KR20220096752A - 푸코오스 전이효소를 발현하는 재조합 미생물 및 이를 이용한 2’-푸코실락토오스 제조방법 - Google Patents

푸코오스 전이효소를 발현하는 재조합 미생물 및 이를 이용한 2’-푸코실락토오스 제조방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 2’-푸코오스 전이 효소가 도입된 미생물 및 이를 이용한 2’-푸코실락토오스의 제조방법에 관한 것으로, 본 발명의 미생물 유래 푸코실트랜스퍼아제 (fucosyltransferase)는 종래의 헬리코박터 파이로리(Helicobacter pylori) 유래 효소에 비해 안전하고 고활성을 가진다.

Description

푸코오스 전이효소를 발현하는 재조합 미생물 및 이를 이용한 2’-푸코실락토오스 제조방법{Recombinant microorganism expressing fucosyltransferase and Method of producing 2’-fucolsylactose using thereof}
본 발명은 푸코오스 전이효소가 발현되도록 형질전환된 재조합 미생물 및 이를 이용한 2’-푸코실락토오스 제조방법에 관한 것이다.
모유 중 함량이 가장 높은 올리고당 3가지를 포함하여 137종이 푸코실화 되어 그 비율이 약 77%이고, 남은 올리고당은 대부분 시알화 된 것(39개)으로 약 28%에 해당한다. 이 중, 특히 2’-푸코실락토오스와 3’-푸코실락토오스는 프리바이오틱 (prebiotic) 효과, 병원균 장내 부착 억제 효과 그리고 면역조절시스템 조절 효과 등을 가진다. Prebiotic 효과는 지금까지 가장 많은 연구가 진행되었는데, 모유의 모유올리고당은 유아의 장에서 초기에 우점종으로 자라는 Bifidobacterium bifidum의 생육을 선택적으로 증진시키는 반면 유해균에 의해서는 이용되지 못한다. 또한, 모유올리고당은 병원균의 장내 부착을 억제하는 것으로 알려져 있는데, 이는 장재 lectin과 결합하는 병원균의 세포벽 다당체 구조가 종종 모유올리고당의 일부 구조와 유사하기 때문이다. 따라서, 모유올리고당이 수용성 리간드 유사체를 제공하여 모유 수유 유아들이 병원균에 의한 감염에 내성을 갖는 것으로 보인다. 하지만, 여성의 약 20%는 2’-푸코실락토오스을 합성하는 푸코오스 전이효소의 변이로 인해 체내에서 이들을 제대로 합성하지 못하는 것으로 알려졌다. 이로 인하여 2’-푸코실락토오스의 산업적 생산이 필요한 실정이다.
모유올리고당의 일부는 대부분 포유동물 (영장류, 소, 돼지, 염소, 양 코끼리)의 젖에서도 소량 발견된다. 이 중 염소의 젖이 모유올리고당 조성과 가장 유사한데, 이로 인해 염소 젖 치즈 생산공정의 유청 부산물로부터 대규모 막 이용 분리 기술이 제시되었다. 또한, 최근 개발된 고체상 화학 합성법 (solid-phase synthesis)을 이용하면 하루 안에 Lewis X-Lewis Y 당을 생산할 수 있고, crystalline intermediate technology를 이용하면 2’-푸코실락토오스의 빠른 합성이 가능하게 되었다. 하지만, 위의 분리법 이나 화학적 합성법의 개발에도 불구하고 모유올리고당의 산업화를 위한 대량생산에는 몇 가지 장애물이 남아있는데, 이는 본 기술들의 낮은 입체 선택성, 낮은 총 수득율과 독성 시약의 사용 등이 식품 또는 약품 산업에 적합하지 않기 때문이다. 따라서 보다 친환경적이고 수득율이 높은 생산법이 필요하게 되며 최근 미생물에 의한 고농도의 2’-FL 생산 방법이 보고 되는 추세이다. 그러나 2’-푸코실락토오스 생합성 유전자는 Bio Safety Level 2 균주 Helicobacter pylori에서 확보된 2’-푸코실락토오스를 사용하여 주로 모유 수유 대체용 분유 및 유아용 식품에 적용 시 소비자의 인식에 부정적인 요소로 작용할 수 있으며, 국내 생산 판매 허가에 적합하지 못하다. 따라서 식품 첨가물로서 보다 안정성이 높은 유전자를 적용하여 Bio Safety Level 1 균주의 유전자 도입에 의한 2’-푸코실락토오스 생산이 필요하다.
본 발명은 식품, 화장품 및 의약품 소재인 푸코실락토오스를 생산하는 전이 효소를 가지고 있는 미생물로서, Biosafety level 1 균주, 예를 들면 바실러스 메가테리움 (bacillus megaterium) 또는 아커만시아 무시니필라 (Akkermansia muciniphila)에서 유래한 2’-퓨코오스 전이 효소를 삽입한 재조합 미생물을 제공하고, 이를 이용하여 효과적인 2'-푸코실락토오스를 생산하는 방법을 제공하기 위한 것이다.
본 발명의 일 예는 α-1,2-푸코오스 전이효소 (α-1,2-fucosyltransferase)가 발현되도록 형질전환된, 재조합 미생물에 관한 것이다. 상기 α-1,2-푸코오스 전이효소는 서열번호 1 내지 5로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는 것일 수 있다.
본 발명에서 2-푸코오스 전이 효소 활성을 가진 폴리펩티드는 서열번호 1 내지 5의 아미노산 서열에 제한되지 않고, 서열번호 1 내지 5의 아미노산 서열 중의 일부 아미노산 잔기의 치환, 삽입 또는 결핍에 의해 형성한 아미노산 서열을 포함하며, 이러한 아미노산이 수식된 단백질 또는 폴리펩티드가 2-푸코오스 전이 효소 활성을 가지고 있으면 락토오스와 GDP-fucose를 기질로 하여 푸코실락토스로 전환할 수 있다.
상기 α-1,2-푸코오스 전이효소를 암호화하는 핵산 서열은, 예를 들면 서열번호 14 내지 18로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 핵산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
상기 재조합 미생물은 GRAS (Generally Recognized As Safe) 미생물인 것일 수 있다. 현재까지 2'-푸코실락토오스 생산에 사용되는 유전자는 Helicobacter pylori에서 확보된 2’-푸코실락토오스를 사용하므로 안정성이 좋지 않으며, 이러한 문제점을 해결하기 위해 본 발명에 따른 재조합 미생물은 Bio Safety Level 1 미생물일 수 있다. 헬리코박테 파일로리(Helicobacter pylori)에서 유래한 푸코오스 전이효소(fucosyltransferase)는 바이오세이프레벨 2 (biosafety Level 2)이기 때문에 식품 소재의 생산을 위한 효소로 적합하지 않으나, 본 발명에 따른 푸코오스 전이효소는 바이오세이프레벨 1 (biosafety level 1)이기 때문에 안정성 측면에 대한 소비자의 우려가 전혀 없는 장점이 있다.
본 발명에 따른 재조합 미생물은 helicobactor pyori 유래의 α-1,2-푸코오스 전이효소를 포함하는 대조군 대비 2’-푸코실락토오스 생산성이 현저히 상승되어, 안정성 향상 및 생산성 향상이 가능하다.
구체적으로, 본 발명의 일 예에 따른 재조합 미생물은 helicobactor pyori 유래의 α-1,2-푸코오스 전이효소를 포함하는 대조군 대비 2배 이상, 2.1배 이상, 2.5배 이상, 3배 이상, 3.5배 이상, 4배 이상, 4.5배 이상, 5배 이상, 5.5배 이상, 6배 이상, 6.5배 이상, 7배 이상, 또는 7.5배 이상의 2’-푸코실락토오스 생산성을 가지는 것일 수 있다. 따라서, 상기 재조합 미생물은 α-1,2-푸코오스 제조에 유용하게 사용될 수 있으며, α-1,2-푸코오스 생산 수율을 향상시킬 수 있다.
본 발명의 일 예에 따른 재조합 미생물은, 재조합 되기 전 2'-푸코실락토오스 생산능을 가지지 않으며, 재조합에 의해 2'-푸코실락토오스 생산능을 가지는 것일 수 있다.
상기 재조합 미생물을 형질전환하는 방법은 당업계에 공지된 모든 형질전환 방법 특별한 제한 없이 선택하여 사용할 수 있으며, 예컨대, 세균 원형질체의 융합, 전기 천공법, 추진체 포격 (projectile bombardment), 및 바이러스 벡터를 사용한 감염 등으로부터 선택된 것일 수 있다.
본 발명에 따른 재조합 미생물은 바실러스 속 (Bacillus sp.) 미생물, 코리네박테리움 속 (Corynebacterium sp.) 미생물, 대장균 속 (Escherichia sp.) 미생물, 또는 효모 (yeast)인 것일 수 있다.
구체적으로, 상기 바실러스 속 (Bacillus sp.) 미생물은 바실러스 메가테리움 (Bacillus megaterium), 바실러스 서브틸리스 (Bacillus subtilis), 바실러스 세레우스 (Bacillus cereus), 바실러스 코아귤런스 (Bacillus coagulans), 바실러스 리체니포르미스 (Bacillus licheniformis), 또는 바실러스 스테아로테르모필루스 (Bacillus stearothermophilus)인 것일 수 있다.
구체적으로, 상기 코리네박테리움 속 (Corynebacterium sp.) 미생물은 코리네박테리움 글루타미쿰 (Corynebacterium glutatamicum)인 것일 수 있다.
구체적으로, 상기 대장균 속 (Escherichia sp.) 미생물은 대장균 (Escherichia coli) 일 수 있다.
구체적으로, 상기 효모 (yeast)는 사카로미세스 세레비시아 (Saccharomyces cerevisiae), 또는 캔디다 유틸리스 (Candida utilis)인 것일 수 있다.
본 발명의 일 예에 따른 재조합 미생물은 푸코오스 합성능을 가지거나, 푸코오스 합성능이 개선된 것일 수 있다. 2'-푸코실락토오스를 생산하기 위해 어떤 미생물이든 기본적으로 외래의 α-1,2-푸코오스 전이효소를 도입해야 하는 것은 동일하나, 각 미생물의 균주 자체의 유전적 특성이 다르기 때문에, 대장균이나 바실러스 메가테리움은 α-1,2-푸코오스 전이 효소만 삽입해도 2'-푸코실락토오스 생산이 가능하나, 바실러스 써틸리스, 코리네박테리움, 효모 미생물 등은 추가적으로 푸코오스 합성 효소를 도입할 수 있다.
구체적으로, 본 발명의 일 예에 따른 재조합 미생물은 GDP-D-만노오스-4,6-데하이드라타아제 (GDP-D-mannose-4,6-dehydratase), GDP-L-푸코오스 신타아제 (GDP-L-fucose synthase, WcaG), 포스포만노뮤타아제 (phosphomannomurase), 및 GTP 만노오스-1-포스페이트 구아닐릴트랜스퍼라아제 (GTP-mannose-1-phosphate guanylyltransferase)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상을 보유하거나, 과발현하는 것을 특징으로 할 수 있다. 이에, 본 발명의 일 예에 따른 재조합 미생물은, α-1,2-푸코오스 전이효소 발현 특성과 더불어, 푸코오스 합성능이 개선되어 α-1,2-푸코오스 생산 수율이 더욱 향상될 수 있다.
예를 들어, 상기 푸코오스 합성 효소는 서열번호 19 내지 22로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
예를 들어, 상기 GTP 만노오스-1-포스페이트 구아닐릴트랜스퍼라아제는 서열번호 19의 아미노산 서열을 포함하는 것이거나, 서열번호 23의 핵산 서열에 의해 암호화되는 것일 수 있다.
예를 들어, 상기 포스포만노뮤타아제는 서열번호 20의 아미노산 서열을 포함하는 것이거나, 서열번호 24의 핵산 서열에 의해 암호화되는 것일 수 있다.
예를 들어, GDP-L-푸코오스 신타아제 (WcaG)는 서열번호 21의 아미노산 서열을 포함하는 것이거나, 서열번호 25의 핵산 서열에 의해 암호화되는 것일 수 있다.
예를 들어, 상기 GDP-D-만노오스-4,6-데하이드라타아제 (GDP-D-mannose-4,6-dehydratase)는 서열번호 22의 아미노산 서열을 포함하는 것이거나, 서열번호 26의 핵산 서열에 의해 암호화되는 것일 수 있다.
본 발명의 일 예에 따른 재조합 미생물은 락토오스 막 수송 단백질을 발현 또는 과발현하는 것일 수 있다. 상기 락토오스 막 수송 단백질은 2’-푸코실락토오스의 기질인 락토오스를 세포 내로 도입하여, 2’-푸코실락토오스 생산능을 개선하는 것일 수 있다.
구체적으로, 상기 락토오스 막 수송 단백질은 Lac12 및/또는 LacY인 것일 수 있다.
예를 들어, 상기 Lac12는 서열번호 27의 아미노산 서열을 가지는 것일 수 있다. 예를 들어, 상기 Lac12를 암호화하는 핵산은 서열번호 29의 핵산 서열을 포함하는 것일 수 있다. 일 예로, 상기 Lac12는 서열번호 29의 핵산 서열에 의해 암호화되는 것일 수 있다.
예를 들어, 상기 LacY는 서열번호 28의 아미노산 서열을 가지는 것일 수 있다. 예를 들어, 상기 LacY를 암호화하는 핵산 서열은 서열번호 30의 핵산 서열을 포함하는 것일 수 있다. 일 예로, 상기 LacY는 서열번호 30의 핵산 서열에 의해 암호화되는 것일 수 있다.
