RU2209078C1 - COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS - Google Patents

COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS Download PDF

Info

Publication number
RU2209078C1
RU2209078C1 RU2002105203A RU2002105203A RU2209078C1 RU 2209078 C1 RU2209078 C1 RU 2209078C1 RU 2002105203 A RU2002105203 A RU 2002105203A RU 2002105203 A RU2002105203 A RU 2002105203A RU 2209078 C1 RU2209078 C1 RU 2209078C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tnf
cisplatin
cells
concentration
gmdp
Prior art date
Application number
RU2002105203A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
В.А. Несмеянов
Т.И. Валякина
Е.Э. Петрова
Т.М. Андронова
Original Assignee
Институт биоорганической химии им. М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биоорганической химии им. М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН filed Critical Институт биоорганической химии им. М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН
Priority to RU2002105203A priority Critical patent/RU2209078C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2209078C1 publication Critical patent/RU2209078C1/en

Links

Landscapes

  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: composition has cytostatic agent and TNF-α. Preparations intercollating into DNA is taken as the cytostatic agent and biologically active mouramylpeptide is added. Mass proportions of the cytostatic agent, muramylpeptide and TNF -α is 1:0.06 - 300:0.00001 - 0.1. EFFECT: enhanced effectiveness of treatment.

Description

Изобретение относится к медицине и ветеринарии и может быть использовано при терапии опухолей у людей и животных. The invention relates to medicine and veterinary medicine and can be used in the treatment of tumors in humans and animals.

Известно широкое применение в терапии опухолей цитотоксических препаратов, таких как цисплатин, доксорубицин. Widespread use in the treatment of tumors of cytotoxic drugs, such as cisplatin, doxorubicin.

Цисплатин - цис-Платина(II)-диамин, дихлорид - синтетический противоопухолевый препарат широкого спектра действия [Машковский М.Д. Лекарственные средства. - М.: Медицина, 1993, с. 523]. Cisplatin - cis-Platinum (II) -diamine, dichloride - a synthetic antitumor drug with a wide spectrum of action [Mashkovsky M.D. Medicines - M.: Medicine, 1993, p. 523].

Доксорубицин - противоопухолевый антибиотик антрациклинового ряда. Обладает способностью к блокированию матричной активности ДНК [Машковский М.Д. Лекарственные средства. - М.: Медицина, 1993 с. 534-535]. Doxorubicin is an antitumor antibiotic of the anthracycline series. It has the ability to block the matrix activity of DNA [Mashkovsky M.D. Medicines - M .: Medicine, 1993 p. 534-535].

Известно также применение для терапии опухолей антибиотика актиномицина-D-акриноциклин-ди(треонин-D-валинил-пролинил-саркозил-N-метил-валинил)-лактон [Машковский М. Д. Лекарственные средства. - М.: Медицина, 1993, с. 532-533]. Also known is the use for the treatment of tumors of the antibiotic actinomycin-D-acrinocycline-di (threonine-D-valinyl-proinyl-sarcosyl-N-methyl-valinyl) -lactone [Mashkovsky M. D. Drugs. - M.: Medicine, 1993, p. 532-533].

В последние годы делаются активные попытки использовать в терапии опухолей природные цитотоксические агенты, в частности фактор некроза опухолей-α (ФНО-α). ФНО-α - белок, имеющий молекулярную массу 17,1 кДa, является цитотоксическим фактором активированных макрофагов и нормальных киллеров. Природный и рекомбинантный ФНО-α показали хорошие результаты при испытаниях в качестве противоопухолевого агента на животных [Agier et al., 1988, Факторы некроза опухолей. Справочник по цитолитическим лимфоцитам и компонентам: Эффекторы иммунной системы, Е.R. Podak, ed., CRC Press Inc. Boca Raton, Fla. , p. 105]. Они вызывали некроз ряда экспериментальных опухолей на сингенных мышах и продемонстрировали высокую эффективность на человеческих опухолях, перевитых бестимусным мышам [Asher A. 1987, Studies on the anti-tumor efficacy of systemically administered recombinant tumor necrosis factor against several murine tumors in vivo. J. Immunol. 138(3):963-74.; Kuroda K. et al., 2000, Human tumor necrosis factor-alpha mutant RGD-V29 (F4614) shows potent antitumor activity and reduced toxicity against human tumor xenografted nude mice. Cancer Lett 2000 Oct 16;159(1):33-41]. Были предприняты попытки использовать ФНО-α для воздействия на опухоли в клинике [Terlikowski S.J. 2001, Tumour necrosis factor and cancer treatment: a historical review and perspectives. Rocz Akad Med Bialymst. , 46:5-18; Lejeune F.J., et al., 2001, Isolated limb perfusion: the European experience. Surg Oncol Clin N Am, 10(4): 821-32; Nashan D. , Luger Т.А. 2001, Cytokines: current status and prospects in the treatment of skin tumors. Hautarzt; 52(8):691-6]. In recent years, active attempts have been made to use natural cytotoxic agents in the treatment of tumors, in particular, tumor necrosis factor-α (TNF-α). TNF-α - a protein having a molecular weight of 17.1 kDa, is a cytotoxic factor of activated macrophages and normal killers. Natural and recombinant TNF-α have shown good results when tested as an antitumor agent in animals [Agier et al., 1988, Tumor necrosis factors. Handbook of Cytolytic Lymphocytes and Components: Immune System Effects, E.R. Podak, ed., CRC Press Inc. Boca Raton, Fla. , p. 105]. They caused necrosis of a number of experimental tumors on syngeneic mice and have been shown to be highly effective on human tumors transplanted into athymic mice [Asher A. 1987, Studies on the anti-tumor efficacy of systemically administered recombinant tumor necrosis factor against several murine tumors in vivo. J. Immunol. 138 (3): 963-74 .; Kuroda K. et al., 2000, Human tumor necrosis factor-alpha mutant RGD-V29 (F4614) shows potent antitumor activity and reduced toxicity against human tumor xenografted nude mice. Cancer Lett 2000 Oct 16; 159 (1): 33-41]. Attempts have been made to use TNF-α for treatment of tumors in a clinic [Terlikowski S.J. 2001, Tumour necrosis factor and cancer treatment: a historical review and perspectives. Rocz Akad Med Bialymst. 46: 5-18; Lejeune F.J., et al., 2001, Isolated limb perfusion: the European experience. Surg Oncol Clin N Am, 10 (4): 821-32; Nashan D., Luger T.A. 2001, Cytokines: current status and prospects in the treatment of skin tumors. Hautarzt; 52 (8): 691-6].

Применение перечисленных выше цитотоксических препаратов осложняется побочными эффектами. Для подавления роста опухолевых клеток требуются высокие дозы этих агентов, токсичные для нормальных клеток и органов. Например, цисплатин негативно влияет на почки. Доксорубицин обладает кумулятивной кардиотоксичностью. При применении ФНО-α у пациентов наблюдается гипотензия, отек легких, внутрисосудистые тромбы и другие тяжелые побочные эффекты. Другая проблема - приобретение опухолевыми клетками резистентности к цитотоксическим агентам. The use of the above cytotoxic drugs is complicated by side effects. To suppress the growth of tumor cells, high doses of these agents, toxic to normal cells and organs, are required. For example, cisplatin negatively affects the kidneys. Doxorubicin has cumulative cardiotoxicity. When using TNF-α, patients have hypotension, pulmonary edema, intravascular thrombi and other serious side effects. Another problem is the acquisition by tumor cells of resistance to cytotoxic agents.

