PL226695B1 - Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori - Google Patents

Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori

Info

Publication number
PL226695B1
PL226695B1 PL380103A PL38010306A PL226695B1 PL 226695 B1 PL226695 B1 PL 226695B1 PL 380103 A PL380103 A PL 380103A PL 38010306 A PL38010306 A PL 38010306A PL 226695 B1 PL226695 B1 PL 226695B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
pylori
alpha
ketoglutarate
bacteria
mice
Prior art date
Application number
PL380103A
Other languages
English (en)
Other versions
PL380103A1 (pl
Inventor
Danuta Kruszewska
Original Assignee
Danuta Kruszewska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Danuta Kruszewska filed Critical Danuta Kruszewska
Priority to PL380103A priority Critical patent/PL226695B1/pl
Priority to PL07460015T priority patent/PL1917959T3/pl
Priority to US12/452,485 priority patent/US20100124537A1/en
Priority to DK07460015.6T priority patent/DK1917959T3/da
Priority to AT07460015T priority patent/ATE495738T1/de
Priority to EP07460015A priority patent/EP1917959B1/en
Priority to ES07460015T priority patent/ES2360142T3/es
Priority to DE602007012036T priority patent/DE602007012036D1/de
Priority to SI200730571T priority patent/SI1917959T1/sl
Publication of PL380103A1 publication Critical patent/PL380103A1/pl
Priority to HR20110268T priority patent/HRP20110268T1/hr
Priority to IL233342A priority patent/IL233342A/en
Publication of PL226695B1 publication Critical patent/PL226695B1/pl

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/185—Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
    • A61K31/19—Carboxylic acids, e.g. valproic acid
    • A61K31/194—Carboxylic acids, e.g. valproic acid having two or more carboxyl groups, e.g. succinic, maleic or phthalic acid
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K45/00—Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
    • A61K45/06—Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0087—Galenical forms not covered by A61K9/02 - A61K9/7023
    • A61K9/0095—Drinks; Beverages; Syrups; Compositions for reconstitution thereof, e.g. powders or tablets to be dispersed in a glass of water; Veterinary drenches
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/04—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for ulcers, gastritis or reflux esophagitis, e.g. antacids, inhibitors of acid secretion, mucosal protectants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P13/00—Drugs for disorders of the urinary system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00—Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents

