KR20090079912A - 노로바이러스 백신 제제 - Google Patents

노로바이러스 백신 제제 Download PDF

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Abstract

본 발명은 노로바이러스 항원 및 항원보강제, 특히 단가 VLPs의 혼합물 및 다가 VLPs의 혼합물을 포함하는 항원, 및 백신 조성물 및 다가 및 다가 VLPs 모두를 생산하는 방법에 관한 것이며, 상기 VLPs는 하나 이상의 노로바이러스 유전자군으로부터의 캡시드 단백질을 포함한다.
노로바이러스 항원, 항원보강제

Description

노로바이러스 백신 제제{Norovirus vaccine formulations}
본 발명은 백신 분야, 특히 노로바이러스에 대한 백신 분야이다. 또한, 본 발명은 백신 조성물의 제조 방법 및 면역유전반응을 유도하는 방법에 관한 것이다.
노로바이러스는 비박테리아성 위장염의 유행성 발생의 한 중요한 원인으로 출현한 배양할 수 없는 인간 칼리시바이러스이다(Glass et al, 2000; Hardy et at, 1999). 노로바이러스의 임상적 중요성은 민감한 분자 진단법의 개발 이전에는 저평가되었다. 유전자형 유전자군 I 놀워크 바이러스(NV) 게놈의 복제 및 재조합 바큘로바이러스 발현 시스템으로부터 바이러스-유사 입자들(VLPs)의 생산은 널리 퍼진 노로바이러스 감염을 밝혀낸 분석법의 개발을 유도하였다(Jiang et al 1990; 1992)
노로바이러스는 절단되지 않은 RNA 게놈을 함유하는 단일가닥의 양성 센스 RNA 바이러스이다. 바이러스 게놈은 3개의 오픈 리딩 프레임을 암호화하고, 이중 후자 둘은 각각 중요한 캡시드 단백질과 중요하지 않은 구조 단백질의 생산을 특징으로 한다(Glass et al 2000). 진핵세포 발현 시스템에서 높은 수준으로 발현될 때, NV의 캡시드 단백질 및 특정 다른 노로바이러스들은 천연 노로바이러스 비리온들과 구조적으로 유사한 VLPs 속에서 자가결합된다. 투과전자현미경으로 관찰할 때, VLPs는 인간 대변 샘플로부터 분리한 감염성 비리온들과 형태적으로 분간할 수 없다.
노로바이러스들에 대한 면역 반응은 복잡하고 보호의 상관관계의 한쪽은 이제 설명되고 있다. 천연 바이러스로 수행된 인간 지원자 연구들은 점막-유도 기억 면역 반응들이 감염으로부터 단기간의 보호를 제공한다는 것을 증명하고 백신-매개 보호가 실현 가능하다는 것을 나타내었다(Lindesmith et al. 2003; Parrino et al.1997; Wyatt et al., 1974))
비록 노로바이러스는, VLPs의 이용가능성과 대량으로 생산되는 이들의 능력 때문에 인비트로 배양될 수 없으나, 노로바이러스 캡시드의 항원 및 구조 정밀사진을 뚜렷이 보이게 하는데 상당한 진전이 이루어졌다. VLPs는 감염성 유전자 물질이 없으면서 바이러스 캡시드 단백질의 확실한 증거를 보유한다. 결과적으로, VLPs는 바이러스의 세포 수용체와의 기능적 상호작용을 모방하여, 감염을 재생하거나 일으키는 능력이 없으면서 적절한 숙주 면역반응을 유도한다. NIH와 공동으로, 베일러 의대는 학문적, 투자자-지원 I 단계 임상 시험에서 인간 지원자들에서 NV VLPs에 대한 체액, 점막 및 세포 면역 반응들을 연구하였다. 경구 투여된 VLPs는 건강한 어른들에서 안전하고 면역원성이 있다(Ball et al. 1999; Tacket et al. 2003). 다른 연구 센터에서, 동물 모델에서의 임상전 실험들은 박테리아 엑소토신 항원보강제로 비강으로 투여될 때 VLPs에 대한 면역반응의 증가를 증명하였다(Guerrero et al. 2001; Nicollier-Jamot et al. 2004; Periwal et al. 2003). 일괄해서, 이런 데이터는 적절하게 제조된 VLPs로 이루어진 백신은 노로바이러스 감염에 대해 면역성을 주는 실행가능한 전략을 나타낸다는 것을 주장한다.
본 발명은 노로바이러스 항원을 포함하는 항원 및 백신 제제를 제공한다. 한 실시예에서, 상기 제제는 적어도 하나의 항원보강제를 더 포함한다. 노로바이러스 항원은 유전자군 I 또는 유전자군 II 바이러스 서열 또는 일치 바이러스 서열로부터 유도될 수 있다. 노로바이러스 제제는 항원 펩타이드, 단백질 또는 바이러스-유사 입자들(VLPs)을 포함한다. 한 실시예에서, VLPs는 변형될 수 있다. 다른 실시예에서, 항원 펩타이드 및 단백질은 캡시드 모노머, 캡시드 멀티머, 단백질 응집체 및 이의 혼합물로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 다른 실시예에서, 노로바이러스 항원은 약 0.01중량% 내지 약 80중량%의 농도로 존재한다. 노로바이러스 항원의 복용량은 복용 당 약 1㎍ 내지 약 100mg의 양으로 존재한다.
다른 실시예에서, 노로바이러스 VLPs는 적어도 하나의 캡시드 단백질 또는 이의 단편을 암호화하는 노로바이러스 핵산 서열을 사용하여 발현 시스템에서 생산된 재조합 VLPs이다. 캡시드 단백질은 VP1 및 VP2 또는 이의 조합으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 발현 시스템은 효모, 박테리아, 곤충, 포유류 발현 시스템 또는 바큘로바이러스-감염 세포 발현 시스템과 같은 재조합 세포 발현 시스템일 수 있다.
