RU2465771C1 - Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях - Google Patents

Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях Download PDF

Info

Publication number
RU2465771C1
RU2465771C1 RU2011128792/10A RU2011128792A RU2465771C1 RU 2465771 C1 RU2465771 C1 RU 2465771C1 RU 2011128792/10 A RU2011128792/10 A RU 2011128792/10A RU 2011128792 A RU2011128792 A RU 2011128792A RU 2465771 C1 RU2465771 C1 RU 2465771C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hybrid
genes
lines
heterosis
complex
Prior art date
Application number
RU2011128792/10A
Other languages
English (en)
Inventor
Юлия Константиновна Гончарова (RU)
Юлия Константиновна Гончарова
Евгений Михайлович Харитонов (RU)
Евгений Михайлович Харитонов
Original Assignee
Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт риса Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИ риса Россельхозакадемии)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт риса Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИ риса Россельхозакадемии) filed Critical Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт риса Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИ риса Россельхозакадемии)
Priority to RU2011128792/10A priority Critical patent/RU2465771C1/ru
Priority to CN2012103476504A priority patent/CN102972281A/zh
Application granted granted Critical
Publication of RU2465771C1 publication Critical patent/RU2465771C1/ru

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биохимии растений. Получают гомозиготные особи через культуру пыльников с последующим восстановлением комплекса генов исходного гибрида, путем гибридизации генотипически контрастных дигаплоидных линий. При этом в гибридизацию включают только наиболее продуктивные дигаплоидные линии, а контрастность дигаплоидных линий оценивают по комплексу признаков морфологических, физиологических, биохимических, молекулярных маркеров (SSR, SNP, и.т.д.), по вкладам генетических систем в продуктивность образца, и по совокупности всех предложенных методов. Предложенный авторами способ позволяет более эффективно, чем с использованием предложенных ранее методов, очистить генотип исходного гибрида, ускорить процесс накопления генов, определяющих гетерозисный эффект, отказаться от продолжительного и очень сложного поддержания жизнеспособности растения (в течение нескольких обычных его жизненных циклов) исходного гибрида и избежать проблем, связанных с получением от него потомства. Сокращает процесс накопления исходного комплекса генов, определяющих гетерозисный эффект и удаления генов, снижающих продуктивность и жизнеспособнось гибрида практически вдвое. 1 ил., 5 табл.

