RU2500812C1 - Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase - Google Patents

Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase Download PDF

Info

Publication number
RU2500812C1
RU2500812C1 RU2012143356/10A RU2012143356A RU2500812C1 RU 2500812 C1 RU2500812 C1 RU 2500812C1 RU 2012143356/10 A RU2012143356/10 A RU 2012143356/10A RU 2012143356 A RU2012143356 A RU 2012143356A RU 2500812 C1 RU2500812 C1 RU 2500812C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lipase
strain
bacillus licheniformis
producer
activity
Prior art date
Application number
RU2012143356/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Сергей Павлович Синеокий
Лариса Николаевна Борщевская
Татьяна Ивановна Соболевская
Анна Николаевна Калинина
Елена Викторовна Патрушева
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика")
Priority to RU2012143356/10A priority Critical patent/RU2500812C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2500812C1 publication Critical patent/RU2500812C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnologies.
SUBSTANCE: invention represents Bacillus licheniformis bacteria strain All-Russian collection of industrial microorganisms B-11302 - producer of heat-resistant lipase. At fermentation of the obtained strain in 3 l of a laboratory fermenter the ferment activity in culture liquid reaches the level of 500 U/ml.
EFFECT: invention allows obtaining heat-resistant lipase with high efficiency degree.
3 dwg, 5 ex

Description

Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии и касается штамма Bacillus lichensformis - продуцента фермента термостабильной липазы.The invention relates to microbiology and biotechnology and relates to a strain of Bacillus lichensformis, a producer of thermostable lipase enzyme.

Липазы - ферменты, осуществляющие гидролиз триацилглицеридов с образованием жирных кислот и глицерина, находят применение в пищевой промышленности, бытовой химии, косметике и многих других областях. При этом большинство промышленных процессов, в которых используются липазы, проводят при температурах, превышающих 45°С, следовательно, особый интерес вызывают термостабильные липазы. Кроме того, так как липазы, наряду с протеазами и целлюлазами, входят в состав экологичных моющих средств, для них важна способность к работе в щелочной области pH.Lipases - enzymes that hydrolyze triacylglycerides with the formation of fatty acids and glycerol, are used in the food industry, household chemicals, cosmetics and many other fields. Moreover, most industrial processes in which lipases are used are carried out at temperatures exceeding 45 ° C; therefore, thermostable lipases are of particular interest. In addition, since lipases, along with proteases and cellulases, are part of environmentally friendly detergents, the ability to work in the alkaline pH region is important for them.

Высокотермостабильные липазы, температурный оптимум которых превышает 70°C и достигает 95°C и найдены у экстремально термофильных анаэробных бактерий Thermosyntropha lipolytica [Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology. - 2009. - V.36. - N.10. - P.1281-71], Caldanaerobacter subterraneus, Thermounuerobacler thermohydrosulfwicus [Extremophiles. - 2009. - V.13. - N.5. - P.769-83]. Fervidobacterium changbaicum [Appi Microbiol Biotechnol. - 2011. - V.89. - N.5. - P.1463-73]. Однако, существенным недостатком охарактеризованных ферментов, является их низкая удельная активность - менее 60 ед./мг белка.Highly thermally stable lipases, the optimum temperature of which exceeds 70 ° C and reaches 95 ° C and was found in the extremely thermophilic anaerobic bacteria Thermosyntropha lipolytica [Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology. - 2009. - V.36. - N.10. - P.1281-71], Caldanaerobacter subterraneus, Thermounuerobacler thermohydrosulfwicus [Extremophiles. - 2009. - V.13. - N.5. - P.769-83]. Fervidobacterium changbaicum [Appi Microbiol Biotechnol. - 2011. - V.89. - N.5. - P.1463-73]. However, a significant drawback of the characterized enzymes is their low specific activity - less than 60 units / mg protein.

