RU2445974C2 - Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma - Google Patents

Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma Download PDF

Info

Publication number
RU2445974C2
RU2445974C2 RU2010116125/15A RU2010116125A RU2445974C2 RU 2445974 C2 RU2445974 C2 RU 2445974C2 RU 2010116125/15 A RU2010116125/15 A RU 2010116125/15A RU 2010116125 A RU2010116125 A RU 2010116125A RU 2445974 C2 RU2445974 C2 RU 2445974C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
viii
factor viii
viral inactivation
heparin
blood plasma
Prior art date
Application number
RU2010116125/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2010116125A (en
Inventor
Андрей Иванович Воробьев (RU)
Андрей Иванович Воробьев
Арон Леонидович Берковский (RU)
Арон Леонидович Берковский
Андрей Серафимович Юрьев (RU)
Андрей Серафимович Юрьев
Евгений Михайлович Голубев (RU)
Евгений Михайлович Голубев
Татьяна Александровна Ципилева (RU)
Татьяна Александровна Ципилева
Елена Владимировна Сергеева (RU)
Елена Владимировна Сергеева
Original Assignee
Учреждение Российской академии медицинских наук Гематологический научный центр ГНЦ РАМН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Учреждение Российской академии медицинских наук Гематологический научный центр ГНЦ РАМН filed Critical Учреждение Российской академии медицинских наук Гематологический научный центр ГНЦ РАМН
Priority to RU2010116125/15A priority Critical patent/RU2445974C2/en
Publication of RU2010116125A publication Critical patent/RU2010116125A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2445974C2 publication Critical patent/RU2445974C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, pharmaceutics.
SUBSTANCE: invention refers to medicine and describes a method for recovery of factor VIII from human blood plasma not identified by related analysis of hepatitis and HIV1/2 viruses consisting in sequential cryoprecipitation, dissolution in an aqueous solution of heparin and solubilisation of a cryoprecipitate, sorption of a prothrombin-converting complex factor by aluminium hydrate, removal of fibrinogen, fibronectin and associated protein by polyethylene glycol-4000, viral inactivation with solvent detergents and preliminary filtration, anion-exchange chromatography, preferentially with EDM-TMAE Fractogel, with elution by a sodium chloride buffer, stabilisation by albumine solution, sterile filtration in membrane filters of pore diameter 0.22 mcm, bottling (200-300 IU/bottle), lyophilisation and second thermal viral inactivation with purification using the aqueous solution of unfractionated heparin of the concentrations equal to 5-100 international units (IU)/ml, preferentially 10-25 IU/ml, polyethylene glycol-4000 in the final concentration 3.5% and acidification of the medium, preferentially to pH 6.6, strong TMAE anion exchangers.
EFFECT: method substantially provides higher effectiveness of purification and specific activity of factor VIII.
1 tbl, 4 dwg, 2 ex

Description

Изобретение относится к области фармацевтической промышленности, а именно к биотехнологии получения гемостатических препаратов. Количественный или функциональный дефицит фактора (Ф) VIII свертывания крови вызывает развитие наследственного геморрагического заболевания гемофилии А, основным методом лечения и профилактики которой является заместительная терапия препаратами Ф VIII.The invention relates to the field of pharmaceutical industry, namely to biotechnology for producing hemostatic drugs. A quantitative or functional deficiency of coagulation factor (F) VIII causes the development of a hereditary hemorrhagic hemophilia A disease, the main method of treatment and prevention of which is replacement therapy with F VIII drugs.

Ф VIII является гликопротеином плазмы крови, нековалентно связанным с фактором Виллебранда, который существенно повышает стабильность Ф VIII. Ген Ф VIII локализован на Х-хромосоме, и его мутации обуславливают развитие гемофилии А, наследуемой по рецессивному признаку. Активированный Ф VIII (Ф VIIIa) является лабильным, не ферментативным белковым ко-фактором Ф IXa. Ф VIII является необходимым компонентом внутреннего пути свертывания крови (Зубаиров Д.М. Фактор VIII. В: Молекулярные основы свертывания крови и тромбообразования. 2000, Казань, с.101-110).Ф VIII is a blood plasma glycoprotein non-covalently associated with von Willebrand factor, which significantly increases the stability of Ф VIII. Gene F VIII is located on the X chromosome, and its mutations determine the development of hemophilia A, inherited by a recessive trait. Activated F VIII (F VIIIa) is a labile, non-enzymatic protein co-factor F IXa. Ф VIII is a necessary component of the internal pathway of blood coagulation (Zubairov D.M. Factor VIII. B: Molecular basis of blood coagulation and thrombosis. 2000, Kazan, pp. 101-110).

В заместительной терапии больных гемофилией А и для ее профилактики применяют препараты, содержащие Ф VIII. В настоящее время потребность здравоохранения РФ в препаратах Ф VIII составляет порядка 300 миллионов Международных единиц (ME), но масштабное отечественное промышленное производство в стране отсутствует (Ямкин А.В. и др. Способ получения и свойства препарата VIII фактора свертывания плазмы крови человека // Сибирский мед. журнал, 2009, №2, с.17-20). Получение Ф VIII осуществляется или фракционированием плазмы крови человека или животных, или рекомбинантными методами генной инженерии. Полученные из плазмы крови препараты могут содержать, кроме Ф VIII, фактор Виллебранда, что предполагает их применение при болезни Виллебранда. К проблемам производства препаратов Ф VIII из плазмы крови человека следует отнести:In the replacement therapy of patients with hemophilia A and for its prevention, drugs containing F VIII are used. At present, the need for healthcare in the Russian Federation in drugs F VIII is about 300 million international units (ME), but there is no large-scale domestic industrial production in the country (Yamkin A.V. et al. Method for the preparation and properties of the drug VIII coagulation factor human blood plasma // Siberian Medical Journal, 2009, No. 2, pp. 17-20). Obtaining F VIII is carried out either by fractionation of the blood plasma of humans or animals, or by recombinant methods of genetic engineering. Preparations obtained from blood plasma may contain, in addition to F VIII, von Willebrand factor, which suggests their use in von Willebrand disease. The problems of the production of drugs F VIII from human blood plasma include:

- возможность инфицирования реципиента вирусами гепатитов (А, В, С), иммунодефицита человека, парвовирусом, сифилисом и другими патогенами,- the possibility of infection of the recipient with hepatitis viruses (A, B, C), human immunodeficiency, parvovirus, syphilis and other pathogens,

- возможность переноса реципиенту с определенной группой группы присутствующих в препаратах (концентраты средней чистоты) антител к антигенам эритроцитов других групп крови,- the possibility of transferring to a recipient with a certain group of the group of antibodies present in the preparations (medium-purity concentrates) antibodies to red blood cell antigens of other blood groups,

- контаминация препаратов Ф VIII балластными белками,- contamination of drugs F VIII with ballast proteins,

- стабильность белка Ф VIII в его концентратах (по существующим требованиям Ф VIII должен быть стабилен в течение 12 часов после растворения лиофилизата) (Burnouf Т. Plasma fractionation in the world: current status // Transfus. Clin. Biol., 2007, v.14 (1), p.41-50).- stability of the protein F VIII in its concentrates (according to existing requirements, F VIII must be stable for 12 hours after dissolution of the lyophilisate) (Burnouf T. Plasma fractionation in the world: current status // Transfus. Clin. Biol., 2007, v. 14 (1), p.41-50).

Для решения этих проблем разработаны соответствующие технологические подходы. Так, при подготовке пула плазмы крови проводят отбор тщательно проверенных здоровых доноров, у которых определяют возможное инфицирование вирусами гепатита, иммунодефицита человека и др. Однако для полной гарантии отсутствия вирусной инфекции в процессе получения концентратов антигемофильного фактора осуществляют вирусную инактивацию. В связи с различной природой вирусов (с или без липидной оболочки) инактивацию наиболее часто проводят комплексно, а именно сольвент-детергентами и соответствующим нагреванием (двойная инактивация) (Guidelines on viral inactivation and removal procedures intended to assure the viral safety of human blood plasma products: Annex 4. - WHO Technical Report, Series N24, 2004, p.177).To solve these problems, appropriate technological approaches have been developed. So, when preparing a pool of blood plasma, carefully selected healthy donors are selected for possible infection with hepatitis viruses, human immunodeficiency viruses, etc. However, to completely guarantee the absence of viral infection, virus inactivation is carried out in the process of obtaining antihemophilic factor concentrates. Due to the different nature of viruses (with or without lipid membrane), inactivation is most often carried out in a complex, namely solvent detergents and appropriate heating (double inactivation) (Guidelines on viral inactivation and removal procedures intended to assure the viral safety of human blood plasma products : Annex 4. - WHO Technical Report, Series N24, 2004, p. 177).

Для повышения степени очистки получаемых концентратов Ф VIII последовательно используют комплекс процедур фракционирования (преципитацию, различные виды и сочетания высокоэффективных хроматографических методов). Увеличение чистоты препарата обеспечивает повышение его удельной, специфической активности (коагулологическая активность Ф VIII/мг белка) и снижает содержание примесных нежелательных компонентов.To increase the degree of purification of the obtained concentrates, F VIII, a series of fractionation procedures (precipitation, various types and combinations of highly efficient chromatographic methods) are sequentially used. The increase in the purity of the drug provides an increase in its specific, specific activity (coagulological activity f VIII / mg protein) and reduces the content of impurity undesirable components.

Для повышения стабильности концентратов Ф VIII в процессе его получения применяют удаление белков протромбинового комплекса, добавление альбумина, гепарина, лизина и других веществ.In order to increase the stability of Ф VIII concentrates, in the process of its preparation, the prothrombin complex proteins are removed, albumin, heparin, lysine and other substances are added.

В настоящее время широко используют следующие препараты Ф VIII из плазмы крови:Currently, the following drugs F VIII from plasma are widely used:

Таблица 1Table 1 Характеристика антигемофильных препаратовCharacterization of antihemophilic drugs ПрепаратA drug Метод полученияProduction method Удельная активность Ф VIII, МЕ/мг белкаThe specific activity of f VIII, IU / mg protein ПроизводительManufacturer ПримечаниеNote Koate-DVIKoate-dvi Фракционирование по Кону-Орли, осаждение, хроматографияCohn-Orly Fractionation, Precipitation, Chromatography 50fifty Barer, СШАBarer, USA +ФВ, с./д. и нагрев+ PV, s / d and heating ImmunateImmunate ИОХOoh 7070 Baxter, СШАBaxter, USA +ФВ, с./д. и нагрев+ PV, s / d and heating OctanateOctanate ИОХOoh 100one hundred Octapharma, АвстрияOctapharma, Austria +ФВ, с./д. и нагрев+ PV, s / d and heating Factor 8YFactor 8Y Осаждение гепарин/глицинPrecipitation heparin / glycine 2,5-42.5-4 Bio Pro. Lab., АнглияBio Pro Lab., England +ФВ, сухой нагрев,+ PV, dry heat, EmoclotEmoclot ИОХOoh 8080 Kedrion, ИталияKedrion, Italy +ФВ, с./д. и сухой нагрев+ PV, s / d and dry heat Примечание: с./д. - сольвент/детергент, +ФВ - присутствие фактора Виллебранда, ИОХ - ионообменная хроматография.Note: s / d - solvent / detergent, + PV - the presence of von Willebrand factor, IOX - ion-exchange chromatography.

Известны следующие способы выделения из плазмы Ф VIII.The following methods of isolation from plasma f VIII are known.

Методом, представленным в Патенте РФ №2324495, Ф VIII получали криофракционированием плазмы крови, растворением криопреципитата, вирусной инактивацией криопреципитата сольвент-детергентным методом с применением три-н-бутилфосфата и тритона Х-100, хроматографией на Сефарозе 4FF, ультрафильтрацией и лиофилизацией.By the method presented in RF Patent No. 232,495, F VIII was obtained by cryofractionation of blood plasma, dissolution of cryoprecipitate, viral inactivation of cryoprecipitate by the solvent-detergent method using tri-n-butylphosphate and Triton X-100, chromatography on Sepharose 4FF, ultrafiltration and lyophilization.

