RU2803633C1 - Способ биодеградации гидроксилированных бензойных кислот с использованием штамма Rhodococcus ruber P25 - Google Patents

Способ биодеградации гидроксилированных бензойных кислот с использованием штамма Rhodococcus ruber P25 Download PDF

Info

Publication number
RU2803633C1
RU2803633C1 RU2023113206A RU2023113206A RU2803633C1 RU 2803633 C1 RU2803633 C1 RU 2803633C1 RU 2023113206 A RU2023113206 A RU 2023113206A RU 2023113206 A RU2023113206 A RU 2023113206A RU 2803633 C1 RU2803633 C1 RU 2803633C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
acids
hydroxybenzoic
biodegradation
dihydroxybenzoic
strain
Prior art date
Application number
RU2023113206A
Other languages
English (en)
Inventor
Дарья Олеговна Егорова
Елена Генриховна Плотникова
Original Assignee
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Пермский государственный национальный исследовательский университет"
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Пермский государственный национальный исследовательский университет" filed Critical Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Пермский государственный национальный исследовательский университет"
Application granted granted Critical
Publication of RU2803633C1 publication Critical patent/RU2803633C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области микробиологии и биотехнологии, в частности к разрушению гидроксилированных бензойных кислот с помощью микроорганизмов. Способ биодеградации гидроксибензойных кислот предусматривает взаимодействие 4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот в концентрации 1000 мг/л с клетками штамма Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896) в жидкой минеральной среде без дополнительных источников углерода. Предлагаемый способ обеспечивает биодеградацию моно- и дигидроксилированных бензойных кислот высокой концентрации, образующихся как продукт разложения внутриклеточных соединений и стойких органических загрязнителей до безопасных соединений. 5 пр.

