SU1751199A1 - Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков - Google Patents

Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков Download PDF

Info

Publication number
SU1751199A1
SU1751199A1 SU904889842A SU4889842A SU1751199A1 SU 1751199 A1 SU1751199 A1 SU 1751199A1 SU 904889842 A SU904889842 A SU 904889842A SU 4889842 A SU4889842 A SU 4889842A SU 1751199 A1 SU1751199 A1 SU 1751199A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
medium
agar
yolk
pathogenic
staphylococci
Prior art date
Application number
SU904889842A
Other languages
English (en)
Inventor
Александр Васильевич Ставский
Наталья Ивановна Червонная
Original Assignee
Самарский филиал Научно-производственного объединения "Гигиена и профпатология"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Самарский филиал Научно-производственного объединения "Гигиена и профпатология" filed Critical Самарский филиал Научно-производственного объединения "Гигиена и профпатология"
Priority to SU904889842A priority Critical patent/SU1751199A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1751199A1 publication Critical patent/SU1751199A1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Использование медицинска  микробиологи . Сущность изобретени : питательна  среда используетс  с целью повышени  селективных свойств среды, упрощени  и ускорени  выделени  патогенных стафилококков Среда дополнительно содержит желток, при этом нативный  ичный белок и желток она содержит в виде  ичной взвеси. 0,1 %-ный водный раствор кристалвиолета и дефибринированную кровь при следующем соотношении компонентов агар-агар 20,0 25,0 г, хлористый натрий 100,0-102,0 г,  ична  взвесь 100,0-150,0 г; 0.1 %-ный водный раствор кристалвиолета 3,0-3,5 мл, дефиб- ринированна  100,0-150,0 мл, бульон Хоттингера до 1 л. 2 табл. о w Ё