Description

Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к способам селекции.
Известен способ закрепления гетерозисного эффекта при получении вегетативно размножающихся многолетних растений риса (см., например, F.Hu, P.Xu, J.Li, J.Zhou, Е.Sacks, Z.Li, D.Tao Rice heterosis fixing by means of vegetative propagation from Oryza longistaminata. // Abstracts 4th International Symposium on Hybrid rice, 2002, p.95), заключающийся в переносе генов, ответственных за формирование корневища у диких родственников риса (например, от вида Orisa longistominata, у которого эти гены расположены в третьей и четвертой хромосомах и ассоциированы с локусами OSR 16, RM 119 соответственно).
Известен способ закрепления гетерозисного эффекта (см., например, Bennett J., Xuezhi Bi, Kathiresan, Chaudhury A., Ivahova A., Payne Т., Dennis L., and Khush G. Molecular tools for achieving synthetic apomixes for hybrid rice. // Abstracts 4 International Symposium on Hybrid rice, 2002, p. 12), заключающийся в переводе гибридов на апомиктичное размножение, методом переноса генов, ответственных за апомиктичное размножение из других видов, включая и родственные рису: кукуруза, сорго, пшеница.
Известен способ закрепления гетерозисного эффекта (см., например, V.Krishnasamy, 2002), заключающийся в получении синтетических семян гибридов. Под синтетическими семенами в данном случае подразумевается использование соматических эмбрионов, в качестве эндосперма которых служит смесь регуляторов роста, элементов питания и антибиотиков.
Недостатком указанных выше способов является то, что для закрепления гетерозисного эффекта они предлагают полное сохранение комплекса генов исходного гибрида, включая летальные и полулетальные гены, приводящие к расщеплению в последующих поколениях при половом размножении. Их основная задача заключается в переводе гибридов на вегетативное или апомиктичное размножение, кроме того, ни один из приведенных способов не реализован.
Известен способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях, принятый нами в качестве прототипа, описанный в патенте №2453253, М.Кл. A01K 67/00, A01K 67/04, опубликованный 27.07.2000, Бюл. №21 (ч.2), включающий получение гомозиготных особей, осуществление возвратных скрещиваний с абсолютно гомозиготными особями (для растений дигаплоидами, полученными через культуру пыльников) для удаления летальных и полулетальных генов из генотипа гетерозисного гибрида и восстановления комплекса генов исходного гибрида.
Недостатком способа является его трудоемкость, выражающаяся в проведении 5-6 возвратных скрещиваний между дигаплоидом и исходной особью, то есть растением гетерозисного гибрида, пыльцу которого использовали для получения популяции дигаплоидных растений. Для проведения возвратного скрещивания необходимо поддерживать жизнеспособность гибрида в течение нескольких его обычных жизненных циклов, например для риса период его вегетации 3-5 месяцев, после чего растения погибают. Для удаления летальных и полулетальных генов, а также сохранения комплекса генов, определяющего гетерозисный эффект, необходимо получить гибрид между дигаплоидом и исходным растением гетерозисного гибрида, от которого получали пыльцу для создания дигаплоидов. Получение дигаплоидов требует продолжительного времени от 7 месяцев, цикл вегетации исходного растения к этому времени уже закончен и оно очень ослаблено. Гибридизация дигаплоидов на ослабленные материнские растения приводит к очень низкой завязываемости и жизнеспособности гибридных семян, эта процедура повторяется 5-6 раз.
Задачей заявленного изобретения является повышение эффективности процесса восстановления комплекса генов исходного гибрида и удаления из его генотипа полулетальных, а также неэффективно действующих генов, приводящих к снижению продуктивности в последующих поколениях.
Технический результат - создание на основе гетерозисных гибридов высокопродуктивных сортов с аналогичной урожайностью.