본 발명의 또 다른 일 예는, 본 발명에 따른 재조합 미생물을 이용하여 얻어진 α-1,2-푸코오스 전이효소, 상기 미생물의 균체, 상기 미생물의 배양물, 상기 미생물의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는, 2'-푸코실락토오스 생산용 조성물에 관한 것이다. 상기 재조합 미생물, 상기 α-1,2-푸코오스 전이효소, 상기 2'-푸코실락토오스 등은 전술한 바와 같다.
상기 배양물은 상기 재조합 미생물로부터 생산된 효소를 포함하는 것으로, 상기 재조합 미생물을 포함하거나, 상기 재조합 미생물을 포함하지 않는 무세포(cell-free) 형태일 수 있다. 상기 파쇄물은 상기 재조합 미생물을 파쇄한 파쇄물 또는 상기 파쇄물을 원심분리하여 얻어진 상등액을 의미하는 것으로, 상기 재조합 미생물로부터 생산된 효소를 포함하는 것이다. 본 명세서에 있어서, 별도의 언급이 없는 한, 2'-푸코실락토오스 제조에 사용되는 재조합 미생물은 상기 미생물의 균체, 상기 미생물의 배양물 및 상기 미생물의 파쇄물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 의미하는 것으로 사용된다.
본 발명의 또 다른 일 예는, 락토오스 (lactose)를 포함하는 배지에서 본 발명에 따른 재조합 미생물을 배양하는 단계를 포함하는, 2’-푸코실락토오스 (2’-fucolsylactose)의 생산방법에 관한 것이다.
상기 제조방법은 배양물에서 얻어진 α-1,2-푸코오스 전이효소, 상기 미생물의 균체, 상기 미생물의 배양물, 상기 미생물의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 락토오스 함유 원료와 반응하여 2'-푸코실락토오스를 생산하는 것일 수 있다.
본 발명은 바이오 세이프 레벨 1 (biosafety level 1) 균주에서 유래한 푸코오스 전이효소가 도입되어, 안정성 측면에서 소비자의 우려가 없는 재조합 미생물 및 이를 이용한 2’-푸코실락토오스의 생산방법을 제공할 수 있다.
도 1은 본 발명의 실시예에 따라 선별된 효소들의 단백질 발현 SDS-PAGE 결과 및 예상 단백질 크기를 나타낸 도면이다.
도 2는 본 발명의 실시예에 따른 플라스크 반응 (상단) 및 시험관 반응 (하단)의 2FL 생산 경향성을 나타낸 도면이다.
도 3은 본 발명의 일 예에 따른 α-1,2-푸코오스 전이효소의 E.coli host를 이용한 2FL 생산 활성 비교 결과를 나타낸 도면이다.
도 4는 B.megaterium 14581 host를 이용한 다양한 2FL생산성 비교 결과를 나타낸 도면이다.
도 5는 본 발명의 실시예에 따른 GDP-fucose cassette를 나타낸 도면이다.
도 6은 본 발명의 실시예에 따른 GDP-fucose cassette를 도입한 균주를 이용하여 2FL 생산성을 확인한 도면이다.
이하, 본 발명을 하기의 실시예에 의하여 더욱 상세히 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐이며, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 생물 정보학 도구를 이용한 a-1,2-푸코오스 전이효소 스크리닝
생물 정보학 도구를 이용하여 Biosafety level 1 유래 a-1,2-fucosyltransferase 효소 (이하, 2FT) 후보를 선별하였다. 구체적으로, ncbi (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/)에서 a-1,2-푸코오스 전이효소 기능을 가질 것으로 예상되는 효소 중 Bacteria 유래 및 GRAS bacteria 유래를 기준으로 >90% 상동성 sequence를 제거하고, 단백질 형태 시각화 프로그램 (http://wlab.ethz.ch/protter)을 이용하여 막 단백질의 유무를 파악하였다.
컴퓨터 생물 정보학 도구들을 사용하여 32개의 후보군을 선별하였다 (표 1). 또한 단백질 발현에 문제가 되는 막단백질의 존재 여부를 프로그램을 통하여 예측 하였을 때에 32개 후보군 중, Lactococcus lactis 유래를 제외한 나머지 31개의 효소에서 극명한 막단백질이 예측되지 않았다.
선별 기준 후보군
Bacteria 6431
GRAS bacteria
(ex) Acetobacter, Bacillus, Lactobacillus etc)
67
중복 제거
(>90% 상동성 sequence 제거,partial swquence 제거)
32
후보군 중 Biosafety level 1 Bm2FT가 반응성이 이후 확인되어, Bm2FT 단백질 서열 상동성을 바탕으로 추가 후보군을 Bacillus megaterium 유래 효소를 탐색하였다. Bm2FT의 서열 정보를 바탕으로 BLAST 프로그램 (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)을 이용하여 효소를 탐색하였다. 선별된 효소 후보군 목록을 표 2에 나타내었다.
명명 서열 서열번호
Am2FT_2 MNMERKTGLMNKKYVSPCFLPGMRLGNIMFTLAAACAHARTVGVECRVPWAYNDASLMLRSRLGGWVLPSTPCGTNEPPSWQEPSFAYCPVPSRIRTGGLRGYFQSARYFEGQEAFIRALFAPLTAEKEPGAVGIHIRLGDYRRLRDKHRILDPGFLRRAAGHLSSGKNRLVLFSDEPDEAAEMLARVPAFGRFALEIDRGAPCESLRRMTAMEELVMSCSSFSWWGAWLGNTRKVIVPRDWFVGGVEDYRDIYLPHWVTL 1
Bm2FT MKIVQISSGLGNQLFQYALYKRLSMNNNDVFLDVETSYQLNKNQHNGYEIERIFSIQPSHATKGMIDELADVDNRLINRLRRKLFGPKNSMYTETKEFSYDCEVFTKDGIYIKGYWQNYNYFKEIEDDLKNELVFKKALDLKNSHLINQMNKEISVSIHVRRGDYYLNKEYENKFGNIADLDYYLKAINFIKKEVDDPKFYVFSDDIKWAKENLNLTDNVTYVEHNKGSDSYKDMRLMTCCKHNIIANSTFSWWGAFLNENKNKIVIAPGKWINVEGVGGINLFPEGWIVY 2
Bm2FT_2 MGCIKRLFLYEYGGRCFLVIVKIKGGFGNQLFTYASAYAISQELQQNLIMDKVIYDLDYFRKFELPSLSLKYDQMLISKFVPNTKVKTLIYKVLRRLKLKGFTEVHEKKEFSFDENIYNLSGDIYLDGYWQNYRYFHKYYKDLSEMFVPRETPRKEVTDYITSLRGVNSVAMHVRRGDYKTFNGGKCLSLDYYIKAMEYFNSNDVQFYVFTDDIDFCEKNLPNSENINYVSRSEKLTDIEEFFIMKECKNFIIANSSFSWWAAYLSEQKADSLIVAPVVDMWKRDFYPDEWVALNTHLE 3
Bm2FT_3 MIIVQIKGGLGNQLFSYASAYGIARENETELIIDRYIYDTSYSLRKYMLDFFPEIDEALLLKYIPKKNKISQIMYKLIRKSKLKYKYKAQLFLEEEEFKFTRISTQNENLYLNGYWQSYVYFDKYRNDIIKKFTPLVSFNQDGNQLLNEIKSYNSVAIHVRRGDYINFKGGKCLDSSYYIKAMKHLYNLKGKNLFFYIFTDDVEYCKRIFKNVANVKFIGEEAKLSDFEEFTLMTHCKNLIIGNSSFSWWAAYLASCKDKAVIAPVVDMWTEDFYLPEWIKIKADLQ 4
Bs2FT MKIVHISSGLGNQMFQYALYKKLSLIQDNVFLDTITSYQLYPNQHNGYELEKVFTIKPRHASKELTYNLSDLDNSVTSRIRRKLIGSKKSMYIEHKEFEYDPNLFYQENIYIKGYWQNYDYFKDIENELKNDFTFQRALDEKNNNLAIKINNENSISIHVRRGDYYLNRKNQEKFGDIANLEYYSKAISYIKERIDNPKFYIFSDNVEWVKQNLNSLEEAVYIDYNVGNDSYKDMQLMSLCKHNIIANSSFSWWGAFLNKNMEKIVIAPGKWINMKGVKKVNLFPKDWIIY 5
Bm2FT_4 MIIVRVIGGLGNQMFQYALYKSLENEGKEVKLDLTGFGDYDLHNGYELNKIFNINENVATKDEINKLIKLPDNKVLSMIKRKFFSSTINYYSQDQFKYLSEIFQLDNVYLDGYWQSEKYFQGIKEVIRKEFKFKGEPNPKNIEMVKLMRGSNSVSIHFRRGDYISNPDAYKVHGGITTIHYYENAVKEIKSKVKEPKFFIFSDDIKWVKENFKLEDAFFIDWNTGSESYRDIELMSNCKHNIIANSTFSWWGAWLNKNKNKIVIAPNQWFNTIDTEDVIPDTWQCINTF 6
Bt2FT MNEIHVLLTGRLGNQLFQYAFARSLQKQYGGRIVCNTFDLDHRSEKSKVADQKFSYAMGDFKLDENVALEDAALPWYADFSSPLIKPVKKLFPRRYFDFMARRGYLMWQRTDYMPIPKLECEDVFAWGWWQDIRYFQDVQTELSDEVVPVTDPLPENQYIYNAASGEESVCISIRCGNYFNPTVKKLLYVCTPEYFRNAVESITKRLTHPKFIVFTDDVDWVKENIRFESAYPQYEFLYERGSDTVEEKIRMMTLCKHFIISNSTFSWWAQFLSKSENKIVIAPDRWFVDGRRIGLYMHGWTLIPAGQ 7
Fp2FT MIYVEMHGRLGNQMFQYAAARALQEKNNQPIMLSFRKVIGANTEGTAGWENSLKYFNVKPCEYYMGKKSLVTEYPVEYRLLCYAYALSYKPLMNNMNRWYEYQVKCCRFLDRFGIRWIANGYYDFHYNGLKNYLLNGSFESPKYFDSIRDKLLEEFTPREEERKENKRLYEQIRKRNSVCLSVRHFQLTGKQADMYDVCSLEYYQTAIRKMCELIENPLFVVFSDDIEWVKNTIDLSRVEVVYETPGNPVWEKLRLMYSCKNFIIPNSTFAWWAQYLSRNPDKYVLCPAKWFNNNFESPLIASQWVRIDREGNIVNE 8
Gs2FT MKIVKVIGGLGNQMFQYAFYRNLKAKFQEVKLDITAFETYKLHNGYELERVFDIKPEYATKKEIYPLTTNRNSKISKIKRRIFGGKETEYIEKDLKFDPEVFKVTGDVYFEGYWQTEKYFKEIEDLIRKDFQFKNPLTNKNLELSNKIKNENSVSIHVRRGDYYTSKKAERKHGNIATIEYYQKAVRKITEFVDNPVFYIFSDDIPWVKENLKLENEVIYVDWNKGLDSYIDMQLMSICKHNIIANSTFSWWGAWLNQNKNKIVIAPSRWINNKRLDTSDVIPKEWIKI 9
Lg2FT MLYVEMDGRCGNQLFHYAVARYIQLAIGNKEKLCLNFNKIFEKKDENNGWVDYLKDFKTVPYSYYSKSGTILKNESNFIQKIAIGLKAIQIKSLTKKSRQEQADKAEVGQRTLNKLGVYWVREGVNQIYPYKNNKILVSGICESNFIYEIQEQLQKELIPVTPVSSLNKSLLEKIDNCNSVCISVRRGDFFNNKNAKKYGVCSPEYYIRAKKYFDKKRLENTVYFCFSDDIEWCKENLKFTDKNVIFVSQEMPVYETLRLMSHCKHFILSNSTFSWWGQFLSEYKDKIVVSPARWNNDGYDTNLIDKNWILIDA 10
Ll2FT MIYVEIRGNLGNQLFIYATAKKIQKLTGQKIQLNTTTLNKYFPNYKFGLSEFIMEDPDCFIESYKKLPWFTNEYLLPIKIFKKILNKTPKINKILSDFFFKAFEKKGYFIWRGETFKKFSLGNHKNYYLSGFWQSEDYFYDIRDELLEIITPINSIRECNFELLNLIRNSESICVSIRRGDYVDNPKISAIYNVCDINYFIESVNEIKKNVVNVKVICFSDDVEWVKKNIKFDCETHYETYGNSLSEKVQLMSSCKHFVLSNSSFSWWTEFLSIRGGITIAPKNWYADEREADIYRKNWIYLEDKTEEE 11
Ls2FT MEEIHTLLTGRLGNQLFQYAFARNLQKQYGGQIYCDVYELEHRMSKVADEKFSYAMSGFKLDAGVIREDQAFPWYADFSNPVIKPIKKAMPRKYFELMARRGYLMWQRSDYMPIPVLDTQRVFASGWWQDIRYLQNVQEELSDEIVPITNPLQENRYIYDAAHDRDSVCISIRCGNYFNPTVKKLLYVCNPQYFHDSVKRISQMLAHPKFIVFTDDVSWVKEHLKFEDTYPQFEFLYERGCDTAEEKIRMMAMCNNFIISNSTFSWWAQFLSKNKEKIVIAPDKWFVDGRKIGLYMDGWTLVPAGR 12
Ri2FT MIAVKIGDGMGNQLFNYACGYAQARRDGDSLVLDISECDNSTLRDFELDKFHLKYDKKESFPNRNLGQKIYKNLRRALKYHVIKEREVYHNRDHRYDVNDIDPRVYKKKGLRNKYLYGYWQHLAYFEDYLNEITAMMTPAYEQSETVKKLQEEFKKTPTCAVHVRGGDIMGPAGAYFKHAMERMEQEKPGVRYIVFTNDMERAEEALAPVLESQKKDAVGQAENRLEFVSEMGEFSDVDEFFLMAACQNQILSNSTFSTWAAYLNQNPDKTVIMPDDLLSERMRQKNWIILK 13
비교예 1. 종래의 α-1,2-푸코오스 전이효소의 준비
helicobactor pyori 유래의 2FT (FutC)는 2FT 효소 중 활성이 가장 높아 여러 문헌에서 2FL 생산을 위해 사용하고 있으므로 대조군으로 선정하였다.