Description

Изобретение относитс  к медицинской микробиологии.
Известна питательна  среда дл  выделени  стафилококков, содержаща  агар- агар, приготовленный на м сном бульоне, и 10% дефибринированной крови.
Недостатком данной среды  вл ютс  слабые селективные свойства
Известна питательна  среда дл  выделени  стафилококков, содержаща  физиологический раствор, м со-пептонный агар (рН 7,2) 10% хлористого натри  и 10-20% желточной взвеси.
Недостатком данной среды  вл ютс  также слабые селективные свойства
Известна также питательна  среда дл  выделени  стафилококков, содержаща  агар-агар, нативный  ичный белок хлори стый натрий, бульон Хоттингера
Недостатком данной питательной среды  вл ютс  ее слабые селективные свойства , сложность и длительность выделени 
патогенных стафилококков, так как в св зи с широким применением антибиотиков и хи- миотерапевтических препаратов, оказывающих вли ние на изменчивость микробов кокковой группы, в этиологии многих гнойно-воспалительных процессов больша  роль стала придаватьс , нар ду с золотистым стафилококком, и другим видам стафилококков , относ щимс  к группе потенциально-патогенных В соответствии с этим недостатком известной питательной среды  вл етс  определение только одного вида стафилококков что снижает диагностическую ценность питательной среды
Целью изобретени   вл етс  повышение селективных свойств среды, упрощение и ускорение выделени  патогенных стафилококков .
Эта цель достигаетс  тем что среда дополнительно содержит желток,при этом на тивный белок и желток она содержит в виде  ичной взвеси. 0.1 %-ный водный раствор
VI
сл
ю о
кристалвиолета и дефибринированную кровь при следующем соотношении компонентов:
Агар-агар20,0-25,0 г
Натрий хлористый100,0-102,0 г
Яична  взвесь100,0-150,0 г
0,1%-ный водный раствор кристалвиолета3 ,0-3,5 мл Дефибринированна  кровь100,0-150,0 мл Бульон Хоттингера До 1 л Питательную среду готов т, например, следующим образом.
1000 мл агаровой питательной основы, приготовленной из сухого питательного агара по обычной прописи с добавлением 10%- ного хлористого натри  и 3,3 мл 0,1%-ного водного раствора кристалвиолета, стерилизуют , охлаждают до 60-70°С, добавл ют в асептических услови х стерильно приготовленную  ичную взвесь (куриное  йцо - белок и желток, смешанное с 200 мл стерильного физиологического раствора) в количестве 100 мл и 110 мл дефибриниро- ванной крови. Среду тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. После застывани  и подсушивани  среду используют дл  проведени  необходимых исследований . Срок хранени  среды после приготовлени  7-10 дней при температуре +4° С.
Питательна  среда используетс  следующим образом
Дл  выделени  культур стафилококков исследуемый материал (мазки из зева носа, гной, раневое содержимое, вода, смывы с обьектов внешней среды) рассеивают по всей поверхности питательной среды тампоном (лли шпателем, а при дифференциации уже выделенных штаммов стафилококков - штрихами на сектора чашки Петри, Учет результатов провод т через 24-48 ч инкубации в термостате при 37°С
При посеве исследуемого материала на предлагаемую диагностическую среду на ней вырастают, нар ду с золотистым стафилококком , и другие виды стафилококков с признаками патогенности (вирулентности) П р и м е р 1. При пр мом посеве тампоном мазка из зева ребенка с подозрением на дифтерию были использованы одновременно простой м со-пептонный агар(МПА), кров ной и желточно-солевой агары, а также предлагаема  диагностическа  среда Указанный набор питательных сред примен лс  как при пр мом посеве патологиче- ского материала, так и при проведонии идентификации выдел емых из зева микроорганизмов Через 18-24 ч все культуры с
простого агара подозрительные как стафи лококки (наличие золотистого, желтого или белого пигмента колоний), пересевались вновь на кров ной агар, желточно-солевую
и предлагаемую среды Все колонии с предлагаемой питательной диагностической среды также засевались на кров ной и желточно-солевой агары. После 18 ч инкубации производилс  учет результатов. Из зева ре0 бенка было выделено 9 штаммов стафилококков (3-е золотистым пигментом, 6 - с белым) Дальнейша  идентификаци  позволила установить, что все три штамма золотистого стафилококка обладали