Термофильные липазы, оптимум активности которых лежит в диапазоне температур 55-70°C и pH 8-10 выделены из умеренно термофильных аэробных бактерий родов Bacillus [Molecular and Cellular Biochemistry. - 2006. - V.290. - N.1-2. - P.17-22, Protein Expr Purif. - 2009. - V.68. - N.2. - P.161-6] и Geobacillus (ранее классифицируемые как Bacillus): [Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. - 2003. - V.22. - N.5-6. - P.307-13, Methods in Enzymology. - 1997. - V.284. - P.194-220. Molecular Biotechnology. - 2008. - V.42. - N.1. - P.75-83].Thermophilic lipases, the optimum activity of which lies in the temperature range 55-70 ° C and pH 8-10, are isolated from moderately thermophilic aerobic bacteria of the genus Bacillus [Molecular and Cellular Biochemistry. - 2006. - V.290. - N.1-2. - P.17-22, Protein Expr Purif. - 2009. - V.68. - N.2. - P.161-6] and Geobacillus (previously classified as Bacillus): [Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. - 2003. - V.22. - N.5-6. - P.307-13, Methods in Enzymology. - 1997. - V.284. - P.194-220. Molecular Biotechnology. - 2008. - V.42. - N.1. - P.75-83].

Из описанных в литературе термостабильных липаз наибольшей удельной активностью обладает липаза BTL2 из штамма Geobacillus thermocalenulatus DSM 730, температурный оптимум специфической активности которой лежит в диапазоне 60-75°С, Липаза отличается высокой стабильностью в присутствии детергентов (кроме SDS) и органических растворителей (метанол, ацетон, изопропанол). Удельная активность очищенного фермента составляет 55000 единиц/мг белка. Однако, продукция липазы природным штаммом очень мала, в связи с чем для получения ферменты целесообразно использовать рекомбинантные продуцентыOf the thermostable lipases described in the literature, BTL2 lipase from the strain Geobacillus thermocalenulatus DSM 730 has the highest specific activity, the temperature optimum of its specific activity lies in the range 60-75 ° C. Lipase is highly stable in the presence of detergents (except SDS) and organic solvents (methanol, acetone, isopropanol). The specific activity of the purified enzyme is 55,000 units / mg protein. However, the production of lipase by the natural strain is very small, and therefore it is advisable to use recombinant producers to obtain enzymes

Экспрессия гена липазы в клетках E.coli под контролем сильного температуроиндуцибельного промотора λPL. приводит к тому, что большая часть фермента транспортируется в периплазму [Journal of Biotechnology. - 1997. - V.56. - P.89-102]. Активность фермента достигает 590 единиц/мл по трибутирину. Однако для получения фермента требуется стадия разрушения клеток, что приводит к удорожанию стоимости конечного продукта.Expression of the lipase gene in E. coli cells under the control of the strong temperature-inducible λP L promoter. leads to the fact that most of the enzyme is transported to the periplasm [Journal of Biotechnology. - 1997 .-- V.56. - P.89-102]. The enzyme activity reaches 590 units / ml in tributyrin. However, to obtain the enzyme, a stage of cell destruction is required, which leads to an increase in the cost of the final product.

Экспрессия гена термостабильной липазы в P.pastoris приводит к секреции активного фермента в культуральную жидкость (до 309 ед/мл) [Protein Expression and Purification. - 2003. - V.28. - N.1. - P.102-1]. Однако при этом удельная активность фермента по трибутирату составляет 23000 единиц/мг (против 55000 единиц/мл у нативного фермента), а культивирование этого продуцента требует присутствия метанола в качестве индуктора и дорогих сред, что делает его использование не выгодным.Expression of the thermostable lipase gene in P. pastoris results in secretion of the active enzyme into the culture fluid (up to 309 units / ml) [Protein Expression and Purification. - 2003. - V.28. - N.1. - P.102-1]. However, the specific activity of the enzyme for tributyrate is 23,000 units / mg (versus 55,000 units / ml for the native enzyme), and the cultivation of this producer requires the presence of methanol as an inducer and expensive media, which makes its use unprofitable.

Интерес к созданию высокоэффективных продуцентов липазы на основе Bacillus licheniformis связан с достаточно хорошей генетической изученностью этого объекта и тем, что данный вид бактерий удобен для промышленной ферментации. В. licheniformis привлекает внимание биотехнологов и генетиков также своей термотолерантностью, открывающей возможность культивирования при повышенных температурах (до 60°C), что препятствует контаминации культуры в производственном ферментере.Interest in the creation of highly effective lipase producers based on Bacillus licheniformis is associated with a fairly good genetic study of this object and the fact that this type of bacteria is convenient for industrial fermentation. B. licheniformis also attracts the attention of biotechnologists and geneticists with its thermal tolerance, which opens up the possibility of cultivation at elevated temperatures (up to 60 ° C), which prevents the contamination of the culture in a production fermenter.

