RU2824663C1 - Набор для выделения экзосом - Google Patents
Набор для выделения экзосом Download PDFInfo
- Publication number
- RU2824663C1 RU2824663C1 RU2023130724A RU2023130724A RU2824663C1 RU 2824663 C1 RU2824663 C1 RU 2824663C1 RU 2023130724 A RU2023130724 A RU 2023130724A RU 2023130724 A RU2023130724 A RU 2023130724A RU 2824663 C1 RU2824663 C1 RU 2824663C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- exosome
- exosomes
- kit
- isolation
- isolated
- Prior art date
Links
- 210000001808 exosome Anatomy 0.000 title claims abstract description 139
- 238000011084 recovery Methods 0.000 title abstract 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 10
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims abstract description 10
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims abstract description 10
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 claims abstract description 9
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 claims abstract description 9
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims abstract description 9
- 239000012149 elution buffer Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 claims abstract description 4
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims abstract description 4
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 claims description 6
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 abstract description 37
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 abstract description 14
- 239000013060 biological fluid Substances 0.000 abstract description 9
- 201000010099 disease Diseases 0.000 abstract description 5
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 abstract description 5
- 238000000605 extraction Methods 0.000 abstract description 4
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000000771 oncological effect Effects 0.000 abstract description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 230000003211 malignant effect Effects 0.000 abstract description 2
- 238000012742 biochemical analysis Methods 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 34
- 238000000034 method Methods 0.000 description 34
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 23
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 18
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 15
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 14
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 14
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 14
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 12
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 11
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 11
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 10
- 239000004475 Arginine Substances 0.000 description 8
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 8
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 8
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 8
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 7
- 238000009739 binding Methods 0.000 description 7
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 7
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 7
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 7
- 108010067770 Endopeptidase K Proteins 0.000 description 6
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 6
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 6
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 6
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 6
- 101000738354 Homo sapiens CD9 antigen Proteins 0.000 description 5
- 108090001030 Lipoproteins Proteins 0.000 description 5
- 102000004895 Lipoproteins Human genes 0.000 description 5
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 5
- 102100037904 CD9 antigen Human genes 0.000 description 4
- 102000007562 Serum Albumin Human genes 0.000 description 4
- 108010071390 Serum Albumin Proteins 0.000 description 4
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 4
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 4
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 4
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 4
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 4
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 4
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 4
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 4
- 238000005199 ultracentrifugation Methods 0.000 description 4
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 4
- 238000001262 western blot Methods 0.000 description 4
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 3
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 3
- 102000004506 Blood Proteins Human genes 0.000 description 3
- 108010017384 Blood Proteins Proteins 0.000 description 3
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 3
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 239000003636 conditioned culture medium Substances 0.000 description 3
- 210000003722 extracellular fluid Anatomy 0.000 description 3
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 3
- 238000011528 liquid biopsy Methods 0.000 description 3
- 239000006249 magnetic particle Substances 0.000 description 3
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 3
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 3
- 102100025222 CD63 antigen Human genes 0.000 description 2
- 102100027221 CD81 antigen Human genes 0.000 description 2
- 101000934368 Homo sapiens CD63 antigen Proteins 0.000 description 2
- 101000914479 Homo sapiens CD81 antigen Proteins 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000018614 Uromodulin Human genes 0.000 description 2
- 108010027007 Uromodulin Proteins 0.000 description 2
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 2
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 2
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 2
- 108010081355 beta 2-Microglobulin Proteins 0.000 description 2
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 2
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 2
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 2
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 238000001114 immunoprecipitation Methods 0.000 description 2
- 238000007885 magnetic separation Methods 0.000 description 2
- 239000011859 microparticle Substances 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 239000002105 nanoparticle Substances 0.000 description 2
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 2
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 2
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 description 2
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 description 2
- 210000003296 saliva Anatomy 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- HBMJWWWQQXIZIP-UHFFFAOYSA-N silicon carbide Chemical compound [Si+]#[C-] HBMJWWWQQXIZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910010271 silicon carbide Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- 238000012795 verification Methods 0.000 description 2
- 239000011534 wash buffer Substances 0.000 description 2
- 102100027217 CD82 antigen Human genes 0.000 description 1
- 108010056891 Calnexin Proteins 0.000 description 1
- 102000034342 Calnexin Human genes 0.000 description 1
- 101710163595 Chaperone protein DnaK Proteins 0.000 description 1
- 108010004103 Chylomicrons Proteins 0.000 description 1
- 235000005956 Cosmos caudatus Nutrition 0.000 description 1
- 238000007399 DNA isolation Methods 0.000 description 1
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 1
- 241000408710 Hansa Species 0.000 description 1
- 101710178376 Heat shock 70 kDa protein Proteins 0.000 description 1
- 101710152018 Heat shock cognate 70 kDa protein Proteins 0.000 description 1
- 102100034051 Heat shock protein HSP 90-alpha Human genes 0.000 description 1
- 108010004889 Heat-Shock Proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000002812 Heat-Shock Proteins Human genes 0.000 description 1
