SU559653A3 - Способ получени полипептидов - Google Patents

Способ получени полипептидов

Info

Publication number
SU559653A3
SU559653A3 SU1983856A SU1983856A SU559653A3 SU 559653 A3 SU559653 A3 SU 559653A3 SU 1983856 A SU1983856 A SU 1983856A SU 1983856 A SU1983856 A SU 1983856A SU 559653 A3 SU559653 A3 SU 559653A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
insulin
solution
ala
protease
fractions
Prior art date
Application number
SU1983856A
Other languages
English (en)
Inventor
Грегори Гарольд
Лесли Волтон Питер
Original Assignee
Империал Кемикал Индастриз Лимитед (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Империал Кемикал Индастриз Лимитед (Фирма) filed Critical Империал Кемикал Индастриз Лимитед (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU559653A3 publication Critical patent/SU559653A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПОЛИПЕПТИДОВ виде их хлортдов при концентрации (мол рной). При ишользоваики фер1ч5ен1а Миксобактер AL- протеазой II услови  реакции подти такие же, которые используют с AM-протеазой. Соотношение э «нм-субстрат- ) при рН 4-10 и температуре 25-75° С. Предпочтательными услови ми  вл ютс  следующие: концентраци  инсулина, близка  к его растворимости в инкубаторной среде, рН 6-9, температура 30-50° С и низкое соотношение энзимсубстрат , напртмер 1:1000 или менее. В инкубационную сред}- включают металлические ионы, например, кальци  или магни . Реакцию осуществл ют при использовании знзима , св занного ковалентно с подложкой. Одним. нз способов гфисоединени  AM-протеазы к подложке  вл етс  активирование шариков агарозногр гел  цианогенбромидом с пространственными группами (или без них), происход щими, например, иэ пексиламина или гексановой кислоты. Затем активированную агарозу подвергают взаимодействию с АМ-протеазой. Если реакщ ю с энзимом осуществл ют при помощи энзима, растворенного в водной среде, необходимый дес-Лиз -Ала -свиной (или бычий ) инсулин можно отдел ть от друшх компонентов инкубационной смеси при помонди любого обшеприп того технологаческого приема разделени  полипептидов, например техники молекул рных сит. Водную среду, оставш тос  после того как весь исходный инсулин деградрфовал, фильтруют через колонку из поперечно-св занного декстранового гел  или пслиак риламидного гел , подход идах дл  фракционировани  соединений с мол.в. 5000-10000 при любом удобном значет1И рН, предпочтительно удаленных от полипептидов и предпочштельно с тжзкой изоэлектрической точкой. Колонку элюируют буферной смесью, состо щей из компонентов, которые  вл ютс  летучими при сушке вымораживанием под высоким вакуумом, например водной уксусной кислоты, карбоната аммони  или ацетата аммони , дава  требуемый продукт , которЬ1Й отдел ют при сушке вымораживанием злюата. Если реакцию с энзимом осуществл ют с помощью энзима, присоединенного к подложке, то отделение требуемого полипептида от энзима осуществл ют фильтровавшем, если подложка  вл етс  нераст зоримой, или используют фильтр дл  DbiciuHX полимеров, сопи подложка  вл етс  растворимой в водной среде. Лаже в кристаллизованном свином или бычьем инсулине содержатс  {фугие полипептиды в качестве примесей. Эти примеси обычно присутствуют о количестве 3-5 вес.% от всего инсулина и состо т из таких BesnecTB, как про-инсулин, фрагменты про инсулина и глюкатон, которые трудно отделимы 01 инсулина. Под действием специфической амимо.иьишептнлазы лизина примеси разрушаютс  до более мелких полипептидов. Инкубацией свиного йтш бычьего инсулина со специфической аминоэвдопептидазой и отделением продукта, полученного из энзима, лизил-аланина и полипептидаз с меньщим молекул рным весом, чем инсулин, т.е. олигопептидов, получают продукт, содержащий меньцше количества примесей, чем было в исходном препарате. Примеси, присутствующие в инсулиновом препарате, способствуют его антигенности. Продукты и полипептвды, полученные по предлагаемому способу, имеют активность, подобную инсулину, а также вызывают малое количество антител, которые св зывают вещества, подобные инсулину при последующем введении в организм, чем исходные вещества. Полученные полипептиды не обладают какимлибо токсическим действием. Их используют дл  лечени  диабета, также как при, использовании свиного или бычьего инсулина. Назначают их парзнтерально, обычно подкожно или в виде раствора, или в виде препаратов, предназначенных дл  хранени . Препараты оказывают продолжительное действие, например до 24 час. Дозы выбирают в зависимости от требуемого лечени  диабета, они могут быть высокими, например 200 ед. ежедневно. Пример 1. Свиной кнсулин, который предварительно был перекристаллизован 10 раз, раствор ют в 0,1 М бикарбоната аммони  (1,0 мл). Раствор инкубируют с АМ-протеазой (50 мкг) в течение 16 час при 37° С. Одну дозу (Шрлкг) инкубационной смеси затем анализируют на N - концевые амино-кислоты с помощью приема дансилировзни  при использовании 1 - диметиламинафталин - 5 - сульфонилхлорида . Вторую дозу провер ют с помощью бумажного электрофореза в смеси уксусной и муравьиной кислот при рН 2,1 (20мл муравьиной кислоты, 80 мл уксусной кислоты, разбавленных до I л водой ) и показьшают присутствие Н-.Пиз-Ала-ОН и епю одного компонента. Элюировапие второго компонента и анализ N - концевых аминокислот обнаруживает глицин и фенилалаиии.. Общий анализ аминокислот дает общее соотношение аминокислот аспарагиновой кислоты 3, сери (а 3, TpeofttiHa 2, глютаминовой кислоты 7, пролина 1, глицина 4, аланина 1, валина 4, изолейцика 2, лейцина 6, фенилаланина 3, тирозина 4, гистидина 2 и аргинина 1 вместе с цистенном количество которое точно не определено. Соединение отличаетс  от свиного инсулина отсутствием в нем лизина и только одного остатка алаиина. Третью дозу помешают в верхнюю часть колонки из смолы амино-кислотного анализатора Локарта . Колонку из смолы элюируют при 55°С следующим образом; доладн (рН 3,28); 55 мин (рН 4,25), 2 час 5 мин (рН 6,65), на которой инсулин по вл етс  3 час 54 мин, Лиз-Ала через 4 час 5 мин и дес-Лиэ -Ала свиной инсулин через