Кроме того, работа со штаммами В. licheniformis не требует специальных мер предосторожности, так как данный вид бактерий относится к микроорганизмам, непатогенным для человека.In addition, work with B. licheniformis strains does not require special precautions, since this type of bacteria belongs to microorganisms that are not pathogenic for humans.

Технической задачей заявляемого изобретения является расширение арсенала рекомбинантных микроорганизмов, продуцирующих термостабильную липазу.The technical task of the invention is the expansion of the arsenal of recombinant microorganisms that produce thermostable lipase.

Задача решена путем конструирования рекомбинантного штамма бактерий Bacillus lichemformis ВКПМ В-11302 - продуцента термостабильной липазы.The problem was solved by constructing a recombinant strain of bacteria Bacillus lichemformis VKPM B-11302, a producer of thermostable lipase.

Рекомбинантный штамм Bacillus lichemformis ВКПМ В-11302 получен из штамма Bacillus lichemformis 28KA (ВКПМ В-3039) посредством трансформации последнего экспрессионной репликативной плазмидой, полученной на основе вектора pHY300PLK (J. Bacteriol (1983), 153, 813-821), названной p-bt1 и содержащей ген btl2, кодирующий термостабильную липазу BTL2 из штамма Geohacillus thermocatenulatus DSM 730.The recombinant Bacillus lichemformis strain VKPM B-11302 was obtained from the Bacillus lichemformis 28KA strain (VKPM B-3039) by transforming the latter with an expression replicative plasmid derived from the pHY300PLK vector (J. Bacteriol (1983), 153, 813-821), named p- bt1 and containing the btl2 gene encoding thermostable BTL2 lipase from the Geohacillus thermocatenulatus DSM 730 strain.

Заявляемый штамм Bacillus lichemformis депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) по адресу 117545 Москва, 1-ый Дорожный проезд, д.1 и имеет регистрационный номер ВКПМ В-11302.The inventive strain of Bacillus lichemformis is deposited in the All-Russian collection of industrial microorganisms (VKPM) at 117545 Moscow, 1st Dorozhniy proezd, 1 and has a registration number VKPM B-11302.

Штамм Bacillus lichemformis ВКПМ В-11302 характеризуется следующими признаками:The strain of Bacillus lichemformis VKPM B-11302 is characterized by the following features:

Культурально-морфологические признаки.Cultural and morphological characters.

Грамм-положительная спорообразующая палочковидная бактерия. Суточная культура в жидкой LB среде (мас.%: дрожжевой экстракт - 0,5, пептон - 1, NaCl - 1, вода - остальное) представлена подвижными цепочками из 2-3-х клеток палочковидными клетками размером 0,6-0,8 и 0,2-0,3 мкм. К третьим суткам цепочки распадаются и образуются овальные споры, не превышающие размер клетки, расположенные центрально. При росте на агаризованной LB среде образует колонии неправильной формы, слизистые, гладкие, непрозрачные, 2-5 мм в диаметре.Gram-positive spore-forming rod-shaped bacterium. The daily culture in liquid LB medium (wt.%: Yeast extract - 0.5, peptone - 1, NaCl - 1, water - the rest) is represented by moving chains of 2-3 cells with rod-shaped cells 0.6-0.8 in size and 0.2-0.3 microns. By the third day, the chains break up and oval spores form, not exceeding the size of the cell, located centrally. When growing on an agarized LB medium, it forms colonies of irregular shape, mucous, smooth, opaque, 2-5 mm in diameter.