Description

Изобретение относится к области микробиологии и биотехнологии, в частности к разрушению гидроксилированных бензойных кислот с помощью микроорганизмов.
Гидроксибензойные кислоты, а именно 4-гидроксибензойная кислота, 3,4-дигидроксибензойная кислота и 2,5-дигидроксибензойная кислота являются продуктами разложения ароматических и гидроксиароматических соединений, в том числе синтетических стойких органических загрязнителей, бактериями, растениями и грибами [Gibson F., Pittard J. Pathways of biosynthesis of aromatic amino acids and vitamins and their control in microorganisms // Bacteriol. Rev.1968ю Vol. 32. P. 465-492]. 3,4-гидроксибензойная и 2,5- дигидроксибензойная кислоты используются в косметологической и фармацевтической промышленности, в следствии чего являются загрязнителями окружающей среды антропогенного происхождения [Cha J.W., Piao M.J., Kim K.C., Zheng J., Yao C.W., Hyun C.L., Kang H.K., Yoo E.S., Koh Y.S., Lee N.H., Ko M.H., Hyun J.W. Protective effect of 3,4-dihydroxybenzoic acid isolated from Cladophora wrightiana Harvey against ultraviolet B radiation-induced cell damage in human HaCaT keratinocytes //Appl. Biochem. Biotechnol. 2014. Vol. 172. P. 582-592; Патент EP 1945614 A1Process for preparation of chiral amlodipine gentisate; Soni M.G., Carabin I.G., Burdock G.A. Safety assessment of esters of phydroxybenzoic acid (parabens) // Food Chem. Toxicol. 2005. Vol. 43. P. 985-1015; Bais H.P., Vepachedu R., Vivanco J.M. Root specific elicitation and exudation of fluorescent beta-carbolines in transformed root cultures of Oxalis tuberosa //Plant Physiol. Biochem. 2003. Vol. 41. P. 345-353]. Также следует отметить, что 4-гидроксибензойная кислота выступает как токсин для растений, животных и человека [паспорт безопасности в соотв. ГОСТ 30333-2007 https://www.carlroth.com]. Таким образом, накопление гидроксибензойных кислот как природного так и антропогенного происхождения в окружающей среде оказывает негативное воздействие на компоненты экосистемы.
Для решения проблемы очистки природных компонентов от гидроксибензойных кислот предпочтение отдается технологиям, основанным на использовании метаболического потенциала природных микроорганизмов, в частности аэробных бактерий. Среди описанных биодеструкторов гидроксибензойных кислот есть представители бактериальных родов Alcaligenes, Arthrobacter, Bacillus, Microbacterium, Rhodococcus, Pseudomonas [Solyanikova I.P., Emelyanova E.V., Shumkova E.S., Egorova D.O., Korsakova E.S., Plotnikova E.G., Golovleva L.A. Peculiarities of the degradation of benzoate and its chloro- and hydroxy-substituted analogs by actinobacteria // International Biodeterioration & Biodegradation. – 2015. – V.100. – 155–164. Егорова Д. О., Корсакова Е. С., Демаков В.А., Плотникова Е. Г. Деструкция ароматических углеводородов штаммом Rhodococcus wratislaviensis KT112-7, выделенным из отходов соледобывающего предприятия // Прикладная биохимия и микробиология. – 2013. – Том 49, № 3. – С. 267–278; Solyanikova I.P., Travkin V.M., Rybkina D.O., Plotnikova E.G., Golovleva L.A. Varyability of enzyme system of Nocardioform bacteria as a basis of their metabolic activity // J. Environmental Science and Health. Part B. 2008. V.43. p. 241-252; патент CN115322926 (A) – 2022-11-11 Rhodococcus pyridines and application thereof in remediation of continuous cropping soil; патент CN113444660 (A) – 2021-09-28 Bacillus amyloliquefaciens strain LXBA.1 and application thereof; патент CN113652375 (A) – 2021-11-16 Alcaligenes family aerobic new bacterium T-4 and application thereof; патент CN106698678 (A) – 2017-05-24 Application of Bacillus in degrading aromatic compounds; патент CN108753641 (a) – 2018-11-06 Germ capable of efficiently degrading autotoxin p-hedroxybenzoic acid and application of germ; патент CN111575216 (A) – 2020-08-25 Pseudomonas putida capable of degrading phenolic acid autotoxins and application of pseudomonas putida; патент CN110408567 (A) – 2019-11-05 Saline-alkaline tolerant bacillus methylophilus, and live bacterial preparation and application thereof]. Для большинства известных штаммов описана способность использовать гидроксибензойные кислоты как источник углерода для роста бактериальных культур, однако нет сведений с какой скоростью и при каких начальных концентрациях происходит деструкция гидроксибензойных кислот, а также возможна ли одновременная деградация трех, наиболее часто встречающихся, гидроксибензойных кислот известными штаммами бактерий. Кроме того, представителя ряда описанных родов бактерий-деструкторов гидроксибензойных кислот обладают патогенными свойствами в отношении человека и животных. В связи с этим актуален поиск новых непатогенных микроорганизмов, проявляющих высокую деструктивную активность к гидроксибензойным кислотам.
Штамм Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896) известен как активный деструктор хлорированных бифенилов [Плотникова Е.Г., Рыбкина Д.О., Демаков В.А. Штамм бактерий Rhodococcus ruber – деструктор полихлорированных бифенилов. Патент RU 2262531 С2. 2005. Бюл. №29; Egorova D.O., Gorbunova T.I., Pervova M.G., Kir’yanova T.D., Demakov V.A., Saloutin V.I., Chupakhin O.N. Biodegradability of hydroxylated derivatives of commercial polychlorobiphenyls mixtures by Rhodococcus-strains // Journal of Hazardous Materials. – 2020. – V. 400. – Article 123328; Gorbunova T.I., Egorova D.O., Pervova M.G., Kyrianova T.D., Demakov V.A., Saloutin V.I., Chupakhin O.N. Biodegradation of trichlorobiphenyls and their hydroxylated derivatives by Rhodococcus-strains // Journal of Hazardous Materials. – 2021. – V. 409. – Article 124471; Егорова Д. О., Горбунова Т. И., Кирьянова Т. Д., Первова М. Г., Плотникова Е. Г. Моделирование структуры α-субъединицы бифенил диоксигеназы штаммов рода Rhodococcus и особенности их деградативной активности к хлорированным- и гидроксилированным бифенилам при различных температурах // Прикладная биохимия и микробиология. – 2021. – Т. 57, № 6. – С. 571–582; Плотникова Е.Г., Соляникова И.П., Егорова Д.О., Шумкова Е.С., Головлева Л.А. Особенности разложение 4-хлорбифенила и 4- хлорбензойной кислоты штаммом Rhodococcus ruber Р25 // Микробиология. – 2012. – Т. 81, №2. – С.159–170.], запрещенных к применению в связи с ограничениями, наложенными Стокгольмской конвенцией на соединения группы СОЗ (стойких органических загрязнителей). Показано, что данный штамм проявляет деградативную активность и к гидроксилированным бензойным кислотам. Штамм не обладает патогенными свойствами, характеризуется набором ферментов, проявляющих активность к широкому спектру ароматических соединений, что делает его перспективным для разработки основы биопрепарата, направленного на разложение гидроксибензойных кислот.