3 час 43 мин. Обнаружены только два пика, соответствующие дес-Лиз - Ала °-свиному инсули(су
Лиз-Ала.
Остаток инкубационной смеси помещают на колонку из пористого поперечно-св занного декстранового гел , уравновешенного 0,1 мол  карбонатааммони . Колонку про вл ют 0,1 М карбонатом аммони  при скорости потока 3 мл/час и собирают фракции 30 капель (1 мл). Фракцию анализируют fia пептидный материал измерением УФ-поглошени  при 280 нм и фракции 25-35, содержащие основной пик, сочетают и лиофилизируют, дава  дасЛиз - Ала - свиной инсулин.
П р и м е р 2. Свиной инсулин, перекристаллизовьтанный 10 раз, раствор ют в 0,1 М бикарбоната аммони , содержащем хлористый кальций, дава  раствор, содержащий 2 мг/мл инсулина и хлористый кальщ1Й в 3x1 б мол рной концентрации. Порции зтого раствора затем инкубируют при рН 8,2 при температуре 37° С в течение 40 час с количеством AM-протеазы, дающим следующие соотношени  энзим-субстрат: ;б25, 1:1250, .1:2500 и 1:5000. Анализ инкубационных смесей с некоторыми интервалами с помощью приемов, описанных в примере 1, показывает полное расщепление в каждом случае, за исключением 1:5000 реакции, в которой в конце :)ксперимента получают 88%-ное расщепление.
П р и м е р 3. Свиной инсулин, перекристаллизованный 10 раз, раствор ют в буферных смес х, приготовленных из аммиака и уксусной кислоты с рН 4,0; 6,0; 8,0 и 10, содержащих хлористый кальций, дава  2 мг/мл инсулина и хлористый кальций в Зх Мол рной концентрации. Растворы инкубируют с AM-протеазой при соотнощении энзим-субстрат 1:100 при температуре ЗТС в течение 6 час. Анализ показывает, что в каждом случае имеет место расщепление.
П р и м е р 4. Свиной инсулин, предварительно перекристаллизованный Шраз, раствор ют в 0,1 М буферном растворе бикарбоната аммони  при рН 8,2, содержащем хлористый кальций, дава  раствор, содержащий 2 мг/мл илсулина и хлористый кальций в ЗхШ мол рной концентрации. Порции раствора инкубируют с AM-протеазой при соотнощении знзим-субстрат 1:1000 в течение 3 час при температуре 23,37,45 и 55°С. Алализ, аиалогичный примеру 2, показывает полное расщепление при 37 и 45°С, прибшпительно 50%-ное расщепление при 55С и в небольшой степени расщепление при 23°С.
П р и м е р 5. Раствор свиного инсулина (120 мг- кристаллизованный один раз свиной инсулин, очищеиньш с помощью гелевой фильтрации в 0,1 М карбоната аммони ) в воде (14мл), доведенный до рН 8,0 и содержаш}1Й хлористьш кальций в 3x10 мол рной конценгращди, инкубируют при 37°С с АМ-протеазой (120 мкг) в течение 5 час. Во врем  инкубации рП подаерживают 8,0 с помощью добавлени  0,005М раствора гидртокиси натри . Полученный раствор помещают на кoлoF кy из ггористого
поперечно-св занного декстрапоного )ел  и колонку про вл ют 0,1М карбонатом аммони  при скорости потока 13 мл/час при температуре 4°С. Фракцию по 150 капель (5 мл) собирают и анализируют на пептидный материал измерением их УФ-поглощени  при 280 нм. Фракции (22-30), содержащие главный пик, собирают и лиофилизируют, дава  де(;-Лиз -Ала - свиной инсулин (100мг). После электрофореза с помощью потшакриламидного гел  при рН 8,9 материал представл ет собой единственный компонент при окрашивании амидочерным . Он имеет подвижность по направлению к аноду 1,2 относительно подвижности свиного инсушна . Он также дает некоторые интегральные амино-кислотные соотношени  (найденные в примере 1).
П р и м е р 6. Раствор свиного инсулина (1 мг) в 0,1 М буферной смеси бикарбоната аммони  с рН 8,2 (1 мл) помещают на верхнюю часть колонки,
содержащей 3 мл 4%-ного агарозного гел , к которому ковалентно присоедин ют5 мг АМ-протеазы и уравновешивают в том же самом буферном растворе бикар&)ната аммони  при 22° С-Колонку элюируют буферным раствором бикарбоната аммони 
при скорости потока 7 мл/час в течение 1 час и фракцию анализируют на пептидньш материал путем измерени  УФ-поглощени  при 280 нм. Ф15ак1ЩИ , содержащие пептидный материал, собирают и
лиофилизируют, дава  дес-Лиз -Ала - свиной
инсулин, имеющий те же физические свойства, что и продукт примера 5.
П р и м е р 7. Растворы свиного инсулина (кристаллизованные 10 раз), содержащие 1 мг инсулина на 1 мг растворител , инкубируют при рН
8,0 и температуре 40° С в течение 2 час с АМ-протеаэой при соотношении знзим-субстрат 1:1000 в присутствии, хлористого магни  при концентраци х 10, 1(Т, и iff мол рных соответственно. Анализ, как в примере 2, показывает 90%-ное
расщепление с К мол рной концентрацией Мо, 75%-иое расщепление с lO и 10 мол рным Мо и 65%-ное расщепление с id мол рным Мо. При отсутствии магни  имеет место 68%-ное расщепление .
П р и м е р 8. Раствор кристаллического
бычьего инсулина (150мг) в воде (20мл), доведенной до рН 8,3 и содержащий хлористый кальций, инкубируют с AM-протеазой (240 мкг) в течение 3 час при 37°С.
Во врем  инкубировани  рН поддерживают при
8,3 путем добавлени  0,02М раствора гидроокиси натри . Дозу раствора (10 мкг) провер ют при использовании амино-кислотного анализатора, как описано в примере 1, 1 лшн (рН 3,28); i мин

