RU2745159C1 - Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes - Google Patents

Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes Download PDF

Info

Publication number
RU2745159C1
RU2745159C1 RU2020118090A RU2020118090A RU2745159C1 RU 2745159 C1 RU2745159 C1 RU 2745159C1 RU 2020118090 A RU2020118090 A RU 2020118090A RU 2020118090 A RU2020118090 A RU 2020118090A RU 2745159 C1 RU2745159 C1 RU 2745159C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
medium
dermatophytosis
growth
agar
dermatophytes
Prior art date
Application number
RU2020118090A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Василий Александрович Савинов
Андрей Владимирович Капустин
Роман Сергеевич Овчинников
Алла Габбасовна Гайнулина
Алексей Иванович Лаишевцев
Алексей Михайлович Гулюкин
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)
Priority to RU2020118090A priority Critical patent/RU2745159C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2745159C1 publication Critical patent/RU2745159C1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: veterinaty medicine.
SUBSTANCE: invention relates to veterinary medicine and veterinary microbiology and can be used for the diagnosis of animal dermatophytosis caused by filamentous fungi of the species Microsporum canis and Trichophyton mentagrophytes. Selective nutrient medium for isolation of pathogens of dermatophytosis includes glucose, mannitol, meat peptone, phenol red, agar-agar, cycloheximide, enrofloxacin and distilled water at a given content of components.
EFFECT: invention makes it possible to shorten the time of diagnosis of dermatophytosis in animals, to increase the reliability of the results of differentiation of fungi of dermatophytes from non-dermatophytes using routine microbiological methods and to expand the arsenal of nutrient media for isolation of pathogens of dermatophytosis.
1 cl, 2 tbl, 5 ex

Description

Изобретение относится к ветеринарной медицине и ветеринарной микробиологии, и может быть использовано для диагностики дерматофитозов животных, вызванных мицелиальными грибами видов Microsporum canis и Trichophyton mentagrophytes. Изобретение является улучшенной дифференциально-диагностической средой для выявления грибов-дерматофитов из клинического материала, отобранного от животных с дерматологическими патологиями и/или подозрениями на них.The invention relates to veterinary medicine and veterinary microbiology, and can be used for the diagnosis of animal dermatophytosis caused by filamentous fungi of the species Microsporum canis and Trichophyton mentagrophytes. The invention is an improved differential diagnostic environment for the detection of dermatophyte fungi from clinical material selected from animals with dermatological pathologies and / or suspicions of them.

Дерматофитозы животных, вызванные мицелиальными видами грибов Microsporum canis и Trichophyton mentagrophytes широко распространены на территории России и мира в целом [Савинов, В.А. Распространенность дерматофитозов у мелких домашних животных / В.А. Савинов // Успехи медицинской микологии. 2018. Т. 19. С. 373-375]. Во многих регионах России заболевание занимает лидирующее место среди дерматологических патологий. Для назначения и проведения эффективного лечения ветеринарным врачам предварительно необходимо определение этиологии болезни. Так, в настоящее время наиболее распространенным методом диагностики дерматофитозов являются люминесцентное исследование образцов с использованием лампы с фильтром Вуда. Кроме того, распространенным подходом при постановке диагноза является проведение микроскопии пораженной шерсти и волос и поиск артроконидий, гиф и мицелия гриба. По ряду причин эффективность приведенных методов низкая, несмотря на их простоту и дешевизну в реализации. «Золотым стандартом» диагностики дерматофитозов по-прежнему является культуральный метод исследования [Овчинников, Р.С. Микологический скрининг домашних животных - важный способ профилактики дерматофитозов человека / Р.С. Овчинников, П.П. Ершов, А.В. Капустин, В.А. Савинов, А.Г. Гайнуллина // Успехи медицинской микологии. 2019. Т. 20. С. 712-716]. Культуральные методы позволяют проводить не только дифференциацию возбудителей дерматофитозов, но и определять их чувствительность к антимикотическим препаратам, что в свою очередь способствует назначению корректной терапии заболевания. Однако реализация культуральных методов диагностики, в отличии от люминесцентного метода и метода микроскопии, возможно только высококвалифицированными сотрудниками с определенной подготовкой и в условиях лаборатории. В свою очередь культуральные методы с использованием известных питательных сред имеют свой недостаток, а именно длительный рост дерматофитов, который позволяет сделать окончательное заключение не ранее, чем через 14-16 дней, что существенно влияет на ход лечения больного животного [Савинов, В.А. Экспресс-диагностика дерматофитозов животных / В.А. Савинов, Р.С. Овчинников, А.В. Капустин, А.А. Гайнуллина// Аграрная наука. 2019. №10. С. 20-24].Dermatophytoses of animals caused by mycelial species of fungi Microsporum canis and Trichophyton mentagrophytes are widespread in Russia and the world as a whole [Savinov, V.A. The prevalence of dermatophytosis in small domestic animals / V.A. Savinov // Advances in medical mycology. 2018.Vol. 19.P. 373-375]. In many regions of Russia, the disease occupies a leading place among dermatological pathologies. To prescribe and conduct effective treatment, veterinarians first need to determine the etiology of the disease. So, at present, the most common method for diagnosing dermatophytosis is a luminescent study of samples using a lamp with a Wood filter. In addition, microscopy of the affected coat and hair and the search for arthroconidia, hyphae, and mycelium of the fungus is a common diagnostic approach. For a number of reasons, the effectiveness of the above methods is low, despite their simplicity and low cost in implementation. The "gold standard" for the diagnosis of dermatophytosis is still the cultural method of research [Ovchinnikov, R.S. Mycological screening of domestic animals is an important way to prevent human dermatophytosis / R.S. Ovchinnikov, P.P. Ershov, A.V. Kapustin, V.A. Savinov, A.G. Gainullina // Advances in medical mycology. 2019. T. 20. S. 712-716]. Cultural methods make it possible not only to differentiate the causative agents of dermatophytosis, but also to determine their sensitivity to antimycotic drugs, which in turn contributes to the prescription of the correct therapy for the disease. However, the implementation of cultural diagnostic methods, in contrast to the luminescent method and the microscopy method, is possible only by highly qualified employees with certain training and in laboratory conditions. In turn, cultural methods using known nutrient media have their disadvantage, namely the prolonged growth of dermatophytes, which allows a final conclusion to be made no earlier than 14-16 days, which significantly affects the course of treatment of a sick animal [Savinov, V.A. Rapid diagnostics of animal dermatophytosis / V.A. Savinov, R.S. Ovchinnikov, A.V. Kapustin, A.A. Gainullina // Agricultural science. 2019. No. 10. S. 20-24].