К иммуномодуляторам относятся цитокины иммунной системы, пептиды тимуса и костного мозга, низкомолекулярные биорегуляторы бактериального происхождения. В число последних входят мурамилпептиды [Ivanov V. et al., 1987, Structure, design, and synthesis immunoactive peptides. Pure & Appl. Chem. 59, 317-324]. Immunomodulators include cytokines of the immune system, peptides of the thymus and bone marrow, low molecular weight bioregulators of bacterial origin. The latter include muramyl peptides [Ivanov V. et al., 1987, Structure, design, and synthesis immunoactive peptides. Pure & Appl. Chem. 59, 317-324].

Известен состав для терапии опухолей, содержащий мурамилпептид и цитостатик - цисплатин или доксорубицин [MacEwen E.G., Kurzman, Helfand S., Vail D., London C., Kisseberth W., Rosenthal R.C., Fox L.E., Keller E.T., Obradovich J., et al. Current studies of liposome murarmyl tripeptide (COP 19835A lipid) therapy for metastasis in spontaneous tumors: a progress review. (1994) J. Drug Target, 2(5), 391-6]. Лечение остеосарком у собак проводится с помощью внутривенного раздельного и последовательного введения мурамилпептида(N-ацетилмурамоил-аланил-D-изоглутаминил-аланил-2-(1', 2'дипальмитоил)-sn-глицеро-3'-фосфорил-этиламида) и цисплатина: курс многоразового введения цисплатина завершается курсом многоразового введения мурамилпептида. При лечении гемангиом у собак применяется многоразовое внутривенное введение доксорубицина с циклофосфамидом параллельно с многоразовым внутривенным введением мурамилпептида. В обоих описанных выше случаях удается добиться значительного увеличения срока жизни животных, существенно превышающего аналогичный показатель при химиотерапии и монотерапии остеосарком и гемангиом у собак с применением одного мурамилпептица. Недостатком данных составов для лечения является прежде всего необходимость многоразового введения препаратов. Лечение существенно осложняется обязательным предварительным оперативным удалением основной опухоли. A known composition for the treatment of tumors containing muramyl peptide and cytostatic cisplatin or doxorubicin [MacEwen EG, Kurzman, Helfand S., Vail D., London C., Kisseberth W., Rosenthal RC, Fox LE, Keller ET, Obradovich J., et al. Current studies of liposome murarmyl tripeptide (COP 19835A lipid) therapy for metastasis in spontaneous tumors: a progress review. (1994) J. Drug Target, 2 (5), 391-6]. Osteosarcomas in dogs are treated by the intravenous separate and sequential administration of muramyl peptide (N-acetylmuramoyl-alanyl-D-isoglutaminyl-alanyl-2- (1 ', 2'-dipalmitoyl) -sn-glycero-3'-phosphoryl-ethylamide) and cisplatin : the course of repeated administration of cisplatin ends with the course of repeated administration of muramyl peptide. In the treatment of hemangiomas in dogs, repeated intravenous administration of doxorubicin with cyclophosphamide is used in parallel with repeated intravenous administration of muramyl peptide. In both cases described above, it is possible to achieve a significant increase in the life span of animals, significantly exceeding that in chemotherapy and monotherapy with osteosarcoma and hemangiomas in dogs using one muramyl peptide. The disadvantage of these formulations for treatment is primarily the need for repeated administration of drugs. Treatment is significantly complicated by the mandatory preliminary surgical removal of the underlying tumor.

Известен состав, содержащий ФНО-α (16000 ед/мышь) в комбинации с химиотерапевтическими агентами: доксорубицином (1-10 мг/кг), 5-фторурацилом (3-100 мг/кг) циклофосфамидом (50-200 мг/кг), для терапии опухолей Meth A, трансплантированных в сингенных мышей. Наиболее эффективные комбинации индуцируют полную регрессию опухоли. [Regenass U., Muller M., Curschellas E., Matter A. Anti-tumor effects of tumor necrosis factor in combination with chemotherapeutic agents. Int J Cancer. 1987;39(2):266-73]. К недостаткам данного состава относится внутривенная инфузия вводимой композиции. Данный способ введения обеспечивает максимальное проявление цитотоксичности при высоких дозах химиотерапевтических агентов 5 мг/кг доксорубицина, 100 мг/кг цитоксана и 100 мг/кг фторурацила. A known composition containing TNF-α (16,000 units / mouse) in combination with chemotherapeutic agents: doxorubicin (1-10 mg / kg), 5-fluorouracil (3-100 mg / kg) cyclophosphamide (50-200 mg / kg), for the treatment of Meth A tumors transplanted in syngeneic mice. The most effective combinations induce complete tumor regression. [Regenass U., Muller M., Curschellas E., Matter A. Anti-tumor effects of tumor necrosis factor in combination with chemotherapeutic agents. Int J Cancer. 1987; 39 (2): 266-73]. The disadvantages of this composition include intravenous infusion of the administered composition. This method of administration provides the maximum manifestation of cytotoxicity at high doses of chemotherapeutic agents 5 mg / kg of doxorubicin, 100 mg / kg of cytoxane and 100 mg / kg of fluorouracil.

Известен состав для лечения онкологических больных, содержащий актиномицин D совместно с ФНО-α [Seibel N.L., Dinndorf P.A., Bauer M., Sondel P.M. , Hammond G.D., Reaman G.H. Phase I study of tumor necrosis factor-alpha and actinomycin D in pediatric patients with cancer: a Children's Cancer Group study. (1994), J. Immunother Emphasis Tumor Immunol, 16(2), 125-31, и Sella A. , Aggarwal B.B., Kilboum R.G., Bui .CA., Zukiwski A.A., Logothetis C.J. Phase I study of tumor necrosis factor plus actinomycin D in patients with androgen-independent prostate cancer. (1995) Cancer Biother, 10(3), 225-35]. Однако широкое применение актиномицина D в онкологии ограничивается тяжелыми побочными реакциями у пациентов. A known composition for the treatment of cancer patients, containing actinomycin D together with TNF-α [Seibel N.L., Dinndorf P.A., Bauer M., Sondel P.M. , Hammond G. D., Reaman G. H. Phase I study of tumor necrosis factor-alpha and actinomycin D in pediatric patients with cancer: a Children's Cancer Group study. (1994), J. Immunother Emphasis Tumor Immunol, 16 (2), 125-31, and Sella A., Aggarwal B. B., Kilboum R. G., Bui. CA., Zukiwski A. A., Logothetis C. J. Phase I study of tumor necrosis factor plus actinomycin D in patients with androgen-independent prostate cancer. (1995) Cancer Biother, 10 (3), 225-35]. However, the widespread use of actinomycin D in oncology is limited to severe adverse reactions in patients.

Известен наиболее близкий к заявленному состав, содержащий цисплатин и ФHО-α, который может быть успешно использован для уничтожения клеток пассируемых линий OVCAR-3 и SK-OV-3 аденокарциномы яичника человека, резистентных к цитотоксическому действию цисплатины и ФНО-α, используемых по отдельности [Mutch D., Powell С., Kao M., Collins J. In vitro analysis of the anticancer potential of tumor necrosis factor in combination with cisplatin. Gynecol Oncol. 1989 Sep.; 34(3):328-33]. Known closest to the claimed composition containing cisplatin and PHO-α, which can be successfully used to destroy cells of the passivated lines OVCAR-3 and SK-OV-3 of human ovarian adenocarcinoma, resistant to the cytotoxic effect of cisplatin and TNF-α, used individually [Mutch D., Powell C., Kao M., Collins J. In vitro analysis of the anticancer potential of tumor necrosis factor in combination with cisplatin. Gynecol Oncol. 1989 Sep .; 34 (3): 328-33].

К недостаткам известного состава относится ограниченный цитолиз опухолевых клеток в культуре, максимальный уровень которого не превышает 56%. The disadvantages of the known composition include the limited cytolysis of tumor cells in culture, the maximum level of which does not exceed 56%.