Microbiol Res. 2019 May;222:35-42 논문 Search for bacterial α1,2-fucosyltransferases for whole-cell biosynthesis of 2'-fucosyllactose in recombinant Escherichia coli.에서 대장균을 이용하여 Thermosynechococcus elongates 유래의 2FT 반응성을 확인하였으며, 이를 대조군으로 선정하였다.
WO 2015/175801 문헌에서 Akkermansia muciniphila 유래의 2FT 반응성을 확인하지 못하였지만, 생산성을 재검토 차 대조군으로 선정하였다.
선별된 대조군 효소 목록 및 정보를 표 3에 나타냈다.
이름 공여체 accession #
Te2FT Thermosynechococcus elongatus WP_011056838.1
Fut C
(Hp2FT)
helicobactor pyori WP_080473865.1
Am2FT_1 Akkermansia muciniphila WP_081429121.1
실시예 2. 대장균용 발현 플라스미드 클로닝
실시예 1에서 선별된 효소와 비교예 1의 대조군 효소의 대장균에서의 활성을 확인하기 위해 효소 발현 플라스미드에 클로닝을 진행하였다.
구체적으로, 실시예 1에서 선별된 효소 서열의 코돈을 대장균에 최적화하고자 코돈 최적화 프로그램 (http://genomes.urv.es/OPTIMIZER/)에 서열 입력 후, Escherichia_coli 를 선택하여 guided random 코돈 최적화 검색을 수행하였다. 확인된 효소 서열을 합성하였고, 조건에 맞추어 표 5의 제시된 프라이머을 통해 PCR를 진행하여 합성 유전자를 증폭하였다. pET24ma의 플라스미드 증폭의 경우, 합성 유전자의 stop codon의 서열이 TAG 혹은 TAA인지에 맞추어 TAG_PET24ma_F 혹은 TAA_PET24ma_F PCR 프라이머를 경우에 따라 사용하였다. 각 효소에 따른 프라이머 서열 정보 및 이름을 표 4에 나타냈다.
명명 프라이머 서열 (5’→ 3’) 서열번호
Te2FT_F catatgATTATCGTTCATCTGTG 31
Te2FT_R CTCGAGTCACAGAACAATCCACC 32
Bt2FT_F catatgAACGAAATCCACGTGCT 33
Bt2FT_R CTCGAGTCACTGGCCAGCCGGAATC 34
Bm2FT_F catatgAAAATTGTTCAGATTTCT 35
Bm2FT_R CTCGAGTCAGTAAACGATCCAACCT 36
Lg2FT_F catatgCTGTACGTTGAAATGGACG 37
Lg2FT_R CTCGAGTTACGCGTCGATCAGGATC 38
Ls2FT_F catatgGAAGAGATTCACACCCTG 39
Ls2FT_R CTCGAGCTAACGGCCGGCAGGTAC 40
Ll2FT_F catatgTCTAAAAACATTTATGTAC 41
Ll2FT_R CTCGAGTTAGATTTTGATCCAGTTGT 42
Am2FT_1_F aagaaggagatatacatatgATGGCTGGACATTCTTGCG 43
Am2FT_1_R tggtggtggtggtgctcgagTTAAATGCGCAGCCATGAGC 44
Am2FT_2_F aagaaggagatatacatatgATGAACATGGAACGTAAGA 45
Am2FT_2_R tggtggtggtggtgctcgagTTACAGGGTCACCCAGTGCG 46
Fp2FT_F aagaaggagatatacatatgATGATTTACGTGGAAATG 47
Fp2FT_R tggtggtggtggtgctcgagTTATTCGTTAACGATGTTA 48
Ri2FT_F aagaaggagatatacatatgATGATCGCAGTTAAGATC 49
Ri2FT_R tggtggtggtggtgctcgagTTATTTCAGGATAATCCAGT 50
Bm2FT_2_F aagaaggagatatacatatgGGTTGCATTAAACGCCTGT 51
Bm2FT_2_R TGGTGGTGGTGGTGCTCGAGCTATTCCAGGTGAGTGTTCA 52
Bm2FT_3_F aagaaggagatatacatatgATCATTGTCCAGATTAAA 53
Bm2FT_3_R TGGTGGTGGTGGTGCTCGAGCTATTGAAGATCCGCTTTGAT 54
Bm2FT_4_F aagaaggagatatacatatgATCATTGTGCGTGTTATC 55
Bm2FT_4_R TGGTGGTGGTGGTGCTCGAGTTAGAACGTATTAATACACT 56
Bs2FT_F aagaaggagatatacatatgAAAATTGTAAAAGTTATC 57
Bs2FT_R TGGTGGTGGTGGTGCTCGAGTTAGTAGATGATCCAGTCTT 58
Gs2FT_F aagaaggagatatacatatgAAAATTGTAAAAGTTA 59
Gs2FT_R TGGTGGTGGTGGTGCTCGAGTTAGATTTTAATCCATTCT 60
TAG_PET24ma_F TAGctcgagcaccaccaccaccacc 61
TAA_PET24ma_F TAActcgagcaccaccaccaccacc 62
PET24ma_R catatgtatatctccttcttaaagttaaacaaaattattt 63
Te2FT, Bt2FT, Bm2FT, Lg2FT, Ls2FT, 및 Ll2FT 합성 유전자의 경우 유전자 정제 후, 각각 1uL NEB 제한효소 (Nde1/ Xho1)을 처리하여 37℃에서 3시간 보관하였다. 이후 제한 효소와 버퍼를 제거하기 위해 다시 유전자 정제 후 16℃에서 동일 제한 효소를 처리한 pET24ma 와 함께 4시간 ligation을 진행하였다. 상기 Te2FT, Bt2FT, Bm2FT, Lg2FT, Ls2FT, 및 Ll2FT 합성 유전자를 제외한 나머지 합성 유전자는 모두 Gibson assembly 방법으로 cloning을 진행하기 위해 gel prep 을 하였다.
Prep 후 nano drop으로 각각의 유전자 농도를 확인하고, vector와 insert의 비가 1:2가 되며 총 반응부피가 8uL이 되도록 2X NEBuilder® HiFi DNA Assembly Master Mix를 넣어주었다. 이후 50℃에서 1시간 동안 반응하였다. cloning 유전자를 DH10b E.coli competent cell에 transformation 한 후, Km 항생제가 들어간 plate에 도말하여 overnight으로 키웠다.
각각의 plate에 자란 colony중 5개씩을 선별하여 유전자에 해당하는 표 5 프라이머를 이용하여 colony PCR을 수행하였다. DNA gel 상에 크기에 해당하는 band를 확인한 colony를 Km 항생제가 포함된 3ml LB 배지에 접종 후, overnight 키웠다. 다음날, cell을 모아 DNA를 추출하고 스퀀싱 하였다.
실시예 3. 효소 단백질 발현 확인
대장균 내에서 cloning한 각각의 유전자가 단백질 발현하고 있는지 확인하였다. E.coli BL21(DE3) △fucl△fucK::AprR lacZ△m15 ::PlacUV5 competent cell에 실험할 각각의 2FT vector들과 GDP-fuc를 생산하는 효소를 지닌 pCDFm::PT7manC-manB와 PT7-gmd-wcaG 를 함께 transformation 하였다. Km와 Amp 항생제가 들어간 plate에 도말하여 selection 하였다.
colony를 Km와 Amp 항생제가 포함된 3mL 배지에 접종 후, seed를 overnight 키웠다. 4mL LB에 200uL seed와 0.1mM IPTG를 첨가 후 30℃에서 16시간 키웠다. 4mL에서 자란 세포를 원심분리기로 모두 수거한 후 상등액을 버렸다. 500uL의 버퍼를 첨가 후 bead beater로 파쇄 후 13000 rpm에서 20분간 원심 분리하여 soluble 단백질을 수거하였다. size marker와 함께 SDS-PAGE 젤을 내렸다. 선별 효소들의 total 및 soluble 단백질 발현 SDS-PAGE 결과 (도 1의 좌측) 및 예상 단백질 크기 (도 1의 우측)를 도 1에 나타냈다. 도 1에서 ManB, ManC, Gmd, 및 WcaG는 추가적으로 넣어준 pCDFm::PT7manC-manB + PT7-gmd-wcaG 플라스미드에서 발현된 단백질이다.
도 1에 나타난 바와 같이, SDS-PAGE를 통하여 비교한 단백질 중 8개의 효소 Bm2FT, Te2FT, Hp2FT, Am2FT_2, Fp2FT, Ri2FT, Bm2FT_2, 및 Bm2FT_3에서 과발현을 확인하였다.
실시예 4. 시험관을 이용한 반응 분석 최적화
250mL 플라스크에서 총 50 mL culture를 통해 2FL 생산성을 확인하였다. 효소 후보군이 많은 경우 확실한 비교분석을 위해 3반복 이상의 실험 재연이 필수적이나, 기존 50 mL 배양 조건의 경우 분석시 필요량 (1mL) 이상의 노동력이 드는 단점이 있다. 다양한 후보군의 빠른 반응 경향성 파악을 위해 10mL 시험관에서 4mL 배양을 통해 효소 반응 확인 방법을 확립하고자 한다.
Hp2FT, Bm2FT, Bt2FT 가 클로닝된 plasmid를 각각 pCDFm::PT7manC-manB + PT7-gmd-wcaG plasmid와 함께 E.coli 균주에 transformation 하였다. 각각의 plate 에서 3개의 colony를 접종하여 overnight seed culture를 진행하였다.
seed 중 500uL는 50mL flask culture 에 induction 하였다. OD600 이 ~0.8 정도가 될 때 0.1mM IPTG와 10mM lactose를 넣어 준 후 20h 후 HPLC로 분석하였다.
test tube 반응의 경우, seed 200 uL를 0.1mM IPTG와 10mM lactose가 첨가된 4mL 배지에 첨가하였다. test tube 반응은 flask의 OD를 확인하는 step을 생략할 수 있다.
20h 후 HPLC 로 분석하여 플라스크 반응 (도 2의 상단) 및 시험관 반응 (도 2의 하단)의 2FL 생산 경향성을 도 2에 나타냈다. 도 2에 나타난 바와 같이, 정립한 시험관 반응 조건이 플라스크 조건보다는 2FL의 생산적이 1/3 수준이나, 그 반응 경향성은 동일하여 다양한 효소를 한번에 비교 분석하는 것에 적합함을 확인하였다.
실시예 5. HPLC 분석을 통한 2FL 생산성 비교
실시예 1에서 선별된 효소 및 대조군 효소 3종의 반응성을 비교하였다.
비교할 플라스미드를 각각 E.coli 에 transformation 후, 37℃에서 키웠다. 각각의 plate 에서 3개의 colony를 접종하여 overnight seed culture를 진행하였다. seed 200 uL를 0.1mM IPTG와 10mM lactose가 첨가된 4mL 배지에 첨가하였다. 20h 후 HPLC 로 분석하였다. E.coli host를 이용한 다양한 2FT의 2FL 생산 활성 비교 결과를 도 3에 나타냈다.
도 3에 나타난 바와 같이, FutC 대비 동등 또는 높은 활성 효소 3개를 포함하여, 2FL 생산 효소 총 5개를 확보하였다: Am2FT_2, Bm2FT, Bm2FT_2, Bm2FT_3, 및 Bs2FT 의 경우 FutC 대비 각각 122%, 207%, 84%, 100%, 21% 2FL 생산 양상을 HPLC 분석을 통해 확인하였다. 2FL 생산 효소 5종의 서열을 표 5에 나타냈다.
