NO171222B - Fremgangsmaate ved fremstilling av huderstatning - Google Patents
Fremgangsmaate ved fremstilling av huderstatning Download PDFInfo
- Publication number
- NO171222B NO171222B NO881349A NO881349A NO171222B NO 171222 B NO171222 B NO 171222B NO 881349 A NO881349 A NO 881349A NO 881349 A NO881349 A NO 881349A NO 171222 B NO171222 B NO 171222B
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- substrate
- equivalent
- medium
- skin
- dermis
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 31
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 7
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 claims abstract description 63
- 210000002510 keratinocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 41
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims abstract description 34
- 210000003780 hair follicle Anatomy 0.000 claims abstract description 25
- 210000004207 dermis Anatomy 0.000 claims abstract description 24
- 210000002615 epidermis Anatomy 0.000 claims abstract description 23
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 16
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims abstract description 14
- 210000000555 contractile cell Anatomy 0.000 claims abstract description 9
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 claims abstract description 8
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 43
- 239000007943 implant Substances 0.000 claims description 31
- 230000002500 effect on skin Effects 0.000 claims description 23
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 15
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 claims description 10
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 8
- 238000002513 implantation Methods 0.000 claims description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 7
- 238000012545 processing Methods 0.000 claims description 7
- 230000008602 contraction Effects 0.000 claims description 5
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 5
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 claims description 4
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 claims description 4
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 4
- 229940121375 antifungal agent Drugs 0.000 claims description 3
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 claims description 3
- 238000004264 monolayer culture Methods 0.000 claims description 3
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 claims description 2
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 claims description 2
- 239000003429 antifungal agent Substances 0.000 claims description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 claims description 2
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 claims description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 claims description 2
- 230000029142 excretion Effects 0.000 claims 1
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 abstract description 16
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 abstract description 16
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 abstract description 16
- 238000009331 sowing Methods 0.000 abstract 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 44
- 210000004209 hair Anatomy 0.000 description 15
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 14
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 12
- 238000001574 biopsy Methods 0.000 description 10
- 210000002469 basement membrane Anatomy 0.000 description 8
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 7
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 108010076876 Keratins Proteins 0.000 description 5
- 102000011782 Keratins Human genes 0.000 description 5
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 5
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 description 5
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 4
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 4
- 102000016359 Fibronectins Human genes 0.000 description 3
- 108010067306 Fibronectins Proteins 0.000 description 3
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 3
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 description 2
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 description 2
- 229920002683 Glycosaminoglycan Polymers 0.000 description 2
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 2
- 102000015636 Oligopeptides Human genes 0.000 description 2
- 108010038807 Oligopeptides Proteins 0.000 description 2
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 2
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 2
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 2
- 239000003929 acidic solution Substances 0.000 description 2
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 2
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 2
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 210000001047 desmosome Anatomy 0.000 description 2
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 2
- 239000003797 essential amino acid Substances 0.000 description 2
- 235000020776 essential amino acid Nutrition 0.000 description 2
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 2
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 2
- 210000000301 hemidesmosome Anatomy 0.000 description 2
- JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N hydrocortisone Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3[C@@H](O)C[C@](C)([C@@](CC4)(O)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 2
- 230000037311 normal skin Effects 0.000 description 2
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 210000002435 tendon Anatomy 0.000 description 2
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- GSDSWSVVBLHKDQ-UHFFFAOYSA-N 9-fluoro-3-methyl-10-(4-methylpiperazin-1-yl)-7-oxo-2,3-dihydro-7H-[1,4]oxazino[2,3,4-ij]quinoline-6-carboxylic acid Chemical compound FC1=CC(C(C(C(O)=O)=C2)=O)=C3N2C(C)COC3=C1N1CCN(C)CC1 GSDSWSVVBLHKDQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N Amphotericin-B Natural products O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1C=CC=CC=CC=CC=CC=CC=C[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N 0.000 description 1
- 102000009016 Cholera Toxin Human genes 0.000 description 1
- 108010049048 Cholera Toxin Proteins 0.000 description 1
- 208000032544 Cicatrix Diseases 0.000 description 1
- 102000004266 Collagen Type IV Human genes 0.000 description 1
- 108010042086 Collagen Type IV Proteins 0.000 description 1
- 235000015655 Crocus sativus Nutrition 0.000 description 1
- 244000124209 Crocus sativus Species 0.000 description 1
- 102400001368 Epidermal growth factor Human genes 0.000 description 1
- 101800003838 Epidermal growth factor Proteins 0.000 description 1
- 208000010201 Exanthema Diseases 0.000 description 1
- 102100028314 Filaggrin Human genes 0.000 description 1
- 101710088660 Filaggrin Proteins 0.000 description 1
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 1
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- 206010037898 Rash vesicular Diseases 0.000 description 1
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 235000009233 Stachytarpheta cayennensis Nutrition 0.000 description 1
- 108060008539 Transglutaminase Proteins 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N amphotericin B Chemical compound O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N 0.000 description 1
- 229960003942 amphotericin b Drugs 0.000 description 1
- 238000004873 anchoring Methods 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 210000000270 basal cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004413 cardiac myocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000011712 cell development Effects 0.000 description 1
- 230000032823 cell division Effects 0.000 description 1
- 210000003850 cellular structure Anatomy 0.000 description 1
- 238000005352 clarification Methods 0.000 description 1
- 239000000512 collagen gel Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 210000000736 corneocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 description 1
- 238000005336 cracking Methods 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 238000001976 enzyme digestion Methods 0.000 description 1
- 229940116977 epidermal growth factor Drugs 0.000 description 1
- 210000005081 epithelial layer Anatomy 0.000 description 1
- 201000005884 exanthem Diseases 0.000 description 1
- 229940072686 floxin Drugs 0.000 description 1
- 210000004565 granule cell Anatomy 0.000 description 1
- 229960000890 hydrocortisone Drugs 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 239000012678 infectious agent Substances 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 102000007236 involucrin Human genes 0.000 description 1
- 108010033564 involucrin Proteins 0.000 description 1
- 108010075526 keratohyalin Proteins 0.000 description 1
- 239000010985 leather Substances 0.000 description 1
- 229920002521 macromolecule Polymers 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 1
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 1
- XJCPMUIIBDVFDM-UHFFFAOYSA-M nile blue A Chemical compound [Cl-].C1=CC=C2C3=NC4=CC=C(N(CC)CC)C=C4[O+]=C3C=C(N)C2=C1 XJCPMUIIBDVFDM-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 230000001590 oxidative effect Effects 0.000 description 1
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 1
- 230000000144 pharmacologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000002826 placenta Anatomy 0.000 description 1
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 1
- 230000000750 progressive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002797 proteolythic effect Effects 0.000 description 1