Изобретение решает задачу повышения эффективности состава для уничтожения ФНО-α-чувствительных опухолевых клеток и снижения токсичности препарата. The invention solves the problem of increasing the effectiveness of the composition for the destruction of TNF-α-sensitive tumor cells and reduce the toxicity of the drug.

Поставленная задача решается за счет того, что состав для уничтожения ФНО-α-чувствительных опухолевых клеток, содержащий цитостатик и ФНО-α, в качестве цитостатика содержит интерколирующие в ДНК препараты и дополнительно биологически активный мурамилпептид при массовом соотношении мурамилпептида, цитостатика и ФНО-α 1:0,06-300:0,00001-0,1. The problem is solved due to the fact that the composition for the destruction of TNF-α-sensitive tumor cells containing cytostatic and TNF-α, as a cytostatic agent contains intercalating in DNA preparations and additionally biologically active muramyl peptide with a mass ratio of muramyl peptide, cytostatic and TNF-α 1 : 0.06-300: 0.00001-0.1.

Заявляемый состав, предназначенный для уничтожения ФНО-α-чувствительных клеток, содержит цитостатик из группы интерколирующих в ДНК препаратов, взаимодействующих с хроматином, в частности цисплатин, доксорубицин или актиномицин D, цитокин ФНО-α и мурамилпептид: ГМДП (N-ацетилглюкозаминил-β1-->4-N-ацетилмурамоил-аланил-D-изоглутамин), ГМДП-К (N-ацетилглюкозаминил-β1-->4-N-ацетилмурамоил-аланил-D-изоглутаминовая кислота) или другой иммунологически активный мурамилпептид. The inventive composition, intended for the destruction of TNF-α-sensitive cells, contains a cytostatic agent from the group of intercalating DNA preparations interacting with chromatin, in particular cisplatin, doxorubicin or actinomycin D, TNF-α cytokine and muramyl peptide: GMDP (N-acetylglucosaminyl-β1- -> 4-N-acetylmuramoyl-alanyl-D-isoglutamine), GMDP-K (N-acetylglucosaminyl-β1 -> 4-N-acetylmuramoyl-alanyl-D-isoglutamic acid) or another immunologically active muramyl peptide.

Преимущество предлагаемой тройной комбинации препаратов (цитостатик, ФНО-α и мурамилпептид) состоит в использовании реагентов, взаимоусиливающих противоопухолевое действие каждого из составляющих композицию. Это позволяет снизить эффективные концентрации реагентов. Например, в комбинации (цисплатин, ФНО-α и мурамилпептид) для достижения 100% выживаемости мышей линии Ваlb/с с асцитной карциномой Эрлиха используются в 4 раза более низкие дозы цисплатина и в 5-20 раз более низкие дозы ФНО-α, чем приводимые в литературе при монотерапии перевиваемых опухолей у мышей цисплатином (Landrito J. E. , Yoshiga К., Sakurai К., Takada К. Effects of intralesional injection of cisplatin dissolved in urografin and lipiodol on Ehrlich ascites tumor and normal tissues of CD-1 mice. (1994) Cancer Chemother Pharmacol; 34(4): 323-30 и Krug H., Taubert G., Lenschow S. Proliferation kinetics of Ehrlich ascites tumors during cisplatin administration. (1990) Acta Histochem Suppl; 39:61-65) и ФНО-α (Obrador E, Navarro J, Mompo J, Asensi M, Pellicer JA, Estrela JM. Glutathione and the rate of cellular proliferation determine tumour cell sensitivity to tumour necrosis factor in vivo. (1997) Biochem J; 325 (Pt 1), 183-189 и Krosnick J., Mule J., Mctosh J., Rosenberg S. Augmentation of antitumor efficacy by the combination of recombinant TNF and chemotherapeutic agents in vivo. (1989) Cancer Res., 49, 3729-3733). Несомненным преимуществом является однократное введение препаратов. Следует отметить, что в предлагаемой противоопухолевой комбинации используют доступный отечественный препарат ГМДП и широко применяемые в онкологической практике цитостатики цисплатин и доксорубицин. The advantage of the proposed triple combination of drugs (cytostatic, TNF-α and muramyl peptide) is the use of reagents that mutually reinforce the antitumor effect of each of the components of the composition. This reduces the effective concentration of reagents. For example, in combination (cisplatin, TNF-α and muramyl peptide), 4 times lower doses of cisplatin and 5-20 times lower doses of TNF-α are used to achieve 100% survival of Balb / c mice with Ehrlich ascites carcinoma in the literature on monotherapy of transplantable tumors in mice with cisplatin (Landrito JE, Yoshiga K., Sakurai K., Takada K. Effects of intralesional injection of cisplatin dissolved in urografin and lipiodol on Ehrlich ascites tumor and normal tissues of CD-1 mice. (1994 ) Cancer Chemother Pharmacol; 34 (4): 323-30 and Krug H., Taubert G., Lenschow S. Proliferation kinetics of Ehrlich ascites tumors during cisplatin administration. (1990) Acta Histochem Suppl; 39: 61-65) and TNF -α (Obrador E, Navarro J, Mompo J, Asensi M, Pellicer JA, Estrela JM. Glutathione and the rate of cellular proliferation determine tumor cell sensitivity to tumor necrosis factor in vivo. (1997) Biochem J; 325 (Pt 1), 183-189 and Krosnick J ., Mule J., Mctosh J., Rosenberg S. Augmentation of antitumor efficacy by the combination of recombinant TNF and chemotherapeutic agents in vivo. (1989) Cancer Res., 49, 3729-3733). The undoubted advantage is a single injection of drugs. It should be noted that in the proposed antitumor combination, the available domestic drug GMDP and the cytostatics cisplatin and doxorubicin widely used in oncological practice are used.

В описываемом составе используют препарат рекомбинантного ФНО-α человека, (лаборатория химии генов ИБХ им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН) с активностью 4х107 ед. на 1 мг белка, ГМДП (фирма "Пептек"), Россия, цисплатин, доксорубицин и актиномицин D-(фирма "Sigma", США), ЗФР-0,1 М фосфатный буфер, рН 7,4, содержащий 0,15 М NaСl), приготовленный из коммерческих солей марки хч на бидистиллированной воде.In the described composition, a recombinant human TNF-α preparation is used (laboratory of gene chemistry of the IBCh named after M.M.Shemyakin and Yu.A. Ovchinnikov RAS) with an activity of 4x10 7 units. per 1 mg of protein, GMDP (Peptek company), Russia, cisplatin, doxorubicin and actinomycin D- (Sigma company, USA), PBS-0.1 M phosphate buffer, pH 7.4, containing 0.15 M NaCl), prepared from commercial salts of the grade hc in bidistilled water.

Изобретение иллюстрируют примеры. The invention is illustrated by examples.