Физиолого-биохимические признаки. Облигатный аэроб. Сахара не сбраживает. Ассимилирует: сахарозу, D-глюкозу, L-арабинозу, D-ксилозу. D-маннитол. Гидролизует казеин и крахмал. Отличается пониженной протеолитической активностью и способностью к восстановлению нитрата.Physiological and biochemical characteristics. Obligate aerob. Sugar does not ferment. Assimilates: sucrose, D-glucose, L-arabinose, D-xylose. D-mannitol. Hydrolyzes casein and starch. It is characterized by reduced proteolytic activity and the ability to reduce nitrate.

Оптимальное значение pH для роста 5,5-8,0. Способен к расту при 55°C. Оптимальная температура роста 30-40°C.The optimal pH for growth is 5.5-8.0. Capable of growing at 55 ° C. The optimum growth temperature is 30-40 ° C.

Заявляемый штамм при выращивании в колбах на среде LB. способен продуцировать термостабильную липазу с активностью до 250 ЕД/мл культуральной жидкости, при выращивании в лабораторном ферментере - с активностью до 500 ЕД/мл культуральной жидкостиThe inventive strain when grown in flasks on LB medium. able to produce thermostable lipase with activity up to 250 PIECES / ml of culture fluid, when grown in a laboratory fermenter - with activity up to 500 PIECES / ml of culture fluid

Изобретение проиллюстрировано следующими фигурами графического изображения:The invention is illustrated by the following figures of a graphic image:

Фиг.1 Электрофореграмма ПЦР-анализа исследуемых штаммов с помощью проверочных праймеров.Figure 1 Electrophoregram of PCR analysis of the studied strains using test primers.

Фиг.2 График зависимости активности рекомбинантной и нативной термостабильной липазы от температурыFigure 2 Graph of the activity of recombinant and native thermostable lipase on temperature

Фиг.3 График зависимости активности рекомбинантной и нативной термостабильной липазы от pH инкубационной средыFigure 3 A graph of the activity of recombinant and native thermostable lipase on the pH of the incubation medium

Получение и культивирование штамма Bacillus licheniformis ВКПМ В-11302 подтверждено следующими примерами.Obtaining and culturing a strain of Bacillus licheniformis VKPM B-11302 is confirmed by the following examples.

Пример 1. Получение штамма Bacillus licheniformis ВКПМ В-11302. Трансформацию Bacillus licheniformis осуществляют методом введения молекул ДНК в бактериальные протопласты под воздействием осмотического давления раствора полиэтиленгликоля (ПЭГ).(Harwood, С.R. & Cutting, S.М. (1990). Molecular Biological Methods for Bacillus. New York: Wiley.)Example 1. Obtaining a strain of Bacillus licheniformis VKPM B-11302. Bacillus licheniformis is transformed by introducing DNA molecules into bacterial protoplasts under the osmotic pressure of a polyethylene glycol (PEG) solution (Harwood, C. R. & Cutting, S. M. (1990). Molecular Biological Methods for Bacillus. New York: Wiley. )

Для приготовления компетентных клеток используют штамм Bacillus licheniformis 28KA ВКПМ В- 3039. В качестве ДНК используют 1 мкг ДНК плазмиды p-bt1 Селекцию трансформантов ведут на агаризованной питательной среде LB с добавлением антибиотика эритромицина.For the preparation of competent cells, the Bacillus licheniformis 28KA VKPM B-3039 strain is used. 1 μg of p-bt1 plasmid DNA is used as DNA. Transformants are selected on LB agar medium supplemented with the erythromycin antibiotic.

Наличие целевого рекомбинантного гена в составе плазмид трансформантов подтверждают методом ПЦР-анализа.The presence of the target recombinant gene in the plasmid transformants is confirmed by PCR analysis.

Из бактериальныех клонов, полученных в результате генетической трансформации, стандартными методами выделяют плазмидную ДНК, используемую в качестве матрицы для проведения полимеразной цепной реакции с использованием специфических проверочных праймеров.From bacterial clones obtained as a result of genetic transformation, plasmid DNA is used as standard for polymerase chain reaction using specific test primers using standard methods.

Последовательность проверочных праймеров:The sequence of the test primers:

bt1-f AAACATATGATGAAAGGCTGCCGGGTGATGGTTbt1-f AAACATATGATGAAAGGCTGCCGGGTGATGGTT

bt1-r AAATCGCGAATACAACTCAGGTGCTTGCTbt1-r AAATCGCGAATACAACTCAGGTGCTTGCT

Режим реакции ПЦР:PCR reaction mode:

95°С - 3 мин. - 1 цикл95 ° C - 3 min. - 1 cycle

35 циклов:35 cycles:

95°С - 30 сек.95 ° C - 30 sec.