- 101000914469 Homo sapiens CD82 antigen Proteins 0.000 description 1
- 101001016865 Homo sapiens Heat shock protein HSP 90-alpha Proteins 0.000 description 1
- 108010007622 LDL Lipoproteins Proteins 0.000 description 1
- 102000004856 Lectins Human genes 0.000 description 1
- 108090001090 Lectins Proteins 0.000 description 1
- 108700018351 Major Histocompatibility Complex Proteins 0.000 description 1
- 108700011259 MicroRNAs Proteins 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 102000011931 Nucleoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108010061100 Nucleoproteins Proteins 0.000 description 1
- 108010038807 Oligopeptides Proteins 0.000 description 1
- 102000015636 Oligopeptides Human genes 0.000 description 1
- 101710116435 Outer membrane protein Proteins 0.000 description 1
- 108010039918 Polylysine Proteins 0.000 description 1
- 238000012228 RNA interference-mediated gene silencing Methods 0.000 description 1
- 108010062497 VLDL Lipoproteins Proteins 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 210000000612 antigen-presenting cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 230000001640 apoptogenic effect Effects 0.000 description 1
- 210000003719 b-lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000003012 bilayer membrane Substances 0.000 description 1
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 1
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 1
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 1
- 230000034303 cell budding Effects 0.000 description 1
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 description 1
- 230000010267 cellular communication Effects 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000001085 differential centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000000375 direct analysis in real time Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 238000012063 dual-affinity re-targeting Methods 0.000 description 1
- 238000001493 electron microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 210000001723 extracellular space Anatomy 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 1
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 1
- 230000009368 gene silencing by RNA Effects 0.000 description 1
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 230000036571 hydration Effects 0.000 description 1
- 238000006703 hydration reaction Methods 0.000 description 1
- 229920001477 hydrophilic polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 1
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 229920000126 latex Polymers 0.000 description 1
- 239000004816 latex Substances 0.000 description 1
- 239000002523 lectin Substances 0.000 description 1
- 102000019758 lipid binding proteins Human genes 0.000 description 1
- 108091016323 lipid binding proteins Proteins 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 230000004807 localization Effects 0.000 description 1
- 229920002521 macromolecule Polymers 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 239000002679 microRNA Substances 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 210000002487 multivesicular body Anatomy 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 230000003204 osmotic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 230000001991 pathophysiological effect Effects 0.000 description 1
- 238000005453 pelletization Methods 0.000 description 1
- 125000002467 phosphate group Chemical group [H]OP(=O)(O[H])O[*] 0.000 description 1
- 150000003904 phospholipids Chemical class 0.000 description 1
- 230000035479 physiological effects, processes and functions Effects 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000656 polylysine Polymers 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 238000000575 proteomic method Methods 0.000 description 1
- 238000004451 qualitative analysis Methods 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 1
- 238000011897 real-time detection Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000012502 risk assessment Methods 0.000 description 1
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 1
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 1
- 238000001542 size-exclusion chromatography Methods 0.000 description 1
- 230000009870 specific binding Effects 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 230000020382 suppression by virus of host antigen processing and presentation of peptide antigen via MHC class I Effects 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000004627 transmission electron microscopy Methods 0.000 description 1
- UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-N triphosphoric acid Polymers OP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 1
Abstract
Изобретение относится к медицине, а именно к биохимическим исследованиям биологических объектов, и может найти применение в диагностике онкологических и злокачественных заболеваний. Набор для выделения экзосом состоит из осаждающего экзосомы агента, промывочного раствора и элюирующего буфера на основе раствора 0,15 M цитрата натрия с pH 7,5. В качестве осаждающего экзосомы агента он содержит термический полипептид со звеном цепи лизин-аргинин и количеством звеньев 10-50 с молекулярной массой 3-15 килодальтон и промывочный раствор на основе 10 мМ NaCl. Изобретение обеспечивает увеличение выхода экзосом из биологических жидкостей, повышение чистоты препарата экзосом, а также сокращение времени их выделения. 5 ил., 1 пр.
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к биохимическим исследованиям биологических объектов, и может найти применение в диагностике онкологических и злокачественных заболеваний.
В последние годы интенсивно разрабатывается новый подход персонализированной оценки рисков заболеваний - так называемая "жидкая биопсия" - малоинвазивная, ранняя диагностика опухолей, неонкологических патологий, а также пренатальная диагностика на основе анализа внеклеточной, так называемой "свободно циркулирующей внеклеточной ДНК" и экзосом. Главное достоинство разрабатываемой платформы "жидкостной биопсии" - малая инвазивность взятия биологического образца. Экзосомы секретируются всеми типами клеток и являются медиаторами клеточной коммуникации, поскольку служат средством межклеточной передачи биологических сигналов, способных изменять функции и физиологию клеток-мишеней. Экзосомы определяются как мембранные везикулы размером 40-200 нм, плавучая плотность которых находится в диапазоне от 1,10 до 1,18 г/мл. В отличие от других типов внеклеточных везикул (микровезикул, апоптотических телец), которые образуются в результате прямого отпочковывания от плазматической мембраны родительской клетки, экзосомы формируются в специализированных эндосомальных клеточных компартментах - мультивезикулярных тельцах и секретируются во внеклеточное пространство путем их слияния с клеточной мембраной. Экзосомы содержат в себе различные белки, нуклеиновые кислоты, липиды и метаболиты. Набор этих биомолекул отражает тип и патофизиологическое состояние секретирующих их клеток. Поскольку экзосомы обнаруживаются во многих биологических жидкостях организма, то количественный и качественный анализ циркулирующих экзосом может быть перспективным инструментом малоинвазивной диагностики заболеваний, мониторинга эффективности лечения и доклинического выявления рецидивов. В настоящее время активно исследуются диагностические возможности протеомного анализа и профилирования микроРНК экзосом, выделенных из плазмы, мочи, слюны и других жидкостей пациентов с разными заболеваниями. Такие природные свойства экзосом, как малый размер, стабильность в кровеносном русле, низкая иммуногенность, способность селективно транспортировать на большие расстояния свое содержимое в клетки-мишени, а также возможность модификации их поверхности и содержимого, делают эти нановезикулы идеальными носителями для адресной доставки лекарственных препаратов, для создания вакцин, а также как рассматриваются как перспективный кандидат "жидкостной биопсии".