Пример 1. Example 1

Навеску препарата цисплатина 1 мг растворяют в 1 мл физиологического раствора на мешалке при комнатной температуре и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Полученный раствор цисплатина разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 9 мкг/мл. Раствор рекомбинантного ФНО-α (0,6 мг/мл) в ЗФР 0,1% бычьим сывороточным альбумином разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 3,75х10-3 мкг/мл. Навеску ГМДП (1 мг) растворяют в 1 мл физиологического раствора или ЗФР и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. ГМДП разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 30 мкг/мл. Смешивают приготовленные препараты цисплатина, ФНО-α и ГМДП в равных объемах и по 100 мкл добавляют в чашки Петри с опухолевыми клетками, культивируемыми в 900 мкл среды RPMI-1640 (фирмы "Flow Laboratories", Шотландия), содержащей 10% FCS (эмбриональная телячья сыворотка фирмы "Gibco BRL"), создавая тем самым концентрацию ГМДП 5 мкг/мл, цисплатина 0,3 мкг/мл и ФНО-α 0,125х10-3 мкг/мл, (массовое соотношение 1:0,06:0,000025).A sample of cisplatin 1 mg is dissolved in 1 ml of physiological saline on a stirrer at room temperature and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. The resulting cisplatin solution was diluted with sterile saline to a concentration of 9 μg / ml. A solution of recombinant TNF-α (0.6 mg / ml) in PBS with 0.1% bovine serum albumin is diluted with sterile saline to a concentration of 3.75 x 10 -3 μg / ml. A portion of GMDP (1 mg) is dissolved in 1 ml of physiological saline or PBS and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. GMDP is diluted with sterile saline to a concentration of 30 μg / ml. The prepared preparations of cisplatin, TNF-α and GMDP are mixed in equal volumes and 100 μl are added to Petri dishes with tumor cells cultured in 900 μl of RPMI-1640 medium (Flow Laboratories, Scotland) containing 10% FCS (fetal calf Gibco BRL serum), thereby creating a concentration of GMDP of 5 μg / ml, cisplatin 0.3 μg / ml and TNF-α 0.125x10 -3 μg / ml, (mass ratio 1: 0.06: 0.000025) .

Для тестирования цитолиза клеток линии L929 под влиянием исследуемого состава препаратов клетки, культивируемые во флаконах в атмосфере 5% СO2 при 37oС, снимают раствором трипсина (0,5%) и помещают в центрифужные стаканы объемом 50 мл, содержащие 30 мл среды RPMI-1640 с FCS. После центрифугирования при 300g клеточный осадок суспендируют в культуральной среде с 10% FCS. Отбирают из образца аликвоту, пользуясь камерой Горяева, определяют концентрацию клеток, доводят клеточную суспензию до плотности 500 кл/мл и помещают в чашки с диаметром 30 мм. Через 24 часа культивирования добавляют тестируемые препараты. Инкубацию продолжают в течение 7 дней в атмосфере 5% СО2 при 37oС. После чего среду отбирают пастеровской пипеткой, прикрепленные к пластику клетки промывают 3 раза ЗФР (0,1 М фосфатный буфер, рН 7,4, содержащий 0,15 М NaCl). Отмытые клетки фиксируют, заливая их 0,5 мл смеси метанол:уксусная кислота (объемное отношение 3:1) и оставляя на 20 мин при комнатной температуре. Затем фиксирующий раствор отбирают пастеровской пипеткой, добавляют 0,5 мл 0,5% раствор кристаллического фиолетового красителя (коммерческий краситель "Sigma") в 20% метаноле и инкубируют при комнатной температуре в течение 20 мин. Окрашенные клетки отмывают от избытка красителя дистиллированной водой, процедуру отмывания повторяют 7 раз. Чашки высушивают и производят подсчет окрашенных колоний визуально в проходящем свете. Процент мертвых клеток определяют по формуле

Figure 00000001

где А - число колоний в контроле (в чашке, в которую вместо препаратов вносят ЗФР)
В - число колоний в образце, обработанном препаратами.To test the cytolysis of L929 cells under the influence of the studied composition of the preparations, cells cultured in vials in an atmosphere of 5% CO 2 at 37 ° C are removed with trypsin solution (0.5%) and placed in 50 ml centrifuge glasses containing 30 ml of RPMI medium -1640 with FCS. After centrifugation at 300g, the cell pellet was suspended in a culture medium with 10% FCS. An aliquot was taken from the sample using a Goryaev camera, the concentration of cells was determined, the cell suspension was adjusted to a density of 500 cells / ml and placed in plates with a diameter of 30 mm. After 24 hours of cultivation, test preparations are added. Incubation is continued for 7 days in an atmosphere of 5% CO 2 at 37 ° C. After which the medium is removed using a Pasteur pipette, the cells attached to the plastic are washed 3 times with PBS (0.1 M phosphate buffer, pH 7.4, containing 0.15 M NaCl). The washed cells are fixed by pouring them with 0.5 ml of a mixture of methanol: acetic acid (volume ratio 3: 1) and leaving for 20 min at room temperature. Then the fixation solution was taken with a Pasteur pipette, 0.5 ml of a 0.5% solution of crystalline violet dye (commercial Sigma dye) in 20% methanol was added and incubated at room temperature for 20 minutes. Stained cells are washed from excess dye with distilled water, the washing procedure is repeated 7 times. The cups are dried and counted stained colonies visually in transmitted light. The percentage of dead cells is determined by the formula
Figure 00000001

where A is the number of colonies in the control (in the cup, in which instead of drugs add PBS)
B is the number of colonies in the sample treated with the preparations.

Ц=87±5%
Эффект комбинации препаратов сравнивают с рядом контрольных образцов клеточных культуры, инкубированных с:
- физиологическим раствором или ЗФР Ц=0%;
- одним цисплатином в концентрации 0,3 мкг/мл Ц=45±2%;
- одним ФНО-α в концентрации 0,125 х10-3 мкг/мл Ц=25±2%;
- одним ГМДП в концентрации 5 мкг/мл Ц=2±2%;
- комбинацией цисплатина в концентрации 0,3 мкг/мл с ФНО-α в концентрации 0,125 х 10-3 мкг/мл Ц=64±3%;
- комбинацией цисплатина в концентрации 0,3 мкг/мл с ГМДП в концентрации 5 мкг/мл Ц=67±3%;
- комбинацией ФНО-α в концентрации 0,125 х 10-3 мкг/мл с ГМДП в концентрации 5 мкг/мл Ц=44±2%.
C = 87 ± 5%
The effect of the combination of drugs is compared with a number of control samples of cell cultures incubated with:
- saline or PBS C = 0%;
- one cisplatin at a concentration of 0.3 μg / ml C = 45 ± 2%;
- one TNF-α at a concentration of 0.125 x 10 -3 μg / ml C = 25 ± 2%;
- one GMDP in a concentration of 5 μg / ml C = 2 ± 2%;
- a combination of cisplatin at a concentration of 0.3 μg / ml with TNF-α at a concentration of 0.125 x 10 -3 μg / ml C = 64 ± 3%;
- a combination of cisplatin at a concentration of 0.3 μg / ml with GMDP at a concentration of 5 μg / ml C = 67 ± 3%;
- a combination of TNF-α at a concentration of 0.125 x 10 -3 μg / ml with GMDP at a concentration of 5 μg / ml C = 44 ± 2%.

Пример 2. Example 2

Состав готовят по примеру 1, но используют растворы ГМДП и ФНО-α с концентрациями 30 мкг/мл и 0,375х
10-3 мкг/мл соответственно. Смешивают в равных объемах ГМДП, цисплатин и ФНО-α, добавляют в культуральную среду и получают раствор, содержащий 1 мкг/мл ГМДП, 0,3 мкг/мл цисплатина и 0,0125х10-3 мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1:0,3:0,0000125). Испытания проводят по примеру 1. Ц=72%.
The composition is prepared according to example 1, but using solutions of GMDP and TNF-α with concentrations of 30 μg / ml and 0.375x
10 -3 μg / ml, respectively. Mix in equal volumes of GMDP, cisplatin and TNF-α, add to the culture medium and get a solution containing 1 μg / ml GMDP, 0.3 μg / ml cisplatin and 0.0125x10 -3 μg / ml TNF-α (mass ratio 1 : 0.3: 0.0000125). The tests are carried out as in example 1. C = 72%.