60°С - 30 сек.60 ° С - 30 sec.

72°С - 60 сек.72 ° C - 60 sec.

72°С - 5 мин - 1 цикл.72 ° C - 5 min - 1 cycle.

Для контроля величины фрагментов ДНК при электрофорезе используют молекулярный маркер O'GeneRuler 100 bp DNA Ladder (фиг.1 линия 1 размер фрагментов 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900, 1000, 1200, 1700, 2000. 3000 п.н, сверху вниз)To control the magnitude of DNA fragments during electrophoresis, the molecular marker O'GeneRuler 100 bp DNA Ladder is used (Fig. 1 line 1, fragment size 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900, 1000, 1200, 1700, 2000 . 3000 bp, from top to bottom)

Наработка фрагментов размером 420 п.н. при использовании проверочных праймеров bt1-f и bt1-r подтверждает присутствие целевого рекомбинантного гена btl в составе плазмид полученных клонов Bacillus Ucheniformis 28KA/ p-bt1 (фиг.1, линии 2 и 3)The accumulation of fragments of 420 bp using the test primers bt1-f and bt1-r confirms the presence of the target recombinant btl gene in the plasmids of the obtained Bacillus Ucheniformis 28KA / p-bt1 clones (Fig. 1, lines 2 and 3)

Трансформаные клоны культивируют в жидкой среде в пробирках. Ферментацию проводят при 37°С на качалке (250 об/мин) в питательнй среде LB в пробирках (50 мл) с рабочим объемом 10 мл. Посев осуществляют бактериологической петлей.Transformed clones are cultured in a liquid medium in test tubes. Fermentation is carried out at 37 ° C on a shaker (250 rpm) in a nutrient medium LB in test tubes (50 ml) with a working volume of 10 ml. Sowing is carried out by a bacteriological loop.

Ферментацию продолжают в течение 24 часов. Специфическую активность термостабильной липазы определяют спектрофотометрическим методом по гидролизу хромогенного субстрата пира-нитрофенилбутирата (FEMS Yeast Res - 2002 - N.2 - Р.371-379).Fermentation is continued for 24 hours. The specific activity of thermostable lipase is determined spectrophotometrically by hydrolysis of the chromogenic substrate of pyra-nitrophenyl butyrate (FEMS Yeast Res - 2002 - N.2 - P.371-379).

Липолитическая активность характеризует способность фермента катализировать расщепление субстрата иара-нитрофенилбутирата до иорд-нитрофенола и бутановой кислоты.Lipolytic activity characterizes the ability of the enzyme to catalyze the cleavage of the substrate iara-nitrophenyl butyrate to Jord-nitrophenol and butanoic acid.

За единицу липолитической активности принимают такое количество фермента, которое за 1 мин гидролизует 1 мкМоль субстрата с выделением эквимолярного количества нитрофенола и жирных кислотFor a unit of lipolytic activity, take such an amount of enzyme that in 1 min hydrolyzes 1 μmol of substrate with the release of an equimolar amount of nitrophenol and fatty acids

По результатам ферментации отбирают заявляемый штамм Bacillus licheniformis ВКПМ В-11302, который при культивировании в среде LB. позволяет получать термостабильную липазу с активностью 240 ЕД/мл культуральной жидкости.According to the fermentation results, the claimed strain of Bacillus licheniformis VKPM B-11302 is selected, which, when cultured in LB medium. allows you to get a thermostable lipase with an activity of 240 IU / ml of culture fluid.

Пример 2. Культивирование штамма Bacillus licheniformis ВКПМ B-l 1302 в лабораторных условиях.Example 2. Cultivation of a strain of Bacillus licheniformis VKPM B-l 1302 in laboratory conditions.

