KR20190107518A

KR20190107518A - 지카 바이러스 검출용 센서 및 이의 제조방법

Info

Publication number: KR20190107518A
Application number: KR1020180028863A
Authority: KR
Inventors: 송현석; 서기완; 김혜연; 김승일; 권오석; 김경호; 김진영; 박선주
Original assignee: 한국기초과학지원연구원; 한국생명공학연구원
Priority date: 2018-03-12
Filing date: 2018-03-12
Publication date: 2019-09-20
Also published as: KR102084088B1

Abstract

본 발명의 일 측면에서 기판; 상기 기판에 배치되는 그래핀 채널층; 상기 그래핀 채널층의 양단에 이격되어 배치되는 한 쌍의 금속; 및 상기 그래핀 채널층 상에 배치되고 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 이루어진 링커층을 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서가 제공된다. 본 발명의 지카 바이러스 검출용 센서는 그래핀 채널층 표면에 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 링커층으로 도입함으로써 원치 않은 바이오 물질이 그래핀에 직접적으로 붙어 검출 신호를 보이는 비특이적 결합을 막아주는 역할을 수행할 수 있어 센서의 민감도 및 선택성이 우수한 효과가 있다.

Description

지카 바이러스 검출용 센서 및 이의 제조방법{Sensor for detecting Zika virus and preparation method thereof }

본 발명은 지카 바이러스 검출용 센서 및 이의 제조방법에 관한 것이다.

그래핀은 탄소 원자로 이루어진 탄소 동소체 중의 하나로서, 탄소의 sp² 혼성으로 이루어진 2차원의 평면 층상 구조를 갖는다. 이러한 그래핀은 기존의 탄소 소재에 비해 표면적이 매우 넓고, 화학적으로 안정하며, 기계적 안정성과 열전도도(~5,000 W/mK)가 우수하고, 가시광선에 대한 흡수량이 매우 낮아 550 nm의 파장의 빛에 대한 투과율이 97%에 이르는 등 우수한 투명성을 가지며, 탄력이 매우 강하여 물리적으로 이를 20% 신장시키더라도 전기전자적 성질이 그대로 보존되는 뛰어난 유연성을 갖는다.

또한, 그래핀은 전기적으로 반금속 성질을 가지면서도, 그 내부에서 전하가 제로 유효 질량 입자로 작용하기 때문에, 매우 높은 전기 전도도(20,000 cm²/Vs의 진성 전자 이동도)를 가지는 것으로 알려져 있다.

이러한 뛰어난 광학적, 물리적, 화학적 특성으로 인해, 2004년 노보셀로브와 게임이 이를 발견한 이후로, 그래핀은 가장 주목 받는 소재로 떠오르고 있으며, 최근에는 터치 패널, 유기발광소자, 슈퍼커패시터, 수소 발생/저장 장치, 태양 전지, 광촉매 및 바이오 센서 등에 그래핀의 응용 가능성이 논의되고 있다.

특히, 그라파이트를 기계적으로 박리하여 6각 구조의 2차원 형상의 탄소 원자로 구성된 그래핀을 트랜지스터에 이용한 경우에 전계효과(field effect) 특성이 있다는 것이 보고된 이후로, 그래핀은 종래의 실리콘과 같은 반도체 물질을 대체할 수 있는 물질로 각광받고 있다.

예를 들면, 그래핀을 10 nm 이하의 채널 폭을 갖는 나노 리본 형태로 제조하는 경우 크기 효과(size effect)로 인해 밴드갭(band gap)이 형성되는바, 이를 이용하여 상온에서도 우수한 작동 특성을 보이는 그래핀 트랜지스터를 제조할 수 있다.

이러한 그래핀 트랜지스터는 게이트의 전압에 따라 전도도가 선형적으로 증가하는 특성이 있으며, 특히 전자 수송이 탄도성을 가지므로, 전자 유효 질량이 0이 되어 전하 이동도가 매우 높은 우수한 장점이 있다.

다만, 그래핀 간에 작용하는 반데르발스힘에 따른 균일성, 분산성의 저하 또는 구조적 안정성으로 인해, 위와 같이 우수한 물성에도 불구하고 실제 적용 가능한 기술에 대한 연구가 매우 제한적이었다.

최근에는, 위와 같은 문제점들을 해결하기 위해 다양한 방법이 시도되고 있으며, 특히 관능기를 활용하여 그래핀의 표면을 개질하는 연구가 활발히 이루어지고 있다.

특히, 용액 중의 이온에 대한 트랜지스터의 안정성이나 이를 포함하는 바이오 센서의 선택성 및 민감도에 영향을 미치는 점에서, 그래핀의 표면에 대한 개질이 요구되고 있다.

이를 위해, 종래에는 그래핀의 표면과 끝 부분에 에폭시, 수산기, 카르보닐기, 또는 카르복실산기 등의 산소 기능기들을 형성시키는 것과 같이 친수성 기능기에 유기물을 공유 결합시키는 공유 기능화법이나, 파이-파이 결합, 수소 결합 또는 전하간 상호작용 등의 비공유 결합을 이용하는 비공유 기능화법 등이 이용되었다.

예를 들면, 그래핀을 기능성 단분자 또는 고분자와 공유 결합을 통해 화학적으로 그래핀의 표면을 개질하거나, 비공유 결합으로 물리적으로 개질한 후, 하이드라진(N₂H₂)이나 수소화붕소나트륨(NaBH₄)과 같은 환원제를 이용하여 환원하여 기능성이 부여된 그래핀을 제조하였다.

그러나, 그래핀의 표면에 기능기 그룹이 공유 결합을 형성하는 경우, sp² 결합이 sp³ 결합으로 변화하여 그래핀의 전기 전도도가 저하되는 문제가 있다.

또한, 이러한 공유 결합은 대부분 그래핀의 표면 끝 부분에서 형성되어 그래핀의 표면이 부분적으로만 개질되었는바, 트랜지스터 등의 성능 향상에 대한 일정한 제약으로 작용하였고, 특히, 이는 바이오 탐침의 부착량에 대한 제한으로 작용하여 이러한 그래핀 트랜지스터를 포함하는 바이오 센서의 선택성과 민감도를 소망하는 수준으로 발현시키지 못하는 한계가 있었다.

한편, 비공유 결합에 의하는 경우, 형성 방법이 비교적 간단하고, 그래핀의 표면에 발생하는 결함을 최소화시켜 그래핀의 우수한 물성이 담보되는 장점이 있으나, 물리적 또는 화학적 처리에 대한 안정성이 낮다는 문제가 있었다.

더욱이, 위와 같은 종래의 표면 개질 방법은 표면을 개질하는 단계 및 그래핀을 환원하는 단계의 다단계 공정으로 구성되었는바, 환원제의 사용이나 제거 과정과 같이 추가적인 화학 반응 단계를 필요로 하였고, 이는 그래핀 트랜지스터의 성능을 저하시키는 하나의 요인으로 작용하였으며, 이외에도 낮은 재현성, 고온 공정, 대량 생산의 부적합 등 많은 기술적 결함들이 있었다.

뿐만 아니라, 종래의 그래핀 트랜지스터를 이용하는 바이오 센서는, 성능 향상을 위해 그래핀에 대하여 도핑 처리를 실시한 이후에 바이오 탐침을 결합하는 방식으로 이분화되어 제조되었는바, 이로 인해 제조 단가가 상승하는 문제점도 있었다.

따라서, 그래핀 본연의 뛰어난 전기 전도도를 가지면서도, 이를 포함하는 바이오 센서의 선택성과 민감도가 향상되며, 추가적인 화학 반응 단계 없이 신속하게 그래핀의 표면을 개질시키고, 도핑 처리 및 바이오 탐침의 결합을 동시에 실시할 수 있는 기술에 대한 필요성이 매우 높은 실정이다.

한편, 지카 바이러스(Zika virus)는 뎅기열을 유발하는 바이러스와 동일한 플라비바이러스(Flavivirus) 속(genus)의 positive sense single strand RNA 바이러스로 이집트숲모기가 주된 감염 매개체이나 국내 서식하는 흰줄숲모기도 잠재적으로 전파가능한 바이러스이다. 지카 바이러스에 감염된 환자의 대부분(약 80%)은 증상이 없고 감염 사실조차 모를 수 있다. 이러한 지카 바이러스를 검출하기 위한 센서의 개발이 필요하다.

