白質」且該二蛋白質藉由nuo操縱子所編碼。
本發明之Nuo活性的增強可包括構成Nuo蛋白質複合體之次單元蛋白質的一者或多者的活性增強。
具體地，本發明之蛋白質的活性增強可藉由下述方式達成：
1)增加編碼蛋白質的基因的細胞內複本數；
2)修改染色體之編碼蛋白質的基因之表現調控區；
3)修改編碼該蛋白質的基因轉錄物的編碼起始密碼子或5’-UTR的核苷酸序列；
4)修改胺基酸序列使蛋白質活性增強；
5)修改編碼蛋白質的多核苷酸序列使蛋白質活性增加(例如，修改編碼蛋白質的基因序列以編碼經修改為增強活性的蛋白質)；
6)導入展現該蛋白質活性之外來多核苷酸或該多核苷酸之密碼子-最適化變體多核苷酸；
7)編碼該蛋白質之多核苷酸的密碼子-最適化；
8)分析該蛋白質的三級結構且從而選擇及修改暴露位點，或化學修改彼等；或
9)自上述1)至8)選擇二種或更多種之組合，但不限於此。
具體地，增加編碼蛋白質之基因的細胞內複本數的方法1)可藉由所屬技術領域習知的任何方法達成，舉例而言，藉由導入載體至宿主細胞，該載體係可操作地連結至編碼蛋白質的基因且能複製及作用而與宿主細胞無關。此外，該方法可藉由導入載體至宿主細胞進行，該載體係可操作地連結至基因且能將基因插入至宿主細胞的染色體，但不限於此。
如本文所使用，術語「載體」意指含有編碼靶蛋白質的多核苷酸序列之DNA構建體，該多核苷酸序列係可操作地連結至適當的調控序列，從而能於適當的宿主細胞表現靶蛋白質。表現調控序列可包括能起始轉錄的啟動子、用於調控轉錄之任何操縱子序列、編碼適當的mRNA核糖體結合位點之序列以及用於調控轉錄及轉譯終止的序列。一旦轉形進入適當的宿主細胞，該載體可獨立於宿主基因體而複製或作用，或可整合至宿主的基因體。
使用於本發明之載體無特別限制，只要其可複製，且可使用所屬技術領域習知的任何載體。使用載體的典型實例可包括天然或重組的質體、黏質體、病毒及噬菌體。舉例而言，作為噬菌體載體或黏質體載體，可使用pWE15、M13、MBL3、MBL4、IXII、ASHII、APII、t10、t11、Charon4A及Charon21A等；以及作為質體載體，可使用該等基於pBR、pUC、pBluescriptII、pGEM、pTZ、pCL、pSK、pSKH及pET等。具體地，可使用載體pCL、pSK、pSKH130、pDZ、pACYC177、pACYC184、pECCG117、pUC19、pBR322、pMW118、pCC1BAC等。
將多核苷酸插入至染色體可藉由所屬技術領域習知的方法進行，舉例而言，同源重組，但不限於此。
如本文所使用，術語「轉形(transformation)」意指將含有編碼靶蛋白質的多核苷酸的重組質體導入至宿主細胞，使得由該多核苷酸所編碼的蛋白質可於宿主細胞表現。只要該經轉形的多核苷酸可於宿主細胞表現，則該經轉形之多核苷酸係整合至該宿主細胞的染色體且位於染色體中或染色體外，均無關緊要，且二種清況皆包括在內。用於轉形載體的方法包括將核酸導入細胞的任何方法，且可藉由根據宿主細胞選擇所屬技術領域中習知的適當標準技術進
行。舉例而言，轉形可經由電穿孔、磷酸鈣(CaPO4)沉澱、氯化鈣(CaCl2)沉澱、微注射、聚乙二醇(PEG)技術、DEAE-葡聚糖技術、陽離子脂質體技術、乙酸鋰-DMSO技術等，但該方法不限於此。
進一步地，如本文所使用，術語「可操作地連結」意指該多核苷酸序列係功能性地連結至起始及調控本發明之編碼靶蛋白質的多核苷酸之啟動子序列或表現調控區。可操作地連結可使用所屬技術領域習知的基因重組技術製備，以及位點特異性DNA裂解及連結可使用所屬技術領域習知的裂解及連結酵素等製備，但不限於此。
修改染色體中編碼蛋白質的基因之表現調控區的方法2)可藉由所屬技術領域習知的任何方法達成，舉例而言，藉由於多核酸序列經刪除、插入、非保守或保守的取代或其組合，誘導對序列上修改以進一步增強表現調控序列的活性，或藉由以具有更強活性的核酸序列替換該序列或插入該序列。表現調控序列可包括但不特別限於啟動子、操縱子序列、編碼核糖體結合位點的序列以及調控轉錄及轉譯的終止的序列等。該方法可具體地包括於原始啟動子下游插入強異源性啟動子，但不限於此。
已知的強啟動子實施例可包括CJ1至CJ7啟動子(US 7662943 B2)、lac啟動子、trp啟動子、trc啟動子、tac啟動子、λ噬菌體PR啟動子、PL啟動子、tet啟動子及rmf啟動子等，但不限於此，且可包括相較於其內源性活性具有較強啟動子的所有取代。
修改編碼該蛋白質的基因轉錄物之起始密碼子或5’-UTR的核苷酸序列的方法3)可藉由所屬技術領域習知的任何方法達成，舉例而言，藉由以