Уровень техникиState of the art

В настоящее время для выделения мицелиальных грибов из патологического и клинического материала наиболее широко используется среда Сабуро. Данная среда обеспечивает рост большинства грибов-микромицетов. Недостатком данной среды, в случае диагностирования дерматомикозов, является ее низкая специфичность. В частности, из-за длительного периода культивирования дерматофитов, на среде в первую очередь начинают расти быстрорастущие сапрофитные плесени из исследуемого материала (грибы-контаминанты), что в последующем затрудняет или полностью исключает рост дерматофитов. Помимо низкой специфичности, использование данной питательной среды требует длительный период культивирования. Так, формирование макроконидий происходит к 14-16 дню, что существенно замедляет сроки постановки окончательного диагноза и назначение необходимой терапии.Currently, Sabouraud's medium is most widely used to isolate filamentous fungi from pathological and clinical material. This environment allows the growth of most micromycete fungi. The disadvantage of this environment, in the case of diagnosing dermatomycosis, is its low specificity. In particular, due to the long period of dermatophyte cultivation, fast-growing saprophytic molds from the test material (contaminating fungi) begin to grow on the medium, which subsequently complicates or completely eliminates the growth of dermatophytes. In addition to the low specificity, the use of this nutrient medium requires a long cultivation period. So, the formation of macroconidia occurs by 14-16 days, which significantly slows down the timing of the final diagnosis and the appointment of the necessary therapy.

Известна питательная среда для культивирования Microsporum canis [патент RU 2695675 С1 опубл. 2019.03.05]. Недостатком данной среды стоит считать ограниченный спектр применения.Known nutrient medium for the cultivation of Microsporum canis [patent RU 2695675 C1 publ. 2019.03.05]. The disadvantage of this environment is the limited range of applications.

Известен способ диагностики дерматомикозов и питательная среда для дерматофитов [патент RU 2275631 С1 опубл. 2006.04.14]. Существенным недостатком данной среды является ее не специфичность, и отсутствие индикаторных изменений при культивировании, свидетельствующих о наличие роста дерматофитов.A known method for the diagnosis of dermatomycosis and a nutrient medium for dermatophytes [patent RU 2275631 C1 publ. 2006.04.14]. A significant drawback of this medium is its non-specificity, and the absence of indicator changes during cultivation, indicating the presence of dermatophyte growth.

