PL208400B1 - Wyizolowany segment DNA kodujący MmeI restrykcyjna endonukleaza-metylaza, rekombinowany wektor, komórka gospodarza transformowana wektorem i sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej MmeI oraz metylazy MmeI - Google Patents

Wyizolowany segment DNA kodujący MmeI restrykcyjna endonukleaza-metylaza, rekombinowany wektor, komórka gospodarza transformowana wektorem i sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej MmeI oraz metylazy MmeI

Info

Publication number
PL208400B1
PL208400B1 PL374263A PL37426303A PL208400B1 PL 208400 B1 PL208400 B1 PL 208400B1 PL 374263 A PL374263 A PL 374263A PL 37426303 A PL37426303 A PL 37426303A PL 208400 B1 PL208400 B1 PL 208400B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
dna
leu
mmel
endonuclease
lys
Prior art date
Application number
PL374263A
Other languages
English (en)
Other versions
PL374263A1 (pl
Inventor
Richard D. Morgan
Tanya Bhatia
Theodore Davis
Lindsay Lovasco
Original Assignee
New England Biolabs
New England Biolabs Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by New England Biolabs, New England Biolabs Inc filed Critical New England Biolabs
Publication of PL374263A1 publication Critical patent/PL374263A1/pl
Publication of PL208400B1 publication Critical patent/PL208400B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/16Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/22Ribonucleases RNAses, DNAses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52Genes encoding for enzymes or proenzymes