相較於內源性起始密碼子具有更高的蛋白質表現率之另一起始密碼子取代蛋白質的內源性起始密碼子，但不限於此。
修改胺基酸序列或多核苷酸序列的方法4)及5)可藉由所屬技術領域習知的任何方法達成，舉例而言，藉由於核酸序列之經由刪除、插入、非保守或保守的取代或其組合，誘導對序列的修改以進一步增強表現調控序列的活性，或藉由以具有更強活性的核酸序列替換該序列或插入該序列。替換可藉由將基因經由同源重組插入至染色體進行，但不限於此。
本文使用之載體可進一步包括選擇標記以確認插入至染色體。選擇標記係用於選擇經以載體轉形的細胞，亦即，用於確認基因的插入係經導入，且可使用提供可選擇表現型的標記，表現型如藥物耐受性、營養缺陷性、對細胞毒性劑的耐受性或表面蛋白質的表現，但選擇標記不限於此。僅有表現選擇標記的細胞能於經選擇劑處理的環境存活或表現不同表現型，且因而可選擇該經轉形的細胞。
導入具有蛋白質活性之外來多核苷酸的方法6)可藉由所屬技術領域習知的任何方法達成，舉例而言，藉由對宿主細胞導入展現與蛋白相同或類似活性之編碼該蛋白質之外來多核苷酸或其密碼子-最適化變體多核苷酸。可使用外來多核苷酸而無關其來源或序列，只要其展現與蛋白質相同或類似活性。再者，經導入的外來多核苷酸可藉由最適化其密碼子而導入至宿主細胞，以使於宿主細胞達成最適化的轉錄及轉譯。導入可藉由所屬技術領域中具有通常知識者合適地選擇所屬技術領域習知的轉形方法進行，以及經導入至宿主細胞的多核苷酸的表現使該蛋白質能製備，從而增加其活性。
編碼蛋白質之多核苷酸的密碼子最適化之方法7)可藉由內源性多核苷酸的密碼子最適化以增加宿主細胞內的轉錄或轉譯予以達成，或藉由最適化其密碼子以使得該外來多核苷酸的最適化轉錄及轉譯可於宿主細胞內達成。
可達成分析蛋白質的三級結構且從而選擇及修改暴露位點或化學修改彼等的方法8)，舉例而言，藉由以資料庫比較待分析的多肽的序列資訊，該資料庫係儲存已知蛋白質的序列資訊，根據序列相似性程度已決定模板蛋白質候選者，且因此確認基於該資訊的結構從而選擇及轉形或修改待修改或化學修改的暴露位點。
一實施態樣中，蛋白質活性的增強可藉由上述1)至2)之任一者或多者達成。
上述實施態樣之任一者中，本發明之NADH：醌氧化還原酶活性的增強可為nuo操縱子表現的增加。上述實施態樣之任一者中，NADH：醌氧化還原酶活性的增強可包括於編碼其的基因上游具有增強活性之基因表現調控序列。具體地，編碼NADH：醌氧化還原酶的基因上游可為nuoA基因上游。一實施態樣中，NADH：醌氧化還原酶活性的增強可為存在於該操縱子之一種或多種結構基因表現的增強，舉例而言，2種或更多種、3種或更多種或全部結構基因，藉由修改存在於編碼Nuo蛋白質複合體之nuo操縱子之一種表現調控序列。具體地，表現調控序列的修改可為於nuo操縱子之內源性啟動子及nuoA基因之間額外插入具有增強活性的基因表現調控序列；舉例而言，該基因表現調控序列可為啟動子，但不限於此。
該蛋白質活性的增強可意味相對於野生型或修改前微生物表現之蛋白質活性或濃度，該蛋白質之活性或濃度係增加的，或自該蛋白質所製備知蛋白質量係增加的，但不限於此。
如本文所使用，術語「修改前菌株」或「修改前微生物」不排除含有可天然發生於微生物之突變的菌株，且可意指其天然性菌株，或由天然或人工因子引起基因修改所造成的性狀改變之前的菌株。本發明中，性狀的修改可為Nuo活性的增強。「修改前菌株」或「修改前微生物」可與「非突變體菌株」、「非修改菌株」、「非突變體微生物」、「非修改微生物」或「參照微生物」互換使用。
本發明的微生物進一步增強製備OPS的能力及/或排出OPS至細胞外的能力；或可包括增強OPS分解的能力及/或流入能力。
增強製備OPS的能力及/或排出OPS至細胞外的能力，或增強OPS分解的能力及/或流入能力的實施例，可包括磷絲胺酸磷酸酶(phosphoserine phosphotase)(SerB)的活性減弱、磷絲胺酸輸出蛋白質(YhhS)的活性增強或該等修改的組合，但不限於此。
如本文所使用，術語多肽的「弱化」係完整性的概念，包括相較於其內源性活性為減低或無活性二者。弱化可與如無活性化、缺陷、下調、減少、減低、減弱等互換使用。
減弱也可包括起因於編碼多肽的多核苷酸突變，相較於微生物原始所擁有多肽的活性，多肽活性本身係減少或移除的情況；起因於編碼多肽的多核苷酸基因表現的抑制或轉譯成多肽的抑制等，相較於天然菌株，細胞內多肽活性及/或濃度(表現量)之總體量係減少的情況；多核苷酸係完全不表現的情況；