Культуру Bacillus licheniformis ВКПМ В-11302. наращивают в 5 мл среды LB в течение 20 часов при 37°C с аэрацией на качалке (250 об/мин)The culture of Bacillus licheniformis VKPM B-11302. grow in 5 ml of LB medium for 20 hours at 37 ° C with aeration on a rocking chair (250 rpm)

Инокулят переносят в колбу объемом 750 мл с 45 мл свежей среды LB и растят при 37°C в течении 24 часов с аэрацией на качалке (250 об/мин).The inoculum is transferred to a 750 ml flask with 45 ml of fresh LB medium and grown at 37 ° C for 24 hours with aeration on a shaker (250 rpm).

Через 5, 10, 15, 20 и 24 часа культивирования отбирают пробы растущей бактериальной культуры, осаждают клетки методом центрифугирования и культуральную жидкость используют для проведения анализа специфической липазной активности.After 5, 10, 15, 20, and 24 hours of cultivation, samples of a growing bacterial culture are taken, cells are precipitated by centrifugation, and the culture fluid is used to analyze specific lipase activity.

При ферментации в колбах в питательной среде штамм Bacillus licheniformis ВКПМ B-11302 синтезирует термостабильную липазу обладающую активностью 240 ЕД/мл культуральной жидкости.When fermented in flasks in a nutrient medium, the Bacillus licheniformis strain VKPM B-11302 synthesizes a thermostable lipase with an activity of 240 U / ml of culture fluid.

Пример 3. Культивирование штамма Bacillus licheniformis ВКПМ B-11302 в 3 л лабораторном ферментере.Example 3. Cultivation of a strain of Bacillus licheniformis VKPM B-11302 in a 3 L laboratory fermenter.

Для получения посевного материала в пробирках культуру Bacillus licheniformis ВКПМ B-11302. наращивают в 5 мл среды LB в течение примерно 20 часов при 37°C с аэрацией (250 об/мин). Затем культуру из пробирки переносят в колбу с 50 мл среды LB. Культивируют в шейкере-инкубаторе (250 об/мин) при 37°С в течение 24 часов.To obtain seed in vitro culture of Bacillus licheniformis VKPM B-11302. grow in 5 ml of LB medium for about 20 hours at 37 ° C with aeration (250 rpm). Then the culture from the tube is transferred into a flask with 50 ml of LB medium. Cultivated in a shaker-incubator (250 rpm) at 37 ° C for 24 hours.

Полученный посевной материал переносят в 3 л ферментер и растят 48 часов в 1 литре LB среды.The resulting seed was transferred to a 3 L fermenter and grown 48 hours in 1 liter of LB medium.

Через 12, 24, 36 и 48 часов культивирования отбирают пробы растущей бактериальной культуры, осаждают клетки методом центрифугирования и культуральную жизкость используют для проведения анализа специфической липазной активности.After 12, 24, 36, and 48 hours of cultivation, samples of a growing bacterial culture were taken, cells were precipitated by centrifugation, and the culture viability was used to analyze specific lipase activity.

При ферментации в 3 л лабораторном ферментере штамм ВКПМ B-11302 синтезирует термостабильную липазу с активностью 500 ЕД/мл культуральной жидкости.When fermented in a 3 L laboratory fermenter, VKPM strain B-11302 synthesizes a thermostable lipase with an activity of 500 U / ml of culture fluid.

Пример 4. Исследование температурного оптимума рекомбинантной термостабильной липазы.Example 4. The study of the temperature optimum of recombinant thermostable lipase.

Для определения температурного оптимума рекомбинантной термостабильной липазы измеряют специфическую активности фермента при разных значениях температур по гидролизу пара-нитрофенилбутирата. Полученные результаты приведены на фиг.2 (кривая 2) в сравнении с аналогичными значениями нативной термостабильной липазы BTL2 из Geobacillus thermocatenulatus DSM 730 (кривая 1).To determine the temperature optimum of a recombinant thermostable lipase, the specific enzyme activity is measured at different temperatures by the hydrolysis of para-nitrophenyl butyrate. The results are shown in figure 2 (curve 2) in comparison with the similar values of the native thermostable lipase BTL2 from Geobacillus thermocatenulatus DSM 730 (curve 1).