Description

Przedmiotem wynalazku jest środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori.
Hormony żołądkowo-jelitowe - a w wśród nich rodzina peptydów gastryny (gastryna, cholecystokinina - CCK), regulują funkcje przewodu pokarmowego (Nakamura E, Hagen SJ. Role of glutaminę and arginase in protection against ammonia-induced cell death in gastric epithelial cells. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2002; 283: 1264-275). Wymienione peptydy charakteryzuje strukturalna identyczność aminokwasów zlokalizowanych w końcu C peptydów, a umiejscowienie reszty tyrozylowej determinuje ich aktywność albo stymuluje wydzielanie soku żołądkowego (gastryna) albo stymuluje opróżnianie pęcherzyka żółciowego i sekrecję enzymów trzustkowych (np. CCK). Wiadomo jest również, że hormony z grupy gastryny działają troficznie na układ pokarmowy (de Oca J, Bettonica C, Cuadrado S, Vallet J, Martin E, Garcia A, Montanes T, Jaurrieta E. Effect of oral supplementation of ornithine-alpha-ketoglutarate on the intestinal barrier after orthotopic small bowel transplantation. Transplantation. 1997; 63: 636-639, Voland P, Weeks DL, Marcus EA, Prinz C, Sachs G, Scott D. Interactions among the seven Helicobacter pylori proteins encoded by the urease gene cluster. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2003; 284: 96-106).
Zauważono, że podczas zakażenia H. pylori rozwija się stan zapalny i w pierwotnym jego stadium, któremu towarzyszy powstawanie wrzodów żołądka i dwunastnicy zmniejsza się wydzielanie somatostatyny oraz rozwija się hypergastrynemia, co z kolei prowadzi do zwiększonego wydzielania kwasu solnego (Weeks DL, Eskandari S, Scott DR, Sachs G. A H+-gated urea channel: the link between Helicobacter pylori urease and gastric colonization. Science. 2000; 287: 482-485).
Alfa-ketoglutaran (AKG) jest jedną z soli alfa-ketokwasów obok szczawiooctanu i pirogronianu, która odgrywa podstawową rolę w cyklu kwasu cytrynowego. W wyniku odtwarzających się reakcji dochodzi do syntezy kwasów tłuszczowych, steroli, cholesterolu (z udziałem cytrynianu), porfiryn, hemu, chlorofilu (czynność bursztynylo-CoA), glutaminianu, aminokwasów, zasad nukleotydowych (aktywność AKG). W komórkach prokariotycznych i eukariotycznych alfa-ketoglutaran (AKG) bierze nie tylko udział w biosyntezie, ale też i w degradacji aminokwasów.
Powstające w wyniku rozkładu aminokwasów jony amonowe częściowo biorą udział w biosyntezie związków azotowych, a ich nadmiar po przekształceniu w mocznik zostaje usuwany poza organizm. Enzymy związane z przemianami alfa-ketoglutaranu (AKG) znajdują się również w komórkach prokariotycznych, gdzie uczestniczą w procesie wzrostu bakterii. Zauważono, że inhibitor pompy protonowej lansoprazol i jego pochodne hamują oddychanie H. pylori przez to, że wiążąc się z endogennymi substratami takimi jak pirogronian i alfa-ketoglutaran (AKG) obniżają poziom ATP. Hamowanie wzrostu bakterii nasila się w tych warunkach w środowisku o wysokim stężeniu tlenu (Nagata K, Sone N, Tamura T. Inhibitory activities of lansoprazole against respiration in Helicobacter pylori. Antimicrob Agents Chemother. 2001; 45: 1522-1527).
Występowanie szczepów H. pylori metronidazolo-wrażliwych i opornych jest związane z aktywnością enzymów komórkowych. W komórkach metronidazolo-opornych oksydoreduktaza alfaketoglutaranu pozostaje nieaktywna i przez to cykl Krebsa, warunkujący wzrost drobnoustrojów, ulega zachwianiu. Bakterie metronidazolo-oporne nie giną jednak aktywując kompensujące szlaki metaboliczne. Komórki H. pylori cechuje metabolizm oddechowy drobnoustrojów mikroaerofilnych, w pełni zależnych od środowiska o zmniejszonej zawartości tlenu (< 21%). Przeżycie w warunkach niemal beztlenowych wymaga włączenia szlaków metabolicznych obecnych u bakterii rosnących beztlenowo, gdzie np. enzymy biorące udział w utlenianiu pirogronianu są odmienne (oksydoreduktaza/dehydrogenaza). Cykl kwasów trikarboksylowych H. pylori wyróżnia aktywność syntazy cytrynianowej, akonitazy, dehydrogenazy cytrynianowej, reduktazy fumaranu, fumarazy, oksydazy alfaketoglutaranu, dehydrogenazy jabłczanowej, syntazy jabłczanowej. W komórce nie występują natomiast takie enzymy jak dehydrogenaza alfa-ketoglutaranu, syntetaza bursztynylo-CoA, dehydrogenaza CoA. Z tego więc wynika, że bursztynylo-CoA nie jest aktywny, a alternatywny szlak generowany przez transferazę CoA może być podstawowym źródłem energii komórki. Jak wykazano, transferaza CoA jest unikalna dla H. pylori i nie występuje w metabolizmie C. jejuni.
Wydaje się, że cykl Krebsa H. pylori przebiega niecyklicznie w sposób rozgałęziony, charakterystyczny dla szlaków metabolicznych bakterii beztlenowych, bezpośrednio ukierunkowanych do produkcji
PL 226 695 B1 bursztynianu, kiedy procesy przebiegają w warunkach redukcyjnych kwasów dikarboksylowych lub do produkcji alfa-ketoglutaranu (AKG) w warunkach utleniających (Hoffman PS, Goodwin A, Johnsen J, Magee K, Veldhuyzen van Zanten SJ. Metabolic activities of metronidazole-sensitive and -resistant strains of Helicobacter pylori:. repression of pyruvate oxidoreductase and expression of isocitrate lyase activity correlate with resistance. J Bacteriol. 1996; 178: 4822-4829, Pitson SM, Mendz GL, Srinivasan S, Hazell SL. The tricarboxylic acid cycle of Helicobacterpylori. Eur J Biochem. 1999; 260: 258-267).
Dotychczas alfa-ketoglutaran wykorzystywano jako istotny czynnik wzrostu wielu drobnoustrojów zaznaczając, że nie jest on niezbędny w hodowli H. pylori. Te bakterie mogą rosnąć w różnych pożywkach płynnych z wyłączeniem buforowanego ekstraktu drożdży z alfa-ketoglutaranem, nawet jeśli hodowla została wzbogacona takimi dodatkami jak surowica płodowa (Shahamat M, Mai UE,
Paszko-Kolva C, Yamamoto H, Colwell RR. Evaluation of liquid media for growth of Helicobacter pylori. J Clin Microbiol. 1991; 29: 2835-2837).
Z drugiej strony komórki H. pylori w warunkach in vitro inkubowane w temp. 4°C, bez dostępu do źródeł węgla i azotu wykazują aktywność oksydacyjną w obecności bursztynianu, alfa-ketoglutaranu i asparaginianu (przez ponad 200 dni). Z tego wynika, że komórki, które nie poddają się hodowli są nadal biochemicznie aktywne (Gribbon LT, Barer MR. Oxidative metabolism in noncultur able Helicobacter pylori and Vibrio vulnificus cells studied by substrate-enhanced tetrazolium reduction and digital image Processing. Appl Environ Microbiol. 1995; 61: 3379-3384).