及/或即便多核苷酸表現但未觀察到多肽活性的情況。如本文所使用，術語「內源的活性」意指當性狀係經由天然或人工因子引起的基因修改而改變時，轉形前的親代菌株、野生型或非修改微生物原始所擁有的特定多肽活性，且可與「修改前活性」互換使用。相較於其內源的活性，該多肽活性係「無活化、缺陷、減少、下調、減低或減弱」的表現，意指相較於轉形前的親代菌株或非修改微生物原始所擁有的特定多肽活性，該多肽活性係減少的。
多肽活性的減弱可藉由所屬技術領域習知的任何方法進行，但方法不限於此，且可藉由應用所屬技術領域習知的多種方法達成(例如，Nakashima N等人，Bacterial cellular engineering by genome editing and gene silencing.Int J Mol Sci.2014；15(2)：2773-2793,Sambrook等人Molecular Cloning 2012,etc.)。
具體地，本發明之多肽活性的減弱可藉由下述者達成：
1)刪除編碼多肽之基因的一部分或全部；
2)修改表現調控區(表現調控序列)以使得編碼端的基因表現係減少的；
3)修改構成多肽的胺基酸序列以使得多肽活性移除或減弱(例如，於胺基酸序列刪除/取代/加成一個或多個胺基酸)；
4)修改編碼多肽的基因序列以使得多肽活性移除或減弱(例如，於多肽基因的核苷酸序列刪除/取代/加成一個或多個核苷酸，以編碼多肽的活性經移除或減弱的多肽)；
5)修改編碼多肽的基因轉錄物的編碼起始密碼子或5’-UTR的核苷酸序列；
6)導入反義寡核苷酸(例如，反義RNA)，其互補結合編碼多肽的基因轉錄物；
7)於編碼多肽的基因的SD序列前端加入與Shine-Dalgarno(SD)序列互補的序列以形成二級結構，從而抑制核糖體附接；
8)逆轉錄工程(RTE)，其在編碼多肽的基因的開放閱讀框(ORF)的3’終端加入將被逆轉錄的啟動子；或
9)自上述方法1)至8)選擇二者或更多者之組合，但不特別限於此。
舉例而言，
刪除編碼多肽的基因的一部分或全度的方法1)可藉由刪除染色體內編碼內源靶多肽的多核苷酸全部，或藉由以具有部分經刪除的核苷酸的多核苷酸或以標記基因替換該多核苷酸而達成。
修改表現調控區(表現調控序列)的方法2)可藉由經由刪除、插入、非保守取代或保守取代或其組合於表現調控區誘發修改；或藉由較弱活性的核酸序列替換該序列而達成。表現調控區可包括啟動子、操縱子序列、編碼核糖體結合未點的序列以及用於調控轉錄及轉譯終止的序列，但不限於此。
進一步地，修改編碼多肽的基因轉錄物的編碼起始密碼子或5’-UTR的核苷酸序列的方法5)可藉由，舉例而言，以編碼相較於內源的起始密碼子具有較低的多肽表現率之另一起始密碼子的核苷酸序列取代該核苷酸序列而達成，但不限於此。
修改胺基酸序列或多核苷酸序列的方法3)及4)可藉由於多肽或編碼多肽的多核苷酸序列的序列經由刪除、插入、非保守或保守的取代或其組合於序列誘發修改以減弱多肽活性，或藉由以經修改為具較弱活性的胺基酸序列或多核苷酸序列，或經修改為不具活性的胺基酸序列或多核苷酸序列替換該
序列而達成，但不限於此。舉例而言，基因表現可藉由對多核苷酸序列導入突變以形成終止密碼子予以抑制或減弱，但不限於此。
導入反義寡核苷酸(例如反義RNA)的方法6)，該反義寡核苷酸互補結合編碼多肽的基因轉錄物的方法6)可見於文獻[Weintraub,H.等人，Antisense-RNA as a molecular tool for genetic analysis,Reviews-Trends in Genetics,Vol.1(1)1986]。
於編碼多肽的基因的SD序列前端加入與Shine-Dalgarno(SD)序列互補的序列以形成二級結構，從而抑制核糖體附接的方法7)可藉由抑制mRNA轉譯或減低其速度而達成。
逆轉錄工程(RTE)，其在編碼多肽的基因的開放閱讀框(ORF)的3’終端加入將被逆轉錄的啟動子的方法8)可藉由形成互補於編碼多肽的基因轉錄物的反義核苷酸以減弱活性而達成。
本發明的SerB具有轉化OPS為L-絲胺酸的活性，且因而該微生物經修改以減弱具有於其中累積OPS的性質之SerB活性，因而有用於製備OPS。本發明的SerB可為具有或包括SEQ ID NO：2表示的胺基酸序列的蛋白質，或可為由或主要由SEQ ID NO：2表示的胺基酸序列組成的蛋白質，但不限於此。此外，本發明的SerB可具有或包括與SEQ ID NO：2表示的胺基酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的序列同源性或同一性的胺基酸序列，只要其顯示SerB活性。再者，本發明的SerB可由或主要由與SEQ ID NO：2表示的胺基酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的序列同源性或同一性的胺基酸序列組成，但不限於此。此外，編碼SerB的多核苷酸可具有或包括編碼SEQ ID NO：2表示的胺基酸序列的SEQ ID NO：3的核苷酸序列。進一步地，編碼SerB的多核苷酸可由或主要由編碼SEQ ID NO：2表示的胺基酸序列