Патент США 5252709 А1 описывает способ получения концентрата Ф VIII, заключающийся в суспендировании криопреципитата плазмы в растворе гепарината натрия, осаждении балластных белков гидроксидом алюминия, стерилизующей фильтрации получаемого супернатанта, вирусной инактивации сольвент-детергентами, адсорбции целевого продукта на хроматографической колонне с Фрактогелем с последующей элюцией буферным раствором, содержащим хлорид натрия, и лиофилизации.US patent 5252709 A1 describes a method for producing concentrate Ф VIII, which consists in suspending plasma cryoprecipitate in a solution of sodium heparin, precipitating ballast proteins with aluminum hydroxide, sterilizing the filtration of the obtained supernatant, viral inactivation by solvent detergents, adsorption of the target product on a chromatographic column with Fractogel followed by Fractogel buffer followed by a solution containing sodium chloride, and lyophilization.

В Патенте США 5259951 А1 препарат Ф VIII получали из плазмы крови криоосаждением и растворением криопреципитата в растворе, содержащем хлорид натрия, гепарин и глицин, очисткой гидроксидом алюминия, нагреванием полупродукта в присутствии стабилизатора, ионообменной хроматографией, диализом преципитата, нагреванием и фильтрационной стерилизацией с последующей лиофилизацией.In US Pat. No. 5,259,951 A1, preparation F VIII was obtained from blood plasma by cryoprecipitation and dissolution of cryoprecipitate in a solution containing sodium chloride, heparin and glycine, purification with aluminum hydroxide, heating of the intermediate in the presence of a stabilizer, ion exchange chromatography, dialysis of precipitate, heating and filtration sterilization followed by lyophilization .

В Патенте США 5259951 А1 высокоочищенный Ф VIII плазмы крови получали последовательным применением криопреципитации, растворения криопреципитата в водном растворе, содержащим гепарин, очистки гидроксидом алюминия и полиэтиленгликолем (ПЭГ)-4000, хроматографии на ионообменнике, стабилизации альбумином, гепарином, ПЭГ-4000, лизином и гистидином, концентрирования, диафильтрации, тепловой вирусной инактивации и лиофилизации.In US Pat. No. 5,259,951 A1, highly purified plasma plasma F VIII was obtained by sequential application of cryoprecipitation, dissolution of cryoprecipitate in an aqueous solution containing heparin, purification with aluminum hydroxide and polyethylene glycol (PEG) -4000, chromatography on an ion exchanger, stabilization with albumin, heparin, PEG-4000, lysine and histidine, concentration, diafiltration, thermal viral inactivation and lyophilization.

Наиболее близким к заявляемому методу (прототипом) является способ получения Ф VIII, представленным в Патенте РФ 2253475 С1. Способ заключается в получении из плазмы крови человека криопреципитата, который суспендируют в водном растворе гепарина (1-3 МЕ/мл), в очистке от балластных белков гидроксидом алюминия и ПЭГ-4000 (конечные концентрации 0,3% и 2%, соответственно), в вирусной инактивации сольвент-детергентным методом в присутствии Твина, в микрофильтарции, в хроматографическом фракционировании на ДЭАЭ-содержащем носителе с применением буферных (pH 6,75-6,85) растворов различной ионной силы, в стабилизации полученного раствора Ф VIII альбумином (конечная концентрация 0,1%), стерилизации микрофильтрацией, в лиофилизации и в последующей термообработке с целью дополнительной вирусной инактивации. К недостаткам данного метода можно отнести существенную потерю целевого вещества при хроматографическом фракционировании и недостаточную степень очистки выделяемого Ф VIII. На стадии хроматографической очистки выход Ф VIII составлял 40-45%, содержание и удельная специфическая активность фактора VIII были равны 15-20 МЕ/мл и 80-100 МЕ/мг белка, соответственно.Closest to the claimed method (prototype) is a method of obtaining f VIII, presented in RF Patent 2253475 C1. The method consists in obtaining cryoprecipitate from human blood plasma, which is suspended in an aqueous solution of heparin (1-3 IU / ml), in the cleaning of ballast proteins with aluminum hydroxide and PEG-4000 (final concentrations of 0.3% and 2%, respectively), in viral inactivation by the solvent-detergent method in the presence of Tween, in microfiltration, in chromatographic fractionation on a DEAE-containing carrier using buffer (pH 6.75-6.85) solutions of different ionic strength, in the stabilization of the resulting solution F VIII albumin (final concentration 0 1%), sterilization by microfiltration, lyophilization and subsequent heat treatment for the purpose of additional viral inactivation. The disadvantages of this method include a significant loss of the target substance during chromatographic fractionation and an insufficient degree of purification of the isolated Ф VIII. At the stage of chromatographic purification, the yield of Ф VIII was 40-45%, the content and specific specific activity of factor VIII were 15-20 IU / ml and 80-100 IU / mg of protein, respectively.

Целью настоящего изобретения является разработка способа промышленного производства стабильного высокоочищенного Ф VIII. Данная цель достигается разработкой технологии, обеспечивающей получение лиофилизированной формы концентрата Ф VIII с высокой специфической удельной активностью за счет повышения степени очистки.The aim of the present invention is to develop a method of industrial production of stable highly purified f VIII. This goal is achieved by the development of technology that provides a lyophilized form of concentrate Ф VIII with high specific specific activity by increasing the degree of purification.

Разработку технологии выделения Ф VIII для получения антигемофильного фактора сначала проводили в лабораторных условиях, а затем масштабировали в условиях опытного производства. Производство препарата Ф VIII соответствовало правилам Хорошей Производственной Практики (GMP), надлежащим правилам промышленной деятельности, стандартным операционным процедурам (СОП) и необходимым условиям стерильности.The development of the technology of isolation of F VIII to obtain the antihemophilic factor was first carried out in laboratory conditions, and then scaled under experimental production conditions. The manufacture of F VIII was in accordance with Good Manufacturing Practices (GMP), appropriate industrial practices, standard operating procedures (SOPs), and necessary sterility conditions.