Указанный технический результат при реализации способа достигается тем, что в способе закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях, включающем получение гомозиготных особей через культуру пыльников для удаления летальных и полулетальных генов из генотипа гетерозисного гибрида, согласно предлагаемому изобретению для восстановления комплекса генов исходного гибрида проводят гибридизацию генотипически контрастных дигаплоидных линий, при этом в гибридизацию включают только наиболее продуктивные дигаплоидные линии, а контрастность дигаплоидных линий оценивают по комплексу признаков морфологических, физиологических, биохимических, молекулярных маркеров (SSR, SNP, и.т.д.), по вкладам генетических систем в продуктивность образца, и по совокупности всех предложенных методов.
В результате гибридизации различных дигаплоидных линий между собой, а не с исходным гибридом, происходит объединение лучших генов, обуславливающих высокую продуктивность исходного гибрида и, следовательно, восстановление комплекса генов, определяющих гетерозисный эффект, которые были распределены при кроссинговере и получении дигаплоидов по различным образцам. Это дает возможность отказаться от продолжительного и очень сложного поддержания жизнеспособности растения (в течение нескольких обычных его жизненных циклов) исходного гибрида и избежать проблем, связанных с получением от него потомства.
Включение в гибридизацию только наиболее продуктивных дигаплоидных линий позволяет отбраковать образцы, сохранившие или получившие во время культивирования на питательной среде летальные, полулетальные и сублетальные гены, и, тем самым, обеспечить более эффективное очищение генотипа исходного гибрида.
Выделение контрастных дигаплоидных линий позволяет выявить образцы, несущие различные гены, определяющие гетерозисный эффект, и в результате обеспечивает ускорение процесса их накопления в создаваемом генотипе.
Гибридизация контрастных высокопродуктивных образцов, полученных при скрещивании различных дигаплоидных линий, еще более сокращает процесс накопления исходного комплекса генов. Проведение 2 скрещиваний контрастных дигаплоидных линий почти в 2 раза сокращает процесс накопления исходного комплекса генов гетерозисного гибрида, что в итоге позволяет получать высокопродуктивные сорта уже на первом этапе.
Проведенный анализ уровня техники, включающий поиск по патентным и научно-техническим источникам информации, и выявление источников, содержащих сведения об аналогах заявленного изобретения, позволил установить, что не обнаружен аналог, характеризующийся признаками, тождественными всем существенным признакам заявленного изобретения. Определение из перечня выявленных аналогов прототипа, как наиболее близкого по совокупности существенных признаков аналога, дозволил выявить совокупность существенных по отношению к усматриваемому заявителем техническому результату отличительных признаков в заявленном способе, изложенных в формуле изобретения.
Следовательно, заявляемое изобретение соответствует условию «новизна».
Для проверки соответствия заявленного изобретения требованию «изобретательского уровня» заявитель провел дополнительный поиск известных способов и технических решений с целью выявления признаков, совпадающих с отличительными от ближайшего аналога признаками завяленного изобретения. Результаты проверки показывают, что заявленное изобретение не следует для специалиста явным образом из известного уровня технологии и техники, в частности заявленным изобретением не предусматриваются известные преобразования.
Следовательно, заявленное изобретение соответствует требованию «изобретательский уровень» по действующему законодательству.
Сущность предлагаемого способа заключается в следующем.
Для закрепления гетерозисного эффекта по предлагаемому нами способу получали популяцию дигаплоидных линий из пыльцы гетерозисного гибрида (рисунок 1). Оценивали их продуктивность и жизнеспособность, выделяли для дальнейшей работы наиболее продуктивные дигаплоидные линии. Для выявления линий, несущих различные гены исходного комплекса генов, оценивали контрастность генотипов, выделенных высокопродуктивных дигаплоидных линий различными методами по комплексу: морфологических, физиологических, биохимических признаков, молекулярных маркеров, по вкладам генетических систем в продуктивность образца, и по совокупности всех предложенных методов. Для восстановления комплекса генов, определяющих гетерозисный эффект, проводили гибридизацию контрастных