Obecność alfa-ketoglutaranu lub pirogronianu w podłożu wzrostowym jest niezbędna dla Aquicella lusitana i A. siphonis. Te związki nie są źródłem węgla czy energii lecz zabezpieczają bakteriom oddychanie komórkowe (Santos P, Pinhal I, Rainey FA, Empadinhas N, Costa J, Fields B, Benson R, Verissimo A, Da Costa MS. Gamma-proteobacteria Aquicella lusitana gen. nov., sp. nov., and Aquicella siphonis sp. nov. infect protozoa and require activated charcoal for growth in laboratory media. Appl Environ Microbiol. 2003; 69: 6533-6540). Podobnie w hodowli szczepów laboratoryjnych i klinicznych Porphyromonas gingivalis alfa-ketoglutaran w zakresie stężenia od 5 do 50 mM pozostaje akceptorem elektronów (Milner P, Batten JE, Curtis MA. Development of a simple chemically defined medium for Porphyromonas gingivalis: requirement for alpha-ketoglutarate. FEMS Microbiol Lett. 1996; 140: 125-130).
Obecność ketokwasów jako składnika podłoża dla bakterii z rodzaju Legionella skraca okres logarytmicznego wzrostu drobnoustrojów, wzmaga tempo ich wzrostu i prowadzi do maksymalnej wydajności masy bakteryjnej. Ketokwasy zmieniają metabolizm komórki chroniąc niezbędną dla bakterii, a pochodzącą ze środowiska cysteinę, usuwają toksyczny nadtlenek wodoru, co wynika z ich funkcji „wymiatacza”. W przeciwieństwie do wymogów innych drobnoustrojów alfa-ketoglutaran i pirogronian mogą być zastępowane w podłożu dla Legionella spp. takimi związkami jak bursztynian i szczawiooctan (Pine L, Hoffman PS, Malcolm GB, Benson RF, Franzus MJ. Role of keto acids and reducedoxygen-scavenging enzymes in the growth of Legionella species. J Clin Microbiol. 1986; 23: 33-42).
Obecnie nieoczekiwanie stwierdzono, że alfa-ketoglutaran hamuje proces kolonizacji H. pylori w układzie pokarmowym ssaków.
Wynalazek dotyczy środka do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, cechującego się tym, że jako substancję czynną zawiera sole kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych.
Środek ten, korzystnie zawiera sól sodową lub wapniową kwasu alfa-ketoglutarowego.
Wynalazkiem objęte jest również zastosowanie soli kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori.
Wynalazek obejmuje także zastosowanie soli kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori.
Środek można podawać ze znanymi nośnikami i z zaróbkami, które są dopuszczalne farmaceutycznie i kompatybilne ze składnikiem aktywnym. Odpowiednimi zaróbkami są, na przykład, woda, sól fizjologiczna, dekstroza, glicerol, etanol lub podobne oraz ich kombinacje. Ponadto, jeśli jest to pożądane, środek może zawierać substancje pomocnicze, takie jak, na przykład, czynniki zwilżające lub emulgujące, czynniki modulujące pH, czynniki buforujące.
Środek można przygotować w postaci stałej, płynnej, liofilizowanej lub wysuszonej w inny sposób.
Na załączonych rysunkach fig. 1 przedstawia zależność między α-ketoglutaranem (AKG) a stopniem kolonizacji Helicobacter pylori oraz funkcjami przewodu pokarmowego myszy (n=28).
PL 226 695 B1
Fig. 2 przedstawia zależność między α-ketoglutaranem (AKG) a stopniem kolonizacji Helicobacter pylori u myszy (n=48).
Myszom podawano zawiesiny oznaczone w następujący sposób,: H. pylori: #, alfa-ketoglutaran: ♦; zbuforowana sól fizjologiczna (PBS): ·. Nazwy szczepów, gęstości i objętości inoculum (H. pylori) oraz stężenia i dawki: alfa-ketoglutaranu, PBS umieszczono w tekście. Zawiesiny bakteryjne (H. pylori) i pozostałe preparaty (alfa-ketoglutaran, PBS) podawano myszom dożołądkowo (ig).
Fig. 3 przedstawia zależność między podawaniem α-ketoglutaranu (AKG) a grubością błony śluzowej żołądka.
PBS - grupa II (n=6); HP - H. pylori (109 cfu/ml) (n=6); HP+AKG - (109 cfu/ml + 30 mM) (n=7). Każda z kolumn przedstawia grubość błony śluzowej w μm (średnia ± SD; n=6-7).
Fig. 4 przedstawia zależność między podawaniem α-ketoglutaranu (AKG) a liczbą komórek 2 produkujących gastrynę mierzonych w mm2.
PBS - grupa II (n=6); HP - H. pylori (109 cfu/ml) (n=6); HP+AKG - (109 cfu/ml + 30 mM) (n=7).
2
Każdy słupek pokazuje liczbę komórek produkujących gastrynę w 1 mm2 (średnia ± SD; n=6-7). Litery umieszczone nad każdym ze słupków wskazują na różnice przy P < 0,05.
Fig. 5 przedstawia zależność między podawaniem α-ketoglutaranu (AKG) a liczbą komórek produkujących CCK mierzonych w mm kosmka.
PBS - grupa II (n=6); HP - H. pylori (109 cfu/ml) (n=6); HP+AKG - (109 cfu/ml + 30 mM) (n=7). Każdy słupek pokazuje liczbę komórek produkujących CCK w 1 mm kosmka (średnia ± SD; n=6-7). Litery umieszczone nad każdym ze słupków wskazują na różnice przy P < 0,05. Gwiazdki wskazują na różnice przy P < 0,05 między ilością komórek produkujących CCK w przedniej i tylnej części jelita.
Fig. 6 przedstawia ruchliwość produktów reakcji łańcuchowej polimerazy (PCR) właściwych dla fragmentu 16S rDNA Helicobacter spp. w polu elektrycznym ocenianych techniką DGGE
M; markery: A; H. muridorum, B; H. bilis, C; H. pullorum, D; H. pylori, E; Helicobacter spp. flexispira takson 8 ”F. rappini”, F; H. hepaticus, G; H. bizzozeronii, HP; kontrola dodatnia DNA izolowane z H. pylori CCUG 17874.
P r z y k ł a d I.
Zwierzęta doświadczalne (Fig. 1)
Do badań użyto 42 sześciotygodniowych myszy rasy BALB/cA (samice) o wadze (23 ± 2 g).
Zwierzęta do doświadczeń podzielono na dwie grupy (Fig. 1).
Grupa I A, I B
Czternastu myszom sondą dożołądkową (zew. średnica = 1,3 mm) aplikowano trzykrotnie z odstępami jednodniowymi 0,2 ml zawiesiny H. pylori 119/95 (109 cfu/ml). Dwa tygodnie po ostatnim podaniu, siedem myszy inokulowano dożołądkowo przez dziewięć kolejnych dni w sposób opisany powyżej świeżo przygotowanym roztworem soli sodowej kwasu alfa-ketoglutarowego (0,2 ml, stężenie 30 mM) (grupa I A). Pozostałe 7 myszy otrzymywały 0,01 M PBS (grupa I B) tak samo jak zwierzęta z grupy I A.
Grupa II A, II B
Tej grupie zwierząt tj. 14 kolejnym myszom podawano 0,2 ml PBS według schematu obowiązującego przy zakażaniu zwierząt H. pylori. Po dwutygodniowej przerwie siedem myszy nadal otrzymywało PBS (0,2 ml) przez kolejnych 9 dni (grupa II B). Pozostałym 7 myszom wprowadzano roztwór alfa-ketoglutaranu (0,2 ml, stężenie 30 mM) (grupa II A).