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazku
Tło wynalazku
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest wyizolowany segment DNA kodujący Mmel, restrykcyjna endonukleaza-metylaza, rekombinowany wektor, komórka gospodarza transformowana wektorem i sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej Mmel oraz metylazy Mmel.
Bardziej szczegółowo, niniejszy wynalazek dotyczy fragmentu DNA (kwasu deoksyrybonukleinowego), który to fragment koduje jeden polipeptyd posiadający dwie pokrewne funkcje enzymatyczne, mianowicie funkcję enzymu, który rozpoznaję sekwencję DNA 5'-TCC(Pu)AC-3' i przecina wiązania fosfodiestrowe pomiędzy 20 a 21 resztą od końca 3' względem tej sekwencji rozpoznawanej na tej nici DNA oraz pomiędzy 18 a 19 resztą od końca 5' względem sekwencji rozpoznawanej na nici komplementarnej 5'-GT(Py)GGT-3' w celu wytworzenia zasadowego wydłużenia na końcu 3' (nazywanego dalej endonukleazą restrykcyjną Mmel) oraz drugą aktywność enzymatyczną, która rozpoznaje tę samą sekwencję DNA, 5'-TCC(Pu)AC-3', ale modyfikuje tę sekwencję poprzez dodanie grupy metylowej w celu zapobieżenia przecięciu przez endonukleazę Mmel. Niniejszy wynalazek dotyczy także wektora zawierającego wyizolowany segment DNA, transformowanego gospodarza zawierającego ten segment DNA oraz sposobu wytwarzania endonukleazy restrykcyjnej Mmel z takiego transformowanego gospodarza.
W niniejszym wynalazku opisuje się takż e procesy identyfikowania dodatkowych fragmentów DNA, które kodują enzymy mające te same ogólne właściwości co Mmel, lecz potencjalnie mające wyjątkowe sekwencje rozpoznawania DNA. Proces taki zależy od zastosowania sekwencji aminokwasowej enzymu Mmel przedstawionej w tym zgłoszeniu lub w dalszej kolejności od dodatkowych sekwencji zidentyfikowanych w przebiegu tego procesu. Możliwym jest także zidentyfikowanie, w przebiegu opisanego procesu, dodatkowych fragmentów DNA, z których każdy koduje polipeptyd mający znaczące podobieństwo sekwencji aminokwasowej do polipeptydu Mmel. Przewiduje się, że polipeptydy kodowane przez te fragmenty DNA będą wykazywać podobne funkcje do polipeptydu Mmel. W szczególności przewiduje się, że mają one posiadać podwójną funkcję enzymatyczną przecinania DNA w sposób specyficzny we względnie dalekiej odległości od specyficznej sekwencji rozpoznawania, a także modyfikowania ich sekwencji rozpoznawania w celu ochrony przed cięciem DNA gospodarza w wyniku aktywności endonukleazy. Przykładem takiego enzymu zidentyfikowanego w tym procesie jest CstMI. CstMI został zidentyfikowany jako potencjalna endonukleaza z powodu jego bardzo znacznego podobieństwa sekwencji aminokwasowej do Mmel. CstMI rozpoznaje sekwencję 5'-AAGGAG-3' i przecina wiązanie fosfodiestrowe pomiędzy resztami 20 i 21 od końca 3' względem sekwencji rozpoznawania 5 na tej nici DNA oraz pomiędzy resztami 18 i 19 od końca 5' względem sekwencji rozpoznawania na nici komplementarnej 5'-CTCCTT-3' w celu wytworzenia 2 zasadowego wydłużenia od końca 3'.
Endonukleazy restrykcyjne są klasą enzymów, które w naturze występują u prokariontów. Istnieje kilka klas znanych układów restrykcyjnych, z których endonukleazy typu II są klasą mającą zastosowanie w inżynierii genetycznej. Jeśli te endonukleazy typu II zostaną oczyszczone z innych zanieczyszczających składników prokariotycznych, mogą być zastosowane w laboratorium do przecinania cząsteczek DNA na określone fragmenty. Właściwość ta umożliwia jednoznaczną identyfikację cząsteczek DNA i ich frakcjonowanie na ich składowe geny. Endonukleazy restrykcyjne okazały się nieodzownym narzędziem w nowoczesnych badaniach genetycznych. Stanowią biochemiczne „nożyczki”, z udziałem których prowadzona jest inżynieria i analiza genetyczna.
Endonukleazy restrykcyjne działają poprzez rozpoznawanie i wiązanie się do poszczególnych sekwencji nukleotydów („sekwencja rozpoznawana”) na cząsteczce DNA. Po związaniu, endonukleazy typu II przecinają cząsteczkę wewnątrz lub po jednej stronie sekwencji. Różne endonukleazy restrykcyjne wykazują powinowactwo względem różnych rozpoznawanych miejsc. Większość endonukleaz restrykcyjnych rozpoznaje sekwencje długości od 4 do 6 nukleotydów, choć ostatnio wyizolowane niewielką liczbę endonukleaz restrykcyjnych, które rozpoznają od 7 do 8 swoiście określonych nukleotydów. Większość rozpoznawanych sekwencji zawiera podwójną oś symetrii i w większości przypadków wszystkie nukleotydy są swoiście określone. Jednakże, niektóre endonukleazy restrykcyjne wykazują zdegenerowaną lub osłabioną specyficzność, jako że rozpoznają wiele zasad w jednej lub więcej pozycji w swojej sekwencji rozpoznawanej, a pewne endonukleazy restrykcyjne rozpoznają sekwencje asymetryczne. Haelll, która rozpoznaje sekwencję 5'-GGCC-3' jest przykładem endonukleazy restrykcyjnej posiadającej symetryczną, nie zdegenerowaną sekwencję rozpoznawaną; Haell,
PL 208 400 B1 która rozpoznaje 5'-(Pu)GCGC(Py)-3' stanowi przykład endonukleazy restrykcyjnej posiadającej zdegenerowaną lub mniej specyficzną sekwencję rozpoznawaną; podczas gdy BspMI, która rozpoznaje 5'-ACCTGC-3' stanowi przykład endonukleazy restrykcyjnej, której sekwencja rozpoznawana jest asymetryczna. Endonukleazy typu II o symetrycznych rozpoznawanych sekwencjach na ogół przecinają symetrycznie wewnątrz lub w pobliżu rozpoznawanego miejsca, podczas gdy te, które rozpoznają sekwencje asymetryczne mają tendencję do cięcia w odległości od 1 do 20 nukleotydów po jednej stronie miejsca rozpoznawania. Enzym według niniejszego zgłoszenia, Mmel (wraz z CstMI) wyróżnia przecinanie DNA w najdalszej odległości od rozpoznawanej sekwencji spośród wszystkich znanych endonukleaz restrykcyjnych typu II. Zidentyfikowano ponad dwieście określonych endonukleaz restrykcyjnych u kilku tysięcy zbadanych dotychczas gatunków bakterii.
Drugim składnikiem układów restrykcyjnych są metylazy modyfikujące. Enzymy te są komplementarne do endonukleaz restrykcyjnych i stanowią środek, dzięki któremu bakterie mają zdolność ochrony ich własnego DNA oraz odróżniania go od obcego, zakażającego DNA. Metylazy modyfikujące rozpoznają i wiążą się z taką samą nukleotydową rozpoznawaną sekwencją, jak odpowiadająca endonukleaza restrykcyjna, ale zamiast trawić DNA, chemicznie modyfikują jeden lub inny spośród nukleotydów w obrębie sekwencji, przez dodanie grupy metylowej. Po metylacji, rozpoznawana sekwencja nie jest już więcej przecinana przez endonukleazę restrykcyjną. DNA komórki bakteryjnej jest modyfikowane w wyniku aktywności jej metylazy modyfikującej i przez to jest niewrażliwe na obecność endogennej endonukleazy restrykcyjnej. Jedynie nie zmodyfikowany, a przez to rozpoznany jako obcy, DNA jest wrażliwy na rozpoznanie przez endonukleazę restrykcyjną i przecięcie. Metylotransferazy modyfikujące są zazwyczaj enzymami oddzielnymi od ich pokrewnych partnerów endonukleazowych. W niektórych przypadkach, pojedynczy polipeptyd posiada zarówno funkcję metylotransferazy modyfikującej, jak i funkcję endonukleazy, na przykład Eco57I. W takich przypadkach, istnieje druga metylotransferaza jako część układu restrykcji-modyfikacji. W przeciwieństwie do tego, układ Mmel według niniejszego zgłoszenia nie posiada drugiej metylotransferazy towarzyszącej polipeptydowi endonukleaza-metylotransferaza.
Nazwy endonukleaz pochodzą od bakterii, z których zostały uzyskane. Zatem, gatunek Haemophilus aegyptius, wytwarza na przykład 3 różne endonukleazy restrykcyjne, nazwane Hael, Haell oraz Haelll. Enzymy te rozpoznają i przecinają odpowiednio sekwencje 5'(W)GGCC(W)-3', 5'-(Pu)GCGC(Py)-3' oraz 5'-GGCC-3'. Z drugiej strony, Escherichia coli RY13 wytwarza tylko jeden enzym, EcoRI, który rozpoznaje sekwencję 5'-GAATTC-3'.
Ogólnie sądzi się, że w naturze endonukleazy restrykcyjne odgrywają rolę ochronną w utrzymywaniu prawidłowego funkcjonowania komórki bakteryjnej. Umożliwiają one bakterii oporność na zakażenie obcymi cząsteczkami DNA, takimi jak wirusy i plazmidy, które w innym wypadku doprowadziłyby do ich zniszczenia lub pasożytowałyby na nich. Uczestniczą one w oporności poprzez wiązanie się do zakażających cząsteczek DNA i przecinanie ich w każdym miejscu, w którym pojawia się sekwencja rozpoznawana. Wynikła dezintegracja inaktywuje wiele zakażających genów i pozostawia DNA podatnym na dalszą degradację powodowaną przez endonukleazy.
Z rozmaitych szczepów bakteryjnych wyizolowano ponad 3000 endonukleaz restrykcyjnych. Ponad 240 spośród nich rozpoznaje sekwencje unikalne, podczas gdy pozostałe posiadają wspólne specyficzności rozpoznawania. Endonukleazy restrykcyjne, które rozpoznają tę samą sekwencję nukleotydową zwane są „izoschizomerami”. Choć sekwencje rozpoznawane izoschizomerów są identyczne, mogą się one między sobą różnić pod względem miejsca cięcia (np., Xmal versus Smal, Endow i wsp., J. Mol. Biol. 112: 521 (1977); Waalwijk i wsp., Nucleic Acids Res. 5: 3231 (1978)) oraz częstości przecinania rozmaitych miejsc (Xhol versus PaeRll, Gingeras i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80: 402 (1983)).
Endonukleazy restrykcyjne tradycyjnie dzieli się na trzy główne klasy; typ I, typ II i typ III. Układy restrykcyjne typu I tworzą wielopeptydowy kompleks składający się z polipeptydów restrykcyjnych, polipeptydów modyfikujących oraz polipeptydów specyficzności lub rozpoznawania DNA. Układy typu I wymagają dwuwartościowego kationu, ATP oraz S-adenylozylometioniny (SAM) jako kofaktorów. Układy typu II przecinają DNA w przypadkowych miejscach w odległości do kilku tysięcy par zasad od ich miejsca rozpoznawania. Układy typu III rozpoznają na ogół asymetryczną sekwencję DNA i przecinają w specyficznej pozycji 20 do 30 par zasad po jednej stronie względem rozpoznawanej sekwencji. Układy takie wymagają oprócz SAM kofaktora ATP oraz kationu dwuwartościowego. Układy typu III tworzą kompleks polipeptydu endonukleazy i polipeptydu modyfikującego, który albo modyfikuje, albo przecina DNA w miejscu rozpoznawania. Z powodu owego współzawodnictwa pomiędzy ich aktywno4
PL 208 400 B1 ścią modyfikującą a aktywnością przecinania układy typu III powodują częściowe trawienie substratu DNA, w związku z czym nie są przydatne do genetycznych manipulacji.
Mmel nie wymaga ATP do aktywności przecinania DNA i przecina je całkowicie; zatem może zostać sklasyfikowana jako endonukleaza typu II. W sposób odmienny od pozostałych enzymów typu II jednak, Mmel składa się z pojedynczego polipeptydu, który łączy zarówno aktywność endonukleazową, jak i modyfikującą i jest sam przez się wystarczający do tworzenia pełnego układu restrykcyjnomodyfikacyjnego. Mmel przecina także w najdalszej odległości od specyficznej rozpoznawanej sekwencji DNA spośród wszystkich endonukleaz typu II (tak jak czyni to CstMI). Mmel jest całkiem dużych rozmiarów i wydaje się mieć trzy funkcjonalne domeny połączone w jednym polipeptydzie. Składają się one z amino-końcowej domeny, która zawiera endonukleazowy motyw cięcia DNA i która może być także zaangażowana w rozpoznawanie DNA, domenę modyfikującą DNA najbardziej podobną do klasy gamma metylotransferaz N6mA oraz domenę końca karboksylowego przypuszczalnie zaangażowaną w tworzenie dimeru i prawdopodobnie rozpoznawanie DNA. Enzym wymaga SAM zarówno do aktywności przecinającej, jak i modyfikującej. Pojedynczy polipeptyd Mmel wystarcza do modyfikowania wektora plazmidowego niosącego gen in vivo w celu zapewnienia ochrony przed przecinaniem przez Mmel in vitro, ponadto ma także zdolność przecinania nie zmodyfikowanych cząsteczek DNA in vitro, gdy zastosowany zostanie bufor endonukleazowy zawierający Mg++ oraz SAM.
Istnieje ciągłe zapotrzebowanie na nowe endonukleazy restrykcyjne typu II. Pomimo, że obecnie dostępne są endonukleazy restrykcyjne typu II, które rozpoznają wiele swoistych sekwencji nukleotydowych, nowe endonukleazy restrykcyjne, które rozpoznają nowe sekwencje zapewniają większe możliwości i zdolność manipulacji genetycznych. Każda nowa, niepowtarzalna endonukleaza umożliwia naukowcom precyzyjne przecinanie DNA w nowych miejscach w cząsteczce DNA, ze wszystkimi możliwościami, jakie to niesie.
Streszczenie wynalazku
Zgodnie z niniejszym wynalazkiem dostarczany jest wyizolowany segment DNA kodujący Mmel, restrykcyjna endonukleaza-metylaza, który charakteryzuje się tym, że wyizolowany DNA uzyskuje się z plazmidu pTBMmel o numerze dostę powym ATCC PTA-4521.
Następnym przedmiotem wynalazku jest rekombinowany wektor, do którego wprowadzono segment DNA kodujący Mmel, endonukleaza-metylaza, jak zdefiniowano powyżej.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest komórka gospodarza transformowana rekombinowanym wektorem z wprowadzonym segmentem wyizolowanego DNA, jak zdefiniowano powyżej.
Przedmiotem wynalazku jest także sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej Mmel oraz metylazy Mmel, polegający na tym, że prowadzi się hodowlę komórki gospodarza transformowanej wektorem według wynalazku w warunkach odpowiednich do ekspresji wspomnianej endonukleazy i metylazy.
Szczegółowo, sposób ten obejmuje hodowlę transformowanego gospodarza, takiego jak E. coli, zawierającego fragment DNA kodujący polipeptyd układu restrykcyjnego Mmel, zbieranie wyhodowanych komórek, uzyskiwanie z nich wolnego od komórek ekstraktu i oddzielanie oraz pozyskiwanie endonukleazy restrykcyjnej Mmel z wolnego od komórek ekstraktu.
Niniejszy wynalazek pozwala także na przeprowadzenie wytwarzania endonukleazy restrykcyjnej kodowanej przez sekwencje DNA zidentyfikowane jako homologiczne względem Mmel. Sposób ten obejmuje hodowlę stransformowanego gospodarza, takiego jak E. coli, zawierającego gen dla tych układów restrykcyjnych, zbieranie wyhodowanych komórek, uzyskiwanie z nich wolnego od komórek ekstraktu oraz oddzielanie i pozyskiwanie endonukleazy restrykcyjnej z wolnego od komórek ekstraktu.
Endonukleaza, oznaczoną dalej „Mmel”:
(1) rozpoznaje zdegenerowaną sekwencję nukleotydową 5'-TCC(Pu)AC-3' w dwuniciowym DNA, jak to przedstawiono poniżej:
5'-TCC(Pu)AC-3'
3'-AGG(Py)TG-5' (gdzie G oznacza guaninę, C oznacza cytozynę, A oznacza adeninę, T oznacza tymidynę, (Pu) oznacza prynę albo A, albo G oraz (Py) oznacza pirymidynę, albo C, albo T);
(2) przecina DNA w miejscu wiązania fosfodiestrowego za nukleotydem w kierunku 3' od sekwencji rozpoznawanej 5'-TCC(Pu)AC-3' i przed 18 nukleotydem w kierunku 5' do komplementarnej nici rozpoznawanej sekwencji 5'-GT(Py)GGA-3' w celu wytworzenia 2 zasadowego wydłużenia od końca 3':
5'-TCC(Pu)AC(N20)/-3'
PL 208 400 B1
3'-AGG(Py)GT(18)/-5' oraz (3) metyluje sekwencję rozpoznawaną określoną w (1) in vivo w celu ochrony DNA gospodarza przed przecinaniem w wyniku aktywności endonukleazy Mmel.
W oparciu o niniejszy wynalazek moż na wytworzyć dodatkowe fragmenty DNA, o których stwierdzono, że każdy koduje polipeptydy, które są znacząco podobne pod względem sekwencji do polipeptydu restrykcyjno-modyfikującego Mmel. Fragment DNA kodujący polipeptyd Mmel umożliwia identyfikację tych dodatkowych potencjalnych endonukleaz przez zastosowanie przeszukiwania podobieństw w bazach danych, takich jak GENBANK, przy zastosowaniu programu, takiego jak BLAST (Altschul i wsp., Nucleic Acids Res. 25: 3389-3402 (1997)). Te fragmenty DNA, jak również jakiekolwiek inne fragmenty o takim podobieństwie do Mmel, które mogą być w przyszłości złożone w bazach danych, są kandydatami, które mogą kodować polipeptydy podobne do Mmel, w taki sposób, że kodowane polipeptydy działają zarówno jako endonukleazy restrykcyjne, jak i metylotransferazy. Polipeptydy te mogą, podobnie do Mmel, przecinać DNA w podobnej odległości od sekwencji rozpoznawanej, w zakresie 18 do 20 nukleotydów lub więcej, która to cecha jest niepowtarzalna i znajduje zastosowanie w pewnych technikach biologii molekularnej. Specyficznie, polipeptydy te zawierają motywy aminokwasowe wspólne dla metylotransferaz DNA N6mA w środkowej części polipeptydu, posiadają motyw wspólny dla endonukleaz restrykcyjnych znajdujący się w amino-końcowym odcinku polipeptydów, składający się z aminokwasów D/E(X8-X12)D/EXK i posiadają region kilkuset aminokwasów znajdujący się za konserwowanymi motywami metylotrasferazowymi, które są znacząco podobne do tego regionu Mmel i o których sądzi się, że służą jako domena dimeryzująca i prawdopodobnie rozpoznająca sekwencję DNA. Przedstawiono przykład takiego polipeptydu, CstMI. Wykazano, że CstMI rozpoznaje asymetryczną sekwencję 6 par zasad 5'-AAGGAG-3' i przecina DNA w taki sam sposób, jak Mmel; 5'-AAGGAGN20/N18-3'. Endonukleaza kodowana przez takie fragmenty DNA może być wytwarzana w procesie stosowanym dla Mmel, jak to opisano poniżej.
Krótki opis rysunków
Figura 1 - żel agarozowy przedstawiający trawienie przez Mmel DNA lambdy, T7, phiXl74, pBR322 oraz pUC19.
Figura 2 - sekwencja DNA locus genu Mmel (SEK ID NR: 1).
Figura 3 - sekwencja aminokwasowa locus genu Mmel (SEK ID NR: 2).
Figura 4 - żel agarozowy przedstawiający trawienie przez Mmel DNA pTBMme.1 oraz nie zmodyfikowanych substratów DNA.
Figura 5 - żel agarozowy przedstawiający trawienie przez Mmel nie zmetylowanych, półzmetylowanych i całkowicie zmetylowanych substratów DNA.
Figura 6 - inkorporacja wyznakowanych grup metylowych do nie zmetylowanych, półzmetylowanych i całkowicie zmetylowanych substratów DNA.
Figura 7 - wielokrotne przyrównanie sekwencji aminokwasowych Mmel (SEK ID NR: 3 do SEK ID NR: 14) i polipeptydów homologicznych pochodzących z publicznych baz danych.
Szczegółowy opis wynalazku
Sekwencja rozpoznawana oraz miejsce cięcia endonukleazy według niniejszego wynalazku, zostało opisane uprzednio (Boyd, Nucleic Acids Res. 14: 5255-5274 (1986)). Jednakże, wytwarzanie enzymu Mmel z naturalnego gospodarza, Methylophilus methylotrophus, okazało się trudne z powodu bardzo niskiej wydajności pozyskiwania enzymu i względnej trudności hodowli gospodarza M. methylotrophus w dużych ilościach. W celu przezwyciężenia tych ograniczeń w wytwarzaniu Mmel, niniejsze zgłoszenie opisuje identyfikację sekwencji DNA kodującej gen Mmel i ekspresję tego genu Mmel w organizmie odpowiedniego gospodarza, w danym przypadku E. coli. Ta manipulacja fragmentu DNA kodującego Mmel w rezultacie daje zarówno znaczący wzrost w ilości wytwarzanego enzymu w przeliczeniu na gram komórek, jak i znaczący wzrost w łatwości hodowli w dużych ilościach komórek zawierających enzym Mmel.
Zastosowano bez powodzenia kilka standartowych podejść wykorzystywanych typowo przez specjalistów, do klonowania Mmel. W szczególności, nie powiodła się próba selekcji metylazy (Wilson i wsp., patent USA nr 5 200 333). Stworzono kilka losowych bibliotek DNA M. methylotrophus w E. coli i poddano trawieniu za pomocą Mmel, ale nie uzyskano klonów zawierających metylazy Mmel.
Spróbowano drugiego podejścia, lecz bez powodzenia. W podejściu tym, do przeszukiwania biblioteki losowych klonów stworzonych w podstawieniowych wektorach faga lambda zastosowano przeciwciała specyficzne względem N6mA. Próba powiodła się pod względem pozyskania klonów pozytywnych na metylazę, lecz okazało się, że wszystkie przebadane klony wykazywały raczej eks6
PL 208 400 B1 presję metylotransferazy drugiego układu restrykcyjnego w M. methylotrophus, metylazy Mmell (sekwencja rozpoznawana 5'-GATC-3') niż pożądaną aktywność metylazy Mmel.
Zakończona sukcesem próba uzyskania pożądanego fragmentu DNA kodującego układ restrykcyjny Mmel obejmowała kilka etapów. Najpierw, opracowano nową procedurę oczyszczania w celu oczyszczenia peptydu endonukleazy Mmel z M. methylotrophus do osiągnięcia homogenności. Po uzyskaniu tego ultra czystego polipeptydu endonukleazy Mmel w znacznej ilości, określono sekwencję aminokwasową końca aminowego oraz wewnętrznych peptydów powstałych po degradacji bromocyjanem. Przy zastosowaniu uzyskanej sekwencji aminokwasowej, zsyntetyzowano zdegenerowane startery DNA komplementarne do DNA kodującego sekwencje aminokwasowe i zastosowano do amplifikacji PCR części genu Mmel. Określono sekwencję DNA tej części genu Mmel. Następnie uzyskano pełną sekwencję genu endonukleazy Mmel oraz otaczających sekwencji DNA wykorzystując technikę odwrotnego PCR. Zaprojektowano dużą liczbę starterów pokrywających się z uzyskaną sekwencją DNA, zsyntetyzowano i zastosowano w połączeniu z wieloma różnymi matrycami. Odwrócone matryce PCR wytworzono poprzez trawienie genomowego DNA M. methylotrophus rozmaitymi endonukleazami restrykcyjnymi, a następnie ligację pociętego DNA M. methylotrophus w niskim stężeniu w celu uzyskania cząsteczek kolistych. Wypróbowano rozmaite startery w połączeniach z rozmaitymi matrycami w celu znalezienia połączeń starter-matryca, które wytwarzały specyficzny produkt amplifikacji PCR. Produkty w ten sposób otrzymane zostały zsekwencjonowane. Po uzyskaniu sekwencji DNA kodującej pełny gen endonukleazy Mmel, zaprojektowano startery w celu specyficznego zamplifikowania genu z genomowego DNA M. methylotrophus. Namnożony gen został wstawiony do wektora ekspresyjnego i sklonowany do gospodarza E. coli. Gospodarz został sprawdzony i wykazano, że ma zdolność zarówno do ekspresji aktywności endonukleazy Mmel, jak i do modyfikowania in vivo rekombinowanego wektora ekspresyjnego w taki sposób, że był on zabezpieczony przed aktywnością endonukleazy Mmel in vitro.
Odkrycie, że pojedynczy polipeptyd kodujący endonukleazę Mmel zapewnia także in vivo ochronę przed Mmel, jest sprzeczne z uprzednio opublikowanymi informacjami dotyczącymi Mmel (Tucholski, Gene 223: 293-302 (1998)). Szczególnie, referencja ta pouczała, że polipeptyd endonukleazy Mmel nie zapewniał ochrony przed cięciem przez endonukleazę Mmel. Praca ta donosiła, że do modyfikowania miejsca Mmel na obu niciach, a tym samym blokowania cięcia przez endonukleazę Mmel wymagana jest oddzielna metylotransferaza o wielkości 48 kD. W szczególności, referencja poucza, że polipeptyd endonukleazy Mmel modyfikuje adeninę jedynie w górnej nici rozpoznawanej sekwencji 5'-TCCRAC-3' i że tak zmodyfikowane DNA jest przecinane przez endonukleazę Mmel. Fragment DNA według niniejszego wynalazku koduje gen endonukleazy Mmel, który, o ile występuje sam w gospodarzu E. coli, czyni wektor zawierający endonukleazę Mmel opornym na przecinanie przez oczyszczoną endonukleazę Mmel. Dalej, endonukleazą Mmel wytwarzana z tego fragmentu nie przecina fragmentu DNA zmodyfikowanego w pozycji adeniny górnej nici, 5'-TCCRAC-3', jeśli brak jest modyfikacji przeciwnej lub dolnej nici. Jest to sprzeczne z danymi zawartymi w referencji Tucholskiego. Endonukleaza Mmel według niniejszego zgłoszenia przecina także fragment DNA, w którym reszta adeninowa w dolnej nici jest zmodyfikowana 5-GTYGGA-3', co sprzeczne jest z danymi z referencji Tucholskiego. W przypadku, gdy zarówno górna, jak i dolna nić są zmodyfikowane w resztach adeninowych, endonukleazą Mmel nie przecina DNA. Nie znaleziono żadnego drugiego genu metylotransferazy, takiego jak opisany w referencji Tucholskiego, sąsiadującego z genem endonukleazy Mmel. Istnieje otwarta ramka odczytu bezpośrednio w kierunku 3' względem genu endonukleazy Mmel, która mogłaby kodować białko o w przybliżeniu odnotowywanym rozmiarze wykazujące drugą aktywność metylotransferazy (48 kD). Jednakże, ten potencjalny polipeptyd nie zawiera motywów aminokwasowych znajdowanych w metylotransferazach, ani, sklonowany w E. coli, nie zapewnia ochrony przed endonukleazą Mmel. O ile referencja Tucholskiego wskazuje na konieczność istnienia drugiego polipeptydu metylotransferazy w celu zapewnienia ochrony przed aktywnością endonukleazy Mmel w komórce gospodarza, w niniejszej aplikacji wykazano, że fragment DNA kodujący polipeptyd endonukleazy Mmel jest wystarczający do zapewnienia takiej ochrony. Dodatkowo, jedenaście opisanych tutaj fragmentów DNA, które kodują sekwencje aminokwasowe podobne do Mmel, nie jest oflankowanych przez jakiekolwiek rozpoznawalne DNA genów metylotransferazy. Wskazuje to na fakt, że polipeptydy te prawdopodobnie same zapewniają zarówno ochronę DNA gospodarza, jak i aktywność endonukleazy skierowaną przeciwko nie zmodyfikowanym substratom DNA, bez drugiej metylotransferazy jako części układu restrykcji-modyfikacji. Pozostaje to w sprzeczności z innymi układami restrykcji-modyfikacji typu II.