Известна среда ДТМ (Dermatophyte Test Medium) [Taplin, D. Isolation and recognition of dermatophytes on a new medium (DTM). / D. Taplin, N. Zaias, G. Rebell, H. Blank. // Arch Dermatol 1969 99:203-209]. В состав среды входит папаиновый перевар соевой муки (10,0 грамм), глюкоза (10,0 грамм), циклогексимид (0,5 грамм), индикатор - феноловый красный (0,2 грамма), хлортетрациклин (0,1 грамма), гентамицин (0,1 грамма). Принцип применения питательной среды основан на изменении уровня водородных ионов (рН). Так, в процессе роста грибы-дерматофиты поглощают белковые пептиды, продуцируют щелочь и повышают значение рН, в следствии чего индикатор изменяет окраску среды с желтого на красный. Преимуществом данной среды является то, что посев не требует специальных навыков и его можно проводить в условиях клиники, при этом инкубацию посева можно проводить при комнатной температуре, т.е. при отсутствии специального лабораторного оборудования. Результаты исследования с использованием обозначенной среды можно получить на 7-9 день исследования. Однако к существенным недостаткам данной среды являются зафиксированные случаи возникновения ложноположительной реакции на рост грибов, не относящихся к группе дерматофитов [Savinov, V.А. Development of a differential diagnostic nutrient medium for the express diagnosis of animal dermatophytosis. / V.A. Savinov, R.S. Ovchinnikov, A.V. Kapustin, A.I. Laishevtcev, A.M. Gulykin // In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science 2019, August, Vol. 315, No. 2, p. 022071. IOP Publishing.]. Кроме того, к антибиотикам, входящим в состав питательной среды, широко распространяется резистентность, что в свою очередь снижает диагностическую ценность среды. Данное явление связано с тем, что рост бактерий закисляет питательную среду, тем самым, не позволяя среде изменить цвет на красный [Kaufer, N.F. Cycloheximide resistance in yeast: the gene and its protein. / N.F. Kaufer, H.M. Fried, W.F. Schwindinger, M. Jasin, J.R. Warner // Nucleic Acids Res. 1983 May 25; 11(10): 3123-3135; Roth, N. The application of antibiotics in broiler production and the resulting antibiotic resistance in Escherichia coli: A global overview. / N. Roth,

Figure 00000001
S. Mayrhofer, U. Zitz, C. Hofacre, K.J. Domig // Poult Sci. 2019 Apr; 98(4): 1791-1804].Known environment DTM (Dermatophyte Test Medium) [Taplin, D. Isolation and recognition of dermatophytes on a new medium (DTM). / D. Taplin, N. Zaias, G. Rebell, H. Blank. // Arch Dermatol 1969 99: 203-209]. The medium contains papain digest of soy flour (10.0 grams), glucose (10.0 grams), cycloheximide (0.5 grams), phenol red indicator (0.2 grams), chlortetracycline (0.1 grams), gentamicin (0.1 grams). The principle of using the nutrient medium is based on changing the level of hydrogen ions (pH). So, in the process of growth, dermatophyte fungi absorb protein peptides, produce alkali and increase the pH value, as a result of which the indicator changes the color of the medium from yellow to red. The advantage of this environment is that sowing does not require special skills and can be carried out in a clinic, while the incubation of sowing can be carried out at room temperature, i.e. in the absence of special laboratory equipment. The results of the study using the designated medium can be obtained on the 7-9 day of the study. However, the significant disadvantages of this environment are the recorded cases of the occurrence of a false-positive reaction to the growth of fungi that do not belong to the group of dermatophytes [Savinov, V.A. Development of a differential diagnostic nutrient medium for the express diagnosis of animal dermatophytosis. / VA Savinov, RS Ovchinnikov, AV Kapustin, AI Laishevtcev, AM Gulykin // In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science 2019, August, Vol. 315, No. 2, p. 022071. IOP Publishing.]. In addition, resistance to antibiotics that are part of the nutrient medium is widespread, which in turn reduces the diagnostic value of the medium. This phenomenon is due to the fact that the growth of bacteria acidifies the nutrient medium, thereby preventing the medium from changing color to red [Kaufer, NF Cycloheximide resistance in yeast: the gene and its protein. / NF Kaufer, HM Fried, WF Schwindinger, M. Jasin, JR Warner // Nucleic Acids Res. 1983 May 25; 11 (10): 3123-3135; Roth, N. The application of antibiotics in broiler production and the resulting antibiotic resistance in Escherichia coli: A global overview. / N. Roth,
Figure 00000001
S. Mayrhofer, U. Zitz, C. Hofacre, KJ Domig // Poult Sci. 2019 Apr; 98 (4): 1791-1804].