的核苷酸序列組成。本發明之編碼SerB的多核苷酸可於不改變SerB蛋白質的胺基酸序列的範疇內，因密碼子簡併性或考慮欲表現SerB蛋白質的有機體中之較佳密碼子，在編碼區進行各種突變。本發明之編碼SerB的多核苷酸可具有或包括對SEQ ID NO：3的核苷酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的且少於100%的同源性或同一性的核苷酸序列。此外，本發明之編碼SerB的多核苷酸可由或主要由對SEQ ID NO：3的核苷酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的且少於100%的同源性或同一性的核苷酸序列組成，但不限於此。
本發明之YhhS具有輸出OPS的活性，且微生物經修改以增強具有輸出OPS性質的YhhS活性，因而有用於製備OPS。本發明之YhhS可為具有或包括SEQ ID NO：4表示的胺基酸序列的蛋白質，或可為由或主要由SEQ ID NO：4表示的胺基酸序列組成的蛋白質，但不限於此。此外，本發明的YhhS可具有或包括與SEQ ID NO：4表示的胺基酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的序列同源性或同一性的胺基酸序列，只要其顯示YhhS活性。再者，本發明的YhhS可由或主要由與SEQ ID NO：4表示的胺基酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的序列同源性或同一性的胺基酸序列組成，但不限於此。此外，編碼YhhS的多核苷酸可具有或包括編碼SEQ ID NO：4表示的胺基酸序列的SEQ ID NO：5的核苷酸序列。進一步地，編碼YhhS的多核苷酸可由或主要由編碼SEQ ID NO：4表示的胺基酸序列的核苷酸序列組成。本發明之編碼YhhS的多核苷酸可於不改變YhhS蛋白質的胺基酸序列的範疇內，因密碼子簡併性或考慮欲表現YhhS蛋白質的有機體中之較佳密碼子，在編碼區進行各種突變。本發明之編碼YhhS的多核苷酸可具有或包括對SEQ ID NO：5的核
苷酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的且少於100%的同源性或同一性的核苷酸序列。此外，本發明之編碼YhhS的多核苷酸可由或主要由對SEQ ID NO：5的核苷酸序列具有70%、80%、90%、95%或99%或更高的且少於100%的同源性或同一性的核苷酸序列組成，但不限於此。
一實施態樣中，包括修改以增強製備OPS的能力及/或輸出OPS至細胞外的能力的微生物；或以增強OPS-分解及/或流入能力的微生物可為CA07-0012(KCCM 11212P；US 2012-0190081 A)或CA07-4821，但不限於此。關於OPS-製備微生物的內容，除上述者外，可使用韓國專利第1381048號或美國專利公開案第2012-0190081號的揭示內容作為本發明的參考。
本發明的另一態樣提供用於製備OPS的方法，包括於培養基培養具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性的OPS-製備微生物。
微生物係如上述。
如本文所使用，術語「培養」意指微生物於合適調控的環境條件下生長。本發明之培養過程可於所屬技術領域習知的適當培養基及培養條件進行。該培養過程可由所屬技術領域中具有通常知識者根據所選擇的菌株容易地調整。具體地，培養可為批式培養、連續培養及饋料批式培養，但不限於此。
於培養微生物中，培養基可進一步含有甘胺酸或絲胺酸。甘胺酸可以純的甘胺酸、含甘胺酸的酵母萃取物或胰腖的形式提供。欲含有於培養基中的甘胺酸濃度通常為0.1g/L至10g/L，且具體地0.5g/L至3g/L。此外，斯胺酸可以純的斯胺酸、含絲胺酸的酵母抽出物或胰腖的形式提供。欲含有於培養基中的絲胺酸濃度通常為0.1g/L至5g/L，且具體地0.1g/L至1g/L。