Хотя экзосомы имеют большой диагностический и терапевтический потенциал, однако отсутствие стандартизированных методов их эффективного выделения ограничивает внедрение экзосомальных технологий в клиническую практику. Прежде всего, это связано с тем, что во внеклеточных жидкостях циркулирует большое количество разнообразных мембранных внеклеточных везикул, из которых экзосомы составляют только определенную часть. В любой биологической жидкости, помимо экзосом, циркулируют и другие близкие по размеру, массе и плотности к экзосомам компоненты: белки, липопротеины различной плотности, нуклеопротеиновые комплексы, мембранные везикулы других типов и др. При этом сам пул экзосом также довольно гетерогенный. Он состоит из субпопуляций нановезикул, которые отличаются по размеру, морфологии, поверхностным маркерам, биохимическому содержанию. Контаминация препаратов экзосом не-экзосомальными компонентами биологической жидкости может приводить к завышенной количественной оценке содержимого экзосом. С другой стороны, в процессе выделения часть экзосом может разрушаться или теряться, например, из-за агрегации нановезикул или низкого уровня экспрессии мембранных маркеров, что также будет искажать результаты.
Спектр контаминирующих компонентов может меняться в зависимости от источника экзосом. Так, например, основным загрязняющим компонентом при выделении из крови могут быть липопротеины и сывороточный альбумин, которые присутствуют в крови в значительном количестве. Концентрация липопротеинов в сыворотке на порядки превосходит концентрацию циркулирующих внеклеточных везикул. При этом отделить экзосомы от липопротеинов чрезвычайно сложно из-за близости их размеров и плотностей. Основной проблемой при выделении из мочи является уромодулин (белок Tamm-Horsfall), концентрация которого может достигать 1.5 мг/мл. Полимерная сеть, формируемая этим белком, может связывать экзосомы, снижая эффективность выделения. В связи с вышеизложенным, очень важно получить препарат внеклеточных микровезикул, максимально обогащенный именно экзосомами.
Существующие методы выделения экзосом можно классифицировать следующим образом.
Ультрацентрифугирование - разделения везикул под действием центробежной силы. Метод основан на разной скорости оседания частиц, отличающихся по размеру и плотности. Выделяют три варианта метода, основанных на центрифугировании: дифференциальное центрифугирование, зонально-скоростное градиентное центрифугирование и изопикническое градиентное центрифугирование. Метод не требует использования коммерческих наборов реагентов, однако он малопродуктивен - не более 6 образцов за центрифугирование, трудоемкий, продолжительный и требует использование дорогостоящего оборудования.
Метод и гель-фильтрации, или эксклюзионной хроматографии, разделяет частицы по гидродинамическому радиусу за счет их разной способности проникать в поры геля неподвижной фазы. Этот метод был эффективно адаптирован для выделения экзосом из разных типов жидкостей. Эта технология используется в коммерческих наборах для выделения экзосом SmartSEC™ Single for EV Isolation (System Biosciences), qEV (Izon Science), PURE-EVs (Hansa Biomed). Однако, метод не позволяет разделить везикулы близкого размера, но разного типа, а также отделить экзосомы от других биомолекул близкого размера. Поэтому экзосомальная фракция экзосом часто загрязнена мелкими не экзосомальными везикулами, крупными белковыми агрегатами и липопротеинами, такими как хиломикроны, липопротеины низкой и очень низкой плотности Недостатком метода является и невысокий выход экзосом, которые к тому же и разбавлены элюентом.
Твердофазное связывание с карбидом кремния. Данный подход к выделению экзосом предложен компанией Norgen Biotek [Haj-Ahmad Y., inventor; Norgen Biotek Corp., assignee. Methods for extracellular vesicle isolation and selective removal. United States Patent US US 10160964 B2, 2018 Dec 25]. Он реализован в коммерческих наборах фирмы: Plasma/Serum Exosome Purification, Kit, Urine Exosome Purification Kits, Cell Culture Media Exosome Purification Kits и Saliva Exosome Purification Kit. Метод основан на селективном связывании липидов экзосом с карбидом кремния в зависимости от pH раствора и значения изоэлектрической точки. К недостаткам метода следует отнести необходимость использования специальных микро-колонок, что ограничивает производительность метода и неизбирательность связывания всех внеклеточных гидрофобных частиц и агрегатов макромолекул во внеклеточных жидкостях.