명명 서열 서열번호
Am2FT_2 MNMERKTGLMNKKYVSPCFLPGMRLGNIMFTLAAACAHARTVGVECRVPWAYNDASLMLRSRLGGWVLPSTPCGTNEPPSWQEPSFAYCPVPSRIRTGGLRGYFQSARYFEGQEAFIRALFAPLTAEKEPGAVGIHIRLGDYRRLRDKHRILDPGFLRRAAGHLSSGKNRLVLFSDEPDEAAEMLARVPAFGRFALEIDRGAPCESLRRMTAMEELVMSCSSFSWWGAWLGNTRKVIVPRDWFVGGVEDYRDIYLPHWVTL 1
Bm2FT MKIVQISSGLGNQLFQYALYKRLSMNNNDVFLDVETSYQLNKNQHNGYEIERIFSIQPSHATKGMIDELADVDNRLINRLRRKLFGPKNSMYTETKEFSYDCEVFTKDGIYIKGYWQNYNYFKEIEDDLKNELVFKKALDLKNSHLINQMNKEISVSIHVRRGDYYLNKEYENKFGNIADLDYYLKAINFIKKEVDDPKFYVFSDDIKWAKENLNLTDNVTYVEHNKGSDSYKDMRLMTCCKHNIIANSTFSWWGAFLNENKNKIVIAPGKWINVEGVGGINLFPEGWIVY 2
Bm2FT_2 MGCIKRLFLYEYGGRCFLVIVKIKGGFGNQLFTYASAYAISQELQQNLIMDKVIYDLDYFRKFELPSLSLKYDQMLISKFVPNTKVKTLIYKVLRRLKLKGFTEVHEKKEFSFDENIYNLSGDIYLDGYWQNYRYFHKYYKDLSEMFVPRETPRKEVTDYITSLRGVNSVAMHVRRGDYKTFNGGKCLSLDYYIKAMEYFNSNDVQFYVFTDDIDFCEKNLPNSENINYVSRSEKLTDIEEFFIMKECKNFIIANSSFSWWAAYLSEQKADSLIVAPVVDMWKRDFYPDEWVALNTHLE 3
Bm2FT_3 MIIVQIKGGLGNQLFSYASAYGIARENETELIIDRYIYDTSYSLRKYMLDFFPEIDEALLLKYIPKKNKISQIMYKLIRKSKLKYKYKAQLFLEEEEFKFTRISTQNENLYLNGYWQSYVYFDKYRNDIIKKFTPLVSFNQDGNQLLNEIKSYNSVAIHVRRGDYINFKGGKCLDSSYYIKAMKHLYNLKGKNLFFYIFTDDVEYCKRIFKNVANVKFIGEEAKLSDFEEFTLMTHCKNLIIGNSSFSWWAAYLASCKDKAVIAPVVDMWTEDFYLPEWIKIKADLQ 4
Bs2FT MKIVHISSGLGNQMFQYALYKKLSLIQDNVFLDTITSYQLYPNQHNGYELEKVFTIKPRHASKELTYNLSDLDNSVTSRIRRKLIGSKKSMYIEHKEFEYDPNLFYQENIYIKGYWQNYDYFKDIENELKNDFTFQRALDEKNNNLAIKINNENSISIHVRRGDYYLNRKNQEKFGDIANLEYYSKAISYIKERIDNPKFYIFSDNVEWVKQNLNSLEEAVYIDYNVGNDSYKDMQLMSLCKHNIIANSSFSWWGAFLNKNMEKIVIAPGKWINMKGVKKVNLFPKDWIIY 5
실시예 6. Corynebacterium 균주 내 푸코실 전이 효소를 이용한 2’-FL 생산성 비교
플라스미드 제작 및 2'-푸코실락토오스 (fucosyllactose, 2'-FL)의 생산을 위해 코리네박테리움 글루타미쿰 (C. glutamicum) ATCC 13032를 이용하였다. pMBC 플라스미드를 구축하기 위해 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032의 genomic DNA로부터 두 개의 DNA primer를 이용한 PCR 반응을 통해 manB 유전자를 증폭한 후, pCES208 플라스미드에 이를 삽입시켰다. 구축된 상기 플라스미드에 다시 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032의 genomic DNA로부터 두 개의 DNA primer를 이용한 PCR 반응을 통해 manC 유전자를 증폭하였고, 플라스미드에 이를 후 삽입시킴으로써 pMBC를 구축하였다. 또한, pEGW 플라스미드를 구축하기 위해 대장균인 K-12 의 genomic DNA로부터 두 개의 DNA primer 를 이용한 PCR반응을 통해 gmd-wcaG 유전자 클러스터를 증폭한 후, 플라스미드에 삽입시킴으로써 pEGW를 구축하였다. 또한, 서열번호 2의 푸코실 전이 효소를 도입하였다.
C.glutamicum host를 이용시, Bm2FT와 GDP-fucose cassette를 도입한 균주를 10 mM lactose가 첨가된 4 mL 배지에 첨가하여 2FL을 생산하였으며, 배양 60시간이 지나면 약 120 mg/L의 2FL이 생산되었다. pMBC와 pEGW 공벡터를 넣어준 균주의 경우 2FL를 생산하지 않았다.
실시예 8. Bacillus megaterium 균주 내 푸코실 전이 효소를 통한 2’-FL 생산성 비교
E.coli host 사용시 FutC 대비 가장 더 많은 활성이 증대된 Am2FT_2, Bm2FT 효소를 각각 B. megaterium 14581 (한국 미생물 보존 센터 (KCCM) 기탁번호 40441) host 내에 형질전환 하여 각각의 2FL 생산성을 비교하였다. 반응성의 정확한 확인을 위해 대조군으로는 2FT 유전자가 들어가지 않은 공벡터 p1525가 삽입된 b. megaterium 14581를 사용하였다. 도 4는 B.megaterium 14581 host를 이용한 다양한 2FL생산성 비교 결과를 나타낸 도면이다.
도 4에 나타난 바와 같이, B. megaterium host를 이용시, p1525 공백터를 넣어준 균주의 경우 2FL를 생산 하지 않았으며, Bm2FT와 FutC 경우, 반응 64시간이 지나면 각각 평균 40.3 mg/L 및 18.8 mg/L의 2FL이 생산 되었다. 이를 통해 Bm2FT 효소가 FutC 대비 2.1배 이상의 생산성 증대를 보임을 확인하였다.
B. megaterium 균주를 사용하여서 모유 올리고당을 생산한 연구가 현재까지 보고된 바 없으며, B. megaterium 14581 host는 biosafety level 1 균주로 인체에 무해하므로, 본 발명에서 확립된 Bm2FT를 GRAS 균주에 도입하여 기존 효소 (FucT) 대비 2배 이상의 생산성을 확립하였다.
실시예 9. Bacillus subtilis 균주 내 푸코실 전이 효소를 통한 2’-FL 생산성 비교
E.coli host 사용시 FutC 대비 가장 많은 활성이 증대한 Bm2FT 효소를 Bacillus subtilis host 내에 형질전환 하여 각각의 2’-FL 생산성을 비교하였다. 반응성의 정확한 확인을 위해 대조군으로 2’-FT 유전자가 클로닝되지 않은 공벡터 pBE-S 가 형질전환 된 B. subtilis 168 (기탁번호: (ATCC® 23857™))을 사용하였다. 사용한 벡터는 B.subtilis secretion용인 pBE-S이며 상시 발현이 가능한 aprE promoter가 장착되어 있다. cloning 시에는 secretion 기능이 필요 없기 때문에 2’-FT 클로닝 진행할 때 aprE signal peptide는 제거하였다.
B.subtilis 168은 GDP-fucose를 생산하는 4종의 효소를 갖고 있지 않기 때문에, 하나의 vector에 4종의 효소를 encoding하는 유전자를 한번에 클로닝하였다. 4종 유전자 (manB, manC, gmd, wcaG)는 E.coli 유래로 PCR을 통해 유전자 증폭하여 확보하였다. 4종의 유전자를 한번에 클로닝하기 위해 사용한 vector는 p3STOP1623-2RBShp로서 E.coli-Bacillus shuttle vector이다. 본 vector는 B.megaterium 뿐만 아니라 B.subtilis에서도 사용할 수 있다. 본 Vector의 특징으로는 2개의 RBS를 갖고 있어 다중 유전자의 클로닝에 매우 용이하다. 본 vector의 promoter는 xylose inducible promoter인 PxylA이다. GDP-fucose cassette는 도 5와 같은 유전자 순서로 제작하였다.
Vector와 4종의 유전자는 앞서 Bm2FT cloning 때와 동일하게 Gibson assembly 방법을 적용하여 진행하였다. 단지 Vector의 크기가 약 6.6 Kb로 한번에 PCR하기에는 시퀀스 에러가 발생할 수 있으므로 Vector 중간에 primer를 제작하여 반으로 나누어 PCR을 진행하였다. 총 6개의 PCR fragments를 정제하기 위해 PCR mixture 전부를 전기영동하여 gel extraction 하였다. 정제하여 확보한 PCR fragments는 DNA 농도를 측정하고, 농도와 사이즈에 맞게 함량을 조절하여 Gibson assembly를 진행하였다. 그 후, 동일하게 E.coli에 형질전환 하여 single colony를 확보한 후, 콜로니 PCR을 통해 plasmid의 삽입을 확인하였다. PCR 확인된 콜로니는 LB에 배양하여 plasmid 추출 후, 시퀀스 분석을 통해 4종의 유전자가 제대로 cloning 된 것을 확인하였다. 시퀀스까지 확인된 plasmid는 생산성 확인을 위해 B.subtilis 168에 형질전환 하였다. E.coli에 형질전환하여 확인한 방법과 동일하게 콜로니 PCR로 plasmid의 삽입을 확인한 후, 2’-FL 생산성 비교를 위해 배양을 진행하였다.
도 6에 나타난 바와 같이, B.subtilis host를 이용시, pBE-S와 p3STOP1623-2RBShp 공벡터를 넣어준 균주의 경우 2FL를 생산하지 않았으며, Bm2FT와 GDP-fucose cassette를 도입한 균주의 경우, 반응 63시간이 지나면 약 150 mg/L의 2FL이 생산되었다. 이는 종래의 FutC의 평균 2FL 생산량 18.8 mg/L 대비 약 7배 이상으로 생산성이 향상된 결과이다.
실시예 10. Saccaromyces Cerevisiae 균주 내 푸코실 전이 효소를 통한 2’-FL 생산성 비교
플라스미드 제작 및 2'-푸코실락토오스 (fucosyllactose, 2'-FL)의 생산을 위해 사카로마이세스 세레비지애 (S. cerevisiae) CEN.PK2-1c를 이용하였다. 사카로마이세스 세레비지애에 없는 GDP-L-Fucose 유전자를 대장균인 K-12에서 클로닝하여 사용하였다. pRSK426 플라스미드를 구축하기 위해 대장균인 K-12 의 genomic DNA로부터 두 개의 DNA primer 를 이용한 PCR반응을 통해 gmd-wcaG 유전자 클러스터를 증폭한 후, 플라스미드에 삽입시킴으로써 pRSK426를 구축하였다. E.coli host 사용시 FutC 대비 가장 더 많은 활성이 증대된 Am2FT_2, Bm2FT 효소를 각각 S. cerevisiae host 내에 형질전환 하여 각각의 2FL 생산성을 비교하였다. 3종의 재조합 플라스미드는 사카로마이세스 세레비지애 (S. cerevisiae) CEN.PK2-1c 균주로 형질전환 후 G418 항생제가 포함된 YPD 고체 배지에서 선별하였다. 선별된 균주들은 G418 항생제가 포함된 50mL 액체 생산 배지에서 2일 배양한 뒤, 2FL 생산성을 HPLC 분석하여 측정하였다. S. cerevisiae CEN.PK2-1c host를 이용시, pRSK426 공벡터를 넣어준 균주의 경우 2FL를 생산하지 않았으며, Bm2FT, Am2FT_2와 GDP-fucose cassette를 도입한 균주의 경우, 배양 48시간이 지나면 각각 80 mg/L, 40 mg/L의 2FL이 생산되었다.