PL 208 400 B1
Ta sama grupa (Tucholski, Gene 223: 293-302 (1998) oraz Anna Podhajska, informacja przekazana osobiście) uprzednio donosiła o sekwencji aminokwasowej składającej się z ośmiu reszt dla pojedynczego wewnętrznego fragmentu trawienia CnBr (sekwencja GRGRGVGV (SEK ID NR: 50). Wielokrotnie bez powodzenia próbowano przeprowadzić PCR na podstawie tej sekwencji. Wykazano, że sekwencja ta nie jest związana z Mmel po ustaleniu rzeczywistej sekwencji aminokwasowej Mmel według niniejszego wynalazku. Zatem ustalenie poprawnych wewnętrznych sekwencji aminokwasowych, które umożliwiły klonowanie genu Mmel, zależało od nowego sposobu oczyszczania, opisanego w tej aplikacji, mającego na celu wytworzenie wystarczająco czystego Mmel w wystarczająco dużej ilości w celu ustalenia sekwencji Mmel poprzez hodowlę aminokwasowych fragmentów wewnętrznych po działaniu bromocyjankiem, jak zostało to przeprowadzone w niniejszym zgłoszeniu.
W przykł adzie II otrzymali ś my Mmel poprzez hodowl ę transformowanego gospodarza zawierającego gen Mmel, takiego jak E. coli ER2683 zawierającego pTBMmel.1 i odzyskiwanie z komórek ednonukleazy. Próbkę E. coli ER2683 zawierającą pTBMmel.1 (NEB#1457) złożono zgodnie z warunkami i zastrzeżeniami Budapest Treaty z American Type Culture Collection (ATCC) 3 lipca 2002 i przyporządkowano Nr Dostępowy Patentu PTA-4521.
W celu odzyskania enzymu według niniejszego wynalazku, E. coli zawierające pTBMmel.1 (NEB #1457) można hodować stosując każdą odpowiednią technikę. Na przykład, E. coli zawierające pTBMmel.1 można hodować w pożywce bulionowej Luria zawierającej 100 μg/ml ampicyliny i inkubować w warunkach tlenowych w 37°C z napowietrzaniem. Komórki w późnej fazie logarytmicznej wzrostu indukowane są przez dodanie 0,3 mM IPTG, hodowane przez dodatkowe 4 godziny, zbierane przez odwirowanie i albo od razu niszczone albo przechowywane w formie zamrożonej w -70°C.
Enzym Mmel może być izolowany z komórek E. coli zawierających pTBMmel.1 przez tradycyjne techniki oczyszczania białka. Na przykład, osad komórek zawieszany jest w roztworze buforu i poddawany sonifikacji, dyspersji w wysokim ciśnieniu lub trawieniu enzymatycznemu w celu umożliwienia ekstrakcji endonukleazy przez roztwór buforu. Nie zniszczone komórki i resztki komórkowe są następnie usuwane przez odwirowanie w celu wytworzenia wolnego od komórek ekstraktu zawierającego Mmel. Endonukleaza Mmel, wraz jej z odpowiadającą, wewnętrzną aktywnością metylazy jest następnie oczyszczana z wolnego od komórek ekstraktu przez chromatografię jonowymienną, chromatografię powinowactwa, chromatografię sitową lub połączenie tych sposobów, w celu wytworzenia endonukleazy według niniejszego wynalazku.
Niniejszy wynalazek dotyczy także dodatkowych fragmentów DNA, z których każdy koduje polipeptyd posiadający znaczące podobieństwo sekwencji aminokwasowej do polipeptydu Mmel. Przewiduje się, że polipeptydy kodowane przez te fragmenty DNA będą wykazywać podobne do Mmel funkcje. Szczególnie, przewiduje się, że posiadają one podwójne funkcje enzymatyczne przecinania DNA w sposób specyficzny w stosunkowo dalekiej odległości od specyficznej sekwencji rozpoznawanej, a także modyfikowania ich sekwencji rozpoznawanych w celu ochrony DNA gospodarza przed przecinaniem w wyniku ich aktywności endonukleolitycznej. Po ustaleniu sekwencji aminokwasowej endonukleazy Mmel, jak to opisano w tej aplikacji, sekwencje złożone w bazach danych mogą być porównane z tą sekwencją Mmel w celu odnalezienia tych kilku sekwencji, które są wysoce znacząco podobne do Mmel. Sposób ten jest podobny do tego z patentu USA nr 6 383 770 (Roberts i wsp.), za wyjątkiem tego, że tutaj raczej poszukujemy podobieństwa do sekwencji endonukleazy Mmel niż sekwencji, które pokrywają się z bazą danych białek metylotransferazy lub endonukleazy, a następnie sprawdzamy każde niezidentyfikowane otwarte ramki odczytu znajdujące się obok potencjalnych otwartych ramkach odczytu metylotransferazy. Przed zidentyfikowaniem sekwencji aminokwasowej Mmel, sekwencje DNA kodujące białka pokrewne do Mmel, nie były włączone do bazy danych sekwencji genów enzymów restrykcyjnych i metylotransferaz, wykorzystywanej przez Roberts i wsp., powyżej, jako że sekwencje te nie były połączone z żadną znaną funkcją endonukleazową. Ujawniony tutaj sposób identyfikacji potencjalnych endonukleaz podobnych do Mmel jest zatem bardziej swoisty niż sposób według patentu USA nr 6 383 770 (Roberts i wsp.).
Przeszukiwanie podobieństw sekwencji Mmel względem sekwencji dostępnych w bazach danych, takich jak GENEBANK, wykonuje się stosując program taki jak BLAST (Altschul i wsp., Nucleic -10
Acids Res. 25: 3389-3402 (1997)). Sekwencję z oceną wartości oczekiwanej (E) mniejszą niż E = e-10 rozpatruje się jako endonukleazę będącą potencjalnym kandydatem. Sekwencje dające wartości oczekiwane o wiele niższe, tak niskie jak E = e- rozpatruje się z wysokim prawdopodobieństwem jako endonukleazy podobne do Mmel. Takie podobne do Mmel peptydy będące kandydatami są dalej badane w celu sprawdzenia czy są zgodne z architekturą domen, którą wykazuje Mmel. Prawdziwy kan8
PL 208 400 B1 dydat będzie zawierał motyw pofałdowania endonukleazy, zazwyczaj w formie (D/E)X8-X12(D/E)XK w amino-koń cowej części peptydu, (Aravind i wsp., Nucleic Acids Res. 28: 3417-3432 (2000)). Prawdziwy kandydat będzie zawierał motywy metylotransferazy w części środkowej peptydu podobne do metylotransferaz adeninowych N6-metylowych klasy gamma i sekwencje podobne do części karboksylowej Mmel w części karboksylowej peptydu kandydata. Takie wyszukiwanie BLAST wykonane 12 czerwca 2003 wykazało następujące sekwencje jako bardzo znacząco podobne do Mmel:
Nr dostępu GENEBANK Opis Wynik Wartość E SEK ID Nr
1. gi 11579486821 ref| NP_284504.11 białko hipotetyczne [Neisseri 643 0,0 6
2. gi | 99457971 gb | AAG03371.11 GcrY [Corynobacte- rium striatum ... 604 e-171 8
3. gi 1160777441 ref | NP_388558.11 białko podobne do hipotetycznego 564 e-159 7
4. gi| 28373198| ref| NP_783835.11 białko próbne YeeA [Lactoba . 531 e-149 3
5. gi | 231106381 gb | ZP_00096791.11 białko hipotetyczne [Novosph . 426 e-118 10
6. gi | 274505191 gb | AAO14619.11 AF465251_62 nieznane [Lactobacillus . 217 9e-55 4
7. gi 1158072581 ref | NP_295988.11 metylotransferaza modyfikująca DNA 213 1e-53 14
8. gi 1158077881 ref | NP_285443.11 konserwowane białko hipotetyczne 164 7e-39 13
9. gi| 21231551| ref | NP_637468.11 konserwowane białko hipotetyczne 142 2e-32 N/A
10. gi | 208039631 emb | CAD31540.11 domniemane białko metylazy DNA 134 7e-30 11
11. gi 1234518261 gb | AAN32874.11 AF461726.1 nieznane [Pseudomonas f . 98 6e-19 9
12. gi 1161250791 ref| NP_419643.11 konserwowane białko hipotetyczne 92 3e-17 12
13. gi 1109545341 ref| NP_044172.11 M. jannaschii przewidywane kodujące . 76 2e-12 N/A
Większość z tych białek, w ich wpisach w bazach danych, oznaczono jako hipotetyczne lub przypuszczalne. Wiele z nich wydaje się być polipeptydami o pełnej długości, tak jak sekwencja #2 powyżej: GcrY. Takie peptydy kandydujące mogą zostać poddane ekspresji, jak to opisano w Roberts, w celu identyfikacji oczekiwanej aktywnoś ci endonukleazy. Niektóre geny endonukleaz mogą być nieaktywne w poszczególnym szczepie zastosowanym do sekwencjonowania (Lin i wsp.. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98: 2740-2745 (2001)). W takim wypadku ekspresja funkcjonalnej endonukleazy może okazać się prawdopodobna dzięki naprawie mutacji, które inaktywowały te geny. Kilka homologów Mmel, takich jak #7 (SEK ID NR: 14) (Deinococcus radiodurans DR2267) oraz #8 (SEK ID NR: 13) (Deinococcus radiodurans DR0119.1) posiada błędy w otwartej ramce odczytu. DR2267 posiada kodon stop, TAG, który przedwcześnie kończy otwartą ramkę odczytu, w pozycji, w której Mmel posiada kwas glutaminowy kodowany przez kodon GAG. Przez zamianę tego kodonu stop TAG na GAG możliwe może się stać przywrócenie aktywności tego potencjalnego genu endonukleazy. DR0119.1 także jest uszkodzony w taki sposób, że ma przesunięcie ramki odczytu, które uszkadza otwartą ramkę odczytu. Sekwencja Mmel może być stosowana w celu nakierowania na miejsce, w którym należy zreperować to przesunięcie ramki odczytu przez maksymalizację podobieństwa sekwencji DR0119.1 do sekwencji Mmel. Może to z powodzeniem przywrócić aktywność endonukleazy DR0119.1.
PL 208 400 B1
Alternatywna droga wytwarzania endonukleaz polega na wykorzystaniu struktury ich domen podobnych poprzez wykonanie wymiany domen. Możliwa jest wymiana domeny amino-końcowej peptydu podobnego do Mmel na domenę amino-końcową w białku Mmel, na przykład przez wymianę sekwencji potencjalnego nowego genu do pierwszego motywu metylotransferazy (motyw X, „Gly Ala His Tyr Thr Ser” w Mmel, w celu zastąpienia tej części Mmel aż do tej samej sekwencji. Podejście to może być szczególnie przydatne, kiedy dostępna jest tylko część sekwencji lub potencjalny gen stracił funkcję z powodu licznych mutacji. Podejście to wytworzy białko chimerowe, które potencjalnie posiada aktywność endonukleazy i przecina w pewnej odległości od sekwencji rozpoznawanej, podobnie jak Mmel, ale rozpoznaje nową sekwencję DNA. Można także odnaleźć w bazach danych sekwencje, które są wysoce podobne do Mmel, ale są częściowe. Na przykład, sekwencja #11 (SEK ID Nr: 9) powyżej (Pseudomonas fluorescens) pochodzi z małego fragmentu sekwencji DNA znajdującej się w bazie danych. W celu otrzymania funkcjonalnej ednonukleazy podobnej do Mmel z tej sekwencji, można zastosować odwrotny PCR lub inne techniki do otrzymania sekwencji DNA sąsiadującej z przytoczonym fragmentem, a następnie zastosować tę sekwencję w celu otrzymania nienaruszonego genu endonukleazy.
Po zidentyfikowaniu sekwencji, potencjalna endonukleaza może zostać poddana ekspresji i scharakteryzowana, jak to opisano w Roberts i wsp., powyż ej. Tutaj, jednakż e, nie ma oddzielnego genu metylotransferazy mogącego podlegać ekspresji wraz z endonukleazą. Po sklonowaniu takiej potencjalnej endonukleazy i poddaniu jej ekspresji w odpowiednim gospodarzu, takim jak E. coli, ekstrakt wolny od komórek jest przygotowywany i analizowany w celu wykrycia jakiejkolwiek aktywności endonukleazy. Takie oznaczanie endonukleazy musi obejmować kofaktor SAM wymagany przez te endonukleazy.
Po stwierdzeniu specyficznej aktywności przecinania DNA, sekwencja rozpoznawana i miejsce przecinania mogą zostać ustalone za pomocą standardowych sposobów. (Schildkraut (1984) w Genet. Eng. (NY) tom 6 (Setlow J. K., Hollaender, A. Ed.). str. 117-140. Plenum Press, New York „Screening for and characterizing restriction endonucleases.”).
Tak zidentyfikowane enzymy mogą być izolowane z komórek E. coli niosących fragmenty DNA w odpowiednim wektorze, za pomocą tradycyjnych technik oczyszczania biał ka. Na przykł ad, osad komórek zawieszany jest w roztworze buforu i poddawany sonifikacji, dyspersji w wysokim ciśnieniu lub enzymatycznemu trawieniu w celu umożliwienia ekstrakcji endonukleazy przez roztwór buforu. Nienaruszone komórki i resztki komórkowe są następnie usuwane przez odwirowywanie w celu wytworzenia ekstraktu wolnego od komórek zawierającego enzymy.
Endonukleaza wraz z odpowiadającą jej wewnętrzną aktywnością metylazy jest następnie oczyszczana z ekstraktu wolnego od komórek za pomocą chromatografii jonowymiennej, chromatografii powinowactwa, chromatografii sitowej lub połączenia tych sposobów w celu wytworzenia endonukleazy według niniejszego wynalazku.
Przewiduje się, że te fragmenty DNA, jak również jakiekolwiek inne fragmenty o takim podobieństwie do Mmel, że mogą być one złożone w przyszłości w bazach danych, kodują polipeptydy, które są podobne do Mmel, w taki sposób, że kodowane polipeptydy działają zarówno jako endonukleazą restrykcyjna, jak i metylotransferaza.
Polipeptydy te mogą, podobnie do Mmel, przecinać DNA w podobnej odległości od rozpoznawanej sekwencji, w zakresie około 18 do 20 nukleotydów lub więcej, która to cecha jest wyjątkowa i przydatna w pewnych technologiach biologii molekularnej.
Przykładem takiego enzymu zidentyfikowanego w tym procesie jest CstMI. CstMI został zidentyfikowany jako potencjalna endonukleaza z powodu swojego wysoce znaczącego podobieństwa sekwencji aminokwasowej do Mmel. CstMI kodowany jest przez sekwencję #2 powyżej (SEK ID NR: 8), dającą wysoce znaczącą wartość oczekiwaną wynoszącą e-171 w porównaniu z Mmel za pomocą BLAST. CstMI rozpoznaje asymetryczną sekwencję 6 par zasad 5'-AAGGAG-3' i przecina DNA w ten sam sposób, co Mmel: przecina wiązanie fosfodiestrowe pomiędzy 20 a 21 resztą w kierunku 3' względem tej rozpoznawanej sekwencji na tej nici DNA oraz pomiędzy 18 a 19 resztą w kierunku 5' względem sekwencji rozpoznawanej na nici komplementarnej 5'-CTCCTT-3', w wyniku czego wytwarzane jest 2 zasadowe wydłużenie od końca 3'.
Niniejszy wynalazek jest dalej zilustrowany przez następujące przykłady.
Przykłady te są dostarczone dla celów pomocniczych w zrozumieniu wynalazku i nie mają być interpretowane jako jego ograniczenie.
Cytowane powyżej i poniżej referencje zamieszczone są tutaj w formie odnośników.
PL 208 400 B1
P r z y k ł a d I. Oczyszczanie endonukleazy Mmel
Pojedynczą kolonię Methylophilus methylotrophus (NEB # 1190) hodowano przez 24 godziny w 1 litrze pożywki μΜ (0,08 μΜ CUSO4, 0,448 μΜ MnSO4, 0,348 μΜ ZnSO4, 6,0 μΜ FeCl3, 18 μΜ CaCO3, 1,6 mM MgSO4, 9,0 mM NaH2PO4, 10,9 mM K2HPO4, 13,6 mM (NH4)2SO4). Hodowlę tę stosowano do zaszczepienia 100 litrów pożywki Μ. Komórki hodowano w warunkach tlenowych w 37°C, przez noc, aż do fazy stacjonarnej. Pięć 100 litrowych fermentatorów było wymaganych do zebrania
752 gramów mokrego osadu komórkowego.
750 gramów osadu komórkowego M. methylotrophus zawieszano w 2,25 litra Buforu A (20 mWI Tris-HCl (pH 8,0), 50 mM NaCl, 1,0 mM DTT, 0,1 mM EDTA, 5% Glicerol) i przepuszczano przez homogenizator Gaulin przy ~12000 funta na cal kwadratowy. Lizat odwirowywano przy ~13000 x G przez 40 minut i zbierano nadsącz.
Roztwór nadsączu nanoszono na 500 Hyper-D (BioSepra S.A.), którą równoważono w buforze A. Zastosowano płukanie 1,0 L buforu A, a następnie nanoszono 2 l gradientu NaCl od 0,05 Μ do 1Μ w buforze A, po czym frakcje zbierano. Frakcje oznaczano na aktywność endonukleazy Mmel przez inkubowanie z 1 μg DNA Lambda (NEB) w 50 μl buforu NEB 1, uzupełnionego 32 μΜ S-adenozylo-L-metioniną (SAM) przez 15 minut w 37°C. Aktywność Mmel eluowano przy 0,3 M do 0,4 M NaCl.
Frakcje kolumny heparynowej Hyper-D zawierające aktywność Mmel łączono, rozcieńczano do 50 mM NaCl buforem A (bez NaCl) i nanoszono na 105 ml kolumnę Q Source 15 (Amersham Biotech), zrównoważoną buforem A. Stosowano płukanie 210 ml buforu A, a następnie nanoszono 1,0 L gradientu NaCl od 0,05 M do 0,7 M w buforze A. Frakcje zbierano i oznaczano aktywność endonukleazy Mmel. Aktywność Mmel znajdowano we frakcji niezwiązanej.
Pulę Source 15 Q nanoszono na 22 ml kolumnę AF-Heparin-TSK (TosoHaas), zrównoważoną buforem A. Stosowano płukanie 44 ml buforu A, po czym nanoszono liniowy gradient NaCl od 0,05 M do 1,0 M w buforze A. Frakcje zbierano i oznaczano na aktywność endonukleazy Mmel. Aktywność Mmel eluowano pomiędzy 0,26 M a 0,29 M NaCl. Frakcje zawierające aktywność pulowano i dializowano przeciw buforowi B (20 mM NaPO4 (pH 7,0), 50 mM NaCl, 1,0 mM DTT, 0,1 mM EDTA, 5% Glicerol).
Przedializowaną pulę AF-Heparin-TSK nanoszono na 6 ml kolumnę Resorce 15 S (Amerscham Biotech), zrównoważoną buforem B. Stosowano płukanie 12 ml buforu B, po czym nanoszono liniowy gradient NaCl od 0,05 M do 1,0 M w buforze B. Frakcje zbierano i oznaczano na aktywność endonukleazy Mmel. Aktywność Mmel eluowano pomiędzy 0,14 M a 0,17 M NaCl.
Pulę tę nanoszono na 2 litrową kolumnę rozdzielającą pod względem wielkości Superdex 75 (Amersham Biotech), zrównoważoną buforem C (20 mM Tris-HCl pH 8,0, 500 mM NaCl, 1,0 mM DTT, 0,1 mM EDTA, 5% Glicerol). Frakcje zbierano pomiędzy 500 a 1500 ml eluatu buforem C, po czym analizowano za pomocą oznaczenia endonukleazy Mmel i elektroforezy w żelu poliakrylamidowym na 4-20% gradiencie żelowym, po którym przeprowadzano znakowanie białka barwnikiem Coomassie Brilliant Blue. Frakcje wymyte pomiędzy 775 a 825 ml odpowiadały aktywności Mmel i prążkowi białka o wielkości 105 kDa. Frakcje te pulowano i dializowano przeciw buforowi D (20 Mm NaPO4 (pH 7,0), 50 mM NaCl, 1 mM DTT, 5% Glicerol).
Przedializowaną pulę kalibracyjną nanoszono na 16 ml kolumnę Ceramic HTP (BioRad), zrównoważoną buforem D. Po przemyciu 32 ml buforu D, nanoszono liniowy gradient od 0,02 M do 1,0 M NaPO4 w buforze D. Frakcje zbierano i oznaczano za pomocą oznaczenia endonukleazy Mmel i elektroforezy w żelu poliakrylamidowym na 4-20% gradiencie żelowym, po czym następowało znakowanie białka barwnikiem Coomassie Brilliant Blue. Mmel wymywano pomiędzy 0,26 M a 0,3 M NaPO4. Porcję kilku frakcji zawierających pojedynczy prążek homogennego białka o wielkości 105 kDa stosowano do sekwencjonowania białka. Resztę oczyszczonych frakcji Mmel pulowano (6 ml 0,36 mg/ml) i dializowano przeciw buforowi do przechowywania (10 mM Tris (pH 7,9), 50 mM KCl, 1 mM DTT, 0,1 mM EDTA, 50% Glicerol). Oczyszczony enzym Mmel przechowywano w -20°C.
Oznaczenie aktywności
Próbki od 1-4 μl dodawano do 50 μl roztworu substratu składającego się z 1 x bufor NEB 1, 32 μΜ S-adenozylo-L-metioniny oraz 1 μg DNA (DNA Lambda, PhiX174 lub pUC19). Mieszaniny reakcyjne inkubowano przez 15 minut w 37°C, dodawano 20 μl roztworu stop i analizowano za pomocą elektroforezy w 1% żelu agarozowym.
Optymalizowana aktywność endonukleazy
Po oczyszczeniu Mmel z M. methylotrophus, przeprowadzano doświadczenia w celu ustalenia optymalnych warunków reakcji dla przecinania DNA. Okazało się, że aktywność endonukleazy była
PL 208 400 B1 znacząco zwiększona w obecności potasu w buforze reakcyjnym. Reakcje przeprowadzano w 4°C do 37°C i od 5 do 60 minut bez znacznej zmiany w ilości przecinanego DNA. Do maksymalnego przecinania wymagane były stężenia enzymu w lub blisko równowagi stechiometrycznej dla miejsc DNA. Duży nadmiar enzymu blokował przecinanie. Dane te zastosowano do ponownego ustalenia aktywności Mmel i do określenia funkcjonalnej jednostki endonukleazy.
Definicja jednostki
Jedna jednostka Mmel jest określona jako ilość Mmel wymagana do całkowitego przecięcia 1 μg DNA PhiX174 w ciągu 15 minut w 37°C w buforze NEB 4 (20 mM Tris-octanu, 10 mM octanu magnezu, 50 mM octanu potasu, 1 mM ditiotreitolu (pH 7,9 w 25°C)) uzupełnionym 80 pM S-adenozylo-L-metioniną (SAM).
P r z y k ł a d II. Klonowanie endonukleazy Mmel
1. Oczyszczanie DNA: przygotowywano całkowite genomowe DNA Methylophilus methylotrophus. 5 gramów osadu komórkowego zawieszano w 20 ml 25% sacharozy, 0,05 M Tris-HCl pH 8,0, do którego dodawano 10 ml 0,25 M EDTA, pH 8,0. Następnie dodawano 6 ml roztworu lizozymu (10 mg/ml lizozymu w 0,25 M Tris-HCl, pH 8,0), a zawiesinę komórek inkubowano w 4°C przez 16 godzin. Następnie dodawano 25 ml mieszaniny Lytic (1% Triton-X100, 0,05 M Tris, 62 mM EDTA, pH 8,0) oraz 5 ml 10% SDS, a roztwór inkubowano w 37°C przez 5 minut. Roztwór ekstrahowano jedną objętością zrównoważonej mieszaniny fenol:chloroform:alkohol izoamylowy (50:48:2 obj./obj./obj.), a fazę wodną odzyskiwano i ekstrahowano jedną objętością zrównoważonej mieszaniny chloroform:alkohol izoamylowy (24:1 obj./obj.) dwukrotnie. Następnie dializowano roztwór wodny przeciw czterem zmianom 2 L 10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8,0. Przedializowany roztwór DNA trawiono Rnazą (100 μg/ml) w 37°C przez 1 godzinę. DNA wytrącano przez dodanie 1/10 objętości 5 M NaCl i 0,55 objętości 2-propanolu i nawijano na szklaną pałeczkę. DNA przemywano krótko 70% etanolem, krótko suszono na powietrzu i rozpuszczano w 20 ml TE (10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8,0) do stężenia w przybliżeniu 500 μg/ml i przechowywano w 4°C.
2. Endonukleazę Mmel oczyszczano do homogenności, tak jak opisano w przykładzie I powyżej.
3. Sekwencje aminokwasowe endonukleazy końca aminowego oraz dla kilku wewnętrznych produktów trawienia bromocyjanem polipeptydu Mmel. Endonukleazę restrykcyjną Mmel, przygotowaną jak to opisano w przykładzie I powyżej, poddawano elektroforezie i elektroblottingowi zgodnie z procedurą Matsudaira (Matsudaira J. Biol. Chem. 262: 10035-10038, (1987)), z modyfikacjami opisanymi uprzednio (Looney i wsp., Gene 80: 193-208 (1989)). Błonę barwiono Coomassie Blue R-250, a prążek białka o wielkości w przybliżeniu 105 kDa wycinano i poddawano sekwencyjnej degradacji w sekwencjonerze ABI Procise 494 Protein/Peptide z dostarczaniem fazy gazowej (Waite-Rees i wsp., J. Bacteriol. 173: 5207-5219 (1991)). Otrzymana sekwencja aminokwasowa pierwszych 14 aminokońcowych reszt była następująca: ALSWNEIRRKAIEF (SEK ID NR: 15).
Dodatkową próbkę endonukleazy Mmel, 20 μq w 20 μl traktowano bromocyjanem (Sigma) rozpuszczonym w 200 μl 88% destylowanego kwasu mrówkowego przez 24 godziny w ciemności w temperaturze pokojowej. Tę mieszaninę reakcyjną odparowywano do sucha i ponownie zawieszano w 20 μl buforu obciążającego (1,5 M Tris-HCl, pH 8,5, 12% glicerol, 4% SDS, 0,05% Serva Blue G, 0,05% czerwień fenolowa) w 100°C przez 5 minut. Próbkę tę poddano elektroforezie na Tris-Tricine 10 do 20% poliakrylamidowego gradientu żelowego (Invitrogen) przez trzy godziny, a następnie przenoszono na błonę dwufluorku poliwinylidenu (PVDF) (Problott, Applied Biosystems Inc.) przy zastosowaniu 10 mM buforu CAPS (10 mM kwas 3-[cykloheksylamino]-1-propanosulfonowy, 10% metanol, 0,05% SDS, 0,005% ditioterytiol, doprowadzone do pH 11,0 za pomocą NaOH) przez 18 godzin przy 200 woltach w zbiorniku elektroblottera (TE52, Hoeffer). Błonę znakowano Coomassie BlueR-250 i obserwowano główne prążki o wielkościach 25 kilodaltonów (kD), 14 kD, 7,5 kD oraz 6 kD, jak również mniejsze prążki. Te wyznakowane prążki białkowe wycinano z błony i każdy poddawano degradacji sekwencyjnej. Fragmenty inne niż fragment amino końcowy pochodzą z wewnętrznego cięcia bromocyjanem w resztach metioninowych znajdujących się w obrębie białka, powinny być zatem poprzedzone metionina.