Аффинное взаимодействие. Эта группа методов основана на способности различных биомолекул, присутствующих на поверхности везикул (липидов, полисахаридов, протеинов), к аффинному взаимодействию с другими молекулами, включая антитела, лектины и липид-связывающие протеины. На поверхности экзосомальных мембран экспонированы различные белки, включая тетраспанины CD9, CD63, CD81, CD82, белки теплового шока HSP70 и Hsp90, антигены главного комплекса гистосовместимости и др. Антитела к этим белкам используются как для анализа экзосомальной фракции, так и для иммунопреципитации экзосом. Для иммунопреципитации обычно используют антитела, конъюгированные с твердофазным носителем (латекс, силикон), который может быть в виде магнитных частиц, покрытых полимером (Dynabeads, Thermo Fisher Scientifi), колонки для центрифугирования (Exo Trap Exosomes Isolation Spin Column, Cosmo Bio), модифицированных наконечников для пипеток (monolithic silica microtips - MSIA D.A.R.T., Thermo Fisher Scientific) и др. Взаимодействие между антителом, иммобилизованным на поверхности матрикса, и мембраной экзосом относительно сильное, что позволяет отмыть связанные экзосомы от многочисленных компонентов биологической жидкости. Разнообразие используемых антител и носителей в разных форматах объясняет наличие большого количества используемых протоколов, основанных на аффинном взаимодействии. Например, в работе Clayton A. с соавторами экзосомы, секретируемые В-лимфоцитами, выделялись из кондиционной среды с помощью магнитной сепарации, используя магнитные частицы с конъюгированными HLA-антителами (Clayton A., Court J., Navabi H., et al. 2001. Analysis of antigen presenting cell derived exosomes, based on immuno-magnetic isolation and flow cytometry. J. Immunol. Methods. 247 (1-2), 163-174). Магнитные частицы инкубировали с кондиционной средой в течение 24 часов, после чего собирали их с помощью магнита и отмывали. Выделенные частицы характеризовали с помощью трансмиссионной электронной микроскопии и проточной цитометрии. Другая исследовательская группа перед магнитной сепарацией экзосом из различных клеточных линий сначала сконцентрировала везикулы из кондиционной среды с помощью гидрофильного полимера, используя коммерческий набор компании Thermo Fisher - Total Exosome Isolation Reagent (Oksvold M.P., Neurauter A, Pedersen K.W. 2015. Magnetic bead-based isolation of exosomes. In: RNA Interference. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols), 1218. Ed. Sioud M. New York: Humana Press, pp. 465-481). После инкубации с реагентом в течение 12 часов и центрифугирования, осадок ресуспендировали в буфере PBS. Экзосомы из обогащенного препарата были выделены с помощью магнитных частиц, конъюгированных с антителами к CD9, CD63 и CD81. Анализ методами трансмиссионной микроскопии, проточной цитометрии и Western-блота показал, что выделенный препарат содержал везикулы одинакового или близкого размера, с однообразной морфологией и не содержал примесей белков и белковых агрегатов.
Основным преимуществом метода аффинного связывания является чистота препарата, которая обеспечивается специфичностью антиген-антительного связывания. Эта же специфичность является одновременно и минусом метода, поскольку она способствует обогащению конечного продукта экзосомами с высоким уровнем определенного поверхностного маркера и потере экзосом с низким уровнем его экспрессии. Недостатком метода также являются ограничения, связанные с доступностью антител, а также сложности отделения экзосом от связавшихся антител.
ПЭГ-преципитация. Популярным осаждающим микровезикулы агентом является полиэтиленгликоль (ПЭГ). Он давно используется клеточной биологии для осаждения вирусных частиц, нуклеиновых кислот и комплексов биомолекул. Экспериментально установленный феномен преципитации в присутствии ПЭГ пока мало изучен. Теоретическими моделями, описывающими этот процесс, являются теория исключенного объема и теория эффективной силы притяжения, обусловленной исключенным объемом. Согласно модели исключенного объема, преципитация молекул происходит в результате уменьшения их гидратации в присутствии полимера. Вторая модель объясняет преципитацию эффектом притяжения молекул, обусловленную осмотическим давлением полиэтиленгликоля]. Преимуществами этого метода являются простота и скорость, что позволяет одновременно анализировать несколько проб, а также минимальные потери в процессе выделения. В настоящее время по частоте использования ПЭГ-преципитация уступает только ультрацентрифугированию. Обычно, для выделения экзосом используется 8-12% ПЭГ 6 kDa (Ludwig A.K., De Miroschedji K., Doeppner T.R., et al. 2018. Precipitation with polyethylene glycol followed by washing and pelleting by ultracentrifugation enriches extracellular vesicles from tissue culture supernatants in small and large scales. J. Extracel. Vesicles. 7, 1528109) и 8-10% ПЭГ 8 kDa (Rider M.A., Hurwitz S.N., Meckes D.G. 2016. ExtraPEG: A polyethylene glycol-based method for enrichment of extracellular vesicles. Sci. Rep. 6, 23978). Среди достоинств метода можно выделить то, что в отличие от ультрацентрифугирования и ультрафильтрации, во время которых везикулы могут деформироваться, метод преципитации позволяет получить морфологически и функционально качественные экзосомы. Главным недостатком метода является низкая чистота препарата экзосом. Этот метод только концентрирует экзосомальную фракцию, но не позволяет отделить другие микровезикулы, макромолекулярные агрегаты и другие микрочастицы, не являющиеся экзосомами. Контаминация препаратов экзосом белками плазмы крови является общей проблемой всех вышеперечисленных методов, именно поэтому все существующие коммерческие наборы для выделения экзосом компаний Invitrogen, Norgen Biotech, System Biosciences, Life Technologies и QIAGEN основаны на предварительном ферментативном удаление избытка белка с помощью фермента протеиназы К. Кроме того, примеси полиэтиленгликоля в целевом продукте, а также плохая растворимость осажденных агрегатов ограничивают дальнейший анализ и использование выделенных экзосом. На основе ПЭГ-преципитации зарегистрированы патенты и созданы наборы реагентов компаниями Life Technologies Corporation (Methods and compositions for exosome isolation. US 9,671,321 B2) и System Biosciences (US 9,005,888 B2). Компания Life Technologies Corporation зарегистрировала патент на основе ПЭГ с молекулярной массой 6000 дальтон, а компания System Biosciences зарегистрировала патент на основе ПЭГ с молекулярной массой 8000 дальтон.