欲含有於培基中的碳源實施例可包括醣類及碳水化合物類如葡萄糖、蔗糖、乳糖、果糖、麥芽糖、澱粉及纖維素；由類及脂肪類如大豆油、葵花油、蓖麻油及椰子油；脂肪酸類如棕櫚酸、硬脂酸及亞麻油酸；醇類如甘油及乙醇；以及有機酸類如乙酸。該等碳源可單獨使用或組合使用，但不限於此。
欲含有於培基中的氮源實施例可包括有機氮源如蛋白腖、酵母抽出物、肉汁、麥芽抽出物、玉米漿及豆粉；以及無機氮源如尿素、硫酸銨、氯化銨、磷酸銨、碳酸銨及硝酸銨。該等氮源可單獨使用或組合使用，但不限於此。
欲含有於培基中的磷源實施例可包括磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀及相應之含鈉鹽類，但不限於此。
此外，培養基可包括金屬鹽類，如硫酸鎂或硫酸鐵，以及可進一步含有胺基酸類、維生素類及合適的前驅物。該等培養基或前驅物可以批式培養或連續培養形式添加至培養物，但不限於此。
培養物的pH可藉由以合適的方式於培養中添加化合物如氫氧化銨、氫氧化鉀、氨、磷酸及硫酸。此外，可使用如脂肪酸聚二醇酯之消泡劑於培養中預防發泡形成。進一步地，可對培養注入氧氣或含氧之氣體以維持盆養物的有氧狀態；或可注入氮氣、氫氣或二氧化碳，或無氣體注入，以維持厭氧或微厭氧狀態。培養的溫度可為25℃至40℃的範圍，特別是由30℃至35℃。培養可持續直到可獲得有用的材料，且具體地由10小時至100小時，但不限至於該等說明的實施例。
本發明可於本發明方法之培養步驟前進一步包括製備培養基的步驟，但不限於此。
該方法可進一步包括由培養基或微生物回收OPS的步驟。回收步驟可進一步地包括於培養步驟之後。
本發明之回收OPS的方法中，所欲之OPS可根據培養方法使用所屬技術領域習知的方法由培養溶液回收。舉例而言，可使用方法如離心、過濾、離子交換層析及HPLC，以其所欲之OPS可使用所屬技術領域習知的是當方法由培養基或微生物回收。
進一步地，回收步驟可進一步地包括純化過程，該純化過程可使用所屬技術領域習知的合適方法進行。因而，回收的OPS可為經純化狀態或為含有OPS之微生物醱酵物。此外，OPS的回收可藉由於培養步驟之前及之後以及回收步驟之前及之後加入所屬技術領域習知的適當方法而有效率地進行。
本發明之又一態樣提供至倍半胱胺酸或其衍生物的方法，包括：
a)於培養基培養具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性之O-磷絲胺酸-製備微生物以製備O-磷絲胺酸或含有O-磷絲胺酸之培養基；以及
b)於O-磷絲胺酸巰基化酶(OPSS)或表現該酵素的微生物的存在下，使步驟a)所製備的O-磷絲胺酸或含有O-磷絲胺酸之培養基與硫化物反應。
步驟a)及b)不必為順序所限制，亦即為連續進行或依序進行，且該等步驟之間可無時間間隔，以及該等步驟可同時進行，或以數秒、數分鐘、數小時、數日的間隔進行。
具體地，方法可為用於製備半胱胺酸或其衍生物的方法：包括於培養基培養具有增強的Nuo活性之OPS-製備微生物以製備OPS或含有OPS的培養基；以及於O-磷絲胺酸巰基化酶(OPSS)或表現該酵素之微生物的存在
下，將步驟a)所製備的O-磷絲胺酸或含有O-磷絲胺酸的培養基與硫化物反應。NADH：醌氧化還原酶活性的增強以及O-磷絲胺酸-製備微生物係如上文所述。
如本文所使用，術語「衍生物」意指藉由化學性修改任何化合物的一部分所獲得之類似化合物。該術語通常意指其中氫原子或特定原子基團經以另一原子或原子基團取代之化合物。
如本文所使用，術語「半胱胺酸衍生物」意指半胱胺酸中之氫原子或特定原子基團經以另一原子或原子基團取代之化合物類。舉例而言，半胱胺酸衍生物類可具有半胱胺酸中的胺基(-NH2)的氮原子或硫醇基(-SH)的硫原子具有另一原子或原子基團附接之形式，以及半胱胺酸衍生物類的實例可包括NAC(N-乙醯基半胱胺酸)、SCMC(S-羧基甲基半胱胺酸)、Boc-Cys(Me)-OH、(R)-S-(2-胺基-2-羧基乙基)-L-同半胱胺酸、(R)-2-胺基-3-磺基丙酸、D-2-胺基-4-(乙基巰基)丁酸、3-亞磺酸基-L-丙胺酸、Fmoc-Cys(Boc-鉀基)-OH、硒基-L-半胱胺酸、S-(2-噻唑基)-L-半胱胺酸、S-(2-噻吩基)-L-半胱胺酸、S-(4-甲苯基)-L-半胱胺酸等，但不限於此。
只要根據本發明的方法製備半胱胺酸，成為半胱胺酸衍生物類的轉化可藉由所屬技術領域習知的方法轉化為各種半胱胺酸衍生物類。