한국 공개특허공보 제2015-0120003호(2015.10.27) 한국 공개특허공보 제2013-0027199호(2013.03.15)

본 발명의 목적은 추가적인 화학 반응 단계 없이도 그래핀 채널층의 표면에 대한 개질 및 바이오 탐침의 부착을 용이하게 할 수 있을 뿐만 아니라, 상기 바이오 탐침에 결합되는 피검출 물질의 특이적 결합에 의해 그래핀 채널층의 전기 전도도가 보다 민감하게 변화할 수 있는 센서를 제공하는 데 있다.

또한, 본 발명의 목적은 지카 바이러스를 실시간으로 검출 가능한 센서를 제공하는 데 있다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명의 일 측면에서

기판;

상기 기판에 배치되는 그래핀 채널층;

상기 그래핀 채널층의 양단에 이격되어 배치되는 한 쌍의 금속; 및

상기 그래핀 채널층 상에 배치되고 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 이루어진 링커층

을 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서가 제공된다.

또한, 본 발명의 다른 측면에서

기판 상에 탄화수소 가스를 탄소 공급원으로 하여 화학 기상 증착법으로 그래핀을 성장시켜 그래핀 채널층을 형성하는 단계;

상기 그래핀 채널층에 열증착 공정으로 한 쌍의 금속을 형성하는 단계; 및

상기 그래핀 채널층의 외부로 노출되는 표면 상에 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 포함하는 표면처리제를 이용하여 링커층을 형성하는 단계

를 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법이 제공된다.

본 발명의 지카 바이러스 검출용 센서는 그래핀 채널층 표면에 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 링커층으로 도입함으로써 원치 않은 바이오 물질이 그래핀에 직접적으로 붙어 검출 신호를 보이는 비특이적 결합을 막아주는 역할을 수행할 수 있어 센서의 민감도 및 선택성이 우수한 효과가 있다.

또한, 본 발명의 지카 바이러스 검출용 센서는 매우 낮은 농도(~1 fg/ml)의 지카 바이러스를 검출할 수 있어 종래 센서보다 검출 센서 한계를 현저히 높이는 효과가 있다.

나아가, 본 발명의 그래핀 트랜지스터의 제조방법에 따르면, 그래핀 채널층과 링커층은 추가적인 화학 반응 단계 없이 신속하고 간단하게 그래핀의 표면을 개질시키면서 결합되므로, 제조 편의성이 증대되고 제조 비용이 절감된다.

본 명세서에 첨부되는 다음의 도면들은 본 발명의 바람직한 실시예를 예시하는 것이며, 전술한 발명의 내용과 함께 본 발명의 기술사상을 더욱 이해시키는 역할을 하는 것이므로, 본 발명은 그러한 도면에 기재된 사항에만 한정되어 해석되어서는 아니 된다.
도 1은 본 발명의 일 측면에서 제공되는 센서를 나타내는 모식도이고;
도 2는 b) 단일층으로 형성된 그래핀의 TEM 사진, c) 그래핀 마이크로 패턴 전극의 사진, d) 그래핀 마이크로 패턴 전극의 현미경 사진 및 e) 상기 d)의 A, B 부분에서의 라만 분석 결과를 나타내는 그래프이고;
도 3 및 도 4는 마이크로 패턴 그래핀 채널층을 제조하는 공정을 나타내는 순서도이고;
도 5는 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 카벤기가 그래핀 채널층의 그래핀 상에 공유 결합하는 것을 나타내는 모식도이고;
도 6은 제조예 1의 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 나타내는 분자 구조식과 핵자기공명 데이터이고;
도 7은 실시예 1의 [1-3]까지 수행된 센서를 밀도함수이론(DFT)에 따른 모델링 결과이고;
도 8은 실시예 1의 [1-3]까지 수행된 센서 및 실시예 1의 센서의 전류-전압 특성 및 전이 곡선 특성을 나타낸 그래프이고;
도 9는 실시예 1 및 비교예 1의 센서의 지카 바이러스 항원에 대한 실시간 반응을 나타낸 그래프이고;
도 10은 실시예 1의 센서의 지카 바이러스 항원에 대한 실시간 반응을 나타낸 그래프이고;
도 11은 실시예 1의 센서의 뎅기 바이러스 및 지카 바이러스 항원에 대한 실시간 반응을 나타낸 그래프이다.

이하, 본 발명을 상세히 설명한다.

1. 지카 바이러스 검출용 센서

본 발명의 일 측면에서 지카 바이러스 검출용 센서가 제공된다.

도 1을 참고하면, 본 발명의 지카 바이러스 검출용 센서는 기판, 그래핀 채널층, 한 쌍의 금속 및 링커층을 포함한다.

상기 기판은 본 발명의 센서의 구성들이 지지되는 지지대로서의 역할을 하는 구성으로서, Si 기판, 유리 기판, GaN 기판, 실리카 기판 등의 절연성 무기물 기판, Ni, Cu, W 등의 금속 기판 또는 플라스틱 기판 등을 사용할 수 있으며, 절연성 기판을 사용하는 경우, 그래핀 채널층과의 친화력이 우수한 점에서, 실리카(SiO₂) 기판인 것이 바람직하다.

또한, 상기 기판은 그래핀의 증착이 가능한 다양한 물질 중에서 선택될 수 있으며, 예를 들어 실리콘-게르마늄, 실리콘 카바이드(SiC) 등의 물질로 구성될 수 있고, 에피택셜 층, 실리콘-온-절연체(silicon-on-insulator)층, 반도체-온-절연체(semiconductor-insulator)층 등을 포함할 수 있다.

본 발명의 센서를 구성하는 상기 그래핀 채널층은 그래핀으로 이루어질 수 있는데, 이 경우 게이트에 전압이 가해지지 않은 오프 상태에서도 높은 전류가 흘러 작동 전류의 온/오프 비율이 매우 낮으므로 고성능의 센서를 제조할 수 있다.

상기 그래핀 채널층은 단층 또는 이층(bi-layer)의 그래핀으로 이루어질 수 있으나, 이층의 그래핀을 사용하면 표면저항의 감소로 인해 센서의 민감도가 저하될 수 있는 점에서, 도 2에 나타낸 바와 같이 단층의 그래핀으로 이루어지는 것이 보다 바람직하다.

본 발명의 센서를 구성하는 상기 한 쌍의 금속은 그래핀 채널층에 전압을 인가하기 위해 상기 그래핀 채널층 상에서 서로 이격되어 형성되는 소스 전극과 드레인 전극일 수 있다.

이러한 소스 전극과 드레인 전극은 상기 그래핀 채널층을 통하여 전기적으로 연결될 수 있고, 도전성을 가지는 물질을 포함할 수 있으며, 예를 들어 금속, 금속 합금, 전도성 금속 산화물 또는 전도성 금속 질화물 등으로 형성될 수 있다.

상기 소스 전극과 드레인 전극은, 예를 들면, 각각 독립적으로, Cu, Co, Bi, Be, Ag, Al, Au, Hf, Cr, In, Mn, Mo, Mg, Ni, Nb, Pb, Pd, Pt, Re, Rh, Sb, Ta, Te, Ti, W, V, Zr, Zn 및 이들의 조합으로 이루어진 군으로부터 선택되는 것을 포함할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니며, 그래핀과의 접촉성 및 식각의 용이성 측면에서, Pt인 것이 바람직하다.

본 발명의 센서를 구성하는 상기 링커층은 본 발명의 센서의 그래핀 채널층에 바이오 탐침부와 결합시키기 위한 구성으로서, 도 3 및 도 4에 나타낸 바와 같이 상기 한 쌍의 금속의 이격된 사이에 노출되어 있는 그래핀 채널층 상에 배치될 수 있다.

상기 링커층은 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 이루어져 있다.

구체적으로, 상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 하기 화학식 1로 표시될 수 있다.

<화학식 1>

(상기 화학식 1에서,

상기 A는 아자이드기 또는 프탈리마이드기이고,

상기 R₁은 반복 단위가 2 내지 5인 탄소 수 2 내지 10의 알킬렌기 또는 알콕시알킬렌기이고,

상기 R₂ 및 R₃는 각각 독립적으로 알킬기, 시클로알킬기, 알케닐기, 알키닐기, 아릴기, 알킬렌기, 알케닐렌기, 알키닐렌기, 알콕시기 또는 아릴알킬기이다.)