Pierwszych 29 reszt 25 kD peptydu odpowiadało (M)KISDEFGNYFARIPLKSTXXIXEXNALQ (SEK ID NR: 16). Reszty 20, 21, 23 oraz 25, oznaczone X, nie zostały zidentyfikowane. Pierwszych 40 reszt aminokwasowych uzyskanych z 14 kD fragmentu wyglądało następująco:
(M)DAKKRRNLGAHYTSEANILKLIKPLLLDELWVVFXKVKN (SEK ID NR:17).
PL 208 400 B1
Reszta 36 nie została zidentyfikowana. Pierwszych 25 reszt 7,5 kD peptydu odpowiadało (M)KSRGKDLDKAYDQALDYFSGIAER (SEK ID NR: 18). Wykazano, że 6 kD fragment zawiera mieszaninę trzech sekwencji.
4. Amplifikacja części endonukleazy Mmel: dane dotyczące sekwencji aminowego końca peptydu, peptydu 25 kD, 14 kD i 7,5 kD zastosowano do zaprojektowania serii zdegenerowanych starterów do PCR odpowiadających kodonom dla reszt aminokwasowych. Porządek wewnętrznych fragmentów peptydu nie był znany, zatem dla tych fragmentów sporządzono zarówno starter lewy (nić sensowna), jak i starter prawy (nić antysensowna). Startery wyglądały następująco:
Fragment 25 kD: reszty DEFGNYFA (SEK ID NR: 19)
Lewy:
1) 5'-GARTTYGGNAAYTAYTTYGC-3' (SEK ID NR: 20)
Prawy:
2) 5'-AARTARTTNCCRAAYTCRTC-3' (SEK ID NR: 21)
Fragment 14 kD: reszty MDAKKR (SEK ID NR: 22)
Lewy A:
3) 5'-ATGGAYGCNAARAARCG-3' (SEK ID NR: 23)
Prawy B:
4) 5'-ATGGAYGCNAARAARAG-3' (SEK IDNR: 24)
Lewy:
5) 5'-CGNCGYTTYTTNGCRTCCAT-3' (SEK ID NR: 25)
Fragment 7,5 kD: reszty DKAYDQA (SEK ID NR: 26)
Lewy:
6) 5'-GAYAARGCNTAYGAYCARGC-3' (SEK ID NR: 27)
Prawy:
7) 5'-GCYTGRTCRTANGCYTTRTC-3' (SEK ID NR: 28) gdzie:
Y = T, C,
R = A, G,
H = A, T, C,
S = G, C,
N = A,C,G,T.
Startery 1 i 2 pozyskano z 25 kD peptydu CNBr Mmel i zostały sporządzone w celu rozpoczęcia syntezy nici sensownej (1) lub nici antysensownej (2) genu. Startery 3 do 5 pozyskano z 14 kD peptydu CNBr i zostały sporządzone w celu rozpoczęcia syntezy nici sensownej (3 i 4) lub nici antysensownej (5) genu, przy czym 3 i 4 różniły się użyciem kodonu dla reszty argininowej. Startery 6 i 7 pozyskano z 7,5 kD peptydu CNBr i zostały sporządzone w celu rozpoczęcia syntezy nici sensownej (6) lub nici antysensownej (7) genu.
Reakcje amplifikacji PCR przeprowadzano przy zastosowaniu następujących kombinacji starterów: 1 z 5, 1 z 7, 3 z 2, 3 z 7, 5 4 z 2, 4 z 7, 6 z 2 oraz 6 z 7. Część genu Mmel zamplifikowano w reakcji PCR poprzez połączenie:
μl 10x buforu Thermopol (NEB), μl 4mM roztworu dNTP (NEB), μl genomowego DNA Mmel (500 μg/ml roztworu podstawowego), μ l 100 mM MgSO4,
586 μί dH2O, μl (32 jednostki) polimerazy Vent® egzo-DNA (NEB).
Ta mieszanina wyjściowa została podzielona na 8 równych objętości po 90 μ^ do których dodano po 5 μl startera lewego (10 μΜ roztworu podstawowego) i 5 μl startera prawego (10 μΜ roztworu podstawowego). Parametry cykli wyglądały następująco: 95°C przez 3 minuty w jednym cyklu, następnie 95°C przez 30 sekund, 46°C przez 30 sekund, 72°C przez 2 minuty przez 25 cykli.
Produkty reakcji namnażania poddawano elektroforezie w 1% żelu agarozowym i analizowano. Uzyskano główne produkty namnażania DNA mające po 450 par zasad (bp) (startery 2 z 4), 650 bp (startery 5 z 6) oraz 1100 bp (startery 2 z 6). Te wielkości fragmentów zgodne są z 7,5 kD fragmentem CnBr lokalizowanym najbliżej aminowego końca białka i w przybliżeniu w odległości 650 bp od 14 kD fragmentu CnBr, przy czym 14 kD fragment znajdował się pomiędzy 7,5 kD a 25 kD fragmentem i przylegał do 25 kD fragmentu. Namnożone fragmenty DNA oczyszczano w żelu i sekwencjonowano
PL 208 400 B1 przy zastosowaniu starterów, zastosowanych do namnażania. Wynik translacji otrzymanej sekwencji DNA pokrywał się z sekwencją aminokwasowa uzyskaną z oczyszczonej endonukleazy Mmel, co wskazuje, że udało się uzyskać część sekwencji DNA genu endonukleazy Mmel.
5. Określanie sekwencji DNA dla całego genu Mmel i DNA sąsiadującego: zastosowano technikę odwrotnego PCR w celu przedłużenia sekwencji DNA po obu stronach liczącego 1060 par zasad genu Mmel otrzymanego powyżej. Aby to osiągnąć zaprojektowano i zsyntetyzowano serię starterów pokrywających się z sekwencją DNA genu Mmel i ukierunkowanych do odwrotnego PCR. Genomowe DNA Mmel zostało pocięte dużą liczbą endonukleaz restrykcyjnych i zligowane w niskim stężeniu w celu wytworzenia kolistych matryc DNA.
A. Genomowe DNA Mmel strawiono dziesięcioma różnymi endonukleazami restrykcyjnymi, a następnie koliście zligowano w celu uzyskania matryc DNA do namnażania przy zastosowaniu techniki odwrotnego PCR. Zastosowano następujące enzymy restrykcyjne:
BspHI (T/CATGA),
EcoRI (G/AATTC),
Hindlll (A/AGCTT),
HinPlI (G/CGC),
Mspl (C/CGG),
Nlalll (CATG/),
Pstl (CTGCA/G),
SacI (GAGCT/C),
SphI (GCATG/C),
Xbal (T/CTAGA).
Trawienia enzymami restrykcyjnymi przeprowadzano przez mieszanie:
μl 10 x buforu NEB zalecanego dla enzymu (zmiennie w zależności od enzymu), μl genomowego DNA M. methyloptrophus (1 μg), μί dH2O, μl (10-20 jednostek) enzymu restrykcyjnego.
Mieszaniny reakcyjne inkubowano przez 1 godzinę w 37°C. Endonukleaza restrykcyjna była inaktywowana poprzez ogrzewanie mieszaniny reakcyjnej w 65°C (80°C dla Pstl) przez 20 minut. Strawione DNA było następnie ligowane do fragmentów kolistych poprzez dodawanie 50 μl 10 x buforu do ligazy DNA T4, 400 μl dH2O i 3 μl stężonej ligazy DNA T4 (6000 jednostek, New England Biolabs, Inc.) oraz inkubowane w 16°C przez 16 godzin. Zligowane DNA ekstrahowano następnie za pomocą fenolu i chloroformu, wytrącano za pomocą 2-propanolu i ponownie zawieszano w 100 μl buforu TE.
B. Amplifikacja DNA sąsiadującego z liczącym 1060 par zasad fragmentem genu endonukleazy Mmel: zaprojektowano dwie pary starterów PCR, po jednej w pobliżu każdego końca liczącej 1060 par zasad sekwencji otrzymanej z bezpośredniego PCR przeprowadzonego z zastosowaniem starterów zdegenerowanych. Sekwencje starterów były następujące:
starter IP 1:
5'-GTTGGATCCCGCACAGATTGCTCAGG-3' (SEK ID NR: 29), starter IP 2:
5'-GTTGGATCCTACGTTAATCTGAATAAGATG-3' (SEK ID NR: 30), starter IP 3:
5'-GTTGGATCCTGTTAATCTGAAACGCTGG-3' (SEK ID NR: 31), starter IP 4: 5'-GTTGGATCCTTATACCAAAATGTGAGGTC-3' (SEK ID NR: 32).
Reakcje odwrotnego PCR przeprowadzono na 10 kolistych matrycach wytworzonych powyżej przy zastosowaniu par starterów IP 1 z IP 2, IP 3 z IP 4 oraz IP 1 z IP 3. Reakcje amplifikacji przeprowadzono poprzez zmieszanie:
μl 10 x buforu Thermopol (NEB), μl 4mM roztworu dNTP (NEB), μl startera IP (lewy), μl startera IP (prawy), μl 100 mM MgSO4,
534 μl dH2O, μl (32 jednostki) egzo-polimerazy DNA Vent® (NEB).
Mieszanina wyjściowa została podzielona na dziesięć probówek po 76 μ( do których dodano 4 μl odpowiednio strawionej, zligowanej koliście matrycy. Parametry cykli wynosiły 95°C przez 3 minu14
PL 208 400 B1 ty dla pierwszego cyklu, a następnie 95°C przez 30 sekund, 56°C przez 30 sekund, 72°C przez 3 minuty przez 25 cykli. Produkty namnażania były analizowane za pomocą elektroforezy w żelu agarozowym.
Dla starterów IP 1 oraz IP 2 z matrycą SphI i matrycą Nlalll uzyskano produkt liczący w przybliżeniu 825 par zasad. Dla starterów IP 3 i IP z matrycą BspHI uzyskano produkt liczący w przybliżeniu 800 par zasad. Dla starterów IP 1 i IP 3 z matrycą EcoRI uzyskano produkt liczący w przybliżeniu 1500 par zasad. Te namnożono fragmenty DNA oczyszczano w żelu, sekwencjonowano i składano z otrzymaną uprzednio sekwencją . Zł o ż ona sekwencja nie zawierał a peł nej ramki odczytu endonukleazy Mmel. Złożona sekwencja została zastosowana do bezpośredniej syntezy drugiej grup par starterów do odwrotnego PCR. Sekwencje tych starterów były następujące:
starter IP 5:
5'-TTCAGAAATACGAGCGATGC-3' (SEK ID NR: 33), starter IP 6:
5'-GTCAAGCCATAAACACCATC-3' (SEK ID NR: 34), starter IP 7:
5'-GAGGGTCAGAAAGGAAGCTG-3' (SEK ID NR: 35), starter IP 8:
5'-GTCCAACTAACCCTTTATGG-3' (SEK ID NR: 36).
Reakcje namnażania za pomocą odwrotnego PCR przeprowadzano jak wyżej. Przy zastosowaniu starterów IP 5 i IP 6 uzyskano produkty z matrycy Nlalll (w przybliżeniu 450 par zasad) oraz z matrycy Mspl (w przybliż eniu 725 par zasad), lecz nie z innych matryc otrzymanych po ligacji kolistej. Przy zastosowaniu starterów IP 7 i IP 8 uzyskano produkty z matrycy EcoRI (w przybliżeniu 500 par zasad), matrycy SphI (w przybliżeniu 825 par zasad) oraz z matrycy BspHI (w przybliżeniu 750 par zasad). Te fragmenty DNA zsekwencjonowano, a sekwencję składano z sekwencją uprzednio otrzymaną. Złożona sekwencja nie zawierała jeszcze całej otwartej ramki odczytu endonukleazy Mmel, wykonano więc kolejną rundę syntezy startera oraz odwrotnego PCR. Wytworzono dodatkowe matryce DNA tak jak powyżej, ale z zastosowaniem enzymów restrykcyjnych Apol (R/AATY), Asel (AT/TAAT), BsaHI (GR/CGYC), Mfel (C/AATTG), Sspl (AAT/ATT) oraz EcoRV (GAT/ATC) w celu strawienia genomowego DNA M. methylotropus. Sekwencje starterów tej trzeciej rundy były następujące:
starter IP 9:
5'-TTCCTAGTGCTGAACCTTTG-3' (SEK ID NR: 37), starter IP 10:
5'-GTTGCGTTACTTGAAATGAC-3' (SEK ID NR: 38), starter IP 11:
5'-CCAAAATGGAACTTGTTTCG-3' (SEK ID NR: 39), starter IP 12:
5'-GTGAGTGCGCCCTGAATTAG-3' (SEK ID NR: 40).
Reakcje namnażania odwrotnego PCR wykonywano jak powyżej. Przy zastosowaniu starterów IP 9 oraz IP 10 uzyskano produkty z matrycy Nlalll (w przybliżeniu 425 par zasad), matrycy Mfel (w przybliżeniu 750 par zasad), matrycy Apol (w przybliżeniu 800 par zasad) oraz matrycy Mspl (w przybliżeniu 2100 par zasad). Przy zastosowaniu starterów IP 11 oraz IP 12 uzyskano produkty z matrycy SphI (w przybliżeniu 875 par zasad), matrycy BspHI (w przybliżeniu 925 par zasad), matrycy EcoRI (w przybliżeniu 950 par zasad). Te fragmenty DNA sekwencjonowano i sekwencję składano z sekwencjami otrzymanymi uprzednio. Dalsze sekwencjonowanie wykonywano na liczą cym 2100 par zasad produkcie IP 9, IP 10 Mspl przy zastosowaniu trzech dodatkowych starterów:
starter S1:
5'-GCTTCATTTCATCCTCTGTGC-3' (SEK ID NR: 41), starter S2:
5'-TAACCGCCAAAATTAATCGTG-3' (SEK ID NR: 42), starter S3:
5'-CCACTATTCATTACAACACC-3' (SEK ID NR: 43).
Ostateczna sekwencja złożona (figura 2) zawierała całkowity gen endonukleazy restrykcyjnej Mmel, jak również 1640 par zasad sekwencji poprzedzającej gen oraz 1610 par zasad sekwencji znajdującej się za genem.
6. Klonowanie genu endonukleazy Mmel w E. coli: przypuszczalna otwarta ramka odczytu endonukleazy Mmel została zidentyfikowana ze złożenia sekwencji DNA otrzymanego z sekwencjonoPL 208 400 B1 wania różnych fragmentów DNA zamplifikowanych za pomocą odwrotnego PCR. Początek otwartej ramki odczytu zidentyfikowano na podstawie dopasowania przewidywanej sekwencji aminokwasowej na końcu aminowym otwartej ramki odczytu z sekwencją określoną na podstawie białka endonukleazy Mmel. Przewidywany koniec otwartej ramki odczytu umożliwiałby kodowanie polipeptydów o wielkości w przybliżeniu 105 kDa, co pasowało do obserwowanej wielkości natywnej endonukleazy Mmel. Sekwencja aminokwasowa wydedukowana na podstawie translacji tej otwartej ramki odczytu zawierała motywy konserwowanych sekwencji DNA metylotransferaz N6mA. Jednakże, nie zaobserwowano żadnej otwartej ramki odczytu zawierającej motywy konserwowanych sekwencji pośród DNA metylotransferaz, przylegającej do genu endonukleazy Mmel, co przewidywano. Zdecydowano się podjąć próbę dokonania ekspresji endonukleazy Mmel w E. coli bez drugiej metylotransferazy obecnej w celu ochrony DNA gospodarza E. coli przez przecinaniem. Zsyntetyzowano startery oligonukleotydowe w celu specyficznej amplifikacji genu Mmel z DNA genomowego M. methylothropus w celu dokonania ekspresji w wektorze klonującym pRRS (Skoglund, Gene 88: 1-5 (1990)).
Starter lewy zawierał miejsce Pstl do klonowania, kodon stop w ramce z genem lacZ wektora, konsensusowe miejsce wiązania rybosomu E. coli, kodon ATG dla startu translacji (zamieniony z GTG stosowanym przez M. methylotrophus dla umożliwienia większej ekspresji w E. coli) oraz 20 nukleotydów, pokrywających się z sekwencją DNA M. methylotrophus:
5'-GTTCTGCAGTTAAGGATAACATATATGGCTTTAAGCTGGAACGAG-3' (SEK ID 5 NR: 44).
Starter prawy zawierał miejsce BamHI do klonowania oraz 22 nukleotydy, pokrywające się z sekwencją DNA M. methylotrophus w kierunku 3' od końca otwartej ramki odczytu Mmel:
5'-GTTGGATCCGTCGACATTAATTAATTTTGCCCTTAG-3' (SEK ID NR: 45).
Gen Mmel namnożono w reakcji PCR przez połączenie:
μl buforu Thermopol 10 x (NEB), μl 4 mM roztworu DTP,
12,5 μl lewego startera (10 μΜ roztworu wyjściowego),
12.5 μl prawego startera (10 μΜ roztworu wyjściowego), μl genomowego DNA Mmel (500 μg/ml roztworu wyjściowego),
387 μί dH2O, ® μl (6 jednostek) polimerazy DNA Vent .
Mieszaninę reakcyjną zmieszano i rozdzielono do 5 probówek po 80 μί. Dodano MgSO4 (100 mM roztworu wyjściowego) w celu uzyskania stężenia końcowego jonów Mg++ wynoszącego odpowiednio 2 mM, 3 mM, 4 mM, 5 mM oraz 6 mM. Parametry cykli wynosiły: 95°C przez 30 sekund, 60°C przez 30 sekund, 72°C przez 3 minuty, przez 24 cykle. Mieszaniny analizowano za pomocą elektroforezy żelowej i reakcje zawierające 3 mM do 6 mM Mg++ zawierały prążek DNA o pożądanej wielkości 2,8 kpz. Te mieszaniny reakcyjne łączono, a prążek 2,8 kpz oczyszczono z żelu. Namnożony fragment genu Mmel o wielkości 2,8 kpz trawiono za pomocą endonukleaz BamHI oraz Pstl (NEB) w następujących warunkach reakcyjnych:
μί buforu reakcyjnego BamHI 10 x (NEB),
1.5 μί BSA (NEB), μί zamplifikowanego fragmentu DNA genu Mmel o wielkości 2,8 kpz, μί dH2O, μί endonukleazy BamHI (100 jednostek), μί endonukleazy Pstl (100 jednostek).
Mieszaninę reakcyjną mieszano i inkubowano przez 1 godzinę w 37°C. Małe fragmenty odcięte z końców fragmentu DNA 2,8 kpz usuwano wraz z endonukleazami poprzez oczyszczanie na kolumnie wirówkowej Qiagen QiaPrep zgodnie z instrukcjami producenta.
Przecięty fragment DNA genu Mmel ligowano z wektorem pRRS w następujący sposób: 10 μί strawionego, oczyszczonego fragmentu Mmel 2,8 kpz mieszano z 5 μί wektora pRRS uprzednio trawionego BamHI i Pstl i oczyszczonego, 5 μί dH2O, 20 μί buforu QuickLigase 2 x (NEB), mieszaninę reakcyjną mieszano i dodawano 2 μί ligazy QuickLigase. Mieszaninę reakcyjną inkubowano w temperaturze pokojowej przez 5 minut. 5 μί mieszaniny reakcji ligacyjnej transformowano do 50 μί chemokompetentnych komórek E. coli ER2683, a komórki umieszczano na szalkach z pożywką L zawierającą 100 μg/ml ampicyliny i inkubowano w 37°C przez noc. Uzyskano w przybliżeniu 200 transformantów, a analizowano 18 transformantów reprezentatywnych w następujący sposób: izolowano plazmid z każdej kolonii za pomocą procedur minilizy i trawiono endonukleazami AlwNI i Ndel w celu ustalenia czy zawierają wstawkę o prawidłowej wielkości. 2 spośród 18 transformantów zawierało wstawkę
PL 208 400 B1 o prawidłowej wielkości około 2800 pz. Oba klony badano w celu sprawdzenia, czy wytwarzają one aktywność endonukleazy Mmel. Klony hodowano przez noc w 37°C w 500 ml pożywki L zawierającej 100 μg/ml ampicyliny. Komórki zbierano przez wirowanie, zawieszano w 10 ml buforu do sonifikacji (20 mM Tris-HCl, 1 mM DTT, 0,1 mM EDTA, pH 7,5) i niszczono przez sonifikację. Nie oczyszczony lizat oczyszczano za pomocą wirowania, a nadsącz odzyskiwano. Lizat oznaczano na aktywność endonukleazy w serii rozcieńczeń lizatu w 1 x buforze reakcyjnym NEB 1 (New England Biolabs) zawierającym 20 μg/ml substratu DNA lambda i uzupełnionym SAM do stężenia końcowego 100 μM. Mieszaniny reakcyjne inkubowano przez 1 godzinę w 37°C. Produkty reakcji analizowano za pomocą elektroforezy żelowej na 1% żelu agarozowym w 1 x buforze TBE. Jeden z dwóch klonów posiadał aktywność endonukleazy Mmel. Ten aktywny klon oznaczono jako szczep NEB1457 i stosowano do późniejszego wytwarzania Mmel. Konstrukt plazmidowy wykazujący ekspresję aktywności Mmel w tym klonie oznaczono jako pTBMmel.1.
P r z y k ł a d III. Endonukleaza Mmel zapewnia ochronę in vitro przeciwko przecinaniu przez
Mmel
Plazmid pTBMmel.1 oczyszczano z NEB1457 przy zastosowaniu protokołu do minilizy Qiagen. Plazmid ten ma dwa miejsca Mmel w sekwencji wektora oraz jedno miejsce w genie Mmel. Plazmid trawiono Mmel w celu sprawdzenia, czy to DNA jest oporne na aktywność endonukleazy Mmel, co wskazywałoby na to, że pojedynczy gen Mmel był zdolny do metylacji DNA in vivo w celu ochrony DNA gospodarza przeciwko jego aktywności endonukleazy.
W celu sprawdzenia tego przygotowano następującą mieszaninę:
μl DNA pTBMmel.1 po minilizie, μl 10 x buforu NEB 4, μl SAM (1 mM roztworu wyjściowego),
110 μί dH2O, μl endonukleazy Mmel (15 jednostek).
Mieszaninę reakcyjną mieszano i dzielono na trzy części. Do jednej trzeciej dodawano 0,5 μl dH2O do drugiej części dodawano 0,5 μl wektora pRRS, a do trzeciej części dodawano 0,5 μl DNA PhiX174 w ramach kontroli pozytywnej. pTBMmel.1 nie został pocięty przez aktywność endonukleazy Mmel, podczas gdy DNA PhiX174 oraz cząsteczki DNA pRRS w tej samej reakcji ulegały przecinaniu, co wskazuje na to, że trzy miejsca Mmel w DNA pTBMmnel.1 są oporne na aktywność endonukleazy Mmel (figura 4).
P r z y k ł a d IV. Wrażliwość endonukleazy Mmel na metylację
Wcześniejsza literatura donosiła, że endonukleaza Mmel metyluje jedynie jedną nić swoich rozpoznawanych sekwencji i że taka półmetylacja nie blokuje następczego trawienia DNA przez endonukleazę (Tucholski, Gene 223 (1998) 293-302). W celu sprawdzenia tego, zsyntetyzowano zestaw czterech oligonukleotydów w taki sposób, by substrat DNA mógł powstać w postaci nie zmetylowanej (oligo 1 + oligo 2), zmetylowanej jedynie w górnej nici (oligo 3 + oligo 2), zmetylowanej jedynie w dolnej nici (oligo 1 + oligo 4) lub zmetylowanej na obu niciach (oligo 3 + oligo 4). Zsyntetyzowane oligonukleotydy miały następujące sekwencje:
Oligo 1:
5'-FAM-GTTTGAAGACTCCGACGCGATGGCCAGCGATCGIGCGCCTCAGCTTTTG-3' (SEK ID NR: 46),
Oligo 2:
5'-FAM-CAAAAGCTGAGGCGCCGATCGCTGGCCATCGCGTCGGAGTCTTCAAAC-3' (SEK ID NR: 47),
Oligo 3:
5'-FAM-GTTTGAAGACTCCG (6Ma) CGCGATGGCCAGCGATCGGCGCCTCAGCTTTTG-3' (SEK ID NR: 48),
Oligo 4:
5'-FAM-CAAAAGCTGAGGCGCCGATCGCTGGCCATCGCGT:CGG (6mA) GTCTTCAAAC-3' (SEK ID NR: 49).
(Pozostałe nukleotydy nie wchodzące w skład rozpoznawanej sekwencji Mmel były także zmetylowane dla celów innych badań, ale jako że Mmel nie ma żadnej specyficzności względem sekwencji tych nukleotydów nie wpływa to na aktywność Mmel i te pozostałe metylacje zostały tu dla jasności pominięte). Dwuniciowe DNA tworzono przez mieszanie 100 μl górnej nici oligonukleotydu (14 μM roztworu wyjściowego) ze 100 μl dolnej nici oligonukleotydu (14 μM roztworu wyjściowego), podgrzaPL 208 400 B1 nie do 85°C i powolne schładzanie do 30°C przez 20 minut. Następnie, stosowano Mmel do przecięcia par oligonukleotydów w 30 μΐ mieszaniny reakcyjnej 1 x buforu NEB 4, 2,5 μΜ oligonukleotydów, 100 μΜ SAM oraz 2,5 jednostek Mmel. Jako kontrolę stosowano także endonukleazę restrykcyjną Hpy1881 do przecinania oligo DNA.
Rozpoznawana sekwencja Hyp188I zachodzi na pierwszych 5 nukleotydów rozpoznawanej sekwencji Mmel, w tym DNA, 5'-TCNGA-3' i jest blokowana przez metylację adeniny w każdej nici DNA. Zgodnie z oczekiwaniami okazało się, że Mmel przecina nie zmetylowane DNA. W przeciwieństwie do wcześniejszych danych (Tucholski, Gene 223: 293-302 (1998)) Mmel nie przecinał półzmetylowanych DNA, gdy zmetylowana była jedynie nić górna: 5'-TCCG(N6mA)C-3'. Jeśli jedynie dolna nić była zmetylowana, Mmel przecinał DNA (figura 5).
Wynik ten jest zgodny zarówno z obserwowaną zdolnością pojedynczego enzymu Mmel do ochrony DNA gospodarza przeciwko cięciu in vivo, jak i obserwacją, że Mmel metyluje jedynie górną nić swojej rozpoznawanej sekwencji. Potwierdziliśmy doniesienie, że enzym Mmel metyluje jedynie górną nić swojej rozpoznawanej sekwencji przez metylacje powyższych par oligo stosując wyznakowany trytem H3-SAM, odpłukiwanie nie wstawionego SAM i zliczanie radioaktywności w DNA. Zarówno nie zmetylowane oligo DNA, jak i nie zmetylowane na górnej nici, a zmetylowane na dolnej nici cząsteczki DNA, miały większe niż 10-krotne zliczenia niż tło, podczas gdy nie zmetylowne na dolnej nici, a zmetylowane na górnej nici DNA oraz DNA z obiema zmetylowanymi nićmi miały zliczenia bliskie tłu (fig. 6). Wyniki te wskazują, że Mmel jest nowym typem układu restrykcji modyfikacji, który nie wymaga oddzielnego enzymu metylotransferazy do modyfikowania DNA gospodarza w celu ochrony przeciwko aktywności endonukleazy, jak to jest w przypadku enzymów typu IIG (zwanego także typem IV), takich jak Eco571.
P r z y k ł a d V. Sekwencjonowanie i analiza DNA
Sekwencjonowanie DNA: sekwencjonowanie DNA przeprowadzano na dwuniciowych matrycach w automatycznym sekwensatorze ABI 373 lub ABI 377. Namnożone fragmenty DNA oraz poszczególne klony sekwencjonowano ze starterami zsyntetyzowanymi jak powyżej lub z uniwersalnych starterów zlokalizowanych w wektorze.
Analizy komputerowe: analizy komputerowe uzyskanych sekwencji DNA przeprowadzano za pomocą programów Genetics Computer Group (Deverenx i wsp., Nucleic Acids Res. 12: 387-395 (1984), a przeszukiwanie podobieństw w bazach danych przeprowadzano za pomocą Internetu na stronie National Center for Biotechnology Information (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/) przy zastosowaniu algorytmów BLASTX oraz BLASTP (Altschul i wsp., J. Mol. Biol. 215: 403-410 (1990) oraz Gish i wsp., Nature Genet. 3: 266-722 (1993)).
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΪΝ.ST25 WYKAZ SEKWENCJI <110> New England Biolabs, inc.
Morgan, Richard D.
Bhatia, Tanya Davis, Theodore Lovasco, Lindsay <120> Rekombinowane endonukleazy restrykyjne typu II, Mmei i inne pokrewne endonukleazy oraz sposoby ich wytwarzania <130> NEB-207-PIN <140>
<141>
<150> US 60/395,431 <151> 2002-07-12 <150> PCT/US03/31570 <151> 2003-07-10 <160> 50 <170> Patent w wersji 3.2 <210> 1 <211> 6010 <212> DNA <213> Methylophilus methylotrophus <220>
<221> cecha inna <222> (800)..(800) <223> n to a, c, g, lub t <400> 1
gaattccaga taggtagtcc tttggtactt ccatcccaac cagtgtcacg ttccgcgcca 60
aaccaatcgg ttaaagtgta agaaagtctt gcactgaagt agctgtagga caaaccgaag 120
ttaacctctg tggtatccca gcgaccacct ttaggtgttt gacggaagcc tgctgcgtca 180
cctgccaagt tatatttctt ccatgaacca cctgggtaca ggtagctgat caaaccagca 240
gtccaaccca agccttcaat agcaggaata gttccgttat acccaccata aatatcaatt 300
tcggcagttg catcagggaa ggtatttggt gtcacgtttg aaccccatgc accgacataa 360
aagccgctgt catgagtaat atcaataccg ccttgaacgg caggtttgtg ccagttttgt 420
gaaataccac gagcatagta atctgaaaca aatccaacgt ttgcagtagc agcccaggct 480
gatttttctt ctttagcctc ttcagctgcg tatgaaactt gggcaaaaga taatgtgctt 540
aacactgctg tgagcaatat agattgacgc attatgagtc ctctctctgt gaaatctttg 600
attaagttgt tgtaaacgag aatgaaacaa caaccacaaa gcaaagcacg tgccaaacta 660
taaataacat tataatcaat tatttaaaat atatttataa tctaaaatat taaattaatt 720