W 30-ym dniu doświadczenia zwierzęta usypiano CO2. Do dalszych badań pobierano od myszy próbki krwi, żołądka, fragmenty przedniej i tylnej części jelita cienkiego.
Bakterie wyhodowano między 5 i 10-tym dniem inkubacji ze wszystkich próbek żołądka zwierząt inokulowanych H. pylori i tych, którym podano następnie alfa-ketoglutaran. Liczba kolonii wyizolowanych z tego materiału wynosiła odpowiednio 78 ± 5,38 ± 5.
Od zwierząt inokulowanych jedynie alfa-ketoglutaranem i PBS nie wyizolowano H. pylori. Z próbek krwi pobranych od wszystkich badanych myszy nie wyhodowano bakterii.
Immunoreaktywność H. pylori wykazano techniką odciskową (colony blots). Odciski hodowli płytkowej żołądków myszy inokulowanych alfa-ketoglutaranem, PBS pozostały niewybarwione, zabarwienie kolonii H. pylori nie stwierdzono w żołądku myszy zakażanych wyłącznie H. pylori a następnie inokulowanych alfa-ketoglutaranem.
Stwierdzono zmiany w morfologii błony śluzowej żołądka, przy czym grubość błony śluzowej jelita cienkiego jak i wysokość kosmków jelitowych oraz głębokość krypt pozostała porównywalna we wszystkich badanych grupach zwierząt (wyników nie przedstawiono).
PL 226 695 B1
Warstwa błony śluzowej żołądka myszy zakażanych H. pylori w stosunku do myszy zakażanych wpierw H. pylori, a następnie inokulowanych alfa-ketoglutaranem wykazywała tendencję do ścieńczenia (-20%) (Fig. 3).
Nie stwierdzono morfologicznych ani morfometrycznych (zgodnie ze stosowanymi parametrami) zmian w części przedniej jak i tylnej jelita cienkiego pomiędzy myszami zakażonymi H. pylori, a pozostałymi zwierzętami.
Obecność spiralopodobnych mikroorganizmów (potwierdzone hodowlą) na powierzchni błony śluzowej żołądka zwierząt zakażanych H. pylori (grupa I B) wykryto przy użyciu przeciwciała krzyżowo reagującego z antygenami wici H. pylori. Natomiast w żołądkach 13 myszy, którym podano alfaketoglutaran, w 2 próbkach wykryto bakterie, które albo występowały pojedynczo rozproszone, albo jako oddzielnie formujące się skupiska.
W preparatach z przedniej części jelita cienkiego myszy kontrolnych wybarwione zostały spiralne mikroorganizmy. Natomiast wśród myszy otrzymujących jedynie alfa-ketoglutaran lub w połączeniu z H. pylori zidentyfikowano po 3 zwierzęta, u których bakterie wykryto w przedniej części jelita i po jednej myszy, gdzie drobnoustroje możliwe były do rozpoznania w tylnym segmencie jelita. W części tylnej jelita cienkiego zwierząt nie wykryto swoistym barwieniem spiralnych drobnoustrojów.
U wszystkich badanych myszy, zarówno u myszy kontrolnych jak i myszy zakażanych H. pylori, komórki produkujące gastrynę zlokalizowano w części odźwiernikowej gruczołów żołądkowych, gdzie układały się pojedynczo lub w pakietach.
Nie stwierdzono statystycznych różnic w ilości komórek u zwierząt, którym aplikowany został alfa-ketoglutaran, ale tendencja do spadku manifestowała się wyraźnie (F test, P=0,22).
W części przedniej jelita cienkiego, w kryptach i kosmkach jelitowych wykazano obecność komórek produkujących CCK.
Tendencję zmniejszenia ilości komórek produkujących CCK obserwowano u myszy zakażonych wpierw H. pylori, a następnie otrzymujących alfa-ketoglutaran (-30% P=0,05). Grupa zwierząt I A (zakażonych wpierw H. pylori, a następnie inokulowanych alfa-ketoglutaranem) nie ujawniała istotnych różnic w liczbie komórek produkujących CCK w porównaniu z grupą myszy zakażanych H. pylori (P=0,25).
Zwierzęta doświadczalne (Fig. 2)
Grupa III, III B
Dwudziestu czterem myszom (Fig. 2) aplikowano dożołądkowo, trzykrotnie z jednodniowymi odstępami po 0,2 ml zawiesiny H. pylori 119/95 (109 cfu/ml). Po ośmiu dniach, szesnastu myszom podawano sondą przez trzy kolejne dni 0,2 ml przygotowanego wlewu (Scott DR, Marcus EA, Weeks DL, Sachs G. Mechanisms of acid resistance due to the urease system of Helicobacter pylori.
Gastroenterology. 2002; 123: 187-195) świeżo sporządzonego roztworu 30 mM soli sodowej kwasu alfa-ketoglutarowego (grupa III B). Kolejne 8 myszy otrzymywały wyłącznie po 0,2 ml 0,01 M PBS (grupa III) według schematu postępowania z grupą III B.
Grupa IV A, B, C
Dwudziestu czterem myszom (Fig. 2) aplikowano dożołądkowo, trzykrotnie z jednodniowymi odstępami po 0,2 ml 0,01 M PBS. Po ośmiu dniach, szesnastu myszom podawano sondą przez trzy kolejne dni roztwór sodowej kwasu alfa-ketoglutarowego (0,2 ml, stężenie 30 mM) (grupa IV B). Kolejne 8 myszy otrzymywały nadal po 0,2 ml 0,01 M PBS (grupa IV).
W 20-ym dniu doświadczenia zwierzęta usypiano CO2 z zachowaniem przedstawianych wcześniej standardów. Przygotowanie do doświadczenia i hodowlę myszy w czasie trwania badań prowadzono tak jak to podano wcześniej. Do dalszych badań pobierano od myszy próbki żołądka i krwi.
Z żołądka wszystkich myszy zakażanych H. pylori (grupa III, n=8) wyhodowano H. pylori. W DNA wyizolowanym z tych samych próbek żołądka (n=8) wykryto metodą PCR fragment charakterystyczny dla 16S rDNA H. pylori.
Z próbek żołądka pozyskanych od myszy zakażonych H. pylori traktowanych następnie alfa-ketoglutaranem (grupa III B, n=16) nie wyhodowano ani H. pylori, ani też w produktach PCR nie stwierdzono sekwencji właściwych dla H. pylori.
Spośród uzyskanych 48 produktów PCR, w 16 próbkach wykryto DNA liczący 470 par zasad.
Nie uległ powieleniu DNA izolowany z krwi (n=48) i z żołądków myszy, które otrzymywały PBS (grupa IV, n=8) zamiast zawiesiny bakterii i/albo sól sodową i/albo wapniową kwasu alfa-ketoglutarowego (Tab. 1).
PL 226 695 B1
W wyniku sekwencjonowania zreamplifikowanych produktów PCR (n=16) rozdzielonych wcześniej techniką DGGE otrzymane sekwencje odpowiadały H. pylori a także H. rodentium, H. bilis oraz H. hepaticus (Tab. 2, Fig. 6).
DNA trzech różnych gatunków Helicobacter: H. pylori, H. rodentium, H. bilis wykryto u zwierząt z grupy III (H. pylori), i III B (H. pylori/AKG).
T a b e l a 1 A, B. Wyniki hodowli i PCR (A) oraz identyfikacja produktów PCR (B) (n=28) z matrycy DNA próbek żołądków myszy inokulowanych H. pylori lub czynnikami antybakteryjnymi (n=80)
A.
Wykaz inokulatów* Liczba wyrośniętych kolonii H. pylon**
H. pylori/PBS (grupa III) 43 ± 4 81/82
H. pylori/AKG (grupa III B) 0 5/16
AKG (grupa IV B) 0 3/16
PBS (grupa IV) 0 0/8
B.
Wykaz inokulatów Liczba Identyfikacja produktów pcr****
H. pylori/PBS (grupa III) 1. H. pylori
2. H. pylori
3. H. pylori
4. H. pylori
5. H. pylori, H. bilis
6. H. pylori
7. H. pylori, H. bilis
8. H. pylori