<110> SAMYANG CORPORATION <120> Recombinant microorganism expressing fucosyltransferase and Method of producing 2'-fucolsylactose using thereof <130> DPP20205427KR <160> 63 <170> koPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 261 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Am2FT_2 <400> 1 Met Asn Met Glu Arg Lys Thr Gly Leu Met Asn Lys Lys Tyr Val Ser 1 5 10 15 Pro Cys Phe Leu Pro Gly Met Arg Leu Gly Asn Ile Met Phe Thr Leu 20 25 30 Ala Ala Ala Cys Ala His Ala Arg Thr Val Gly Val Glu Cys Arg Val 35 40 45 Pro Trp Ala Tyr Asn Asp Ala Ser Leu Met Leu Arg Ser Arg Leu Gly 50 55 60 Gly Trp Val Leu Pro Ser Thr Pro Cys Gly Thr Asn Glu Pro Pro Ser 65 70 75 80 Trp Gln Glu Pro Ser Phe Ala Tyr Cys Pro Val Pro Ser Arg Ile Arg 85 90 95 Thr Gly Gly Leu Arg Gly Tyr Phe Gln Ser Ala Arg Tyr Phe Glu Gly 100 105 110 Gln Glu Ala Phe Ile Arg Ala Leu Phe Ala Pro Leu Thr Ala Glu Lys 115 120 125 Glu Pro Gly Ala Val Gly Ile His Ile Arg Leu Gly Asp Tyr Arg Arg 130 135 140 Leu Arg Asp Lys His Arg Ile Leu Asp Pro Gly Phe Leu Arg Arg Ala 145 150 155 160 Ala Gly His Leu Ser Ser Gly Lys Asn Arg Leu Val Leu Phe Ser Asp 165 170 175 Glu Pro Asp Glu Ala Ala Glu Met Leu Ala Arg Val Pro Ala Phe Gly 180 185 190 Arg Phe Ala Leu Glu Ile Asp Arg Gly Ala Pro Cys Glu Ser Leu Arg 195 200 205 Arg Met Thr Ala Met Glu Glu Leu Val Met Ser Cys Ser Ser Phe Ser 210 215 220 Trp Trp Gly Ala Trp Leu Gly Asn Thr Arg Lys Val Ile Val Pro Arg 225 230 235 240 Asp Trp Phe Val Gly Gly Val Glu Asp Tyr Arg Asp Ile Tyr Leu Pro 245 250 255 His Trp Val Thr Leu 260 <210> 2 <211> 291 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Bm2FT <400> 2 Met Lys Ile Val Gln Ile Ser Ser Gly Leu Gly Asn Gln Leu Phe Gln 1 5 10 15 Tyr Ala Leu Tyr Lys Arg Leu Ser Met Asn Asn Asn Asp Val Phe Leu 20 25 30 Asp Val Glu Thr Ser Tyr Gln Leu Asn Lys Asn Gln His Asn Gly Tyr 35 40 45 Glu Ile Glu Arg Ile Phe Ser Ile Gln Pro Ser His Ala Thr Lys Gly 50 55 60 Met Ile Asp Glu Leu Ala Asp Val Asp Asn Arg Leu Ile Asn Arg Leu 65 70 75 80 Arg Arg Lys Leu Phe Gly Pro Lys Asn Ser Met Tyr Thr Glu Thr Lys 85 90 95 Glu Phe Ser Tyr Asp Cys Glu Val Phe Thr Lys Asp Gly Ile Tyr Ile 100 105 110 Lys Gly Tyr Trp Gln Asn Tyr Asn Tyr Phe Lys Glu Ile Glu Asp Asp 115 120 125 Leu Lys Asn Glu Leu Val Phe Lys Lys Ala Leu Asp Leu Lys Asn Ser 130 135 140 His Leu Ile Asn Gln Met Asn Lys Glu Ile Ser Val Ser Ile His Val 145 150 155 160 Arg Arg Gly Asp Tyr Tyr Leu Asn Lys Glu Tyr Glu Asn Lys Phe Gly 165 170 175 Asn Ile Ala Asp Leu Asp Tyr Tyr Leu Lys Ala Ile Asn Phe Ile Lys 180 185 190 Lys Glu Val Asp Asp Pro Lys Phe Tyr Val Phe Ser Asp Asp Ile Lys 195 200 205 Trp Ala Lys Glu Asn Leu Asn Leu Thr Asp Asn Val Thr Tyr Val Glu 210 215 220 His Asn Lys Gly Ser Asp Ser Tyr Lys Asp Met Arg Leu Met Thr Cys 225 230 235 240 Cys Lys His Asn Ile Ile Ala Asn Ser Thr Phe Ser Trp Trp Gly Ala 245 250 255 Phe Leu Asn Glu Asn Lys Asn Lys Ile Val Ile Ala Pro Gly Lys Trp 260 265 270 Ile Asn Val Glu Gly Val Gly Gly Ile Asn Leu Phe Pro Glu Gly Trp 275 280 285 Ile Val Tyr 290 <210> 3 <211> 299 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Bm2FT_2 <400> 3 Met Gly Cys Ile Lys Arg Leu Phe Leu Tyr Glu Tyr Gly Gly Arg Cys 1 5 10 15 Phe Leu Val Ile Val Lys Ile Lys Gly Gly Phe Gly Asn Gln Leu Phe 20 25 30 Thr Tyr Ala Ser Ala Tyr Ala Ile Ser Gln Glu Leu Gln Gln Asn Leu 35 40 45 Ile Met Asp Lys Val Ile Tyr Asp Leu Asp Tyr Phe Arg Lys Phe Glu 50 55 60 Leu Pro Ser Leu Ser Leu Lys Tyr Asp Gln Met Leu Ile Ser Lys Phe 65 70 75 80 Val Pro Asn Thr Lys Val Lys Thr Leu Ile Tyr Lys Val Leu Arg Arg 85 90 95 Leu Lys Leu Lys Gly Phe Thr Glu Val His Glu Lys Lys Glu Phe Ser 100 105 110 Phe Asp Glu Asn Ile Tyr Asn Leu Ser Gly Asp Ile Tyr Leu Asp Gly 115 120 125 Tyr Trp Gln Asn Tyr Arg Tyr Phe His Lys Tyr Tyr Lys Asp Leu Ser 130 135 140 Glu Met Phe Val Pro Arg Glu Thr Pro Arg Lys Glu Val Thr Asp Tyr 145 150 155 160 Ile Thr Ser Leu Arg Gly Val Asn Ser Val Ala Met His Val Arg Arg 165 170 175 Gly Asp Tyr Lys Thr Phe Asn Gly Gly Lys Cys Leu Ser Leu Asp Tyr 180 185 190 Tyr Ile Lys Ala Met Glu Tyr Phe Asn Ser Asn Asp Val Gln Phe Tyr 195 200 205 Val Phe Thr Asp Asp Ile Asp Phe Cys Glu Lys Asn Leu Pro Asn Ser 210 215 220 Glu Asn Ile Asn Tyr Val Ser Arg Ser Glu Lys Leu Thr Asp Ile Glu 225 230 235 240 Glu Phe Phe Ile Met Lys Glu Cys Lys Asn Phe Ile Ile Ala Asn Ser 245 250 255 Ser Phe Ser Trp Trp Ala Ala Tyr Leu Ser Glu Gln Lys Ala Asp Ser 260 265 270 Leu Ile Val Ala Pro Val Val Asp Met Trp Lys Arg Asp Phe Tyr Pro 275 280 285 Asp Glu Trp Val Ala Leu Asn Thr His Leu Glu 290 295 <210> 4 <211> 287 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Bm2FT_3 <400> 4 Met Ile Ile Val Gln Ile Lys Gly Gly Leu Gly Asn Gln Leu Phe Ser 1 5 10 15 Tyr Ala Ser Ala Tyr Gly Ile Ala Arg Glu Asn Glu Thr Glu Leu Ile 20 25 30 Ile Asp Arg Tyr Ile Tyr Asp Thr Ser Tyr Ser Leu Arg Lys Tyr Met 35 40 45 Leu Asp Phe Phe Pro Glu Ile Asp Glu Ala Leu Leu Leu Lys Tyr Ile 50 55 60 Pro Lys Lys Asn Lys Ile Ser Gln Ile Met Tyr Lys Leu Ile Arg Lys 65 70 75 80 Ser Lys Leu Lys Tyr Lys Tyr Lys Ala Gln Leu Phe Leu Glu Glu Glu 85 90 95 Glu Phe Lys Phe Thr Arg Ile Ser Thr Gln Asn Glu Asn Leu Tyr Leu 100 105 110 Asn Gly Tyr Trp Gln Ser Tyr Val Tyr Phe Asp Lys Tyr Arg Asn Asp 115 120 125 Ile Ile Lys Lys Phe Thr Pro Leu Val Ser Phe Asn Gln Asp Gly Asn 130 135 140 Gln Leu Leu Asn Glu Ile Lys Ser Tyr Asn Ser Val Ala Ile His Val 145 150 155 160 Arg Arg Gly Asp Tyr Ile Asn Phe Lys Gly Gly Lys Cys Leu Asp Ser 165 170 175 Ser Tyr Tyr Ile Lys Ala Met Lys His Leu Tyr Asn Leu Lys Gly Lys 180 185 190 Asn Leu Phe Phe Tyr Ile Phe Thr Asp Asp Val Glu Tyr Cys Lys Arg 195 200 205 Ile Phe Lys Asn Val Ala Asn Val Lys Phe Ile Gly Glu Glu Ala Lys 210 215 220 Leu Ser Asp Phe Glu Glu Phe Thr Leu Met Thr His Cys Lys Asn Leu 225 230 235 240 Ile Ile Gly Asn Ser Ser Phe Ser Trp Trp Ala Ala Tyr Leu Ala Ser 245 250 255 Cys Lys Asp Lys Ala Val Ile Ala Pro Val Val Asp Met Trp Thr Glu 260 265 270 Asp Phe Tyr Leu Pro Glu Trp Ile Lys Ile Lys Ala Asp Leu Gln 275 280 285 <210> 5 <211> 291 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Bs2FT <400> 5 Met Lys Ile Val His Ile Ser Ser Gly Leu Gly Asn Gln Met Phe Gln 1 5 10 15 Tyr Ala Leu Tyr Lys Lys Leu Ser Leu Ile Gln Asp Asn Val Phe Leu 20 25 30 Asp Thr Ile Thr Ser Tyr Gln Leu Tyr Pro Asn Gln His Asn Gly Tyr 35 40 45 Glu Leu Glu Lys Val Phe Thr Ile Lys Pro Arg His Ala Ser Lys Glu 50 55 60 Leu Thr Tyr Asn Leu Ser Asp Leu Asp Asn Ser Val Thr Ser Arg Ile 65 70 75 80 Arg Arg Lys Leu Ile Gly Ser Lys Lys Ser Met Tyr Ile Glu His Lys 85 90 95 Glu Phe Glu Tyr Asp Pro Asn Leu Phe Tyr Gln Glu Asn Ile Tyr Ile 100 105 110 Lys Gly Tyr Trp Gln Asn Tyr Asp Tyr Phe Lys Asp Ile Glu Asn Glu 115 120 125 Leu Lys Asn Asp Phe Thr Phe Gln Arg Ala Leu Asp Glu Lys Asn Asn 130 135 140 Asn Leu Ala Ile Lys Ile Asn Asn Glu Asn Ser Ile Ser Ile His Val 145 150 155 160 Arg Arg Gly Asp Tyr Tyr Leu Asn Arg Lys Asn Gln Glu Lys Phe Gly 165 170 175 Asp Ile Ala Asn Leu Glu Tyr Tyr Ser Lys Ala Ile Ser Tyr Ile Lys 180 185 190 Glu Arg Ile Asp Asn Pro Lys Phe Tyr Ile Phe Ser Asp Asn Val Glu 195 200 205 Trp Val Lys Gln Asn Leu Asn Ser Leu Glu Glu Ala Val Tyr Ile Asp 210 215 220 Tyr Asn Val Gly Asn Asp Ser Tyr Lys Asp Met Gln Leu Met Ser Leu 225 230 235 240 Cys Lys His Asn Ile Ile Ala Asn Ser Ser Phe Ser Trp Trp Gly Ala 245 250 255 Phe Leu Asn Lys Asn Met Glu Lys Ile Val Ile Ala Pro Gly Lys Trp 260 265 270 Ile Asn Met Lys Gly Val Lys Lys Val Asn Leu Phe Pro Lys Asp Trp 275 280 285 Ile Ile Tyr 290 <210> 6 <211> 289 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Bm2FT_4 <400> 6 Met Ile Ile Val Arg Val Ile Gly Gly Leu Gly Asn Gln Met Phe Gln 1 5 10 15 Tyr Ala Leu Tyr Lys Ser Leu Glu Asn Glu Gly Lys Glu Val Lys Leu 20 25 30 Asp Leu Thr Gly Phe Gly Asp Tyr Asp Leu His Asn Gly Tyr Glu Leu 35 40 45 Asn Lys Ile Phe Asn Ile Asn Glu Asn Val Ala Thr Lys Asp Glu Ile 50 55 60 Asn Lys Leu Ile Lys Leu Pro Asp Asn Lys Val Leu Ser Met Ile Lys 65 70 75 80 Arg Lys Phe Phe Ser Ser Thr Ile Asn Tyr Tyr Ser 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Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Bt2FT <400> 7 Met Asn Glu Ile His Val Leu Leu Thr Gly Arg Leu Gly Asn Gln Leu 1 5 10 15 Phe Gln Tyr Ala Phe Ala Arg Ser Leu Gln Lys Gln Tyr Gly Gly Arg 20 25 30 Ile Val Cys Asn Thr Phe Asp Leu Asp His Arg Ser Glu Lys Ser Lys 35 40 45 Val Ala Asp Gln Lys Phe Ser Tyr Ala Met Gly Asp Phe Lys Leu Asp 50 55 60 Glu Asn Val Ala Leu Glu Asp Ala Ala Leu Pro Trp Tyr Ala Asp Phe 65 70 75 80 Ser Ser Pro Leu Ile Lys Pro Val Lys Lys Leu Phe Pro Arg Arg Tyr 85 90 95 Phe Asp Phe Met Ala Arg Arg Gly Tyr Leu Met Trp Gln Arg Thr Asp 100 105 110 Tyr Met Pro Ile Pro Lys Leu Glu Cys Glu Asp Val Phe Ala Trp Gly 115 120 125 Trp Trp Gln Asp Ile Arg Tyr Phe Gln Asp Val Gln Thr Glu Leu Ser 130 135 140 Asp Glu Val Val Pro Val Thr Asp Pro Leu Pro Glu Asn Gln Tyr Ile 145 150 155 160 Tyr Asn Ala Ala Ser Gly Glu Glu Ser Val Cys Ile Ser Ile Arg Cys 165 170 175 Gly Asn Tyr Phe Asn Pro Thr Val Lys Lys Leu Leu Tyr Val Cys Thr 180 185 190 Pro Glu Tyr Phe Arg Asn Ala Val Glu Ser Ile Thr Lys Arg Leu Thr 195 200 205 His Pro Lys Phe Ile Val Phe Thr Asp Asp Val Asp Trp Val Lys Glu 210 215 220 