На всех стадиях производства исходное сырье, промежуточные продукты и целевой препарат тестируют по активности Ф VIII одностадийным коагулологическим методом и содержанию белка методом Бредфорда. На различных стадиях производства определяют коагулологическую активность фактора Виллебранда и протромбина, содержание фибронектина измеряют твердофазным иммуноферментным методом. На уровне промышленного производства строго контролируют степень микробного инфицирования.At all stages of production, the feedstock, intermediates and the target drug are tested for activity F VIII by a single-stage coagulological method and protein content by the Bradford method. At various stages of production, the coagulological activity of von Willebrand factor and prothrombin is determined, the content of fibronectin is measured by enzyme-linked immunosorbent assay. At the industrial production level, the degree of microbial infection is strictly controlled.

Сырьем для получения Ф VIII является свежезамороженная плазма донорской крови с активностью Ф VIII не менее 0,7 МЕ/мл. Необходимое условие использования плазмы заключается в доказанном отсутствии ее инфицирования вирусами гепатитов В и С и иммунодефицита ВИЧ 1/ВИЧ 2. В процессе очистки Ф VIII на стадии осаждения применяют комбинацию полиэтиленгликоля (ПЭГ)-4000 (Merck, Германия) и гидроксида алюминия (Biosector, Дания). Для проведения вирусной инактивации используют 1% раствор Твин 80 и 0,03% три-n-бутилфосфат (Merck, Германия). Анионообменную хроматографию проводят на сильных анионообменниках группы ТМАЕ, не содержащих ДЭАЭ, предпочтительно EMD-TMAE Fractogel (Merck, Германия), с использованием хроматографической колонны Millipore Vantage S2 и хроматографа BioProcess (GE, США). Концентрацию ионов натрия определяли на ионном анализаторе (CIBA-CORNING, США). Стерильную фильтрацию препарата осуществляют с помощью фильтров 0,22 мкм (Millipore, США), а лиофилизацию - на аппарате SERAIL (Франция) по специально разработанному режиму.The raw material for obtaining F VIII is freshly frozen plasma of donated blood with an activity of F VIII of at least 0.7 IU / ml. A necessary condition for the use of plasma is the proven absence of infection with hepatitis B and C viruses and HIV 1 / HIV 2 immunodeficiency. In the process of purification of Ph VIII, a combination of polyethylene glycol (PEG) -4000 (Merck, Germany) and aluminum hydroxide (Biosector, Denmark). For viral inactivation, a 1% solution of Tween 80 and 0.03% tri-n-butyl phosphate (Merck, Germany) are used. Anion exchange chromatography was performed on strong anion exchangers of the TMAE group that did not contain DEAE, preferably EMD-TMAE Fractogel (Merck, Germany), using a Millipore Vantage S2 chromatographic column and a BioProcess chromatograph (GE, USA). The concentration of sodium ions was determined on an ion analyzer (CIBA-CORNING, USA). Sterile filtration of the drug is carried out using 0.22 μm filters (Millipore, USA), and lyophilization on a serail device (France) according to a specially developed regime.

Заявляемый способ получения Ф VIII состоит из следующих стадий:The inventive method of obtaining f VIII consists of the following stages:

1. Из свежезамороженной плазмы крови человека методом контролируемого оттаивания и центрифугирования выделяют криопреципитат (КП) (отделяемый криосупернатант используют как сырье для получения Ф IX, альбумина и иммуноглобулинов).1. Cryoprecipitate (KP) is isolated from freshly frozen human blood plasma by controlled thawing and centrifugation (detachable cryosupernatant is used as a raw material for obtaining Ф IX, albumin and immunoglobulins).

2. Полученный КП солюбилизируют с последующей корректировкой pH. Для повышения степени очистки целевого Ф VIII используют водный раствор, содержащий 5-100 международных единиц (ME) нефракционированного гепарина в 1 мл, предпочтительно 10-25 МЕ/мл.2. The resulting KP is solubilized with subsequent pH adjustment. To increase the degree of purification of the target F VIII, an aqueous solution is used containing 5-100 international units (ME) of unfractionated heparin in 1 ml, preferably 10-25 IU / ml.

3. Солюбилизированный КП обрабатывают гелем гидроксида алюминия, интенсивно сорбирующим при нейтральных pH факторы протромбинового комплекса. Раствор КП без факторов протромбинового комплекса очищают от фибриногена, фибронектина и других белков с помощью осаждения ПЭГ-4000 и центрифугирования.3. The solubilized KP is treated with an aluminum hydroxide gel that intensively sorb prothrombin complex factors at neutral pH. The KP solution without prothrombin complex factors is purified from fibrinogen, fibronectin and other proteins by PEG-4000 precipitation and centrifugation.

Сочетанное применение используемых конечных концентраций гепарина (5-100 МЕ/мл), гидроксида алюминия (0,3%) и ПЭГ-4000 (3,5%) обеспечивает получение промежуточного продукта - очищенного раствора КП - с повышенными стабильностью и удельной специфической активностью Ф VIII за счет более эффективного удаления балластных белков и протеаз. Применение выбранных концентраций гепарина (предпочтительно 10-25 МЕ/мл), величины кислотности (предпочтительно pH=6,6) и конечной концентрации ПЭГ-4000 (3,5%) обеспечивает существенное снижение еще до стадии хроматографической очистки содержания фибриллярного белка фибронектина от 2-4 г/л до 20-30 мг/л (в прототипе - 200-300 мг/л).The combined use of the used final concentrations of heparin (5-100 IU / ml), aluminum hydroxide (0.3%) and PEG-4000 (3.5%) provides an intermediate product - a purified solution of KP - with increased stability and specific specific activity f VIII due to more efficient removal of ballast proteins and proteases. The use of selected concentrations of heparin (preferably 10-25 IU / ml), acidity (preferably pH = 6.6) and a final concentration of PEG-4000 (3.5%) provides a significant reduction before the stage of chromatographic purification of the content of fibrillar fibronectin protein from 2 -4 g / l to 20-30 mg / l (in the prototype - 200-300 mg / l).

4. Очищенный раствор КП подвергают вирусной инактивации с помощью сольвент-детергента (Твин-80 и три-n-бутилфосфат) и предварительной фильтрации с оптимальными условиями вирусной инактивации: нейтральные значения pH (6,9-7,1), температура 25°С и время обработки 6 часов.4. The purified solution of KP is subjected to viral inactivation using a solvent detergent (Tween-80 and tri-n-butylphosphate) and preliminary filtration with optimal conditions of viral inactivation: neutral pH values (6.9-7.1), temperature 25 ° С and processing time 6 hours.