또 다른 실시예에서, 조성물은 전달 물질을 더 포함하고, 이 전달 물질은 저장소 효과를 제공함으로써 항원 흡수를 향상시키는 역할을 하고, 전달 부위에서 항원 잔류 시간을 증가시키고 또는 전달 부위에서 세포 밀착 결합의 완화를 통해 면역 반응을 향상시킨다. 전달 물질은 생체접착제일 수 있는데, 바람직하게는 글리코사미노글리칸(예를 들어, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 셀페이트 콘드로이틴, 케라탄 설페이트, 헤파린, 헤파린 설페이트, 하이알우로난), 탄화수소 폴리머(예를 들어, 펙틴, 알지네이트, 글리코겐, 아밀라제, 아밀로펙틴, 셀룰로오스, 키틴, 스타키로스, 우눌린, 덱스트린, 덱스트란), 폴리(아크릴산)의 가교 유도체, 폴리바이닐 알콜, 폴리바이닐 파이롤리돈, 폴리사카라이드(뮤신 및 다른 점막폴리사카라이드 포함) 셀룰로오스 유도체(예를 들어, 하이드록시프로필 메틸셀룰로오스, 카복시메틸셀룰로오스), 단백질(예를 들어, 렉틴, 섬모 단백질) 및 데옥시리보핵산으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 점막접착제일 수 있다. 바람직하게는, 점막접착제는 폴리사카라이드이다. 더욱 바람직하게는, 점막접착제는 키토산 또는 키토산 염 또는 키토산 염기와 같은 키토산을 함유하는 혼합물이다.
또 다른 실시예에서, 본 발명은 항원보강제를 더 포함하는 조성물을 제공한다. 항원보강제는 톨-라이크 리셉터(TLR) 효현제, 모노포스포릴 지질 A(MPL®), 합성 지질 A, 지질 A 모방체 또는 유사체, 알루미늄 염, 사이토카인, 사포닌, 무라밀 다이펩타이드(MDP) 유도체, CpG 올리고, 그람-음성 박테리아의 리포폴리사카라이드(LPS), 폴리포스파젠, 에멀젼, 비로솜, 코크리트, 폴리(락티드-코-글리콜리드)(PLG) 미세입자, 폴록사머 입자, 미세입자, 박테리아 내독소와 같은 내독소 및 리포솜으로 이루어진 그룹으로부터 선택될 수 있다. 바람직하게는, 항원보강제는 톨-라이크 리셉터(TLR) 효현제이다. 더욱 바람직하게는, 항원보강제는 MPL®이다.
본 발명의 조성물들은 액체 제제 또는 건조 분말 제제로 제공될 수 있다. 본 발명의 건조 분말 제제는 지름 약 10 내지 약 500 마이크로미터의 평균 입자 크기를 가질 수 있다. 한 실시예에서, 조성물은 항원 제제이다. 다른 실시예에서, 조성물은 백신으로 투여하기 위해 제제화된다. 투여의 적절한 경로는 점막, 근육내, 정맥, 피하(subcutaneous), 피내, 피하(subdermal) 또는 경피를 포함한다. 특히, 투여 경로는 근육내 또는 점막일 수 있고, 점막 투여의 바람직한 경로는 비강, 경구 또는 질 투여 경로를 포함한다. 다른 실시예에서, 조성물은 코 스프레이, 비액, 또는 건조 분말로 제제화되며, 제제는 비강에 밀접하게 고정되거나 삽입된 제제를 함유하는 장치로부터 비강 내에서 빠른 침적에 의해 투여된다. 다른 실시예에서, 제제는 하나 또는 두 콧구멍으로 투여된다.
본 발명은 피험자에게서 노로바이러스에 대한 면역반응을 일으키기 위한 방법을 제공하며, 피험자에게 노로바이러스 조성물을 포함하는 항원 제제 또는 백신을 투여하는 단계를 포함한다. 한 실시예에서, 노로바이러스 조성물을 포함하는 항원 제제 및 백신은 하나 이상의 노로바이러스 항원들에 대해 항체들을 생성하는데 사용된다. 다른 실시예에서, 노로바이러스 백신 제제는 노로바이러스 감염을 치료하는데 사용될 수 있다.
본 발명은 노로바이러스 항원 및 백신 조성물 및 조성물의 제조 방법에 관한 것이다. 특히, 본 발명은 노로바이러스 항원 및 적어도 하나의 항원보강제를 포함하는 조성물을 제공한다. 부가적으로 또는 선택적으로, 조성물은 적어도 하나의 전달 물질을 더 포함할 수 있다. 또한 본 발명은 면역반응을 일으키거나 노로바이러스 항원에 대한 항체들을 생산하기 위해 동물에 조성물을 투여하는 방법을 제공한다.
노로바이러스 항원
본 발명은 하나 이상의 노로바이러스 항원을 포함하는 조성물을 제공한다. "노로바이러스"는 칼리시바이러스과의 노로바이러스 속의 일원을 의미한다. 일부 실시예에서, 노로바이러스는 인간 또는 비인간 포유류 종들에 감염성인 관련된, 양성-센스 단일-가닥 RNA, 외피가 없는 바이러스의 그룹을 포함할 수 있다. 일부 실시예에서, 노로바이러스는 인간에게 급성 위장염을 일으킬 수 있다. 또한 노로바이러스는 전자현미경으로 관찰할 때 경계가 정해진 구조 또는 가장자리를 가진 소형 원형 구조 바이러스(SRSVs)로 부를 수 있다. 노로바이러스 내에 포함되는 것은 핵산 및 아미노산 서열로 정의된 적어도 4개 유전자군이고, 15개 유전자 집단을 포함한다. 주요 유전자군은 GI 및 GII이다. GIII 및 GIV이 제안되었으나 일반적으로 허용된다. GIII의 대표적인 것은 소, 제나 균주(Jena strain)이다. GIV는 하나의 바이러스, 알파트론을 함유한다. 노로바이러스의 추가 설명을 위해서는 Vinje et al. J. Clin. Micro. 41:1423-1433 (2003) 참조. "노로바이러스"는 재조합 노로바이러스 바이러스-유사 입자들(rNOR VLPs)을 의미한다. 일부 실시예들에서, 재조합 노로바이러스 VLPs는 적어도 하나의 캡시드 단백질 또는 이의 단편을 암호화하는 노로바이러스 핵산 서열을 사용하여 발현 시스템에서 생산된다. 다른 실시예들에서, 예를 들어, Sf9 세포들에서 바큘로바이러스 벡터로부터, 세포들의 ORF2에 의해 암호화된 노로바이러스 캡시드 단백질의 재조합 발현은 캡시드 단백질의 VLPs 속으로의 자발적인 자가결합을 유도할 수 있다. 노로바이러스 핵산 서열은 수율 또는 안정성을 향상시키거나 암호화된 항원의 항원 또는 면역 특성을 개선하기 위해 다양한 노로바이러스 균주 또는 변형된 합성 구조물을 포함하는 일치 서열일 수 있다. VLPs는 노로바이러스와 구조적으로 유사하나 바이러스 RNA 게놈이 없어서 감염성이 없다. 따라서, "노로바이러스"는 결핍 입자들을 포함하는 감염성 또는 비감염성 입자들일 수 있는 비리온을 포함한다.