- 206010037844 rash Diseases 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 235000013974 saffron Nutrition 0.000 description 1
- 239000004248 saffron Substances 0.000 description 1
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 description 1
- 230000037387 scars Effects 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 238000007390 skin biopsy Methods 0.000 description 1
- 210000000329 smooth muscle myocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000000434 stratum corneum Anatomy 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 210000002948 striated muscle cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000012549 training Methods 0.000 description 1
- 102000003601 transglutaminase Human genes 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- VBEQCZHXXJYVRD-GACYYNSASA-N uroanthelone Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H](CS)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CS)C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CS)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(O)=O)C(C)C)[C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CC=1NC=NC=1)NC(=O)[C@H](CCSC)NC(=O)[C@H](CS)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CNC(=O)CNC(=O)[C@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CS)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)CNC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H]1N(CCC1)C(=O)[C@H](CS)NC(=O)CNC(=O)[C@H]1N(CCC1)C(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@@H](N)CC(N)=O)C(C)C)[C@@H](C)CC)C1=CC=C(O)C=C1 VBEQCZHXXJYVRD-GACYYNSASA-N 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0697—Artificial constructs associating cells of different lineages, e.g. tissue equivalents
- C12N5/0698—Skin equivalents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
- A61F2/02—Prostheses implantable into the body
- A61F2/10—Hair or skin implants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
- A61F2/02—Prostheses implantable into the body
- A61F2/10—Hair or skin implants
- A61F2/105—Skin implants, e.g. artificial skin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/14—Macromolecular materials
- A61L27/22—Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
- A61L27/24—Collagen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/60—Materials for use in artificial skin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2310/00—Prostheses classified in A61F2/28 or A61F2/30 - A61F2/44 being constructed from or coated with a particular material
- A61F2310/00005—The prosthesis being constructed from a particular material
- A61F2310/00365—Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/05—Inorganic components
- C12N2500/10—Metals; Metal chelators
- C12N2500/20—Transition metals
- C12N2500/24—Iron; Fe chelators; Transferrin
- C12N2500/25—Insulin-transferrin; Insulin-transferrin-selenium
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/30—Organic components
- C12N2500/40—Nucleotides, nucleosides or bases
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/10—Growth factors
- C12N2501/11—Epidermal growth factor [EGF]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/30—Hormones
- C12N2501/38—Hormones with nuclear receptors
- C12N2501/39—Steroid hormones
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/30—Hormones
- C12N2501/38—Hormones with nuclear receptors
- C12N2501/395—Thyroid hormones
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/80—Neurotransmitters; Neurohormones
- C12N2501/81—Adrenaline
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/09—Coculture with; Conditioned medium produced by epidermal cells, skin cells, oral mucosa cells
- C12N2502/092—Coculture with; Conditioned medium produced by epidermal cells, skin cells, oral mucosa cells hair cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/09—Coculture with; Conditioned medium produced by epidermal cells, skin cells, oral mucosa cells
- C12N2502/094—Coculture with; Conditioned medium produced by epidermal cells, skin cells, oral mucosa cells keratinocytes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/13—Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
- C12N2502/1323—Adult fibroblasts
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Botany (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Prostheses (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Fats And Perfumes (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Description
Foreliggende oppfinnelse omhandler en fremgangsmåte for å erholde en erstatning for hud.
Man kjenner ved forskning å erholde cellulære strukturer in vitro som kan sammenlignes med animalsk eller human hud, spesielt for å kunne anvende slike ved podning i praksis på sår, så som ved store brannsår. Man har lenge søkt strukturer som har så store likheter som mulig med strukturen til human hud for å unngå risikoene for avstøtning av podningen. I tillegg er det mulig å anvende et slikt materiale for å studere de farmakologiske eller kosmetiske effekter på diverse produkter og en slik undersøkelse gir resultater som er mer pålitelige jo større likheter materialet har med huden.
Foreliggende oppfinnelse beskriver også en fremgangsmåte som tillater å erholde en huderstatning som har strukturelle likheter med hud, som er viktigere enn de som oppvises av materialer av den type som faktisk er kjent.
Kapasiteten til en kultur av keratinositter i et næringsmiljø er godt kjent. Mer nøyaktig gir artikkelen til F.K. Noser (publisert i "The Journal of Investigative Derma-tology", 87. 485-488, 1986) kapasiteten til keratinositt-kulturer med utbytte fra en follikkel med humant hår. I tillegg angir artikkelen til A.J.M. Vermorken (publisert i "Molec, biol. Rep." 10, 205-213, 1985), at kulturen av keratinositter erholdt fra en hårfollikkel kan lede til dannelsen av et cellulært sjikt bestående av et antall lag som oppviser en viss differensiering på en slik måte at den analoge hud er slik man finner den i en epiderm hos dyr eller mennesker. Det er foreslått at denne fremstillingen av cellulært sjikt kan foretas ved å bruke som støtte-materiale en hudekvivalent av kjent type, men ingen presisering er angitt i denne anledning. I tillegg hører immersjonskulturen som er beskrevet leder til en struktur av cellulærsjiktetsom oppviser flere vesentlige forskjeller i forhold til epiderm fra dyr eller mennesker.
Den internasjonale PCT-søknad publisert under nr. WO 86/02273 beskriver en fremgangsmåte for å erholde en huderstatning som bruker egenskapene til kulturen av keratinocytter og anvender, som kilde for keratinocytter, hudbiopsier. I følge denne fremgangsmåte erholdes, ved ekstraksjon under mildt sure betingelser for eksempel ved å skille sener i rottehale, kollagen av type I som holdes i oppløsning i svakt surt miljø. Man bruker dessuten i et kulturmiljø erholdte fibroblaster for eksempel fra humant vev. Kollagenoppløsningen nøytraliseres med en base og tilsettes næringselementer. Fibroblasti blir tilsatt.
Man har således dannelse av en gel som trekker seg sammen ved intraksjon mellom fibroblastene og kollagenmolekylene ved dyrkning i næringsmiljø, for å danne en erstatning for hud. Før gelen har trukket seg sammen setter man inn en biopsi av hud på ca 2 mm. i diameter som man plasserer på en slik måte at epidemien fra biopsien ligger an mot overflaten av gelen. Man observerer emigrering og en celledeling av keratinocytter som stammer fra biopsien fra overflaten av huderstatningen, og differensieringsfasen til keratinocyttene fører til slutt til dannelsen av diff-erensierte lag i en ekvivalent til epidermen.
En slik fremgangsmåte oppviser flere ulemper. Man kan for eksempel angi at man ikke erholder en huderstatning som er fullstendig homogen idet biopsien som består av hudpartier, ikke ligger innsatt på hudekvivalenten. En annen ulempe ligger i måten biopsien fremskaffes på, som har blitt utført av en lege og kan ha vært smertefull, kan resultere i synlige arr. I tillegg kan det ikke sees bort fra risikoen for forurensing ved innvirkning av infeksjonsemner så som virus. Til slutt er overflaten til hudekvivalenten som man forsøker å erholde, begrenset til det antall biopsier som man kan fjerne fra for eksempel et menneske.
Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen overvinner disse ulemper ved å bruke på spesiell og særpreget måte kapasiteten til keratinocyttkulturen til å utnytte en hårfollikkel. Ifølge oppfinnelsen erstattes biopsen anvendt i dokumentet WO 86/02273 med en hårfollikkel omgitt av sin skjede og innplanteres i hovedsak vinkelrett på den fri overflate av hudekvivalenten i løpet av utarbeidelsen. Man erholder således resultater som er meget overraskende for fagmannen og som består av differensiering av keratinocytter og man erholder faktisk en epidermekvivalent hvis likhet med en human epiderm er absolutt uventet. I tillegg, i likhet med keratinocyttene i dokument WO 86/02273 og som i fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen, er kilden for dannelse av en epidermekvivalent, og innsettelsen av en hårfollikkel vinkelrett til en fri overflate av hudekvivalenten under opparbeidelsen, ikke ekvivalent til en biopsi av hud anngående resultater som er erholdt og forbedret på bemerkelsesverdig måte. I tillegg oppviser strukturen til cellesjiktet, som består av den erholdte epidermekvivalent i forhold til hudstrukturen, meget viktige likheter med de til cellesjiktet som man erholder ved å dyrke forskjellig tilsvarende celler fra en hårfollikkel (artikkelen til A.J.M. Vermorken angitt ovenfor). Til slutt er forbindelsen mellom sjiktene bestående av dermekvivalent og epidermekvivalent tilfredstillende og tillater lett behandling av hudekvivalenten.