5 гемолитической и лецитиназной активностью . Из культур белого стафилококка два штамма дали на кров ном агаре четкую зону гемолиза и один штамм обладал лецитиназной активностью. При посеве этого же мате0 риала на предлагаемую диагностическую среду было выделено 11 штаммов стафилококков (колонии фиолетового или оранжевого цвета), из которых у 4 культур наблюдали одновременно зоны лизиса эритроцитов и
5 помутнени  с радужным венчиком у трех колоний отмечалась только зона гемолиза и у одного штамма - только зона помутнени  Следовательно, обычными методами выделено б штаммов стафилококков, обладав0 ших факторами агрессии (гемолизин лецитиназа), а при использовании предлагаемой диагностической среды изолировано 8 штаммов патогенных стафилококков Несмотр  на несущественное различие в ко5 личестве выделенных штаммов следует подчеркнуть, что исследование с применением предлагаемой диагностической среды продолжалось в течение 18-24 ч, в то врем  как использование обычной методики по0 требовало не менее 48 ч работы
П р и м е р 2. При параллельном контрольном посеве на МПА, кров ной агар и предлагаемую питательную среду шести смывов и двух проб воздуха в операционной
5 после ее профилактической обработки было обнаружено, что в одном смыве с загубника наркозного аппарата и в одной пробе воздуха присутствовали белые стафилококки обладавшие при последующем исследовании
0 гемолитической активностью, но не имевшие лецитиназы. Применение обычных сред позволило получить окончательный ответ через 48 ч, а при использовании предла5 гаемой диагностической среды ответ был получен через сутки
Пример 3. Готов т среду, как указано, при этом компоненты берут в следующих количествах в бульоне Хоттингера г/л Агар-агар180
Натрий хлооистый99 О
Яична  взвесь 80.0мл
0,1 %-ный водный
раствор кристалвиолета2,75 мл
Дефибринированна 
кровь80,0 мл
Золотистый стафилококк дает хороший типичный рост колоний. Зоны гемолиза и помутнени  слабо различимы. Колонии белого стафилококка светло-фиолетового цвета , Наблюдаетс  единичный рост колоний кишечной палочки и вульгарного проте , что свидетельствует о недостаточном тормоз щем действии хлористого натри  и кристалвиолета в количествах, добавл емых в среду.
Пример 4, Готов т среду, как указано, при этом компоненты берут в следующих количествах в бульоне Хоттингера, г/л:
Агар-агар20
Натрий хлористый100
Яична  взвесь100 мл
0,1 %-ный водный
раствор кристалвиолетэ3 мл
Дефибринированна 
кровь100мл
При посеве золотистого стафилококка вырастают колонии оранжево-желтого цвета с  вно выраженной зоной гемолиза и зоной помутнени  с радужным венчиком, размером на 1 мм более размера зоны гемолиза . Белые стафилококки дают колонии светло-фиолетового цвета с зоной гемолиза и без нее или с зоной помутнени : радужный венчик больше размеров зоны гемолиза на 1 мм, Среда позвол ет дифференцировать стафилококки с признаками патогенности от непатогенных видов. Кишечна  палочка и протеи роста не дают.
П р и м е р 5. Готов т среду, как указано, при этом компоненты берут в следующих количествах в бульоне Хоттингера, г/л:
Агар-агар23,0
Натрий хлористый101,0
Яична  взвесь130 0 мл
0,1 %-ный водный
раствор кристалвиолета 3,25 мл
Дефибринированна 
кровь1300мл
Рост колоний патогенных стафилококков типичный, сопровождаетс  четкой зоной гемолиза вокруг колоний с зоной помутнени  и радужным венчиком, превосход щим по размеру зону гемолиза на 3 мм. Колонии стафилококков типичные, оранжевого или фиолетового цвета Некоторые колонии белого стафилококка дают слабый радужный венчик, что позвол ет отн ётТГй и х к группе стафилококков с при 5нлк ми пато- генносги. Кишечные палочки и протеи не дают роста.
П р и м е р Готов т среду, как указано при этом компоненты берут в следующих количествах в бульоне Хоттингера, г/л
Агар-агар25,0
5Натрий хлористый102,0
Яична  взвесь150,0мл
0,1 %-ный водный раствор кристалвиолета3 ,5 мл 0 Дефибринированна 
кровь.150,0мл