Asn Ile Arg Phe Glu Ser Ala Tyr Pro Gln Tyr Glu Phe Leu Tyr Glu 225 230 235 240 Arg Gly Ser Asp Thr Val Glu Glu Lys Ile Arg Met Met Thr Leu Cys 245 250 255 Lys His Phe Ile Ile Ser Asn Ser Thr Phe Ser Trp Trp Ala Gln Phe 260 265 270 Leu Ser Lys Ser Glu Asn Lys Ile Val Ile Ala Pro Asp Arg Trp Phe 275 280 285 Val Asp Gly Arg Arg Ile Gly Leu Tyr Met His Gly Trp Thr Leu Ile 290 295 300 Pro Ala Gly Gln 305 <210> 8 <211> 317 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Fp2FT <400> 8 Met Ile Tyr Val Glu Met His Gly Arg Leu Gly Asn Gln Met Phe Gln 1 5 10 15 Tyr Ala Ala Ala Arg Ala Leu Gln Glu Lys Asn Asn Gln Pro Ile Met 20 25 30 Leu Ser Phe Arg Lys Val Ile Gly Ala Asn Thr Glu Gly Thr Ala Gly 35 40 45 Trp Glu Asn Ser Leu Lys Tyr Phe Asn Val Lys Pro Cys Glu Tyr Tyr 50 55 60 Met Gly Lys Lys Ser Leu Val Thr Glu Tyr Pro Val Glu Tyr Arg Leu 65 70 75 80 Leu Cys Tyr 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Asn Asn Phe Glu Ser Pro Leu Ile Ala Ser Gln 290 295 300 Trp Val Arg Ile Asp Arg Glu Gly Asn Ile Val Asn Glu 305 310 315 <210> 9 <211> 289 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Gs2FT <400> 9 Met Lys Ile Val Lys Val Ile Gly Gly Leu Gly Asn Gln Met Phe Gln 1 5 10 15 Tyr Ala Phe Tyr Arg Asn Leu Lys Ala Lys Phe Gln Glu Val Lys Leu 20 25 30 Asp Ile Thr Ala Phe Glu Thr Tyr Lys Leu His Asn Gly Tyr Glu Leu 35 40 45 Glu Arg Val Phe Asp Ile Lys Pro Glu Tyr Ala Thr Lys Lys Glu Ile 50 55 60 Tyr Pro Leu Thr Thr Asn Arg Asn Ser Lys Ile Ser Lys Ile Lys Arg 65 70 75 80 Arg Ile Phe Gly Gly Lys Glu Thr Glu Tyr Ile Glu Lys Asp Leu Lys 85 90 95 Phe Asp Pro Glu Val Phe Lys Val Thr Gly Asp Val Tyr Phe Glu Gly 100 105 110 Tyr Trp Gln Thr Glu Lys Tyr Phe Lys Glu Ile Glu Asp Leu Ile Arg 115 120 125 Lys Asp Phe Gln Phe Lys Asn Pro Leu Thr Asn Lys Asn Leu Glu Leu 130 135 140 Ser Asn Lys Ile Lys Asn Glu Asn Ser Val Ser Ile His Val Arg Arg 145 150 155 160 Gly Asp Tyr Tyr Thr Ser Lys Lys Ala Glu Arg Lys His Gly Asn Ile 165 170 175 Ala Thr Ile Glu Tyr Tyr Gln Lys Ala Val Arg Lys Ile Thr Glu Phe 180 185 190 Val Asp Asn Pro Val Phe Tyr Ile Phe Ser Asp Asp Ile Pro Trp Val 195 200 205 Lys Glu Asn Leu Lys Leu Glu Asn Glu Val Ile Tyr Val Asp Trp Asn 210 215 220 Lys Gly Leu Asp Ser Tyr Ile Asp Met Gln Leu Met Ser Ile Cys Lys 225 230 235 240 His Asn Ile Ile Ala Asn Ser Thr Phe Ser Trp Trp Gly Ala Trp Leu 245 250 255 Asn Gln Asn Lys Asn Lys Ile Val Ile Ala Pro Ser Arg Trp Ile Asn 260 265 270 Asn Lys Arg Leu Asp Thr Ser Asp Val Ile Pro Lys Glu Trp Ile Lys 275 280 285 Ile <210> 10 <211> 314 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of Lg2FT <400> 10 Met Leu Tyr Val Glu Met Asp Gly Arg Cys Gly Asn Gln Leu Phe His 1 5 10 15 Tyr Ala Val Ala Arg Tyr Ile Gln Leu Ala Ile Gly Asn Lys Glu Lys 20 25 30 Leu Cys Leu Asn Phe Asn Lys Ile Phe Glu Lys Lys Asp Glu Asn Asn 35 40 45 Gly Trp Val Asp Tyr Leu Lys Asp Phe Lys Thr Val Pro Tyr Ser Tyr 50 55 60 Tyr Ser Lys 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catcatgttc acgctggcgg ccgcctgtgc ccacgcccgt 120 accgtagggg tggagtgccg ggtgccctgg gcttacaatg acgcttccct gatgctgcgc 180 tcccggctcg gcggctgggt gctcccttct acgccgtgcg gcaccaatga acctccatcc 240 tggcaggaac cttcctttgc ctattgtccg gttccctccc gcatccggac gggcgggctt 300 cgcggctact tccagagcgc acggtatttt gaagggcagg aagcgttcat ccgggcgctt 360 ttcgcgcctc tcaccgcgga gaaggagccc ggcgccgttg gcattcacat ccggcttggg 420 gactacaggc gcctccgtga caagcaccgc attctggacc ctggtttcct gcggagggcc 480 gcagggcatt tatcatccgg gaagaaccgt ctggtgctgt tcagcgatga gccggacgag 540 gcggcggaga tgcttgcgcg cgtgccggca ttcggacgct ttgcgctgga aatcgaccgc 600 ggcgctccgt gcgaatccct ccgccgcatg acggcgatgg aggaactcgt catgtcgtgt 660 tcttcctttt cctggtgggg cgcgtggctg ggaaataccc ggaaggtcat cgttccgcgc 720 gactggtttg tcggcggtgt ggaagactac cgggatattt acctgcccca ttgggtaaca 780 ctgtaa 786 <210> 15 <211> 876 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding Bm2FT <400> 15 atgaaaattg ttcagatttc ttctggtctg ggtaaccagc tgttccagta cgccctgtac 60 aaacgtctgt ctatgaacaa caacgatgtg ttcctggatg tggagacgtc ttatcaactg 120 aacaaaaatc agcacaatgg ttacgaaatt gaacgtattt tttccatcca gccatcccat 180 gctaccaagg gtatgatcga tgaactggcc gatgtagaca accgtctgat caaccgctta 240 cgtcgtaaac tgtttggtcc gaaaaactct atgtataccg aaaccaaaga gttcagctac 300 gattgtgaag ttttcaccaa agatggtatc tatatcaagg gctactggca gaactataac 360 tattttaaag agattgaaga cgatctgaaa aatgaactgg tctttaaaaa agctctggat 420 ctgaaaaatt cgcacctgat caatcagatg aataaagaaa ttagcgtaag catccacgta 480 cgccgcggcg attattacct gaacaaggag tacgaaaaca aatttggcaa cattgcggat 540 cttgattatt atctgaaagc gattaacttc atcaaaaaag aagtagacga tcccaaattt 600 tacgttttct ccgacgatat taaatgggct aaagaaaatc tgaacctgac ggataacgta 660 acttatgttg aacacaacaa agggagcgac tcttacaaag acatgcgtct gatgacctgc 720 tgtaaacata acatcatcgc caactctaca ttctcttggt ggggcgcgtt tcttaacgag 780 aacaagaaca aaatcgtaat cgcgccgggc aaatggatca acgttgaagg cgtcggtggc 840 atcaacctgt tccctgaagg ttggatcgtt tactga 876 <210> 16 <211> 900 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding Bm2FT_2 <400> 16 atgggttgca taaaaagact attcttatat gaatacggag gacgatgttt tttggtaatt 60 gttaaaataa aaggtggatt tggtaaccaa ttgtttacat acgctagtgc ttatgcaata 120 tctcaagaac tgcaacaaaa cttaattatg gataaggtaa tatatgatct agattacttt 180 agaaaatttg aattaccttc attatcgttg aagtatgatc aaatgttaat tagtaagttt 240 gtacctaata ctaaggttaa aactttaatt tataaagttt taaggaggtt aaaattaaaa 300 ggatttacag aggtacatga aaaaaaggaa ttttcttttg atgaaaatat ttacaatttg 360 tcaggtgata tttatttaga tggttattgg cagaattata gatatttcca taaatattat 420 aaagatctgt cggaaatgtt tgtaccaaga gaaactccta gaaaagaagt aactgattat 480 atcacgtctt tacggggagt taattctgtt gctatgcatg ttaggagagg agattataaa 540 acttttaacg gaggaaaatg tttgtcttta gattattata ttaaggctat ggaatatttc 600 aattcaaatg atgtacaatt ttatgtattt acagatgata ttgatttttg tgagaaaaac 660 ctcccgaata gtgaaaatat taattatgtg tcaagaagcg agaaacttac agatattgaa 720 gaattcttta ttatgaaaga atgtaaaaat tttataattg ctaatagtag tttttcgtgg 780 tgggctgctt atttaagtga acagaaagca gatagtttaa ttgtagcccc tgttgttgac 840 atgtggaaaa gagattttta tccagatgag tgggtggcat tgaatacaca tttagaatag 900 900 <210> 17 <211> 864 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding Bm2FT_3 <400> 17 atgataattg ttcaaatcaa gggcggatta ggtaatcaac ttttttcgta tgcttctgct 60 tatggaattg caagagagaa tgaaacagaa ttaattattg atcgatatat atatgataca 120 agctactctt taagaaaata tatgttggat tttttccctg agatcgatga agcactactt 180 ctaaagtata tacctaaaaa aaataaaatt tcacaaatta tgtataaatt gattagaaaa 240 tctaagttga aatataagta caaagctcaa ttatttttag aagaagagga atttaagttt 300 actagaatta gtacccagaa tgaaaatttg tatttaaatg gttattggca aagttatgtg 360 tactttgata aatatcgtaa tgacattatt aaaaaattca cccctttagt aagctttaat 420 caagatggaa atcaacttct taacgaaatt aaaagttata attcagtggc tatccatgtc 480 aggagagggg attatattaa ttttaaaggt ggaaagtgtt tagatagttc ttattatata 540 aaggcaatga agcatttata caatttaaaa ggaaaaaatt tgttttttta tatttttaca 600 gatgatgtgg aatattgtaa aagaattttt aaaaacgtag ctaatgttaa atttataggt 660 gaggaagcaa aattgagtga ttttgaagag tttactttga tgactcattg taaaaacctc 720 ataataggta acagctcatt ttcttggtgg gcagcttact tagcctcttg taaagataaa 780 gctgtaatag ctccagtggt agatatgtgg actgaagatt tctatctacc tgaatggata 840 aaaattaaag cggatttaca atag 864 <210> 18 <211> 876 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding Bs2FT <400> 18 atgaaaatag tacacataag tagcggttta ggaaatcaaa tgtttcaata tgctctatat 60 aaaaaactgt ccttaattca agataatgtt tttttggata caattaccag ttatcagttg 120 tatcctaatc aacataatgg atatgagtta gagaaggtat ttacaattaa accaaggcat 180 gcaagtaaag aattaacata caatttatca gacttagata attcagtaac atctcgcatt 240 cgtaggaaat taattggaag taaaaagagc atgtatatag aacataaaga atttgaatac 300 gatcctaatt tattttatca agaaaatata tatataaaag gttactggca gaattatgat 360 tattttaaag atatagaaaa tgaattaaag aatgatttta cttttcaaag agctttagat 420 gagaaaaata ataatttagc tattaaaatt aacaatgaga attcaatatc aattcatgta 480 agacgtggtg attattactt aaacagaaag aatcaagaga agtttggaga tatcgctaat 540 ttggaatact attcaaaggc aattagctat attaaagaaa gaatagacaa tccaaagttt 600 tatatctttt cagataatgt tgagtgggta aagcaaaatc ttaattcgtt agaggaagct 660 gtatatatag attataacgt gggaaatgat agttacaagg atatgcaact aatgagtctt 720 tgtaaacata atattattgc taatagttct tttagttggt ggggagcatt tttgaataag 780 aatatggaga aaatagttat tgcacctggg aagtggatta atatgaaagg tgtaaaaaaa 840 gtcaatcttt tcccaaagga ttggataatt tattaa 876 <210> 19 <211> 462 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of GTP-mannose-1-phosphate guanylyltransferase <400> 19 Met Lys Leu Val Leu Leu Ser Gly Gly Ser Gly Lys Arg Leu Trp Pro 1 5 10 15 Leu Ser Asn Asp Thr Arg Ser Lys Gln Phe Leu Lys Val Leu Glu Gly 20 25 30 Arg Asp Gly Gln Lys Glu Ser Met Val Gln Arg Val Trp Ser Gln Ile 35 40 45 Glu Ala Val Gly Leu Asn Glu Ser Thr Val Ile Ala Thr Ser Lys Leu 50 55 60 Gln Arg Asp Met Ile Thr Gly Gln Val Gly Thr Asp Ile Pro Leu Ile 65 70 75 80 Ile Glu Pro Glu Arg Arg Asp Thr Phe Pro Ala Ile Ala Leu Ala Ala 85 90 95 Ser 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gaaaaggcaa gtcatattgt cgcgcttccg tatgatgggt actggaaaga tcttggtaca 780 tggaatacgt taacggaaga aatggcgaca tctcaaattg gaaaaggtgt attaacggac 840 gactcagcta atacgcattt agtgaatgaa ttagatattc cggttacggt attaggcgta 900 