Hudekvivalenten fremstilt ifølge oppfinnelsen er således sammensatt, at den er godt differensiert og godt organisert. Den er også motstandsdyktig mot vann og i hovedsak homogen: faktisk kan man under fremgangsmåten fjerne fra hudekvivalenten, hårfollikkel (ene) og fordypningen (ene) som også er dannet i hudekvivalenten, kan fylles opp.
Differensieringen erholdt in vitro ved fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen er meget nærliggende den som observeres in vivo. Man finner spesielt filamenter i hudens granulærlag som likner normal hud og man kan observere ved elektroforese at filamentet har blitt dannet ved innsetting av profilamenter på oligopeptidnivå. I tillegg finner man en foran-kringsegenskap til basalcellene som spesielt er en følge av implantasjonen av hårfollikkel vinkelrett på overflaten av hudekvivalenten under opparbeidelsen.
Man erholder ved implantasjon av en hårfollikkel en overflate av huderstatningen som i hovedsak er lik den som erholdes ved en biopsi, men man kan fjerne et stort antall follikkler og allikevel erholde fra en og samme donnor en meget stor overflate, noe som ikke er tilfelle når det gjelder biopsier.
Huderstatningen således erholdt kan spesielt anvendes for behandling av sår ved implantasjon med denne huderstatning. I dette tilfelle kan giver og mottaker være mennesker og giver av hårfollikkler kan være den samme som mottaker av huderstatningen.
Oppfinnelsen angår således en fremgangsmåte ved fremstilling av en huderstatning hvori:
1. Man fremstiller en hudekvivalent ved å blande:
A) kontraktile celler oppsamlet fra monolagskulturer dyrket i et næringsmedium med fragmenter av animalsk
eller humant vev.
med
B) et næringsmedium (MN1) tilsatt bestanddeler av
ekstraceullulær hudmatrise
hvor nevnte blanding danner en gel som trekker seg sammen under utskillelse av næringsmediet for å danne en dermekvivalent, og
2. anvender dermekvivalenten erholdt ifølge punkt 1, som substrat for en epidermekvivalent erholdt ved tilsetning til nevnte substrat sammen med keratinocyttcelller fra animalsk eller humant vev, og ved å opprettholde betingelser som tillater vekst av keratinocyttcellene på overflaten av nevnte substrat, hvor utviklingen av denne kultur av keratinocyttceller er begunstiget ved anvendelsen av minst ett medium (MN1, MN2) til kontakt med nevnte keratinocyttceller, hvilken fremgangsmåte er særpreget ved at et substrat tilsettes minst en hårfollikkel eller en skjede av en hårfollikkel fjernet fra animalsk eller humant vev ved uttrykking, hvor nevnte follikkel eller skjede omfatter minst delvis sin cellulære vegg og blir implantert i substratet på en slik måte at deres gjennomsnittlige langsgående akse i hovedsak er vinkelrett på den frie overflate av substratet.
Man kan anvende som kontraktile celler fibroblaster, og man anvender fordelaktig som kontraktile celler dermfibroblaster erholdt i utgangspunkt fra friske humane givere som høstes ved slutten fra monolagskulturer ved trypsinering.
Man anvender fortrinnsvis som næringsmiljø for de kontraktile cellekulturer minimalt essensielt medium (MEM) ; man anvender fortrinnsvis som miljø for kulturen inneholdende bestandelene til den ekstra-cellulære dermmatrise, et miljø inneholdende minst kollagen, spesielt av type I.
Ifølge en foretrukket utførelsesform fremstilles dermekvivalenten ved hjelp av de følgende trinn: a) man erholder en svak sur oppløsning av kollagen med svakt sur ekstraksjon fra en animalsk eller human kilde, hvor dette kollagen også kan være av kommersiell opprinnelse erholdt fra bedriften "BIOETICA", b) man blander oppløsningen fra trinn A med kontraktile celler og et nærende medium (MN1), man nøytraliserer oppløsningen ved tilsettingen av en base og man sår ut blandingen på en mottakende plate; c) man lar gelen således erholdt trekke seg sammen i løpet av flere dager.
Man anvender fortrinnsvis for det nærende miljø (MN1)
følgende blanding:
8 0 - 100 volum % av minimalt essensielt medium (MEM);
0-20 volum % av føtalt kalveserum;
0-20 volum % av humant serum av gruppe AB;
0-1 vekt % av en eller fler antifungicider;
0-10 vekt % av et eller fler antibiotika;
0-2 vekt % av en eller fler energigivende for-bindelser;
0-2 vekt % av ikke-essensielle aminosyrer.
Man kan føre implantatet i substratet fra den fri overflate av substratet med en avstand som ligger mellom 0,1 og 2 mm. Fortrinnsvis erholdes innplantatet ved å skjære ut den avrevne hårfollikkel i hovedsak vinkelrett på sin gjennomsnittlige langsgående akse, i sonen eller den som den omgis av sitt cellulære materiale for å bibeholde en lengde som er mellom ca. 0,5 og 5 mm. Fordelaktig skjærer man hårfollikkelen i nærheten av dennes base for å fjerne roten. Fortrinnsvis innsettes implantatet i substratet ved begynnelsen av sammentrekning av gelen som utgjør substratet .
Fordelaktig etter tilførselen til substratet opprettholdes under en tid Tl substratet implantert ved immersjon i det nærende medium (MN1) som dekker implantatet (ene), og man kan velge en tid Tl i området 5 til 6 dager.
Når tiden Tl har utgått, erstattes fordelaktige miljøet (MN1) med et medium (MN2) som man kan plassere ved et nivå beliggende i mellomrommet av dermekvivalenten. Foretrukket for å sikre fremskaffelsen av mediet (MN2) til ønsket nivå, plasserer man dermekvivalenten på en nettingstøtte hevet i forhold til bunnen av brønnen og man justerer nivået til mediet (MN2) slik at nettstøtten er akkurat dekket, men at mediet (MN2) ikke dekker den øvre overflate av huderstatningen under opparbeidelsen.
Man kan anvende som medium (MN2) følgende sammensetning:
80 - 100 volum % av minimalt essensielt medium (MN1);
0-10 vekt % av ett eller fler antibiotika og /eller antifungicide midler;
0-20 volum % av humant eller animalt serum;
0-0,5 vekt % av en eller fler vekstfaktorer.
Foretrukket fjerner man implantatet fra substratet ved avlivning ved en tid T2 etter implantasjonen. Man kan velge tiden T2 i området 8 til 13 dager og man kan opprettholde huderstatningen i kontakt med dyrkningsmiljøet til en tid T3 etter implantasjonen i huderstatningen. Man velger fortrinnsvis en tid T3 som er større en T2 og tillater en fullstendig gjennvinning av substrat med keratinocyttene utviklet i nevnte substrat og en synlig differensiering av nevnte keratinocytter.