Claims (1)

  1. (рН 4,25), 60 мин (рН 6,65), затем цикл регенерации на колонке. Пик инсулина (элюирование в течение 90 мин) отсутствует, тогда как дес-Лиз -Ала - бычий инсулин (врем  элюировани  80 мин) и Ала-Ала (элюирование в течение 1 20 мин) присутствуют . Инкуби1) раствор затем лиофили:)ируют и твердое вещество раствсф ют в М уксусной кислоте (2ш). Этот раствар подвергают гепевой фильтрации л{ж 4° С с М уксусной кислотой в качестве растворител . Фракции, включан цие главный пик, измеренный с noMouiibto адсорбции УФ при 280 нм, объедин ют и модифицируют, дава  дес-Лиз -Ала -бычий инсулин (113 мг). После полнакрилаАвщ-гелевого электрофореза (рН 8) мате1шал выгл дит как единственный компонент, когда окраишваетс  амидо-черным. Он имеет подвижность 1-2-кратную подвижности бычьего инсулина по направлению к аноду. Общий алтно-ютслотный анализ дает те же самые интегральные соотноившш аминокислот, что и бычий инсулин, за исключошем того, что отсут ствует лизин и только два остатка алаиина. Глидан и феюшаланин обнаруживаютс  как N концевые аминокислоты при приеме .дансилировани  описшном в примере 1. П р и м е р 9. Один раз фисталлизованный свиной инсулин (150мг) раствор ют в воде при добавлешш N гидроокиси аъоюви  и раствор разбавл ют до 3,0 мл 0,1 М бикарбонатом аммони . Добавл ют раствор АМ-протеазы (150мкг, 0,5 мл) и раствор вьщерживают при телшературе в течение И час. Анализ дозы перевара с помощью приема, описанного в примере 8, показывает , что переваривание завершилось. Раствор разбавл ют 40 об %/об водной уксусной кислоты (3 мл) и полученньш раствор помещают на колонку Сефадекс G-50. Колонку элюируют 20об %/об водной уксуснсж кислотой и элюат провер ют при измерении абсорбции2Ф при 280 нм. Собирают фракцию из 8(Ю капель со скоростью потока 15 мл/час. Инсулииовый пик по вл етс  между фракци ми 45-56, зти фракции объедин ют и сушат , получают дес-Лиз -Ала -свиной инсулин (135 лет). При этих услови х АМ-протеаза, мечена  1-125, по вл етс  между фракци ми 36-43. Формула изобретени  Способ Получени  погмпептидов из инсулина путем его обработки пептидазой с последующим выделением целевого продукта, отличающийс   тем, что, с целью пежьпиени  качества препарата , обработку осуществл ют ферментами АМ-прОтеазой из грибка Armillaria Meltea или Миксобактер 2-1 протеазой 11 из штамма MyxobactetA2-1 . Источники информащш, прин тые во внимание при зкспертизе: 1. Патент США № 3.364.116, кл. 424-178,1968.
SU1983856A 1972-12-28 1973-12-27 Способ получени полипептидов SU559653A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB5974272 1972-12-28