5. Дальнейшее выделение (очистку) Ф VIII из раствора вирус-инактивированного КП проводят анионообменной хроматографией (АОХ) с использованием сильных анионообменников, предпочтительно ионоообменник EMD-TMAE Fractogel. Данный тип сорбентов в комбинации с применением оптимальной ионной силы фракционирования позволяет снизить степень адгезивности фактора Виллебранда и повысить стабильность целевого препарата Ф VIII, содержащего фактор Виллебранда. Хроматографическую очистку проводят при размерах колонки - 10×15 см, количестве наносимого образца - 120-200 тысяч ME, стартовом буфере - трис-цитратном солевом с нейтральным pH, элюции - ступенчатым градиентом NaCl и скорости нанесения и элюции - 80-100 см/час.5. Further isolation (purification) of F VIII from the virus-inactivated KP solution is carried out by anion exchange chromatography (AOX) using strong anion exchangers, preferably EMD-TMAE Fractogel ion exchanger. This type of sorbents in combination with the use of optimal ionic fractionation strength allows to reduce the degree of adhesion of von Willebrand factor and increase the stability of the target drug f VIII containing von Willebrand factor. Chromatographic purification is carried out with a column size of 10 × 15 cm, the amount of applied sample is 120-200 thousand ME, the starting buffer is a tris citrate salt with a neutral pH, the elution is performed using a stepwise NaCl gradient, and the application and elution rates are 80-100 cm / hour .

6. Целевая фракция Ф VIII, полученная на этапе АОХ, имеет удельную активность не менее 140 (150-200) МЕ/мг белка, что существенно (в 1,5-2 раза) превышает удельную активность Ф VIII известных препаратов из плазмы крови. Эту фракцию разводят трис-цитратным буфером с нейтральным pH до требуемой активности Ф VIII, стабилизируют альбумином до конечной концентрации альбумина в препарате 0,1% и проводят стерильную фильтрацию и розлив раствора Ф VIII во флаконы.6. The target fraction F VIII obtained at the AOX stage has a specific activity of at least 140 (150-200) IU / mg protein, which is significantly (1.5-2 times) higher than the specific activity of F VIII known plasma preparations. This fraction was diluted with a neutral pH tris-citrate buffer to the desired F VIII activity, stabilized with albumin to a final concentration of albumin in the preparation of 0.1% and sterile filtration and filling of the F VIII solution into vials were performed.

7. Разлитый по флаконам раствор Ф VIII лиофильно высушивают и подвергают дополнительной термической вирусной инактивации; потеря активности при термоинактивации не превышает 5%.7. The vial solution F VIII is lyophilized dried and subjected to additional thermal viral inactivation; loss of activity during thermal inactivation does not exceed 5%.

После лиофилизации и термической вирусной инактивации в условиях промышленного масштабирования разработанной технологии получают 70-130 флаконов (20 мл) лиофильно высушенного Ф VIII для раствора для инъекций со специфической активностью Ф VIII 200-300 МЕ/флакон со значением выхода специфической активности Ф VIII всего технологического процесса 13-20%.After lyophilization and thermal viral inactivation under conditions of industrial scaling of the developed technology, 70-130 bottles (20 ml) of lyophilized dried Ф VIII for injection solution with specific activity Ф VIII 200-300 IU / bottle with a yield of specific activity Ф VIII of the whole process are obtained 13-20%.

Ниже представлены конкретные примеры осуществления изобретения.The following are specific examples of carrying out the invention.

Пример 1.Example 1

1. 180 л Свежезамороженной плазмы доноров, прошедшей аттестацию на наличие инфекций, с активностью Ф VIII, равной 0,75 МЕ/мл (содержание основного продукта 135000 МЕ), размораживают в реакторе при температуре -0,5°С и выделяют криопреципитат (КП) с помощью проточной центрифуги при 1800 об/мин и 3°С. Масса КП составляла 2,0 кг, содержание целевого продукта 80000 ME (выход по целевому продукту 59%).1. 180 l of Freshly frozen donor plasma that has been certified for infections with an activity of Ф VIII equal to 0.75 IU / ml (the content of the main product is 135000 IU) is thawed in the reactor at a temperature of -0.5 ° С and cryoprecipitate is released (KP ) using a flow centrifuge at 1800 rpm and 3 ° C. The mass of the KP was 2.0 kg, the content of the target product 80,000 ME (yield on the target product 59%).

2. Полученный КП растворяют в водном растворе гепарина (10 МЕ/мл очищенной воды) и солюбилизировают при 25°С. pH Растворенного и солюбилизированного КП корректируют до 6,8. Объем КП 8,0 л, активность целевого на стадии продукта 72000 ME (выход на стадии 90%).2. The resulting KP is dissolved in an aqueous solution of heparin (10 IU / ml of purified water) and solubilized at 25 ° C. The pH of the dissolved and solubilized KP is adjusted to 6.8. The volume of KP is 8.0 L, the activity of the target in the product stage is 72000 ME (yield at the stage of 90%).

3. Сорбцию факторов протромбинового комплекса осуществляют добавлением к КП 3% геля гидроксида алюминия в количестве, равном 1/10 от массы КП, с перемешиванием при 25°С в течение 15 минут. Осаждение фибриногена, фибринектина и балластных белков проводят добавлением 32% ПЭГ-4000 до конечной концентрации 3,5%. pH доводят до 6,6 и смесь центрифугируют при 4000 об/мин при 2-4°С. Объем целевого супернатанта 8,0 л, активность целевого продукта 70140 ME (выход на стадии 97%).3. Sorption of factors of the prothrombin complex is carried out by adding 3% of the aluminum hydroxide gel to the KP in an amount equal to 1/10 of the mass of the KP, with stirring at 25 ° C for 15 minutes. The precipitation of fibrinogen, fibrinectin and ballast proteins is carried out by adding 32% PEG-4000 to a final concentration of 3.5%. The pH was adjusted to 6.6 and the mixture was centrifuged at 4000 rpm at 2-4 ° C. The volume of the target supernatant of 8.0 l, the activity of the target product 70140 ME (yield at the stage of 97%).