Согласно вышеприведенным характеристикам на существующие и/или ранее используемые питательные среды для диагностики дерматомикозов, среда Dermatophyte Test Medium является наиболее близким аналогом, который мы берем за прототип.According to the above characteristics for existing and / or previously used nutrient media for the diagnosis of dermatomycosis, Dermatophyte Test Medium is the closest analogue that we take as a prototype.

Технической проблемой, на решение которой направлено данное изобретение, является необходимость создания селективной питательной среды, позволяющей с минимальными временными затратами и максимальной диагностической точностью культивировать и дифференцировать возбудители дерматофитозов животных, а именно Microsporum canis и Trichophyton mentagrophytes.The technical problem to be solved by this invention is the need to create a selective nutrient medium that allows, with minimal time costs and maximum diagnostic accuracy, to cultivate and differentiate the causative agents of animal dermatophytosis, namely Microsporum canis and Trichophyton mentagrophytes.

Раскрытие сущности изобретенияDisclosure of the essence of the invention

Техническим результатом изобретения является сокращение сроков диагностирования дерматофитозов животных и повышение достоверности результатов дифференциации грибов дерматофитов от недерматофитов при использовании рутинных микробиологических методов, расширение арсенала питательных сред для выделения возбудителей дерматофитозов.The technical result of the invention is to reduce the timing of diagnosing dermatophytosis in animals and increase the reliability of the results of differentiation of fungi of dermatophytes from non-dermatophytes using routine microbiological methods, expanding the arsenal of nutrient media for isolating pathogens of dermatophytosis.

Состав и схема приготовления питательной среды следующие: 10,0±1,0 г/л глюкозы, 10,0±1,0 г/л маннитола, 10,0±1,0 г/л мясного пептона, 0,2±0,02 г/л фенолового красного, 15,0-20,0±1,5 г/л агар-агара, равномерно смешиваются в 949,8-954,8 мл дистиллированной воды (соответственно). С помощью соляной кислоты (HCl) регулируется уровень рН до значения 5,5±0,1. Смесь автоклавируется при температуре 121°С в течение 15 минут. После остывания среды до 55±5,0°С, в нее асептически добавляют циклогексимид 0,5±0,05 г/л, энрофлоксацин 0,1±0,01 г/л, затем разливают в чашки Петри по 22±2,5 мл или в стерильные полимерные контейнеры по 10 мл. Среда пригодна к использованию после застывания и при отсутствии конденсата. Предлагаемое диагностическое средство отличается от своих ранних аналогов улучшенными ростовыми и селективными свойствами, позволяющими сократить сроки диагностики и повысить чувствительность при выявлении возбудителей дерматофитозов животных. Индикаторный компонент, входящий в состав питательной среды, позволяет детектировать рост дерматофитов уже на ранних стадиях диагностики, не прибегая к последующему микроскопированию культуры, что, в свою очередь необходимо в классической диагностике для подтверждения принадлежности культур к дерматофитам.The composition and preparation of the nutrient medium are as follows: 10.0 ± 1.0 g / L glucose, 10.0 ± 1.0 g / L mannitol, 10.0 ± 1.0 g / L meat peptone, 0.2 ± 0 , 02 g / l phenol red, 15.0-20.0 ± 1.5 g / l agar agar, are evenly mixed in 949.8-954.8 ml of distilled water (respectively). Using hydrochloric acid (HCl), the pH is adjusted to 5.5 ± 0.1. The mixture is autoclaved at 121 ° C for 15 minutes. After the medium has cooled down to 55 ± 5.0 ° C, cycloheximide 0.5 ± 0.05 g / l, enrofloxacin 0.1 ± 0.01 g / l are added aseptically, then poured into Petri dishes 22 ± 2, 5 ml or in sterile polymer containers of 10 ml. The medium is suitable for use after solidification and in the absence of condensation. The proposed diagnostic tool differs from its early counterparts in improved growth and selective properties, which make it possible to shorten the diagnostic time and increase the sensitivity in detecting the causative agents of animal dermatophytosis. The indicator component, which is part of the nutrient medium, makes it possible to detect the growth of dermatophytes already at the early stages of diagnosis, without resorting to subsequent microscopy of the culture, which, in turn, is necessary in classical diagnostics to confirm the belonging of cultures to dermatophytes.

Отличия между заявляемой средой и прототипом заключаются в составе, а именно в измененном пептоне для повышения ростовых свойств и ускорения самого роста, в добавлении дополнительного углевода, стимулирующего энергию роста, в наборе антибактериальных препаратов, необходимых для снижения вторичного роста бактериальных культур-контаминантов.The differences between the inventive medium and the prototype are in the composition, namely in the modified peptone to increase growth properties and accelerate the growth itself, in the addition of an additional carbohydrate that stimulates growth energy, in the set of antibacterial drugs necessary to reduce the secondary growth of bacterial cultures-contaminants.