상기 화학식 1에서, A는 아자이드기 또는 프탈리마이드기일 수 있고, R₁은 반복 단위가 2 내지 5인 탄소 수 2 내지 10의 알킬렌기 또는 알콕시알킬렌기일 수 있으나, 그래핀 채널층의 전기전도도의 민감성 측면에서, R₁은 반복 단위가 2 내지 4이고 탄소 수 3 내지 8인 알킬렌기 또는 알콕시알킬렌기인 것이 바람직하고, 반복 단위가 2 또는 3이고 탄소 수 4 내지 6인 알코올시알킬렌기인 것이 보다 바람직하다.

또한, R₂ 및 R₃는 동일하거나 상이할 수 있으며, 탄소 수 2 내지 20인 알킬기, 시클로알킬기, 알케닐기, 알키닐기, 아릴기, 알킬렌기, 알케닐렌기, 알키닐렌기, 알콕시기, 아릴알킬기 및 벤질기로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나일 수 있으나, 탐침부와 그래핀 채널층의 결합성 측면에서, 탄소 수 4 내지 16인 알킬기, 시클로알킬기, 알케닐기 및 벤질기로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나인 것이 바람직하고, 탄소 수 6 내지 10인 시클로알킬기 또는 벤질기인 것이 보다 바람직하다.

상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 경우, 도 5에 나타낸 바와 같이, 카벤기가 상기 그래핀 채널층의 그래핀 상에 공유결합을 통해 결합될 수 있다.

이와 같이, N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 카벤기와 그래핀 채널층의 그래핀이 자가결합을 통해 공유결합을 형성하기 때문에, 별도의 도핑 처리 없이도 밴드갭을 형성할 수 있고 외부의 비특이적 전하에 따른 노이즈를 감소시킬 수 있는 효과가 있을 뿐만 아니라, 가교제의 참가 등과 같은 추가적인 화학 처리가 필요하지 않아 공정이 간소화되고 비용이 절감되는 효과가 있다.

또한, 상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 말단 부위(상기 화학식 1의 A 부분)가 아자이드기 또는 프탈리마이드기로 기능화될 수 있다. 그로 인해, 링커층과 바이오 탐침부는 추가적인 화학 반응 단계 없이 결합할 수 있다.

상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 6-(4-아지도부톡시-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴, 6-4(-아지도부톡시)-1,3-디이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴, 6-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴, 6-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴 및 6-(4-(1,3-다이이소인돌린-2-일)부톡시)-1,3-다이이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴으로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나인 것이 바람직하며, 6-(4-아지도부톡시-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴인 것이 더욱 바람직하다.

상기와 같은 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물이 형성하는 링크층은 단일층의 형태로 링커층을 형성할 수 있다.

상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 단일층으로 형성되는 경우, 그래핀 본연의 우수한 전하 이동도, 투명도 및 유연성을 가질 뿐만 아니라, 외부의 비특이적 전하들의 접근에 의한 노이즈 신호를 차단할 수 있는 효과가 있다.

또한, 상기 링커층은 그 두께가 0.1 nm 내지 1 nm일 수 있다. 상기 링커층의 두께가 0.1 nm 보다 얇은 경우 저항이 증가하는 문제점이 있고, 1 nm 보다 두꺼운 경우 투명도가 감소하는 문제가 있다.

본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서는, 전기장 효과에 의해 소스 및 드레인 전극 사이의 그래핀 채널층을 흐르는 전류가 변하는 반도체 특성을 이용한 것이다.

구체적으로, 그래핀 채널층의 표면에 형성된 바이오 탐침부에 포함되는 프로브가 표적물과 반응하면, 주변의 전기장에 변화가 일어나며, 이로 인해 소스 전극과 드레인 전극 사이의 그래핀 채널 영역에 흐르는 전류 값이 함께 변하고, 이러한 전류의 변화를 측정하는 방식으로 표적물을 검출한다.

이러한 센서는, 전술한 바와 같은 구성을 통해 민감도, 특이성, 신속성 및 휴대성이 우수하며, 특히, 그래핀을 채널층으로 사용함으로써 그래핀의 높은 전하 캐리어 이동도와 전도도 특성으로 인하여 우수한 민감도와 실시간 감지 성능을 가진다.

또한, 전술한 바와 같이 링커층을 센서 내의 그래핀 채널층에 형성시켜 이에 결합하는 바이오 탐침부를 센서의 채널 영역에 존재시킴으로써 센서의 민감도가 더욱 향상될 뿐만 아니라, 도핑 처리와 바이오 탐침의 부착을 동시에 실시할 수 있게 되어 공정이 간소화되는 효과가 있다.

나아가, 본 발명의 센서는 링커층 상에 노출되어 있는 아자이드기 또는 프탈리마이드기에 결합되는 바이오 탐침부를 포함하고, 상기 바이오 탐침부는 지카 바이러스와 특이적 결합 가능한 프로브 물질을 포함할 수 있다.

이때, 상기 프로브 물질은 압타머, 펩티드, 단백질 및 염기서열로 이루어지는 군으로부터 선택되는 1 종 이상일 수 있으며, 상기 염기서열은 DNA, RNA 등일 수 있다.

여기서, 압타머는 RNA, DNA, 합성 뉴클레오티드 등으로부터 합성되는 펩티드 분자를 말하며, 특정한 염기 서열로 합성하여 타겟 물질과 선택적으로 결합될 수 있다.

본 발명에서 검출하고자 하는 바이러스는 지카 바이러스로, 지카 바이러스와 특이적 결합 가능한 프로브 물질, 즉 지카 바이러스 검출용 항체가 결합될 수 있다. 상기 지카 바이러스와 특이적 결합이 가능한 프로브 물질은 ZIKV-117 등일 수 있다.

2. 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법

본 발명의 다른 측면에서 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법이 제공된다.

도 3 및 도 4를 참고하면, 본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법은 기판 상에 탄화수소 가스를 탄소 공급원으로 하여 화학 기상 증착법으로 그래핀을 성장시켜 그래핀 채널층을 형성하는 단계, 상기 그래핀 채널층에 한 쌍의 금속을 형성하는 단계 및 상기 그래핀 채널층의 외부로 노출되는 표면 상에 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 포함하는 표면처리제를 이용하여 링커층을 형성하는 단계를 포함한다.

이러한 그래핀 채널층은 예를 들면, 화학 기상 증착법을 이용하여 형성할 수 있으며, 이를 이용하면 뛰어난 결정질을 갖는 단층 내지 수층의 그래핀을 대면적으로 얻을 수 있다.

상기 화학 기상 증착법은 기판 표면에 높은 운동 에너지를 갖는 기체 또는 증기 형태의 탄소 전구체를 흡착, 분해 또는 반응시켜 탄소 원자로 분리시키고, 해당 탄소 원자들이 서로 원자간 결합을 이루게 함으로써 그래핀을 성장시키는 방법이다.

본 발명에 있어서, 상기 화학 기상 증착법은 PECVD(Plasma Enhanced Chemical Vapor Deposition), APCVD(Atmospheric Pressure Chemical Vapor Deposition) 및 LPCVD(Low Pressure Chemical Vapor Deposition)로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나일 수 있으며, 넓은 면적에 결점을 최소화하여 증착이 가능한 점에서 상기 화학 기상 증착법은 CPCVD인 것이 바람직하다.

상기 화학 기상 증착의 구체적인 방법으로서, 예를 들면 니켈, 구리, 알루미늄, 철 등의 금속 촉매를 스퍼터링 장치 및 전자빔 증발 장치를 이용하여 산화 실리콘층을 가지는 웨이퍼 상에 증착시켜 금속 촉매층을 형성하고, 이를 CH₄, C₂H₂ 등의 탄소를 포함하는 가스와 함께 반응기에 넣고 가열하여, 금속 촉매층에 탄소가 흡수되도록 하고, 이를 냉각하여 상기 금속 촉매층으로부터 탄소를 분리시켜 결정화시킨 후, 최종적으로 상기 금속 촉매층을 제거함으로써 그래핀 채널층을 형성할 수 있다.

다만, 상기 그래핀 채널층을 형성하는 방법은 화학 기상 증착법에 한정되는 것은 아니며, 여러 가지 방법을 이용하여 그래핀 채널층을 형성할 수 있다.

예를 들어, 여러 층으로 구성된 흑연 결정에서 기계적인 힘으로 한 층을 벗겨내어 그래핀을 만드는 물리적 박리법, 산화-환원 특성을 활용한 화학적 박리법 또는 SiC와 같이 탄소가 결정에 흡착되거나 포함되어 있는 재료를 1,500℃의 고온 상태에서 열처리하는 에피텍셜 합성법을 이용하여 그래핀 채널층을 형성시킬 수 있다.