Эффективность сорбции факторов протромбинового комплекса и удаления примесных белков представлены на рисунке 1 (Сорбция факторов протромбинового комлекса гидоксидом алюминия) и рисунке 2 (Удаление фибриногена ПЭГ-4000), соответственно.The efficiency of sorption of factors of the prothrombin complex and removal of impurity proteins is presented in Figure 1 (Sorption of factors of the prothrombin complex with aluminum hydroxide) and Figure 2 (Removal of PEG-4000 fibrinogen), respectively.

4. Вирусную инактивацию сольвент-детергентным методом проводят добавлением 11% раствора Твин 80 до конечной концентрации 1% с последующим медленным добавлением три-n-бутилфосфата до конечной концентрации 0,3%; pH доводят до 6,8. Вирус-инактивированный полупродукт фильтруют через фильтры Millipore диаметром пор 2-8 мкм. Объем предварительно отфильтрованного раствора составляет 9,0 л, содержание на стадии целевого продукта 69300 ME (выход на стадии 99%).4. Viral inactivation by the solvent-detergent method is carried out by adding an 11% Tween 80 solution to a final concentration of 1%, followed by slow addition of tri-n-butyl phosphate to a final concentration of 0.3%; The pH was adjusted to 6.8. The virus-inactivated intermediate is filtered through Millipore filters with a pore diameter of 2-8 μm. The volume of the pre-filtered solution is 9.0 L, the content at the stage of the target product is 69300 ME (yield at the stage of 99%).

5. Хроматографическое фракционирование проводят с помощью ионообменника EMD-TMAE Fractogel, стартового, промежуточного и элюирующего буферов с концентрациями ионов натрия 130, 170 и 450 ммоль/л и проводимостью 15, 18 и 48 мСм/см. Объем элюирующего буфера 3,5 л, скорость элюции 4,7 л/час. Объем продукта 0,4 л, количество 45000 ME. Выход на стадии целевого продукта составляет 65%, активность Ф VIII в целевой фракции равна 110 МЕ/мл, а удельная специфическая активность Ф VIII повысилась от 45 до 150 МЕ/мг белка. Данные представлены на рисунке 3 (Хроматографическая очистка Ф VIII).5. Chromatographic fractionation is carried out using an EMD-TMAE Fractogel ion exchanger, start, intermediate and elution buffers with sodium ion concentrations of 130, 170 and 450 mmol / L and conductivity of 15, 18 and 48 mS / cm. The volume of the elution buffer is 3.5 l, the elution rate is 4.7 l / h. The volume of the product is 0.4 l, the amount is 45000 ME. The yield at the target product stage is 65%, the activity of Ф VIII in the target fraction is 110 IU / ml, and the specific specific activity of Ф VIII increased from 45 to 150 IU / mg of protein. The data are presented in figure 3 (Chromatographic purification f VIII).

6. Стерильную фильтрацию целевой фракции хроматографической очистки после разведения до требуемой активности и стабилизации альбумином (конечная концентрация 0,1%) проводят с помощью фильтров Millipore с диаметром пор 0,22 мкм и стерильный продукт разливают во флаконы. На выходе стадии после проведения соответствующих анализов объем целевого продукта составляет 2,2 л, суммарная активность Ф VIII - 44000 ME (98%).6. Sterile filtration of the target fraction of chromatographic purification after dilution to the desired activity and stabilization with albumin (final concentration 0.1%) is carried out using Millipore filters with a pore diameter of 0.22 μm and the sterile product is poured into vials. At the exit of the stage, after appropriate analyzes, the volume of the target product is 2.2 L, the total activity of F VIII is 44000 ME (98%).

7. Целевой продукт замораживают при -50°С и давлении, равном 1 бар, в течение 75 часов и затем лиофилизируют в условиях -20°С-+30°С при давлении 60 мкбар в течение 40,5 часа. Затем проводят термическую вирусную инактивацию при 80°С и давлении 60 мкбар в течение 72 часов. Выход целевого препарата Ф VIII равен 40000 ME. Выход на стадии 90%. Выход всего технологического процесса - 30%.7. The target product is frozen at -50 ° C and a pressure of 1 bar for 75 hours and then lyophilized under conditions of -20 ° C - + 30 ° C at a pressure of 60 μbar for 40.5 hours. Then carry out thermal viral inactivation at 80 ° C and a pressure of 60 μbar for 72 hours. The yield of the target drug F VIII is 40,000 ME. Yield 90%. The output of the entire technological process is 30%.

Пример 2.Example 2

1. 220 л Свежезамороженной плазмы доноров, прошедшей аттестацию на наличие инфекций, с активностью Ф VIII, равной 0,9 МЕ/мл (содержание основного продукта 198000 ME), размораживают в реакторе при температуре -0,5°С и выделяют криопреципитат (КП) с помощью проточной центрифуги при 18000 об/мин и 3°С. Масса КП составляет 2,2 кг, содержание целевого продукта 109470 ME (выход по целевому продукту 55,3%).1. 220 L of freshly frozen donor plasma that has been certified for infections with an activity of Ф VIII equal to 0.9 IU / ml (main product content 198000 ME), thawed in the reactor at a temperature of -0.5 ° С and cryoprecipitate is isolated (KP ) using a flow centrifuge at 18,000 rpm and 3 ° C. The mass of the KP is 2.2 kg, the content of the target product is 109470 ME (yield for the target product is 55.3%).

2. Полученный КП растворяют в водном растворе гепарина (20 МЕ/мл, очищенная вода) и солюбилизируют при 25°С. pH Растворенного и солюбилизированного КП корректируют до 6,8.2. The resulting KP is dissolved in an aqueous solution of heparin (20 IU / ml, purified water) and solubilized at 25 ° C. The pH of the dissolved and solubilized KP is adjusted to 6.8.