Man kan så ut på substratet implantater som er regulært formet og med en avstand fra hverandre på ca. 0,5-2,5 cm. og man velger fortrinnsvis en tid T3 omkring 15 dager til flere måneder.
Ved fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen kan det fremstilles en huderstatning bestående av en dermekvivalent fremskaffet fra en epidermekvivalent hvor dermekvivalenten er en film dannet av en kollagengel av type I inneholdende fibroblaster fordelt tredimensjonalt i nevnte film hvor huderstatningen omfatter: a) en ekvivalent av basalmebran bestående av en mengde på et laminatlag av fibronektin av kollagen av type IV og antigener mot blæreutslett; b) celler av basallaget anbrakt side om side fremskaffet fra membranekvivalenten fra punkt A. ved hemidesmosomer; c) celler fra suprabasallaget som i første suprabasallag inneholder basisk keratin på 67 kDa og sur keratin på 56,5 kDa; d) granulceller som inneholder korn av keratohyalin, involukrin, transglutaminase og filagrin; e) utflatede og keratiniserte celler anbrakt i nærheten av den fri overflate fremskaffet etter ekstraksjon med en .
natriumdodesylsulfat og 2-merkaptoetanol med ©n omsluttende omhylling som er særpreget for korneosytter, hvor cellene til de forskjellige lag ligger mellom disse ved desmosomer.
For bedre å forstå målet for oppfinnelsen, er det beskrevet nedenfor som kun et illustrerende og ikke begrensende eksempel, et utfyllingseksempel representert ved de medfølgende tegninger.
I disse tegningene er:
- figur 1 et delvis snitt av en huddel (spesielt av lærhudshår) hvori det er plassert en hårfollikkel (spesielt et hovedhår); - figur 2 representerer håret fra figur 1 fjernet fra hårsekken; - figur 3 viser en huderstatning under opparbeidelse neddynket i næringsveske; - figur 4 viser tilsvarende huderstatning som i figur 3, men i kontakt med luft under en senere fase; - figur 5 er et delsnitt av epidermekvivalenten til huderstatningen fremstilt ifølge oppfinnelsen.
I figur 1 vises en huddel, spesielt lærlaget kalt 1 i sammensetningen, hvori det er plassert en hårfollikkel 2. Follikkelen utvikles fra epidermen betegnet 3 i sammensetningen. Epidermen er adskilt fra dermen betegnet med 4 i sammensetningen via en basalmembran 5. Man skiller mellom fire nivåer i epidermen som er, ved å gå ut fra basalmembranen mot det utvendige av huden, basallaget 6, malpigilaget 7, granullaget 8 og hornlaget 9.
Epidermen består av 95 % av celler kalt keratinocytter. Keratinocyttene oppviser en differensiering fra basallaget til hornlaget. Basallaget 6 består av et enkelt lag keratinocytter 10 som i hovedsak har paralellepipedisk form hvor disse celler har hovedaksen i hovedsak vinkelrett på basalmembranen 5 og ligger i forhold til sistnevnte med base mot hemidesmosonene 39. Malpigilaget 7 består i hovedsak av en opphopning av det polyedriske keratinocyttlag 11. Mellom malpigilaget 7 og hornlaget 9 ligger 2 eller 3 lag av flate keratinocytter 12 som utgjør granurlaget 8. Endelig består hornlaget 9 av en opphopning av i hovedsak hexagonale celler 13 som er døde, avflatede og godt ordnede.
Dermen 4 omfatter fibroblaster 14 og er fyllt med en ekstra-cellulær matrise, bestående av makromolekyler så som kollagener, mukopolysakkarider, glykoaminoglykaner eller fibronektin.
Håret 2 består av et legeme 16, hvis del er plassert i epidermen og ender i en rot 17. Roten 17 oppviser ved sin base et hullrom 18 som inneholder dermiske papiller 19 og som åpner seg til dermen via en åpning 20. Et parti av basalmembranen 5 til epidermen omslutter delvis legemet 16 til hårstrå 2 sammen med roten 17 og den ligger under denne og omfatter en åpning 20. Denne del av basalmembranen omfatter også en utvidelse 21 begrenset utad med keratinocytter 10 til basallaget og inneholder mellom dette lag og håret polyedriske keratinocytter 11 til malpigilaget.
En av trinnene til fremgangsmåten består av å fremstille et implantat bestående av en del av håret 2. Denne fremstilling blir utført som følger: håret blir enkelt fjernet uten smerte og uten risiko for infeksjon, ved hjelp av for eksempel en pinnsett. Denne operasjonen krever ingen medisinsk utdannelse og et slikt utnappet hår er vist i figur 2.
Etter denne fraskillelsen fra implantatet skilles utvidelsen 21 fra det omliggende basallaget ved oppsprekning av nevnte lag. To tillfeller kan således dannes: enten vil, etter ekstraksjonen, basallaget avrives ved nivået til utvidelsen og man fjerner således alene hårlegemet 16 hvor utvidelsen 21 forblir i epidermen 3, eller så avrives basalmembranen under utvidelsen spesielt ved nivået til skillet mellom derm/epiderm, og man erholder således et hår hvis nedre parti er omgitt av utvidelsen 21. Kun denne andre even-tualitet er gjort gjeldende ved preparasjonstrinnet til implantatet; hårene eller den utnappede pels, uten utvidelse blir ikke brukt. Dersom de dermiske papiller er tilbake i epidermen 3 etter fraskillelsen, inneholder håret 2, som er fjernet en gang, ikkefibroblaster eller noen dermiske forurensinger hvor sistnevnte kan være generende elementer i en kultur. For eksempel kan de dermiske papiller eventuelt gi en gjenndannelse til et hår og gjenndanne en utvidelse 21 inneholdende keratinocyttene 10 og 11. Hårfollikkelen oppviser imidlertid en så godt som uendelig kilde til keratinocytter.
Et snitt over det fjernede hår i hovedsak vinkelrett på dettes langsgående akse i område hvor det treffer på utvidelsen 21 til punktene A og B, er vist i figur 2, hvor B befinner seg over utvidelsen og A over B for å bevare en lengde av B som ligger mellom ca. 0,5 og 5 mm.
Man fjerner også utvidelsen 17 idet for det første den bløte ende kan være generende under fremgangsmåten som forklart nedenfor, og for det andre fjerner man også enhver risiko for forurensing av de dermiske papiller som ligger på høyde med roten. Man erholder således et implantat 22 som er klart til å bli brukt.
Parallelt med denne fremstilling av implantatet 22 består et annet trinn av fremgangsmåten av fremstillingen av en tilsvarende struktur som derm 4, hvor dette i det følgende kalles er dermekvivalent. Denne fremstillingen utføres på
kjent måte som angitt nedenfor.
Man fjerner fra humane givere kutane vevsfragmenter inneholdende derm og epiderm. Disse fragmenter plasseres i en skål i et kulturmiljø som er av "Minimalt Essensielt Medium" (MEM) forhandlet for eksempel av la Societe Seromed og hvis vanlige sammensetning er angitt i tabell 1 nedenfor. Dermfibroblastene stammer således fra kutanvevet og formerer seg til et monolag i bunnen av skålen.
Man fremstiller for det andre en svakt sur opplesning av kollagen type 1 erholdt ved svakt sur ekstraksjon fra halesener hos rotter.