Наиболее часто используемым и близким к предлагаемому является набор “Total Exosome Isolation Kit (from plasma)” компании Life Technologies, который взят нам в качестве прототипа. В состав прототипа входят следующие компоненты: раствор протеиназы К ("Proteinase K”) и раствор реагента для осаждения экзосом (“Exosome Precipitation Reagent from plasma”).
Согласно протоколу набора-прототипа, к каждой пробе плазмы крови объемом 1 мл следует добавить 0,5 мл буфера 1×PBS, после чего добавить 0,05 объема раствора протеиназы К и инкубировать смесь 10 мин при +37°С. После инкубации к смеси добавляют 0,2 объема раствора реагента для осаждения экзосом, тщательно перемешивают содержимое пробирки и инкубируют полученную смесь в течение 30 мин в интервале температур от +2°С до +8°С. После окончания инкубации пробирку со смесью центрифугируют при 10000 g в течение 10 мин, после чего удаляют и отбрасывают супернатант. Оставшийся после центрифугирования осадок содержит экзосомы. Осадок ресуспендируют в необходимом объеме (0,1-0,5 мл, в зависимости от выхода микровезикул) буфера 1×PBS.
Набор прототип позволяет выделять микровезикулы из плазмы крови с высоким выходом. Однако, плазму предварительно необходимо в 1,5 раза разбавить буфером PBS, который не включен в состав набора, а для удаления избытка белка плазмы в прототипе необходимо использовать ферментативную деградацию белка с помощью протеиназы К. Все это приводит к дополнительному разбавлению пробы и удлинению процедуры выделения экзосом, а также может разрушить белки наружной мембраны, которые используются в качестве антигенных детерминант при последующей верификации экзосом. Процедура выделения требует использование термостата на +37°С в процессе инкубации с протеиназой К и охладителя +2°С - +8°С в процессе инкубации плазмы с реагентом для осаждения экзосом. Общее время инкубаций по протоколу достаточно продолжительна и составляет 40 мин. Следует также отметить, что набор прототип не содержит в своем составе все растворы, необходимые для реализации протокола выделения, не включен буфер 1×PBS, необходимый для начального разведения плазмы и для заключительной ресуспензии осадка экзосом.
В связи с вышеизложенным, процедура выделения экзосом набором прототипом достаточно продолжительная, а полученный препарат помимо экзосом содержит также примеси других типов внеклеточных микровезикул по причине отсутствия специфичности осаждения.
Технический результат настоящего изобретения состоит в увеличении выхода экзосом из биологических жидкостей, повышении чистоты препарата экзосом, а также сокращении времени их выделения.
Этот результат достигается тем, что в известном наборе для выделения экзосом, состоящем из осаждающего экзосомы агента, промывочного раствора и элюирующего буфера на основе раствора 0,15M цитрата натрия с pH 7,5, согласно изобретению, в качестве осаждающего экзосомы агента он содержит термический полипептид [лизин-аргинин]n (n=10-50) с молекулярной массой 3-15 килодальтон и промывочный раствор на основе 10 мМ NaCl. Мы применили подход для аффинного выделения экзосом, основываясь на ранее разработанном нами способе и наборе для выделения внеклеточной ДНК (патент RU 2753768 C1), в основе которого лежит способность положительного заряженного термического белка полилизина с образовывать прочные связи с олигофосфатными кластерами ДНК (RU 2753768 C1). В искомом наборе, выделения экзосом более эффективным оказался другой термический полипептид [лизин-аргинин]n (n=10-50), несущий более сильный положительный заряд, позволяющий специфически связывать экзосомы через фосфатные остатки фосфолипидов, что позволило эффективно и избирательно концентрировать экзосомы и отделить их как от белков плазмы крови, так и от других микрочастиц и микровезикул не экзосомальной природы, в результате чего был получен более чистый препарат с более высоким, чем в прототипе выходом, что привело к техническому результату. Использование термического полипептида [лизин-аргинин]n, вместо ферментативной обработки пробы в прототипе позволило сократить продолжительность выделения, что привело к техническому результату. Использование в искомом наборе гипотонического промывочного раствора на основе 10 мМ NaCl удаляет остаточный сывороточный альбумин со стенок пробирки, что позволило повысить чистоту препарата экзосом. Все это позволяет существенно повысить выход и чистоту экзосом, что привело к техническому результату.