3. Сорбцию факторов протромбинового комлекса осуществляют добавлением к КП 3% геля гидроксида алюминия в количестве, равном 1/10 от массы КП, с перемешиванием при 25°С в течение 15 минут. Осаждение фибриногена, фибринектина и балластных белков проводят добавлением 32% ПЭГ-4000 до конечной концентрации 3,5%. pH Доводят до 6,6 и смесь центрифугируют при 4000 об/мин при 2-4°С. Содержание целевого продукта 88450 ME (выход на стадии 81%).3. Sorption of factors of the prothrombin complex is carried out by adding to the KP 3% gel of aluminum hydroxide in an amount equal to 1/10 of the mass of the KP, with stirring at 25 ° C for 15 minutes. The precipitation of fibrinogen, fibrinectin and ballast proteins is carried out by adding 32% PEG-4000 to a final concentration of 3.5%. The pH was adjusted to 6.6 and the mixture was centrifuged at 4000 rpm at 2-4 ° C. The content of the target product is 88450 ME (yield at stage 81%).

4. Вирусную инактивацию сольвент-детергентным методом проводят добавлением 11% раствора Твин 80 до конечной концентрации 1% с последующим медленным добавлением три-n-бутилфосфата до конечной концентрации 0,3%; pH доводят до 6,8. Вирус-инактивированный полупродукт фильтруют через фильтры Millipore диаметром пор 2-8 мкм. Содержание на стадии целевого продукта 87 565 ME (99%).4. Viral inactivation by the solvent-detergent method is carried out by adding an 11% Tween 80 solution to a final concentration of 1%, followed by slow addition of tri-n-butyl phosphate to a final concentration of 0.3%; The pH was adjusted to 6.8. The virus-inactivated intermediate is filtered through Millipore filters with a pore diameter of 2-8 μm. The content at the stage of the target product 87 565 ME (99%).

5. Хроматографическое фракционирование проводят с помощью ионообменника EMD-TMAE Fractogel, стартового, промежуточного и элюирующего буферов с концентрациями ионов натрия 130, 170 и 450 ммоль/л и проводимостью 15, 18 и 48,0 мСм/см. Объем элюирующего буфера 3,5 л, скорость элюции 4,7 л/час. Содержание целевого продукта 68 400 ME. Выход на стадии целевого продукта составляет 78%, удельная специфическая активность Ф VIII равна 165 МЕ/мг белка.5. Chromatographic fractionation is carried out using an EMD-TMAE Fractogel ion exchanger, start, intermediate and elution buffers with sodium ion concentrations of 130, 170 and 450 mmol / L and conductivity of 15, 18 and 48.0 mS / cm. The volume of the elution buffer is 3.5 l, the elution rate is 4.7 l / h. The content of the target product 68 400 ME. The output at the stage of the target product is 78%, the specific specific activity of f VIII is 165 IU / mg protein.

6. Стерильную фильтрацию целевой фракции хроматографической очистки после разведения до требуемой активности и стабилизации альбумином (конечная концентрация 0,1%) проводят с помощью фильтров Millipore с диаметром пор 0,22 мкм и стерильный продукт разливают во флаконы.6. Sterile filtration of the target fraction of chromatographic purification after dilution to the desired activity and stabilization with albumin (final concentration 0.1%) is carried out using Millipore filters with a pore diameter of 0.22 μm and the sterile product is poured into vials.

Содержание фактора VIII - 65830 ME, выход целевого продукта на стадии составил 96%.The content of factor VIII is 65830 ME, the yield of the target product at the stage was 96%.

7. Целевой продукт замораживают при -50°С и давлении, равном 1 бар, в течение 75 часов и затем лиофилизируют в условиях -20°С-+30°С при давлении 60 мкбар в течение 40,5 часа. Затем проводят термическую вирусную инактивацию при 80°С и давлении 60 мкбар в течение 72 часов. Выход целевого препарата Ф VIII равен 59100 ME. Выход на стадии 90%. Выход всего технологического процесса - 30%.7. The target product is frozen at -50 ° C and a pressure of 1 bar for 75 hours and then lyophilized under conditions of -20 ° C - + 30 ° C at a pressure of 60 μbar for 40.5 hours. Then carry out thermal viral inactivation at 80 ° C and a pressure of 60 μbar for 72 hours. The yield of the target drug F VIII is 59100 ME. Yield 90%. The output of the entire technological process is 30%.

Полученные антигемофильные концентраты Ф VIII были стерильными, характеризовались суммарным содержанием белка (эндогенный белок и экзогенный альбумин) 1,5-1,8 мг/мл, концентрацией ионов натрия 165-175 ммоль/л; целевой Ф VIII (после хроматографической очистки) обладал высокой специфической удельной активностью (не менее 140 МЕ/мг белка). Фармакокинетика полученного препарата Ф VIII в плазме практически не отличалась от таковой антигемофильного препарата Immunate (Baxter, США); данные представлены на рисунке 4 (Фармакокинетика полученного препарата Ф VIII и препарата Immunate).The obtained antihemophilic concentrates F VIII were sterile, characterized by a total protein content (endogenous protein and exogenous albumin) of 1.5-1.8 mg / ml, a concentration of sodium ions of 165-175 mmol / l; Target F VIII (after chromatographic purification) had a high specific specific activity (at least 140 IU / mg protein). The pharmacokinetics of the obtained preparation F VIII in the plasma practically did not differ from that of the antihemophilic preparation Immunate (Baxter, USA); the data are presented in Figure 4 (Pharmacokinetics of the resulting preparation F VIII and Immunate).

Полученный препарат Ф VIII, согласно разрешению на медицинское применение, использовали в клинике Гематологического научного центра РАМН для лечения 20 больных гемофилией А. Показаны высокая лечебная эффективность и хорошая степень восстановления полученного препарата Ф VIII.The obtained preparation F VIII, according to the permission for medical use, was used in the clinic of the Hematological Scientific Center of the Russian Academy of Medical Sciences for the treatment of 20 patients with hemophilia A. High therapeutic efficacy and a good degree of recovery of the obtained preparation F VIII are shown.