На предложенной среде рост культуры Microsporum canis демонстрирует характерную для вида белую рыхло-пушистую колонию с умеренно развитым воздушным мицелием. Растущий край ровный, реснитчатый. Начало роста отмечается начиная с 3 суток, а изменение цвета начиная с 5 суток.On the proposed medium, the growth of the culture of Microsporum canis demonstrates a white loose-fluffy colony characteristic of the species with a moderately developed aerial mycelium. The growing margin is smooth, ciliate. The beginning of growth is noted starting from the 3rd day, and the color change starting from the 5th day.

Рост культуры Trichophyton mentagrophytes демонстрирует характерную для вида выпуклую пушистую колонию белого цвета с хорошо развитым воздушным мицелием. Растущий край ровный, реснитчатый. Начало роста на среде отмечается начиная со 2 суток, а изменение цвета начиная с 3 суток.The growth of the culture of Trichophyton mentagrophytes demonstrates the characteristic of the species, a convex, fluffy white colony with a well-developed aerial mycelium. The growing margin is smooth, ciliate. The beginning of growth on the medium is noted starting from 2 days, and the color change starting from 3 days.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Приведенные ниже примеры являются иллюстративными и тем самым не ограничивают рамки настоящего изобретения.The examples below are illustrative and thus do not limit the scope of the present invention.

Пример №1. При изучении влияния пептонов различного происхождения на скорость роста дерматофитов использовали классическую рецептуру среды Сабуро, в каждой опытной серии среды изменяли разновидность пептона. Так, в исследовании использовали 4 вида пептонов - казеиновый (Casein peptone pancreatic digested), соевый (Soyabean pepton), сухой ферментативный мясной (Dry fermentation pepton), мясной (Meat Pepton). Для изучения энергии роста на различных вариантах среды культуры штаммов дерматофитов высевались уколом в центр чашки. Полученные результаты отражены в таблице №1.Example # 1. When studying the effect of peptones of various origins on the growth rate of dermatophytes, we used the classical formulation of Sabouraud's medium; in each experimental series of the medium, the peptone variety was changed. So, in the study, 4 types of peptones were used - casein (Casein peptone pancreatic digested), soy (Soyabean pepton), dry fermentation pepton, and meat (Meat Pepton). To study the growth energy on different variants of the medium, cultures of dermatophyte strains were inoculated with an injection in the center of the dish. The results obtained are shown in Table 1.

Figure 00000002
Figure 00000002

При изучении ростовых свойств, учет роста проводили ежедневно, начиная со второго дня после посева. Измеряли диаметр колоний, интенсивность образования воздушного мицелия. Степень развития воздушного мицелия оценивали в баллах:When studying the growth properties, the growth was recorded daily, starting from the second day after sowing. The diameter of the colonies and the intensity of air mycelium formation were measured. The degree of development of aerial mycelium was evaluated in points:

1 - воздушный мицелий развит плохо, полупрозрачный, паутинистый1 - aerial mycelium is poorly developed, translucent, cobweb

2 - воздушный мицелий развит умеренно, бархатистый, порошистый2 - aerial mycelium is moderately developed, velvety, powdery

3 - воздушный мицелий развит хорошо, шерстистый, пушистый.3 - aerial mycelium is well developed, woolly, fluffy.

Как видно из полученных результатов, наилучшие ростовые качества для всех штаммов показала среда с добавлением мясного пептона. Также на данной среде хорошо формируется воздушный мицелий.As can be seen from the results obtained, the medium with the addition of meat peptone showed the best growth qualities for all strains. Also on this medium, aerial mycelium is well formed.