Man blander derpå denne svakt sure oppløsning av kollagen med fibroblastene dyrket i monolag som angitt ovenfor, og høster disse ved trypsinering utført ved subkonfluent eller konfluentkultur ved tilstedeværelse av et nærende miljø
(MN1) med følgende sammensetning:
85 - 90 volum % MEM;
10 volum % føtalt kalveserum eller
10 volum % humant serum AB;
1 vekt % ikke-essensielle aminosyrer
(angitt i tabell II nedenfor).
Blandingen nøytraliseres med 0,1 N lut og man plasserer dette i en skål 23 som angitt i figur 3. blandingen opptas i gelen meget raskt.
Etter interaksjoner mellom fibroblastene som er kontraktile celler, og kollagenfibrene inneholdt i gelformig næringsmedium minsker volumet til gelen, det nærende medium støtes ut og en dermekvivalent 24 danner seg. Man lar denne sammentrekning av gelen fortsette i løpet av et par dager og volumet til gelen reduseres minst 20 ganger.
Fibroblaster utgjør ikke de eneste anvendbare kontraktile celler. Man kan også for eksempel anvende glatte muskelceller, tverrstripete muskelceller så vel som hjertemuskel-celler og man kan også anvende blodplater.
Tilsvarende, dersom man har brukt i dette eksempel en kollagenoppløsning av type 1 som ekstra-cellulær dermatrise, består denne imidlertid av flere kollagener som er passende for gjendannelse av en dermekvivalent, og disse kollagener kan også fortrinnsvis være dannet av fullstendige molekyler som også omfatter deres telopeptider. Kollagene av type 1 stammer fra denne gruppe, men man kan likeledes angi humant kollagenekstrakt fra placenta etter delvis enzymfordøying.
Etter at fremstillingen av gel som danner dermekvivalenten 24 har blitt foretatt, utfører man derpå etterfølgende trinn av fremgangsmåten som er epidermisering av denne dermekvivalent.
Implantet 22 erholdt som angitt ovenfor, plasseres i gelen under de første minutter av kontraksjonen på en slik måte at dens midlere langsgående akse i hovedsak er vinkelrett på den fri overflate av gelen. Det er i denne innsetningsfase av implantet 22 at hårfollikkelroten kan være generende idet dennes bløte del ikke letter innsetningen. Det er derfor det er foretrukket å fjerne roten under fremstillingen av implantatet.
Under sammentrekningsfasen av gelen som vil gi opphav til dermekvivalenten 24, befinner implantet 22 seg fast forankret i gelen. Det er vist i figur 3 en dermekvivalent 24 i hvilken det er innsatt flere implantater 22. Faktisk er det mulig å utså dermekvivalenten under opparbeidelsen av implantatene regelmessig plassert og beliggende for eksempel i en avstand på omkring 0,5 - 2,5 cm. Etter denne utsåing opprettholdes dermekvivalenten under 5 til 6 dager i imersjon i et nærende miljø 25 (MN1). Dette dyrkningsmiljø 25 dekker implantene som angitt i figur 3. Under denne fase starter veksten av keratinocyttene i gelen 21 av implantatene og man hjelper således fra utgangen av implantatene en radiell og vertikal bevegelse av keratinocyttene på overflaten av dermekvivalenten 24.
Denne migrering av keratinocytter vil føre mot slutten av epidermiseringen til en dannelse på dermekvivalenten av en epidermekvivalent 26.
Sammensetningen (dermekvivalent 24/epidermekvivalent 26) vil således utgjøre en huderstatning 27.
Mot slutten av denne periode på 5 til 6 dager kan man erstatte mediet (MN1) med et medium 29 (MN2) med følgende sammensetning: 85-90 volum % av minimalt essensielt medium (MEM) 0-10 vekt % av antibiotika (penicilin, streptomysin,
amfoterisin B)
10 volum % animalt eller humant serum
0-0,05 vekt % av vekstfaktorer (epidermisk vekst faktor, hydrokortison, koleratoxin.)
På samme tid blir huderstatningen 27 anbrakt på en rist av ikkeoksydertbart metall 28, beliggende på bunnen av skålen 23. Nettet holder huderstatningen hevet i dyrkningsskålen
23 i nærheten av overgangen mellom luft og veske som angitt i figur 4. Nivået til mediet MN2 justeres på en slik måte at nettverksstøtten 28 såvidt er dekket, men hvor mediet MN2 ikke dekker øvre flate av huderstatningen 27 under opparbeidelsen. Det er også nødvendig å plassere huderstatningen under opparbeidelsen i kontakt med luft, og sikre næring til keratinocyttene i dermekvivalenten for å favorisere differensiering av keratinocyttene og således dannelsen av en godt strukturert epidermekvivalent.
Etter 8 til 13 dager blir implantatene fjernet, hvorpå epidermekvivalenten under dannelse hviler på dermekvivalenten. Diameteren på implantatene er meget små, i størelsesorden ca. 0,5 mm. hvor hullene som stammer fra <;>fjerningen av implatningene fra huderstatningen omleires og man erholder således en huderstatning som i hovedsak er homogen, vanntett og uten hull.
Når implantatene 22 trekker seg sammen, holdes huderstatningen 20 under opparbeidelsen i kontakt med mediet MN2, i løpet av en tid som tillater en fullstendig dekning av dermekvivalenten med keratinocytter utviklet på sistnevnte. Veksten av epiderm-ekvivalenten måles ved å farge epitel-laget med nilblått i vanndig oppløsning på 1/10000 og ved å måle overflaten til epidermekvivalenten.
Overflaten til en huderstatning 27 varierer som funksjon av antall innsatte implantater i dermekvivalenten og som funksjon av overflaten til disse. I tillegg med et enkelt implantat med en diameter på ca. 0,5 mm. erholdes en huderstatning med en overflate på ca. 1 cm<2> i løpet av 10 til 12 dager. Man kan også erholde en overflate som er meget større ved utsåing på dermekvivalenten med implantater regelmessig beliggende i en avstand fra hverandre på for eksempel 0,5 - 2,5 cm.
Når denne epidermiseringsfase er avsluttet, erholdes en huderstatning 27 som er avbildet på figur 5 ved et delvis snitt gjennom epidermekvivalenten 26. Klassisk foretas dette snitt etter farging med hemalun floxin safran.
Huderstatningen 27 erholdt ifølge utførelsesformen beskrevet ovenfor, omfatter således en dermekvivalent dekket med en epidermekvivalent 26 hvor dermekvivalenten er en film dannet av en gel av kollagen type 1, inneholdende fibroblaster fordelt tredimensjonalt i filmen. Epidermekvivalenten 26 vist i figur 5, består av en basalmembranekvivalent 5a, bestående av en avleiring av laminerte lag av fibronektin kollagen type 4 og antigen til rotblæreutslett. Under denne basalmembranekvivalent finner man keratinocytter 10a anbrakt side om side forbundet med mebranekvivalenten via hemidesmosomer 39: man fremstiller således en basallagekvivalent 6a. Det observeres likeledes celler under progressiv differensiering under cellene 10a, til basallaget 6a til utflatede celler 13a, anbragt i nærheten av den fri overflate hvor cellene i de forskjellige lag er forbundet mellom seg via desmosomer 30. Ekvivalenten til hornlaget 9a samt ekvivalentene til malpigilaget 7a og granurulaget 8a, har meget store likheter med tilsvarende lag i human hud.