노로바이러스의 비제한적인 예들은 놀워크 바이러스(NV, GenBank M87661, NP05682I), 사우스앰톤 바이러스(SHV, GenBank L07418), 사막방패바이러스(DSV, U04469), 헤세 바이러스(HSV), 치바 바이러스(CHV, GenBank AB042808), 하와이 바이이러스(HV, GenBank U07611), 설산 바이러스(SMV, GenBank U70059), 토론토 바이러스(TV, Leite et al, Arch. Virol. 141 :865-875), 브리스톨 바이러스(BV), 제나 바이러스(JV, AJ01099), 메릴랜드 바이러스(MV, AY032605), 세토 바이러스(SV, GenBank AB031013), 켑버웰 바이러스(CV, AF145896), 로드스달 바이러스(LV, GenBank X86557), 그림스비 바이러스(GrV, AJ004864), 멕시코 바이러스(MXV, GenBank U22498), 박서(AF538679), C59(AF435807), VAl 15(AY038598), BUDS (AY660568), 휴스턴 바이러스(HoV), 미네르바 균주(EF 126963.1), 라우렌 균주(EF 126966.1), MOH(AF397156), 패리스 아일랜드(PiV; AY652979), VA387(AY038600), VA207(AY038599), 및 오퍼레이션 이라키 프리덤(OIF, AY675554)을 포함한다. 핵산 및 이의 상응하는 아미노산 서열은 전체가 참조로 포함된다. 일부 실시예들에서, 암호문이 동정 목적을 위해 사용될 수 있고 구성된다: 바이러스가 분리된 숙주 종들/속 약어/종 약어/균주 이름/발생 연도/기원 국가((Green et al., Human Caliciviruses, in Fields Virology Vol. 1 841- 874 (Knipe and Howley, editors-in-chief, 4th ed., Lippincott Williams & Wilkins 2001)). 유전자군 I.1(놀워크 바이러스) 및 II.4(휴스톤 바이러스)와 같은 노로바이러스 유전자군의 조합 또는 다른 공통적으로 순환하는 균주 또는 조합 또는 이의 일부를 나타내는 합성 구조물이 일부 실시예에서 바람직하다. 노로바이러스의 새로운 균주들은 일상적으로 동정되고(Centers for Disease Control, Morbidity and Mortality Weekly Report, 56(33):842-846 (2007)) 둘 이상의 바이러스 균주의 일치 서열들은 노로바이러스 항원을 발현하는데 사용될 수 있다.
노로바이러스 항원은 펩타이드, 단백질 또는 바이러스-유사 입자들(VLPs)의 형태일 수 있다. 한 바람직한 실시예에서, 노로바이러스 항원은 VLPs를 포함한다. 본 발명에서 사용된 대로, "바이러스-유사 입자(들) 또는 VLPs"는 바이러스-유사 입자(들), 단편(들), 응집체 또는 노로바이러스의 서열을 암호화하고 감염성 노로바이러스 입자들의 항원 특성(들)과 유사한 항원 특성(들)을 포함하는 캡시드 단백질로부터 생산된 이의 부분(들)을 의미한다.
노로바이러스 항원들은 캡시드 모노머, 캡시드 멀티머, 단백질 또는 VLPs의 펩타이드 단편 또는 응집체 또는 이의 혼합물 형태일 수 있다. 노로바이러스 항원 단백질 또는 펩타이드는 당업계에 공지된 방법들을 사용하여 생산된 변형 형태일 수 있다.
노로바이러스 항원들은 본 발명의 VLPs 상에 또는 VLPs 안에 발현된 상기 캡시드 단백질 또는 이의 단편의 변형체들을 포함할 수 있다. 변형체들은 구성 단백질의 아미노산 서열에 변경을 포함할 수 있다. 폴리펩타이드에 대해 "변형체"란 용어는 기준 서열에 대해 하나 이상의 아미노산이 바뀐 아미노산 서열을 의미한다. 변형체는 "보존성" 변화가 일어날 수 있는데, 여기서 치환된 아미노산은 유사한 구조적 또는 화학적 특성을 갖는데, 예를 들어, 루신이 아이소루신에 의해 치환된다. 선택적으로, 변형체는 "비보존성" 변화가 일어날 수 있는데, 여기서 글리신이 트립토판으로 치환된다. 유사한 적은 변형은 아미노산 결실 또는 삽입 또는 둘 다를 포함할 수 있다. 생물학적 또는 면역학적 활성을 없애지 않고 어느 아미노산 잔기가 치환되고, 삽입되고 결실될 수 있는 지를 결정하는 길잡이는, 예를 들어, DNASTAR 소프트웨어와 같은 당업계에 주지된 컴퓨터 프로그램을 사용하여 발견될 수 있다.
복제, 돌연변이 등과 같이 본 발명에 적용할 수 있는 분자생물학적 기술들을 기술하는 일반적인 교과서는 Berger and Kimmel, Guide to Molecular Cloning Techniques, Methods in Enzymology volume 152 Academic Press, Inc., San Diego, Calif. (Berger); Sambrook et al, Molecular Cloning--A Laboratory Manual (3rd Ed.), Vol. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y., 2000 ("Sambrook") and Current Protocols in Molecular Biology, F. M. Ausubel et al, eds., Current Protocols, a joint venture between Greene Publishing Associates, Inc. and John Wiley & Sons, Inc., ("Ausubel")를 포함한다. 이런 교과서들은 돌연변이 유발, 벡터, 프로모터의 사용 및 노로바이러스의 캡시드 단백질의 복제 및 돌연변이에 관한 많은 다른 주제들을 기술한다. 다양한 형태의 돌연변이 유발이 단백질 분자들을 암호화하는 일치 서열을 포함하는 변형 핵산들을 생산 및/또는 분리하는데 사용될 수 있고 본 발명의 VLPs 안의 또는 상의 단백질들을 추가로 변형/돌연 변이시키는데 사용될 수 있다. 돌연변이 유발은 특정 부위, 랜덤 포인트 돌연변이 유발, 주형을 함유하는 우라실을 사용하는 균질 재조합(DNA 셔플링) 돌연변이 유발, 특정 올리고뉴클레오티드 돌연변이 유발, 포스포로티오에이트-변형 DNA 돌연변이 유발, 갈라진 두 가닥 DNA를 사용하는 돌연변이 유발 등을 포함하나 이에 제한되지 않는다. 다른 적절한 방법은 점 불일치 교정, 교정-결함 숙주 균주를 사용하는 돌연변이 유발, 제한-선택 및 제한-정제, 결실 돌연변이 유발, 전체 유전자 합성에 의한 돌연변이 유발, 이중가닥 파괴 교정 등을 포함한다.