상기 한 쌍의 금속은, 소스 전극과 드레인 전극일 수 있으며, 이들은 당업계에 공지된 방법으로 형성할 수 있으나, 예를 들어, 열증착 공정(Thermal Deposition), 이빔증착 공정 (E-beam Deposition), PECVD, LPCVD, PVD(Physical Vapor Deposition), 스퍼터링(sputtering), ALD 등의 증착 방법에 의하여 형성할 수 있다.

상기 그래핀 채널층의 외부로 노출되는 표면 상에 링커층을 형성하는 단계는 그래핀 채널층이 형성된 기판을 아르곤 존재 하에서 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물 용액에 상온에서 일정 시간 침지하는 방법으로 형성시킬 수 있다.

이때, 그래핀 채널층과 링커층은 추가적인 화학 반응 단계가 없더라도 5초 내지 300초 동안 반응하는 것에 의해 그래핀 채널층의 표면을 개질시킬 수 있으며, 제조 편의성이 증대되고 제조 비용이 절감되는 점에서, 상기 반응은 20초 내지 60초 동안 이루어지는 것이 바람직하다. 이는 종래에 비해 더욱 간단하고 신속하다는 장점이 있다.

상기 링커층을 구성하는 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 이미다졸륨염을 소스로 이용하여 합성될 수 있다.

즉, 본 발명에서는 그래핀 채널층과의 표면 개질에 대한 반응 용이성 측면에서, 이미다졸륨염을 소스로 이용하여 고리 구조를 갖는 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 지카 바이러스 검출용 센서를 제조한다.

만약, 고리 구조를 가지지 않는 카벤 화합물을 이용하는 경우, 그래핀 채널층의 표면을 개질시키기 위한 반응 조건이 매우 과격할 뿐만 아니라, 그래핀 채널층의 표면을 전면적으로 개질시키지 못하므로, 외부 전하의 영향을 완전히 차단하지 못하는 한계가 있다. 또한, 고리 구조를 가지지 않는 카벤 화합물이 제공한 전자들은 그래핀 채널층에 지속적으로 축적이 되어 그래핀 채널층 자체의 안정성을 저하시키는 경향이 매우 높은 점에서, 일정량 이상의 카벤 화합물을 사용하는 경우 그래핀 채널층으로부터 다시 분리가 되는 문제가 있다.

이러한 센서의 제조방법은, 상기 링커층을 형성하는 단계를 수행한 후, 상기 그래핀 채널층에 도핑을 실시하는 단계 및 상기 링커층 상에 지카 바이러스와 특이적 결합 가능한 프로브 물질을 포함하는 바이오 탐침부를 형성하는 단계를 포함할 수 있다.

상기 센서는 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 그래핀 채널층의 표면을 개질시킴으로써 밴드갭이 형성되므로, 밴드갭의 형성을 위한 별도의 도핑 처리를 요하지 않으나, 작동 효율과 신뢰성 측면에서 밴드갭 에너지를 조절하기 위한 도핑이 요구된다.

이때, 상기 도핑을 실시하는 단계는 치환도핑, 화학적 도핑, 표면 전하 전달 도핑으로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나일 수 있다.

이들 중, 치환 도핑은 탄소 원자를 보론이나 질소로 치환하는 방법이며, 보다 구체적으로, 화학 증기 기상법으로 그래핀을 합성할 때, 보론(HBO₃, H₂B₆)과 질소(NH₃)가 첨가된 가스를 메탄과 동시에 흘려 주어 보론과 질소가 치환된 그래핀을 합성하거나, 상기 가스를 흘려주면서 고온에서 열처리를 하거나 플라즈마를 가하는 것이다.

특히 고온 열처리를 하면서 보론과 질소를 포함한 가스를 흘려주면 그래핀 산화물은 환원되는 동시에 치환되므로, 플라즈마의 세기와 가스량의 조절로 도핑 정도를 조절할 수 있는 장점이 있다.

화학적 도핑은 화학물질을 이용하여 그래핀의 일함수를 변화시키는 것으로서, 사용하는 화학 물질에 따라 p형 또는 n형으로 달라질 수 있으며, 특히 금 염화물이 바람직하게 사용된다.

이러한 화학적 도핑은 목표 물질의 기계적, 화학적 성질을 변화시키지 않으며, 조절이 용이한 장점이 있다.

한편, 그래핀의 표면에 전자가 부족하거나 풍부한 물질이 존재하면 그래핀으로부터 전자를 빼앗거나 전달함으로써 그래핀의 전자 상태가 달라질 수 있으며, 이를 이용한 것이 표면 전하 전달 도핑이다.

즉, 그래핀 위에 전하 전달을 일으킬 수 있는 분자를 도포시키거나 증착을 통해서 구조를 형성하면 그래핀을 이루는 탄소와의 전기음성도의 차이로 인해 전하 전달이 자발적으로 일어나서 그래핀을 도핑하는 방식이다.

표면 전하를 일으키기 위한 흡착 물질로는, 예를 들면, tetrafluorotetracyanoquinodimethane(F4-TCNQ)와 fluoropolymer(CYTOP)을 들 수 있다.

또한, 상기 링커층 상에 바이오 탐침부를 결합하는 단계는 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 그래핀 채널층의 표면을 개질시켜 링커층을 형성하고, 상기 링커층을 구성하는 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 관능기(예를 들면, 아자이드기나 프탈리마이드기)가 링커층의 상부에 노출이 된 상태에서 바이오 탐침부(예를 들면, 지카 바이러스와 특이적 결합 가능 항체 등)와 반응시킴으로써 이루어질 수 있다.

한편, 상기 그래핀 채널층에 도핑을 실시하는 단계와 링커층 상에 바이오 탐침부를 결합하는 단계는 동시에 이루어질 수 있다.

종래에는, 그래핀 채널층에 먼저 위와 같은 도핑을 실시하고, 이에 추가적인 화학적 처리를 실시하여 표면을 개질시킨 후, 이에 바이오 탐침부를 부착하는 단계로 센서를 제조하였다.

이에 비해, 본 발명은 말단 부위가 기능화된 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물에 직접 바이오 탐침부가 결합하는 점에서, 그래핀 채널층에 대한 도핑과 바이오 탐침부의 부착을 동시에 실시할 수 있는바, 공정의 간소화에 따라 경제성이 향상되는 효과를 발휘한다.

이하에서는, 바람직한 실시예를 들어 본 발명을 더욱 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이에 의하여 한정되는 것은 아니다.

[제조예] 말단 부위가 기능화된 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 합성

[ 제조예 1] 6-(4- 아지도부톡시 -1,3- 디아이소프로필 -1H- 벤조[d]이미다졸 -2-일리덴(이하, '카벤'으로 기재한다)의 합성

1 단계: 4-(4-브로포부톡시)-2-니트로아닐린의 합성

4-아미노-3-니트로페놀(2.0 g, 13.0 mmol)과 1,4-디브로모부탄(3.64 g, 16.9 mmol)이 포함된 무수 아세토니트릴(65 ml) 용액에 K₂CO₃(1.8 g, 13.0 mmol)를 첨가하였다. 반응 혼합물을 80℃에서 12 시간 동안 아르곤 존재하에 교반하였다. 반응 혼합물을 상온까지 냉각한 후 무기 침전물을 여과하고 아세토니트릴(50 ml)로 세정하였다. 다음으로, 용매를 증발시키고 조생성물을 n-헥산: 에틸아세테이트 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.5 g (67%) 1H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ. C10H13BrN2O3의 ESI-MS (m/z): 288.01, Calc.: 288.01 이었다.

2 단계: 5-(4-브로모부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸의 합성

4-(4-브로모부톡시)-2-니트로아닐린(2.5 g, 8.65 mmol), 철분말(4.8 g, 86.5 mmol) 및 염화암모늄(4.6 g, 86.5 mmol)이 포함된 아이소프로필 알코올(60 ml) 에 포름산(45 ml)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 16 시간 동안 아르곤 존재하에 교반한 후 이를 상온까지 냉각하고, 소결 유리 여과기로 여과시켰다. 얻어진 고형분을 이소프로필 알코올(3x 50 ml)로 세정하였다. 여과된 액체를 증발 건조시키고 포화 탄산수소나트륨 용액을 첨가하여 pH 7이 될 때까지 중화시켰다. 다음으로, 현탁액(suspension)을 염화메틸렌(3x 100 ml)으로 추출하였다. 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시키고 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 1.86 g (80%), 1H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C11H13BrN2O의 ESI-MS (m / z): 269.14, Calc.: 269.14 이었다.