aaagatgtag ttgttgccgc tagtccagat gggatcttag ttgcggataa agcatctagt 960 cctaagatta aagaaattat tggcgactgg aactaccctc caatgtatga agaacgtctt 1020 tggggctggt cacgcgtgtt agattatgca aagtatgatg aagaaactga aatggtgaca 1080 aaacgtattc atatttcaaa aggaaagaac tcgacgtatc actatcataa tttacgtgat 1140 gaagtatgga cgattgtacg tggagaagga gagcttgcgc ttgatgacta cattcgccgc 1200 gtaaaagcag gggatattat tcacttgccg gctggcaaaa agcacggaat tcatgcgtta 1260 accgaccttg aatttattga agtacaaacg ggaaaagtga tttcaaatga agatagtatt 1320 cgccttattt atgactggaa tgatgtgatc aagcaattcc aatcatcaag accgcaggtg 1380 attttataa 1389 <210> 24 <211> 1080 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding phosphomannomurase <400> 24 ttgaaaacaa ttgcctatta catttcagac tacggatatg gccacgcgac tagaagcacg 60 gccattattc gtcaattatt aaagcaaaat gaagaaatag aaattattat ttgtcattca 120 tttgcgattg agtttctcag acaatctttt agatatgaac gtcgtgtgag gtttcgagag 180 attttaacgg atgtcggcta cgtgctaaaa gaaaattcac tagaaccaga cgctgatttg 240 ttgaatcgtc aagttgcttc ttatgtatca agctttcata cgaagcttat gtatgagaag 300 cactttatga aagtagccaa cgtttcattc gtgatttcgg atatttctcc gttagggatc 360 gcaggtgcct atctattaaa attgccttct ttaggaatat caaatttcac ttggtttaca 420 gcatacgaag ggttaattgg agagctatcg ctggaatttt tagaaaaacg ttataagcag 480 atgacgtatc agttttcgct agcatgtagt gatgagccac attggggtat caaagaaaat 540 caaagctttg gtttttattc aagagaaata aacgattctg aagtacagcg tattcgtaaa 600 gagattgatc ctgaaggtga gagttacatc atctacttcg gtctgggtat gaaagtagat 660 attggaacgt tgtcggactt gcctatttgg caaagtccaa actgcaagtt tatcgtttca 720 tcgaatgttg atgttactca tcccaatgtt tataaaattc ctcaagatga aacagaaacg 780 cagcactatg tagcagcagc tgatcttggt ttaacaaaag caggctgggg cacgattagt 840 gaagcggttt gcgctggtgt gccgctgttg attacaaatc gcagcagcat gaaagaagat 900 cgtcatacga ttgattattt agttcgtcat cagctatgcg acttaataga gtggaaagag 960 ttagaaggtt tagtagtaac tccttcgctt attgagacat gcaggcggca gcaaatcaat 1020 cgctataaaa atgaagcgat gcatatcgcc gaagaaatca ataaaaaaat aaacagttag 1080 1080 <210> 25 <211> 942 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding GDP-L-fucose synthase <400> 25 atgaacaaaa attcgaaaat ttacgtagct ggtcatagag gtctcgtcgg ttcagctatc 60 gtacgaaaac tacaagaaaa aggctatagc aatctagtgt atcgcacaag cgctgagcta 120 gatttaagag acaagccgac agtagacgca ttctttgctg aagaaaagcc agaatttgtt 180 ttcttagcag ccgctaaagt aggtggtatt gtggcaaaca atgaatatcc agcggaattt 240 attcacgata acttattgat tcaatcaaat attattgatg cagcatatcg caatgatgta 300 gagaaactat tattcctagg aagtacatgt atttatccaa aattagcgcc tcagccatta 360 aaagaagaat acttactaac aggtgagctg gagccaacaa acgaaccgta tgcaattgct 420 aaaattgctg gaatcaaaat gtgtgaatcc tataaccgtc agtacggaac aaaatatatc 480 tcggcaatgc ctactaacct ttacggtcca aacgacaatt ttgaccttca tacatcacac 540 gttcttcctg cactgcttcg taagttccat gaagcgaaag aaagcaatgc gccgtttgtt 600 gaaatgtggg gaacaggcac accaaaacgt gaatttctat attcagatga cctagcagat 660 gcgtgcgtat tcttaatgaa tacatatgaa ggcaatgaaa tcgttaatat cggtgtggga 720 gaagatatta cgattaaaga acttggcgaa aaagtaaaag cagttgttgg ttatgaagga 780 aatattcagt ttgatacgtc aaaaccagac ggaacgcctc gtaaactagt agacgtaaca 840 aaattgaaca gtcttggctg gaaagcagaa acagctttag aagacggtct tcaaaaagcg 900 tatcagtggt ttttagataa cgaactagct gcagcaaaat aa 942 <210> 26 <211> 1080 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding GDP-D-mannose-4,6-dehydratase <400> 26 atgaaaacag cattaattac aggtgtaaca ggacaagatg gatcatactt agcagaactt 60 ttactagaaa aaggctatga agtgcacgga ctaattcgcc gcagctcttc ttataaccaa 120 gagcgtctag aagatctttt aacagaagaa gcagcgagcg cattattaaa caactcaaac 180 ttccaccttc actatggtga cgtaacagat gcattaaatg ttactcgtat tattggtgac 240 attcagccag atgaaattta caatctagct gcacagtcac atgtacgtgt gtcttttgat 300 atgcctggat atacattaga tgttgatgca aaaggtacgt taaacattct tgaagctgta 360 cgtattttag ggttaacaga taaaacacgt gtgtaccaag cttctacatc tgaactgtac 420 ggaaaagttc aagaagtacc acaaaaggaa acaacacctt tctaccctcg ttctccatat 480 ggcgtagcga aaatttacgg cttttggatt acaaagaact accgtgaatc ttatagcatg 540 tttgcagtaa acggtatttt atttaaccat gaatcagagc gccgcggcga aacgttcgta 600 acacgtaaaa ttacgcttgc tgcttcacgt atcgcgcaag gcaagcagca aaaattaacg 660 cttggaaact tagactcttt acgtgactgg ggttacgcaa aagactatgt agaatgcatg 720 tggttaattc ttcaacacga taaacctgaa gattttgtta ttgcgactgg tgaaatgcac 780 tcagtacgtg aatttgtaca gcttgcattc aaacatacag gcattgaaat tgagtggagc 840 ggtgaaggtc tagaagaaaa aggaacaaat aaagcaacgg gtgaagtgat cgtagaaatc 900 gatcctaagt tcttccgtcc tgcagaagtg gatcaattgt taggtgatcc aactaaagcc 960 aagactttat taaagtggaa ccccactaag acttcgtttg aagaattagt tcgcattatg 1020 gtggaagcgg acatgaagaa ggttgaaagc gaagagaaga ttaaggtgat gtttgattaa 1080 1080 <210> 27 <211> 587 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of lactose permease Lac12 <400> 27 Met Ala Asp His Ser Ser Ser Ser Ser Ser Leu Gln Lys Lys Pro Ile 1 5 10 15 Asn Thr Ile Glu His Lys Asp Thr Leu Gly Asn Asp Arg Asp His Lys 20 25 30 Glu Ala Leu Asn Ser Asp Asn Asp Asn Thr Ser Gly Leu Lys Ile Asn 35 40 45 Gly Val Pro Ile Glu Asp Ala Arg Glu Glu Val Leu Leu Pro Gly Tyr 50 55 60 Leu Ser Lys Gln Tyr Tyr Lys Leu Tyr Gly Leu Cys Phe Ile Thr Tyr 65 70 75 80 Leu Cys Ala Thr Met Gln Gly Tyr Asp Gly Ala Leu Met Gly Ser Ile 85 90 95 Tyr Thr Glu Asp Ala Tyr Leu Lys Tyr Tyr His Leu Asp Ile Asn Ser 100 105 110 Ser Ser Gly Thr Gly Leu Val Phe Ser Ile Phe Asn Val Gly Gln Ile 115 120 125 Cys Gly Ala Phe Phe Val Pro Leu Met Asp Trp Lys Gly Arg Lys Pro 130 135 140 Ala Ile Leu Ile Gly Cys Leu Gly Val Val Ile Gly Ala Ile Ile Ser 145 150 155 160 Ser Leu Thr Thr Thr Lys Ser Ala Leu Ile Gly Gly Arg Trp Phe Val 165 170 175 Ala Phe Phe Ala Thr Ile Ala Asn Ala Ala Ala Pro Thr Tyr Cys Ala 180 185 190 Glu Val Ala Pro Ala His Leu Arg Gly Lys Val Ala Gly Leu Tyr Asn 195 200 205 Thr Leu Trp Ser Val Gly Ser Ile Val Ala Ala Phe Ser Thr Tyr Gly 210 215 220 Thr Asn Lys Asn Phe Pro Asn Ser Ser Lys Ala Phe Lys Ile Pro Leu 225 230 235 240 Tyr Leu Gln Met Met Phe Pro Gly Leu Val Cys Ile Phe Gly Trp Leu 245 250 255 Ile Pro Glu Ser Pro Arg Trp Leu Val Gly Val Gly Arg Glu Glu Glu 260 265 270 Ala Arg Glu Phe Ile Ile Lys Tyr His Leu Asn Gly Asp Arg Thr His 275 280 285 Pro Leu Leu Asp Met Glu Met Ala Glu Ile Ile Glu Ser Phe His Gly 290 295 300 Thr Asp Leu Ser Asn Pro Leu Glu Met Leu Asp Val Arg Ser Leu Phe 305 310 315 320 Arg Thr Arg Ser Asp Arg Tyr Arg Ala Met Leu Val Ile Leu Met Ala 325 330 335 Trp Phe Gly Gln Phe Ser Gly Asn Asn Val Cys Ser Tyr Tyr Leu Pro 340 345 350 Thr Met Leu Arg Asn Val Gly Met Lys Ser Val Ser Leu Asn Val Leu 355 360 365 Met Asn Gly Val Tyr Ser Ile Val Thr Trp Ile Ser Ser Ile Cys Gly 370 375 380 Ala Phe Phe Ile Asp Lys Ile Gly Arg Arg Glu Gly Phe Leu Gly Ser 385 390 395 400 Ile Ser Gly Ala Ala Leu Ala Leu Thr Gly Leu Ser Ile Cys Thr Ala 405 410 415 Arg Tyr Glu Lys Thr Lys Lys Lys Ser Ala Ser Asn Gly Ala Leu Val 420 425 430 Phe Ile Tyr Leu Phe Gly Gly Ile Phe Ser Phe Ala Phe Thr Pro Met 435 440 445 Gln Ser Met Tyr Ser Thr Glu Val Ser Thr Asn Leu Thr Arg Ser Lys 450 455 460 Ala Gln Leu Leu Asn Phe Val Val Ser Gly Val Ala Gln Phe Val Asn 465 470 475 480 Gln Phe Ala Thr Pro Lys Ala Met Lys Asn Ile Lys Tyr Trp Phe Tyr 485 490 495 Val Phe Tyr Val Phe Phe Asp Ile Phe Glu Phe Ile Val Ile Tyr Phe 500 505 510 Phe Phe Val Glu Thr Lys Gly Arg Ser Leu Glu Glu Leu Glu Val Val 515 520 525 Phe Glu Ala Pro Asn Pro Arg Lys Ala Ser Val Asp Gln Ala Phe Leu 530 535 540 Ala Gln Val Arg Ala Thr Leu Val Gln Arg Asn Asp Val Arg Val Ala 545 550 555 560 Asn Ala Gln Asn Leu Lys Glu Gln Glu Pro Leu Lys Ser Asp Ala Asp 565 570 575 His Val Glu Lys Leu Ser Glu Ala Glu Ser Val 580 585 <210> 28 <211> 413 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Amino acid sequence of lactose permease LacY <400> 28 Met Lys Ser Ser Lys Ser Leu Tyr Trp Lys Leu Ser Ala Tyr Phe Phe 1 5 10 15 Phe Phe Phe Phe Thr Trp Ser Ser Ser Tyr Ser Leu Phe Ser Ile Trp 20 25 30 Leu Gly Gln Glu Ile Lys Leu Asn Gly Ser Ala Thr Gly Leu Ile Phe 35 40 45 Ser Val Asn Ala Ile Phe Ala Leu Cys Met Gln Pro Leu Tyr Gly Tyr 50 55 60 Ile Ser Asp Arg Ile Gly Leu Lys Lys His Val Leu Phe Phe Ile Ser 65 70 75 80 Cys Leu Leu Val Phe Val Gly Pro Phe Tyr Ile Phe Val Tyr Gly Pro 85 90 95 Leu Leu Gln Tyr Asn Val Val Ile Gly Ala Ile Ile Gly Gly Leu Tyr 100 105 110 Leu Gly Val Ala Phe Leu Ala Gly Ile Gly Ala Ile Glu Thr Tyr Ile 115 120 125 Glu Lys Val Ser Arg Lys Tyr Lys Phe Glu Tyr Gly Lys Ser Arg Met 130 135 140 Trp Gly Ser Leu Gly Trp Ala Ala Ala Thr Phe Phe Ala Gly Gln Leu 145 150 155 160 Phe Asn Ile Asn Pro His Ile Asn Phe Trp Val Ala Ser Val Ser Ala 165 170 175 Val Ile Leu Val Ala Ile Ile Phe Ser Val Lys Val Glu Met Ser Ser 180 185 190 Tyr Glu Met Glu Lys Ala Glu Ser Val Thr Leu Arg Asp Val Gly Ser 195 200 205 Leu Phe Leu Leu Lys Glu Phe Trp Phe Phe Met Ile Tyr Val Val Gly 210 215 220 Val Thr Cys Val Tyr Gly Val Tyr Asp Gln Gln Phe Pro Ile Tyr Tyr 225 230 235 240 Ala Ser Leu Phe Pro Thr Glu Ser Ile Gly Asn Gln Val Phe Gly Tyr 245 250 255 Leu Asn Ser Phe Gln Val Phe Leu Glu Ala Gly Met Met Phe Ala Ala 260 265 270 Pro Phe Ile Val Asn Lys Ile Gly Ala Lys Asn Ser Leu Ile Leu Ala 275 280 285 Gly Phe Leu Met Gly Phe Arg Ile Ile Gly Ser Gly Leu Val Val Gly 290 295 300 Pro Ile Gly Ile Ser Ser Met Lys Leu Ile His Ala Leu Glu Leu Pro 305 310 315 