Man finner dessuten i keratinocyttene av epidermekvivalenten 26, keratinfibre 31, og det finnes at det basiske keratin på 67 kDa, som er en markør for terminal differensiering normalt fraværende i kulturer ifølge teknikkens stand og i hårfollikkler ferskt fremstilt, blir syntetisert på normal måte i de suprabasale lag 7a og 8a, sammen med sin partner surferatin på 56,5 kDa. I tillegg blir dette keratin på 67 kDa påvist i det første suprabasallag 7a, så som i normal hud.
Filamentdannelsen er også tilstede i epidermekvivalenten 26, den kan påvises i ekvivalenten til granurlaget 8a og den resulterer i matureringen av sin protyolytiske prekursor profilamentene. Ved for eksempel elektroforese kan man se at dette filament passende er spaltet til tunge oligo-peptider fra profilamentene. Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen tillater således matureringen av profilamenter i humane keratinocytter.
Epidermekvivalenten 26 således gjenndannet er altså godt differensiert og godt organisert. Den er likeledes uniform med hensyn til tykkelse og til differensiering.
Til slutt er ekvivalent adhering mellom derm/epidermekvivalent utmerket. Den tillater således en lett behandling av huderstatningen 27 som således er dannet.
Claims (12)
1. Fremgangsmåte ved fremstilling av huderstatning hvor man: 1) fremstiller en dermekvivalent (24) ved å blande: a) kontraktile celler oppsamlet fra monolagskulturer dyrket i et næringsmedium, med fragmenter av animalsk eller humansk vev
med b) et næringsmedium (MN1) tillsatt bestanddeler av ekstracellulær matrise (15) til dermen (4) hvor nevnte blanding danner en gel som trekker seg sammen ved utskillelse av næringsmediet for å danne en dermekvivalent (24) ; 2) anvender dermekvivalenten (24) erholdt fra punkt 1 som substrat for en epidermekvivalent (26) erholdt ved tilsetning av nevnte substrat med keratinocyttceller fra animalsk eller humant vev, og ved å opprettholde betingel-sene som tillater vekst av keratinocyttcellene på overflaten av nevnte substrat hvor utviklingen av denne kultur av keratinocyttceller er favorisert ved anvendelse av minst et medium (MN1, MN2), (25 ; 29) i kontakt med nevnte keratinocyttceller,
karakterisert ved at substratet (24) tilsettes minst en hårfollikkel (2) eller en skjede (22) av hårfollikkelen (2) fjernet fra animalsk eller human hud ved uttrykking hvor nevnte follikkel (2) eller skjede (22) omfatter minst delvis sin cellulære vegg (21) og implanteres i substratet (24) på en slik måte at dennes gjennomsnittlige langsgående akse i hovedsak er vinkelrett på den fri overflate av substratet.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at implantatet (22) plasseres på substratet (24) i en avstand fra den frie overflate av substratet på mellom 0,1 og 2 mm.
3. Fremgangsmåte ifølge et av kravene 1 eller 2 karakterisert ved at implantet (22) som anvendes, erholdes ved å dele opp en uttrykket hårfollikkel (2) i hovedsak vinkelrett på dennes midlere langsgående akse i den sone hvor den omfatter den cellulære utvidelse (21), for å opprettholde en lengde på mellom 0,5 og 5 mm.
4. Fremgangsmåte ifølge krav 3, karakterisert ved at hårfollikkelen (2) som tilsettes er beskåret i nærheten av dennes base for å fjerne roten (17) .
5. Fremgangsmåte ifølge et av kravene 1 til 4, karakterisert ved at implantatet (22) omsettes i substratet (24) ved begynnelsen av gelens sammentrekning.
6. Fremgangsmåte ifølge et av kravene 1 til 5, karakterisert ved at man etter tilsetning av substratet (24) opprettholder implantasjonen av substratet nedsunket i et næringsmedium MN1 (25) mellom 5 og 6 dager.
7. Fremgangsmåte ifølge krav 6, karakterisert ved at mediet MN1 (25) erstattes av et medium MN2 (29) som plasseres i et nivå liggende i mellomrommet til dermekvivalenten (24) , etter 5 til 6 dager.
8. Fremgangsmåte ifølge krav 7, karakterisert ved at for å sikre beliggen-heten av mediet MN2 ved ønsket nivå, plasseres dermekvivalenten (24) på en nettstøtte (28) hevet i forhold til bunnen av skålen og hvor medienivået MN2 justeres slik at nettverkstøtten såvidt er dekket, men hvor nivået av mediet MN2 ikke dekker den øvre overflate av huderstatningen (27) under opparbeidelsen.
9. Fremgangsmåte ifølge etthvert av kravene 7 eller 8, karakterisert ved at det anvendes som medium MN2 følgende blanding : 80 - 100 volum% av minimalt essensielt medium (MEM); 0-10 vekt % av antibiotika og/eller antifongecide midler; 0-20 volum % av animalsk eller humansk serum; 0 - 0,05 vekt % vekstfaktorer.
10. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 til 9, karakterisert ved at implantatet (22) fjernes fra substratet (24) ved avrivning mellom 8 og 13 dager etter implantasjon.
11. Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 1 til 10, karakterisert ved at huderstatningen (27) holdes i kontakt med dyrkningsmediet (29) til en tid som anvendt tillater en total gjennvinning av substratet (24) av utviklede keratinocyttceller på nevnte substrat og en vesentlig differensiering av nevnte keratinocyttceller etter implantasjonen i dermekvivalenten (24).