atttaataaa ctgtttttta ttgatttaac tctaaaacat atgggtgcaa ccaccctttt 780
tactcactga taatgctaan atagccaaca aaggagcctt caccatgctg atttcaaatg 840
aaaaaattca ggaattatct ttaaaaatca aacaactaat cgaatcaagc cccatttcag 900
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
agctaaataa caacttgcat gcactaattc agggcgcact caccaaaatg gaacttgttt 960
cgcgtgaaga attcgatatc caatctgcat tattagcgcg cacgcaagag caattaaaac 1020
gtcttgaaga aaaaatcagc cagcttgaag aagggcaggc atccagaaag taaaaattaa 1080
tttacaattg ttagcattcc attattgagg agtgcgctat gagtctggcg gtgttataca 1140
gtcgcgcgtt aagcggcatg gaggcgccag aagtggtggt agaagtccac ttggcgaatg 1200
gactacccag ctttaccatt gttgaaacat attgaaactt taagccttag cattttttca 1260
aatatacaaa tgccccaagc tggtgcatta agaagaatgt aacaactccc tgcagactag 1320
gaataacttc atgatttaac gaacatccct gagtttcaaa gtcgaatctt ctcgtgttgc 1380
aaatttctac agcttccttt ctgaccctct tgcaccaaat tgcactatgg cgctaataaa 1440
tcttctgcta tccaataatg tccaactaac cctttatgga ctcttaaaaa agatttaata 1500
aatgattaag atgaattcaa ggaatttgat gcctggaaat atggcaaaag caaaaaggca 1560
gcccagtgct gacttttttg ttttaacatt ggcccatata tccaatttca aataatttaa 1620
aaattatcgg gagctaatct gtggctttaa gctggaacga gataagaaga aaagctattg 1680
agttttctaa aagatgggaa gacgcctcag atgaaaacag tcaagccaaa ccctttttaa 1740
tagatttttt cgaagttttt ggaataacta ataagagagt tgcaacattt gagcatgctg 1800
tgaaaaagtt cgccaaggcc cataaggaac aatctcgagg attcgtagat ttgttttggc 1860
ctggcattct tcttattgaa atgaaaagca gaggtaaaga cctcgacaaa gcgtatgacc 1920
aggcacttga ttacttttct ggcattgcag aaagagactt acccagatac gttttagttt 1980
gcgacttcca gcgtttcaga ttaacagacc taataacaaa agagtcagtt gaatttcttt 2040
taaaggactt ataccaaaat gtgaggtctt ttggttttat agctggttat caaactcaag 2100
taatcaagcc acaagaccct attaatatta aggcggctga acggatgggt aagcttcatg 2160
acaccctgaa gttggttgga tatgagggac acgctttaga actttatcta gtgcgtttac 2220
ttttttgctt attcgcagaa gacacaacta tttttgagaa aagtttattc caagaatata 2280
tcgagacaaa gacgctagag gacggcagtg accttgcaca tcatatcaat acactttttt 2340
atgttctcaa taccccagaa caaaaaagat taaagaatct agacgaacac cttgctgcat 2400
ttccatatat caatggaaaa cttttcgagg agccacttcc gccagctcag tttgataaag 2460
caatgagaga ggcattgctt gacttgtgct cattagattg gagcaggatt tcaccagcaa 2520
tatttggaag tttattccaa agcattatgg atgctaaaaa gagaagaaat cttggggcac 2580
actacaccag cgaagcaaat attctcaagt taatcaagcc attgtttctt gacgagctct 2640
gggtagagtt cgagaaagtt aaaaataata aaaataaatt actagcgttc cacaaaaaac 2700
taagaggact tacatttttc gaccctgcat gcggttgcgg aaattttctt gtaatcacat 2760
accgagaact aagactttta gaaattgaag tgttaagagg attgcataga ggtggtcaac 2820
aagttttgga tattgagcat cttattcaga ttaacgtaga ccagtttttt ggtatcgaaa 2880
tagaggagtt tcccgcacag attgctcagg ttgctctctg gcttacagac caccaaatga 2940
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
atatgaaaat ttcagatgag tttggaaact actttgcccg tatcccacta aaatctactc 3000
ctcacatttt gaatgctaat gctttacaga ttgattggaa cgatgtttta gaggctaaaa 3060
aatgttgctt catattagga aatcctccat ttgttggtaa aagtaaacaa acaccgggac 3120
aaaaagcgga tttactatct gtttttggaa atcttaaatc cgcttcagac ttagacctag 3180
ttgctgcttg gtatcccaaa gcagcacatt acattcaaac aaatgcaaac atacgctgtg 3240
catttgtctc aacgaatagt attactcaag gtgagcaagt atcgttgctt tggccgcttc 3300
tgctctcatt aggcataaaa ataaactttg ctcacagaac tttcagctgg acaaatgagg 3360
cgtcaggagt agcggcggtt cactgcgtaa ttatcggatt tgggttgaag gattcagatg 3420
aaaaaataat ctatgagtat gaaagtatta atggagaacc attagctatt aaggcaaaaa 3480
atattaatcc atatttgaga gacggggtgg atgtgattgc ctgcaagcgt cagcagccaa 3540
tctcaaaatt accaagcatg cgttatggca acaaaccaac agatgatgga aatttcctat 3600
ttactgacga agaaaaaaac caatttatta caaatgagcc atcttccgaa aaatacttca 3660
gacggtttgt gggcggggat gagttcataa acaatacaag tcgatggtgt ttatggcttg 3720
acggtgctga catttcagaa atacgagcga tgcctttggt cttggctagg ataaaaaaag 3780
tccaagaatt cagattaaaa agctcggcca aaccaactcg acaaagtgct tcgacaccaa 3840
tgaagttctt ttatatatct cagccggata cggactatct gttgatacct gaaacatcat 3900
ctgaaaacag acaatttatt ccaattggtt ttgttgatag aaatgtcatt tcaagtaacg 3960
caacgtatca tattcctagt gctgaacctt tgatatttgg cctgctttca tcgaccatgc 4020
acaactgctg gatgagaaat gtaggaggaa ggttagaaag tcgttataga tattctgcca 4080
gcctggttta caacacgttt ccatggattc aacccaacga aaaacaatcg aaagcgatag 4140
aagaagctgc atttgcgatt ttaaaagcta gaagcaatta tccaaacgaa agtttagctg 4200
gtttatacga cccaaaaaca atgcctagtg agcttcttaa agcacatcaa aaacttgata 4260
aggctgtgga ttctgtctat ggatttaaag gaccaaacac agaaattgct cgaatagctt 4320
ttttgtttga aacataccaa aagatgactt cactcttacc accagaaaaa gaaattaaga 4380
aatctaaggg caaaaattaa ttaatgtatt taacattaaa ccaccctgat ttatttcgaa 4440
tagttcaaat gcttccatgt ggactaatcg ccttcaatca tattaaaaaa ccgacgctag 4500
taataaaaac ttccaaagag gccatattaa ccgccaaaat taatcgtgaa tttaaaatat 4560
atctttatca aaccacatcg gcttgtgttc tagtaagtgc attttttgac gattctgata 4620
gtccactatt cattacaaca ccaattgttc gagatgacca acactcctta gacttgttaa 4680
gatttttaat caacaatgat tttacgattt gcttctttga tgaactgaac cgagaatttc 4740
tttccgttaa cgcaactggt aatttagtct ctatctttga gagcattcac ttgatgccac 4800
tgccgagccc agaggaagcc cacaatgcat tgaatgaagc ggaattttgg ttcagtttac 4860
gctcagctgc tgatgatgaa tcatctatcc aggtttcttt attggataat ctatttcctg 4920
acgattttgt aatttatgac ctatcctcaa acaaaaacga tatgacatca ttggttagag 4980
PL 208 400 B1
aaactaaacc aggatactat NEB caggaagcag -207-PIN.ST25 atattgcaaa gttactaaca agagctttta 5040
gtttggaaag catttatcag aatccagtga aaacaagcga ttcaaaagag ttggcagacg 5100
ttgtggtatt cggccaaaag gaaattttaa taattcaagc taaagatagt gaaaacaatc 5160
agaaacaagt tttagaggtt tcgttagaca agaaatgcgc aaagtcttca aagaaacttt 5220
ctgaagcttt ggcacaactc accgacacta tcttaacaat atccaataca ccaatagttg 5280
atgttcgggt tggtaagaaa aaatgcactc tgaactttga gggaaagcag cttattggta 5340
tcgtcgttgt taaagagctt tttaatgata tttacgataa atacagtcaa aaagtttttg 5400
agcatgtaga gttgtctaaa gcacccattg tcttctttga ctatccagaa tttgcaagaa 5460
tgacatttca ttgtaattct gaggaattat tactttatgc tttgcatagg atatttagtt 5520
ctgcaataga aaatggaatg tataaacgat tgagatttac tcaacctatc ataactgatg 5580
gtcatgacag ctacttcagg atacaaaaca ggccccattc tgatgaggcc tatttaattt 5640
gcacagagga tgaaatgaag ctctcaaata agtttaaaga ctaaatttat attttcctca 5700
gtatcttaaa aacaatattc attaaattgg aaagcccgca atgattgttg cagtatcaat 5760
gcgggcatca gtatccagct cttgcaatac acggaagtat caagaagcga atcaggattc 5820
taaccatacc tttttaattg caacaatcta atttccataa catgtgtagc tacatcgaaa 5880
aaaagacctc gaagaggttg caagagcgtc cagctcgcgg catcaaaaga ccctagtctt 5940
ttgacaaggg ggagccaaaa aactgaggtg gaggagcttg ccgacgaagc caggaagccc 6000
cagcgtccgg 6010 <210> 2 <211> 919 <212> PRT <213> Methylophilus methylotrophus
<400> 2 Met Ala Leu 1 Ser Trp 5 Asn Glu Ile Arg Arg 10 Lys Ala Ile Glu Phe 15 Ser
Lys Arg Trp Glu Asp Ala Ser Asp Glu Asn Ser Gln Ala Lys Pro Phe
20 25 30
Leu ile Asp Phe Phe Glu Val Phe Gly Ile Thr Asn Lys Arg Val Ala
35 40 45
Thr Phe Glu His Ala Val Lys Lys Phe Ala Lys Ala Hi s Lys Glu Gln
50 55 60
Ser Arg Gly Phe val Asp Leu Phe T rp Pro Gly Ile Leu Leu Ile Glu
65 70 75 80
Met Lys ser Arg Gly Lys Asp Leu Asp Lys Ala Tyr Asp Gln Al a Leu
85 90 95
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp Tyr Phe Ser 100 Gly Ile Ala Glu Arg Asp Leu 105 Pro Arg Tyr 110 val Leu
val cys Asp Phe Gin Arg Phe Arg Leu Thr Asp Leu Ile Thr Lys Glu
115 120 125
Ser val Glu Phe Leu Leu Lys Asp Leu Tyr Gin Asn val Arg ser phe
130 135 140
Gly Phe Ile Ala Gly Tyr Gin Thr Gin val Ile Lys Pro Gin Asp Pro
145 150 155 160
Ile Asn Ile Lys Ala Ala Glu Arg Met Gly Lys Leu Hi s Asp Thr Leu
165 170 175
Lys Leu val Gly Tyr Glu Gly His Ala Leu Glu Leu Tyr Leu Val Arg
180 185 190
Leu Leu Phe cys Leu Phe Ala Glu Asp Thr Thr Ile Phe Glu Lys Ser
195 200 205
Leu Phe Gin Glu Tyr Ile Glu Thr Lys Thr Leu Glu ASP Gly Ser Asp
210 215 220
Leu Ala His Hi s ile Asn Thr Leu phe Tyr val Leu Asn Thr Pro Glu
225 230 235 240
Gin Lys Arg Leu Lys Asn Leu Asp Glu His Leu Ala Ala Phe Pro Tyr
245 250 255
Ile Asn Gly Lys Leu Phe Glu Glu Pro Leu Pro Pro Ala Gin Phe Asp
260 265 270
Lys Al a Met Arg Glu Al a Leu Leu Asp Leu cys Ser Leu Asp Trp Ser
275 280 285
Arg Ile Ser Pro Al a Ile Phe Gly Ser Leu Phe Gin Ser Ile Met Asp
290 295 300
Ala Lys Lys Arg Arg Asn Leu Gly Ala His Tyr Thr Ser Glu Ala Asn
305 310 315 320
Ile Leu Lys Leu Ile Lys Pro Leu Phe Leu Asp Glu Leu Trp Val Glu
325 330 335
Phe Glu Lys val Lys Asn Asn Lys Asn Lys Leu Leu Al a Phe His Lys
340 345 350
Lys Leu Arg Gly Leu Thr Phe Phe ASP Pro Al a cys Gly cys Gly Asn
355 360 365
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Phe Leu 370 val ile Thr Tyr Arg Glu 375 Leu Arg Leu Leu 380 Glu Ile Glu Val
Leu Arg Gly Leu His Arg Gly Gly Gin Gin val Leu Asp Ile Glu His
385 390 395 400
Leu Ile Gin ile Asn val Asp Gin Phe Phe Gly ile Glu Ile Glu Glu
405 410 415
Phe Pro Ala Gin Ile Ala Gin Val Ala Leu Trp Leu Thr Asp His Gin
420 425 430
Met Asn Met Lys Ile Ser Asp Glu Phe Gly Asn Tyr Phe Ala Arg ile
435 440 445
Pro Leu Lys Ser Thr Pro Hi s Ile Leu Asn Al a Asn Ala Leu Gin Ile
450 455 460
Asp Trp Asn Asp Val Leu Glu Ala Lys Lys cys cys Phe Ile Leu Gly
455 470 475 480
Asn Pro pro Phe val Gly Lys ser Lys Gin Thr pro Gly Gin Lys Al a
485 490 495
Asp Leu Leu ser val Phe Gly Asn Leu Lys Ser Ala Ser Asp Leu Asp
500 505 510
Leu val Ala Ala Trp Tyr pro Lys Ala Ala His Tyr ile Gin Thr Asn
515 520 525
Ala Asn Ile Arg cys Ala Phe Val Ser Thr Asn Ser ile Thr Gin Gly
530 535 540
Glu Gin Val Ser Leu Leu Trp Pro Leu Leu Leu Ser Leu Gly Ile Lys
545 550 555 560
Ile Asn Phe Al a His Arg Thr Phe Ser Trp Thr Asn Glu Ala Ser Gly
565 570 575
Val Ala Ala val His Cys Val Ile Ile Gly Phe Gly Leu Lys Asp Ser
580 585 590
Asp Glu Lys ile Ile Tyr Glu Tyr Glu Ser Ile Asn Gly Glu Pro Leu
595 600 605
Ala Ile Lys Al a Lys Asn Ile Asn Pro Tyr Leu Arg Asp Gly Val Asp
610 615 620
val ile Ala cys Lys Arg Gin Gin Pro Ile ser Lys Leu pro Ser Met
625 630 635 640
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Arg Tyr Gly Asn Lys 645 Pro Thr Asp Asp Gly Asn 650 Phe Leu Phe Thr 655 Asp
Glu Glu Lys Asn Gin Phe ile Thr Asn Glu Pro Ser Ser Glu Lys Tyr
660 665 670
Phe Arg Arg Phe Val Gly Gly Asp Glu Phe ile Asn Asn Thr Ser Arg
675 680 685
Trp cys Leu Trp Leu Asp Gly Ala Asp Ile Ser Glu Ile Arg Ala Met
690 695 700
Pro Leu Val Leu Ala Arg ile Lys Lys Val Gin Glu Phe Arg Leu Lys
705 710 715 720
ser Ser Ala Lys pro Thr Arg Gin Ser Al a Ser Thr Pro Met Lys Phe
725 730 735
Phe Tyr Ile Ser Gin Pro Asp Thr Asp Tyr Leu Leu Ile Pro Glu Thr
740 745 750
Ser Ser Glu Asn Arg Gin Phe Ile Pro ile Gly Phe val Asp Arg Asn
755 760 765
val Ile Ser ser Asn Ala Thr Tyr His ile Pro ser Ala Glu Pro Leu
770 775 780
Ile Phe Gly Leu Leu Ser Ser Thr Met His Asn Cys Trp Met Arg Asn
785 790 795 800
val Gly Gly Arg Leu Glu Ser Arg Tyr Arg Tyr Ser Ala Ser Leu val
805 810 815
Tyr Asn Thr Phe Pro Trp Ile Gin Pro Asn Glu Lys Gin Ser Lys Ala
820 825 830
Ile Glu Glu Ala Al a Phe Ala ile Leu Lys Ala Arg Ser Asn Tyr Pro
835 840 845
Asn Glu Ser Leu Al a Gly Leu Tyr Asp Pro Lys Thr Met Pro Ser Glu
850 855 860
Leu Leu Lys Ala His Gin Lys Leu Asp Lys Ala val Asp Ser Val Tyr
865 870 875 880
Gly Phe Lys Gly Pro Asn Thr Glu Ile Ala Arg Ile Ala Phe Leu Phe
885 890 895
Glu Thr Tyr Gin Lys Met Thr Ser Leu Leu Pro Pro Glu Lys Glu Ile
900 905 910
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Lys Lys Ser Lys Gly Lys Asn 915 <210> 3 <211> 932 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|28373198|ref|NP_783835.1
<400> 3 Met Pro Thr 1 Arg Gin 5 Gin Al a Al a Arg Glu 10 Phe val Lys Thr τ rp 15 Ser
Ser Asp Lys Lys Gly Arg Glu Asp Ala Asp Arg Gin Thr Phe Trp Asn
20 25 30
Asp Leu Leu Gin Arg val Tyr Gly Ile Asp Asn Tyr Tyr Asp Tyr Ile
35 40 45
Thr Tyr Glu Lys Asp val Gin val Lys Al a Asp Gly Lys Val Thr Thr
50 55 60
Arg Arg ile Asp Gly Tyr ile Pro Ser Thr Lys Ile Met val Glu Met
65 70 75 80
Lys Gly Lys Asn Ile Lys Asp Leu Ser Lys Pro Ile Thr Gin Ser Gly
85 90 95
Gly Asp Glu Leu Thr Pro Phe Glu Gin Al a Lys Arg Tyr Ala Asn Phe
100 105 110
Leu Pro Asn Ser Glu Gin Pro Arg Trp Ile Leu val Ser Asn Phe Asn
115 120 125
Glu ile Asp ile His Asp Met Glu Arg Pro Leu Asp Glu Pro Lys val
130 135 140
ile Lys Leu Glu Asp Leu Pro Lys Lys val Lys Ser Leu Glu Phe Met
145 150 155 160
Val Asp Ala Asn Gin Gin Gin val ile Asp Glu Lys Gin Leu Ser val
165 170 175
Asp Ala Gly Asn Leu val Ala Lys ile Tyr Asn Glu Leu Thr Asn Ala
180 185 190
Tyr Ala Ala Gly Arg Gly Ile Asp Val Asn Glu Pro Arg ile Gin Arg
195 200 205
Ser Leu Asn Met Leu ile Val Arg Leu Val Phe Leu Leu Tyr Ala Asp
210 215 220
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp 225 Ser Asn Leu Phe Gly 230 Lys Glu Asp Ile Phe Gin Ala 235 Phe Ile Glu 240
Arg Arg Glu Pro Arg Asp Ile Arg Arg Asp Leu Ser Glu Leu Phe Lys
245 250 255
Val Leu Asp Gin Pro Glu Glu Gin Arg Asp Pro Tyr Leu Asp Asp Glu
260 265 270
Phe Asn Gin Phe Ala Tyr Val Asn Gly Gly Met Phe Ser Asp Glu Asn
275 280 285
val Ile Ile Pro Gin Phe Thr Asp Glu Leu Lys Arg Leu Ile val Glu
290 295 300
Asp Ala Gly Arg Gly Phe Asp Trp Ser Gly Ile Ser Pro Thr Ile Phe
305 310 315 320
Gly Ala val Phe Glu Ser Thr Leu Asn Pro Glu Thr Arg Arg Ser Gly
325 330 335
Gly Met His Tyr Thr Ser Ile Glu Asn Ile Hi s Lys Val Ile Asp Pro
340 345 350
Leu Phe Leu Asn Asp Leu His Asp Glu Phe Asp Lys Ile Gin Asn Met
355 360 365
Gly Asn Arg Arg Gin Arg Val Thr Arg Ala Lys Ala Phe Arg Asp Lys
370 375 380
Leu Gly Lys Leu Lys Phe Phe Asp Pro Ala Cys Gly Ser Gly Asn Phe
385 390 395 400
Leu Thr Glu Thr Tyr Leu Ser Leu Arg Lys Met Glu Asn Glu Cys Leu
405 410 415
Arg Ile Ile Val Gly Asn Gin Gly Ala Leu Al a Leu Thr Asp Glu Ser
420 425 430
Glu Pro Lys Val Lys Ile Gin Asn Phe Tyr Gly ile Glu Ile Asn Asp
435 440 445
Phe Ala Val Ser Val Al a Arg Thr Ala Met Trp ile Ala Glu Ser Gin
450 455 460
Met T rp Glu Gin Thr Lys Asp Ile Thr Phe Ala Asn Lys Asp Phe Leu
465 470 475 480
Pro Leu Asp Ser Asn Asp Ser Ile Tyr Glu Gly Asn Ala Leu Arg Met
485 490 495
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp Trp Asn Asp ile val Lys Pro Tyr Glu 505 Leu Asp Tyr Ile 510 Met Gly
500
Asn Pro pro Phe val Gly Tyr Ser Leu Gln Thr Lys Glu Gln Lys Gln
515 520 525
Asp Ile Lys Gln Glu Phe Phe Lys Tyr Thr Asp Lys Tyr Gly Lys Phe
530 535 540
Asp Tyr Val Ser Gly T rp Tyr Ile Lys Gly Ala Lys Tyr Ile Gl n Asn
545 550 555 560
Ser Thr Ile Lys Val Gly Phe val Ser Thr Asp Ser ile Ile Gln Gly
565 570 575
Glu Gln Ala Pro Glu Ile Trp Lys val Leu Phe Asn Asp Phe Hi s Ile
580 585 590
Phe Ile Asn Tyr Gly Tyr Arg Ser Phe Glu Trp Asn Asn Glu Ala Ala
595 600 605
Asn Lys Ala Lys val Asp Val Val Ile val Gly Phe Ser Thr Lys Glu
610 615 620
Asp Lys Asn Pro Thr Ile Tyr Asp Glu Gln Lys Ile Ile Ser Ala Lys
625 630 635 640
His Ile Asn Gln Tyr Met Tyr Asp Ser Asp Asn Ile Phe Ile Asp Thr
645 650 655
Thr Arg Lys Tyr Ile Glu Ala Met Pro Lys Met Lys Thr Gly Asn Arg
660 665 670
pro Ala Asp Gly Gly Al a Leu Ile Leu Ser Pro Lys Glu Ala Lys Glu
675 680 685
Leu val Asn Glu Glu pro Gln Ser Lys Gln Phe Ile Lys Lys Leu Thr
690 695 700
Gly ser Lys Glu Phe ile Thr Gly Lys Tyr Arg Tyr cys Leu Trp Leu
705 710 715 720
val Asn val Thr Pro Lys Gln Leu Arg ser Met Pro Leu val Leu Lys
725 730 735
Arg val Glu Gln Cys Lys Glu Asn Arg Leu ser Gly Ala Pro ASp Arg
740 745 750
Gln Lys Leu Ala Ala Thr Pro His Leu Phe Arg Glu Gln Met Asn Pro
755 760 765
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp Asn Tyr Met ile val Pro Leu 775 Val Thr Gly cys 780 Arg Arg Lys Tyr
770
Val Pro Phe Gly Tyr Leu Gly Asn Asp ile ile Pro Thr Asn Leu Ala
785 790 795 800
Thr Ile ile Pro Glu Al a Asp His Tyr Ala Phe Gly val Leu Glu Ser
805 810 815
Ile Val Hi s Met Al a Trp Met Arg val Val Ala Gly Arg Lys Gly Thr
820 825 830
Ser Tyr Arg Tyr Ser Lys Asn Leu val Tyr Thr Asn Phe Pro Trp Pro
835 840 845
val val ASP ile Asn Gin Lys Glu Lys ile Thr Ile Thr Ala Gin Asp
850 855 860
Ile Leu Asn Ala Arg Asn Leu Tyr Pro Asp Ser Ser Leu Ala Asp Leu
865 870 875 880
Tyr Asp Pro Leu Thr Met Pro Ile Glu Leu Arg Lys Ala His Glu Ala
885 890 895
Asn Asp Lys Ala Val Leu Lys Al a Tyr Gly Leu Lys Pro Ser Ala Thr
900 905 910
Glu pro Glu ile val Gin Hi s Leu Phe Lys Met Tyr Glu Lys Leu Thr
915 920 925
Lys Lys Asp T rp
930 <210> 4 <211> 354 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|27450519|gb|AA014619.1|AF465251_62
<400> 4
Val Leu Phe Asn Asp Phe His Ile Phe Ile Asn Tyr Gly Tyr Arg Ser
1 5 10 15
Phe Glu Trp Asn Asn Glu Ala Ala Asn Lys Ala Lys val Asp val val
20 25 30
Ile Val Gly Phe Ser Thr Lys Glu Asp Lys Asn Pro Thr Ile Tyr Asp
35 40 45
PL 208 400 B1
NEB-207-PIN.ST25
Ser Ser Asn Ile Ser His Cys Lys Asn Ile Asn Gly 60 Tyr Leu Phe Asp
50 55
Gly Asn Asn ile Phe Val Thr Asn Arg Pro Ala Pro Leu Ser Asn val
65 70 75 80
pro Arg Met His Asn Gly cys Lys Leu Leu ASP Gly Gly Phe Tyr Thr
85 90 95
Leu Thr Ser Gin Glu Arg Lys Glu Ala Ile Ser Lys Asp Pro Tyr Al a
100 105 110
Asp Lys Phe ile Arg Pro Tyr Leu Gly Ala Lys Asn Phe ile Hi s Gly
115 120 125
Thr Ala Arg Tyr cys ile Trp Leu Lys Asp Al a Asn pro Lys Asp Ile
130 135 140
His Gin Ser Pro Phe ile Leu Asp Arg Ile Asn Lys Val Al a Glu Phe
145 150 155 160
Arg Ser Gin Gin Lys Ser Lys Asp Thr Gin Lys Tyr Ala Lys Arg Pro
165 170 175
Met Leu Pro Thr Arg Leu Ala Tyr Tyr Ser Hi s Asp Glu Hi s Thr Asp
180 185 190
Met Leu Ile val Pro Al a Thr ser ser Gin Arg Arg Glu Tyr Leu Pro
195 200 205
Ile Gly Tyr val Ser Glu Lys Asn ile val Ser Tyr Ser Leu Met Leu
210 215 220
Ile Pro Asn Ala Ser Asn Phe Asn Phe Gly Ile Leu Glu Ser Lys Val
225 230 235 240
His Tyr Ile Trp Leu Lys Asn Phe cys Gly Arg Leu Lys Ser ASP Tyr
245 250 255
Arg Tyr Ser Asn Thr Ile Ile Tyr Asn Asn Phe Pro Trp Pro Thr val
260 265 270
Gly Asp Lys Gin Glu Gin Asn Ile Ser Glu Thr Ala Gin Gly Ile Leu
275 280 285
Asn Thr Arg Lys Leu Tyr Pro Asp Ser ser Leu Ala ASP Leu Tyr Asp
290 295 300
Pro Leu Thr Met Pro val Glu Leu Arg Lys Ala Hi s Glu Ala Asn Asp
305 310 315 320
PL 208 400 B1
NEB-207-PIN.ST25
Lys Al a val Leu Lys Ala Tyr Gly Leu ser pro Lys Ala Thr Glu Gin
325 330 335
Glu Ile Val Glu His Leu Phe Lys Met Tyr Glu Lys Leu Thr Lys Gly
340 345 350
Glu Arg <210> 5 <211> 919 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> M. methylotrophus aminokwas <400> 5
Met Ala Leu ser Trp Asn Glu Ile Arg Arg Lys Ala 10 Ile Glu Phe 15 Ser
1 5
Lys Arg Trp Glu ASp Ala ser Asp Glu Asn ser Gin Ala Lys Pro Phe
20 25 30
Leu Ile Asp Phe Phe Glu Val Phe Gly Ile Thr Asn Lys Arg Val Ala
35 40 45
Thr Phe Glu Hi s Al a Val Lys Lys Phe Ala Lys Ala Hi s Lys Glu Gin
50 55 60
Ser Arg Gly Phe val Asp Leu Phe Trp Pro Gly Ile Leu Leu Ile Glu
65 70 75 80
Met Lys Ser Arg Gly Lys Asp Leu Asp Lys Ala Tyr Asp Gin Ala Leu
85 90 95
Asp Tyr Phe Ser Gly ile Ala Glu Arg Asp Leu Pro Arg Tyr val Leu
100 105 110
val cys Asp Phe Gin Arg Phe Arg Leu Thr Asp Leu Ile Thr Lys Glu
115 120 125
Ser Val Glu Phe Leu Leu Lys Asp Leu Tyr Gin Asn val Arg Ser Phe
130 135 140
Gly Phe Ile Ala Gly Tyr Gin Thr Gin Val Ile Lys Pro Gin Asp Pro
145 150 155 160
ile Asn ile Lys Al a Ala Glu Arg Met Gly Lys Leu His Asp Thr Leu
165 170 175
Lys Leu val Gly Tyr Glu Gly His Ala Leu Glu Leu Tyr Leu Val Arg
180 185 190
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Leu Leu Phe Cys 195 Leu Phe Ala Glu 200 Asp Thr Thr ile Phe 205 Glu Lys Ser
Leu Phe Gin Glu Tyr Ile Glu Thr Lys Thr Leu Glu Asp Gly Ser Asp
210 215 220
Leu Ala Hi s Hi s ile Asn Thr Leu Phe Tyr val Leu Asn Thr Pro Glu
225 230 235 240
Gin Lys Arg Leu Lys Asn Leu Asp Glu His Leu Al a Ala Phe pro Tyr
245 250 255
ile Asn Gly Lys Leu Phe Glu Glu Pro Leu Pro Pro Ala Gin Phe Asp
260 265 270
Lys Ala Met Arg Glu Ala Leu Leu Asp Leu cys ser Leu ASp Trp Ser
275 280 285
Arg Ile Ser Pro Ala Ile Phe Gly Ser Leu Phe Gin ser Ile Met Asp
290 295 300
Ala Lys Lys Arg Arg Asn Leu Gly Al a His Tyr Thr Ser Glu Ala Asn
305 310 315 320
Ile Leu Lys Leu Ile Lys Pro Leu Phe Leu Asp Glu Leu Trp val Glu
325 330 335
Phe Glu Lys val Lys Asn Asn Lys Asn Lys Leu Leu Ala Phe His Lys
340 345 350
Lys Leu Arg Gly Leu Thr Phe Phe Asp Pro Ala cys Gly Cys Gly Asn
355 360 365
Phe Leu Val Ile Thr Tyr Arg Glu Leu Arg Leu Leu Glu Ile Glu val
370 375 380
Leu Arg Gly Leu His Arg Gly Gly Gin Gin Val Leu Asp Ile Glu His
385 390 395 400
Leu Ile Gin Ile Asn val Asp Gin Phe Phe Gly Ile Glu Ile Glu Glu
405 410 415
Phe Pro Ala Gin Ile Al a Gin Val Ala Leu Trp Leu Thr Asp Hi s Gin
420 425 430
Met Asn Met Lys Ile ser Asp Glu Phe Gly Asn Tyr Phe Al a Arg Ile
435 440 445
Pro Leu Lys Ser Thr Pro Hi s ile Leu Asn Ala Asn Ala Leu Gin Ile
450 455 460
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
ASP 465 Trp Asn Asp val Leu Glu 470 Ala Lys Lys Cys Cys Phe ile Leu Gly
475 480
Asn Pro Pro Phe val Gly Lys Ser Lys Gin Thr Pro Gly Gin Lys Ala
485 490 495
Asp Leu Leu Ser Val Phe Gly Asn Leu Lys Ser Ala Ser Asp Leu Asp
500 505 510
Leu val Ala Ala Trp Tyr Pro Lys Al a Ala Hi s Tyr Ile Gl n Thr Asn
515 520 525
Al a Asn ile Arg cys Al a Phe val Ser Thr Asn Ser ile Thr Gin Gly
530 535 540
Glu Gin Val Ser Leu Leu T rp Pro Leu Leu Leu Ser Leu Gly Ile Lys
545 550 555 560
ile Asn Phe Ala His Arg Thr Phe ser Trp Thr Asn Glu Al a Ser Gly
565 570 575
val Ala Ala val His cys val ile Ile Gly Phe Gly Leu Lys ASP Ser
580 585 590
Asp Glu Lys Ile Ile Tyr Glu Tyr Glu Ser ile Asn Gly Glu Pro Leu
595 600 605
Ala Ile Lys Ala Lys Asn ile Asn Pro Tyr Leu Arg Asp Gly val Asp
610 615 620
val Ile Al a cys Lys Arg Gin Gin pro ile Ser Lys Leu Pro Ser Met
625 630 635 640
Arg Tyr Gly Asn Lys Pro Thr Asp Asp Gly Asn phe Leu Phe Thr ASP
645 650 655
Glu Glu Lys Asn Gin Phe Ile Thr Asn Glu Pro Ser Ser Glu Lys Tyr
660 665 670
Phe Arg Arg Phe Val Gly Gly Asp Glu Phe Ile Asn Asn Thr Ser Arg
675 680 685
Trp cys Leu Trp Leu Asp Gly Ala Asp Ile Ser Glu Ile Arg Ala Met
690 695 700
Pro Leu val Leu Ala Arg Ile Lys Lys val Gin Glu Phe Arg Leu Lys
705 710 715 720
Ser Ser Ala Lys Pro Thr Arg Gin Ser Ala Ser Thr Pro Met Lys Phe
725 730 735
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Phe Tyr ile Ser 740 Gin Pro Asp Thr Asp 745 Tyr Leu Leu Ile Pro 750 Glu Thr
Ser Ser Glu Asn Arg Gin Phe Ile pro ile Gly Phe val ASp Arg Asn
755 760 765
val ile ser Ser Asn Ala Thr Tyr His ile Pro Ser Ala Glu Pro Leu
770 775 780
Ile Phe Gly Leu Leu Ser Ser Thr Met His Asn cys Trp Met Arg Asn
785 790 795 800
val Gly Gly Arg Leu Glu Ser Arg Tyr Arg Tyr Ser Al a Ser Leu val
805 810 815
Tyr Asn Thr Phe Pro Trp ile Gin Pro Asn Glu Lys Gin Ser Lys Ala
820 825 830
Ile Glu Glu Ala Al a Phe Ala Ile Leu Lys Ala Arg Ser Asn Tyr Pro
835 840 845
Asn Glu Ser Leu Ala Gly Leu Tyr Asp Pro Lys Thr Met Pro Ser Glu
850 855 860
Leu Leu Lys Ala His Gin Lys Leu Asp Lys Ala val Asp ser val Tyr
865 870 875 880
Gly Phe Lys Gly Pro Asn Thr Glu ile Ala Arg Ile Ala Phe Leu Phe
885 890 895
Glu Thr Tyr Gin Lys Met Thr Ser Leu Leu Pro Pro Glu Lys Glu Ile
900 905 910
Lys Lys ser Lys Gly Lys Asn
915 <210> 6 <211> 936 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|15794682jref|ΝΡ_284504.1 <400> 6
Met 1 Lys Thr Leu Leu 5 Gin Leu Gin Thr Ala 10 Ala Gin Asn Phe Ala 15 Ala
Tyr Tyr Lys Asp Gin Thr Asp Glu Arg Arg Glu Lys Asp Thr Phe Asn
25 30
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Glu Phe Phe Ala ile Phe Gly ile 40 Asp Arg Lys Asn Val 45 Al a Hi s Phe
35
Glu Tyr Pro val Lys Asp Pro Al a Asp Asn Thr Gln Phe Val Asp ile
50 55 60