본 발명의 VLPs는 VP1 및/또는 VP2와 같은 전장 노로바이러스 캡시드 단백질 또는 단백질 또는 당업계의 표준 방법을 사용하는 특정 VP1 또는 VP2 유도체로 형성될 수 있다. 선택적으로, VLP를 형성하는데 사용된 캡시드 단백질은 절단된 캡시드 단백질이다. 일부 실시예들에서, 예를 들어, VLPs의 적어도 하나는 절단된 VP1 단백질을 포함한다. 다른 실시예들에서, 모든 VLPs는 절단된 VP1 캡시드를 포함한다. 절단은 N-또는 C-말단 절단일 수 있다. 절단된 캡시드 단백질들은 적절한 기능성 캡시드 단백질 유도체들이다. 기능성 캡시드 단백질 유도체들은 면역반응이 전장 캡시드 단백질로 이루어진 VLP에 의해 일어나는 것과 동일한 방식으로 면역반응(필요한 경우, 적절하게 도움이 될 때)을 일으킬 수 있다.
VLPs는 중요한 VP1 단백질 및/또는 중요하지 않은 VP2 단백질을 함유할 수 있다. 바람직하게는, 각 VLP는 단가 VLP를 생산하는 단지 하나의 노로바이러스 유전자군으로부터의 VP1 및/또는 VP2 단백질을 함유한다. 본 발명에서 사용된 대로, "단가"라는 용어는 항원 단백질들이 단일 노로바이러스 유전자군으로부터 유도된다는 것을 의미한다. 예를 들어, VLPs는 유전자군 I(예를 들어, 놀워크 바이러스로부터의 VP1 및 VP2)의 바이러스 균주로부터의 VP1 및/또는 VP2를 함유한다. 바람직하게는, VLP는 주로 VP1 단백질로 구성된다. 본 발명의 한 실시예에서, 항원은 1가 VLPs의 혼합물이고 여기서 조성물은 여러 바이러스 균주(예를 들어, 놀워크 바이러스 및 휴스톤 바이러스)로부터 얻은 다른 노로바이러스 유전자군으로부터의 VP1 및/또는 VP2로 구성된 VLPs와 혼합된 단일 노로바이러스 유전자군으로부터의 VP1 및 VP2로 구성된 VLPs를 포함한다. 예를 들어, 조성물은 노로바이러스 유전자군 II의 하나 이상의 균주로부터의 단가 VLPs와 함께 노로바이러스 유전자군 I의 하나 이상의 균주로부터의 단가 VLPs를 함유할 수 있다. 바람직하게는, 노로바이러스 VLP 혼합물은 놀워크 및 휴스톤 노로바이러스의 균주들로 구성된다.
그러나, 본 발명의 다른 실시예에서, VLPs는, 예를 들어, 제 2 노로바이러스 유전자군으로부터의 VP1 및/또는 VP2와 상호혼합된 하나의 노로바이러스 유전자군으로부터의 VP1 및/또는 VP2 단백질을 포함하는 다가 VLPs일 수 있고, 여기서 다른 VP1 및 VP2 단백질은 키메릭 VP1 및 VP2 단백질이 아니나, 동일한 캡시드 구조 내에 함께 결합되어 면역성 VLPs를 형성한다. 본 발명에서 사용된 대로, "다가"라는 용어는 항원 단백질들이 노로바이러스 둘 이상의 유전자군으로부터 유도된다는 것을 의미한다. 다가 VLPs는 둘 이상의 바이러스 균주로부터 얻은 VLP 항원을 함유할 수 있다. 예를 들어, 조성물은 노로바이러스 유전자군 II의 하나 이상의 균주로부터의 캡시드 모노머 또는 멀티머와 함께 노로바이러스 유전자군 I의 하나 이상의 균주로부터의 캡시드 모노머 또는 멀티머로 구성된 다가 VLPs를 함유할 수 있다. 바람직하게는, 다가 VLPs는 놀워크 및 휴스톤 노로바이러스의 균주들로부터의 캡시드 단백질들을 함유한다.
조성물 내에서 단가 또는 다가 VLPs의 조합은 각각의 VLP 형태의 면역원성을 차단하지 않은 것이 바람직하다. 특히 본 발명의 조합에서 노로바이러스 VLPs 사이에 간섭이 없는 것이 바람직하며, 본 발명의 결합된 VLP 조성물은 백신에서 나타낸 각 노로바이러스 유전자형에 의해 감염에 대해 면역성을 유발할 수 있다. 적합하게는 조합에서 소정의 VLP 형태에 대한 면역 반응은 개별적으로 측정될 때 동일한 VLP 형태의 면역 반응의 적어도 50%, 바람직하게는 100% 또는 실질적으로 100%이다. 면역 반응은 실시예들에서 기술된 대로 항체 반응에 의해 적절하게 측정될 수 있다.
다가 VLPs는 개별 캡시드 단백질의 개별 발현에 의해 생산될 수 있고 조합에 의해 VLPs를 형성한다. 선택적으로 다가 캡시드 단백질들은 하나 이상의 DNA 구조물로부터 동일한 세포 내에 발현될 수 있다. 예를 들어, 다가 DNA 구조물들은 숙주 세포들 속으로 트랜스폼 또는 트랜스펙트될 수 있고, 각 벡터는 다른 캡시드 단백질을 암호화한다. 선택적으로 공유된 프로모터 또는 다가 개별 프로모터에 의해 제어될 수 있는 다가 캡시드 유전자를 가진 단일 벡터가 사용될 수 있다. 적절한 경우, IRES 요소들은 벡터 속에 혼합될 수 있다. 이런 발현 전략들을 사용하여, 공동 발현된 캡시드 단백질들은 뒤이은 VLP 형성을 위해 공동 정제될 수 있거나 자연적으로 다가 VLPs를 형성할 수 있고 이후 정제될 수 있다.