Пример 3. Example 3

Состав готовят по примеру 1, но используют растворы ГМДП с концентрацией 3 мкг/мл, цисплатина с концентрацией 900 мкг/мл, ФНО-α с концентрацией 0,0375 мкг/мл и получают рабочий раствор, содержащий 0,1 мкг/мл ГМДП, 30 мкг/мл цисплатина и 1,25х10-3мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1:300: 0,0125). Испытания проводят по примеру 1. Ц=100%.The composition is prepared according to example 1, but using solutions of GMDP with a concentration of 3 μg / ml, cisplatin with a concentration of 900 μg / ml, TNF-α with a concentration of 0.0375 μg / ml and get a working solution containing 0.1 μg / ml of GMDP. 30 μg / ml cisplatin and 1.25x10 -3 μg / ml TNF-α (mass ratio 1: 300: 0.0125). The tests are carried out as in example 1. C = 100%.

Пример 4. Example 4

Состав готовят по примеру 1, но в качестве цитостатика используют доксорубицин. Препарат доксорубицина 1 мг растворяют в 1 мл физиологического раствора на мешалке при комнатной температуре и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Полученный раствор доксорубицина разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 30 мкг/м. Раствор рекомбинантного ФНО-α (0,6 мг/мл) разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 7,5х10-3мкг/мл. Навеску ГМДП (1 мг) растворяют в 1 мл физиологического раствора или ЗФР и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. ГМДП разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 30 мкг/мл. Смешивают приготовленные препараты доксорубицина, ФНО-α и ГМДП в равных объемах и по 20 мкл добавляют в лунки 96-луночного планшета с опухолевыми клетками, культивируемыми в 180 мкл среды RPMI-1640, содержащей 10% FCS, создавая тем самым концентрацию 1 мкг/мл ГМДП, 1 мкг/мл докорубицина и 0,25х10-3 мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1:1:0,00025).The composition is prepared according to example 1, but doxorubicin is used as a cytostatic agent. A 1 mg doxorubicin preparation was dissolved in 1 ml of physiological saline on a stirrer at room temperature and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. The resulting doxorubicin solution was diluted with sterile saline to a concentration of 30 μg / m. A solution of recombinant TNF-α (0.6 mg / ml) is diluted with sterile saline to a concentration of 7.5 x 10 -3 μg / ml. A portion of GMDP (1 mg) is dissolved in 1 ml of physiological saline or PBS and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. GMDP is diluted with sterile saline to a concentration of 30 μg / ml. The prepared preparations of doxorubicin, TNF-α and GMDP are mixed in equal volumes and 20 μl are added to the wells of a 96-well plate with tumor cells cultured in 180 μl of RPMI-1640 medium containing 10% FCS, thereby creating a concentration of 1 μg / ml GMDP, 1 μg / ml of docorubicin and 0.25x10 -3 μg / ml TNF-α (mass ratio 1: 1: 0,00025).

Оценку уровня цитолиза производят в тесте с кристаллическим фиолетовым: клетки (2х104 кл./лунку) в 100 мкл RPMI-1640, содержащей 10% FCS, помещают в 96-луночный планшет. После 48 часовой инкубации клеточных культур с составом препаратов в атмосфере 5% СО2 при 37oС среду убирают, клетки промывают 3 раза ЗФР, фиксируют в смеси метанол/уксусная кислота 3/1 в течение 20 мин и окрашивают 0,5% раствором кристаллического фиолетового в 20% метаноле в течение 20 мин. Затем ячейки планшета отмывают 7 раз водой и высушивают. Краситель, связавшийся с клетками, растворяют в 1% SDS и уровень его поглощения при 540 нм измеряют на спектрофотометре Titertek Multiskan MCC/340. Процент цитотоксичности определяют по формуле

Figure 00000002

где А - показатель экстинкции в контроле (в образце, в который вместо препаратов вносили ЗФР),
В - показатель экстинкции в образце, обработанном препаратами.Assessment of the level of cytolysis is performed in a test with crystal violet: cells (2x10 4 cells / well) in 100 μl of RPMI-1640 containing 10% FCS are placed in a 96-well plate. After 48 hours of incubation of cell cultures with the composition of the preparations in an atmosphere of 5% CO 2 at 37 ° C, the medium is removed, the cells are washed 3 times with PBS, fixed in a mixture of methanol / acetic acid 3/1 for 20 minutes and stained with a 0.5% crystalline solution purple in 20% methanol for 20 minutes. Then the tablet cells are washed 7 times with water and dried. The dye that bound to the cells was dissolved in 1% SDS and its absorbance at 540 nm was measured on a Titertek Multiskan MCC / 340 spectrophotometer. The percentage of cytotoxicity is determined by the formula
Figure 00000002

where A is the extinction index in the control (in the sample, in which instead of drugs were added PBS),
B is the extinction index in the sample treated with the preparations.

Ц=90±3%. C = 90 ± 3%.

Пример 5. Example 5

Состав готовят по примеру 1, но в качестве цитостатика используют актиномицин D. Препарат актиномицина D 1 мг растворяют в 1 мл физиологического раствора на мешалке при комнатной температуре и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Полученный раствор актиномицина D разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 30 мкг/мл. Смешивают растворы актиномицина D (30 мкг/мл), ФНО-α и ГМДП в равных объемах и по 20 мкл добавляют в лунки 96-луночного планшета с опухолевыми клетками, культивируемыми в 180 мкл среды RPMI-1640 с 10% FCS, и получают раствор, содержащий 0,1 мкг/мл ГМДП, 1 мкг/мл, актиномицина D и 0,01 мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1:10:0,1). Испытания проводят по примеру 4. Ц=100%
Пример 6.
The composition is prepared according to example 1, but actinomycin D is used as a cytostatic agent. Actinomycin D preparation 1 mg is dissolved in 1 ml of physiological saline on a stirrer at room temperature and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. The resulting actinomycin D solution was diluted with sterile saline to a concentration of 30 μg / ml. Solutions of actinomycin D (30 μg / ml), TNF-α and GMDP are mixed in equal volumes and 20 μl are added to the wells of a 96-well plate with tumor cells cultured in 180 μl of RPMI-1640 medium with 10% FCS and a solution is obtained containing 0.1 μg / ml GMDP, 1 μg / ml, actinomycin D and 0.01 μg / ml TNF-α (mass ratio 1: 10: 0.1). The tests are carried out as in example 4. C = 100%
Example 6

Состав готовят по примеру 1, но используют в качестве мурамилпептида ГМДП-К в концентрации 300 мкг/мл, цисплатин берут в концентрации 90 мкг/мл, ФНО-α - 0,375 мкг/мл и получают раствор, содержащий 10 мкг/мл ГМДП-К, 3 мкг/мл цисплатина и 0,0125 мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1:0,3: 0,00125). Испытания проводят по примеру 4. Ц=100%. The composition is prepared according to example 1, but is used as muramyl peptide GMDP-K at a concentration of 300 μg / ml, cisplatin is taken at a concentration of 90 μg / ml, TNF-α - 0.375 μg / ml and a solution containing 10 μg / ml of GMDP-K is obtained 3 μg / ml cisplatin and 0.0125 μg / ml TNF-α (weight ratio 1: 0.3: 0.00125). The tests are carried out as in example 4. C = 100%.