дигаплоидных линий, так как при получении дигаплоидов гены, определяющие высокую продуктивность гетерозисного гибрида, распределяются между различными особями. Получали дигаплоиды из пыльцы полученного гибрида через культуру пыльников. Оценивали их продуктивность и жизнеспособность, выделяли для дальнейшей работы наиболее продуктивные дигаплоидные линии, оценивали их продуктивность. Осуществление такой последовательности дает возможность получения высокопродуктивного сорта на первом этапе. Если же на первом этапе не удалось объединить в одном генотипе достаточного числа генов исходного комплекса генов, и, следовательно, полученные сорта не достигают урожайности исходного гибрида, переходили к следующему этапу, гибридизации линий, полученных при скрещивании различных контрастных дигаплоидных образцов. Из пыльцы полученного гибрида еще раз получали дигаплоидные линии. Выделяли наиболее продуктивные из них, размножали и оценивали продуктивность полученных сортов. Лучший сорт передается на госсортоиспытание.
Возможность селективной элиминации генов в культуре пыльников показана нами на организменном и молекулярном уровнях. Материалом для исследования послужили гибриды первого, второго поколения, родительские формы 13 гибридных комбинаций, а также дигаплоидные линии, полученные с использованием культуры пыльников из пыльцы гибридов первого поколения. Для закрепления гетерозисного эффекта в последующих поколениях использовали возвратные скрещивания исходного гибрида с дигаплоидами, полученными из его пыльцы. Получение дигаплоидов проводили для элиминации полулетальных аллелей, за которые в данном случае принимали любые неэффективно работающие локусы, понижающие жизнеспособность образца. Попадание летального гена в гаплоидный пронуклеус приводит зародыш к гибели на одной из стадий развития, выживают только особи, в генотипе которых минимальное количество летальных генов и максимальное благоприятных. При получении растений через культуру пыльников частота выживших особей не превышает 0,5%, следовательно, большая часть генотипов элиминируется. Вероятность выживания выше у генотипов с минимальным количеством летальных генов, что позволяет очистить генотип исходного гибрида от летальных и полулетальных генов, сохранив при этом комплекс благоприятных генов.
Возвратные скрещивания особей, лишенных вредных генов в гомозиготном и гетерозиготном состояниях, приводят к возникновению потомства, в генотипе которого также не может быть полулеталей в гомозиготном состоянии. Это и наличие большого числа генов модификаторов позволяет не только сохранить, но даже и усилить гетерозис по всех последующих беккроссных поколениях.
Следовательно, проблему закрепления гетерозиса можно решить посредством получения гибридов без леталей и полулеталей. При этом основной генотип исходного гибрида должен быть не только сохранен, но и улучшен. Высокая жизнеспособность беккроссных поколений, начиная с первого, представляет большой интерес, так как эти поколения по существу происходят в результате самооплодотворения, обычно сильно снижающего жизнеспособность. Высокая жизнеспособность объясняется тем, что беккроссы не приводят, как простое бисексуальное размножение, к появлению в генотипе потомства вредных генов в гомозиготном состоянии. Беккроссирование в данном случае проводили для возвращения в генотип гибрида части генов исходного комплекса, повышающих жизнеспособность. Беккроссное поколение получено в 13 гибридных комбинациях риса. Анализ продуктивности, полученный при беккроссировании растений, проводили при сравнении: с исходным гибридом; дигаплоидами, полученными из пыльцы этого гибрида; вторым поколением гибрида; родительскими формами. Так как сорта многолинейны (гены, определяющие морфотип, селекционер контролирует, но по устойчивости эффективности физиологических процессов полиморфизм внутри сорта сохраняется), то и гибриды первого поколения одной и той же комбинации, но полученные при гибридизации генетически различных линий одного сорта также генетически также различны. Нами было заложено два варианта опытов. В первом получали беккроссное поколение при скрещивании с растением из той же гибридной комбинации, посеянным позднее после получения дигаплоидных линий. Во втором - с исходным лучшим растением гибридной комбинации, отобранным для получения дигаплоидов (жизнеспособность его поддерживалась в течение всего получения дигаплоидов и выращивания их до фазы цветения).