Цель настоящего изобретения – разработка способа эффективной биодеструкции гидроксибензойных кислот (4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот) в относительно высокой концентрации (1000 мг/л) с использованием бактериального штамма Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896).
Техническим результатом описываемого изобретения является обеспечение полной биодеструкции гидроксибензойных кислот (4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот) с помощью штамма рода Rhodococcus на основе разработанной технологии и подобранных оптимальных условий осуществления процесса биодеградации, при этом концентрация гидроксибензойных кислот 1000мг/л и температура культивирования +28°С являются предпочтительными.
Данный технический результат достигается посредством реализации способа биодеградации гидроксибензойных кислот, который предусматривает взаимодействие гидроксибензойных кислот с клетками Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896). Процесс осуществляют в минеральной среде, содержащей источники азота, фосфора и минеральные соли. Применение заявленного способа обеспечивает полную биодеградация 1000мг/л гидроксибензойных кислот, присутствующих в среде как индивидуально, так и в смеси, клетками Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896) за 5-7 суток.
В способе используется штамм Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896) деструктор полихлорированных бифенилов (патент RU2262531 С2), представленный в Региональной специализированной коллекции алканотрофных микроорганизмов (акроним ИЭГМ, номер во Всемирной федерации культур 768, www.iegmcol.ru).
Изобретение осуществляется следующим образом.
Периодическое культивирование Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896) осуществляют в колбах Эрленмейера вместимостью 250 мл при объеме минеральной среды 100 мл в условиях постоянного перемешивания (140 об/мин) при 28°С или 32°С. Для культивирования используют минеральную среду К1 следующего состава (г/л): K2HPO4 × 3H2O – 4.0, NaH2PO4 × 2H2O – 0.4, (NH4)2SO4 – 0.5, Ca(NO3)2 – 1.0, MgSO4 × 7H2O – 0.15, NaMoO4 × 2H2O – 0.04, рН среды 7.3 [Tsoi, T.V. Cloning and expression of the Arthrobacter globiformis KZT1 fcbA gene encoding dehalogenase (4-chlorobenzoate-4-hydroxylase) in Escherichia coli / T.V. Tsoi [et al.] // FEMS Microbiol. Lett. – 1991. – V. 81. – P. 165–170]. Бактерии, выращенные на агаризованной минеральной среде К1 (для создания плотной среды вносили агар в концентрации 1,5%) с внесением в качестве источника углерода бензойной кислоты в концентрации 0,5 г/л в течение 72 часов, суспендированные в физиологическом растворе, вносят в среду культивирования до конечной концентрации 1.0×104 клеток/мл. Гидроксибензойные кислоты (4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот) (99,5%, «Sigma-Aldrich», США) вносят индивидуально или в смеси в концентрации 1000мг/л в виде водного раствора, при необходимости уравновешенного гидроксидом натрия до нейтрального значения рН (рН 7.0). В качестве контроля используют стерильный раствор гидроксибензойных кислот в минеральной среде К1 для оценки абиотической деградации. Продолжительность процесса биодеструкции гидроксибензойных кислот составляет 5-7 сут. Оптическую плотность (ОП) суспензии клеток определяют с помощь спектрофотометра Bio-Spec-mini («Shimadzu», Япония) при длине волны 600 нм, длине оптического пути кварцевой кюветы 1,0 см, объем кюветы 4 мл. Для обнаружения остаточных гидроксибензойных кислот и их возможных метаболитов культуральную жидкость очищали от бактериальных клеток центрифугированием (9660 g в течение 10 мин на центрифуге 3К30 «Sigma Sartorius», Германия) и анализировали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) на хроматографе LC-20AD Prominance («Shimadzu», Япония) с колонкой С-18 (150х4,6 мм, «Sigma-Aldrich», США) и УФ-детектором SPD-20A («Shimadzu», Япония) при длине волны 205 нм. В качестве элюента используют систему ацетонитрил–0,1%-ная Н3РО4 (60:40). Качественное определение гидроксибензойных кислот и их возможных метаболитов проводят по сравнению времени удержания на колонке исследуемых соединений и стандартных соединений (4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот, катехол в виде водных растворов в концентрации 100 мг/л). Количественное определение гидроксибензойных кислот проводят по сравнению площади пиков на хроматограмме исследуемых и стандартных соединений (4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот в виде водных растворов в концентрации 100 мг/л).
Изобретение поясняется следующими примерами.
Пример 1.
Биодеградацию 4-гидроксибензойной кислоты проводят с использованием клеток R. ruber P25 (ИЭГМ 896) в 100 мл минеральной среды, содержащей источники азота, фосфора и минеральные соли при постоянном перемешивании (140 об/мин) и при 28°С. 4-гидроксибензойную кислоту(1000 мг/л) вносят одновременно с инокулятом в виде водного раствора с рН 7.0. Количество остаточной 4-гидроксибензойной кислоты контролируют методом ВЭЖХ. Полная биодеградация 4-гидроксибензойной кислоты в концентрации 1000 мг/л регистрируется через 5 сут, после внесения кислоты.
Пример 2.
Способ осуществляется по примеру 1, но вносят 3,4-дигидроксибензойную кислоту в концентрации 1000 мг/л. Полная биодеградация 3,4-дигидроксибензойной кислоты регистрируется на 5 сут после внесения кислоты.
Пример 3.
Способ осуществляется по примеру 1, но вносят 2,5-дигидроксибензойную кислоту в концентрации 1000 мг/л. Полная биодеградация 2,5-дигидроксибензойной кислоты регистрируется на 6 сут после внесения кислоты.
Пример 4.
Способ осуществляется по примеру 1, но вносят смесь 4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот в концентрации 1000 мг/л. Полная биодеградация смеси кислот наступает через 6 сут после внесения данной смеси.
Пример 5.
Способ осуществляется по примеру 4, но культивирование проводят при 32°С. Полная биодеградация смеси гидроксибензойных кислот регистрируется через 7 сут после внесения данной смеси кислот.