다가 VLP 생산을 위한 바람직한 방법은 다른 노로바이러스 유전자형으로부터 VLP 캡시드 단백질 또는 VP1 및/또는 VP2 단백질과 같은 유도체를 제조하는 단계, 단백질들을 혼합하는 단계 및 단백질을 결합하여 다가 VLPs를 생산하는 단계를 포함한다. 캡시드 단백질들은 미정제 추출물의 형태일 수 있고, 혼합 이전에 부분적으로 정제되거나 정제될 수 있다. 다른 유전자군의 결합된 단가 VLPs는 분해될 수 있고, 함께 혼합되어 다가 VLPs 속에 재결합될 수 있다. 바람직하게는, 단백질 또는 VLPs는 결합하기 전에 적어도 부분적으로 정제된다. 선택적으로, 다가 VLPs의 추가 정제는 결합 후 수행될 수 있다.
적합하게는 본 발명의 VLPs는 VLPs의 분해 및 재결합에 의해 제조되어, 균질 및 순수 VLPs를 제공한다. 한 실시예에서 다가 VLPs는 둘 이상의 VLPs의 분해, 뒤이어 재결합하기 이전에 임의의 적절한 시점에서 분해된 VLP의 조합에 의해 제조될 수 있다. 이런 방법은, 예를 들어, 일부 효모 균주에서 발생하는 것과 같이, VLPs가 발현된 VP1 단백질로부터 자연적으로 형성될 때 적합하다. VP1 단백질의 발현이 자연적인 VLP 형성으로 유도되지 않는 경우, VP1 단백질 또는 캡소머의 제제들은 VLPs 속에 모이기 전에 결합될 수 있다.
다가 VLPs가 사용되는 경우, 바람직하게는 VLPs의 성분들은 이들이 최종 혼합된 VLP에 있는 것이 바람직한 비율로 혼합된다. 예를 들어, 놀워크 및 휴스톤 바이러스(또는 다른 노로바이러스 균주)로부터의 부분적으로 정제된 VP1 단백질의 동일한 양의 혼합물은 다가 VLP에 대략 동일한 양의 각 단백질을 제공한다.
다가 VLPs를 포함하는 조성물들은 본 발명에 참조로 포함된 WO 98/44944, WO0045841의 용액들과 같이 당업계에 공지된 용액들에 의해 안정화될 수 있다.
본 발명의 조성물들은 VP1 및 VP2 단백질 또는 유도체 이외에 다른 단백질 또는 단백질 단편을 포함할 수 있다. 다른 단백질 또는 펩타이드는 본 발명의 조성물과 공동 투여될 수 있다. 선택적으로 조성물은 비-노로바이러스 항원으로 제제화될 수 있거나 공동 투여될 수 있다. 이런 항원들은 다른 질환들에 대한 보호를 제공하는 것이 적절하다.
VP1 단백질 또는 기능성 단백질 유도체는 VLP를 형성할 수 있고, VLP 제제는 전자현미경 및 동적 레이저광 산란과 같은 표준 기술들로 분석될 수 있다.
항원 제조
본 발명의 항원 분자들은 유기체들로부터의 분리 및 정제에 의해 제조되며 여기서 항원 분자들은 자연적으로 발생하거나 재조합 기술들에 의해 제조될 수 있다. 바람직하게는, 비록 대장균 또는 S. cerevisiae , S. pombe , Pichia pastori와 같은 효모 세포들 또는 다른 피키아 발현 시스템, CHO 또는 HEK 시스템과 같은 포유류 세포 발현과 같은 임의의 적절한 세포들이 사용될 수 있지만, 노로바이러스 VLP 항원들은 Sf9 또는 H5 세포들과 같은 곤충 세포들로 제조된다. 재조합 방법 또는 합성에 의해 제조될 때, 펩타이드를 구성하는 아미노산의 하나 이상의 삽입, 결실, 역위 또는 치환이 이루어질 수 있다. 상기 항원들의 각각은 실질적으로 순수한 상태로 사용되는 것이 바람직하다.
곤충 세포 배양액에 노로바이러스 VLPs의 생산 방법은 전문이 참조로 포함된 미국특허 제 6,942,865호에 이미 개시되어 있다. 간단히, 바이러스 캡시드 유전자(OFR2) 및 중요하지 않은 구조 유전자(ORF3)를 함유하는 게놈의 3' 말단으로부터의 cDNA가 복제되었다. 바이러스 캡시드 유전자들을 운반하는 재조합 바큘로바이러스들은 복제된 cDNAs로부터 제조되었다. 노로바이러스 VLPs는 Sf9 또는 H5 곤충 세포 배양액에서 생산되었다.
항원보강제
본 발명은 노로바이러스 항원과 사용하기 위한 항원보강제를 포함하는 조성물을 제공한다. 대부분의 항원보강제는 빠른 이화작용으로부터 항원을 보호하도록 설계된 물질, 예를 들어, 수산화알루미늄 또는 미네랄 오일 및 단백질로부터 유도된 백일해(Bordatella pertussis) 또는 결핵균(Mycobacterium tuberculosis)과 같은 면역반응의 자극제를 함유한다. 적절한 항원보강제들은 구입할 수 있고, 예를 들어, 프레운드 불완전 항원보강제 및 완전 항원보강제(Pifco Laboratories, Detroit, Mich.); 머크 항원보강제 65(Merck and Company, Inc., Rahway, NJ.); 수산화알루미늄 겔(알룸)과 같은 알루미늄 염 또는 인산알루미늄; 칼슘, 철 또는 아연염; 아실화 티로신의 불용성 현탁액; 아실화 과당; 양이온적으로 또는 음이온적으로 유도된 폴리사카라이드; 폴리포스파젠; 생분해성 미세구; 및 퀼 A이다.