В первом варианте опыта наблюдалось расщепление, что подтверждает многолинейность исходных сортов и необходимость получения беккроссного поколения при скрещивании только с растением - донором пыльцы. Во втором варианте опыта показано отсутствие расщепления в беккроссном поколении и, следовательно, возможность очищения генотипа гетерозисного гибрида от неэффективно действующих генов в культуре пыльников (таблица 1-2).
Таблица 1
Показатели вариации (средние по всем полученным возвратным скрещиваниям) в популяциях F1, F2, а также гибридов, полученных при возвратном скрещивании исходного гибрида с дигаплоидами, полученными из его пыльцы (F1/DH) 2005 г.
Показатель F1/DH F1 F2
Масса главной метелки, г 2,22 2,39 1,79
Дисперсия 0,06 0,06 0,16
Среднее квадратическое отклонение 0,24 0,24 0,40
Коэффициент вариации, % 11,49 10,17 22,4
Таблица 2
Показатели вариации признаков продуктивности (по 13 гибридным комбинациям) в популяциях F1, F1/DH 2006 г.
Признаки Среднее значение Среднее квадратическое отклонение Стандартная ошибка средней
F1 F1/DH1 F1 F1/DH F1 F1/DH
Высота растения, см 76.2 79.9 10.43 11.08 1.71 1.81
Длина главной метелки, см 14.7 15.1 1.91 1.81 0.31 0.46
Количество выполненных колосков, шт. 91.7 88.1 39.58 41.22 4.86 6.77
Количество пустых колосков, шт. 9.3 8.6 8.83 5.61 1.45 0.92
Количество колосков, шт. 100.9 96.7 39.91 41.47 4.91 6.81
В гибридных комбинациях, по которым было получено большое количество дигаплоидных линий, а следовательно, была возможность отбора высокопродуктивной дигаплоидной линии для проведения возвратного скрещивания, продуктивность полученных растений была выше, чем у исходного гибрида (таблица 3).
Таблица 3
Анализ продуктивности растений F1, F2, F1/DH
Гибридная комбинация Высота растения, см Длина главной метелки, см Количество выполненных колосков, шт. Кол-во пустых колосков, шт. Масса зерна главной метелки, г
Хазар/Лиман
F1/DH 84,25 15,25* 135,5* 3,25 3,88*
F1 77 14,25 106,25* 3,75 3,04*
F2 74 14 86,3 10,2 2,47
Pegasso/Вираж
F1/DH 76,5 15* 92* 8 2,94*
F1 59 12 69* 2 2,21*
F2 58,1 11,7 56,9 12 1,82
Майя/Снежинка
F1/DH 79 17 112,3* 8,3 3,21*
F1 83 17 86* 15 2,46*
F2 74 16,3 74 21 2,12
ВНИИР 7718/ВНИИР 7887
F1/DH 88 15 181* 12 4,26*
F1 77,67 13,00 120,7* 7 2,87*
F2 77,30 14,40 112,3 16 2,59
* F1 - гибрид первого поколения, F2 - гибрид второго поколения
DH - дигаплоидная линия
При скрещивании гибрида с низкопродуктивными дигаплоидами продуктивность растений, полученных при возвратном скрещивании, ниже, чем у исходного гибрида, однако дисперсионный анализ достоверных различий по продуктивности исходного гибрида и возвратного скрещивания не показал. Следовательно, при получении дигаплоидов для очищения от неблагоприятно действующих генов необходимо создавать большее количество их линий, так как часто оказываются жизнеспособными низкопродуктивные и стерильные линии. Продолжительное культивирование растительных тканей на среде вызывает появление большого числа мутаций как ядерных, так и соматических, кроме того, часть линий, несущих летали, также выживает. Однако эти линии легко браковать по продуктивности, так как все летали находятся в гомозиготном состоянии. Следовательно, необходимо проводить отбор по продуктивности среди дигаплоидных линий. Полученные нами данные показывают, что при получении дигаплоидов происходит очищение исходного гибрида от леталей и полулеталей, принесенных родительскими формами. Для подтверждения селективной элиминации генов в культуре пыльников проводили молекулярное маркирование популяции дигаплоидов подвида японика (полученной в результате гибридизации сортов BR 29 и IR 69428), состоящей из 90 линий с использованием 200 маркеров (таблицы 4-5). 100 из них равномерно распределены по геному с расстоянием между ними 20 сМ, остальные 100, связанные с признаками, определяющими устойчивость к стрессам (засухе, засолению, высоким и низким температурам), были отобраны по литературным или интернет данным, или предоставлены группами, работающими в IRRI (международного института риса) с маркированием локусов, определяющих адаптивность.