Пример №2. Изучение влияния углеводов на рост дерматофитов проходило аналогично опыту с пептонами, отраженному в примере №1. В опыте участвовало 14 различных углеводов, а именно: манноза, инозит, маннит, лактоза, арабиноза, адонит, сорбит, дульцит, ксилоза, рамноза, раффиноза, салицин, мальтоза, глюкоза. Наилучший рост дерматофитов наблюдался на среде с добавлением маннита. Так, на 7-ые сутки колония М canis #71-19 при росте на среде с добавлением маннита имела диаметр 32 мм, в то время как на средах с другими углеводами диаметр колоний достигал в среднем 29-30 м. Колония Trichophyton mentagrophytes #135 на среде с добавлением маннита имела диаметр 35 мм, на средах с другими углеводами диаметр в среднем был 32 мм.Example # 2. The study of the effect of carbohydrates on the growth of dermatophytes was similar to the experiment with peptones, reflected in example No. 1. The experiment involved 14 different carbohydrates, namely: mannose, inositol, mannitol, lactose, arabinose, adonit, sorbitol, dulcit, xylose, rhamnose, raffinose, salicin, maltose, glucose. The best growth of dermatophytes was observed on a medium supplemented with mannitol. So, on the 7th day, a colony of M canis # 71-19 growing on a medium supplemented with mannitol had a diameter of 32 mm, while on media with other carbohydrates, the diameter of the colonies reached an average of 29-30 m. Colony Trichophyton mentagrophytes # 135 on media supplemented with mannitol it had a diameter of 35 mm, on media with other carbohydrates the average diameter was 32 mm.

Пример №3. Оценка ингибирующих свойств предлагаемой среды, в отношении бактерий, проводили с использованием штаммов бактерий Pseudomonads aeruginosa, Escherichia coli, Staphylococcus epidermidis, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus pseudintermedius, Bacillus subtilis. Контролем служила среда Сабуро. Установлено, что на предлагаемой среде полностью ингибируются все изученные бактерии, кроме Pseudomonas aeruginosa - при посеве наблюдали слабовыраженный рост, не влияющий на диагностические свойства среды в отношении дерматофитов. На среде Сабуро отмечался аналогичный рост Ps. aeruginosa.Example No. 3. Evaluation of the inhibitory properties of the proposed environment in relation to bacteria was carried out using bacterial strains Pseudomonads aeruginosa, Escherichia coli, Staphylococcus epidermidis, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus pseudintermedius, Bacillus subtilis. Served as control medium Saburo. It was found that on the proposed medium, all studied bacteria are completely inhibited, except for Pseudomonas aeruginosa - during sowing, weak growth was observed, which did not affect the diagnostic properties of the medium in relation to dermatophytes. A similar increase in Ps was observed on Sabouraud's medium. aeruginosa.

Пример №4. Влияние количественного состава питательной среды на ее ростовые свойства.Example No. 4. Influence of the quantitative composition of the nutrient medium on its growth properties.

При изучении влияния количественного состава питательной среды на ее ростовые свойства, были произведены две серии питательной среды с минимальным и максимальным количеством компонентов, указанных в рецептуре. Таким образом, первая серия среды имела следующий состав: 9 г/л глюкозы, 9 г/л маннитола, 9 г/л мясного пептона, 0,18 г/л фенолового красного, 13,5 г/л агар-агара, 0,45 г/л циклогексимида, 0,09 г/л энрофлоксацина. Вторая серия среды включала в себя 11 г/л глюкозы, 11 г/л маннитола, 11 г/ мясного пептона, 0,22 г/л фенолового красного, 21,5 г/л агар-агара, 0,55 г/л циклогексимида, 0,11 г/л энрофлоксацина. При оценке ростовых свойств двух серий среды, достоверных отличий выявлено не было. Так, на обоих сериях среды рост культуры Microsporum canis демонстрировал характерную для вида белую рыхло-пушистую колонию с умеренно развитым воздушным мицелием. Растущий край ровный, реснитчатый. Начало роста отмечается с 3 суток, а изменение цвета начиная с 5 суток. Культура Trichophyton mentagrophytes демонстрировала, на обоих вариантах среды, характерную для вида выпуклую пушистую колонию белого цвета с хорошо развитым воздушным мицелием. Растущий край ровный, реснитчатый. Начало роста на среде отмечается со 2 суток, а изменение цвета возникает с 3 суток.When studying the influence of the quantitative composition of the nutrient medium on its growth properties, two batches of the nutrient medium were produced with the minimum and maximum amount of components specified in the recipe. Thus, the first batch of the medium had the following composition: 9 g / L glucose, 9 g / L mannitol, 9 g / L meat peptone, 0.18 g / L phenol red, 13.5 g / L agar-agar, 0, 45 g / L cycloheximide, 0.09 g / L enrofloxacin. The second batch of the medium included 11 g / L glucose, 11 g / L mannitol, 11 g / L meat peptone, 0.22 g / L phenol red, 21.5 g / L agar-agar, 0.55 g / L cycloheximide , 0.11 g / L enrofloxacin. When assessing the growth properties of the two series of the medium, no significant differences were found. Thus, in both series of the medium, the growth of the culture of Microsporum canis demonstrated a white loose-fluffy colony characteristic of the species with a moderately developed aerial mycelium. The growing margin is smooth, ciliate. The beginning of growth is noted from 3 days, and the color change from 5 days. The culture of Trichophyton mentagrophytes showed, on both medium options, a characteristic for the species a convex, fluffy white colony with a well-developed aerial mycelium. The growing margin is smooth, ciliate. The beginning of growth on the medium is noted from 2 days, and a color change occurs from 3 days.