또한 적절한 항원보강제는 톨-라이크 리셉터(TLR) 효현제, 모노포스포릴 지질 A(MPL), 합성 지질 A, 지질 A 모방체 또는 유사체, 알루미늄 염, 사이토카인, 사포닌, 무라밀 다이펩타이드(MDP) 유도체, CpG 올리고, 그람-음성 박테리아의 리포폴리사카라이드(LPS), 폴리포스파젠, 에멀젼, 비로솜, 코크리트, 폴리(락티드-코-글리콜리드)(PLG) 미세입자, 폴록사머 입자, 미세입자, 박테리아 내독소와 같은 내독소 및 리포솜을 포함하나 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 항원보강제는 박테리아로 유도되지 않은 엑소톡신이다. 바람직한 항원보강제는 3DMPL 또는 QS21과 같은 Th1 형태 반응을 자극하는 것들이다.
살모넬라로부터의 지질 A의 비독성 유도체인 모노포스포릴 지질 A(MPL)는 백신 항원보강제로 개발된 강력한 TLR-4 효현제이다(Evans et al. 2003). 임상전 설치류 연구에서, 비강 MPL은 전신, 체액 반응뿐만 아니라 분비 반응을 향상시키는 것으로 나타났다(Baldridge et al. 2000; Yang et al. 2002). 120,000 이상의 환자들의 임상 연구에서 백신 항원보강제로서 안정하고 효과적인 것으로 증명되었다(Baldrick et al, 2002; 2004). MPL은 TLR-4 수용체를 통해 선천성 면역성의 유도를 자극하고 따라서 그람 음성 및 그람 양성 박테리아, 바이러스, 및 기생충을 포함하는 매우 넓은 범위의 감염성 병원균에 대해 비특이적 면역 반응을 일으킬 수 있다(Baldrick et al. 2004; Persing et al. 2002). 비강 제제에 MPL을 포함하면 선천성 반응을 빠르게 유도하여, 바이러스 면역성 검사로부터 비특이적 면역반응을 유발하는 반면 백신의 항원 성분들에 의해 발생한 특이적 반응을 향상시킨다.
따라서, 한 실시예에서, 본 발명은 후천성 및 선천성 면역성의 인핸서로서 모노포스포릴 지질(MPL®) 또는 3 De-O-아실화 모노포스포릴 지질 A(3D-MPL®)를 포함하는 조성물을 제공한다. 화학적으로 3D-MPL®은 3 De-O-아실화 모노포스포릴 지질 A와 4, 5 또는 6개 아실화 사슬의 혼합물이다. 3 De-O-아실화 모노포스포릴 지질 A의 바람직한 형태는 유럽특허 0 689 454 B1(SmithKline Beecham Biologicals SA)에 개시되며, 참조로 본 발명에 포함된다. 다른 실시예에서, 본 발명은 BioMira's PET 지질 A 또는 TLR-4 효현제와 같이 작용하도록 설계된 합성 유도체와 같은 합성 지질 A, 지질 A 모방체 또는 유사체를 포함하는 조성물을 제공한다.
"유효량의 항원보강제"는 당업자가 잘 이해할 것이고, 투여된 항원에 대한 면역 반응을 자극할 수 있는 하나 이상의 항원보강제의 양, 즉, 비강 세척에서 IgA 수준, 혈청 IgG 또는 IgM 수준 또는 B 및 T-세포 증식의 면에서 측정된 대로, 투여된 항원 조성물의 면역 반응을 증가시키는 양을 포함한다. 면역글로불린 수준의 적절하게 효과적인 증가는 임의의 항원보강제 없는 동일한 항원 조성물과 비교해서 5%이상, 바람직하게는 25%이상 및 특히 50%이상을 포함한다.
전달 물질
또한 본 발명은 숙주 점막폴리사카라이드의 부분 탈수의 단일 또는 결합 효과에 의한 증가된 유체 점도, 전달 물질의 물리적 특성을 기초로 또는 전달 물질 및 저장소 효과를 제공하는 노출 부위에서 숙주 조직들 사이의 이온 상호작용을 통해 항원 흡수를 증가시키는 작용을 하는 전달 물질을 포함하는 조성물을 제공한다. 선택적으로, 전달 물질은 전달 부위에서 항원 잔류 시간을 증가시킨다(예를 들어, 항원의 지연 배제). 이런 전달 물질은 생체접착성 물질일 수 있다. 특히, 생체접착제는 글리코사미노글리칸(예를 들어, 콘드로이틴, 설페이트, 데르마탄 셀페이트 콘드로이틴, 케라탄 설페이트, 헤파린, 헤파린 설페이트, 하이알우로난), 탄화수소 폴리머(예를 들어, 펙틴, 알지네이트, 글리코겐, 아밀라제, 아밀로펙틴, 셀룰로오스, 키틴, 스타키로스, 우눌린, 덱스트린, 덱스트란), 폴리(아크릴산)의 가교 유도체, 폴리바이닐 알콜, 폴리바이닐 파이롤리돈, 폴리사카라이드(뮤신 및 다른 점막폴리사카라이드 포함) 셀룰로오스 유도체(예를 들어, 하이드록시프로필 메틸셀룰로오스, 카복시메틸셀룰로오스), 단백질(예를 들어, 렉틴, 섬모 단백질) 및 데옥시리보핵산으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 점막접착제일 수 있다. 바람직하게는, 점막접착제는 키토산 또는 키토산 염 또는 키토산 염기(예를 들어, 키토산 글루타메이트)와 같은 폴리사카라이드이다.
갑각류의 껍질에 있는 키틴으로부터 유도된 양전하 직선형 폴리사카라이드인 키토산은 상피 세포들 및 이들의 덮개 점막층에 대한 생체접착제이다. 키토산에 의한 항원 제제는 비강 점막과의 접촉 시간을 증가시켜, 저장소 효과에 의해 흡수를 증가시킨다(Ilium et al. 2001; 2003; Davis et al. 1999; Bacon et al. 2000; van der Lubben et al. 2001; 2001; Lim et al. 2001). 키토산은 동물 모델과 인간에서 독감, 백일해 및 디프테리아를 포함하는 여러 백신들에 대한 비강 전달 시스템으로 검사하였다(Ilium et al. 2001; 2003; Bacon et al. 2000; Jabbal-Gill et al. 1998; Mills et al. 2003; McNeela et al. 2004). 이런 검사들에서, 키토산은 비경구 백신접종과 동일한 수준으로 전신 면역반응을 향상시키는 것으로 나타났다. 또한, 현저한 항원-특이적 IgA 수준이 점막 분비액에서 측정되었다. 따라서, 키토산은 비강 백신 효과를 크게 향상시킬 수 있다. 또한, 이의 물리적 특성들 때문에, 키토산은 분말로 제제화된 비강 백신으로 특히 적합하다(van der Lubben et al. 2001; Mikszta et al. 2005 ; Huang et al. 2004).