具體地，製備半胱胺酸衍生物類的方法可進一步將步驟b)所製備的半胱胺酸轉化為半胱胺酸衍生物。舉例而言，半胱胺酸可藉由採用乙醯化劑的反應合成為N-乙醯基半胱胺酸(NAC)，或其可藉由於鹼性條件採用鹵乙酸的反應合成為S-羧基甲基半胱胺酸(SCMC)，但不限於此。
半胱胺酸衍生物類主要使用於作為鎮咳劑、止咳劑及支氣管炎、支氣管氣喘、咽喉炎等治療劑的藥物原料，但不限於此。
如本文所使用，術語「O-磷絲胺酸巰基化酶(OPSS)」意指酵素催化用於OPS自硫醇基(-SH基團)轉化為半胱胺酸的反應。該酵素可能首先已被發現於敏捷氣熱菌(Aeropyrum pernix)、結核分枝桿菌(Mycobacterium tuberculosis)、恥垢分枝桿菌(Mycobacterium smegmatics)及陰道毛滴蟲(Trichomonas vaginalis)(Mino K.and Ishikawa K.,FEBS Letters,551：133-138,2003；Burns K.E.等人，J.Am.Chem.Soc.,127：11602-11603,2005)。此外，OPSS可不僅包括野生型OPSS蛋白質，也包括編碼較野生型OPSS蛋白質的生物活性，其顯示活性等於或高於之OPSS的多核苷酸序列的部分缺失、取代或加成之變體蛋白質，且亦可包括揭示於美國專利公開案第2012-0190081 A1號及美國專利第9127324 B2號所揭示的所有OPSS蛋白質及其變體。
使用於本發明之硫化可為任何硫化物只要其使用於所屬技術領域通常為固體形式，但也可因pH、壓力及溶解度的差異而為液體形式或氣體形式，且因而可轉化硫醇基(SH)為硫醚(S2-)或硫代硫酸根(S2O3 2-)形式而無限制。具體地，硫化物可包括Na2S、NaSH、H2S、(NH4)2S、NaSH及Na2S2O3，彼等可對OPS提供硫醇基，但不限於此。反應中，單一硫醇基系提供於單一反應性OPS基團以製備單一半胱胺酸或其衍生物。此反應中，硫化物具體地以0.1至3莫耳當量的量添加，且具體地基於OPS的莫耳濃度為1至2莫耳當量，但不限於此。
本發明之再一態樣提供用於製備OPS-製備微生物的方法，包括：修改艾氏菌屬的微生物以增強NADH：醌氧化還原酶活性。
本發明之又另一目標提供具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性之為生物之製備O-磷絲胺酸、半胱胺酸或其衍生物的用途。
NADH：醌氧化還原酶、其活性增強、微生物等係如上文所述。
[實施本發明之模式]
本發明將藉由實施例更詳細的描述。然而，對於本發明所屬領域具有通常知識者其明顯的為該等實施例僅提供用於說明的目的，並且本發明的範圍不意圖在限制於該等實施例或為該等實施例所限制。
實施例1：具有突變之NuO表現調控區之菌株的OPS製備活性的評估
如同先前研究結果，發現OPS-至被宿主菌株中的nuoA、rmf及idi基因的平均轉錄量級分別為8986、32205及631，以及各培養段之具體值示於表1。
[表1]
確認rmf轉錄量級的平均值為nuoA者的3.6倍，以及idi轉錄量級的平均值為nuoA者的0.07倍。該等結果表明，相較於nuoA的啟動子，rmf基因的啟動子為強的啟動子以及idi基因的啟動子為弱的啟動子。
因此，企圖比較當藉由將具有不同活性之rmf啟動子及idi啟動子插入至OPS-製備微生物內的nuo操縱子(SEQ ID NO：1)以調控NADH：醌氧化還原酶表現時之微生物的OPS製備能力。
1-1：用於增強Nuo表現調控區之質體的構建
基於大腸桿菌ATCC27325染色體DNA作為模板，使用具有SEQ ID NOS：14及15之核苷酸序列的引子對獲得nuo基因野生型啟動子上游區之基因片段，以及使用具有SEQ ID NOS：18及19之核苷酸序列的引子對獲得啟動子下游區之基因片段。此外，基於大腸桿菌ATCC27325染色體DNA作為模板，使用具有SEQ ID NOS：16及17之核苷酸序列的引子對獲得rmf基因啟動子區。
為了獲得片段，使用SolgTM Pfu-X DNA聚合酶進行PCR，以及該PCR係於95℃變性2分鐘，接著進行於95℃變性30秒、於60℃低溫黏合30分鐘、及於72℃聚合60秒之30個循環，然後於72℃聚合5分鐘之PCR擴增條件下進行。
藉由上述操作獲得之nuo啟動子的上游片段及下游片段以及rmf啟動子的片段係以經採用限制酶EcoRV裂解之用於染色體轉形的pSKH130載體(SEQ ID NO：39，美國專利公開案號2020-0048619)予以選殖，使用無縫選殖套組(Clontech Laboratories,Inc.)以獲得重組質體，且將其命名為pSKH130_Prmf-nuoA。