H. pylori/AKG (grupa III B) 1. H. rodentium, H. bilis
2. H. hepaticus
3. H. rodentium
4. H. hepaticus
5. H. rodentium
AKG (grupa IV) 1. H. hepaticus
2. H. hepaticus
3. H. rodentium
* Gęstość i objętość zawiesiny komórek H. pylori (szczep H. pylori 119/95) oraz stężenia i dawkowanie: alfaketoglutaranu (AKG), PBS umieszczono w tekście. Zawiesinę bakterii (H. pylori) i pozostałe inokulaty (alfaketoglutaran, PBS) podawano myszom ig.
** Hodowlę bakterii prowadzono na podłożu wybiórczym o nazwie GAB-CAMP, opis w tekście.
*** Reakcję przeprowadzano ze specyficznymi starterami w celu zlokalizowania fragmentu 16S rDNA Helicobacter spp. w badanej tkance, opis w tekście.
**** Produkty PCR sekwencjonowano w celu identyfikacji fragmentu 16S rDNA charakterystycznego dla określonego gatunku Helicobacter
81/82 Liczba produktów PCR zawierających sekwencje DNA charakterystyczne dla 16S rDNA Helicobacter spp./Liczba przeprowadzonych PCR
PL 226 695 B1
P r z y k ł a d 2.
Sporządzono wodny roztwór mieszaniny lub oddzielnie każdej z osobna soli wapniowej oraz sodowej kwasu alfa-ketoglutarowego i zastosowano je jako dodatek do produktów mlecznych oraz napojów
Alfa-ketoglutaran sodu 0,001 g do 0,2 g
Glukoza 20 g
Woda do 100 g
Terapeutycznie i/lub profilaktycznie skuteczna ilość wynosi od 0,001 g do 0,2 g/kg masy ciała na dawkę dzienną.
Przy użyciu zwierząt modelowych (myszy) oraz przy udziale ochotników wykazano aktywność profilaktyczną, łagodzącą przebieg zakażenia, a także ograniczającą kolonizację układu pokarmowego przez H. pylori oraz zmieniającą aktywność hormonalną jelita w wyniku wprowadzenia soli sodowej lub/i wapniowej kwasu alfa-ketoglutarowego w formie wodnego roztworu, dożołądkowo lub doustnie.
W żołądku i jelicie cienkim myszy inokulowanych tą zawiesiną kolejno po dożołądkowym wprowadzeniu H. pylori, stwierdzono spadek liczby komórek produkujących gastrynę (Fig. 4) i cholecystokininę (Fig. 5). W jelicie, u wszystkich badanych grup nie stwierdzono różnic w wysokości i długości kosmków jelitowych, głębokości krypt i grubości błony śluzowej. Jednakże, u myszy zakażanych H. pylori, a następnie inokulowanych alfa-ketoglutaranem nastąpiła eradykacja patogenu z żołądka. Stabilizujące zdrowie alfa-ketoglutaran działa w tym wypadku najprawdopodobniej poprzez zahamowanie sekrecji soku żołądkowego gospodarza, na co wskazuje spadek liczby komórek produkujących gastrynę. Niski poziom gastryny z równoczesnym osłabieniem stymulacji komórek okładzinowych produkujących HCl obniża stężenie protonów w; błonie śluzowej żołądka. Jak wiadomo warunkiem podstawowym do skolonizowania żołądka przez H. pylori jest wysoka „protonizacja” czyli niskie pH błony śluzowej żołądka. Spadek liczby komórek produkujących gastrynę/CCK najprawdopodobniej chroni organizm przed hypergastrynemią wyróżniającą ostry przebieg zakażenia H. pylori. Niski poziom gastryny może zakłócać wytwarzanie bakteryjnej ureazy, czynnika niezbędnego w kolonizacji żołądka przez H. pylori a w konsekwencji limitować wzrost bakterii w warunkach przeprowadzonego doświadczenia.
Sól sodowa lub/i wapniowa kwasu alfa-ketoglutarowego po wprowadzeniu do układu pokarmowego myszy reguluje funkcje jelita działając prewencyjne i łagodząco na przebieg zakażenia H. pylori. Powiększeniu grubości błony śluzowej żołądka towarzyszy zwiększenie produkcji śluzu w wyniku dożołądkowego wprowadzenia alfa-ketoglutaranu (Fig. 3). To może indukować nasilenie poziomu czynników wzrostu, co z kolei wpływa na aktywność gastryczną poprzez ograniczenie produkcji kwasu solnego i uwalnianie somatostatyny (hamowanie pompy protonowej i sekrecji gastryny). Bariera śluzu działa nie tylko mechanicznie utrudniając kolonizację H. pylori, a także produkowana w żołądku mucyna wykazuje bakteriobójczą aktywność.
Podstawa działania soli sodowej lub/i wapniowej kwasu alfa-ketoglutarowego utrudniającego zasiedlenie żołądka przez H. pylori jest oparta o syntezę glutaminianu i obecność jonu amonowego produkowanego przy udziale ureazy wytwarzanej przez H. pylori. W komórkach żołądka z egzogennego alfa-ketoglutaranu i jonu amonowego oraz pod kontrolą enzymów komórkowych syntetyzowany zostaje glutaminian. W wyniku działania ureazy rozkładającej mocznik do CO2 i jonu amonowego podniesione pH błony śluzowej żołądka ulega obniżenie przy udziale soli sodowej lub/i wapniowej kwasu alfa-ketoglutarowego. Produkowany jon amonowy zostaje bowiem wykorzystany do syntezy glutaminy. W takich warunkach H. pylori - mikroorganizm wrażliwy na niskie pH - ma utrudnienie z wytworzeniem mikroniszy, w której mógłby przeżyć, kolonizując błonę śluzówką żołądka, a następnie rozwinąć zakażenie.
Powszechnie znaną właściwością H. pylori jest zdolność przeżycia w niskim pH, co tłumaczy się silną aktywnością bakteryjnej ureazy, która hydrolizuje mocznik obecny w błonie śluzowej żołądka i w soku żołądkowym (Saidijam M, Psakis G, Clough JL, Meuller J, Suzuki S, Hoyle CJ, Palmer SL,
Morrison SM, Pos MK, Essenberg RC, Maiden MC, Abu-bakr A, Baumberg SG, Neyfakh AA, Griffith JK, Sachs G, Scott D, Weeks D, Melchers K. Gastric habitation by Helicobacter pylori: insights into acid adaptation. Trends Pharmacol Sci. 2000; 21: 413-416, Sachs G, Weeks DL, Melchers K, Scott DR. The gastric biology of Helicobacter pylori. Annu Rev Physiol. 2003: 65: 349-369, Sidebotham RL, Worku ML, Karim QN, Dhir NK, Baron JH. How Helicobacter pylori urease may affect extemal pH and influence growth and motility in the mucus environment: evidence from in-vitro studies. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2003; 15: 395-401).
PL 226 695 B1
Schemat poszczególnych reakcji przebiega następująco:
(1) H2NCONH2 + H2O —► CO2 + 2 NH3 (2) CO2 +H2O —► H2CO3 (3) H2CO3 + 2 NH3 —► NH4+ + HCO3- + NH3 (4) H+Cl- +NH3 —► NH4 + + Cl-
Wynikiem tych procesów jest wytworzenie amoniaku reagującego natychmiast z kwasem solnym, tak że w mikrośrodowisku tkankowym (błona śluzówka żołądka) drobnoustroju dochodzi do miejscowego podniesienia pH. W naturalnych warunkach błona śluzowa żołądka zachowuje odczyn kwaśny z powodu produkowania HCl w komórkach okładzinowych.