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU559653A3 true SU559653A3 (ru) 1977-05-25

Family

ID=10484339

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1983856A SU559653A3 (ru) 1972-12-28 1973-12-27 Способ получени полипептидов

Country Status (5)

Country Link
BE (1) BE808786A (ru)
CS (1) CS178162B2 (ru)
SU (1) SU559653A3 (ru)
ZA (1) ZA739080B (ru)
ZM (1) ZM19073A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998004731A1 (fr) * 1996-07-25 1998-02-05 Firma 'nika-Universal' Techniques binaires de production de peptides biologiquement actifs

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998004731A1 (fr) * 1996-07-25 1998-02-05 Firma 'nika-Universal' Techniques binaires de production de peptides biologiquement actifs

Also Published As

Publication number Publication date
ZM19073A1 (en) 1975-07-21
CS178162B2 (ru) 1977-08-31
ZA739080B (en) 1974-08-28
BE808786A (fr) 1974-06-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fernlund et al. Vitamin K and the biosynthesis of prothrombin. V. Gamma-carboxyglutamic acids, the vitamin K-dependent structures in prothrombin.
DeLange et al. Calf and pea histone IV: II. The complete amino acid sequence of calf thymus histone IV; presence of ε-N-acetyllysine
Audhya et al. Complete amino acid sequences of bovine thymopoietins I, II, and III: closely homologous polypeptides
Sletten et al. The Complete Amino‐Acid Sequence of Non‐Immunolobulin Amyloid Fibril Protein AS in Rheumatoid Arthritis
EP0561412B1 (en) Parathyroid hormone derivatives
AU617507B2 (en) Peptide derivatives containing proline and leucine for use in affinity chromatography and a process for the preparation thereof
Yamashita et al. Applying proteolytic enzymes on soybean part IV. A ninhydrin-negative bitter peptide in peptic hydrolyzate of soybean protein
Anderson et al. Papain‐induced Oligomerization of α‐Amino Acid Esters
Tadros et al. The Complete Amino‐Acid Sequence of the Large BacteriochlorophyII‐Binding Polypeptide from Light‐Harvesting Complex II (B800—850) of Rhodopseudomonas capsulata
JPH059411B2 (ru)
Peeters et al. Structural studies on rat prostatic binding protein: the primary structure of its glycosylated component C3
Fassina et al. Autolysis of thermolysin: Isolation and characterization of a folded three‐fragment complex
Yang et al. Studies on the status of arginine residues in cobrotoxin
Yamasaki et al. Amino acid sequence of a biologically active fragment of bovine growth hormone
Nutkins et al. Identification of highly acidic peptides from processing of the skin prepropeptides of Xenopus laevis
NO165549B (no) Fremgangsmaate for poding av en vinylaromatisk monomer og en akrylmonomer paa polybutadien ved hjelp av emulsjonspolymerisering.
Kornguth et al. The Stability and Rearrangement of iε-N-Glutamyl-Lysines
US4376760A (en) Tridecapeptide
SU559653A3 (ru) Способ получени полипептидов
US3903069A (en) Polypeptides obtained by modification of porcine or bovine insulin
US4176009A (en) Method of measuring collagenase activity
Muszynska et al. Chemical modification of carboxypeptidase A crystals. Nitration of tyrosine-248
Biedermann et al. The amino acid sequence of proteinase A inhibitor 3 from baker's yeast
Sinn et al. The amino acid sequence of glucagon. IV. The hydrolysis of glucagon with subtilisin
JPH03503958A (ja) カルシトニン遺伝子関連ペプチドの製造方法