Колонии золотистого и белого стафилококков типичные, оранжевого цвета с зоной гемолиза и зоной помутнени  с радужным 5 венчиком по периферии. Зона помутнени  превосходит размеры зоны гемолиза на 3 мм; колонии белого стафилококка фиолетового цвета; некоторые колонии дают зону гемолиза и зону помутнени  с радужным 0 венчиком, свидетельствующие о наличии факторов агрессии - гемолизина и лецити- назы. Кишечные палочки и протеи не растут. П р и м е р 7, Готов т среду, как указано, при этом компоненты берут в следующих 5 количествах в бульоне Хоттингера, г/л Агар-агар27,0
Натрий хлористый103,0
Яична  взвесь170,0 мл
0,1 %-ный водный 0 раствор кристалвиолета3 ,75 мл Дефибринированна  кровь170,0 мл Колонии золотистого стафилококка вы- 5 растают  рко-оранжевого цвета с нетипичной морфологией (колонии мелкие, слегка морщинистые) со значительным количественным уменьшением числа колоний по сравнению с контрольным высевом, что сви- 0 детельствует о тормоз щем действии из- бытка хлористого натри  и кристалвиолета. Зоны гемолиза и помутнени  нечеткие, едва различимые из-за сли ни  по цвету с интенсивно окрашенным фоном среды. Белые 5 стафилококки темно-фиолетового цвета с нетипичной морфологией колоний. Кишечные палочки и протеи роста не дают.
Указанное свидетельствует, что предлагаема  модификаци  питательной диагно- 0 стической среды позвол ет сократить объемы и срок исследований за счет преимущественного выделени  стафилококков, одновременной их идентификации и определени  признаков из вирулентности, так 5 как наличие в среде раствора кристалвиолета позвол ет расти только стафилококкам; присутствие желтка  ШТной взвеси в питательной среде дает возможность в этой же чашке визуально наблюдать лецитовителаз- ную реакцию, с помощью которой определ тс  наличие у исследуемого штамма микрорганизмов фермента лецитиназы; присуттвие в среде дефибринированной крови ает возможность визуально наблюдать гемолитическую активность штаммов. Все отмеченное расшир ет диагностические возможности среды.
Положительный эффект достигаетс  олько лишь при строго определенной взаимосв зи существенных признаков. Исклюение любого из них не позвол ет достичь положительный эффект.
Проведенные исследовани  предлагаемой диагностической среды с использованием выделенных и идентифицированных ранее 124 штаммов стафилококков показало , что предлагаема  диагностическа  среа четко дифференцирует патогенных микробов этой группы, как и с использованием набора других сред дл  выделени  и идентификации штаммов стафилококков, с той лишь разницей, что выделение и частична  идентификаци  этих бактерий проводитс  в одной чашке.
В результате изучени  выдел емости патогенных стафилококков с использованием различных питательных сред получены следующие результаты: всего исследовано 124 штамма стафилококков; выделено 97 штаммов стафилококков с признаками вирулентности; в том числе на обычных дифференциальных средах кров ной агар - 81, желточно-солевой агар 74: на предлагаемой диагностической среде 92.
При испытательных исследовани х на предлагаемой диагностической среде вырастали колонии только патогенных стафилококков (колонии фиолетового или оранжевого цвета). Кроме того, при наличии у микробов факторов агрессии (гемолизин и лецитиназа) вокруг колонии наблюдалась зона гемолиза эритроцитов и зона частичного помутнени  с радужным венчиком различной интенсивности по периферии зоны гемолиза или несколько ее превосход ща  по размерам (на 1-3 мм). В табл. 1 приведены данные, свидетельствующие о различных реакци х микроорганизмов в зависимости от дозы добавл емых в предлагаемую диагностическую среду ингредиентов .
Как свидетельствует табл 1. минимальные количества дефибринированной крови и  ичной взвеси, при которых получаетс  довольно четкий результат, определ ютс  на уровне 100-150 мл по показател м четкости зон гемолиза и помутнени  с радужным венчиком и величинам размеров зон гемолиза и помутнени .
Зависимость роста стафилококков на предлагаемой питательной среде от количества добавл емого в нее раствора кристалвио- лета представлена в табл. 2.
Как видно из табл. 2, доза добавл емого
в предлагаемую диагностическую среду кристалвиолета существенно не оказывает вли ни  на культуру стафилококка, в то врем  как культура кишечной палочки не растет
0 на среде уже в дозе кристалвиолета от 3,5 мл и выше,