3 단계: 5-(4-아지도부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸의 합성

5-(4-브로모부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸(1.86 g, 6.91 mmol)을 N,N-디메틸포름아미드(35 ml) 중의 아지드화 나트륨(NaN₃, 0.49 g, 7.6 mmol)과 함께 80℃에서 8 시간 동안 아르곤 존재하여 교반하였다. 반응 혼합물을 물(200 ml)에 넣고 에틸아세테이트(2x 150 ml)로 추출하였다. 결합된 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시키고 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 1.4 g (88%), 1H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C11H13N5O의 ESI-MS (m / z): 231.25, Calc .: 231.26 이었다.

4 단계: 5-(4-아지도부톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 브롬화물의 합성

5-(4-아지도부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸(1.4 g, 6.05 mmol)과 아세토니트릴(60 ml) 중의 탄산세슘(Cs₂CO₃, 1.97 g, 6.05 mmol)의 현탁액에 벤질브로마이드 (20 ml, 20 mmol)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 24 시간 동안 아르곤 존재 하에 교반하였다. 다음으로, 과량의 벤질브로마이드 및 용매를 진공에서 증발시켰다. 조생성물을 염화메틸렌:메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

5 단계: 카벤의 합성

5-(4-아지도부톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 브롬화물(80 mg, 0.18 mmol)을 무수 THF(3.6ml)에 용해시키고 글로브박스에서 교반하여 프리 카벤을 얻었다. 바탕용액으로서 THF 중의 1 M KHMDS(0.18 ml, 0.18 mmol)을 상온에서 혼합물에 적가하고 15 분 동안 교반하였다. 백색 침전물(KI)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 생성된 혼합물을 0.2 μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 0.05 M 농도의 카벤으로 희석시킴으로써 '카벤'을 제조하였다.

제조예 1에서 제조된 카벤을 도 6의 핵자기 공명 분광분석법(NMR)을 통해 분자구조식을 확인하였다. 또한, 제조예 1의 합성 단계를 나타내는 반응식을 하기 반응식 1에 나타내었다.

<반응식 1>

[ 제조예 2] 6-(4- 아지도부톡시 -1,3- 디아이소프로필 -1H- 벤조[d]이미다졸 -2-일리덴(이하, ' NHC1 '로 기재한다)의 합성

1 단계: 4-(4-브로포부톡시)-2-니트로아닐린의 합성

4-아미노-3-니트로페놀(2.0g, 13.0mmol)과 1,4-디브로모부탄(3.64g, 16.9mmol)이 포함된 무수 아세토니트릴(65ml) 용액에 K₂CO₃(1.8g, 13.0mmol)를 첨가하였다. 반응 혼합물을 80℃에서 12 시간 동안 아르곤 존재하에 교반하였다. 반응 혼합물을 상온까지 냉각한 후 무기 침전물을 여과하고 아세토니트릴(50ml)로 세정하였다. 다음으로, 용매를 증발시키고 조생성물을 n-헥산: 에틸아세테이트 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.5g (67%) ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C10H13BrN2O3의 ESI-MS (m/z): 288.01, Calc.: 288.01 이었다.

2 단계: 5-(4-브로모부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸의 합성

4-(4-브로모부톡시)-2-니트로아닐린(2.5g, 8.65mmol), 철분말(4.8g, 86.5mmol) 및 염화암모늄(4.6g, 86.5mmol)이 포함된 아이소프로필 알코올(60ml) 에 포름산(45ml)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 16 시간 동안 아르곤 존재하에 교반한 후 이를 상온까지 냉각하고, 소결 유리 여과기로 여과시켰다. 얻어진 고형분을 이소프로필 알코올(3x 50ml)로 세정하였다. 여과된 액체를 증발 건조시키고 포화 탄산수소나트륨 용액을 첨가하여 pH 7이 될 때까지 중화시켰다. 다음으로, 현탁액(suspension)을 염화메틸렌(3x 100ml)으로 추출하였다. 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시킨 후 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 1.86g (80%), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C11H13BrN2O의 ESI-MS (m / z): 269.14, Calc.: 269.14 이었다.

3 단계: 5-(4-아지도부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸의 합성

5-(4-브로모부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸(1.86g, 6.91mmol)을 N,N-디메틸포름아미드(35ml) 중의 아지드화 나트륨(NaN₃, 0.49g, 7.6mmol)과 함께 80℃에서 8 시간 동안 아르곤 존재하여 교반하였다. 반응 혼합물을 물(200ml)에 넣고 에틸아세테이트(2x 150ml)로 추출하였다. 결합된 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시킨 후 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 1.4g (88 %), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C11H13N5O의 ESI-MS (m / z): 231.25, Calc .: 231.26 이었다.

4 단계: 5-(4-아지도부톡시)-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물의 합성

5-(4-아지도부톡시)-1H-벤조[d]이미다졸(1.4g, 6.05mmol)과 아세토니트릴(60ml) 중의 탄산세슘(Cs₂CO₃, 1.97g, 6.05mmol)의 현탁액에 2-요오드프로판 (15.1ml, 151mmol)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 24 시간 동안 아르곤 존재 하에 교반하였다. 다음으로, 과량의 2-요오드프로판 및 용매를 진공에서 증발시켰다. 조생성물을 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 1.8 g (67%) ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C17H26N5OI의 ESI-MS (m / z): 316.20, Calc.: 316.21 이었다.

5 단계: NHC1의 합성

5-(4-아지도부톡시)-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물(80mg, 0.18mmol)을 무수 THF(3.6ml)에 용해시키고 글로브박스에서 교반하여 프리 카벤을 얻었다. 바탕용액으로서 THF 중의 1M KHMDS(0.18ml, 0.18mmol)을 상온에서 혼합물에 적가하고 15분 동안 교반하였다. 백색 침전물(KI)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 생성된 혼합물을 0.2μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 0.05M 농도의 카벤으로 희석시킴으로써 NHC1을 제조하였다.

제조예 2의 합성 단계를 나타내는 반응식을 하기 반응식 2에 나타내었다.

<반응식 2>

[ 제조예 3] 6-(2-(2-(2-(2- 아지도에톡시 ) 에톡시 ) 에톡시 ) 에톡시 )-1,3- 디아이소프로필 -1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴(이하, ' NHC2 '로 기재한다)의 합성

1 단계: 4-(2-(2-(2-(2-브로모에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-2-니트로아닐린의 합성

4-아미노-3-니트로페놀(2.0g, 13.0mmol) 및 1-브로모-2-(2-(2-(2-브로모에톡시)에톡시)에톡시)에탄(6.24g, 19.5mmol)이 포함된 무수 아세토니트릴(65ml) 용액에 K₂CO₃(1.8g, 13.0mmol)를 첨가하였다. 반응 혼합물을 80℃에서 12 시간 동안 아르곤 존재하에 교반하였다. 반응 혼합물을 상온까지 냉각한 후 무기 침전물을 여과하고 아세토니트릴(80ml)로 세정하였다. 다음으로, 용매를 증발시키고 조생성물을 n-헥산:에틸아세테이트 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하여 생성물을 수득하였다.

이때, 수율: 3.8 g (75%) ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C14H21BrN2O4의 ESI-MS (m / z): 393.06, Calc.: 393.07 이었다.

2 단계: 5-(2-(2-(2-(2-브로모에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1H-벤조[d]이미다졸의 합성

4-(2-(2-(2-(2-브로모에톡시)에톡시)에톡시)에톡시-2-니트로아닐린(3.8g, 9.66mmol), 철분말(5.40g, 96.6mmol) 및 염화암모늄(5.16g, 96.6mmol)이 포함된 아이소프로필 알코올(70ml)에 포름산(48ml)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 20 시간 동안 아르곤 존재하에 교반한 후 이를 상온까지 냉각하고, 소결 유리 여과기로 여과시켰다. 얻어진 고형분을 이소프로필 알코올(3x 50ml)로 세정하였다. 여과된 액체를 증발 건조시키고 포화 탄산수소나트륨 용액을 첨가하여 pH 7이 될 때까지 중화시켰다. 다음으로, 현탁액(suspension)을 염화메틸렌(3x 100ml)으로 추출하였다. 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시킨 후 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.8g (78 %), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C15H31BrN2O4의 ESI-MS (m / z): 372.06, Calc.: 372.07 이었다.