1-2：構建用於減弱Nuo表現調控區的質體
基於大腸桿菌ATCC27325染色體DNA作為模板，使用具有SEQ ID NOS：14及20的核苷酸序列的引子對獲得nuo基因野生型啟動子上游區的基因片段，以及使用具有SEQ ID NOS：23及19的核苷酸序列的引子對獲得該啟動子下游區的基因片段。此外，基於大腸桿菌ATCC27325染色體DNA作為模板，使用具有SEQ ID NOS：21及22的核苷酸序列的引子對獲得idi基因啟動子區。
PCR係於如實施例1-1相同的PCR條件下進行以獲得片段，以及選殖係使用該等片段以與實施例1-1相同方式進行以獲得重組質體。將其命名為pSKH130_Pidi-nuoA。
實施例1-1及1-2使用之引子序列示於表2。
[表2]
1-3：構建Nuo表現調控區突變菌株
實施例1-1所製備之pSKH130_Prmf-nuoA藉由電穿孔(Appl.Microbiol.Biotechnol.(1999)52：541-545)轉形至具有OPS製備能力之CA07-0012(KCCM 11212P，美國公開案號-0190081)且接受二次互換(crossover)，藉此獲得其中rmf基因的啟動子核苷酸序列經插入於nuo基因野生型啟動子核苷酸序列終端之CA07-4826菌株。
具體地，pSKH130載體含有PI蛋白質(pir基因)-依賴性R6K複製子、SacB(聚果聚醣蔗糖酶)基因及卡納黴素耐受基因。獲得所期望之菌株後，於一次互換使用R6K及卡納黴素，自含有蔗糖的培養基移除抗生素以製備菌株。
CA07-4826中，rmf啟動子核苷酸序列的插入係使用SEQ ID NOS：24及25的引子對經由PCR及基因體定序予以確認。
依相同方式，實施例1和2所製備之pSKH130_Pidi-nuoA係藉由電穿孔予以轉形(Appl.Microbiol.Biotechnol.(1999)52：541-545)且接受二次互換，藉此獲得其中idi基因的啟動子核苷酸序列經插入於nuo基因野生型啟動子核苷酸序列終端之CA07-4827菌株。CA07-4827中，idi啟動子核苷酸序列的插入係使用SEQ ID NOS：24及25的引子對經由PCR及基因體定序予以確認。使用之引子序列示於表3。
[表3]
1-4：使用力價培養基比較nuo-操縱子增強及減弱的菌株之OPS製備能力
為了評估實施例1-3所製備之CA07-4826及CA07-4827二種菌株以及對照CA07-0012之OPS製備能力，使用下述培養基(表4)評估。
[表4]
具體地，各菌株接種於固體LB培養基且於33℃培養隔夜。於固體培養基中培養隔夜之菌株接種至示於下表3之25mL力價培養基後，於培養箱中以200rpm速率於33℃培養48小時。所製備之OPS濃度示於表5。
[表5]
其中操縱子係藉由rmf啟動子增強之CA07-4826，相較於親代菌株，顯示約12.8%的OPS製備能力改善，以及其中nuo操縱子係藉由idi啟動子減弱之CA07-4827，相較於親代菌株，顯示約79.5%之減低的OPS製備能力。
實施例2：具有增強的OPS-製備能力之菌株中根據nuo操縱子的增強之OPS製備能力的評估
欲確認具有增強的OPS輸出能力的菌株中，當Nuo操縱子增強時，OPS製備能力是否進一步增加。為此，評估具有OPS輸出能力的蛋白質YhhS(SEQ ID NO：4，美國專利第10323262 B2號)經增強的菌株中，評估當nuo操縱子進一步增強時的OPS製備能力。
2-1：構建用於OPS-製備菌株中增強YhhS的質體
基於大腸桿菌ATCC27325染色體DNA作為模板，使用具有SEQ ID NOS：6及7的核苷酸序列的引子對獲得yhhS基因野生型啟動子上游區的基因片段，以及使用具有SEQ ID NOS：8及9的核苷酸序列之引子對獲得yhhS基因野生型啟動子下游區的基因片段。此外，基於pCL_Ptrc-gfp(US 2017-0247727 A1)作為模板，使用SEQ ID NOS：8及9之引子對獲得trc啟動子(Ptrc)。引子序列示於下表6。
[表6]
為獲得該等片段，使用SolgTM Pfu-X DNA聚合酶進行PCR，以及PCR係於95℃變性2分鐘，接著進行於95℃變性30秒、於60℃低溫黏合30分鐘、及於72℃聚合60秒之30個循環，然後於72℃聚合5分鐘之PCR擴增條件下進行。
藉由上述操作獲得之yhhS啟動子的上游片段及下游片段以及trc啟動子的片段係以經採用限制酵素EcoRV裂解之用於染色體轉形的載體予以選殖，使用無縫選殖套組(Clontech Laboratories,Inc.)以獲得重組質體，且將其命名為pSKH130_Ptrc-yhhS。