Phe Trp Glu Gly ile Phe Leu Ala Glu Hi s Lys Ser Al a Asn Lys Asn
65 70 75 80
Leu Thr Lys Ala Lys Glu Gln Ala Glu Arg Tyr Leu Gln Glu Ile Gly
85 90 95
Arg Thr Lys Pro ser Ala Leu Pro Glu Tyr Tyr Ala Val Ser Asp Phe
100 105 110
Ala Hi s Phe Hi s Leu Tyr Arg Arg Val Pro Glu Glu Gly Ala Glu Asn
115 120 125
Gln Trp Gln Phe pro Leu Glu Glu Leu Pro Glu Tyr Ile Thr Arg Gly
130 135 140
val Phe Asp Phe Met Phe Gly Ile Glu Ala Lys val Arg Gln Ile Gln
145 150 155 160
Glu Glu Ala Asn ile Gln Ala Al a Ala Thr ile Gly Arg Leu His Asp
165 170 175
Ala Leu Lys Glu Glu Gly Ile Tyr Glu Glu Hi s Glu Leu Arg Leu Phe
180 185 190
Ile Thr Arg Leu Leu Phe Leu Phe Phe Ala Asp Asp Ser Ala val Phe
195 200 205
Arg Arg Asn Tyr Leu Phe Gln Asp Phe Leu Glu Asn Cys Lys Glu Ala
210 215 220
Asp Thr Leu Gly Asp Lys Leu Asn Gln Leu Phe Glu Phe Leu Asn Thr
225 230 235 240
Pro Asp Gln Lys Arg Ser Lys Thr Gln Ser Glu Lys Phe Lys Gly Phe
245 250 255
Glu Tyr Val Asn Gly Gly Leu Phe Lys Glu Arg Leu Arg Thr Phe Asp
260 265 270
Phe Thr Ala Lys Gln Hi s Arg Al a Leu Ile Asp cys Gly Asn Phe Asp
275 280 285
Trp Arg Asn ile Ser Pro Glu ile Phe Gly Thr Leu Phe Gln Ser val
290 295 300
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Met Asp Ala Gin Glu Arg Arg Glu Ala Gly Ala His Tyr Thr Glu Ala
305 310 315 320
Ala Asn Ile Asp Lys val ile Asn Gly Leu Phe Leu Glu Asn Leu Arg
325 330 335
Ala Glu Phe Glu Ala Val Lys Ala Leu Lys Arg Asp Lys Ala Lys Lys
340 345 350
Leu Ala Ala Phe Tyr Gin Lys Ile Gin Asn Leu Gin Phe Leu Asp Pro
355 360 365
Al a cys Gly cys Gly Asn Phe Leu ile val Al a Tyr Asp Arg ile Arg
370 375 380
Ala Leu Glu Asp Asp Ile Ile Ala Glu Ala Leu Lys Asp Lys Ala Asp
385 390 395 400
Gly Leu Phe Asp Ser Pro Ser val Gin cys Arg Leu Lys Gin Phe Hi s
405 410 415
Gly Ile Glu ile Asp Glu Phe Ala val Leu ile Ala Arg Thr Ala Met
420 425 430
Trp Leu Lys Asn Hi s Gin cys Asn Ile Arg Thr Gin ile Arg Phe Asp
435 440 445
Gly Glu Val Ala cys Hi s Thr Leu Pro Leu Glu Asp Ala Ala Glu Ile
450 455 460
Ile His Ala Asn Ser Leu Arg Thr Pro Trp Gin Ala Ala Asp Tyr ile
465 470 475 480
Phe Gly Asn Pro Pro Phe Ile Gly Ser Thr Tyr Gin Thr Lys Glu Gin
485 490 495
Lys Asn Asp Leu Glu Ser Ile Cys Gly His ile Lys Gly Tyr Gly Leu
500 505 510
Leu Asp Tyr val cys Asn Trp Tyr val Lys Ala Ala Gly Ile Met Ala
515 520 525
Gin Hi s Pro Gin val Gin Thr Ala Phe Val Ser Thr Asn Ser ile Cys
530 535 540
Gin Gly Gin Gin Val Glu Ile Leu Trp Gly Ser Leu Leu Asn Gin Gly
545 550 555 560
Ile Glu ile His Phe Al a Hi s Arg Thr phe Gin Trp Thr Ser Gin Ala
565 570 575
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Ala Gly Lys Ala 580 Ala val Hi s cys
Pro Pro Met 595 Pro Ser Glu Lys Thr 600
Gly Glu 610 Pro Glu Lys Hi s Al a 615 val
Asp 625 Ala pro Asp Leu ile 630 Ile Ala
Glu Pro Asp Met val 645 Asn Gly Ser
Ile Leu Ser Thr 660 Ala Glu Lys Asp
Ala Glu Gin 675 Tyr Ile Arg Pro Phe 680
Gly Lys 690 Thr Arg Trp cys Leu 695 Trp
Arg 705 Asn Hi s Asp Leu Lys 710 Gin Met
Ala val Lys Thr Met 725 Arg Glu Al a
Asp Ala Ala Thr 740 Pro Trp Leu Phe
Gly Asn Tyr 755 Leu ile ile Pro ser 760
Ile Pro 770 Ile Gly Tyr Leu Ser 775 Phe
Phe 785 Ile Leu Pro Asn Ala 790 Thr Leu
Thr Met His Asn Ala 805 Phe Met Arg
Asp Tyr Arg Tyr 820 ser Asn Thr val
Glu Ser Cys Arg Leu Pro Ser Glu
835 840
Ile Val Gly Phe Arg 590 Gin Lys
Tyr Asp Tyr Pro 605 Asp Ile Lys
Asn Ile Asn 620 pro Tyr Leu ile
Arg Ser 635 Arg Pro ile Hi s cys 640
Pro 650 Thr Glu Gly Gly Asn 655 Leu
Leu Ile Ala Ala Glu 670 Pro Leu
Gly Ala Asp Glu 685 Phe Leu Asn
Hi s Gly Val 700 Ser Asp Val Lys
Gin val 715 Gin Ala Arg Ile Gin 720
Ser 730 Asp Lys Gin Thr Gin 735 Lys
Lys ile Arg Gin pro 750 Ser Asp
ser ser Glu Ser 765 Arg Arg Phe
Thr Val val 780 Ser Asn Leu Ala
Hi s Phe 795 Gly ile Leu Ser Ser 800
val 810 Ala Gly Arg Leu Lys 815 Ser
Tyr Asn Asn Phe Pro 830 Phe Pro
Asp Arg Pro Asp Pro Leu Arg
845
PL 208 400 B1
Ala Ala Val 850 Glu Ala NEB-207-PIN.ST25 Gly Gin
Ala Ala 855 Gin Thr val Leu Asp 860 Ala Arg
Tyr Arg Arg Glu Ala Gin Glu Ala Gly Leu Pro Glu Pro Thr Leu Ala
865 870 875 880
Glu Leu Tyr Ala pro ASp Ala Gly Tyr Thr Ala Leu Asp Lys Ala Hi s
885 890 895
Ala Thr Leu Asp Lys Al a Val Asp Lys Al a Tyr Gly Tyr Lys Thr Gly
900 905 910
Lys Asn Thr ASP ASP Glu Ala Glu Arg val Ala Phe Leu Phe Glu Leu
915 920 925
Tyr Arg Lys Ala Ala Ala ile Al a
930 935
<210> 7 <211> 879 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|16077744|ref|ΝΡ_388558.1 <400> 7
Met Ala 1 Leu Ile Asp 5 Leu Glu Asp Lys Ile Ala Glu Ile Val 10 Asn 15 Arg
Glu Asp His Ser Asp Phe Leu Tyr Glu Leu Leu Gly val Tyr ASP val
20 25 30
Pro Arg Ala Thr Ile Thr Arg Leu Lys Lys Gly Asn Gin Asn Leu Thr
35 40 45
Lys Arg val Gly Glu Val His Leu Lys Asn Lys Val Trp Phe Lys Glu
50 55 60
Ala Lys Lys Gly Lys Leu Phe Asp Ala Leu Ile ASP Ile Glu Gin Gin
65 70 75 80
val Glu Tyr Leu Ser Ala Lys Pro Arg Tyr Leu Leu Val Thr Asp Tyr
85 90 95
Asp Gly val Leu Al a Lys Asp Thr Lys Thr Leu Glu Ala Leu Asp val
100 105 110
Lys Phe Glu Glu Leu Pro Gin Tyr Phe Asp Phe Phe Leu Ala Trp Lys
115 120 125
Gly Ile Glu Lys val Glu Phe Glu Lys Glu Asn Pro Ala Asp Ile Lys
130 135 140
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Ala 145 Ala Glu Arg Phe Ala 150 Arg Ile Tyr Asp val 155 Leu Arg Lys Glu Asn 160
Asn Ile Ile Glu Thr Asn Arg Gly Leu Asp Leu Phe Leu Ile Arg Leu
165 170 175
Leu Phe cys Phe Phe Ala Glu Asp Thr Asp ile Phe Lys Arg Asn Ser
180 185 190
Phe Thr Asn Leu Ile Lys Thr Leu Thr Glu Glu Asp Gly Ser Asn Leu
195 200 205
Asn Lys Leu Phe Ala Asp Leu Phe Ile Val Leu Asp Lys Asn Glu Arg
210 215 220
Asp Asp Val Pro Ser Tyr Leu Lys Glu Phe Pro Tyr val Asn Gly Gin
225 230 235 240
Leu Phe Thr Glu Pro His Thr Glu Leu Glu Phe Ser Al a Lys Ser Arg
245 250 255
Lys Leu Ile Ile Glu cys Gly Glu Leu Leu Asn Trp Ala Lys Ile Asn
260 265 270
Pro Asp Ile Phe Gly Ser Met ile Gin Ala val Ala Ser Glu Glu Ser
275 280 285
Arg ser Tyr Leu Gly Met His Tyr Thr Ser val Pro Asn Ile Met Lys
290 295 300
Val Ile Lys Pro Leu Phe Leu Asp Lys Leu Asn Gin Ser Phe Leu Asp
305 310 315 320
Ala Tyr ASp Asp Tyr Thr Lys Leu Glu Asn Leu Leu Thr Arg Ile Gly
325 330 335
Lys Ile Lys Phe Phe Asp Pro Ala cys Gly Ser Gly Asn Phe Leu ile
340 345 350
ile Thr Tyr Lys Glu Leu Arg Arg Met Glu Ile Asn Ile Ile Lys Arg
355 360 365
Leu Gin Glu Leu Leu Gly Glu Tyr Leu Tyr val Pro ser val Thr Leu
370 375 380
Ser Gin Phe Tyr Gly Ile Glu Ile Glu Asp Phe Ala Hi s Asp val Ala
385 390 395 400
Lys Leu Ser Leu Trp Ile Ala Glu His Gin Met Asn Glu Glu Leu Lys
405 410 415
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asn Glu val His 420 Asn Al a Val Arg Pro 425 Thr Leu Pro Leu Hi s 430 Thr Ala
Gly Asp Ile Arg cys Ala Asn Ala Ile Arg val Glu Trp Thr Glu Val
435 440 445
cys Pro Ala Gin Gly Ser Glu Glu Val Tyr Val Phe Gly Asn Pro Pro
450 455 460
Tyr Leu Gly Ser Lys Lys Gin Asn Lys Glu His Lys Ser Asp Met Leu
465 470 475 480
Ser Ile Phe Gly Lys val Lys Asn Gly Lys Met Leu Asp Tyr Ile Ser
485 490 495
Ala Trp Phe Tyr Phe Gly Ala Lys Tyr Ala Ser Thr Thr Asn Ala Lys
500 505 510
Val Al a Phe Val Ser Thr Asn Ser Val Thr Gin Gly Glu Gin Val Ser
515 520 525
ile Leu Trp Asn Glu Leu Phe Lys Phe Gly Ile Gin Ile Asn Phe Al a
530 535 540
Tyr Lys Ser Phe Lys Trp Ala Asn Asn Ala Lys Asn Asn Ala Ala val
545 550 555 560
ile val val ile val Gly phe Gly pro Leu ASP Thr Lys val Asn Lys
565 570 575
Tyr Leu Phe val Asp Glu Thr Lys Lys Leu val ser Asn Ile ser Pro
580 585 590
Tyr Leu Thr Asp Gly Glu Asn Ile Leu val ser ser Arg Thr Lys Pro
595 600 605
ile ser Asp Leu Pro Lys Leu Hi s Phe Gly Asn Met pro Asn ASp Gly
610 615 620
Gly Gly Leu Leu Phe Thr Ile Thr Glu Tyr Thr Asp Ala Ile Asn Lys
625 630 635 640
Tyr Pro Glu Leu val Pro Tyr Phe Lys Lys Phe Ile Gly Ser Val Glu
645 650 655
Phe Ile Asn Gly Gly Leu Arg Tyr cys Leu T rp Leu Asn Glu Al a Lys
660 665 670
Tyr Glu Lys Ile Lys Ser Asn Pro Leu Ile Gin Glu Arg Ile Ser Ile
675 680 685
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
ser Lys 690 Asn His Arg Glu Lys 695 ser Thr Asp Lys Gly 700 Thr Asn Lys Leu
Ala Leu Thr Pro Trp Lys Phe Arg Asp Thr Hi s Glu Thr Thr Asn Tyr
705 710 715 720
Ser ile val Val Pro Ser val Ser Ser Glu Α5Π Arg Phe Tyr ile pro
725 730 735
Met Gly Leu Ala Gly Ala Asp Thr ile Leu Ser Asn Leu Ile Tyr Val
740 745 750
ile Tyr Asp Ala Glu Ile Tyr Leu Leu Gly ile Leu Met Ser Arg Met
755 760 765
Hi s Met Thr T rp val Lys Ala Val Ala Gly Arg Leu Lys Thr Asp Tyr
770 775 780
Arg Tyr Ser Ala Gly Leu cys Tyr Asn Thr Phe Pro Ile Pro Glu Leu
785 790 795 800
Ser Thr Arg Arg Lys Asn Glu Ile Glu Glu Ala ile Leu Glu Ile Leu
805 810 815
Asp Leu Arg Glu Glu Gln Gly Gly Thr Leu Ala Glu Leu Tyr Asn Pro
820 825 830
Ser Thr Met Pro Ile Glu Leu Lys val Ala Hi s Glu Lys Leu Asp Gly
835 840 845
Ile Val Glu Arg Ala Tyr Arg Gln Lys Gln Phe Glu Ser Asp Glu Glu
850 855 860
Arg Leu Glu val Leu Leu Lys Leu Tyr Gln Glu Met Thr Glu Arg
865 870 875
<210> 8 <211> 952 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|9945797|gb|AAG03371.1 <400> 8
Met val Met Ala Pro Thr Thr Val Phe Asp Arg Ala Thr ile Arg Hi s
1 5 10 15
Asn Leu Thr Glu Phe Lys Leu Arg Trp Leu Asp Arg Ile Lys Gln Trp
25 30
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Glu Ala Glu Asn Arg 35 Pro Ala Thr Glu Ser Ser His Asp Gin Gin Phe
40 45
Trp Gly Asp Leu Leu Asp cys Phe Gly Val Asn Ala Arg Asp Leu Tyr
50 55 60
Leu Tyr Gin Arg Ser Ala Lys Arg Ala Ser Thr Gly Arg Thr Gly Lys
65 70 75 80
Ile Asp Met Phe Met Pro Gly Lys val ile Gly Glu Ala Lys ser Leu
85 90 95
Gly val Pro Leu Asp Asp Ala Tyr Ala Gin Ala Leu Asp Tyr Leu Leu
100 105 110
Gly Gly Thr Ile Ala Asn Ser His Met Pro Al a Tyr Val Val cys Ser
115 120 12 5
Asn Phe Glu Thr Leu Arg val Thr Arg Leu Asn Arg Thr Tyr Val Gly
130 135 140
Asp Ser Ala Asp Trp Asp Ile Thr Phe Pro Leu Ala Glu Ile Asp Glu
145 150 155 160
Hi s Ile Glu Gin Leu Al a Phe Leu Ala Asp Tyr Glu Thr Ser Al a Tyr
165 170 175
Arg Glu Glu Glu Lys Al a ser Leu Glu Ala ser Arg Leu Met val Glu
180 185 190
Leu Phe Arg Ala Met Asn Gly Asp Asp Val Asp Glu Ala Val Gly Asp
195 200 205
Asp Ala Pro Thr Thr Pro Glu Glu Glu Asp Glu Arg val Met Arg Thr
210 215 220
Ser Ile Tyr Leu Thr Arg Ile Leu Phe Leu Leu Phe Gly Asp Asp Ala
225 230 235 240
Gly Leu Trp Asp Thr Pro His Leu Phe Ala Asp Phe Val Arg Asn Glu
245 250 255
Thr Thr Pro Glu Ser Leu Gly Pro Gin Leu Asn Glu Leu Phe Ser Val
260 265 270
Leu Asn Thr Al a Pro Glu Lys Arg Pro Lys Arg Leu Pro Ser Thr Leu
275 280 285
Al a Lys Phe Pro Tyr val Asn Gly Ala Leu Phe Al a Glu Pro Leu Al a
290 295 300
PL 208 400 B1
Ser 305 Glu Tyr Phe NEB-207-PIN.ST25 cys 320
Asp Tyr 310 Gin Met Arg Glu Al a 315 Leu Leu Ala Al a
Asp Phe Asp Trp Ser Thr ile ASp val ser val Phe Gly Ser Leu Phe
325 330 335
Gin Leu Val Lys Ser Lys Glu Ala Arg Arg Ser Asp Gly Glu Hi s Tyr
340 345 350
Thr Ser Lys Ala Asn ile Met Lys Thr Ile Gly Pro Leu Phe Leu Asp
355 360 365
Glu Leu Arg Ala Glu Ala Asp Lys Leu Val Ser Ser Pro Ser Thr Ser
370 375 380
val Ala Al a Leu Glu Arg Phe Arg Asp Ser Leu Ser Glu Leu val Phe
385 390 395 400
Ala Asp Met Ala cys Gly Ser Gly Asn Phe Leu Leu Leu Al a Tyr Arg
405 410 415
Glu Leu Arg Arg Ile Glu Thr Asp Ile Ile val Ala ile Arg Gin Arg
420 425 430
Arg Gly Glu Thr Gly Met Ser Leu Asn Ile Glu Trp Glu Gin Lys Leu
435 440 445
Ser Ile Gly Gin Phe Tyr Gly Ile Glu Leu Asn Trp Trp Pro Ala Lys
450 455 460
Ile Ala Glu Thr Ala Met Phe Leu Val Asp His Gin Ala Asn Lys Glu
465 470 475 480
Leu Ala Asn Ala val Gly Arg Pro Pro Glu Arg Leu Pro ile Lys Ile
485 490 495
Thr Al a His Ile Val Hi s Gly Asn Ala Leu Gin Leu Asp Trp Ala Asp
500 505 510
Ile Leu ser Al a ser Ala Ala Lys Thr Tyr ile Phe Gly Asn pro pro
515 520 525
Phe Leu Gly His Ala Thr Arg Thr Al a Glu Gin Ala Gin Glu Leu Arg
530 535 540
Asp Leu Trp Gly Thr Lys Asp Ile Ser Arg Leu Asp Tyr val Thr Gly
545 550 555 560
Trp Hi s Al a Lys cys Leu Asp Phe Phe Lys Ser Arg Glu Gly Arg Phe
565 570 575
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Ala Phe val Thr 580 Thr Asn ser ile Thr 585 Gin Gly Asp Gin val 590 Pro Arg
Leu Phe Gly Pro Ile Phe Lys Ala Gly Trp Arg ile Arg Phe Ala His
595 600 605
Arg Thr Phe Al a Trp Asp ser Glu Al a Pro Gly Lys Ala Ala val Hi s
610 615 620
Cys Val Ile Val Gly Phe ASP Lys Glu Ser Gin Pro Arg Pro Arg Leu
625 630 635 640
Trp Asp Tyr Pro Asp val Lys Gly Glu Pro val Ser val Glu val Gly
645 650 655
Gin Ser Ile Asn Ala Tyr Leu val Asp Gly Pro Asn val Leu Val Asp
660 665 670
Lys Ser Arg His Pro Ile Ser Ser Glu Ile Ser Pro Ala Thr Phe Gly
675 680 685
Asn Met Ala Arg Asp Gly Gly Asn Leu Leu Val Glu Val Asp Glu Tyr
690 695 700
Asp Glu val Met Ser Asp Pro val Ala Ala Lys Tyr val Arg Pro Phe
705 710 715 720
Arg Gly Ser Arg Glu Leu Met Asn Gly Leu Asp Arg Trp Cys Leu Trp
725 730 735
Leu Val Asp val Ala Pro Ser Asp Ile Ala Gin Ser Pro Val Leu Lys
740 745 750
Lys Arg Leu Glu Ala val Lys Ser Phe Arg Ala Asp Ser Lys Al a Ala
755 760 765
Ser Thr Arg Lys Met Al a Glu Thr Pro His Leu Phe Gly Gin Arg Ser
770 775 780
Gin Pro Asp Thr Asp Tyr Leu Cys Leu Pro Lys Val Val Ser Glu Arg
785 790 795 800
Arg Ser Tyr Phe Thr Val Gin Arg Tyr Pro Ser Asn val Ile Ala Ser
805 810 815
Asp Leu val Phe Hi s Al a Gin Asp Pro Asp Gly Leu Met Phe Ala Leu
820 825 830
Ala Ser Ser Ser Met Phe Ile Thr Trp Gin Lys Ser Ile Gly Gly Arg
835 840 845
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Leu Lys ser Asp Leu 850 Arg Phe 855 Ala Asn Thr Leu Thr 860 Trp Asn Thr Phe
Pro val Pro Glu Leu ASp Glu Lys Thr Arg Gin Arg ile Ile Lys Ala
865 870 875 880
Gly Lys Lys Val Leu Asp Ala Arg Al a Leu Hi s Pro Gl u Arg ser Leu
885 890 895
Ala Glu His Tyr Asn Pro Leu Ala Met Ala Pro Glu Leu Ile Lys Al a
900 905 910
Hi s Asp Ala Leu Asp Arg Glu Val Asp Lys Ala Phe Gly Ala Pro Arg
915 920 925
Lys Leu Thr Thr Val Arg Gin Arg Gin Glu Leu Leu Phe Al a Asn Tyr
930 935 940
Glu Lys Leu Ile Ser Hi s Gin Pro
945 950 <210> 9 <211> 168 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank I ίγ gi |23451826|gb|AAN32874.1
<400> 9
Pro Ala Asp Glu Arg ser Gin Met Asp Ala Gly Gly Lys Pro val Glu
1 5 10 15
Gly Gly Asn Leu Leu Phe Ala Glu Glu Glu Lys Gin Arg Leu val Glu
20 25 30
Gly Asn val Asp val val Lys Phe Leu Lys Arg Val Tyr Gly Ala Ser
35 40 45
Glu Tyr Ile Arg Gly Glu val Arg Phe Cys Leu Trp ile Ser Asp Ser
50 55 60
Gin Glu Gin Glu Al a Lys Ser Asn Ser Asp Ile Asn Cys Lys Leu Asn
65 70 75 80
Ala Val Ala Ala Phe Arg Leu Lys Ser Pro Lys Ala Ala Thr Lys Lys
85 90 95
Gly Ala Ala Trp Pro His Lys Phe Glu Glu Val Lys Gin Ile Gly Asn
100 105 110
Glu val val Thr Ile Val Pro Lys val Ser Ser Glu Ser Arg Glu Tyr
115 120 125
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Leu Pro val Gly Leu Leu Pro Arg Gly Ser Ile Val Thr ASp Leu Ala
130 135 140
Phe Al a Leu Tyr Asp Al a Pro Leu τ rp Asn Met Al a Leu ile Al a Ser
145 150 155 160
Arg Leu Hi s Leu Val Trp ile Gly
165 <210> 10 <211> 909 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gb|23110638|gb|ZP00096791.1 <400> 10
Met Asn 1 Pro val Glu 5 Ile Glu Glu Ala Val 10 Ser Asp Leu Ala Arg 15 Al a
Pro Tyr Asp Ala Ser Glu Phe Pro Phe Gin Phe Leu Ala Al a Phe Gly
20 25 30
Asn Lys Gin Thr Thr Leu Gin Arg Leu Arg Ala Gly Asn Ser Asn Gin
35 40 45
Ser ASP Leu Pro Gly Al a val Leu Gin Arg Asn His Ile Hi s ile Ala
50 55 60
Thr cys Asp Ala Gly Asn val Asp Arg Thr Leu Ala Ala Leu Arg Lys
65 70 75 80
Ser Pro Lys Thr Ala Ser Gin Lys Ala Arg Phe ile Leu Al a Thr Asp
85 90 95
Gly val Al a Phe Gin Ala Glu ASp Met Ala Ser Gly Glu Thr val Ala
100 105 110
cys Asn Tyr Ala Ala Phe Pro Asp Lys Phe Ala Phe Phe Leu pro Leu
115 120 125
Ala Gly Ile Thr Thr Val Gin Gin ile Arg Glu Ser Ser Phe Asp ile
130 135 140
Lys Ala Thr Gly Arg Leu Asn Lys Leu Tyr val Glu Leu Leu Lys ASp
145 150 155 160
Asn Pro Asp Trp Al a Ser Arg Ser Glu Asp Met Asn Hi s Phe Met Ala
165 170 175
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Arg Leu ile Phe cys Phe 180 Phe Ala Glu Asp Thr 185 Asp ile Phe 190 val Gly
Glu Gly Leu Phe Ser Arg Thr val Glu Thr Met Ser Ala Arg Asp Ala
195 200 205
Ser Asp Thr Hi s Met Val Ile Ala Glu Ile Phe Arg Ala Met ASP Thr
210 215 220
Arg Leu Ala Asp Arg Al a Ala Ala Gly ile Lys Ser Trp Al a Asp val
225 230 235 240
Phe Pro Tyr val Asn Gly Gln Leu Phe Ser Gly Ser Thr Glu Cys Pro
245 250 255
Arg Phe Ser Lys Ile Ala Arg Ser Tyr Leu Leu Hi s Ile Gly Ser Leu
260 265 270
Asp Trp Gln Lys Ile Asn Pro Asp Ile Phe Gly ser Met Ile Gln Ala
275 280 285
val Ala Asp Asp Glu Glu Arg Gly Ala Leu Gly Met His Tyr Thr Ser
290 295 300
Val Pro Asn He Leu Lys Val Leu Asn Pro Leu Phe Leu Asp Asp Leu
305 310 315 320
Arg Ala Lys Leu Glu Glu Ala Gly Asp Asn Ser Arg Lys Leu Leu Asn
325 330 335
Leu Arg Asn Arg Met Ala Lys Ile Arg Val Phe Asp Pro Ala Cys Gly
340 345 350
Ser Gly Asn Phe Leu Val Ile Al a Tyr Lys Gln Met Arg Glu Leu Glu
355 360 365
Ala Glu Ile Asn Arg Arg Arg Gly Glu Ala Asp Arg Arg Ser Asp ile
370 375 380
Pro Leu Thr Asn Phe Arg Gly Ile Glu Leu Arg Asn Phe Pro Ala Glu
385 390 395 400
Ile Ala Arg Leu Ala Leu Ile Ile Al a Glu Tyr Gln Cys Asp val Leu
405 410 415
Tyr Arg Gly Gln Lys Glu Ala Leu Ala Glu Phe Leu pro Leu Asp Ser
420 425 430
Gln Asn Trp Ile Thr cys Gly Asn Al a Leu Arg Leu Asp Trp Leu Ser
435 440 445
PL 208 400 B1
Ile Cys 450 Pro Pro NEB-207-PIN.ST25 Leu
Thr Gly Thr 455 Ala val Lys Leu Gin Ala 460 Asn Asp
phe Glu Met pro Leu Asp Gin Al a Glu Ile Asp Phe Glu Asn Glu Gly
465 470 475 480
Gly Glu Thr Tyr Ile Cys Gly Asn Pro Pro Tyr Leu Gly Ala Lys Lys
485 490 495
Lys Ser Ser Asp Gin Ile Glu Asp Met Lys Arg val Gly Leu Asp Lys
500 505 510
Ala Gin Leu Leu Asp Tyr Val Ser Al a Phe ile val Arg Gly Leu Pro
515 520 525
Leu val Ala Gin Gin Arg Cys Asp Met Ala Leu Val Ser Thr Ser Ser
530 535 540
Ile cys Gin Gly Glu Gin val Ser Leu ile Trp Pro Arg Ile Leu Lys
545 550 555 560
Ser Ala Asn val Lys Phe Al a Tyr Arg Pro Phe Arg Trp Ser Asn Ser
565 570 575
Ala Ala Asn Asn Ala Gly val Tyr cys Thr Ile Ile Gly Leu Thr Gly
580 585 590
Ser Glu val Ser Asn Lys Lys Leu Phe Gly Glu Gly Ser Val val Glu
595 600 605
Cys Ser Ser ile Ala Pro Tyr Leu Val Pro Gly Pro Glu Ile Ile Cys
610 615 620
Ala Pro Arg Gin Ser Ser Ile Ser Gly Phe Ala Arg Met val Met Gly
625 630 635 640
ser Asn Pro val Asp Gly Lys Arg Leu Ile Phe Glu Gin Asp Glu Lys
645 650 655
Glu Ser Val val Ala Ala Asp Pro Arg Ser Glu Arg Phe Phe Lys Arg
660 665 670
Tyr Gly Gly Thr Gin Glu Leu val Asn Gly val Asp Arg Trp Cys Leu
675 680 685
Trp Ile Asn Asp Asp Gin Val Asp Asp Ala Lys Ala Ile Ala Glu ile
690 695 700
Ala Lys val Leu Glu Ser Cys Arg Ser Tyr Arg Gin Gly Ala Gly Arg
705 710 715 720
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp Ala Gin Lys Ala Ala Asn Arg Pro His Ser Phe Cys Tyr Arg 735 Thr
725 730
Phe Gin Glu Asn Ile Gly ile His Val Gly Leu Thr Ile Gly Asn Gly
740 745 750
Leu Ser Hi s val Pro Al a Asp Leu Lys Ser Ser Gly Phe val Ser Ser
755 760 765
Hi s Thr Al a Tyr Met Ile Tyr Gly Trp His Pro Val Glu Phe Ala Leu
770 775 780
Leu Asn Ser Arg Leu Met Leu val Trp Thr Glu Thr val Gly Gly Arg
785 790 795 800
Leu Gly Asn Gly Met Arg Phe Ser Asn Thr Ile Val Tyr Asn Thr Phe
805 810 815
Pro val Pro Ser Leu Thr Asp Gin Asn Lys Ala Asp Leu Thr Arg cys
820 825 830
Ala Glu Asp ile Leu Leu Al a Arg Glu Ser His Phe Pro Al a Thr ile
835 840 845
Ala Asp Leu Tyr Asp Pro Glu Thr Met Pro Glu Ser Leu Arg Ala Ala
850 855 860
Hi s Asp Arg Asn Asp Glu val Leu Glu Arg Ile Tyr Ile Gly Arg Arg
865 870 875 880
Phe Arg Asn Asp Thr Glu Arg Leu Glu Lys Leu Phe Glu Leu Tyr Thr
885 890 895
Lys Met Thr Gly Gly Arg Ser Ser Glu Gly Gly Ala Ala
900 905 <210> 11 <211> 1048 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr g- i|20803963|emb|CAD31540. 1
<400> 11
Met ser Leu Gly Ala Ala Gly Leu Thr Pro ile Thr Pro Ala Ala Phe
1 5 10 15
Ile Lys Lys Trp Arg Lys ser Glu Leu Gly Glu Arg Gin Ala Ala Gin
20 25 30
Glu His Phe Leu Asp Ile Cys Ser Leu Val Gly His Pro Ser Pro Ser
35 40 45
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
ASP Glu ASP Pro 50 Thr Gly Ala Phe Phe Ala Phe Glu Lys Gly Ala Asn
55 60
Lys Leu Gly Gly Gly Lys Gly Phe Ala Asp Val Trp Lys Lys Gly Hi s
65 70 75 80
Phe Al a Trp Glu Tyr Lys Arg Lys Lys Gly Asn Leu Asp Glu Ala Leu
85 90 95
Leu Gin Leu Met Arg Tyr Ala Pro Al a Leu Leu Ser Pro Pro Leu His
100 105 110
Ile Val cys Asp ile Glu Arg Leu Arg Ile His Thr Al a Trp Thr Asn
115 120 125
Thr val Pro ser Thr Tyr val Ile Thr Leu Asp Asp Leu Ala Glu pro
130 135 140
Ser Ala Arg Glu Met Leu His Asn val Phe Phe Ser Pro Glu Lys Leu
145 150 155 160
Arg Pro Thr Arg Thr Arg Ala Ala val Thr Lys Glu Ala Ala Asp Lys
165 170 175
Phe ser Al a ile Ala Leu Arg val Gin Gly Arg Gly Thr Pro Asp Glu
180 185 190
Ile Ala His Phe Val Asn Gin Leu val Phe cys Phe Phe Ala Gin ser
195 200 205
val ser Leu Leu pro Asp Gly Leu Phe Thr Lys Leu Leu Lys Arg ser
210 215 220
Ala Arg Ala Pro Glu Arg Ala Met Ser Tyr Leu Asp Lys Leu Phe Glu
225 230 235 240
Ala Met Glu Arg Gly Gly Glu Phe Asp Leu Thr ASp ile Thr Trp Phe
245 250 255
Asn Gly Gly Leu Phe Asp Gly Arg Arg Ala Leu Arg Leu Asp Asp Gly
260 265 270
Asp Ile Gly Leu Leu Val Ala Ala Asp Ser Leu Asp Trp Gly Leu Ile
275 280 285
Asp Pro Thr Ile Phe Gly Thr Leu Phe Glu Arg Phe Leu Asp Pro Glu
290 295 300
Lys Arg Ala Gin Ile Gly Al a His Tyr Thr Asp Pro Glu Lys ile Met
305 310 315 320
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Arg Leu
Gin Ala
Pro Met
Ala Glu 370
Leu Asp 385
Gly val
Gly Met ile Glu
Ile Gly 450
Ile Pro 465 val Arg
Leu Leu
Pro Glu
Leu Met 530 val Tyr 545
Val Glu
Gly Leu val Asp
Arg Arg 340
Arg Arg 355 val Arg
Pro Ala
Lys Asp
Pro Ala 420
Ile Asn 435
Asp Ile
Ile Leu
Gin Ala
Ala Ala 500
Ala Glu 515
Arg Gin
Asp Gly
Lys Ser val Thr 580
Pro val 325
Glu Ile
Gin Gin
Ser Arg
Cys Gly 390
Ile Glu 405
Gin Leu
Met Met
Gin Trp
Arg Lys 470
Gin Asp 485
Leu Gin
Phe ile
Ala Leu
Arg val 550
Arg Ala 565
Thr Asn ile Leu Arg Pro Leu Arg 330
Gin Glu val Glu Leu Leu Asn Gly 345
Ser Arg Arg Met Lys Arg 360
Phe Thr Glu Arg Leu Arg 375 380
Ser Gly Asn Phe Leu Tyr 395
His Arg Ala Asn Leu Asp 410
Pro Leu Val Gly Pro Glu 425
Ala Ala 440
Glu Leu
Ala Arg
Gin Ile 455
Leu Asp
Val Asp
Pro Val val Gly 520
Gly Asp 535
Ser Arg
Ala Val ser ile
Lys Asn
Ala Ile
Thr Ala 490
Ser Glu 505
Asn Pro
Pro Thr
Gly Ile 460
Glu Arg 475
Arg Asp
Asp Ala
Pro Phe val Asp 540
Glu Ala
Asp Leu 555
Ala Ala 570
Asp Arg
Arg Gly 585
Gly Ala
Asn Arg 350
Glu Glu 365
Lys Leu
Leu Ala
Cys Glu
Ile Leu 430
Thr Thr 445
Arg Ser
Arg Asp
Ala Gin
Glu Ala 510 val Gly 525
Arg Leu val cys
Thr Arg
Asn Arg 590
Trp Glu 335
Lys Pro
Ala Ala
Arg ile
Leu Gin 400
Met Leu 415
Arg Gly
Ile Trp
Lys Ser
Ala Leu 480
Gly Asp 495
Glu Trp val Arg
Phe Asp
Tyr Trp 560
Arg val 575
Arg val
PL 208 400 B1
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Pro 865 Ala val Arg Tyr Glu 870 Lys Asp Ser Arg Ala Ile Ala Ile 875 Ser Lys 880
Al a Al a Lys Arg Leu Asp Asp Ile Arg Asn Ala Trp Leu Asn Pro Ser
885 890 895
Asp Leu val Gin Ile Lys Pro Glu Val Val Pro Gly Tyr Pro Asp Arg
900 905 910
Ile Leu Pro Lys Asp ile Ala Ser Asp Ala Ile Leu Arg Asp Arg Thr
915 920 925
Leu Thr Asn Leu Tyr Asn Arg Arg Pro Gin Trp Leu Val Asp Al a His
930 935 940
Ser ASp Leu Asp Ala Al a val Ala Gly Ala Tyr Gly Trp Pro Al a Asp
945 950 955 960
Ile ser Glu Asp Glu Al a Leu Ala Asn Leu Leu Glu Leu Asn Leu Ala
965 970 975