Claims (1)

  1. Таким образом, как свидетельствуют приведенные примеры, предлагаема  диагностическа  питательна  среда, приготов5 ленна  при строго определенных соотношени х вносимых ингредиентов, позвол ет четко дифференцировать патогенных представителей стафилококков от непатогенных с одновременным определе0 нием у них в одной чашке двух ферментов агрессии (гемолизин и лецитиназа). Это позвол ет в значительной мере сократить объ- емы и сроки исследовани  за счет преимущественного выделени  только ста5 филококков с одновременной их идентификацией и определением признаков вирулентности. Кроме того, использование предлагаемой диагностической среды позвол ет экономить питательные среды, не0 обходимые по обычной методике дл  аналогичной идентификации (кров ной агар, желточно-солевой агар), а также рабочего времени персонала, необходимого дл  посева на дополнительные среды (м со5 пептонный агар, кров ной агар, желточно- солева  среда) по обычной схеме исследовани , и времени, требуемого на их раздельное приготовление и подготовку посуды . Все указанное увеличивает произво0 дительность труда персонала бактериологических лабораторий Формула изобретени  Питательна  среда дл  выделени  патогенных стафилококков, содержаща  агар5 агар, нативный  ичный белок, хлористый натрий, бульон Хоттингера, отличающа с  тем, что, с целью повышени  селективных свойств среды, упрощени  и ускорени  выделени  патогенных стафилококков, она
    0 дополнительно содержит желток, при этом нативный  ичный белок и желток - в виде  ичной взвеси, 0,1%-ный водный раствор кристалвиолета и дефибринированную кровь при следующем соотношении компо5 нентов:
    Агар-агар20,0 25.0 г
    Хлористый натрий100 0 102 0 (
    Яична  взвесь100.0 150 0 i
    0,1%-ный водный раствор кристалвиолета 3035 мл
    Дефибринированна  кровь
    100,0-150,0 мл
    Бульон Хоттин- гера
    До 1 л
    Таблица 1
    Зависимость размеров зон гемолиза и помутнени  о предлагаемой диагностической питательной среде от дозы добавл емых ингредиентов
    Т а б л и ц   2
    Количество колоний золотистого стафилококка нп предлагаемой ,агностической среде в зависимости от концентрации кристзлвиолета
    Чиста  культура золотистого стафило
SU904889842A 1990-10-10 1990-10-10 Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков SU1751199A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904889842A SU1751199A1 (ru) 1990-10-10 1990-10-10 Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904889842A SU1751199A1 (ru) 1990-10-10 1990-10-10 Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1751199A1 true SU1751199A1 (ru) 1992-07-30

Family

ID=21549414

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU904889842A SU1751199A1 (ru) 1990-10-10 1990-10-10 Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1751199A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2458990C1 (ru) * 2011-05-20 2012-08-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации Способ выделения чистой культуры стафилококков

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследовани , под ред. Биргера. (И.. Медицина, 1973, с 75-76, Авторское свидетельство СССР № 687118, кл. С 12 N 5/00, 1977. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2458990C1 (ru) * 2011-05-20 2012-08-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации Способ выделения чистой культуры стафилококков

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Devriese A simplified system for biotyping Staphylococcus aureus strains isolated from different animal species
Paul Culture media
CN107090486A (zh) 用于检测靶微生物的制品和方法
JPH09512438A (ja) 微生物学的培地
JPH09511917A (ja) サルモネラ菌の同定法および培地
RU2342435C2 (ru) Селективная культуральная среда для выделения и выявления видов рода streptococcus
RU2275429C2 (ru) Питательная смесь и способ идентификации и раннего определения количества грамотрицательных микроорганизмов
CN107435034A (zh) 一种对万古霉素耐药的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌及应用
SU1751199A1 (ru) Питательна среда дл выделени патогенных стафилококков
JPH07181A (ja) 多剤耐性ブドウ球菌を選択的に培養するための培地
CN112680499B (zh) 一种厌氧微生物的体外检测试剂盒
CN112831539A (zh) 一种需氧微生物的体外检测试剂盒
Domermuth et al. A medium for isolation and tentative identification of fecal streptococci, and their role as avian pathogens
RU2213779C2 (ru) Питательная среда для выделения лактобактерий
SU1703695A1 (ru) Питательна среда дл дифференциации энтеропатогенных эшерихий
RU2125610C1 (ru) Плотная питательная среда для выявления возбудителя сибирской язвы
US5380652A (en) Device and procedure for identifying pathogenic microorganisms
CN109706214A (zh) 一种耐喹诺酮类抗生素沙门氏菌菌株的识别及分离方法
RU2715329C1 (ru) Питательная среда для выделения и идентификации неферментирующих бактерий
RU2266956C2 (ru) Питательная среда для выделения бруцелл
JP2002010799A (ja) 細菌検査培地
JP3380956B2 (ja) 黄色ブドウ球菌の検出培地
RU2041947C1 (ru) Питательная среда для выделения дифтерийного микроба
RU2710160C1 (ru) Питательная среда для выделения Pseudomonas aeruginosa из водных объектов
Stewart Production of 5-keto-gluconic acid by a species of Pseudomonas