Показано, что температурный оптимум действия рекомбинантной термостабильной липазы находится в диапазоне 45-60°С, в то время как температурный оптимум нативной термостабильной липазы лежит в диапазоне 65-72°С.It was shown that the temperature optimum of the action of the recombinant thermostable lipase is in the range of 45-60 ° C, while the temperature optimum of the native thermostable lipase lies in the range of 65-72 ° C.

Пример 5. Исследование оптимума pH рекомбинантной термостабильной липазы.Example 5. The study of the optimum pH of recombinant thermostable lipase.

Активность термостабильной липазы измеряют при разных значениях pH инкубационной среды по гидролизу пара-нитрофенилбутирата. Полученные данные приведенные на фиг.3 (кривая 2) в сравнении с аналогичными значениями нативной термостабильной липазы BTL2 из Geobacillus thermocatenulatus DSM 730 (кривая 1). показывают, что оптимум действия pH рекомбинантной термостабильной липазы находится в диапазоне pH от 7,5 до 8,5 и практически совпадает с оптимумом рН нативной термостабильной липазы.The activity of thermostable lipase is measured at different pH values of the incubation medium by the hydrolysis of para-nitrophenyl butyrate. The data obtained are shown in figure 3 (curve 2) in comparison with the similar values of the native thermostable lipase BTL2 from Geobacillus thermocatenulatus DSM 730 (curve 1). show that the optimum pH of the recombinant thermostable lipase is in the pH range from 7.5 to 8.5 and almost coincides with the optimum pH of the native thermostable lipase.

Таким образом, заявляемый штамм Bacillus lichemformis ВКПМ В-1130 продуцирует термостабильную липазу обладающую активностью до 500 ед/мл культуральной жидкости, при этом полученный фермент сохраняет промышленно ценные свойства нативного фермента.Thus, the inventive strain of Bacillus lichemformis VKPM B-1130 produces a thermostable lipase with activity up to 500 u / ml of culture fluid, while the resulting enzyme retains the industrially valuable properties of the native enzyme.

Claims (1)

Рекомбинантный штамм Bacillus licheniformis ВКПМ В-11302 - продуцент термостабильной липазы. The recombinant strain of Bacillus licheniformis VKPM B-11302 is a producer of thermostable lipase.
RU2012143356/10A 2012-10-10 2012-10-10 Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase RU2500812C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012143356/10A RU2500812C1 (en) 2012-10-10 2012-10-10 Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012143356/10A RU2500812C1 (en) 2012-10-10 2012-10-10 Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2500812C1 true RU2500812C1 (en) 2013-12-10

Family

ID=49711070

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012143356/10A RU2500812C1 (en) 2012-10-10 2012-10-10 Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2500812C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112375699A (en) * 2020-11-10 2021-02-19 南昌大学 Bacillus licheniformis for expressing lipase and fermentation enzyme production method thereof
RU2808501C1 (en) * 2023-02-15 2023-11-28 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Алтайский государственный университет" RECOMBINANT PLASMID pBU-LipA, PROVIDING SYNTHESIS OF LIPASE A PROTEIN FROM BACILLUS NATTO STRAIN IAN

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2148645C1 (en) * 1997-03-12 2000-05-10 Институт цитологии и генетики СО РАН Strain of bacterium serratia marcescens - producer of lipase
RU2298032C2 (en) * 2005-04-19 2007-04-27 Государственное учреждение Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова Российской академии медицинских наук (ГУ НИИВС им. И.И. Мечникова РАМН) Bacillus subtilis 1719 BACTERIUM STRAIN AS PRODUCER OF ANTAGONISTICALLY ACTIVE BIOMASS IN RELATES TO PATHOGENIC MICROORGANISMS, AS WELL AS PROTEOLYTIC, AMYLOLYTIC, AND LIPOLYTIC ENZYMES

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2148645C1 (en) * 1997-03-12 2000-05-10 Институт цитологии и генетики СО РАН Strain of bacterium serratia marcescens - producer of lipase
RU2298032C2 (en) * 2005-04-19 2007-04-27 Государственное учреждение Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова Российской академии медицинских наук (ГУ НИИВС им. И.И. Мечникова РАМН) Bacillus subtilis 1719 BACTERIUM STRAIN AS PRODUCER OF ANTAGONISTICALLY ACTIVE BIOMASS IN RELATES TO PATHOGENIC MICROORGANISMS, AS WELL AS PROTEOLYTIC, AMYLOLYTIC, AND LIPOLYTIC ENZYMES