Состав набора для выделения экзосом:
Набор состоит из трех растворов, каждый из которых находится в отдельном флаконе и добавляется отдельно в реакционную смесь в соответствии с нижеприведенной методикой выделения, а также инструкции по выделению экзосом. Флаконы с ингредиентами набора находятся в картонной коробке с ячейками для их вертикального расположения.
Набор реагентов имеет следующий состав:
1. Аффинный связывающий экзосомы агент - термический полипептид [лизин-аргинин]n - 12 мл.
2. Промывочный раствор (10 мМ NaCl) - 50 мл.
3. Элюирующий буфер (0,15 М цитрат натрия, рН 7,5) - 20 мл.
Примеры использования набора.
Пример 1
Для иллюстрации получения экзосом приводим пример №1 - выделение экзосом из плазмы крови человека с использованием данного набора. К 1 мл плазмы крови добавить 100 мкл связывающего экзосомы раствора, тщательно перемешать и инкубировать 15 мин при комнатной температуре, эпизодически перемешивая содержимое пробирки. Центрифугировать пробирку при 10000 g в течение 3 минут. К осадку на дне пробирки добавить 0,5 мл гипотонического промывочного буфера, интенсивно перемешать содержимое на механическом встряхивателе. Центрифугировать пробирку при 10000 g в течение 3 минут. Аккуратно удалить и отбросить супернатант. К осадку добавить 0,5 мл промывочного буфера, интенсивно перемешать содержимое на механическом встряхивателе. Центрифугировать пробирку при 10000 g в течение 3 минут. К отмытому осадку на дне пробирки добавить 0,2 мл элюирующего экзосомы буфера, интенсивно перемешать содержимое на механическом встряхивателе. Центрифугировать пробирку при 10000 g в течение 3 минут для удаления нежелательных агрегатов. Аккуратно собрать, не касаясь дна пробирки кончиком пипетки, и перенести в чистую пробирку содержащий экзосомы супернатант. Количество экзосом в пробе определяют с помощью анализатора траекторий наночастиц NanoSight LM10 (Malvern Instruments). Выход экзосом составляет 1-10×1010 частиц в 1 мл исходной плазмы крови, в зависимости от пациента. Препарат экзосом хранят при температуре +4°С в течение суток, либо замороженным при -20°С в течение нескольких дней, при более длительном хранении следует использовать морозильную камеру -80°С.
Технический результат настоящего изобретения состоит в упрощении и ускорении получения более чистого препарата экзосом из биологических жидкостей (кровь, моча) за счет аффинного связывания, агрегации и осаждения экзосом. Этот результат достигается тем, что в известном способе получения экзосом, включающем добавление к 1 части биологической жидкости 0,1 части раствора термального полипептида [лизин-аргинин]n (10 мг/мл), тщательном перемешивании смеси и инкубации в течение 15 мин, с последующим осаждением комплекса экзосомы-термальный поли[лизин-аргинин]n центрифугированием при 10000 g в течение 3 минут.
Верификация экзосомальной природы выделенных частиц проведена в соответствии с требованиями Международного общества изучения внеклеточных везикул (International Society for Extracellular Vesicles). Для подтверждения экзосомальной природы микровезикул в препаратах, полученных с помощью искомого набора реагентов, были использованы следующие тесты: 1 - оценка размеров и концентрации везикул методом анализа траектории наночастиц; 2 - оценка размеров и морфологии везикул с помощью электронной микроскопии; 3 - идентификация экзосомальных иммуномаркеров методами Вестерн-блоттинга или проточной цитофлуометрии. На Фиг. 1 представлены характеристики выделенных искомым набором экзосом в соответствии с требованиями Международного общества. Из рисунков следует, что выделенные искомым набором микровезикулы являются экзосомами по всем трем критериям: размер в диапазоне 90-145 нм и концентрация 4×1010 частиц в 1 мл исходной плазмы крови (Фиг. 1 А-Б), везикулярная морфология и наличие двуслойной мембраны (Фиг. 1В), присутствие специфического иммуномаркера CD9 в составе микровезикул, который локализован в наружном мембранном слое экзосом (Фиг. 1Г).
Эффективность выделения экзосом нашим набором и коммерческим набором “Total Exosome Isolation Kit (from plasma)” компании Life Technologies, который взят нам в качестве прототипа, оценивали по следующим характеристикам выделенных везикул: концентрация, размер, экспрессия экзосом специфических иммуномаркеров. Концентрацию и размер везикул определяли с помощью анализатора NTA NanoSight LM10 (Malvern Instruments), оснащенным красным лазером (длина волны 642 нм), а экспрессию маркерных белков экзосом - методом Вестерн-блоттинга с использованием коммерческих антител к CD9, TGS 101 и негативного контроля - Calnexin. Экзосомы были выделены из 1 мл плазмы здорового донора в трех повторах для каждого метода. На Фиг. 2 представлена сравнительная эффективность выделения и анализ чистоты микровезикул, выделенных прототипом (Фиг. 2А) и данным набором (Фиг. 2 Б). Искомый набор выделяет из 1 мл плазмы крови 2,8×1010 микровезикул, тогда как прототип 2,2×1010, то есть выход микровезикул прототипа меньше и составляет 85,7% от искомого. Также видно, что наибольшее количество везикул, размер которых лежит в пределах, характерных для экзосом (90-150 нм), содержится в препарате, выделенных искомым набором, в то время как в пробах, выделенных прототипом 50% везикул имеют размер больше 150 нм, что свидетельствует о том, что данный препарат загрязнен крупными частицами, размер которых значительно больше размера экзосом.