Пример 7. Example 7

Навеску препарата цисплатина 1 мг растворяют в 1 мл физиологического раствора на магнитной мешалке при комнатной температуре и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Цисплатин разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 30 мкг/мл. Раствор рекомбинантного ФНО-α (0,6 мг/мл) разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 37,5 х10-3 мкг/мл. Навеску ГМДП (1 мг) растворяют в 1 мл физиологического раствора и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. ГМДП разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 30 мкг/мл. Смешивают приготовленные препараты цисплатина, ФНО-α и ГМДП в равных объемах. Добавляют по 20 мкл смеси в лунки 96-луночного планшета с опухолевыми клетками линии MCF7, культивируемыми в 180 мкл RPMI-1640 с 10% FCS, создавая тем самым концентрацию ГМДП 1 мкг/мл, цисплатина 1 мкг/м и ФНО-α 0,0125 мкг/мл (массовое соотношение 1:1:0,0125).A sample of cisplatin 1 mg is dissolved in 1 ml of physiological saline on a magnetic stirrer at room temperature and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. Cisplatin is diluted with sterile saline to a concentration of 30 μg / ml. A solution of recombinant TNF-α (0.6 mg / ml) is diluted with sterile saline to a concentration of 37.5 x 10 -3 μg / ml. A portion of GMDP (1 mg) is dissolved in 1 ml of physiological saline and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. GMDP is diluted with sterile saline to a concentration of 30 μg / ml. The prepared preparations of cisplatin, TNF-α and GMDP are mixed in equal volumes. Add 20 μl of the mixture to the wells of a 96-well plate with MCF7 tumor cells cultured in 180 μl of RPMI-1640 with 10% FCS, thereby creating a concentration of GMDP of 1 μg / ml, cisplatin 1 μg / m and TNF-α 0, 0125 μg / ml (mass ratio 1: 1: 0.0125).

Тестирование влияния комбинации препаратов на жизнеспособность опухолевых клеток клетки линии аденокарциномы молочной железы человека MCF7, культивируемых во флаконах в атмосфере 5% СO2 при 37oС. Клетки снимают с поверхности флаконов раствором трипсина (0,5%) и помещают в центрифужные стаканы объемом 50 мл, содержащие 30 мл среды RPMI-1640 с 10% FCS. После центрифугирования при 300g клеточный осадок суспендируют в культуральной среде RPMI-1640 с 10% FCS. Отбирают из образца аликвоту, пользуясь камерой Горяева, определяют концентрацию клеток, доводят клеточную суспензию до плотности 1х105 кл/мл и помещают в планшеты. Через 24 часа культивирования добавляют тестируемые препараты. Клетки инкубируют с комбинацией препаратов в течение 120 часов в атмосфере 5% СО2 при 37oС. Затем определяют жизнеспособность клеток в опытных и контрольных культурах.Testing the effect of a combination of drugs on the viability of tumor cells of the MCF7 human breast adenocarcinoma cell line cultured in vials in an atmosphere of 5% CO 2 at 37 ° C. Cells are removed from the surface of the vials with trypsin solution (0.5%) and placed in 50 centrifuge glasses ml containing 30 ml of RPMI-1640 medium with 10% FCS. After centrifugation at 300g, the cell pellet was suspended in RPMI-1640 culture medium with 10% FCS. An aliquot was taken from the sample using a Goryaev camera, the cell concentration was determined, the cell suspension was adjusted to a density of 1x10 5 cells / ml and placed on tablets. After 24 hours of cultivation, test preparations are added. Cells are incubated with a combination of drugs for 120 hours in an atmosphere of 5% CO 2 at 37 o C. Then determine the viability of cells in experimental and control cultures.

Жизнеспособность клеток оценивают колориметрическим методом по степени восстановления красителя МТТ - [3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-2,5-дифенилтетразолиумбромид] - окрашенного субстрата для митохондриальных дегидрогеназ ("Sigma" США) - до формазона. Для этого за 2,5 часа до окончания культивирования в каждую лунку добавляют 20 мкл краски МТТ с концентрацией 2,5 мг/мл. По окончании инкубации планшеты центрифугируют при 300 g в течение 10 мин. Надосадочную жидкость удаляют из лунок, осадок растворяют в 100 мкл диметилсульфоксида при непрерывном встряхивании в течение 15 мин. Оптическую плотность содержимого лунок измеряют на приборе Titertek Multiskan MCC/340 при длине волны 540 нм. Процент цитотоксичности определяют по формуле

Figure 00000003

где А - показатель экстинкции в контроле (в образце, в который вместо препаратов вносили ЗФР), "
В - показатель экстинкции в образце, обработанном препаратами.Cell viability is evaluated by colorimetric method according to the degree of restoration of MTT dye - [3- (4,5-dimethylthiazol-2-yl) -2,5-diphenyltetrazoliumbromide] - stained substrate for mitochondrial dehydrogenases (Sigma USA) - to formazone. For this, 2.5 μl of MTT paint with a concentration of 2.5 mg / ml is added to each well 2.5 hours before the end of the cultivation. After incubation, the plates are centrifuged at 300 g for 10 minutes. The supernatant is removed from the wells, the precipitate is dissolved in 100 μl of dimethyl sulfoxide with continuous shaking for 15 minutes. The optical density of the contents of the wells was measured on a Titertek Multiskan MCC / 340 instrument at a wavelength of 540 nm. The percentage of cytotoxicity is determined by the formula
Figure 00000003

where A is the extinction index in the control (in the sample into which PBS was added instead of drugs), "
B is the extinction index in the sample treated with the preparations.

Ц=69±3%. C = 69 ± 3%.

Эффект комбинации препаратов сравнивают с рядом контрольных образцов: клеточные культуры инкубированные с
- физиологическим раствором или ЗФР. Ц=0%;
- одним цисплатином в концентрации 1 мкг/мл. Ц=28±1%;
- одним ФНО-α в концентрации 0,0125 мкг/мл. Ц=42±2%;
- одним ГМДП в концентрации 1 мкг/мл. Ц=2±1%;
- комбинацией цисплатина в концентрации 1 мкг/мл с ФНО-α в концентрации 0,0125 мкг/мл. Ц=61±3%;
- комбинацией цисплатина в концентрации 0,3 мкг/мл с ГМДП в концентрации 1 мкг/мл. Ц=32±2%;
- комбинацией ФНО-α в концентрации 0,0125 мкг/мл с ГМДП в концентрации 1 мкг/мл Ц=60±3%.
The effect of the combination of drugs is compared with a number of control samples: cell cultures incubated with
- saline or PBS. C = 0%;
- one cisplatin at a concentration of 1 μg / ml. C = 28 ± 1%;
- one TNF-α at a concentration of 0.0125 μg / ml. C = 42 ± 2%;
- one GMDP in a concentration of 1 μg / ml. C = 2 ± 1%;
- a combination of cisplatin at a concentration of 1 μg / ml with TNF-α at a concentration of 0.0125 μg / ml. C = 61 ± 3%;
- a combination of cisplatin at a concentration of 0.3 μg / ml with GMDP at a concentration of 1 μg / ml. C = 32 ± 2%;
- a combination of TNF-α at a concentration of 0.0125 μg / ml with GMDP at a concentration of 1 μg / ml C = 60 ± 3%.

Пример 8. Example 8

Состав готовят по примеру 7, но в качестве цитостатика используют доксорубицин в концентрации 120 мкг/мл и получают раствор, содержащий 1 мкг/мл ГМДП, 4,0 мкг/мл доксорубицина и 0,0125 мкг/мл ФНО-

Figure 00000004
(массовое соотношение 1:4:0,0125). Испытания проводят по примеру 7. Ц=82±3%.The composition is prepared according to example 7, but doxorubicin at a concentration of 120 μg / ml is used as a cytostatic agent and a solution containing 1 μg / ml of GMDP, 4.0 μg / ml of doxorubicin and 0.0125 μg / ml of TNF-α is obtained
Figure 00000004
(mass ratio 1: 4: 0.0125). The tests are carried out as in example 7. C = 82 ± 3%.