12. Fremgangsmåte ifølge krav 11, karakterisert ved at man tilsetter til substratet (24) implantater (22) , regelmessig beliggende fra hverandre i en avstand på 0,5 - 2,5 cm.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR878704205A FR2612938B1 (fr) | 1987-03-26 | 1987-03-26 | Procede d'obtention d'un equivalent de peau et equivalent de peau correspondant |
Publications (4)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO881349D0 NO881349D0 (no) | 1988-03-25 |
NO881349L NO881349L (no) | 1988-09-27 |
NO171222B true NO171222B (no) | 1992-11-02 |
NO171222C NO171222C (no) | 1993-02-10 |
Family
ID=9349449
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO881349A NO171222C (no) | 1987-03-26 | 1988-03-25 | Fremgangsmaate ved fremstilling av huderstatning |
Country Status (16)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5639654A (no) |
EP (1) | EP0285471B1 (no) |
JP (1) | JP2733838B2 (no) |
AT (1) | ATE59971T1 (no) |
AU (1) | AU602394B2 (no) |
CA (1) | CA1296260C (no) |
DE (2) | DE285471T1 (no) |
DK (1) | DK164488A (no) |
ES (1) | ES2004843T3 (no) |
FI (2) | FI881362A (no) |
FR (1) | FR2612938B1 (no) |
GR (2) | GR880300158T1 (no) |
NO (1) | NO171222C (no) |
NZ (1) | NZ223828A (no) |
PT (1) | PT87084B (no) |
ZA (2) | ZA882033B (no) |
Families Citing this family (54)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8604360D0 (en) * | 1986-02-21 | 1986-03-26 | Univ Dundee | Stimulation of hair growth |
FR2612939B1 (fr) * | 1987-03-26 | 1989-06-23 | Cird | Equivalent de peau |
IL94611A (en) * | 1989-06-05 | 1994-12-29 | Organogenesis Inc | Medium for cell cultures containing insulin or growth factor similar to insulin, transferrin or iron ion, triiodothyronine or thyroxine and method of use |
US5106949A (en) * | 1989-09-15 | 1992-04-21 | Organogenesis, Inc. | Collagen compositions and methods for preparation thereof |
IL95429A (en) * | 1989-09-15 | 1997-09-30 | Organogenesis | Living tissue equivalents comprising hydrated collagen lattice and a collagen gel and their production |
US5256418A (en) * | 1990-04-06 | 1993-10-26 | Organogenesis, Inc. | Collagen constructs |
EP0526550B1 (en) * | 1990-04-24 | 1997-12-29 | EISENBERG, Mark | Composite living skin equivalents |
FR2667246A1 (fr) * | 1990-10-02 | 1992-04-03 | Imedex | Biomateriau a base de collagene et des applications. |
US5616500A (en) * | 1993-04-30 | 1997-04-01 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health & Human Services | Trichohyalin and transglutaminase-3 and methods of using same |
JPH10136977A (ja) * | 1996-11-11 | 1998-05-26 | Toyobo Co Ltd | 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法 |
US7419661B2 (en) | 1997-04-30 | 2008-09-02 | The Centre Of Excellence For Life Sciences Limited | Dermal sheath tissue in wound healing |
GB9708692D0 (en) * | 1997-04-30 | 1997-06-18 | Jahoda Colin A B | Dermal sheath tissue and/or cells derived therefrom in wound healing |
EP1005873B1 (en) * | 1998-11-30 | 2003-04-09 | IsoTis N.V. | Artificial skin |
US6454787B1 (en) | 1998-12-11 | 2002-09-24 | C. R. Bard, Inc. | Collagen hemostatic foam |
US6361551B1 (en) | 1998-12-11 | 2002-03-26 | C. R. Bard, Inc. | Collagen hemostatic fibers |
US7144729B2 (en) * | 2000-09-01 | 2006-12-05 | Dfb Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for tissue regeneration |
US20050089512A1 (en) * | 2001-12-19 | 2005-04-28 | Kordula Schlotmann | Skin/hair equivalent with reconstructed papillae |
DE10162814B4 (de) * | 2001-12-19 | 2005-06-23 | Henkel Kgaa | Rekonstruiertes Haarfollikelmodell |
US20040101507A1 (en) * | 2002-11-27 | 2004-05-27 | Janco Predovan | Skin cream |
JP2004283371A (ja) * | 2003-03-20 | 2004-10-14 | Nagoya Industrial Science Research Inst | 医用材料 |
JP2005305177A (ja) * | 2005-05-11 | 2005-11-04 | Toyobo Co Ltd | 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法 |
FR2889808B1 (fr) | 2005-08-17 | 2011-07-22 | Oreal | Utilisation de l'acide 8-hexadecene-1,16-dicarboxylique comme agent de soin destine a favoriser la cohesion de la couche cornee |
FR2903702B1 (fr) | 2006-07-13 | 2012-10-19 | Oreal | Equivalent d'epiderme capable de se pigmenter obtenu a partir de cellules de la matrice, procede de preparation et utilisation |
FR2912916B1 (fr) | 2007-02-26 | 2009-05-22 | Oreal | Composition cosmetique ou dermatologique comprenant un milieu de culture cellulaire |
JP5340564B2 (ja) * | 2007-07-05 | 2013-11-13 | ライオン株式会社 | 人工皮膚およびその製造方法 |
CA2658074C (fr) | 2008-03-17 | 2017-11-07 | L'oreal | Equivalent de peau pigmentee fonctionnelle |
KR101734469B1 (ko) | 2008-04-01 | 2017-05-11 | 더 제너럴 하스피탈 코포레이션 | 조직이식 장치 |
KR102047075B1 (ko) * | 2010-05-07 | 2019-11-20 | 더 제너럴 하스피탈 코포레이션 | 조직이식과 조직복제 방법 및 장치 |
FR2967163A1 (fr) | 2010-11-05 | 2012-05-11 | Centre Nat Rech Scient | Procede in vitro ou ex vivo pour la maintenance en survie et la generation ou reconstruction d'un epiderme |
FR2976001B1 (fr) | 2011-05-30 | 2014-10-31 | Oreal | Modele de cuir chevelu reconstruit et procede de screening de molecules actives |
FR2993282B1 (fr) | 2012-07-13 | 2017-11-10 | Expanscience Lab | Procede d'identification de marqueurs moleculaires de la peau d'enfant |
CA2900505C (en) | 2013-02-20 | 2023-10-24 | Cytrellis Biosystems, Inc. | Methods and devices for skin tightening |
EP3030175B1 (en) | 2013-08-09 | 2023-10-04 | Cytrellis Biosystems, Inc. | Apparatuses for skin treatment using non-thermal tissue ablation |
FR3011008B1 (fr) | 2013-09-24 | 2017-12-29 | Expanscience Lab | Procedes d'evaluation des effets deleteres des uv sur la peau d'enfant |
US9545302B2 (en) | 2013-11-20 | 2017-01-17 | Dermagenesis Llc | Skin printing and auto-grafting |
US10953143B2 (en) | 2013-12-19 | 2021-03-23 | Cytrellis Biosystems, Inc. | Methods and devices for manipulating subdermal fat |
FR3016373B1 (fr) | 2014-01-10 | 2018-01-19 | Laboratoires Expanscience | Modele de peau de mammelon reconstitue |
FR3019186B1 (fr) | 2014-03-31 | 2019-06-07 | Laboratoires Expanscience | Procedes d'evaluation des effets deleteres de l'urine sur la peau d'enfant |
KR20240090941A (ko) | 2014-11-14 | 2024-06-21 | 사이트렐리스 바이오시스템즈, 인크. | 피부 절제를 위한 디바이스 및 방법 |
US9743949B2 (en) | 2015-04-22 | 2017-08-29 | Medline Industries, Inc. | Two-dimensional needle array device and method of use |
DE102015119877B4 (de) * | 2015-11-17 | 2017-09-21 | Technische Universität Berlin | Verfahren zur Herstellung eines Hautäquivalents sowie dessen Verwendung für in vitro Tests und in vivo Transplantate |
FR3045669B1 (fr) | 2015-12-16 | 2019-04-05 | Laboratoires Expanscience | Procedes d'evaluation des effets de la deshydratation sur la peau d'enfant |