3 단계: 5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1H-벤조[d]이미다졸의 합성

5-(2-(2-(2-(2-브로모에톡시)에톡시)에톡시)에톡시-1H-벤조[d]이미다졸 (2.8g, 7.5mmol)을 N,N-디메틸포름아미드(40ml) 중의 아지드화 나트륨(NaN₃, 0.536g, 8.25mmol)과 함께 80℃에서 8 시간 동안 아르곤 존재하여 교반하였다. 반응 혼합물을 물(200ml)에 넣고 EtOAc(2x 150ml)로 추출하였다. 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시킨 후 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.0g (80 %), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C15H21N5O4의 ESI-MS (m / z): 335.15, Calc.: 335.16 이었다.

4 단계: 5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물의 합성

5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1H-벤조[d]이미다졸(1.9g, 5.66mmol)과 아세토니트릴(60ml) 중의 탄산세슘(1.84g, 5.66mmol)의 현탁액에 2-요오드프로판(14ml, 141mmol)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 24 시간 동안 아르곤 존재하에 교반하였다. 다음으로, 과량의 2-요오드프로판 및 용매를 진공에서 증발시켰다. 조생성물을 디클로로메탄:메탄올 구배 혼합물을 사용하는 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.1g (70%), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C21H34N5O4의 ESI-MS (m / z): 420.26, Calc.: 420.26 이었다.

5 단계: NHC2의 합성

5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물(80mg, 0.15mmol)을 무수 THF(3ml)에 용해시키고 글로브박스에서 교반하여 프리 카벤을 얻었다. 바탕용액으로서 THF 중의 1M KHMDS(0.15ml, 0.15mmol)을 상온에서 혼합물에 적가하고 15분 동안 교반하였다. 백색 침전물(KI)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 생성된 혼합물을 0.2μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 0.05M 농도의 카벤으로 희석시킴으로써 NHC2를 제조하였다.

제조예 3의 합성 단계를 나타내는 반응식을 하기 반응식 3에 나타내었다.

<반응식 3>

[ 제조예 4] 6-(2-(2-(2-(2- 아지도에톡시 ) 에톡시 ) 에톡시 ) 에톡시 )-1,3- 디벤질 -1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴(이하, ' NHC3 '로 기재한다)의 합성

1 단계: 5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 브롬화물의 합성

5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸(1.2g, 3.58mmol)과 아세토니트릴(36ml) 중의 탄산세슘(1.17g, 3.58mmol)의 현탁액에 벤질 브롬화물(11ml, 82mmol)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 24 시간 동안 아르곤 존재하에 교반하였다. 다음으로, 과량의 벤질 브롬화물을 진공에서 증발시켰다. 조생성물을 디클로로메탄:메탄올 구배 혼합물을 사용하는 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 1.7g (80 %), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C29H34N5O4의 ESI-MS (m / z): 516.26, Calc.: 516.26 이었다.

2 단계: NHC3의 합성

5-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 브롬화물(90mg, 0.15mmol)을 무수 THF(3ml)에 용해시키고 글로브박스에서 교반하여 프리 카벤을 얻었다. 바탕용액으로서 중의 1M KHMDS THF(0.15ml, 0.15mmol)을 상온에서 혼합물에 적가하고 15분 동안 교반하였다. 백색 침전물(KBr)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 생성된 혼합물을 0.2μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 0.05M 농도의 카벤으로 희석시킴으로써 NHC3를 제조하였다.

제조예 4의 합성 단계를 나타내는 반응식을 하기 반응식 4에 나타내었다.

<반응식 4>

[ 제조예 5] 6-(4-(1,3- 다이이소인돌린 -2-일) 부톡시 )-1,3- 다이이소프로필 -1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴(이하, ' NHC4 '로 기재한다)의 합성

1 단계: 2-(4-(4-아미노-3-니트로페녹시)부톡시)이소인돌린-1,3-다이온의 합성

4-아미노-3-니트로페놀(2.0g, 13.0mmol)과 N-(4-브로모부틸)프탈리마이드 (4.03g, 14.3mmol)이 포함된 무수 아세토니트릴(65ml) 용액에 K₂CO₃(1.8g, 13.0mmol)를 첨가하였다. 반응 혼합물을 80℃에서 12 시간 동안 아르곤 존재하에 교반하였다. 반응 혼합물을 상온까지 냉각한 후 무기 침전물을 여과하고 아세토니트릴(50ml)로 세정하였다. 다음으로, 용매를 증발시키고 조생성물을 n-헥산: 에틸아세테이트 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 3.65g (79%) ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ --- ESI-MS (m/z) for C18H17N3O5: 355.11, Calc.: 355.12 이었다.

2 단계: 2-(4-((1H-벤조[d]이미다졸-5-일)옥시)부틸)이소인돌린-1,3-다이온의 합성

2-(4-(4-아미노-3-니트로페녹시)부톡시)이소인돌린-1,3-다이온 (3.0g, 8.44mmol), 철분말(4.71g, 84.4mmol) 및 염화암모늄(4.51g, 84.4mmol)이 포함된 아이소프로필 알코올(60ml) 에 포름산(45ml)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 16 시간 동안 아르곤 존재하에 교반한 후 이를 상온까지 냉각하고, 소결 유리 여과기로 여과시켰다. 얻어진 고형분을 이소프로필 알코올(3x 60ml)로 세정하였다. 여과된 액체를 증발 건조시키고 포화 탄산수소나트륨 용액을 첨가하여 pH 7이 될 때까지 중화시켰다. 다음으로, 현탁액(suspension)을 염화메틸렌(3x 100ml)으로 추출하였다. 유기층을 황산나트륨로 건조시키고, 용매를 증발시키고 조생성물과 염화메틸렌: 메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.1g (75%), ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C11H13BrN2O의 ESI-MS (m / z): 335.13, Calc.: 335.13 이었다.

3 단계: 5-(4-(1,3-다이옥소이소인돌린-2-일)부톡시)-1,3-다이이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물의 합성

2-(4-((1H-벤조[d]이미다졸-5-일)옥시)부틸)이소인돌린-1,3-다이온 (2.0g, 5.96mmol)과 아세토니트릴(60ml) 중의 탄산세슘(Cs₂CO₃, 1.94g, 5.96mmol)의 현탁액에 2-요오드프로판 (15ml, 149mmol)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 90℃에서 24 시간 동안 아르곤 존재 하에 교반하였다. 다음으로, 과량의 2-요오드프로판 및 용매를 진공에서 증발시켰다. 조생성물을 염화메틸렌:메탄올 구배 혼합물을 사용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.

이때, 수율: 2.1g (65%) ¹H NMR (600 MHz, CDDl₃): δ C17H26N5OI의 ESI-MS (m / z): 420.23, Calc.: 420.23 이었다.

4 단계: NHC4의 합성

5-(4-(1,3-다이옥소이소인돌린-2-일)부톡시)-1,3-다이이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물(99mg, 0.18mmol)을 무수 THF(3.6ml)에 용해시키고 글로브박스에서 교반하여 프리 카벤을 얻었다. 바탕용액으로서 THF 중의 1M KHMDS(0.18ml, 0.18mmol)을 상온에서 혼합물에 적가하고 15분 동안 교반하였다. 백색 침전물(KI)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 생성된 혼합물을 0.2μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 0.05M 농도의 카벤으로 희석시킴으로써 NHC4을 제조하였다.

제조예 5의 합성 단계를 나타내는 반응식을 하기 반응식 5에 나타내었다.

<반응식 5>

[ 실시예 ] 센서의 제조

[ 실시예 1] ' 카벤 '이 링커층으로 적용된 센서의 제조

[1-1] 기판 상에 그래핀 채널층의 형성

구리 호일을 챔버 내에 위치시키고, 이를 1000℃까지 가열하고, 이를 H₂90 mTorr 및 8 sccm 으로 30분(20분의 프리 어닐링과 10분의 안정화)이를 유지한 후, CH₄를 20 sccm으로 40분 동안 총 압력이 560 mTorr인 상태로 가한 다음, 이를 35℃/min로 200°C까지 냉각시키고, 로(furnace)를 상온까지 냉각하여 상기 구리 호일 상에 단일의 그래핀층을 형성하였다.

다음으로, 상기 구리 호일 상에 형성된 그래핀층 상에 폴리메틸메타아크릴레이트(PMMA, MicroChem Corp, 950 PMMA A4, 4% in anisole) 용액을 분당 6000 rpm의 속도로 스핀 코팅하고, 에천트를 이용하여 상기 PMMA가 코팅된 그래핀층을 상기 구리 호일로부터 분리하였고, 상기와 같이 구리 호일로부터 분리된 그래핀층을 10분 동안 탈이온 증류수에 침지하여 상기 그래핀 층에 남아 있는 잔여 에천트 이온들을 제거하였다.