Arg Glu Al a Phe Asn Glu Hi s Al a Lys Ser Gly Leu Lys Thr Arg Lys
980 985 990
Pro Arg Arg Arg Pro Thr Pro Glu Glu Val Arg Arg Ala Pro Gin Mel 995 1000 1005
Lys Leu Pro ile Ala Gly Gly Arg Lys Ser Val val Gly Pro Gin 1010 1015 1020
Gin Leu Thr Thr Lys Asp Arg Glu Asn Gin Pro Thr Ser Ala Glu 1025 1030 1035
Arg Pro Arg Asn Thr Lys Arg Arg Thr Ser 1040 1045 <210> 12 <211> 959 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|16125079|ref|np_419643.1 <400> 12
Asp Leu Cys Arg Met Leu Glu val Pro Thr Pro Ala Glu Asp Asp Pro 15 10 15
Leu Gly Glu Arg Tyr Cys Phe Glu Arg Gly Ala Ala Lys Thr Gly Gly 20 25 30
PL 208 400 B1
NEB-207-ΡΙΝ.ST25
Gly Asp Gly 35 Trp Ala Asp val Trp Arg Lys Gly Cys 40 Phe 45 Gly Trp Glu
Tyr Lys Gly Lys Hi s Lys Asn Leu Asp Al a Al a Leu Arg Gin Leu Gin
50 55 60
Ala Tyr Al a Leu Asp Leu Gin Asn pro pro Tyr Leu Val val Ser Asp
65 70 75 80
Met Glu Arg Ile ile val His Thr Asn Trp Thr Asn Thr ile ser Arg
85 90 95
Lys ile Glu Phe Thr Leu Asp Asp Leu Hi s Glu pro Glu Lys Leu Ala
100 105 110
Met Leu Arg Gin Val Phe Asp Gly ser Asp ser Leu Lys pro Lys ile
115 120 125
Ser Pro Gin Glu Leu Thr Ala Lys Val Ala Gin Arg Phe Gly Asp Leu
130 135 140
Gly Arg Arg Leu Gin Glu Arg Gly His His Pro Arg Asp Val Al a His
145 150 155 160
Phe Leu Asn Arg Val val Phe cys Met Phe Ala Glu Asp Al a Lys Leu
165 170 175
Leu Pro Glu Gly Leu Phe Thr Arg Leu Thr Arg Ser Met Gin Met Arg
180 185 190
Pro Pro Ala Glu Al a Al a Pro Gin Phe Asp Ala Leu Phe Ala Met Met
195 200 205
Arg Al a Gly Gly Met Phe Gly Ala Asp Ile Val Hi s Trp Phe Asn Gly
210 215 220
Gly Leu Phe Asp Glu Lys Pro Al a Leu Pro Leu Glu Arg Ala Asp Ile
225 230 235 240
Lys Leu ile His Asp Thr Al a Ala Glu Hi s Asp Trp Ser Asp Leu Asp
245 250 255
Pro Ser val Phe Gly Asn Met Phe Glu Glu Al a Leu Lys Al a Thr Arg
260 265 270
Glu Arg Ala Ala Leu Gly Ala Hi s Tyr Thr Asp Arg Glu Lys Ile Leu
275 280 285
Lys Ile Ile Asp Pro val Ile Thr Trp Pro Leu Met Al a Gin Trp Glu
290 295 300
PL 208 400 B1
Thr 305 Ala Leu Ala Glu NEB-207-PIN.ST25 Ala 320
Ile Arg Ala Ala Leu Asp Ala Arg Ala Al a
310 315
Glu Al a Glu Arg Lys Ala val Leu Glu Ala Ala Ala Glu Ala Met Arg
325 330 335
Ala Asp Pro Val Lys Al a Lys Ala Gly Glu Ala Ala Arg Arg Lys Thr
340 345 350
Leu Thr Ala Ile Ala Lys Arg Ser ASp Ala Ala Leu Gly Gin Ala Lys
355 360 365
Asp Arg Leu Glu Ala Phe Leu Ser Arg Leu Ala Ala Phe Arg Val Leu
370 375 380
Asp Pro Al a cys Gly Ser Gly Asn Phe Leu Tyr Val Al a Leu Hi s Ala
385 390 395 400
Leu Lys Asp ile Glu Arg Arg Ala Leu Val Asp Ala Glu Arg Leu Gly
405 410 415
Leu Glu val Pro Thr Pro Arg Val Gly Leu Al a cys val Arg Gly Ile
420 425 430
Glu Ile Glu Glu Tyr Ala Ala Glu Leu Ala Arg val Thr Leu Trp Ile
435 440 445
Gly Asp Leu Gin Trp His Ala Lys Asn Asn Tyr Arg Gly Phe Ala Glu
450 455 460
Pro Ile Leu Ser Ser Leu Asp Gin Ile Glu Cys Arg Asp Ala Leu Leu
465 470 475 480
Asn Ala Asp Gly Thr Glu Ala Gin Trp Pro Ala val Asp val ile Val
485 490 495
Gly Asn Pro Pro Phe Leu Gly Ser Lys Arg Leu Arg Asp Gly Leu Gly
500 505 510
Asn Asp Tyr val Glu Arg Leu Phe ser Thr Tyr Arg Gly Lys val Pro
515 520 525
Ala Glu Al a Asp Phe val Al a Tyr Trp Ile Ala Lys Ala Trp Glu Leu
530 535 540
val Gin Ala Gin Gin Gly Arg Arg Al a Gly Leu val Thr Thr Asn ser
545 550 555 560
Val Arg Gly Gly Al a Ser Arg Lys Val Leu ASP Pro Ile Ala Asp Ala
565 570 575
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Gly Ala Leu Met 580 Glu Ala Trp Ala Asp 585 Glu Pro Trp Ala Leu 590 Glu Gly
Al a Al a val Arg val Ser Met Phe Gly Phe Gly Asp Gly Phe Ala Glu
595 600 605
Arg Arg Leu Glu Gly Arg Lys Al a Glu His Leu His Ser Asp Phe Arg
610 615 620
Gly Ala Ser Thr Asp val Thr Lys Ala Leu Arg Leu Lys Glu Asn Ala
625 630 635 640
Ser Ile Al a Phe Met Gly Asp Thr Lys Gly Gly Ala Phe Asp val ser
645 650 655
Gly Glu Ile Ala Arg Glu Trp Leu Arg Leu Pro Leu Asn Pro Asn Gly
660 665 670
Arg Pro Asn Ser Asp Val Leu Lys Pro Trp Arg Asn Ala Met Asp Met
675 680 685
Thr Arg Arg ser ser Asp Lys Trp Ile Ile Asp Phe Gly Trp Thr Met
690 695 700
Ser Glu Al a Asp Al a Ala Leu phe Glu Thr pro Phe Arg His val Leu
705 710 715 720
Leu His val Lys Pro Glu Arg Asp Arg Asn Asn Arg Glu Met Tyr Arg
725 730 735
Leu Asn Trp T rp Lys Hi s val Glu Pro Arg Gin Gly Leu Met Lys Arg
740 745 750
val pro Ala Leu Ser Arg Leu Leu Val Thr Pro Glu val Ser Lys Hi s
755 760 765
Arg Leu Phe ile Trp Leu Asp Ala Arg Val Leu Pro Asp Hi s Lys Leu
770 775 780
Gin val Val Thr Leu Asp Asp Asp cys Ser Phe Gly val Leu His Ser
785 790 795 800
Arg Phe Hi s Glu Val Trp Ala Leu Ala Ala Gly Ser Trp His Gly Ser
805 810 815
Gly Asn Asp Pro Arg Tyr Thr ile Ser Thr Thr Phe Glu Thr Phe Pro
820 825 830
Phe Pro Glu Gly Leu Thr Pro Asn Ile Al a Ala Val Asp Tyr Glu Gly
835 840 845
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp Pro Arg Ala Gln Al a Ile Ala Ala Ala Ala Ala Glu Leu Asn Arg
850 855 860
Leu Arg Glu Al a Trp Leu Asn Pro Pro Asp Leu Val Arg Ile Glu Pro
865 870 875 880
Glu val val Pro Gly Tyr Pro Asp Arg val Leu Pro Val Ser Pro Glu
885 890 895
Ala Gly Ala Glu Leu Lys Lys Arg Thr Leu Thr Asn Leu Tyr Asn Gln
900 905 910
Arg Pro Ala T rp Leu Asp Met Al a Hi s Gln Arg Leu Asp Ala Ala Val
915 920 925
Ala Ala Ala Tyr Gly Trp Pro Asp Gly Leu Thr Asp Asp Glu Ile Leu
930 935 940
Glu Arg Leu Phe Ala Leu Asn Gln Glu Arg Ala Al a Ala Gly Arg
945 950 955
<210> 13 <211> 909 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> GenBank Nr gi|15807788|ref|ΝΡ_285443.1 <400> 13
Met Hi s 1 Pro Gln Glu 5 Phe Ala Asp Thr Trp 10 Ser Arg Arg Ala Leu 15 Lys
Ala Thr Glu Arg Asp Ser Tyr Val Gln Hi s Trp Leu Asp Leu Cys Gln
20 25 30
Leu Leu His Hi s Glu Al a Pro Gly Ala Asp Pro Asp Tyr Lys Phe Glu
35 40 45
Arg Arg val Thr Lys Val Gly Thr Lys Asp Lys Gly Phe Ala Asp val
50 55 60
Phe Lys Lys Ala Hi s Phe Ile Thr Glu Tyr Lys Arg Pro Gly Ser Asp
65 70 75 80
Leu Gly Ala Al a Leu Gln Gln Al a Thr Leu Tyr Ser Arg Asp Leu Gly
85 90 95
Asn Pro Pro Leu Leu Leu Thr Ser Asp Phe Gln Arg ile Glu Ile Asn
100 105 110
Thr Ala Phe Thr Gly Thr Ser Pro Lys Ser Tyr Leu ile Thr Leu Asp
115 120 125
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Asp ile Ala Glu Asn Arg Val 135 val Gly Gly Asn Asp 140 val Pro Ala Leu
130
Gin ile Leu His ser Ala Leu Hi s Gin Pro Tyr Asp Leu Asp Pro Arg
145 150 155 160
Leu Phe Arg Glu Arg Ile Thr Thr Asp Ala Thr Arg Gl n Val Gly Leu
165 170 175
Val Ala Arg Arg Leu Gly Glu Arg Glu Gly Arg Thr Arg Al a Ala His
180 185 190
Met Met Met Arg Val Val Phe Al a Leu Phe Ala Glu Asp Thr Gly Met
195 200 205
Leu Glu Arg Gly Ile Val Thr Arg Leu Leu Glu Arg Al a Arg Al a Pro
210 215 220
Pro Gly Glu Asp Gin Leu Tyr Phe Gin Asp Leu Phe Gly Ala Met Lys
225 230 235 240
Gly Gly Gly Glu Phe Trp Gly Thr Asp Ile Arg Hi s Phe Asn Gly Gly
245 250 255
Leu Phe Asp Ser Glu Asp Al a Leu Al a Leu Thr Ser Glu Asp Ala Al a
260 265 270
Ala Leu Ile Ile Al a Ala Lys Leu Asp Trp Ser Glu val Glu Pro Ser
275 280 285
Ile Phe Gly Thr Leu Phe Glu Asn Ser Leu Asp val Asp Thr Arg ser
290 295 300
Arg Arg Gly Ala His Tyr Thr Ser val Asn Asp Ile Glu Arg Ile val
305 310 315 320
Asp Arg val val Met Glu pro Leu Trp Ala Glu Trp Asp Ala Leu Arg
325 330 335
Leu ser Leu pro Glu Leu Lys Lys Asn val Arg Leu Glu Arg Leu Phe
340 345 350
Ala phe Gin Asp Arg Leu Thr Al a Val Arg Ile Leu Asp Pro Al a cys
355 360 365
Gly ser Gly Asn Phe Leu Phe Val Al a Leu Lys Lys Leu Leu Asp Leu
370 375 380
Glu Tyr Gin val Arg Met Al a Ala Val Met Asn Asp Ile Gly Glu Phe
385 390 395 400
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Glu Met Pro Pro Leu val 405 Hi s pro Gin Gin 410 Met Leu Gly ile Glu 415 ile
Glu Thr Phe Al a His Glu Leu Al a Ser Ile Thr Leu Trp Met Gly Tyr
420 425 430
Phe Gin Trp Lys Arg Ala His Gly Gly His Trp Glu Thr pro Ile Leu
435 440 445
Gin Arg Leu Asp Asn Ile Gin Asn Arg Asp Ala Leu Leu Asn Pro Asp
450 455 460
Gly Thr Glu Ala Thr Trp Pro Arg Ala Asp Phe ile val Gly Asn pro
465 470 475 480
Pro Phe Leu Gly Asp Lys Met Met Arg ser Gin Leu Gly Glu Ala Tyr
485 490 495
Thr Thr Gin Leu Arg Glu Thr phe Lys Asp Arg Leu Pro Gly Gin Ser
500 505 510
Asp Leu val Cys Tyr Trp Pro Glu Lys Ala Arg Ala Leu Ile Glu Ala
515 520 525
Gly Val Thr Thr Arg Al a Gly Phe val Thr Thr Asn Ser Ile Arg Gly
530 535 540
Gly Lys Asn Arg val val Leu Glu Arg ile Lys Al a Thr Gly Asp Leu
545 550 555 560
Phe Met Ala Trp Pro Asp Glu Pro Trp Gin Gin Asn Gly Ala Ala Val
565 570 575
Arg val ser Leu Phe Gly Phe ASP Asn Gly Thr Glu Thr Leu Arg Thr
580 585 590
Leu Asn Asp Gly His val Gly val Ile Asn Ala Asp Leu Asn Ala Gly
595 600 605
Thr Asp val Lys Gin Ala Gin Lys Leu pro Glu Asn Ala Gly val Ser
610 615 620
Phe Ile Gly Thr Gin Lys Gly Gly Al a Phe Asp Ile Pro Gly Asp Leu
625 630 635 640
Ala Arg ser Trp Leu Ser Val Pro Asn Pro Asp Arg Val Ser Asn Ala
645 650 655
Asp val Leu Lys Pro Trp val Asn Gly Met Asp Leu Thr Arg Arg Pro
660 665 670
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Ser Gly Arg 675 Trp ile ile Asp Phe 680 Ala Gin Met Asp Glu 685 Gly Glu Al a
Arg Gin Tyr Leu Gin Pro Met Ala Tyr Val Glu Gin Lys Ile Arg Pro
690 695 700
Glu Arg Ala Thr Asn Ser Asp Arg Pro ser Arg Glu Arg Trp Trp Leu
705 710 715 720
His Gl n Arg Ser Arg Pro Glu Leu Arg Glu Ala Thr Ile Glu Leu Asp
725 730 735
Arg Phe Ile Gly Ile Pro Arg Val Ala Lys His Leu Leu Pro val Trp
740 745 750
Leu Pro Glu Gly Thr Leu pro Asp Ser Gin val val val Ile Ala Arg
755 760 765
Asp Asp Asp Phe Ile Phe Gly Val Leu Ala Ser Thr Ile His Arg Ser
770 775 780
Trp Ala Arg Met Gin Gly Thr Tyr Met Gly Val Gly Asn Asp Leu Arg
785 790 795 800
Tyr Thr Pro Ser Thr cys Phe Glu Thr Phe Pro Val Pro Ala Pro Thr
805 810 815
Asp Glu Gin Arg Ala Glu Ile Glu Lys Trp Ala Lys Tyr ile val Gin
820 825 830
Leu Arg Glu Hi s Leu Leu Asn Gin Asp Ala Lys Gly Thr Leu Thr Gly
835 840 845
Ile Tyr Asn Gin Leu Glu Lys Leu Arg Asn Ser Pro Asp Al a Al a Hi s
850 855 860
Pro val Ser Al a Leu Ala Thr Al a Hi s Asp Lys Leu Asp Gin Al a Val
865 870 875 880
Ala Thr Ala Tyr Gly Trp Glu τ rp Pro Leu Asn Glu Asp Gin val Leu
885 890 895
Glu Arg Leu Leu Al a Leu Asn Leu Glu Arg cys Pro Ala
900 905
<210> 14
<211> 955
<212> PRT
<213> ni eznane
<220>
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25 <223> GenBank Nr gi|15807258|ref|NP_295988.1 <220>
<221> cecha inna <222> (920)..(920) <223> Xaa może byc naturalnie występującym aminokwasem <400> 14
Met 1 Pro Gin Thr Glu 5 Thr Ala Gin Arg Met Glu 10 Asp Phe Val Ala 15 Tyr
Trp Arg Thr Leu Lys Gly ASp Glu Lys Gly Glu Ser Gin val Phe Leu
20 25 30
Asp Arg Leu Phe Gin Ala Phe Gly Hi s Ala Gly Tyr Lys Glu Ala Gly
35 40 45
Ala Glu Leu Glu Tyr Arg val Ala Lys Gin Gly Gly Gly Lys Lys Phe
50 55 60
Al a Asp Leu Leu Trp Arg pro Arg val Leu ile Glu Met Lys Lys Arg
65 70 75 80
Gly Glu Lys Leu Ala Asn Hi s Tyr Gin Gin Ala Phe Asp Tyr Trp Leu
85 90 95
Lys Leu val Pro ASP Arg Pro Arg Tyr Ala val Leu cys Asn Phe Asp
100 105 110
Glu Leu Trp val Tyr Asp Phe Asn Gin Gin Leu Asp Glu Pro Met Asp
115 120 125
Arg Leu Arg ile Glu Glu Leu Pro Glu Arg Tyr Thr Val Leu Asn Phe
130 135 140
Met phe Glu Gin Glu Arg Al a Pro Leu Phe Gly Asn Asn Arg Val Asp
145 150 155 160
val Thr Arg Glu Ala Al a Asp Ser Val Ala Lys val Leu Asn Ser val
165 170 175
Ile Ala Arg Gly Glu Asp Arg Ala Arg Ala Gin Arg Phe Leu Leu Gin
180 185 190
Cys val Met Ala Met Phe Ala Glu Asp Phe Glu Leu ile Pro Arg Gly
195 200 205
Phe Phe Thr Glu Leu Ala Asp Asp Ala Arg Al a Gly Arg Gly ser Ser
210 215 220
Phe Asp Leu Phe Gly Gly Leu Phe Arg Gin Met Asn Thr Ser Glu Arg
225 230 235 240
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Ala Arg Gly Gly Arg Phe Al a Pro Ile Pro Tyr Phe Asn Gly Gly Leu
245 250 255
Phe Arg Ala val Asp Pro Ile Glu Leu Asn Arg Asp Glu Leu Tyr Leu
260 265 270
Leu Hi s Lys Al a Ala Leu Glu Asn Asn Trp Ala Arg Ile Gin Pro Gin
275 280 285
ile Phe Gly val Leu Phe Gin Ser Ser Met Asp Lys Lys Glu Gin His
290 295 300
Al a Lys Gly Ala Hi s Tyr Thr Ser Glu Ala Asp Ile Met Arg val val
305 310 315 320
Leu Pro Thr Ile val Thr Pro Phe Gin Arg Gin Ile Glu Al a Ala Thr
325 330 335
Thr Gin Lys Glu Leu Arg Ala Ile Leu Asp Glu Leu Ala ser Phe Gin
340 345 350
val Leu Asp Pro Ala Cys Gly Ser Gly Asn Phe Leu Tyr val Al a Tyr
355 360 365
Arg Glu Leu Arg Arg Leu Glu Ala Arg Ala Leu Leu Arg Leu Arg Asp
370 375 380
Leu Ser Ala Pro Gly Thr Ala Leu Pro Pro Ala Arg Val Ser Ile Arg
385 390 395 400
Gin Met Hi s Gly Leu Glu Tyr Asp Pro Phe Gly Val Glu Leu Ala Lys
405 410 415
val Thr Leu Thr Leu Al a Lys Glu Leu Ala Ile Arg Glu Met His Asp
420 425 430
Leu Leu Gly Asn Thr Gly Leu Asp Phe Asp Gin Pro Leu Pro Leu Asp
435 440 445
Asn Leu Asp Asp Arg Ile val Gin Gly Asp Ala Leu Phe Thr Pro Trp
450 455 460
Pro Arg Val Asp Ala Ile Val Gly Asn Pro Pro Phe Gin Ser Lys Asn
465 470 475 480
Lys Leu Gin Arg Glu Met Gly Ala Ala Tyr val Lys Lys Leu Arg Ala
485 490 495
Hi s Tyr Pro Asp val Pro Gly Arg Ala Asp Tyr cys val Tyr Trp Ile
500 505 510
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Arg Lys Ala 515 His Asp Gln Leu Gly Ser Gly 520 Gln Arg Ala 525 Gly Leu Val
Gly Thr Asn Thr ile Arg Gln Asn Asp ser Arg val Gly Gly Leu Asp
530 535 540
Tyr val val Gln Hi s Gly Gly Thr ile Thr Asp Ala val Gly Thr Gln
545 550 555 560
val Trp Ser Gly Asp Ala Al a val His val Ser ile Val Asn Trp val
565 570 575
Lys Gly Pro Al a Glu Gly pro Lys Hi s Leu Al a Trp Gln val Gly Asp
580 585 590
Hi s Arg Thr Ser Pro Trp Gln ser Thr Glu Leu Pro val ile Asn Ser
595 600 605
Ala Leu ser Al a Gly Thr Asp val Thr Gln Ala Gln Lys Leu Arg val
610 615 620
Asn Met Asn Ser Gly Al a cys Tyr Gln Gly Gln Thr His Gly Hi s Lys
625 630 635 640
Gly Phe Leu Leu Asp Gly Leu Glu Ala Gly Gln Met Leu Ser Al a Glu
645 650 655
Arg Lys Asn Ala Glu Val Ile phe Pro Tyr Leu Thr Gly Asp Glu Leu
660 665 670
Leu Arg Thr Ser Pro Pro His Pro Thr Arg Tyr Val Ile Asp phe Gln
675 680 685
Pro Arg Asp Val phe Gly Al a Arg Ala Tyr Lys Leu Pro Phe Al a Arg
690 695 700
Ile Glu Arg Glu val Leu Pro Thr Arg Gln Ala Ala Ala Ala Glu Glu
705 710 715 720
Glu Al a Arg Asn Ala Glu Val Leu Ala Al a Asn Pro Lys Ala Lys Thr
725 730 735
Asn Lys Hi s Hi s Arg Asn Phe Leu Asn Gln Trp Trp Ala Leu Ser Tyr
740 745 750
Gly Arg Ser Glu Met Ile Glu Lys Ile Ser Ser Leu Ser Arg Tyr Ile
755 760 765
Val cys Ser Arg Val Thr Lys Arg Gln Val Phe Glu Phe Leu Asp Asn
770 775 780
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Gly ile Arg Pro 785 ser Asp Gly Leu Gin 790 Ile Phe Ala 795 Phe Glu Asp Asp 800
Tyr Ser Phe Gly Val Ile Gin Ser Ser val Hi s Trp Gin Trp Leu Ile
805 810 815
Ala Arg Gly Gly Thr Leu Thr Ala Arg Leu Met Tyr Thr Ser ASP Thr
820 825 830
val phe Asp Thr Phe Pro Trp Pro Asp Pro Thr Leu Ala Gin Val Arg
835 840 845
Ala Val Ala Ala Ala Al a Val Lys Leu Arg Glu Leu Arg Asn Lys val
850 855 860
Met Arg Glu Gin Gly Trp Ser Leu Arg Asp Leu Tyr Arg Thr Leu Asp
865 870 875 880
Met Pro Gly Lys Asn Pro Leu Arg Asp Ala Gin Glu Arg Leu Asp Al a
885 890 895
Ala val Ser Ala Al a Tyr Gly Leu Pro Ala Gly Ala Asp Met Leu Asp
900 905 910
Phe Leu Leu Ala Leu Asn Ala xaa val Ala Al a Ala Glu Ala Arg Gly
915 920 925
Al a Ala val Thr Gly Pro Gly Leu pro Ala Gly Leu Asn Thr Al a Asp
930 935 940
Phe val Thr Ala Asp Al a val Arg pro Leu Gly
945 950 955
<210> 15 <211> 14 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> pierwszych 14 reszt końca aminowego Mmei <400> 15
Ala Leu Ser Trp Asn Glu ile Arg Arg Lys Ala ile Glu Phe 1 5 10 <210> 16 <211> 29 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> pierwszych 29 reszt peptydu 25kD
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
<220> <221> <222> <223> cecha inna ¢20)..(20) X = Xaa (każdy ami nokwas)
<220> <221> <222> <223> cecha inna (21)..(21) X = xaa (każdy ami nokwas)
<220> <221> <222> <223> cecha inna ¢23)..(23) x = xaa (każdy ami nokwas)
<22O> <221> <222> <223> cecha inna ¢25)..(25) x = xaa (każdy ami nokwas)
<400> 16
Met Lys ile ser Asp Glu Phe Gly Asn Tyr Phe Ala Arg Ile Pro Leu 15 10 15
Lys ser Thr xaa xaa ile xaa Glu xaa Asn Ala Leu Gin 20 25
<210> 17
<211> 40
<212> PRT
<213> ni eznane
<220>
<223> pierwszych 40 i reszt aminokwasowych uzyskanych z fragmentu 14 kD
<220>
<221> cecha inna
<222> (36)..(36)
<223> X=Xaa (każdy ami nokwas)
<400> 17
Met Asp Ala Lys Lys Arg Arg Asn Leu Gly Ala His Tyr Thr Ser Glu
10 15
Ala Asn ile Leu Lys Leu ile Lys Pro Leu Leu Leu Asp Glu Leu Trp 20 25 30
Val Val Phe Xaa Lys Val Lys Asn 35 40 <210> 18 <211> 25 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> pierwszych 25 reszt peptydu 7,5 kD <400> 18
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
Met Lys Ser Arg Gly Lys Asp Leu Asp Lys Ala Tyr Asp Gin Ala Leu 15 10 15
Asp Tyr Phe Ser Gly Ile Ala Glu Arg 20 25 <210> 19 <211> 8 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> starter fragmentu 25 kD <400> 19
Asp Glu Phe Gly Asn Tyr Phe Ala
1 5 '
<210> 20
<211> 20
<212> DNA
<213> nieznane
<220>
<223> starter lewy
<220>
<221> cecha inna
<222> ¢3)..(3)
<223> R = A lub G
<220>
<221> cecha inna
<222> ¢6)..(6)
<223> γ = τ lub c
<220>
<221> cecha inna
<222> ¢9)..(9)
<223> n to a, c, g,
<220>
<221> cecha inna
<222> ¢12)..(12)
<223> γ = τ lub c
<220>
<221> cecha inna
<222> (15)..(15)
<223> Y = T lub C
<220>
<221> cecha inna
<222> (18) . . (18)
<223> γ = τ lub c
<400> 20
garttyggna aytayttygc
<210> 21
<211> 20
PL 208 400 B1
NEB-207-PIN.ST25 <212> DNA <213> nieznane <220>
<223> starter prawy <220>
<221> cecha inna <222> (3)..(3) <223> R = A lub G <220>
<221> cecha inna <222> (6)..(6) <223> R = A lub G <22Ο>
<221> cecha inna <222> (9)..(9) <223> η to a, c, g, lub t <220>
<221> cecha i nna
<222> (12).. (12)
<223> R = A lub G
<220>
<221> cecha i nna
<222> (15).. .(15)
<223> Y = T lub C
<220>
<221> cecha i nna
<222> (18) . . .(18)
<223> R = A 1 ub G
<400> 21
aartarttnc craaytcrtc 20 <210> 22 <211> 6 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> starter fragmentu 14 kD <400> 22
Met Asp Ala Lys Lys Arg
1 5
<210> <211> <212> <213> 23 17 DNA ni eznany
<220> <223> starter lewy
<220> <221> <222> <223> cecha inna (6)..(6) Y = T lub C
PL 208 400 B1
<220>
<221> cecha inna
<222> (9)..(9)
<223> η to a, c, g,
<220>
<221> cecha inna
<222> (12)..(12)
<223> R = A lub G
<220>
<221> cecha inna
<222> ¢15)..(15)
<223> R = A lub G
<400> 23
atggaygcna araarcg
<210> 24
<211> 17
<212> DNA
<213> nieznany
<220>
<223> starter prawy
<220>
<221> cecha inna
<222> (6).. (6)
<223> γ = τ lub c
<220>
<221> cecha inna
<222> (9) · (9)
<223> n to a, c, g,
<220>
<221> cecha inna
<222> ¢12)..(12)
<223> R = A lub G
<220>
<221> cecha inna
<222> (15)..(15)
<223> R = A lub G
<400> 24
atggaygcna araarag
<210> 25
<211> 20
<212> DNA
<213> ni eznany
<220>
<223> starter prawy
<220>
<221> cecha inna
<222> (3)..(3)
<223> n to a, c, g,
<220>
<221> cecha inna
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25 <222> (6)..(6) <223> Υ = Τ lub C <220>
<221> cecha inna <222> (9)..(9) <223> Υ = Τ lub C <220>
<221> cecha inna <222> (12)..(12) <223> η to a, c, g, or t <220>
<221> cecha inna <222> (15)..(15) <223> R = A lub G <400> 25 cgncgyttyt tngcrtccat 20 <210> 26 <211> 7 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> starter fragmentu 7.5 kD <400> 26
Asp Lys Ala Tyr Asp Gin Ala
1 5
<210> 27
<211> 20
<212> DNA
<213> ni eznany
<220>
<223> starter lewy
<220>
<221> cecha inna
<222> (3)..(3)
<223> Y = T lub C
<220>
<221> cecha inna
<222> (6)..(6)
<223> R = A lub G
<220>
<221> cecha inna
<222> (9)..(9)
<223> n to a, c, g
<220>
<221> cecha inna
<222> (11) dl)
<223> Y = T lub C
<220>
<221> cecha inna
<222> (14) .. (14)
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25 <223> Υ = Τ lub C <220>
<221> cecha inna <222> (17)..(17) <223> R = A lub G <400> 27 gayaargcnt aygaycargc 20 <210> 28 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter prawy <220>
<221> cecha inna <222> (3)..(3) <223> Υ = Τ lub C <220>
<221> cecha inna <222> (6)..(6) <223> R = A lub G <220>
<221> cecha inna <222> (9)..(9)
<223> R = A lub G
<22Ο>
<221> cecha i nna
<222> (12) . . (12)
<223> η to a L, C, i
<220>
<221> cecha inna
<222> (15).. (15)
<223> Υ = Τ lub C
<220>
<221> cecha i nna
<222> (18).. (18)
<223> R = A lub G
<400> 28
gcytgrtcrt angcyttrtc 20 <210> 29 <211> 26 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter ΙΡ 1 <400> 29 gttggatccc gcacagattg ctcagg 26 <210> 30 <211> 30
PL 208 400 B1
<212> DNA
<213> nieznany
<220>
<223> starter ip 2
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25 <400> 30 gttggatcct acgttaatct gaataagatg 30 <210> 31 <211> 28 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 3 <400> 31 gttggatcct gttaatctga aacgctgg 28 <210> 32 <211> 29 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 4 <400> 32 gttggatcct tataccaaaa tgtgaggtc 29 <210> 33 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 5 <400> 33 ttcagaaata cgagcgatgc 20 <210> 34 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 6 <400> 34 gtcaagccat aaacaccatc 20 <210> 35 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 7
<400> 35 gagggtcaga aaggaagctg 20
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25
<210> 36
<211> 20
<212> DNA
<213> nieznany
<220>
<223> starter IP 8
<400> 36 gtccaactaa ccctttatgg 20 <210> 37 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 9 <400> 37 ttcctagtgc tgaacctttg 20 <210> 38 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 10 <400> 38 gttgcgttac ttgaaatgac 20 <210> 39 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter IP 11 <400> 39 ccaaaatgga acttgtttcg 20
<210> 40
<211> 20
<212> DNA
<213> ni eznany
<22O>
<223> starter IP 12
<400> 40
gtgagtgcgc cctgaattag
<210> 41
<211> 21
<212> DNA
<213> nieznany
<220>
PL 208 400 B1 <223> starter sl
NEB-207-PIN.ST25 <400> 41 gcttcatttc atcctctgtg c <210> 42 <211> 21 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter S2 <400> 42 taaccgccaa aattaatcgt g 21 <210> 43 <211> 20 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> starter S3 <400>
<400> 43 ccactattca ttacaacacc <210> 44 <211> 43 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> 20 nukleotydów, które pasują do sekwencji dna m. methyltrophus <400> 44 gttctgcagt taaggataac atatggcttt aagctggaac gag 43 <210> 45 <211> 37 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> 22 nukleotydów, które pasują do sekwencji DNA M. methylotrophus <400> 45 gttggatccg tcgacattaa ttaatttttg cccttag <210> 46 <211> 48 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> oligonukleotyd 1 <400> 46 gtttgaagac tccgacgcga tggccagcga tcggcgcctc agcttttg 48 <210> 47 <211> 48
PL 208 400 B1
ΝΕΒ-207-ΡΙΝ.ST25 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> oligonukleotyd 2 <400> 47 caaaagctga ggcgccgatc gctggccatc gcgtcggagt cttcaaac 48 <210> 48 <211> 48 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> oligonukleotyd 3 <220>
<221> cecha inna <222> (15)..(15) <223> A = 6-metyloadenina <400> 48 gtttgaagac tccgacgcga tggccagcga tcggcgcctc agcttttg 48 <210> 49 <211> 48 <212> DNA <213> nieznany <220>
<223> oligonukleotyd 4 <220>
<221> cecha inna <222> (38)..(38) <223> A = 6-metyloadenina <400> 49 caaaagctga ggcgccgatc gctggccatc gcgtcggagt cttcaaac 48 <210> 50 <211> 8 <212> PRT <213> nieznane <220>
<223> fragment pojedycznego wewnętrznego trawienia CnBr <400> 50
Gly Arg Gly Arg Gly val Gly val