Пример №5. Для сравнительной оценки специфичности и чувствительности предлагаемой среды, коммерческой среды ДТМ, и среды Сабуро, на них был произведен посев 40 образцов клинического материала. Методика посева не отличалась. Процент положительных выделений дерматофитов с использованием вновь предлагаемой среды составил 31,0%, для импортной среды 32,5%, а для агара Сабуро 22,5% соответственно. Видимый рост дерматофитов быстрее всего появился на среде Сабуро, и практически одновременно на опытной среде и DTM зарубежного производства с разницей 1-2 дня. Покраснение среды при росте дерматофитов на опытной и импортной среде наступало также практически одновременно - на 6-9 сут., и становилось ярко-выраженным на 10-11 сутки, но при этом на предлагаемой среде, рост фиксировался раньше, чем на известной среде DTM на 1-2 суток. Активный рост плесневых грибов-контаминантов, препятствующий росту дерматофитов, обнаружен в 27% посевов на среде Сабуро, с чем очевидно связана наименьшая частота выделения дерматофитов на данной среде. Плесневые грибы были представлены родами Aspergillus, Penicillium, Mucor, Alternaria, Cladosporium. На предлагаемой среде рост плесеней наблюдали лишь в 15% проб, в то время как на импортной DTM было контаминировано 23,5% посевов. Важно отметить, что на импортной среде DTM в 13,2% посевов наблюдали покраснение при росте плесневых грибов, т.е. получали ложноположительный результат, который ведет к диагностическим ошибкам в условиях реальной практики. На разрабатываемой среде ДТМ ложного покраснения, вызванного плесневыми грибами, не наблюдали.Example No. 5. For a comparative assessment of the specificity and sensitivity of the proposed medium, the commercial DTM medium, and the Sabouraud medium, 40 samples of clinical material were inoculated on them. The seeding technique did not differ. The percentage of positive discharge of dermatophytes using the newly proposed medium was 31.0%, for the imported medium 32.5%, and for Sabouraud agar 22.5%, respectively. The visible growth of dermatophytes appeared most quickly on the Sabouraud medium, and almost simultaneously on the experimental medium and DTM of foreign production with a difference of 1-2 days. The reddening of the medium during the growth of dermatophytes on the experimental and imported media also occurred almost simultaneously - on 6-9 days, and became pronounced on the 10-11 days, but at the same time, on the proposed medium, the growth was recorded earlier than on the well-known DTM medium on 1-2 days. Active growth of contaminant molds, which prevents the growth of dermatophytes, was found in 27% of crops on Sabouraud's medium, which is obviously associated with the lowest frequency of isolation of dermatophytes on this medium. Molds were represented by the genera Aspergillus, Penicillium, Mucor, Alternaria, Cladosporium. On the proposed environment, mold growth was observed in only 15% of the samples, while 23.5% of the crops were contaminated with the imported DTM. It is important to note that on the imported DTM medium, reddening was observed in 13.2% of the crops during the growth of molds, i.e. received a false positive result, which leads to diagnostic errors in real practice. On the developed DTM medium, false redness caused by molds was not observed.

Figure 00000003
Figure 00000003

Claims (2)

Селективная питательная среда для выделения возбудителей дерматофитозов, включающая глюкозу, агар-агар, белковый компонент, циклогексимид и дополнительные антибактериальные компоненты среды, феноловый красный, отличающаяся тем, что дополнительно содержит маннитол, в качестве белкового компонента мясной пептон, а в качестве дополнительного антибактериального компонента среды - энрофлоксацин при следующем содержании компонентов:Selective nutrient medium for isolation of pathogens of dermatophytosis, including glucose, agar-agar, protein component, cycloheximide and additional antibacterial components of the medium, phenol red, characterized in that it additionally contains mannitol, meat peptone as a protein component, and as an additional antibacterial component of the medium - enrofloxacin with the following content of components: глюкозаglucose 10±1,0 г 10 ± 1.0 g манниолmanniol 10±1,0 г 10 ± 1.0 g мясной пептонmeat peptone 10±1,0 г 10 ± 1.0 g феноловый красныйphenol red 0,2±0,02 г 0.2 ± 0.02 g агар-агарagar-agar 20,0±1,5 г 20.0 ± 1.5 g циклогексамидcyclohexamide 0,5±0,05 г 0.5 ± 0.05 g энрофлоксацинenrofloxacin 0,1±0,01 г 0.1 ± 0.01 g вода дистиллированнаяdistilled water 49,8-954,8 мл 49.8-954.8 ml
RU2020118090A 2020-04-09 2020-04-09 Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes RU2745159C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020118090A RU2745159C1 (en) 2020-04-09 2020-04-09 Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020118090A RU2745159C1 (en) 2020-04-09 2020-04-09 Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2745159C1 true RU2745159C1 (en) 2021-03-22