Пример 9. Example 9

Состав готовят по примеру 7, но используют цисплатин в концентрации 90 мкг/мл и получают раствор, содержащий 1 мкг/мл ГМДП, 3,0 мкг/мл цисплатина, 0,0125 мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1:3:0,0125). Испытания проводят на клетках линии гистиоцитарной лимфомы человека U937 как на линии MCF7 со следующими изменениями. Для разнесения клеток по 96-луночному планшету клетки линии U937 из флаконов собирают пипетированием их в культуральной среде. Время инкубации клеток с комбинациями препаратов составляет 72 часа. Ц= 90±3%. The composition is prepared according to example 7, but using cisplatin at a concentration of 90 μg / ml and get a solution containing 1 μg / ml GMDP, 3.0 μg / ml cisplatin, 0.0125 μg / ml TNF-α (mass ratio 1: 3: 0.0125). The tests are carried out on cells of the histiocytic lymphoma cell line U937 as on the MCF7 line with the following changes. To spread cells in a 96-well plate, U937 cells from vials are collected by pipetting them in culture medium. The incubation time of cells with drug combinations is 72 hours. C = 90 ± 3%.

Пример 10. Example 10

Состав, полученный по примеру 4, добавляют по 20 мкл смеси в лунки 96-луночного планшета с опухолевыми клетками, взятыми от онкологических больных, Экссудаты из плевральной полости онкологических больных получают из ОНЦ РАМН, Москва. Клетки экссудата центрифугируют при 300g и осадок ресуспендируют в среде RPMI-1640 в объеме в 10 раз меньше первоначального. Полученную суспензию (по 7 мл) осторожно наслаивают на лимфоцит разделяющую среду (фиколл/диатризоат с плотностью 1,077 г/мл), разлитую по 4 мл в 15-ти мл центрифужные пробирки. Затем суспензию центрифугируют 25 мин при 600g при комнатной температуре. Опухолевые клетки и лейкоциты локализуются в интерфазе градиента. Интерфазу отбирают пастеровской пипеткой. Клетки отмывают дважды, центрифугируя при 300g 10 мин в культуральной среде без FCS. Затем клетки суспендируют в среде RPMI-1640 с 10% FCS при плотности 1х105 клеток/мл и помещают по 180 мкл суспензии в ячейки 96-луночного планшета. Время инкубации клеток с составом препаратов составляет 72 часа.The composition obtained in example 4, add 20 μl of the mixture to the wells of a 96-well plate with tumor cells taken from cancer patients. Exudates from the pleural cavity of cancer patients are obtained from ONC RAMS, Moscow. The exudate cells are centrifuged at 300 g and the pellet is resuspended in RPMI-1640 medium in a volume 10 times smaller than the original. The resulting suspension (7 ml each) is carefully layered on a lymphocyte separating medium (ficoll / diatrizoate with a density of 1.077 g / ml), poured into 4 ml in 15 ml centrifuge tubes. Then the suspension is centrifuged for 25 min at 600g at room temperature. Tumor cells and white blood cells are localized in the interphase of the gradient. The interphase is taken with a Pasteur pipette. Cells are washed twice by centrifugation at 300g for 10 min in culture medium without FCS. Then the cells are suspended in RPMI-1640 medium with 10% FCS at a density of 1x10 5 cells / ml and 180 μl of the suspension are placed in the cells of a 96-well plate. The incubation time of the cells with the composition of the preparations is 72 hours.

Оценку уровня цитолиза проводят в тесте с трипановым синим: клетки снимают резиновым скребком, промывают 2 раза средой без сыворотки. Снятые клетки и смывы объединяют в один образец. Из образца отбирают аликвоту 50 мкл, добавляют к ней 10 мкл 0,4% раствора трипанового синего и сразу помещают в камеру Горяева для подсчета живых и мертвых клеток (мертвые клетки в отличие от живых включали краску). При этом считают не менее 100 опухолевых клеток. Процент цитотоксичности определяют по формуле

Figure 00000005

где А - число мертвых клеток в образце, "
В - общее число клеток.The assessment of the level of cytolysis is carried out in a test with trypan blue: the cells are removed with a rubber scraper, washed 2 times with medium without serum. The removed cells and swabs are combined into one sample. An aliquot of 50 μl was taken from the sample, 10 μl of a 0.4% trypan blue solution was added to it and immediately placed in a Goryaev chamber to count living and dead cells (dead cells, unlike living cells, included dye). At the same time, at least 100 tumor cells are considered. The percentage of cytotoxicity is determined by the formula
Figure 00000005

where A is the number of dead cells in the sample, "
B is the total number of cells.

Ц=100%. C = 100%.

Пример 11. Example 11

Навеску препарата цисплатина 1 мг растворяют в 1 мл физиологического раствора на мешалке при комнатной температуре и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Цисплатин разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 200 мкг/мл. Раствор рекомбинантного ФНО-α (0,6 мг/мл) разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 0,625 мкг/мл. Навеску ГМДП (1 мг) растворяют в 1 мл физиологическим раствора и стерилизуют, используя мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. ГМДП разводят стерильным физиологическим раствором до концентрации 750 мкг/мл. Смешивают приготовленные растворы цисплатина, ФНО-α и ГМДП в равных объемах и вводят полученный препарат по 0,6 мл в мышь внутрибрюшинно. Таким образом, в каждую особь с асцитной карциномой Эрлиха, имплантированной внутрибрюшинно мышам линии Ваlb/с, вводят состав, включающий 41,7 мкг/мл ГМДП, 66,7 мкг/мл цисплатина и 0,210 мкг/мл ФНО-α (массовое соотношение 1: 1,6: 0,0050). Изменяя конечный объем композиции препаратов от 0,04 до 4 мл, пропорционально изменяют концентрацию вводимых агентов, сохраняя их массовое соотношение. Доза препаратов составляет 25 мкг/мышь ГМДП (6,25 мг/м2), 0,125 мкг/мышь ФНО-α (0,031 мкг/м2) и 40 мкг/мышь цисплатина (10 мг/м2). Группа мышей состоит из 10 особей. Оценивают среднюю продолжительность жизни и выживаемость. Средняя продолжительность жизни определяют как сумму продолжительности жизни в днях всех умерших в группе животных, деленную на количество этих животных. Выживаемость определяют по формуле

Figure 00000006

где А - число живых мышей через 7 мес. после перевивания им опухолей,
В - первоначальное число мышей в группе (10 особей).A sample of cisplatin 1 mg is dissolved in 1 ml of physiological saline on a stirrer at room temperature and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. Cisplatin is diluted with sterile saline to a concentration of 200 μg / ml. A solution of recombinant TNF-α (0.6 mg / ml) is diluted with sterile saline to a concentration of 0.625 μg / ml. A portion of GMDP (1 mg) is dissolved in 1 ml of physiological saline and sterilized using a membrane filter with a pore diameter of 0.2 μm. GMDP is diluted with sterile saline to a concentration of 750 μg / ml. The prepared solutions of cisplatin, TNF-α and GMDP are mixed in equal volumes and the resulting preparation of 0.6 ml is injected intraperitoneally into the mouse. Thus, in each specimen with Ehrlich ascites carcinoma implanted intraperitoneally to Balb / c mice, a composition comprising 41.7 μg / ml GMDP, 66.7 μg / ml cisplatin and 0.210 μg / ml TNF-α (mass ratio 1 : 1.6: 0.0050). By changing the final volume of the composition of the preparations from 0.04 to 4 ml, the concentration of the introduced agents is proportionally changed, while maintaining their mass ratio. Drug dose is 25 ug / mouse GMDP (6.25 mg / m 2), 0.125 .mu.g / mouse of TNF-α (0,031 g / m 2) and 40 ug / mouse of cisplatin (10 mg / m 2). A group of mice consists of 10 individuals. Estimated average life expectancy and survival. Life expectancy is defined as the sum of life expectancy in days of all deceased in a group of animals divided by the number of these animals. Survival is determined by the formula
Figure 00000006

where A is the number of live mice after 7 months. after transplanting tumors
In - the initial number of mice in the group (10 individuals).