Изучение частоты встречаемости различных аллелей полиморфных маркеров показало селективную элиминацию некоторых аллелей, что подтверждает возможность использования культуры пыльников для удаления генов, снижающих жизнеспособность.
После удаления полулетальных генов при получении дигаплоидов проводили гибридизацию контрастных дигаплоидных линий одной гибридной комбинации. При получении дигаплоидных линий на основе гетерозисного гибрида комплекс генов, определяющих гетерозис, распределяется между дигаплоидными линиями, для его объединения в одном генотипе проводили гибридизацию контрастных высокопродуктивных линий. Изучение величины гетерозиса по признакам, обуславливающим высокую продуктивность в 226 гибридных комбинациях, показало, что только 16,6% комбинаций были гетерозисными, между дигаплоидными линиями одной гибридной комбинации процент гетерозисных был 52,92%, это является подтверждением того, что использование дигаплоидных линий в гибридизации значительно увеличивает вероятность получения гетерозисных комбинаций.
Таблица 4
Маркеры, связанные с аллелями, снижающими жизнеспособность пыльцевых зерен в культуре пыльников
SSR маркер Растений в популяции дигаплоидных линий с аллелем меньшего молекулярного веса Растений в популяции дигаплоидных линий с аллелем большего молекулярного веса Размер популяции Ожидаемая величина классов при отсутствии селективности Значения критерия χ2
RM 6407 16 61 77 38,5 26,3
RM 6765 11 56 67 33,5 30,2
RM 6931 43 8 51 25,5 24,0
RM 8243 12 37 49 24,5 12,8
RM 212 9 25 34 17,0 7,5
RM 5629 24 51 75 37,5 9,7
RM 284 5 17 22 11,0 6,5
RM 5688 1 8 9 4,5 5,4
RM 3403 5 16 21 10,5 5,8
RM 5552 1 21 22 11,0 18,2
RM 489 4 18 22 11,0 8,9
RM 332 4 18 22 11,0 8,9
RM 72 6 16 22 11,0 4,5
RM 208 2 20 22 11,0 14,7
RM 44 4 18 22 11,0 8,9
RM 289 5 17 22 11,0 6,5
RM 469 6 16 22 11,0 4,5
RM 481 6 16 22 11,0 4,5
RM 264 5 17 22 11,0 6,5
RM 477 4 18 22 11,0 8,9
RM 6648 6 16 22 11,0 4,5
Значения существенны на 5%-ном уровне значимости (χ2st=3,84).
Значения существенны на 0,5%-ном уровне значимости (χ2st=7,88)
Таблица 5
Маркеры, связанные с адаптивно нейтральными аллелями
SSR Маркер Растений в популяции дигаплоидных линий с аллелем меньшего молекулярного веса Растений в популяции дигаплоидных линий с аллелем большого молекулярного веса Размер популяции Ожидаемая величина классов при отсутствии селективности Значения критерия χ2
RM 6970 37 31 68 34 0,53
RM 6832 40 47 87 43,5 0,56
RM 2770 25 37 62 31 2,32
RM 6410 33 43 76 38 1,32
RM 6473 34 36 70 35 0,06
RM 509 9 9 18 9 0,00
RM 20 11 10 21 10,5 0,05
RM 257 8 8 16 8 0,00
RM 6970 6 13 19 9,5 2,58
RM 4 9 10 19 9,5 0,05
RM 242 11 11 22 11 0,00
RM 562 10 9 19 9,5 0,05
RM 164 11 11 22 11 0,00
RM 9 8 11 19 9,5 0,47
RM 21 13 7 20 10 1,80
RM 336 11 11 22 11 0,00
RM 180 10 12 22 11 0,18
RM 234 11 11 22 11 0,00
RM 254 8 3 11 5,5 2,27
RM 282 9 12 21 10,5 0,43
RM 1287 4 8 12 6 1,33
RM 318 30 44 74 37 2,65
RM 3155 50 34 84 42,0 3,05
Значения существенны на 5%-ном уровне значимости (χ2st=3,84).
После удаления полулетальных генов при получении дигаплоидов проводили гибридизацию контрастных дигаплоидных линий одной гибридной комбинации. При получении дигаплоидных линий на основе гетерозисного гибрида комплекс генов, определяющих гетерозис, распределяется между дигаплоидными линиями, для его объединения в одном генотипе проводили гибридизацию контрастных высокопродуктивных линий. Изучение величины гетерозиса по признакам, обуславливающим высокую продуктивность в 226 гибридных комбинациях, показало, что только 16,6% комбинаций были гетерозисными, между дигаплоидными линиями одной гибридной комбинации процент гетерозисных был 52,92%, это является подтверждением того, что использование дигаплоидных линий в гибридизации значительно увеличивает вероятность получения гетерозисных комбинаций. Для еще большей эффективности гибридизации в нее включают контрастные линии, что увеличивает процент гетерозисных комбинаций до 82,3%, а следовательно, позволяет собрать воедино комплекс генов исходного гибрида. С использованием данной технологии в 2010 году переданы на Государственное сортоиспытание 2 сорта риса Ивушка и Крепыш.