Family

ID=75159081

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020118090A RU2745159C1 (en) 2020-04-09 2020-04-09 Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2745159C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2275631C1 (en) * 2004-10-14 2006-04-27 Институт биологии Уфимского научного центра Российской Академии Наук (ИБ УНЦ РАН) Method for diagnosis of dermatomycosis and nutrient medium for dermatophytes

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2275631C1 (en) * 2004-10-14 2006-04-27 Институт биологии Уфимского научного центра Российской Академии Наук (ИБ УНЦ РАН) Method for diagnosis of dermatomycosis and nutrient medium for dermatophytes

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
RAFAL OGOREK et.al., First report on the occurrence of Dermatophytes of Microsporum Cookei cladi e and close affinities to Paraphyton Cookei in the Harmanecka cave (Velka fatra Mts., Slovakia), Diversitym 2019, 11, 191, p.1-13. *
TH. NABAKUMAR SINGH, et.al., Recognition of dermatophytes by dermatophyte test medium, International journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 2016, v.5, N 10, p. 1125-1129. *
TH. NABAKUMAR SINGH, et.al., Recognition of dermatophytes by dermatophyte test medium, International journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 2016, v.5, N 10, p. 1125-1129. RAFAL OGOREK et.al., First report on the occurrence of Dermatophytes of Microsporum Cookei cladi e and close affinities to Paraphyton Cookei in the Harmanecka cave (Velka fatra Mts., Slovakia), Diversitym 2019, 11, 191, p.1-13. *
Методические указания по лабораторной диагностике дерматофитозов животных, М., 2008, с.14. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7588909B2 (en) Method for detecting Streptococcus agalactiae using α-glucosidase activity
CN113491692A (en) Application of C-JUN N-terminal kinase inhibitor SU3327
CN114214238B (en) Multi-drug-resistant Indiananas and application thereof
Lim et al. Biochemical characteristics, virulence traits and antifungal resistance of two major yeast species isolated from kefir: Kluyveromyces marxianus and Saccharomyces unisporus
Salehi et al. Endocarditis with Aeromonas salmonicida
CN101970682A (en) Method for detecting and/or identifying clostridium difficile
RU2745159C1 (en) Selective nutritional medium for isolation of dermatophytosi causes
CN106868094A (en) The method for quick of antibiotic residue in a kind of raw milk
CN107743519A (en) For separate include can not cultivating in conventional medium as mycoplasma species clinical sample culture medium
Majhi et al. Isolation and identification of Riemerella anatipestifer from Duck in Odisha, and its susceptibility to antibiotics and therapeutic management
Al-Rawi et al. Characterisation of yeasts implicated in vulvovaginal candidosis in Irish women
RU2791911C1 (en) Method for identifying yeast-like fungus candida auris
RU2791966C1 (en) Identification of yeast-like fungus candida auris
RU2788607C1 (en) Method for obtaining a nutrient medium for the selective detection of candida auris
CN112353820B (en) Application of novel ST-type CRPA strain
CN116024146B (en) Bacillus subtilis with high antibacterial activity and fermentation condition optimization thereof
RU2824882C1 (en) Nutrient medium for accumulation of parahaemolyticus vibrios during kanagawa test
CN114250181B (en) Indiananas with five quinolone drug resistance mutation sites and application thereof
RU2704854C1 (en) Differential electrically nutrient medium for releasing klebsiella
Zaman et al. Prevalence and virulence factors of vaginal candidiasis among females collected in tertiary care hospital, Khyber Pakhtunkhwa
RU2266956C2 (en) Broth for brucelle isolation
Lima et al. Phenotypic Characteristics of Yeasts of the Genus Candida and Cryptococcus in Differential Culture Media
RU2103368C1 (en) Nutrient medium for isolation and culturing meningococci (meningoagar)
RU2569150C1 (en) MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER
SU1604846A1 (en) Strain of streptococcus faecium bacteria used as standard for assessing activity of microbes - antagonists of meningococcus