따라서, 한 실시예에서, 본 발명은 비강 투여에 적합한 항원 또는 백신 조성물을 제공하며, 여기서 조성물은 항원 및 선택적으로 유효량의 항원보강제를 포함한다. 바람직한 실시예들에서, 본 발명은 키토산과 같은 적어도 하나의 전달 물질 및 MPL®, CPGs, 이미퀴모드(imiquimod), 가디퀴모드(gardiquimod), 또는 합성 지질 A 또는 지질 A 모방체 또는 유사체와 같은 적어도 하나의 항원보강제와 함께 노로바이러스 VLP와 같은 노로바이러스 항원을 포함하는 항원 또는 백신 조성물을 제공한다.
키토산의 분자량은 10kDa 내지 800kDa, 바람직하게는 100kDa 내지 700kDa 및 더욱 바람직하게는 200kDa 내지 600kDa이다. 조성물에서 키토산의 농도는 통상적으로 약 80%(w/w)까지, 예를 들어, 5%, 10%, 30%, 50%, 70% 또는 80%일 것이다. 키토산은 적어도 75% 탈아세틸화, 예를 들어, 80-90%, 더욱 바람직하게는 82-88% 탈아세틸화, 특히 83%, 84%, 85%, 86% 및 87% 탈아세틸화된 것이다.
백신 및 항원 제제
본 발명의 조성물들은 백신 또는 항원 제제로서 투여하기 위해 제제화될 수 있다. 본 발명에서 사용된 "백신"이란 용어는 상기한 대로 본 발명의 노로바이러스 VLPs 또는 다른 노로바이러스 항원을 함유하는 제제를 의미하고, 척추동물에게 투여될 수 있는 형태이고 감염을 완화 및/또는 VLPs 또는 감염의 적어도 하나의 증상을 감소 및/또는 항원의 다른 복용량의 효과를 향상시키기에 충분한 면역 반응을 유도하기 위해 치료 면역성을 유도하기에 충분한 면역반응을 유도한다. 본 발명에서 사용된 "항원 제제" 또는 "항원 조성물"이란 용어는 척추동물, 예를 들어, 포유류에게 투여될 때, 면역반응을 유도할 제제를 의미한다. 본 발명에서 사용된 "면역반응"이란 용어는 체액 면역반응 및 세포-매개 면역반응 모두를 의미한다. 체액 면역반응은, 예를 들어, 감염성 물질을 중성화하고, 감염성 물질이 세포에 들어가는 것을 막고, 상기 감염성 물질의 복제를 막고 및/또는 숙주 세포가 감염되고 파괴되는 것을 보호하는 B 림프구에 의한 항체들의 생산의 자극을 포함한다. 세포-매개 면역반응은 감염을 예방하거나 완화하거나 이의 적어도 하나의 증상을 완화시키는 척추동물(예를 들어, 인간)에 의해 나타나는 감염성 물질에 대한 T-림프구 및/또는 매크로파아지와 같은 다른 세포에 의해 매개되는 면역반응을 의미한다. 백신 제제는 일반적으로 백신 설계에서 개시된다(("The subunit and adjuvant approach" (eds Powell M. F. & Newman M. J.) (1995) Plenum Press New York). 본 발명의 조성물은, 예를 들어, 경구, 위장관 및 호흡기(예를 들어, 코) 점막의 하나 이상에 전달하기 위해 제제화될 수 있다.
조성물이 호흡기(예를 들어, 코) 점막에 전달하기 위한 것인 경우, 통상적으로 에어로졸 또는 비액과 같은 투여용 수용액 또는 선택적으로, 비강 내에서 빠른 침적을 위한 건조 분말로 제제화된다.
비액으로 투여하기 위한 조성물은 방부제, 점도 조절제, 긴장 조절제, 완충제 등과 같이 이런 조성물에 주로 포함되는 형태의 하나 이상의 부형제를 함유할 수 있다. 점도 조절제는 미세결정 셀룰로오스, 키토산, 전분, 폴리사카라이드 등일 수 있다. 건조 분말로 투여하기 위한 조성물은 점막 접착제, 증량제 및 적절한 분말 흐름 및 크기 특성을 전달하기 위한 물질과 같이 이런 조성물에 주로 포함되는 하나 이상의 부형제를 함유할 수 있다. 증량제 및 분말 흐름 및 크기 물질은 만니톨, 수크로오스, 트레할로스 및 자일리톨을 함유할 수 있다.
한 실시예에서, 본 발명의 노로바이러스 백신 또는 항원 제제는 면역원으로 하나 이상의 노로바이러스 유전자군 항원(들), MPL®과 같은 항원보강제, 점막표면에 대한 접착력을 향상시키는 키토산과 같은 생고분자 및 만니톨과 수크로오스와 같은 증량제를 함유하는 건조 분말로 제제화될 수 있다. 예를 들어, 노로바이러스 백신은 하나 이상의 노로바이러스 유전자군 항원(들)(예를 들어, 놀워크 바이러스, 휴스톤 바이러스, 설산 바이러스), MPL® 항원보강제, 키토산 점막접착제 및 적절한 흐름 특성을 제공하는 증량제로서 만니톨과 수크로오스를 함유하는 10mg의 건조 분말로서 제제화될 수 있다. 상기 제제는 약 7.0mg(25 내지 90% w/w 범위) 키토산, 약 1.5mg 만니톨(0 내지 50% w/w 범위), 약 1.5mg 수크로오스(0 내지 50% w/w 범위), 약 25㎍ MPL®(0.1 내지 5% w/w 범위), 및 약 100㎍ 노로바이러스 항원(0.05 내지 5% w/w 범위)을 포함할 수 있다.