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
QUYEN DT. High-level expression of a lipase from Bacillus thermocatenulatus BTL2 in Pichia pastoris and some properties of the recombinant lipase, Protein Expr Purif. 2003 Mar; 28(1):102-10. RUA ML Thermoalkalophilic lipase of Bacillus thermocatenulatus large-scale production, purification and properties: aggregation behaviour and its effect on activity. J Biotechnol. 1997 Aug 11; 56(2):89-102. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112375699A (en) * 2020-11-10 2021-02-19 南昌大学 Bacillus licheniformis for expressing lipase and fermentation enzyme production method thereof
CN112375699B (en) * 2020-11-10 2022-09-16 南昌大学 Bacillus licheniformis for expressing lipase and fermentation enzyme production method thereof
RU2808501C1 (en) * 2023-02-15 2023-11-28 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Алтайский государственный университет" RECOMBINANT PLASMID pBU-LipA, PROVIDING SYNTHESIS OF LIPASE A PROTEIN FROM BACILLUS NATTO STRAIN IAN

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ghani et al. Isolation and characterization of different strains of Bacillus licheniformis for the production of commercially significant enzymes
Kristjansson Thermophilic organisms as sources of thermostable enzymes
Joseph et al. Studies on the enhanced production of extracellular lipase by Staphylococcus epidermidis
Abdel-Fattah et al. Identification and over-expression of a thermostable lipase from Geobacillus thermoleovorans Toshki in Escherichia coli
Fulzele et al. Characterization of novel extracellular protease produced by marine bacterial isolate from the Indian Ocean
Liu et al. A novel low-temperature resistant alkaline lipase from a soda lake fungus strain Fusarium solani N4-2 for detergent formulation
Rajkumar et al. Production and characterization of a novel protease from Bacillus sp. RRM1 under solid state fermentation
Singh et al. Factors affecting alfa amylase production on submerged fermentation by Bacillus sp
Mehta et al. Isolation of lipase producing thermophilic bacteria: Optimization of production and reaction conditions for lipase from Geobacillus sp.
Elayaraja et al. Thermostable α-amylase production by Bacillus firmus CAS 7 using potato peel as a substrate
Paranthaman et al. Optimization of various culture media for tannase production in submerged fermentation by Aspergillus flavus
Dominguez et al. Quantification of intra-and extra-cellular thermophilic lipase/esterase production by Thermus sp.
RU2500812C1 (en) Recombinant bacillus licheniformis bacteria strain-producer of heat-resistant lipase
RU2500811C1 (en) Recombinant bacillus subtilis bacteria strain-producer of specific phospholipase
Elmarzugi et al. Production of α-amylase using new strain of Bacillus polymyxa isolated from sweet potato
RU2673971C1 (en) Strain of bacteria paenibacillus species - a producer of xylanase
Bhardwaj et al. Influence of culture conditions on the production of extracellular esterase from Bacillus licheniformis and its characterization
RU2397247C1 (en) Lipase biosynthesis method
Gunasekaran et al. Alkaline lipase production by Citrobacter freundii IIT-BT L139
Afolabi et al. Isolation and characterisation of alpha-amylase producing yeast from different fermented foods and dairy products
Parashar et al. Production of Microbial Enzyme Triacylglycerol Acyl Hydrolases by Aspergillus Sydowii Jpg01 in Submerged Fermentation Using Agro-residues
Kuddus et al. Purification and properties of cold-active metalloprotease from Curtobacterium luteum and effect of culture conditions on production
Shumi et al. Production of protease from Listeria monocytogenes
RU2310685C1 (en) Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats
Soghomonyan et al. DEVELOPMENT OF TECHNOLOGY FOR PILOT-SCALE PRODUCTION, DRYING, AND STORAGE OF EXTRACELLULARLY EXPRESSED RECOMBINANT AMY1974 ALPHA-AMYLASE

Legal Events

Date Code Title Description
PC43 Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions

Effective date: 20170327

PD4A Correction of name of patent owner