Claims (1)

  1. Способ биодеградации гидроксибензойных кислот, предусматривающий взаимодействие 4-гидроксибензойной, 3,4-дигидроксибензойной, 2,5-дигидроксибензойной кислот в концентрации 1000 мг/л с клетками штамма Rhodococcus ruber P25 (ИЭГМ 896) в жидкой минеральной среде без дополнительных источников углерода.
RU2023113206A 2023-05-22 Способ биодеградации гидроксилированных бензойных кислот с использованием штамма Rhodococcus ruber P25 RU2803633C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2803633C1 true RU2803633C1 (ru) 2023-09-18

Family

ID=

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2262531C2 (ru) * 2003-12-02 2005-10-20 Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН Штамм бактерий rhodococcus ruber - деструктор полихлорированных бифенилов
RU2484131C2 (ru) * 2011-07-13 2013-06-10 Общество с ограниченной ответственностью "БИОЛЭНД" Биопрепарат для очистки воды, почвы и промышленных стоков от устойчивых к разложению пестицидов и способ его применения
WO2016036748A1 (en) * 2014-09-03 2016-03-10 Coffa Gianguido Production of cis, cis-muconic acid from carbonaceous material
RU2585537C1 (ru) * 2015-04-09 2016-05-27 Общество с ограниченной ответственностью "ЭМУЛЬСИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ" ШТАММ Rhodococcus wratislaviensis - ДЕСТРУКТОР УСТОЙЧИВЫХ ТОКСИЧНЫХ ХЛОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ
RU2777111C9 (ru) * 2022-01-18 2022-11-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Федеральный исследовательский центр "Пущинский научный центр биологических исследований Российской академии наук" (ФИЦ ПНЦБИ РАН) Штамм бактерий Rhodococcus opacus ВКМ Ac-2911D, способный к деградации фенола в высоких концентрациях
CN115322926A (zh) * 2022-07-28 2022-11-11 广西民族大学 一株吡啶红球菌及其在修复重茬连作土壤的应用