Kolonizacja bakteryjna w żołądku jest utrudniona, co wynika oczywiście z kwaśnego odczynu środowiska i dlatego antagonistyczne oddziaływania różnych drobnoustrojów i ich uwalnianych do otoczenia metabolitów są silniej zaznaczone niż w innych odcinkach przewodu pokarmowego. W związku z tym, paradoksalnie, mimo że H. pylori jest mikroorganizmem wrażliwym, trudno hodującym się in vitro, niskie pH bójcze dla innych bakterii sprzyja kolonizacji H. pylori. A to wynika głównie z obecności w otoczeniu endogennego mocznika, którego rozkład przez ureazę bakteryjną do amoniaku jest niezbędny do podniesienia pH w mikrośrodowisku H. pylori i eliminacji letalnego wpływu kwaśnego odczynu na wzrost bakterii. Zauważono także zdolność H. pylori do przemieszczania się w kierunku mocznika i węglanu zgodnie z gradientem stężenia, a chemotaksje przyspiesza sam proces hydrolizy mocznika. W ten sposób można tłumaczyć rozpoczęcie następnej rundy cyklu wzrostu i ustabilizowania się zakażenia w żołądku (Scott DR, Marcus EA, Weeks DL, Sachs G. Mechanisms of acid resistance due to the urease system of Helicobacter pylori. Gastroenterology. 2002;123:187-195., Scott DR, Marcus EA, Weeks DL, Lee A, Melchers K, Sachs G. Expression of the Helicobacter pylori urel gene is required for acidic pH activation of cytoplasmic urease. Infect Immun. 2000; 68: 470-477, Voland P, Weeks DL, Marcus EA, Prinz C, Sachs G, Scott D. Interactions among the seven Helicobacter pylori proteins encoded by the urease gene cluster. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2003; 284: 96-106).
Przyczyną tego może być toksyczność jonu amonowego, jednej z najsilniejszych trucizn endogennych. Z drugiej strony należy pamiętać, że jon amonowy jest dla bakterii niezbędnym czynnikiem warunkującym produkcję ich własnych aminokwasów i innych związków zawierających azot w cząsteczce.
Wydaje się, że optymalny zakres stężeń jonu amonowego dla wzrostu bakterii i komórek eukariotycznych jest wąski i nie należy wykluczyć, że stężenie optymalne dla jednych komórek może być zabójcze dla innych.
Alfa-ketoglutaran jest cząsteczką, która łączy metabolizm cukrów i tłuszczów z aminokwasami i metabolizmem puryn. W związku z kluczowym znaczeniem alfa-ketoglutaranu w procesach wzrostowych komórki, śmierć bakterii wiązać można z ograniczeniem dostępu do alfa-ketoglutaranu albo też wyczerpaniem zapasu komórkowego alfa-ketoglutaranu, który jest niezbędny do usuwania jonów amonowych z komórki w procesie syntezy glutaminianu z jonów amonowych i utrzymania niskiego pH (Nakamura E, Hagen SJ. Role of glutamine and arginase in protection against ammonia-induced cell death in gastric epithelial cells. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2002; 283: 1264-1275).
W komórkach prokariotycznych występuje syntaza glutaminianowa katalizująca redukcyjną aminację alfa-ketoglutaranu i wykorzystująca glutaminę jako źródło azotu. W wyniku enzymatycznej hydrolizy glutaminy powstaje jon amonowy. Gdy jonu amonowego nie jest dużo, to glutaminian tworzy się wpierw przy udziale syntetazy glutaminianowej i syntazy glutaminianowej. Różne stopnie powinowactwa do jonu amonowego charakteryzują dehydrogenazę i syntetazę glutaminianowe, dehydrogenaza ma niższe powinowactwo do jonu amonowego, jeśli więc np. w środowisku jonu amonowego jest niewiele to syntetaza glutaminianowa przy nakładzie energii czerpanej z hydrolizy ATP może inicjować dalsze przemiany. Nie wykluczone, że przy nadmiarze jonów amonowych koszty energetyczne komórki prokariotycznej są zbyt wysokie, aby podołać syntezie, w związku z czym ginie. Konkurencyjność enzymów w żołądku może być więc kolejnym powodem tego, że alfa-ketoglutaran nie jest wykorzystywany bezpośrednio przez bakterie. Alfa-ketoglutaran najprawdopodobniej zostaje przeniesiony do komórki przy udziale białka błonowego transportującego kwasy dikarboksylowe. Związany z Na+ aktywny transport sprzęgający niekorzystny termodynamicznie transport jednego jonu z korzystnym przepływem innego ułatwia komórce przyswajanie substratów. Rodzina przenośników symportowych sprzęgających przenoszenie dwóch rodzajów jonów tj. dwuwartościowych anionów/Na+ (ang. divalent
PL 226 695 B1 anion/Na+ symporter - DASS) do wnętrza komórki pośredniczy w transporcie anionów kwasów dikarboksylowych jak i anionów kwasów nieorganicznych w sposób zależny od Na+. Białka błonowe należące do tej rodziny to zależne od sodu kotransportery anionów kwasów dikarboksylowych, ale też trikarboksylowych (Na+/dicarboxylate cotransporter NaDC-1, NaDC-3, Na+/citrate transporter, NaCT) i zależne od sodu transportery głównie grupy SO4-- NaSi-1 (ang. Na+/dependent inorganic sulphate transporter-1) i SUT-1, SUT-2 (ang. the sulphate transporter). Zależny od sodu transporter dla anionów kwasów di i trikarboksylowych (NaDC) należy do rodziny białek transportowych odpowiedzialnych za reabsorbcję albo transport intermediatów cyklu kwasów trikarboksylowych głównie bursztynianu, cytrynianu i alfa-ketoglutaranu. Na podstawie stopnia powinowactwa do substratu rodzina tych białek jest różnicowana na kotransportery o niskim powinowactwie NaDC1 i wysokim powinowactwie NaDC3 (Pajor AM. Molecular properties of the SLC13 family of dicarboxylate and sulfate transporters. Pflugers Arch. 2006; 451: 597-605). Tak więc po dożołądkowym podaniu, alfa-ketoglutaran może być z jednej strony buforem dla nadmiernej ilości jonów amonowych jak i dostarczycielem glutaminianu i glutaminy do dalszej syntezy aminokwasów endogennych. W komórkach żołądka przy udziale alfa-ketoglutaranu i pod kontrolą dehydrogenazy glutaminianu syntetyzowany zostaje glutaminian, czyli następuje inkorporacja wyjściowego amoniaku w aminokwasy. Nadmiar jonów amonowych zlokalizowanych w komórce bakteryjnej przesuwa te reakcje w kierunku produkcji glutaminianu co ma charakter działania ochronnego, ale poprzez usuwanie nadmiaru jonów amonowych następuje uszczuplenie puli alfa-ketoglutaranu. Wyczerpanie i brak alfa-ketoglutaranu w komórce bakteryjnej przyczynić się więc może do zahamowania podstawowych szlaków metabolicznych. W warunkach doświadczalnych in vivo poziom jonu amonowego jest stosunkowe niewielki i jego usunięcie przez alfa-ketoglutaran, który łatwo jest transportowany do komórek dzięki DC transporterowi obecnemu w komórkach błony śluzowej żołądka może prowadzić do śmierci komórek, ponieważ dobroczynna w tym wypadku dla H. pylori produkcja jonu amonowego z mocznika jest niewystarczająca ze względu na utylizację tego jonu przez alfa-ketoglutaran.