320 Ile Met Leu Ile Ala Ile Phe Lys Tyr Leu Ala Ala Asn Phe Asp Thr 325 330 335 Arg Leu Ser Ser Ile Leu Tyr Leu Val Gly Phe Gln Phe Ala Ser Gln 340 345 350 Ile Gly Ala Ser Val Leu Ser Pro Ile Val Gly Gly Leu Tyr Asp Ser 355 360 365 Val Gly Phe Ser Arg Thr Tyr Leu Ile Met Gly Gly Met Val Leu Val 370 375 380 Phe Asn Val Ile Ser Met Phe Thr Leu Leu Asn Ser Lys Lys His Arg 385 390 395 400 Phe Ile Arg Lys Asp Val Gln Glu Asn Thr Gln Ile Ile 405 410 <210> 29 <211> 1764 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding lactose permease Lac12 <400> 29 atggctgatc actcttcttc ttcttcttct ttacaaaaaa aaccaattaa cacaattgaa 60 cacaaagata cattaggtaa cgatcgtgat cacaaagaag ctttaaactc tgataacgat 120 aacacatctg gtttaaaaat taacggtgta ccaattgaag atgctcgtga agaagtatta 180 ttaccaggtt acttatctaa acaatactac aaattatacg gtttatgttt cattacatac 240 ttatgtgcta caatgcaagg ttacgatggt gctttaatgg gttctattta cacagaagat 300 gcttacttaa aatactacca cttagatatt aactcttctt ctggtacagg tttagtattc 360 tctattttca acgtaggtca aatttgtggt gctttcttcg taccattaat ggattggaaa 420 ggtcgtaaac cagctatttt aattggttgt ttaggtgtag taattggtgc tattatttct 480 tctttaacaa caacaaaatc tgctttaatt ggtggtcgtt ggttcgtagc tttcttcgct 540 acaattgcta acgctgctgc tccaacatac tgtgctgaag tagctccagc tcacttacgt 600 ggtaaagtag ctggtttata caacacatta tggtctgtag gttctattgt agctgctttc 660 tctacatacg gtacaaacaa aaacttccca aactcttcta aagctttcaa aattccatta 720 tacttacaaa tgatgttccc aggtttagta tgtattttcg gttggttaat tccagaatct 780 ccacgttggt tagtaggtgt aggtcgtgaa gaagaagctc gtgaattcat tattaaatac 840 cacttaaacg gtgatcgtac acacccatta ttagatatgg aaatggctga aattattgaa 900 tctttccacg gtacagattt atctaaccca ttagaaatgt tagatgtacg ttctttattc 960 cgtacacgtt ctgatcgtta ccgtgctatg ttagtaattt taatggcttg gttcggtcaa 1020 ttctctggta acaacgtatg ttcttactac ttaccaacaa tgttacgtaa cgtaggtatg 1080 aaatctgtat ctttaaacgt attaatgaac ggtgtatact ctattgtaac atggatttct 1140 tctatttgtg gtgctttctt cattgataaa attggtcgtc gtgaaggttt cttaggttct 1200 atttctggtg ctgctttagc tttaacaggt ttatctattt gtacagctcg ttacgaaaaa 1260 acaaaaaaaa aatctgcttc taacggtgct ttagtattca tttacttatt cggtggtatt 1320 ttctctttcg ctttcacacc aatgcaatct atgtactcta cagaagtatc tacaaactta 1380 acacgttcta aagctcaatt attaaacttc gtagtatctg gtgtagctca attcgtaaac 1440 caattcgcta caccaaaagc tatgaaaaac attaaatact ggttctacgt attctacgta 1500 ttcttcgata ttttcgaatt cattgtaatt tacttcttct tcgtagaaac aaaaggtcgt 1560 tctttagaag aattagaagt agtattcgaa gctccaaacc cacgtaaagc ttctgtagat 1620 caagctttct tagctcaagt acgtgctaca ttagtacaac gtaacgatgt acgtgtagct 1680 aacgctcaaa acttaaaaga acaagaacca ttaaaatctg atgctgatca cgtagaaaaa 1740 ttatctgaag ctgaatctgt ataa 1764 <210> 30 <211> 1242 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Nucleotide sequence encoding lactose permease LacY <400> 30 atgaaaagtt caaaaagttt atattggaag ctgagtgcat attttttctt cttctttttt 60 acgtggtcgt ccagctactc tttattttct atctggttag ggcaagagat taagttgaac 120 ggatcagcaa caggcttaat cttttctgtg aacgctatct ttgctttgtg tatgcagcct 180 ttgtacggat atatatctga caggataggt ttaaagaaac acgttttatt ttttattagc 240 tgtcttttag tgtttgtagg accattttat atttttgttt atggaccttt gcttcaatac 300 aatgtggtga taggggctat tattggaggc ttatatttag gagtagcgtt tttggcgggc 360 atcggagcga ttgaaacata catagagaaa gtcagccgaa aatataaatt tgagtatgga 420 aaatctagaa tgtgggggtc attaggctgg gctgcagcta cgttttttgc aggacaatta 480 tttaatatta atcctcacat taatttttgg gtggcatctg tttcagcggt tatcctagtc 540 gctattattt tttctgtaaa agtagaaatg agcagttatg aaatggaaaa agctgaatcc 600 gtcacgctaa gagatgtagg tagtttattt ttattgaagg aattttggtt ttttatgatt 660 tatgttgttg gtgttacatg cgtatatggg gtatacgatc agcaatttcc tatctattat 720 gcatctttgt ttcctactga atcgataggt aaccaagtat ttggctactt aaattcgttt 780 caagtatttt tagaagctgg aatgatgttc gcagcaccgt ttattgtaaa taagatcggt 840 gcaaaaaata gtttaatttt agcaggattt ctaatgggat ttcgtattat tgggtcaggg 900 cttgttgttg gtccaatcgg aatatcttca atgaaactca ttcatgcatt agaacttcct 960 attatgctca ttgccatctt taaatatttg gcagctaact ttgacacgcg cctatcttcc 1020 atcctttatt tggttggatt ccaatttgct tcgcaaatag gtgcttcagt tctttcaccc 1080 atagtgggag gattatatga tagcgtaggt ttttcccgta cctatttaat tatgggaggt 1140 atggttttgg tatttaacgt tatttcgatg tttacactac taaactctaa aaaacataga 1200 tttataagaa aagatgtaca agaaaacacg cagattatat ag 1242 <210> 31 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Te2FT_F <400> 31 catatgatta tcgttcatct gtg 23 <210> 32 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Te2FT_R <400> 32 ctcgagtcac agaacaatcc acc 23 <210> 33 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bt2FT_F <400> 33 catatgaacg aaatccacgt gct 23 <210> 34 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bt2FT_1_R <400> 34 ctcgagtcac tggccagccg gaatc 25 <210> 35 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_F <400> 35 catatgaaaa ttgttcagat ttct 24 <210> 36 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_R <400> 36 ctcgagtcag taaacgatcc aacct 25 <210> 37 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Lg2FT_F <400> 37 catatgctgt acgttgaaat ggacg 25 <210> 38 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Lg2FT_R <400> 38 ctcgagttac gcgtcgatca ggatc 25 <210> 39 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Ls2FT_F <400> 39 catatggaag agattcacac cctg 24 <210> 40 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Ls2FT_R <400> 40 ctcgagctaa cggccggcag gtac 24 <210> 41 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Ll2FT_F <400> 41 catatgtcta aaaacattta tgtac 25 <210> 42 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Ll2FT_R <400> 42 ctcgagttag attttgatcc agttgt 26 <210> 43 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Am2FT_1_F <400> 43 aagaaggaga tatacatatg atggctggac attcttgcg 39 <210> 44 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Am2FT_1_R <400> 44 tggtggtggt ggtgctcgag ttaaatgcgc agccatgagc 40 <210> 45 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Am2FT_2_F <400> 45 aagaaggaga tatacatatg atgaacatgg aacgtaaga 39 <210> 46 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Am2FT_2_R <400> 46 tggtggtggt ggtgctcgag ttacagggtc acccagtgcg 40 <210> 47 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Fp2FT_F <400> 47 aagaaggaga tatacatatg atgatttacg tggaaatg 38 <210> 48 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Fp2FT_R <400> 48 tggtggtggt ggtgctcgag ttattcgtta acgatgtta 39 <210> 49 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Ri2FT_F <400> 49 aagaaggaga tatacatatg atgatcgcag ttaagatc 38 <210> 50 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Ri2FT_R <400> 50 tggtggtggt ggtgctcgag ttatttcagg ataatccagt 40 <210> 51 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_2_F <400> 51 aagaaggaga tatacatatg ggttgcatta aacgcctgt 39 <210> 52 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_2_R <400> 52 tggtggtggt ggtgctcgag ctattccagg tgagtgttca 40 <210> 53 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_3_F <400> 53 aagaaggaga tatacatatg atcattgtcc agattaaa 38 <210> 54 <211> 41 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_3_R <400> 54 tggtggtggt ggtgctcgag ctattgaaga tccgctttga t 41 <210> 55 <211> 38 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_4_F <400> 55 aagaaggaga tatacatatg atcattgtgc gtgttatc 38 <210> 56 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer Bm2FT_4_R <400> 56 tggtggtggt ggtgctcgag 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Claims (11)

  1. 서열번호 1 내지 5로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는 α-1,2-푸코오스 전이효소 (α-1,2-fucosyltransferase)가 발현되도록 형질전환된, 재조합 미생물.
  2. 제1항에 있어서, 상기 재조합 미생물은 GRAS (Generally Recognized As Safe) 미생물인, 재조합 미생물.
  3. 제1항에 있어서, 상기 재조합 미생물은 바실러스 속 (Bacillus sp.) 미생물, 코리네박테리움 속 (Corynebacterium sp.) 미생물, 대장균 속 (Escherichia sp.) 미생물, 또는 효모 (yeast)인, 재조합 미생물.
  4. 제3항에 있어서, 상기 바실러스 속 (Bacillus sp.) 미생물은 바실러스 메가테리움 (Bacillus megaterium), 바실러스 서브틸리스 (Bacillus subtilis), 바실러스 세레우스 (Bacillus cereus), 바실러스 코아귤런스 (Bacillus coagulans), 바실러스 리체니포르미스 (Bacillus licheniformis), 또는 바실러스 스테아로테르모필루스 (Bacillus stearothermophilus)이고,
    상기 코리네박테리움 속 (Corynebacterium sp.) 미생물은 코리네박테리움 글루타미쿰 (Corynebacterium glutatamicum)이고,
    상기 대장균 속 (Escherichia sp.) 미생물은 대장균 (Escherichia coli) 이고,
    상기 효모 (yeast)는 사카로미세스 세레비시아 (Saccharomyces cerevisiae), 또는 캔디다 유틸리스 (Candida utilis)인, 재조합 미생물.
  5. 제1항에 있어서, 상기 미생물은 재조합 되기 전 2'-푸코실락토오스 생산능을 가지지 않으며, 재조합에 의해 2'-푸코실락토오스 생산능을 가지는 것인, 재조합 미생물.
  6. 제1항에 있어서, 상기 재조합 미생물은 푸코오스 합성 유전자를 발현하는 것인, 재조합 미생물.
  7. 제6항에 있어서, 상기 푸코오스 합성 유전자는 GDP-D-만노오스-4,6-데하이드라타아제 (GDP-D-mannose-4,6-dehydratase), GDP-L-푸코오스 신타아제 (GDP-L-fucose synthase), 포스포만노뮤타아제 (phosphomannomurase), 및 GTP 만노오스-1-포스페이트 구아닐릴트랜스퍼라아제 (GTP-mannose-1-phosphate guanylyltransferase)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상을 발현하는 것인, 재조합 미생물.
  8. 제1항에 있어서, 상기 재조합 미생물은 락토오스 막 수송 단백질을 발현하는 것인, 재조합 미생물.
  9. 제8항에 있어서, 상기 락토오스 막 수송 단백질은 Lac12 및/또는 LacY인, 재조합 미생물.
  10. 제1항에 있어서, 상기 재조합 미생물은 helicobactor pyori 유래의 α-1,2-푸코오스 전이효소를 포함하는 대조군 대비 2배 이상의 2’-푸코실락토오스 생산성을 가지는 것인, 재조합 미생물.
  11. 락토오스 (lactose)를 포함하는 배지에서 제1항 내지 제9항 중 어느 한 항에 따른 재조합 미생물을 배양하는 단계를 포함하는, 2’-푸코실락토오스 (2’-fucolsylactose)의 생산방법.
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