상기와 같이 세척된 그래핀층을 기판인 폴리에틸렌 나프탈레이트(PEN) 필름으로 전사한 다음, 상기 그래핀층 상에 PMMA 용액을 투하하여 상기 그래핀층을 코팅하고 있던 PMMA를 제거함으로써, 기판 상에 그래핀 채널층을 형성하였다. 이 때 투명성은 97.8%로 유지되었다.

[1-2] 마이크로 패턴 전극 형성

상기 실시예 [1-1]을 통해 기판 상에 형성된 그래핀 채널층에, 포지티브 포토레지스트(AZ5214, Clariant Corp)를 스핀 코팅한 다음, UV 노광, 베이킹 및 현상 과정을 거쳐 통해 그래핀 채널층을 패턴화하였다.

상기와 같이 패턴화되어 정렬된 그래핀 채널층의 양 말단에 RIE(oxygen plasma treatment) 방법을 통해 패턴 전극(폭/길이=W/L=1, L=100 μm 채널 길이)을 형성한 다음, 이미지 반전, 열 증착 및 리프트-오프(Lift-off)의 공정을 통해 상기 그래핀 채널층 상에 마이크로 패턴 전극(W/L=5, L=100 μm 채널 길이)이 형성된 그래핀 트랜지스터를 제조하였다.

[1-3] 담금법(dipping)을 이용한 그래핀 채널층과 ' 카벤 '의 결합

벤조[d]이미다졸-3-리움의 요오드화물 또는 브롬화물 0.25mmol이 포함되어 있는 무수 THF(5ml)을 상온에서 아르곤의 존재 하에 저어주면서 바탕 용액으로서 1M HMDS이 포함되어 있는 THF(0.25mmol)를 상기 벤조[d]이미다졸-3-리움 용액에 적가한 후, 15분 동안 교반하여 혼합 용액을 제조하였다. 이때, 고체 침전물(KI 또는 KBr)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 이어서, 상기 혼합 용액을 0.25μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 농도가 0.05mM인 제조예 1의 카벤 화합물로 희석시켜 카벤이 포함된 용액을 준비하였다. 여과가 종료된 후, 상기 실시예 [1-2]에서 준비한 그래핀 트랜지스터를 상기 용액에 상온에서 아르곤 존재 하에 20분 동안 침지한 후 THF, 탈이온(DI)수 및 IPA로 세정하고, 진공 상태에서 건조시킴으로써 그래핀 채널층 상에 카벤이 부착된 센서를 제조하였다.

[1-4] 카벤 기능화 그래핀 채널층의 지카 바이러스 항체 고정화

상기 [1-3]이 수행된 센서를 테트라하이드로퓨란 (5~10 mL) 용매 하에서 트리페닐포스핀(1 mg)을 첨가하고 상온에서 1시간 동안 교반하였다. 이후 물(100 μL)을 첨가하고 상온에서 12시간 동안 교반하였다. 반응 후에 테트라하이드로퓨란(20~100 mL)으로 부산물을 제거한 후에 진공 건조한 후, 4-(4,6-Dimethoxy-1,3,5-triazin-2-yl)-4-methylmorpholinium chloride (DMT-MM) 10 wt% 용액 100 μL와 지카 바이러스 항체를 첨가함으로써, 고정화를 시켜 최종적으로 실시예 1의 지카 바이러스 검출용 센서를 제조하였다.

[ 실시예 2] NHC1이 링커층으로 적용된 센서의 제조

[2-1] 기판 상에 그래핀 채널층의 형성

[2-2] 마이크로 패턴 전극 형성

상기 실시예 [2-1]을 통해 기판 상에 형성된 그래핀 채널층에, 포지티브 포토레지스트(AZ5214, Clariant Corp)를 스핀 코팅한 다음, UV 노광, 베이킹 및 현상 과정을 거쳐 통해 그래핀 채널층을 패턴화하였다.

[2-3] 담금법(dipping)을 이용한 그래핀 채널층과 NHC1의 결합

벤조[d]이미다졸-3-리움의 요오드화물 또는 브롬화물 0.25mmol이 포함되어 있는 무수 THF(5ml)을 상온에서 아르곤의 존재 하에 저어주면서 바탕 용액으로서 1M HMDS이 포함되어 있는 THF(0.25mmol)를 상기 벤조[d]이미다졸-3-리움 용액에 적가한 후, 15분 동안 교반하여 혼합 용액을 제조하였다. 이때, 고체 침전물(KI 또는 KBr)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 이어서, 상기 혼합 용액을 0.25μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 농도가 0.05mM인 제조예 2의 카벤 화합물로 희석시켜 NHC1이 포함된 용액을 준비하였다. 여과가 종료된 후, 상기 실시예 [2-2]에서 준비한 그래핀 트랜지스터를 상기 용액에 상온에서 아르곤 존재 하에 20분 동안 침지한 후 THF, 탈이온(DI)수 및 IPA로 세정하고, 진공 상태에서 건조시킴으로써 그래핀 채널층 상에 NHC1이 부착된 센서를 제조하였다.

[ 실시예 3] NHC2가 링커층으로 적용된 센서의 제조

제조예 3의 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물(NHC2)을 이용한 것을 제외하고는 상기 실시예 2와 동일한 방법으로 센서를 제조하였다.

[ 실시예 4] NHC3가 링커층으로 적용된 센서의 제조

제조예 4의 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물(NHC3)을 이용한 것을 제외하고는 상기 실시예 2와 동일한 방법으로 센서를 제조하였다.

[ 실시예 5] NHC4가 링커층으로 적용된 센서의 제조

제조예 5의 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물(NHC4)을 이용하고, 아래의 화학 기상 증착법(Chemical Vapor Deposition)을 이용하여 그래핀 채널층과 NHC4를 결합시킨 것을 제외하고는 상기 실시예 2와 동일한 방법으로 센서를 제조하였다.

화학 기상 증착법(Chemical Vapor Deposition)을 이용한 그래핀 채널층과 NHC4의 결합을 보다 구체적으로 설명하면, 벤조[d]이미다졸-3-리움 요오드화물 또는 브롬화물 0.15~0.25 mmol이 포함되어 있는 무수 THF(5ml)을 상온에서 아르곤 존재 하에 저어주면서 바탕 용액으로서 1M KHMDS(0.15~0.25 mmol)이 포함되어 있는 THF(0.15~0.25 mmol)를 상기 벤조[d]이미다졸-3-리움 용액에 적가한 후, 15분 동안 교반하여 혼합 용액을 제조하였다. 이때, 고체 침전물(KI 또는 KBr)이 즉각적으로 형성되는 것을 관찰할 수 있었다. 이어서, 상기 혼합 용액을 0.2μm PTFE 실린지 필터로 여과하고, 농도가 0.05M인 제조예 5의 카벤 화합물로 희석시켜 NHC4가 포함된 카벤 용액을 준비하였다. 여과가 종료된 후, 혼합 용액 중의 THF 용매를 50~60℃에서 제거하고, 상기 실시예 [1-2]에서 준비한 그래핀 트랜지스터에 대하여 120~150℃에서 500 mTorr의 압력으로 15분~30분 동안 감압함으로써 상기 그래핀 채널층 상에 NHC4의 카벤 화합물을 기상 증착시키고, 이를 THF 및 IPA로 세정한 후 진공 상태에서 건조시켜 그래핀 채널층 상에 NHC4의 카벤 화합물이 부착된 실시예 4의 센서를 제조하였다.

[비교예 1]

N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 사용하지 않은 것을 제외하고는 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 센서를 제조하였다.

[비교예 2]

N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 사용하지 않은 것을 제외하고는 상기 실시예 2와 동일한 방법으로 센서를 제조하였다.

[비교예 3]

상기 실시예 [1-1] 및 [1-2]를 통해 형성된 그래핀 트랜지스터를 1,5-diaminonapthalene(DAN) 0.0015 wt%를 포함한 메탄올 용액 30 mL에 침지하여 반응을 진행시킨 후, 증류수를 이용하여 잔여 반응물들을 제거하고 질소 가스를 이용하여 수분을 제거하여, DAN의 나프탈렌 고리가 그래핀 채널층과 π-π 상호 작용을 형성하고 DAN의 아민기(-NH₂)가 외부로 노출되도록 함으로써, 그래핀 채널층의 표면이 DAN의 아민기로 개질된 그래핀 트랜지스터(DAN pi-pi interacted GT)를 제조하였다.