EP3435890A1 (en) | 2016-03-29 | 2019-02-06 | Cytrellis Biosystems, Inc. | Devices and methods for cosmetic skin resurfacing |
FR3053053B1 (fr) | 2016-06-23 | 2018-07-13 | Laboratoires Expanscience | Modeles de la dermatite atopique juvenile |
FR3054449B1 (fr) | 2016-07-29 | 2018-08-31 | L'oreal | Equivalent de peau a compartiments dermiques juxtaposes distincts |
US11464954B2 (en) | 2016-09-21 | 2022-10-11 | Cytrellis Biosystems, Inc. | Devices and methods for cosmetic skin resurfacing |
FR3068045B1 (fr) | 2017-06-22 | 2021-06-04 | Expanscience Lab | Modeles de peau sensible reconstituee |
CN107320781B (zh) * | 2017-07-11 | 2020-03-10 | 广州润虹医药科技股份有限公司 | 含活细胞的组织工程皮肤及其制备方法 |
FR3071512B1 (fr) | 2017-09-28 | 2022-02-25 | Oreal | Signatures moleculaires de trois sous-populations de fibroblastes dermiques et equivalent de derme comprenant une de ces sous-populations |
CN109172868B (zh) * | 2018-09-29 | 2021-05-28 | 山东大学苏州研究院 | 一种快速重建皮肤及毛囊的新方法 |
CN111330082B (zh) * | 2020-01-16 | 2021-11-19 | 中国人民解放军总医院 | 构建含皮肤附属器的生物3d打印皮肤微单元模型的制备方法 |
FR3111904B1 (fr) | 2020-06-30 | 2022-10-21 | Oreal | Bioencre pour bioimpression d’un modèle de jonction dermo-épidermique invaginée |
FR3133198A1 (fr) | 2022-03-04 | 2023-09-08 | Pierre Fabre Dermo-Cosmetique | Modele de peau reconstituee |
FR3138149A1 (fr) | 2022-07-25 | 2024-01-26 | Pierre Fabre Dermo-Cosmetique | Méthode d’évaluation in vitro de l’activité photoprotectrice d’un actif |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4539716A (en) * | 1981-03-19 | 1985-09-10 | Massachusetts Institute Of Technology | Fabrication of living blood vessels and glandular tissues |
US4458678A (en) * | 1981-10-26 | 1984-07-10 | Massachusetts Institute Of Technology | Cell-seeding procedures involving fibrous lattices |
US4485096A (en) * | 1982-02-26 | 1984-11-27 | Massachusetts Institute Of Technology | Tissue-equivalent and method for preparation thereof |
US4485097A (en) * | 1982-05-26 | 1984-11-27 | Massachusetts Institute Of Technology | Bone-equivalent and method for preparation thereof |
US4604346A (en) * | 1984-10-09 | 1986-08-05 | Massachusetts Institute Of Technology | Skin-equivalent prepared by the use of punch biopsy |
JPS62246371A (ja) * | 1986-04-19 | 1987-10-27 | 株式会社 高研 | 人工皮膚及びその製造方法 |
FR2612939B1 (fr) * | 1987-03-26 | 1989-06-23 | Cird | Equivalent de peau |
-
1987
- 1987-03-26 FR FR878704205A patent/FR2612938B1/fr not_active Expired
-
1988
- 1988-03-02 DE DE198888400489T patent/DE285471T1/de active Pending
- 1988-03-02 DE DE8888400489T patent/DE3861532D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1988-03-02 AT AT88400489T patent/ATE59971T1/de not_active IP Right Cessation
- 1988-03-02 EP EP88400489A patent/EP0285471B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1988-03-02 ES ES198888400489T patent/ES2004843T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1988-03-08 CA CA000560804A patent/CA1296260C/fr not_active Expired - Lifetime
- 1988-03-09 NZ NZ223828A patent/NZ223828A/xx unknown
- 1988-03-21 ZA ZA882033A patent/ZA882033B/xx unknown
- 1988-03-22 ZA ZA882032A patent/ZA882032B/xx unknown
- 1988-03-22 FI FI881362A patent/FI881362A/fi not_active Application Discontinuation
- 1988-03-22 FI FI881363A patent/FI881363A/fi not_active Application Discontinuation
- 1988-03-25 DK DK164488A patent/DK164488A/da not_active IP Right Cessation
- 1988-03-25 JP JP63069889A patent/JP2733838B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1988-03-25 PT PT87084A patent/PT87084B/pt not_active IP Right Cessation
- 1988-03-25 NO NO881349A patent/NO171222C/no unknown
- 1988-03-25 AU AU13743/88A patent/AU602394B2/en not_active Expired
- 1988-12-16 GR GR88300158T patent/GR880300158T1/el unknown
-
1991
- 1991-01-17 GR GR90401130T patent/GR3001334T3/el unknown
-
1995
- 1995-06-06 US US08/470,959 patent/US5639654A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2004843A4 (es) | 1989-02-16 |
GR880300158T1 (en) | 1988-12-16 |
EP0285471A1 (fr) | 1988-10-05 |
ATE59971T1 (de) | 1991-02-15 |
FI881362A (fi) | 1988-09-27 |
JPS648974A (en) | 1989-01-12 |
JP2733838B2 (ja) | 1998-03-30 |
US5639654A (en) | 1997-06-17 |
AU602394B2 (en) | 1990-10-11 |
NO171222C (no) | 1993-02-10 |
ZA882032B (en) | 1988-09-15 |
PT87084A (pt) | 1988-04-01 |
DK164488A (da) | 1988-09-27 |
DE3861532D1 (de) | 1991-02-21 |
NO881349D0 (no) | 1988-03-25 |
FI881363A0 (fi) | 1988-03-22 |
ZA882033B (en) | 1988-09-15 |
PT87084B (pt) | 1992-07-31 |
FI881362A0 (fi) | 1988-03-22 |
AU1374388A (en) | 1988-09-29 |
FR2612938A1 (fr) | 1988-09-30 |
FI881363A (fi) | 1988-09-27 |
GR3001334T3 (en) | 1992-08-31 |
DK164488D0 (da) | 1988-03-25 |
CA1296260C (fr) | 1992-02-25 |
DE285471T1 (de) | 1990-03-01 |
ES2004843T3 (es) | 1992-05-01 |
EP0285471B1 (fr) | 1991-01-16 |
NZ223828A (en) | 1990-07-26 |
FR2612938B1 (fr) | 1989-06-23 |
NO881349L (no) | 1988-09-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
NO171222B (no) | Fremgangsmaate ved fremstilling av huderstatning | |
US5667961A (en) | Skin substitute | |
KR100417896B1 (ko) | 피부와연조직결함을복구하기위한자가진피섬유아세포 | |
US7419661B2 (en) | Dermal sheath tissue in wound healing | |
US20060105454A1 (en) | Method of isolating epithelial cells, method of preconditioning cells, and methods of preparing bioartificial skin and dermis with the epithelial cells or the preconditioned cells | |
JPH0747043B2 (ja) | 合成生体皮膚等価物 | |
KR100806695B1 (ko) | 색소화 질환 치료용 세포치료 약제학적 조성물 | |
WO2001032129A3 (en) | Augmentation and repair of age-related soft tissue defects | |
US20060057126A1 (en) | Device and method for hair growth from stem cells | |
US4888291A (en) | Human epithelium originating from cell cultures | |
KR20010072553A (ko) | 살아있는 키메릭 피부 대체물 | |
EP0980270B1 (en) | Dermal sheath tissue in wound healing | |
JP5154434B2 (ja) | 非無機化(non‐mineralized)結合組織の工学のためのビブリオ・ディアボリカス(Vibriodiabolicus)種により分泌される多糖の使用 | |
Yannas | Regeneration templates | |
JPH10136977A (ja) | 組織付属器官様構造体を含む人工組織およびその製造方法 | |
CN108472410B (zh) | 用于生产皮肤等同物的方法及其用于体外测试和体内移植的用途 | |
Johnson | The role of tissue engineering | |
US20220168469A1 (en) | Obturator, methods of forming a prefabricated, innervated, pre-vascularized, prelaminated (pipp) flap using an obturator to maintain a stoma or lumen, and methods of restoring damaged or surgically-removed soft tissue with a pipp free or rotational flap | |
Yannas et al. | Regeneration of skin | |
AU632693C (en) | Composite living skin equivalents | |
Lawrence et al. | Plastic surgery research | |
JPS59501298A (ja) | 骨同等物およびその製造法 | |
Prunieras et al. | Cultured Keratinocytes and Synthetic Skin | |
IE80689B1 (en) | Composite living skin equivalents |