Важным параметром чистоты экзосом является отсутствие примеси белков из биологической жидкости. Так, в плазме крови содержится большое количество альбумина, что препятствует получению чистых препаратов экзосом. Мы сравнили количество альбумина в препаратах экзосом, выделенных искомым набором и прототипом. На Фиг. 3 представлены результаты электрофоретического разделения в полиакриламидном геле белков из препаратов везикул, выделенных искомым набором (Фиг. 3А) и прототипом (Фиг. 3Б) из плазмы крови двух здоровых доноров. Из электрофореграммы видно, что количество загрязнений сывороточного альбумина в препарате экзосом, выделенных прототипом на порядок выше, чем в препарате, выделенном искомым набором.
Процент экзосом в суммарных препаратах микровезикул и их загрязнение не экзосомальными частицами было проанализировано по величине экспрессии экзосомального маркерова CD9 методом Вестерн-блоттинга (Фиг. 4). Из фигуры 4 следует, что интенсивность сигнала в препарате экзосом, выделенных искомым набором выше (Фиг. 4А), чем в препарате, выделенном набором прототипом (Фиг. 4Б). Поскольку количество экзосом в препарате прямо коррелирует с интенсивностью сигнала, полученные данные означают, что препарат микровезикл, выделенный искомым набором, содержит больше экзосом, чем препарат, выделенный прототипом.
Другим важным критерием чистоты выделенных препаратов экзосом является величина примеси в них свободно циркулирующей внеклеточной ДНК (вкДНК), которая присутствует во всех внеклеточных жидкостях, наряду с экзосомами. Так как и на основе экзосом и на основе вкДНК разрабатываются высокочувствительные диагностические платформы, необходимо, чтобы выделяемые препараты не были взаимно контаминированы этими двумя пулами внеклеточных частиц. Ранее нами было показано, что разработанный нами термический олигопептид имеет разное сродство к вкДНК (высокое) и экзосомам (умеренное), что позволяет раздельно выделить пулы экзосом и свободно циркулирующей ДНК из одного образца биожидкости. Для количественной оценки величины примеси вкДНК в препаратах экзосом, выделенным искомым набором и прототипом, из каждого препарата экзосом выделяли внеклеточную ДНК с использованием ранее разработанного нами набора (патент на изобретение 2753768 С1, 23.08.2021: «Набор для выделения ДНК»). Для того, чтобы количественно оценить содержание в препаратах экзосом вкДНК генов с различной функциональной направленностью, локализацией и представленностью в геноме, использовались праймеры к ядерному однокопийному гену бета2-микроглобулин. ПЦР в реальном времени проводили на амплификаторе CFX96 Touch Real-Time Detection System (Bio-Rad) с использованием коммерческой набора BlazeTaq SYBR Green (GeneCopoeia, США). Концентрацию вкДНК рассчитывали на основании калибровочной кривой зависимости количества амплифицированной ДНК от концентрации ДНК однокопийного гена бета2-микроглобулина. Количество амплифицированной ДНК находилось в линейной зависимости от концентрации ДНК в диапазоне от 10 до 0,1 нг/мл. Сопоставляли общее количество вкДНК в осадке экзосом и в реконструированной суспензии. Как следует из Фиг. 5, основная часть вкДНК (96%), выделенной нашим набором, осталась связанной с агентом в осадке (Фиг. 5, А), тогда как с реконструированными в растворе экзосомами ассоциировано порядка 4% ДНК (Фиг. 5, Б), которая является истинно экзосомальной и локализована внутри микровезикул. Напротив, при выделении экзосом набором прототипом, более 99% вкДНК находится в растворе вместе реконструированных микровезикул (Фиг. 5, Г) и лишь менее 1% вкДНК выявляется в осадке (Фиг. 5, В), что связано с тем, что прототип не способен разделить экзосомы и вкДНК - они вместе осаждаются из плазмы крови и вместе ресуспендируются в буфере 1×PBS. Таким образом, по трем параметрам чистоты (наличие микривезикул большего размера, примеси сывороточного альбумина и внеклеточной ДНК) наш набор позволяет получить более высокоочищенный препарат экзосом, по сравнению с набором компании Life Technologies, который взят нами в качестве прототипа.
Как видно из приведенных примеров, по параметрам чистоты наш набор позволяет сократить время выделения и получить более высокоочищенный препарат экзосом, по сравнению с набором компании Life Technologies. В отличие от всех существующих наборов, только наш позволяет разделить и отдельно выделить экзосомы и вкДНК из одного образца. Общее время всех инкубаций по протоколу прототипа составляет 40 минут, тогда как у нас только 15 минут. Процедура выделения экзосом набором Life Technologies требует использования термостата, охлаждающей камеры и центрифуги, тогда как инстументарий нашего набора ограничивается только центрифугой. Преимуществом нашего набора также является то, что он включает все используемые в протоколе выделения растворы, тогда как в составе набора Total Exosome Isolation Kit (from plasma)” отсутствует раствор, необходимый для разбавления плазмы крови и ресуспендирования осадка экзосом.