Claims (4)

1. Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, znamienny tym, że jako substancję czynną zawiera sole kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych.
2. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że zawiera sól sodową lub wapniową kwasu alfaketoglutarowego.
3. Zastosowanie soli kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori.
4. Zastosowanie soli kwasu alfa-ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori.
PL380103A 2006-07-03 2006-07-03 Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori PL226695B1 (pl)

Priority Applications (11)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL380103A PL226695B1 (pl) 2006-07-03 2006-07-03 Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori
EP07460015A EP1917959B1 (en) 2006-07-03 2007-07-03 New medical use of alfa-ketoglutarate
US12/452,485 US20100124537A1 (en) 2006-07-03 2007-07-03 Medical applications of alpha-ketoglutarate
DK07460015.6T DK1917959T3 (da) 2006-07-03 2007-07-03 En ny medicinsk anvendelse af alfa-ketoglutarat
AT07460015T ATE495738T1 (de) 2006-07-03 2007-07-03 Neue medizinische verwendung von alpha- ketoglutarat
PL07460015T PL1917959T3 (pl) 2006-07-03 2007-07-03 Nowe medyczne zastosowanie alfa-ketoglutaranu
ES07460015T ES2360142T3 (es) 2006-07-03 2007-07-03 Nuevo uso médico de alfa-cetoglutarato.
DE602007012036T DE602007012036D1 (de) 2006-07-03 2007-07-03 Neue medizinische Verwendung von Alpha-Ketoglutarat
SI200730571T SI1917959T1 (sl) 2006-07-03 2007-07-03 Nova medicinska uporaba alfa-ketoglutarata
HR20110268T HRP20110268T1 (hr) 2006-07-03 2011-04-13 Nova medicinska primjena alfa-ketoglutarata
IL233342A IL233342A (en) 2006-07-03 2014-06-24 A process for making organic biofuel and accelerating conversion to biofuel production

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL380103A PL226695B1 (pl) 2006-07-03 2006-07-03 Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL380103A1 PL380103A1 (pl) 2008-01-07
PL226695B1 true PL226695B1 (pl) 2017-08-31

Family

ID=38984524

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL380103A PL226695B1 (pl) 2006-07-03 2006-07-03 Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori
PL07460015T PL1917959T3 (pl) 2006-07-03 2007-07-03 Nowe medyczne zastosowanie alfa-ketoglutaranu

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL07460015T PL1917959T3 (pl) 2006-07-03 2007-07-03 Nowe medyczne zastosowanie alfa-ketoglutaranu

Country Status (10)

Country Link
US (1) US20100124537A1 (pl)
EP (1) EP1917959B1 (pl)
AT (1) ATE495738T1 (pl)
DE (1) DE602007012036D1 (pl)
DK (1) DK1917959T3 (pl)
ES (1) ES2360142T3 (pl)
HR (1) HRP20110268T1 (pl)
IL (1) IL233342A (pl)
PL (2) PL226695B1 (pl)
SI (1) SI1917959T1 (pl)

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7981908B2 (en) 2005-05-11 2011-07-19 Vecta, Ltd. Compositions and methods for inhibiting gastric acid secretion
US7803817B2 (en) 2005-05-11 2010-09-28 Vecta, Ltd. Composition and methods for inhibiting gastric acid secretion
DK2046334T3 (da) 2006-07-25 2014-08-25 Vecta Ltd Sammensætninger og fremgangsmåder til at hæmme mavesyresekretion ved at anvende derivater af små dicarboxylsyrer i kombination med PPI
SE0602446L (sv) * 2006-11-16 2008-05-17 Entress Ab Ny användning av kända farmakologiskt aktiva kemiska sammansättningar
PL2468319T3 (pl) 2010-11-29 2017-05-31 Eurochit Danuta Kruszewska Nowy nanoprodukt przydatny w zabiegach profilaktycznych, diagnostycznych oraz leczniczych w medycynie ludzkiej i w weterynarii
WO2013180585A1 (en) 2012-05-29 2013-12-05 Danuta Kruszewska Nanoproduct comprising lactobacillus reuteri dan080 useful in prophylaxis and medicine, both human and veterinary and medical use of the same
EP2674162A1 (en) 2012-05-29 2013-12-18 Danuta Kruszewska Nanoproduct comprising lactobacillus reuteri dan080 useful in prophylaxis and medicine, both human and veterinary and medical use of the same
PL2897604T3 (pl) 2012-09-19 2018-10-31 Grespo Ab Kompozycje do ulepszenia funkcji mózgu
CN103923900B (zh) * 2014-04-14 2016-03-23 江南大学 一种黄酒用双功能酶交联酶聚集体的制备与应用
CN109803647A (zh) * 2016-09-30 2019-05-24 加州大学董事会 α-丁酮酸、α-酮戊二酸和2-羟基丁酸用于刺激毛发生长
KR20230167450A (ko) * 2017-04-25 2023-12-08 버크 인스티튜트 포 리서치 온 에이징 수명 및 건강수명을 연장시키기 위한 제제
JP2022502489A (ja) 2018-09-25 2022-01-11 ポンス デ レオン ヘルス デジグネイテッド アクティビティ カンパニー αケトグルタル酸カルシウムを製造するためのプロセス
JP2022504771A (ja) * 2018-10-24 2022-01-13 ポンセ デ レオン ヘルス デシグネイテッド アクティビティ カンパニー 健康寿命延長を目的とするニコチンアミドリボシド組成物
CA3188646A1 (en) * 2020-07-02 2022-01-06 Ponce De Leon Health Designated Activity Company Compositions and methods for treating crp-mediated diseases
CN115340313B (zh) * 2022-01-17 2023-04-18 浙江理工大学 一种物理复合微生物技术强化再生骨料方法