Claims (1)

  1. Способ закрепления гетерозиса гибридов сельскохозяйственных растений в последующих поколениях, включающий получение гомозиготных особей через культуру пыльников с последующим восстановлением комплекса генов, определяющих гетерозисный эффект исходного гибрида, отличающийся тем, что восстановление комплекса генов проводят путем гибридизации генотипически контрастных дигаплоидных линий, а контрастность дигаплоидных линий оценивают по комплексу признаков морфологических, физиологических, биохимических, молекулярных маркеров (SSR, SNP и т.д.), по вкладам генетических систем в продуктивность образца и по совокупности всех предложенных методов.
RU2011128792/10A 2011-07-13 2011-07-13 Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях RU2465771C1 (ru)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011128792/10A RU2465771C1 (ru) 2011-07-13 2011-07-13 Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях
CN2012103476504A CN102972281A (zh) 2011-07-13 2012-07-13 在后代中固定农作物杂交种的杂种优势的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011128792/10A RU2465771C1 (ru) 2011-07-13 2011-07-13 Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2465771C1 true RU2465771C1 (ru) 2012-11-10

Family

ID=47322135

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2011128792/10A RU2465771C1 (ru) 2011-07-13 2011-07-13 Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях

Country Status (2)

Country Link
CN (1) CN102972281A (ru)
RU (1) RU2465771C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2759222C2 (ru) * 2019-12-11 2021-11-11 Общество с ограниченной ответственностью "Аратай" (ООО "АРАТАЙ") Способ закрепления гетерозиса гибридов

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108207611A (zh) * 2017-11-28 2018-06-29 袁隆平农业高科技股份有限公司 一种农作物杂交新品种的选育方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2153253C1 (ru) * 1999-06-11 2000-07-27 Струнникова Лариса Владимировна Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1214708C (zh) * 2002-09-27 2005-08-17 梅时勇 快速选育萝卜新品种的方法
CN1236668C (zh) * 2002-12-26 2006-01-18 北京市海淀区植物组织培养技术实验室 利用辣椒杂交种的花药培育近似杂交种的方法
AP2009004984A0 (en) * 2007-03-19 2009-10-31 Sumatra Bioscience Pte Ltd Methods of producing haploid and doubled haploid oil palms
CN101142894A (zh) * 2007-09-26 2008-03-19 云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所 野生稻远缘杂交高效培养优良后代的方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2153253C1 (ru) * 1999-06-11 2000-07-27 Струнникова Лариса Владимировна Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КОСТЫЛЕВ П.И. Биотехнологии и оценочный этап селекции риса. - Зерновое хозяйство России, 2009, №1, найдено online [21.02.2012]. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2759222C2 (ru) * 2019-12-11 2021-11-11 Общество с ограниченной ответственностью "Аратай" (ООО "АРАТАЙ") Способ закрепления гетерозиса гибридов

Also Published As

Publication number Publication date
CN102972281A (zh) 2013-03-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11214842B2 (en) Methods and compositions for producing brachytic corn plants
JP6872307B2 (ja) ホウレンソウにおけるペロノスポラ耐性のための組成物及び方法
Aleza et al. Recovery and characterization of a Citrus clementina Hort. ex Tan.'Clemenules' haploid plant selected to establish the reference whole Citrus genome sequence
Grouh et al. Production of haploids in Persian walnut through parthenogenesis induced by gamma-irradiated pollen
CN118140809A (zh) 与大豆中疾病抗性相关联的新颖的遗传基因座
US20100138951A1 (en) Methods of producing haploid and doubled haploid oil palms
US11219174B2 (en) Methods for producing corn plants with northern leaf blight resistance and compositions thereof
US20230329176A1 (en) Novel type of long shelf-life melon plants
Kim et al. Distribution and evolution of Citrus accessions with S 3 and/or S 11 alleles for self-incompatibility with an emphasis on sweet orange [Citrus sinensis (L.) Osbeck; S f S 3 or S f S 3sm]
JP7407112B2 (ja) べと病抵抗性の花蕾または頭部を有するBrassica oleracea植物
JP2011507508A (ja) キュウリ植物の収量を改善する方法
Cimen et al. Recovering triploid citrus hybrids from 2x× 2x sexual crosses with the aid of embryo rescue and flow cytometry in Turkey
RU2465771C1 (ru) Способ закрепления гетерозиса гибридов в последующих поколениях
US10837067B2 (en) Methods and compositions for producing corn plants with resistance to late wilt
Singh et al. Genetic and molecular characterisations of Tomato leaf curl virus resistance in tomato (Solanum lycopersicum L.)
US20150106975A1 (en) Molecular Markers Associated with Aphid Resistance in Soybean
RU2759222C2 (ru) Способ закрепления гетерозиса гибридов
Ratnaparkhe Blueberry
RU2792674C2 (ru) Растение арбуза, характеризующееся продуктивным цветением
Olszewska et al. Double haploids from two-embryonic seeds of pepper (Capsicum annuum L.) F1 hybrid
Gutiérrez-López et al. Absence of concordance between polyembryony and apomixis in maize confirmed through DNA sequencing
Veilleux Genetic stocks used for potato genome sequencing
KR20240112909A (ko) 노균병 저항성을 갖는 신규한 스쿼시 식물
US20160050864A1 (en) Methods for Producing Soybean Plants with Improved Fungi Resistance and Compositions Thereof
CN118600082A (zh) 一种鉴定巴厘和md2菠萝杂种真实性的snp标记引物组及应用

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170714