2-2：：構建YhhS-增強的菌株
實施例2-1所製備的pSKH130_Ptrc-yhhS係藉由電穿孔(Appl.Microbiol.Biotechnol.(1999)52：541-545)轉形至CA07-0012 by electroporation(Appl.Microbiol.Biotechnol.(1999)52：541-545)且接受二次交換藉此獲得其中trc啟動子核苷酸序列係經插入於yhhS基因野生型啟動子核苷酸序列終端之CA07-4821菌株。CA07-4821菌株中，trc啟動子核苷酸序列的插入係使用引子對SEQ ID NOS：12及13(Table 7)經由PCR及基因體定序予以確認。
[表7]
2-3：使用力價培養基評估YhhS-增強的菌株之OPS製備能力
為了評估實施力2-0所製備之菌株CA07-4821及其親代株CA07-0012之OPS製備能力，使用培養基(表4)以與實施例1-4相同方式實施評估。
結果，確認CA07-4821相較於CA07-0012顯示約26.7%之改良的OPS製備能力，以及結果示於表8。
[表8]
2-4：構建具有增強的YhhS及nuo操縱子之菌株
實施例1-1所製備之pSKH130_Prmf-nuoA係藉由電穿孔(Appl.Microbiol.Biotechnol.(1999)52：541-545)轉形至實施例2-3所製備之CA07-4821且接受二次交換藉此獲得rmf基因啟動子核苷酸序列經插入於nuo基因野生型啟動子核苷酸序列終端之CA04-4828。
於CA07-4828中，rmf啟動子核苷酸序列之插入係使用SEQ ID NOS：24及25之引子對經由PCR及基因體定序予以確認。
2-5：：使用力價培養基評估具有增強的Thhs及nuo操縱子之菌株的OPS製備能力
為了評估CA04-4828之OPS製備能力，使用CA04-18924作為對照，以與實施例1-4相同方式實施評估，以及結果示於表9。
[表9]
於CA07-4828的情況，其中YhhS及nuo操縱子係同時經增強，相較於其中僅有YhhS經增強的CA07-4821，OPS製備能力係改良約2.4%。因此，確認即便於具有經增強的OPS製備能力的菌株中，nuo操縱子的增強進一步增加OPS製備能力。
綜上所述，本發明所屬領域中具有通常知識者將能夠理解，本發明可由其他具體形式實施而不改變本發明的技術概念或本質特徵。就此而言，本文所揭示的例示性實施態樣僅用於說明目的且不應被解釋為限制本發明的範疇。相反地，本發明意圖不僅涵蓋例示性實施態樣，也涵蓋可包括在由所附申請專利範圍所界定的本發明的精神及範疇內的各種替代、修改、均等物及其他實施態樣。
Claims (11)
- 一種艾氏菌屬之重組微生物，其具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性及O-磷絲胺酸製備能力。
- 如請求項1所述之微生物，其中，該NADH：醌氧化還原酶活性的增強係藉由增加nuo操縱子表現而達成。
- 如請求項1所述之微生物，其中，該NADH：醌氧化還原酶活性的增強包含於編碼該NADH：醌氧化還原酶的基因上游之基因表現調控序列具有增強的活性。
- 如請求項3所述之微生物，其中，該編碼該NADH：醌氧化還原酶的基因上游係nuoA基因的上游。
- 如請求項1所述之微生物，其中，該磷絲胺酸磷酸酶(SerB)的活性係進一步弱化。
- 如請求項1所述之微生物，其中，該O-磷絲胺酸輸出蛋白質(YhhS)的活性係進一步增強。
- 如請求項1所述之微生物，其中，該微生物係大腸桿菌。
- 一種製備O-磷絲胺酸的方法，包含於培養基中培養如請求項1至7中任一項所述之微生物。
- 如請求項8所述之方法，其中，該方法進一步包含自培養基或微生物回收O-磷絲胺酸。
- 一種製備半胱胺酸或其衍生物的方法，包含：a)在培養基中培養具有增強的NADH：醌氧化還原酶活性的O-磷絲胺酸-製備微生物以製備O-磷絲胺酸或含有其之培養基；以及b)在O-磷絲胺酸巰基化酶(OPSS)或表現其之微生物的存在下，使步驟a)中所製備的O-磷絲胺酸或含有其的培養基與硫化物反應。
- 如請求項10所述之方法，其中，該硫化物係選自由Na2S、NaSH、(NH4)2S、H2S及Na2S2O3所組成群組之至少一者。
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