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS4919855B1 (pl) 1970-10-06 1974-05-21
US4256731A (en) * 1978-03-23 1981-03-17 Beecham, Inc. Oral Compositions
US5028412A (en) * 1987-05-01 1991-07-02 Purdue Research Foundation Oral compositions comprising anti-calculus agents
US5817294A (en) * 1990-11-02 1998-10-06 Arnold; Michael J. Plaque adsorbent oral composition and method
AU764340B2 (en) * 1998-11-06 2003-08-14 Universite De Montreal Improved bactericidal and non-bactericidal solutions for removing biofilms
FR2822704B1 (fr) * 2001-03-29 2005-02-18 Chiesi Sa Sels de cetoacides et d'acides amines gastroresistants et leur utilisation pour la preparation de medicaments
US7122578B2 (en) * 2001-09-11 2006-10-17 Alain Martin Method and composition for treating mammalian diseases and injuries which cause pain, erythema, swelling, crusting, ischemia scarring and excess white blood cell infiltration
SE0200256D0 (sv) * 2001-12-21 2002-01-29 Gramineer Internat Ab New composition, methods and use
PL368572A1 (pl) * 2004-06-17 2005-12-27 Sgp & Sons Ab Preparat farmaceutyczny do stosowania w profilaktyce i leczeniu podwyższonego poziomu cholesterolu,LDL oraz trójglicerydów oraz zastosowanie preparatu farmaceutycznego jako czynnika przeciwmiażdżycowego stosowanego w schorzeniach układu krążenia
US7803817B2 (en) * 2005-05-11 2010-09-28 Vecta, Ltd. Composition and methods for inhibiting gastric acid secretion
AU2006316059A1 (en) 2005-11-15 2007-05-24 Entress Ab Medicament for use in connection with cartilage impairment
CN101371142A (zh) * 2006-01-19 2009-02-18 安特瑞斯公司 诊断方法和治疗方法

Also Published As

Publication number Publication date
HRP20110268T1 (hr) 2011-05-31
ATE495738T1 (de) 2011-02-15
IL233342A0 (en) 2014-08-31
IL233342A (en) 2016-05-31
DE602007012036D1 (de) 2011-03-03
PL1917959T3 (pl) 2011-06-30
DK1917959T3 (da) 2011-05-09
SI1917959T1 (sl) 2011-05-31
PL380103A1 (pl) 2008-01-07
EP1917959B1 (en) 2011-01-19
US20100124537A1 (en) 2010-05-20
ES2360142T3 (es) 2011-06-01
EP1917959A1 (en) 2008-05-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL226695B1 (pl) Środek do zastosowania w zapobieganiu i/lub hamowaniu kolonizacji Helicobacter pylori, zastosowanie soli kwasu alfa‑ketoglutarowego z metalami alkalicznymi i ziem alkalicznych do wytwarzania środka leczniczego oraz dodatku do żywności do zapobiegania i/lub hamowania kolonizacji Helicobacter pylori
JP5518702B2 (ja) α−ケトグルタレートの新規の医学的用途
Nishimori et al. The α and β classes carbonic anhydrases from Helicobacter pylori as novel drug targets
US20150104418A1 (en) Bacterial composition
AU2017203095B2 (en) Antibacterial microelement chelates and the use thereof in animal feeds
CA3127806A1 (en) Probiotic compositions comprising lactobacillus reuteri strains and methods of use
RU2668160C1 (ru) Антибактериальная композиция, содержащая белок adk в качестве активного ингредиента, для борьбы с карбапенем-резистентными грамотрицательными бактериями
Van Amsterdam et al. Nutrients released by gastric epithelial cells enhance Helicobacter pylori growth
US10314869B2 (en) Probiotic pathogen inhibition composition and method
US9724372B2 (en) Calf administered bacterial composition
KR102389326B1 (ko) 코리네박테리움 속 균주 및 이의 배양물을 포함하는 위장질환 예방, 치료 또는 개선용 조성물
CN110573150B (zh) 具备经由futalosine或futalosine衍生物的甲基萘醌合成途径的细菌的增殖抑制用组合物
FR2677253A1 (fr) Composition therapeutique utile vis-a-vis des maladies inflammatoires du systeme gastro-intestinal.
Liu The growth response of Campylobacter jejuni to stress catecholamines
KR102629519B1 (ko) 고단백 및 고콜린 섭취에 의해 높아진 혈중 tmao 및 tma의 수치 개선 바실러스 아밀로리퀘파시엔스 균주
JPS63215687A (ja) 豚赤痢予防・治療用または動物成長促進用組成物
JP2007189947A (ja) 硫化水素産生菌抑制剤及び硫化水素産生菌抑制方法
WO2022005195A1 (ko) 나노 크기의 산화 그래핀 복합체를 포함하는 코로나바이러스 감염증의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 이를 이용한 방법
US20210030822A1 (en) Probiotic pathogen inhibition composition and method
JP2608301B2 (ja) 毒素原性大腸菌症予防治療剤
Nishimori et al. Inhibitors of Helicobacter pylori a-and b-Carbonic Anhydrases as Novel Drugs for Gastroduodenal Diseases
JPH0449234A (ja) 豚赤痢予防，治療剤
KR20190067647A (ko) 반추동물의 부티레이트 생산능을 증대시킬 수 있는 미생물 및 이를 이용한 반추동물 사료 첨가제
WO2008058993A2 (en) Use of alpha ketogluaric acid for the treatment of infection with h. pylori
KR20100111059A (ko) 헬리코박터 파이로리 활성 억제용 조성물