[ 실험예 1]

(1) 본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서에서 카벤 화합물(실시예 1에서는 '카벤')이 정상적으로 부착되어 있는지 확인을 위하여 상기 실시예 1의 [1-3]까지 수행된 센서를 밀도함수이론(Density Functional Theory, DFT)에 따른 모델링을 통해 분석하였으며, 그 결과를 도 7에 나타내었고, 본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서에서 항체의 결합 유무를 확인하기 위하여 상기 실시예 1의 [1-3]까지 수행된 센서(도 8의 'Graphene') 및 [1-4]까지 수행된 센서(도 8의 'Anti-ZIKV/Graphene')의 전류-전압 특성 및 전이 곡선 특성을 분석하였으며, 그 결과를 도 8에 나타내었다.

도 7에 나타낸 바와 같이, 실시예 1에서 적용한 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물과 그래핀 채널층은 0.207 eV의 밴드갭 에너지(강한 전자 밀도에 대응된다)를 가지는 것으로 확인되었는 바, 본 발명에 따른 카벤 화합물은 그래핀 채널층과 우수한 결합성을 나타낸다는 것을 알 수 있다. 또한, 그래핀 표면에 카벤 화합물이 부착됨과 동시에 주변에 벤질 고리에 의해서 전자들이 비편재화되어 '카벤'은 매우 안정하게 그래핀 표면에 부착됨을 확인할 수 있었다.

도 8에 나타낸 바와 같이, 항체 고정 전(Graphene)과 항체 고정 후(Anti-ZIKV/Graphene)의 전류-전압 곡선을 비교해보면 저항 기울기가 감소함을 알 수 있다(도 9의 좌측 그래프). 이를 통해 지카 바이러스 항체가 그래핀 채널에 고정되어 있음을 확인할 수 있다. 또한, 디락 포인트(Dirac point)의 변화를 관찰하면(도 9의 우측 그래프), 전이 곡선이 좌측으로 약 0.12 V 이동한 점으로부터, 그래핀 채널층에 대하여 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물(카벤)에 의한 n-도핑이 이루어졌다는 것을 알 수 있다.

(2) 본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서의 지카 바이러스 검출 성능을 확인하기 위하여 상기 실시예 1의 센서 및 비교예 1의 센서를 이용하여 낮은 농도의 지카 바이러스 항원부터 적용시켜 농도를 10 배 단위로 증가시키며 그에 따른 신호를 측정하였다.

PBS 용액을 사용하여 지카 바이러스 항원을 희석시켜 제조된 농도 1 fg/ml - 100 pg/ml인 항원 용액을 사용한 경우의 검출 실험 결과를 도 9에 나타내었다.

또, Human serum 용액을 사용하여 지카 바이러스 항원을 희석시켜 제조된 농도 10 pg/ml - 10 ㎍/ml인 항원 용액을 사용한 경우의 검출 실험 결과를 도 10에 나타내었다.

도 9에 나타낸 바와 같이, 본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서는 1 fg/ml의 매우 낮은 농도의 지카 바이러스 항원도 감지가 가능하며, 100 pg/ml 정도의 농도에서 감지신호가 포화(saturation)되는 것을 확인할 수 있었다. 이를 통해 본 발명에 따른 센서는 약 1 fg/ml의 매우 낮은 농도의 지카 바이러스도 감지할 수 있음을 확인할 수 있다.

또한, 도 10에 나타낸 바와 같이, 실제 환자 시료와 비슷한 환경을 가진 샘플인 Human serum을 이용하는 경우 10 pg/ml의 매우 낮은 항원도 감지가 가능하며, 최종적으로는 10 ㎍/ml 농도에서 감지신호가 포화(saturation)되는 것을 확인할 수 있었다. 이를 통해 본 발명에 따른 센서는 Human serum에서도 약 10 pg/ml의 매우 낮은 농도의 지카 바이러스도 감지할 수 있음을 확인할 수 있다.

(3) 본 발명에 따른 지카 바이러스 검출용 센서의 선택적 감지 가능성을 확인하기 위하여 상기 실시예 1의 센서를 이용하여 Human serum에서 cross-reactivity test를 수행하였으며, 지카 바이러스(ZIKV)와 같이 플라비바이러스과(Flavivirus family)인 뎅기바이러스(dengue virus) 타입 1(DENV 1) 및 타입 2(DENV 2)를 사용하여 검출 결과를 분석하였으며, 그 결과를 도 11에 나타내었다.

도 11에 나타낸 바와 같이, 뎅기 바이러스를 적용하는 경우(DENV 1 및 DENV 2), 베이스 신호부분과 비교하여 급격한 신호의 변화를 보이지는 않는 것을 확인할 수 있었다. 반면, 지카 바이러스(ZIKV)를 적용하는 경우 확실한 신호 변화를 확인할 수 있었다. 이를 통해 같은 과의 다른 바이러스는 감지 못하고, 지카 바이러스만 선택적으로 확실하게 감지할 수 있음을 확인할 수 있다.

Claims

기판;
상기 기판에 배치되는 그래핀 채널층;
상기 그래핀 채널층의 양단에 이격되어 배치되는 한 쌍의 금속; 및
상기 그래핀 채널층 상에 배치되고 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물로 이루어진 링커층
을 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 링커층은 상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물의 카벤기와 그래핀 채널층의 공유 결합에 의해 형성되고, 상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 말단 부위가 아자이드기 또는 프탈리마이드기로 기능화되어 노출되는 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 하기 화학식 1로 표시되는 화합물인 지카 바이러스 검출용 센서:

<화학식 1>

(상기 화학식 1에서,
상기 A는 아자이드기 또는 프탈리마이드기이고,
상기 R₁은 반복 단위가 2 내지 5인 탄소 수 2 내지 10의 알킬렌기 또는 알콕시알킬렌기이고,
상기 R₂ 및 R₃는 각각 독립적으로 알킬기, 시클로알킬기, 알케닐기, 알키닐기, 아릴기, 알킬렌기, 알케닐렌기, 알키닐렌기, 알콕시기 또는 아릴알킬기이다.)
제3항에 있어서,
상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 6-(4-아지도부톡시-1,3-디아이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴, 6-4(-아지도부톡시)-1,3-디이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴, 6-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴, 6-(2-(2-(2-(2-아지도에톡시)에톡시)에톡시)에톡시)-1,3-디벤질-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴 및 6-(4-(1,3-다이이소인돌린-2-일)부톡시)-1,3-다이이소프로필-1H-벤조[d]이미다졸-2-일리덴으로 이루어진 군으로부터 선택되는 1 종 이상인 것을 특징으로 하는 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 한 쌍의 금속 사이에 노출되어 있는 그래핀 채널층 상에 형성되는 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 자가결합 단일층을 형성하는 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 링커층의 두께는 0.1 nm 내지 1.0 nm인 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 그래핀 채널층은 단층 또는 이층(bi-layer)의 그래핀으로 이루어진 지카 바이러스 검출용 센서.
제1항에 있어서,
상기 센서는 링커층 상에 노출되어 있는 아자이드기 또는 프탈리마이드기에 결합되는 바이오 탐침부를 포함하고,
상기 바이오 탐침부는 지카 바이러스와 특이적 결합 가능한 프로브 물질을 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서.
제9항에 있어서,
상기 프로브 물질은 펩티드, 단백질 및 염기서열로 이루어지는 군으로부터 선택되는 1 종 이상인 지카 바이러스 검출용 센서.
기판 상에 탄화수소 가스를 탄소 공급원으로 하여 화학 기상 증착법으로 그래핀을 성장시켜 그래핀 채널층을 형성하는 단계;
상기 그래핀 채널층에 열증착 공정으로 한 쌍의 금속을 형성하는 단계; 및
상기 그래핀 채널층의 외부로 노출되는 표면 상에 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물을 포함하는 표면처리제를 이용하여 링커층을 형성하는 단계
를 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법.
제11항에 있어서,
상기 N-헤테로사이클릭 카벤 화합물은 이미다졸륨염을 소스로 이용하여 합성되는 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법.
제11항에 있어서,
상기 링커층을 형성하는 단계를 수행한 후,
링커층 상에 지카 바이러스와 특이적 결합 가능한 프로브 물질을 포함하는 바이오 탐침부를 형성하는 단계를 포함하는 지카 바이러스 검출용 센서의 제조방법.