В группе мышей, в которой проводилась описанная терапия, выживаемость составила 100%. In the group of mice in which the described therapy was carried out, the survival rate was 100%.

Эффект комбинации препаратов, оцениваемый выживаемости мышей и продолжительности жизни, сравнивают с аналогичными параметрами животных контрольных групп, каждая из которых состоит из 10 особей с имплантированными клетками асцита карциномы Эрлиха. Контрольные группы состоят из опухоленосителей, которым вводили следующие препараты:
- физиологический раствор - у всех мышей развивается асцит и они погибают. Средняя продолжительность жизни составляет 32 дня.
The effect of the combination of drugs, evaluated by mouse survival and longevity, is compared with the same parameters of the animals of the control groups, each of which consists of 10 individuals with implanted Ehrlich carcinoma ascites cells. Control groups consist of tumor carriers that were given the following drugs:
- saline solution - all mice develop ascites and they die. Life expectancy is 32 days.

- цисплатт в дозе 40 мкг/мышь - выживаемость мышей составляет 30%. - cisplatt at a dose of 40 μg / mouse - the survival rate of mice is 30%.

- ФНО-α в дозе 0,125 мкг/мышь - у всех мышей развивается асцит и они погибают. Средняя продолжительность жизни мышей составляет 37 дней
- ГМДП в дозе 25 мкг/мышь - выживаемость 20%.
- TNF-α at a dose of 0.125 μg / mouse - all mice develop ascites and they die. The average life expectancy of mice is 37 days
- GMDP at a dose of 25 μg / mouse - survival rate of 20%.

- комбинация цисплатина в дозе 40 мкг/мышь с ФНО-α в дозе 0,125 мкг/мышь - выживаемость 80%. - a combination of cisplatin at a dose of 40 μg / mouse with TNF-α at a dose of 0.125 μg / mouse - 80% survival rate.

- комбинация цисплатина в дозе 40 мкг/мышь с ГМДП в дозе 25 мкг/мышь - выживаемость 80%. - a combination of cisplatin at a dose of 40 μg / mouse with GMDP at a dose of 25 μg / mouse - 80% survival rate.

- комбинация ФНО-α в дозе 0,125 мкг/мышь с ГМДП в дозе 25 мкг/мышь - выживаемость 30%. - a combination of TNF-α at a dose of 0.125 μg / mouse with GMDP at a dose of 25 μg / mouse - survival rate of 30%.

Следует отметить, что в группе мышей, которым не имплантировали опухолевые клетки, но вводили комбинацию препаратов, выживаемость 100%. It should be noted that in the group of mice that did not implant tumor cells, but were administered a combination of drugs, the survival rate is 100%.

Claims (1)

Состав для уничтожения ФНО-α-чувствительных опухолевых клеток, содержащий цитостатик и ФНО-α, отличающийся тем, что в качестве цитостатика состав содержит интерколирующие в ДНК препараты и дополнительно биологически активный мурамилпептид при массовом соотношении, мурамилпептида, цитостатика и ФНО-α 1:0,06 - 300:0,00001-0,1. Composition for killing TNF-α-sensitive tumor cells containing cytostatic and TNF-α, characterized in that the composition contains intercalating drugs in DNA and additionally biologically active muramyl peptide in a weight ratio of muramyl peptide, cytostatic and TNF-α 1: 0 06-300: 0.00001-0.1.
RU2002105203A 2002-02-28 2002-02-28 COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS RU2209078C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002105203A RU2209078C1 (en) 2002-02-28 2002-02-28 COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002105203A RU2209078C1 (en) 2002-02-28 2002-02-28 COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2209078C1 true RU2209078C1 (en) 2003-07-27

Family

ID=29211584

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002105203A RU2209078C1 (en) 2002-02-28 2002-02-28 COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2209078C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2571551C1 (en) * 2015-04-16 2015-12-20 Закрытое акционерное общество "ПЕПТЕК" Specific combined therapy of malignant tumours with cytostatic agent and its modifying agent

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MUTCH D. et al. Gynecol. Oncol. 1989, Sep, 34(3), p.328-33. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2571551C1 (en) * 2015-04-16 2015-12-20 Закрытое акционерное общество "ПЕПТЕК" Specific combined therapy of malignant tumours with cytostatic agent and its modifying agent
WO2016167682A1 (en) * 2015-04-16 2016-10-20 Закрытое акционерное общество "ПЕПТЕК" Targeted combined therapy for malignant tumours using a cytostatic drug and a modifier thereof
EA031099B1 (en) * 2015-04-16 2018-11-30 Акционерное Общество "Пептек" Specific combined therapy of malignant tumours with a cytostatic and a modifier thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11692172B2 (en) Formulation comprising extracellular vesicles, method for producing the same, and uses thereof
Kohler et al. Platelets as a source of fibroblast growth-promoting activity
CN114404571B (en) Engineering medicine carrying cell membrane vesicle loaded with chemotherapeutic medicine and overexpressed by TIGIT, and preparation method and application thereof
CN101316609A (en) Loading of cells with antigens by electroporation
CN108289942A (en) With the cell inoculation vaccine of immune-separation of production immunomodulator
Pancook et al. Eradication of established hepatic human neuroblastoma metastases in mice with severe combined immunodeficiency by antibody-targeted interleukin-2
ES2290390T3 (en) CONDITIONING ENVIRONMENT AND DIFUNDIBLE BIOLOGICAL PRODUCT PRODUCED INCUBATING TRAPPED CELLS.
Miura et al. Efficacy of slow-releasing anticancer drug delivery systems on transplantable osteosarcomas in rats
CN114469953A (en) Antitumor drug composition with synergistic effect, nano preparation, preparation method and application thereof
Zhang et al. Programmable DNA hydrogel assisting microcrystal formulations for sustained Locoregional drug delivery in surgical residual tumor lesions and lymph node metastasis
AU712197B2 (en) Cancer therapy using lymphotoxin
RU2209078C1 (en) COMPOSITION FOR KILLING TNF-α-SENSITIVE TUMOR CELLS
JP3501801B2 (en) Use of recombinant colony stimulating factor-1
CN116650673A (en) Cell membrane coated medicine fat granule and its preparation method and application
CN116474114A (en) Molecular-loaded targeting drug polymer vesicle and preparation method and application thereof
AU758856B2 (en) Compositions containing muscle-derived active agents
CN110876734A (en) Formulations comprising extracellular vesicles, methods for preparing the same, and uses thereof
CN111298116B (en) Polypeptide drug-loaded temperature-sensitive liposome and preparation method and application thereof
CN104974236A (en) Scorpion venom polypeptide B4, and separation and purification method and application thereof
Ataullakhanov et al. Pharmacokinetics of doxorubicin in patients with lymphoproliferative disorders after infusion of doxorubicin-loaded erythrocytes
CA1139219A (en) Medicinal preparation for treating carcinomas and process of producing the preparation
Li et al. A cross-linked macropore hydrogel based on M1 macrophage lysate and alginate regulates tumor-associated macrophages for the treatment of melanoma
CN114908054B (en) Cell membrane vesicle and preparation method and application thereof
CN110898066A (en) Pharmaceutical composition, liposome containing pharmaceutical composition and application
CN117159725B (en) Method for promoting crystallization of small molecule drug to achieve slow release effect through DNA hydrogel

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20110301