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2262531C2 (ru) * 2003-12-02 2005-10-20 Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН Штамм бактерий rhodococcus ruber - деструктор полихлорированных бифенилов
RU2484131C2 (ru) * 2011-07-13 2013-06-10 Общество с ограниченной ответственностью "БИОЛЭНД" Биопрепарат для очистки воды, почвы и промышленных стоков от устойчивых к разложению пестицидов и способ его применения
WO2016036748A1 (en) * 2014-09-03 2016-03-10 Coffa Gianguido Production of cis, cis-muconic acid from carbonaceous material
RU2585537C1 (ru) * 2015-04-09 2016-05-27 Общество с ограниченной ответственностью "ЭМУЛЬСИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ" ШТАММ Rhodococcus wratislaviensis - ДЕСТРУКТОР УСТОЙЧИВЫХ ТОКСИЧНЫХ ХЛОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ
RU2777111C9 (ru) * 2022-01-18 2022-11-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Федеральный исследовательский центр "Пущинский научный центр биологических исследований Российской академии наук" (ФИЦ ПНЦБИ РАН) Штамм бактерий Rhodococcus opacus ВКМ Ac-2911D, способный к деградации фенола в высоких концентрациях
CN115322926A (zh) * 2022-07-28 2022-11-11 广西民族大学 一株吡啶红球菌及其在修复重茬连作土壤的应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ВОРОНИНА А. О. "Разнообразие и молекулярно-биологическая характеристика бактерий-деструкторов бифенила (хлорированных бифенилов) техногенных экосистем", на правах рукописи, г. Пермь, 2020. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Zhang et al. Aerobic degradation of bisphenol A by Achromobacter xylosoxidans strain B-16 isolated from compost leachate of municipal solid waste
Abraham et al. Simultaneous degradation of organophosphorus and organochlorine pesticides by bacterial consortium
Abraham et al. Biodegradation of chlorpyrifos and its hydrolyzing metabolite 3, 5, 6-trichloro-2-pyridinol by Sphingobacterium sp. JAS3
Ghosh et al. Biodegradation of pyrene by a Pseudomonas aeruginosa strain RS1 isolated from refinery sludge
Lakshmikandan et al. Biodegradation of acrylamide by acrylamidase from Stenotrophomonas acidaminiphila MSU12 and analysis of degradation products by MALDI-TOF and HPLC
Wang et al. Efficient biodegradation of phenanthrene by a novel strain Massilia sp. WF1 isolated from a PAH-contaminated soil
Shukor et al. Isolation and characterization of an acrylamide-degrading Bacillus cereus
Mulla et al. Degradation of triclocarban by a triclosan-degrading Sphingomonas sp. strain YL-JM2C
Zeinat Kamal et al. Biodegradation and detoxification of malathion by of Bacillus thuringiensis MOS-5
Maneerat et al. A novel crude oil emulsifier excreted in the culture supernatant of a marine bacterium, Myroides sp. strain SM1
Pugazhendi et al. Biodegradation of 1, 4-dioxane by Rhodanobacter AYS5 and the role of additional substrates
Egorova et al. Bioremediation of hexachlorocyclohexane-contaminated soil by the new Rhodococcus wratislaviensis strain Ch628
Kristanti et al. Isolation and characterization of 3-nitrophenol-degrading bacteria associated with rhizosphere of Spirodela polyrrhiza
Briceño et al. Use of pure and mixed culture of diazinon-degrading Streptomyces to remove other organophosphorus pesticides
Hoskeri et al. Biodegradation of chloroaromatic pollutants by bacterial consortium immobilized in polyurethene foam and other matrices
Kamaraj et al. Biodegradation of di-(2-ethylhexyl) phthalate by novel Rhodococcus sp. PFS1 strain isolated from paddy field soil
Akbar et al. Bacterial community analysis in chlorpyrifos enrichment cultures via DGGE and use of bacterial consortium for CP biodegradation
Dar et al. Biodegradation of malathion by M icrococcus sp. strain MAGK3: kinetics and degradation fragments
Nowak et al. Changes in fatty acid composition of Stenotrophomonas maltophilia KB2 during co-metabolic degradation of monochlorophenols
Egorova et al. Bioremediation of soil contaminated by dichlorodiphenyltrichloroethane with the use of aerobic strain Rhodococcus wratislaviensis Ch628
Duc et al. Biodegradation of acetochlor and 2-methyl-6-ethylaniline by Bacillus subtilis and Pseudomonas fluorescens
Stope et al. Cometabolic ring fission of dibenzofuran by Gram-negative and Gram-positive biphenyl-utilizing bacteria
Mulla et al. Biodegradation of 3-chlorobenzoate and 3-hydroxybenzoate by polyurethane foam immobilized cells of Bacillus sp. OS13
Evangelista et al. The effect of structure and a secondary carbon source on the microbial degradation of chlorophenoxy acids
Polivtseva et al. Evaluation of the biotechnological potential of new bacterial strains capable of phenol degradation