Claims (1)

Способ выделения фактора VIII из плазмы крови человека, не инфицированной по данным соответствующего анализа вирусами гепатита и ВИЧ 1/2, заключающийся в последовательных криоосаждении, растворении в водном растворе гепарина и солюбилизации криопреципитата, сорбции факторов протромбинового комплекса гидроксидом алюминия, удалении фибриногена, фибронектина и примесных белков полиэтиленгликолем-4000, вирусной инактивации с помощью сольвент-детергентов и предварительной фильтрации, анионообменной хроматографии, предпочтительно с применением EDM-ТМАЕ Fractogel, с элюцией натрий хлоридсодержащим буфером, стабилизации раствором альбумина, стерильной фильтрации на мембранных фильтрах с диаметром пор 0,22 мкм, розливе во флаконы (200-300 МЕ/флакон), лиофилизации и повторной термической вирусной инактивации, отличающийся тем, что при очистке используют водный раствор нефракционированного гепарина с концентрациями, равными 5-100 Международных (МЕ)/мл, предпочтительно 10-25 МЕ/мл, полиэтиленгликоля-4000 в конечной концентрации 3,5% и подкисление среды предпочтительно до величины pH 6,6, сильные анионообменники группы ТМАЕ, то есть новую комбинацию условий, существенно повышающую эффективность очистки и удельную специфическую активность фактора VIII. The method of isolating factor VIII from human blood plasma that is not infected according to the corresponding analysis with hepatitis and HIV 1/2 viruses, which consists in successive cryoprecipitation, dissolution of heparin in an aqueous solution and solubilization of cryoprecipitate, sorption of prothrombin complex factors with aluminum hydroxide, removal of fibrinogen, fibronectin and impurity polyethylene glycol-4000 proteins, viral inactivation using solvent detergents and preliminary filtration, anion exchange chromatography, preferably using EDM-TMAE Fractogel, with elution with sodium chloride-containing buffer, stabilization with albumin solution, sterile filtration on membrane filters with a pore diameter of 0.22 μm, filling into bottles (200-300 IU / bottle), lyophilization and repeated thermal viral inactivation, characterized in that during cleaning use an aqueous solution of unfractionated heparin with concentrations equal to 5-100 International (IU) / ml, preferably 10-25 IU / ml, polyethylene glycol-4000 at a final concentration of 3.5% and acidification of the medium, preferably to pH 6, 6, strong ani noobmenniki TMAE groups, i.e. a new combination of conditions, significantly enhancing cleaning efficiency and specific activity of the specific factor VIII.
RU2010116125/15A 2010-04-26 2010-04-26 Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma RU2445974C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010116125/15A RU2445974C2 (en) 2010-04-26 2010-04-26 Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010116125/15A RU2445974C2 (en) 2010-04-26 2010-04-26 Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2010116125A RU2010116125A (en) 2011-11-10
RU2445974C2 true RU2445974C2 (en) 2012-03-27

Family

ID=44996577

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010116125/15A RU2445974C2 (en) 2010-04-26 2010-04-26 Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2445974C2 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112028988A (en) * 2020-10-16 2020-12-04 哈尔滨派斯菲科生物制药股份有限公司 Preparation method of freeze-dried human coagulation factor VIII

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5252709A (en) * 1988-06-07 1993-10-12 Centre Regional De Transfusion Sanguine De Lille Chromatographic separation of plasma proteins
RU2055593C1 (en) * 1989-11-09 1996-03-10 Ново Нордиск А/С Method of isolation of factor viii and other proteins from plasma blood
RU2096414C1 (en) * 1992-02-01 1997-11-20 Октафарма Аг Method for isolation of highly purified complex of viii factor from willebrande factor
RU2253475C1 (en) * 2004-02-02 2005-06-10 Общество с ограниченной ответственностью "Гемоцентр" Method of preparing factor viii preparation

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5252709A (en) * 1988-06-07 1993-10-12 Centre Regional De Transfusion Sanguine De Lille Chromatographic separation of plasma proteins
RU2055593C1 (en) * 1989-11-09 1996-03-10 Ново Нордиск А/С Method of isolation of factor viii and other proteins from plasma blood
RU2096414C1 (en) * 1992-02-01 1997-11-20 Октафарма Аг Method for isolation of highly purified complex of viii factor from willebrande factor
RU2253475C1 (en) * 2004-02-02 2005-06-10 Общество с ограниченной ответственностью "Гемоцентр" Method of preparing factor viii preparation

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Ямкин А.В. и др. Способ получения и свойства препарата VIII фактора свертывания плазмы крови человека. - Сибирский мед. журнал, 2009, №2, с.17-20. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2010116125A (en) 2011-11-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR102240978B1 (en) A method of purifying therapeutic proteins
RU2603103C2 (en) Method of producing fibrinogen using strong anion exchange resin and fibrinogen-containing product
US7816495B2 (en) Processes for the preparation of fibrinogen
SK279533B6 (en) Process for preparing a highly purified standardised concentrate of human von willebrand factor with high percentage of high-molecular multimers and a concentrate prepared thereby
US9663553B2 (en) Integrated process for the production of therapeutics (human albumin, immunoglobulins, clotting factor VIII and clotting factor IX) from human plasma
NO324659B1 (en) Recovery of the von Willebrand factor by cation exchange chromatography and preparations containing such factor and its use.
ES2829923T3 (en) A novel purification process for the isolation and commercial production of recombinant tnk-tpa (tenecteplase)
ES2420535T3 (en) New process for the highly selective purification of two plasma proteins: von willebrand factor (vwf) and fibronectin (fn).
WO1998030230A1 (en) Protein-containing compositions and process for producing the same
RU2006107533A (en) METHOD FOR PRODUCING ALFA-1-ANTITRIPSIN SOLUTION
RU2445974C2 (en) Method for producing concentrated factor viii of human blood plasma
CN114787185B (en) Freezing method of blood coagulation factor VIII intermediate
CN116322920A (en) Purification of FVIII from plasma using silica adsorption
RU2559576C1 (en) Method of obtaining virus-safe complete prothrombin complex
US10188965B2 (en) Hydrophobic charge induction chromatographic depletion of a protein from a solution
RU2487725C1 (en) Method for preparing concentrated immunoglobulin preparation for subcutaneous application
RU2556804C2 (en) Method of obtaining fibrinogen concentrate
RU2253475C1 (en) Method of preparing factor viii preparation
RU2326689C1 (en) Method of human blood coagulation viii factor concentrate production and related product

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140427

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20150227