Claims (4)

1. Wyizolowany segment DNA kodujący Mmel, restrykcyjna endonukleaza-metylaza, znamienny tym, że wyizolowany DNA uzyskuje się z plazmidu pTBMmel o numerze dostępowym ATCC PTA-4521.
2. Rekombinowany wektor, do którego wprowadzono segment DNA kodujący Mmel, endonukleaza-metylaza, jak zdefiniowano w zastrz. 1.
3. Komórka gospodarza transformowana wektorem, jak zdefiniowano w zastrz. 2.
4. Sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej Mmel oraz metylazy Mmel, znamienny tym, że prowadzi się hodowlę komórki gospodarza transformowanej wektorem zdefiniowanym w zastrz. 2 w warunkach odpowiednich do ekspresji wspomnianej endonukleazy i metylazy.
PL374263A 2002-07-12 2003-07-10 Wyizolowany segment DNA kodujący MmeI restrykcyjna endonukleaza-metylaza, rekombinowany wektor, komórka gospodarza transformowana wektorem i sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej MmeI oraz metylazy MmeI PL208400B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US39543102P 2002-07-12 2002-07-12

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL374263A1 PL374263A1 (pl) 2005-10-03
PL208400B1 true PL208400B1 (pl) 2011-04-29

Family

ID=30115870

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL374263A PL208400B1 (pl) 2002-07-12 2003-07-10 Wyizolowany segment DNA kodujący MmeI restrykcyjna endonukleaza-metylaza, rekombinowany wektor, komórka gospodarza transformowana wektorem i sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej MmeI oraz metylazy MmeI

Country Status (7)

Country Link
US (1) US7115407B2 (pl)
EP (2) EP2228442A1 (pl)
CN (2) CN100591765C (pl)
AU (1) AU2003253865A1 (pl)
DE (1) DE60332739D1 (pl)
PL (1) PL208400B1 (pl)
WO (1) WO2004007670A2 (pl)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7186538B2 (en) 2003-07-10 2007-03-06 New England Biolabs, Inc. Type II restriction endonuclease, CstMI, obtainable from Corynebacterium striatum M82B and a process for producing the same
US7932029B1 (en) * 2006-01-04 2011-04-26 Si Lok Methods for nucleic acid mapping and identification of fine-structural-variations in nucleic acids and utilities
WO2008083065A2 (en) * 2006-12-27 2008-07-10 New England Biolabs, Inc. A recombinant type ii restriction endonuclease, nmeaiii, and a process for producing the same
US8620589B2 (en) * 2007-06-20 2013-12-31 New England Biolabs, Inc. Synthetic binding proteins
EP2158556A2 (en) 2007-06-20 2010-03-03 New England Biolabs, Inc. Rational design of binding proteins that recognize desired specific squences
US8372619B2 (en) * 2007-07-12 2013-02-12 New England Biolabs, Inc. High fidelity restriction endonucleases
US8741570B2 (en) * 2008-02-06 2014-06-03 Ludwig-Maximilians-Universitat Munchen Thermo-optical characterisation of nucleic acid molecules
CN102264900A (zh) 2008-12-23 2011-11-30 新英格兰生物实验室公司 用于切割修饰的dna的组合物、方法和相关用途
DE102018107585B3 (de) * 2018-03-29 2019-03-28 Universität Rostock Vorrichtung zur Herstellung von 3D-gedruckten Wirkstofffreisetzungssystemen mit Wirkstoffdepots, sowie Verfahren zur Herstellung von 3D-gedruckten Wirkstofffreisetzungssystemen

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0066994A3 (en) * 1981-06-04 1984-02-01 Imperial Chemical Industries Plc Production and use of genetically-modified microorganisms
US5200333A (en) * 1985-03-01 1993-04-06 New England Biolabs, Inc. Cloning restriction and modification genes
US6383770B1 (en) 1997-09-02 2002-05-07 New England Biolabs, Inc. Method for screening restriction endonucleases
US6413758B1 (en) * 2000-10-20 2002-07-02 New England Biolabs, Inc. Method for cloning and expression of Bpml restriction endonuclease in E. coli
US7186538B2 (en) 2003-07-10 2007-03-06 New England Biolabs, Inc. Type II restriction endonuclease, CstMI, obtainable from Corynebacterium striatum M82B and a process for producing the same

Also Published As

Publication number Publication date
EP1539945A2 (en) 2005-06-15
EP1539945A4 (en) 2006-01-04
EP1539945B1 (en) 2010-05-26
EP2228442A1 (en) 2010-09-15
US7115407B2 (en) 2006-10-03
US20040091911A1 (en) 2004-05-13
WO2004007670A2 (en) 2004-01-22
DE60332739D1 (de) 2010-07-08
WO2004007670A3 (en) 2004-03-25
CN1668740A (zh) 2005-09-14
AU2003253865A8 (en) 2004-02-02
PL374263A1 (pl) 2005-10-03
AU2003253865A1 (en) 2004-02-02
CN101693898A (zh) 2010-04-14
CN100591765C (zh) 2010-02-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0869174B1 (en) Method for cloning and producing the SpeI restriction endonuclease
PL208400B1 (pl) Wyizolowany segment DNA kodujący MmeI restrykcyjna endonukleaza-metylaza, rekombinowany wektor, komórka gospodarza transformowana wektorem i sposób wytwarzania rekombinowanej endonukleazy restrykcyjnej MmeI oraz metylazy MmeI
US5371006A (en) Isolated DNA encoding the NotI restriction endonuclease and related methods for producing the same
EP0871715A1 (en) A METHOD FOR DIRECT CLONING OF NUCLEASE GENES IN $i(E. COLI)
JP5210530B2 (ja) RrhJ1I制限・修飾酵素およびその遺伝子
EP0931835B1 (en) Method for cloning and producing the PmeI restriction endonuclease
US7186538B2 (en) Type II restriction endonuclease, CstMI, obtainable from Corynebacterium striatum M82B and a process for producing the same
US6238904B1 (en) Type II restriction endonuclease, HpyCH4III, obtainable from Helicobacter pylori CH4 and a process for producing the same
JPH0698779A (ja) NaeI制限エンドヌクレアーゼ及びメチラーゼをクローン化し産生する方法
JPH06205683A (ja) SphI制限エンドヌクレアーゼをコードする単離DNA及び該制限エンドヌクレアーゼを製造するための方法
JPH1057082A (ja) 大腸菌中で制限エンドヌクレアーゼSapIをクローニング及び産生する方法
US6893854B2 (en) Nuclease
US5516678A (en) Method for producing the SSPI restriction endonuclease and methylase
WO2001021776A1 (en) A NOVEL TYPE II RESTRICTION ENDONUCLEASE, HpyCH4V, OBTAINABLE FROM HELICOBACTER PYLORI CH4 AND A PROCESS FOR PRODUCING THE SAME
US5849558A (en) Discovery of and method for cloning and producing the PspGI restriction endonuclease
US6238901B1 (en) Type II restriction endonuclease, HPY 188 III, obtainable from Helicobacter pylori J188 and a process for producing the same
US5366882A (en) Method for producing the BGLI restriction endonuclease and methylase
US5731185A (en) Isolated DNA encoding the hphi restriction endonuclease and related methods for producing the same
EP1298212B1 (en) Method for cloning and expression of BsmBI restriction endonuclease and BsmBI methylase in E. coli and purification of BsmBI endonuclease
US5824529A (en) Method for cloning and producing the PshAI restriction endonuclease
JP5626263B2 (ja) RrhJ1I修飾酵素およびその遺伝子
WO2001018186A1 (en) A NOVEL TYPE II RESTRICTION ENDONUCLEASE, Hpy188I, OBTAINABLE FROM HELICOBACTER PYLORI J188 AND A PROCESS FOR PRODUCING THE SAME
WO2001021638A1 (en) A type ii restriction endonuclease from helicobacter pylori ch4

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130710