Предлагаемый набор, по сравнению с известными, имеет ряд существенных преимуществ:
1. Использование вместо ферметативной деградации белка протеиназой К аффинно осаждающего экзосомы агента (термический полипептид [лизин-аргинин]n) обеспечивает получение более чистых и интактных препаратов экзосом по сравнению с прототипом.
2. Использование экзосом-осаждающего агента - термического полипептида [лизин-аргинин]n - обеспечивает получение более высококачественных препаратов экзосом, свободных от альбумина и свободно циркулирующей внеклеточной ДНК, которая выделяется вместе с экзосомами при выделении прототипом, а также от более крупных микровезикул, которые не являются экзосомами.
Набор разработан авторами в лаборатории генной инженерии Федерального государственного бюджетного учреждения «Российский научный центр радиологии и хирургических технологий имени академика А.М. Гранова» Министерства здравоохранения Российской Федерации.
Claims (1)
- Набор для выделения экзосом, состоящий из осаждающего экзосомы агента, промывочного раствора и элюирующего буфера на основе раствора 0,15 M цитрата натрия с pH 7,5, отличающийся тем, что в качестве осаждающего экзосомы агента он содержит термический полипептид со звеном цепи лизин-аргинин и количеством звеньев 10-50 с молекулярной массой 3-15 килодальтон и промывочный раствор на основе 10 мМ NaCl.
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2824663C1 true RU2824663C1 (ru) | 2024-08-12 |
Family
ID=
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9005888B2 (en) * | 2012-06-14 | 2015-04-14 | System Biosciences, Llc | Methods for microvesicle isolation and selective removal |
RU2556825C1 (ru) * | 2014-09-15 | 2015-07-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) | Способ получения экзосом из крови |
RU2788198C1 (ru) * | 2022-03-25 | 2023-01-17 | Общество с ограниченной ответственностью "ТЕТРАКВАНТ" (ООО "ТЕТРАКВАНТ") | Способ выделения и анализа экзосом |
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9005888B2 (en) * | 2012-06-14 | 2015-04-14 | System Biosciences, Llc | Methods for microvesicle isolation and selective removal |
RU2556825C1 (ru) * | 2014-09-15 | 2015-07-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) | Способ получения экзосом из крови |
RU2788198C1 (ru) * | 2022-03-25 | 2023-01-17 | Общество с ограниченной ответственностью "ТЕТРАКВАНТ" (ООО "ТЕТРАКВАНТ") | Способ выделения и анализа экзосом |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ГОРШКОВ А.Н. и др. Сравнительный анализ методов выделения экзосом из культуральной среды.//Цитология, T. 63, N 2, 2021, стр. 193-204. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Stam et al. | Isolation of extracellular vesicles with combined enrichment methods | |
Konoshenko et al. | Isolation of extracellular vesicles: general methodologies and latest trends | |
JP6712383B2 (ja) | エクソソームの単離方法およびエクソソームの単離キット | |
US10876105B2 (en) | Methods for extracellular vesicle isolation and selective removal | |
US9829483B2 (en) | Methods of isolating extracellular vesicles | |
Heine et al. | Entry of vesicular stomatitis virus into L cells | |
JP2002536635A (ja) | 体液から腫瘍細胞を濃縮するか又は除去する方法及びかかる目的に適したキット | |
EP3727630B1 (en) | Method and stationary phase for isolating extracellular vesicles from biological material | |
US11493412B2 (en) | Method and kit for exosomes and associated biomacromolecules capture | |
Sharma et al. | Techniques associated with exosome isolation for biomarker development: liquid biopsies for ovarian cancer detection | |
Yoshida et al. | TIM4-affinity methods targeting phosphatidylserine for isolation or detection of extracellular vesicles | |
CN113215079B (zh) | 一种从牛奶中提取细胞外囊泡的方法 | |
Palacio et al. | Emerging role of extracellular vesicles in multiple sclerosis: From cellular surrogates to pathogenic mediators and beyond | |
RU2824663C1 (ru) | Набор для выделения экзосом | |
Popovic | Routine and novel methods for isolation of extracellular vesicles | |
Shami-shah et al. | Advances in extracellular vesicle isolation methods: a path towards cell-type specific EV isolation | |
CN112852725A (zh) | 利用蛋白交联纳米亲和微球提取纯化干细胞外泌体制备方法及应用 | |
US20240272045A1 (en) | Method for isolating extracellular vesiclenusing salt fractional precipitation | |
RU2741776C1 (ru) | Способ выделения экзосом из плазмы крови | |
Maggio et al. | Current methods for the isolation of urinary extracellular vesicles | |
Handono et al. | Progress report on the rapid test kit development for early detection of systemic lupus erythematosus in Indonesia | |
EP4273229A1 (en) | Method for isolating exosomes with high efficiency and high purity | |
Garlin Politis et al. | Translational Opportunities of Extracellular Vesicles in Biomedicine | |
US20210238584A1 (en) | Isolation of extracellular vesicles by precipitation or immobilization using polyethylenimine and polyethylenimine-coated solid supports | |
CN117844798A (zh) | 一种外泌体总rna的提取方法 |