노로바이러스 항원은 약 0.01%(w/w) 내지 약 80%(w/w)의 농도로 존재할 수 있다. 한 실시예에서, 노로바이러스 항원은 양쪽 콧구멍 속에 투여하기 위해 10mg 건조 분말 제제 당 약 5㎍, 약 15㎍ 및 약 50㎍(0.025, 0.075 및 0.25% w/w) 또는 한쪽 콧구멍 속에 투여하기 위해 약 10㎍, 약 30㎍ 및 약 100㎍(0.1, 0.3 및 1.0% w/w)의 복용량으로 제제화될 수 있다. 상기 제제는 각 투여하는 동안 콧구멍 하나 또는 콧구멍 두 개에 제공될 수 있다. 첫 번째 투여 1 내지 12 주 후 면역반응을 향상시키기 위해 추가 투여(booster administration)가 있을 수 있다. 백신과 항원 제제에서 노로바이러스 항원의 함량은 1㎍ 내지 100mg, 바람직하게는 1-500㎍, 더욱 바람직하게는 5-200㎍, 가장 통상적으로 10-100㎍의 범위일 수 있다. 각 복용시 투여된 전체 노로바이러스 항원은 두 콧구멍에 투여될 때 전체 20mg 건조 분말에서 또는 한 콧구멍에 투여될 때 10mg 건조 분말에서 약 10㎍, 약 30㎍ 또는 약 100㎍일 것이다. 건조 분말 특성들은 입자들의 10% 미만이 지름이 10㎛ 미만이게 된다. 평균 입자 크기는 지름이 10 내지 500㎛이다.
다른 실시예에서, 항원 및 백신 조성물은 피험자에게 연속적으로 투여하기 위한 액체로 제제화될 수 있다. 비강 투여를 위한 액체 제제는 노로바이러스 유전자군 항원(들), 항원보강제, 및 키토산과 같은 전달 물질을 포함할 수 있다. 근육내(i.m.) 또는 경구 투여용 액체 제제는 전달 물질(예를 들어, 키토산) 없이 노로바이러스 유전자군 항원(들), 항원보강제 및 버퍼를 포함할 수 있다.
바람직하게는 항원 및 백신 조성물은 동결건조되어 사용될 때까지 무수 상태로 저장되며, 액체 제제에서 사용되는 경우 사용시점에 희석제로 재구성된다. 선택적으로, 본 발명의 다른 성분들은 키트 또는 장치(어떤 성분 또는 모든 성분이 동결건조됨)에 개별적으로 저장될 수 있다. 성분들은 건조 제제를 위해 동결건조 형태로 존재하거나 액체 제제를 위해 재구성될 수 있고 사용하기 이전에 혼합되거나 환자에게 개별적으로 투여될 수 있다. 건조 분말 투여의 경우, 백신 또는 항원 제제는 비강 전달 장치 또는 국소(예를 들어, 피부) 전달 패치 속에 미리 채워 사용시까지 저장될 수 있다. 바람직하게는, 이런 전달 장치 및 관련 포장은 이의 내용물의 안정성을 보호하고 지킬 수 있다.
항원 제제 및 백신의 동결건조는 당업계에 주지되어 있다. 통상적으로 액체 항원은 동결건조되는 동안 항원을 보호하고 원하는 특성들을 가진 분말을 생산하기 위해 물질들의 존재하에서 동결건조된다. 수크로오스, 만니톨, 트레할로스 또는 락토오스(10-200mg/mL의 초기 농도로 존재)와 같은 과당이 단백질 항원을 냉동 보호 및 동결 보호하고 원하는 특성들을 가진 동결건조 덩어리 또는 분말을 생산하기 위해 통상적으로 사용된다. 동결건조된 조성물은 이론적으로 더 안정하다. 분사 건조 또는 분사 동결 건조와 같은 다른 건조 기술들이 사용될 수 있다. 대부분의 제제화 방법의 목표는 단백질 응집과 분해를 최소화하는 것이지만, 본 발명자들은 응집된 항원들이 존재하면 노로바이러스 VLPs에 대한 면역반응을 향상시키는 것을 증명하였다(실시예 3 및 4의 동물 모델 참조). 따라서, 본 발명자들은 항원의 응집률이 동물 모델들에서 최대 면역 반응을 유도하기 위해 응집된 항원 대 응집되지 않은 항원의 최적 비율을 만드는 동결건조 과정 동안 제어될 수 있는 방법을 개발하였다.
따라서, 본 발명은 (a) 노로바이러스 항원, 수크로오스 및 키토산을 포함하는 선-동결건조 용액을 제조하는 단계, 여기서 수크로오스 대 키토산의 질량비는 약 0:1 내지 약 10:1이다; (b) 용액을 동결하는 단계; 및 (c) 30-72시간 동안 동결된 용액을 동결건조하는 단계를 포함하며, 여기서 최종 동결건조된 생성물은 응집된 형태의 상기 노로바이러스 항원의 비율을 함유하는 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법을 제공한다. 동결건조는 주위 온도, 감소된 온도에서 일어날 수 있거나 다양한 온도에서 주기적으로 진행될 수 있다. 단지 설명을 위해서, 동결건조는 일련의 단계에 걸쳐 일어날 수 있는데, 예를 들어, 한 주기는 -69℃에서 시작하여, 점진적으로 3시간 걸쳐 -24℃로 조절되고, 18시간 동안 이 온도를 유지하고, 점진적으로 1시간 동안 -16℃로 조절되고, 6시간 동안 이 온도를 유지하고, 점진적으로 3시간 동안 +34℃로 조절되고 최종적으로 9시간 동안 이 온도를 유지된다. 한 실시예에서, 선-동결건조 용액은 증량제를 더 포함할 수 있다. 다른 실시예에서, 상기 증량제는 만니톨이다.
바람직한 비율의 응집을 얻기 위한 수크로오스 및 키토산의 적절한 비율은 다음 안내를 따라 측정될 수 있다. 약 2:1 내지 약 10:1의 범위로 수크로오스 대 키토산 선-동결건조 혼합물은 선-동결건조 용액 농도(실시예 13 참조)에 따라 약 50% 내지 100% 응집되지 않은 노로바이러스 항원(즉, 0% 내지 50% 응집된 항원) 후-동결건조의 범위를 나타낼 것이다. 0:1의 수크로오스 대 키토산의 질량 비율은 30% 미만의 응집되지 않은 노로바이러스 항원을 생산할 것이다(즉, 70% 이상 응집된 항원). 수크로오스 및 키토산을 사용하지 않고 만니톨과 같은 증량제만을 사용하면 10% 미만의 응집되지 않은 항원을 생산할 것이다(즉, 선-동결건조 용액 농도에 따라 90% 이상의 응집된 항원). 이런 지침들을 사용하여, 당업자는 최적의 면역반응을 생산하는데 필요한 응집의 원하는 양을 얻기 위해서 수크로오스를 선-동결건조 혼합물에서 키토산 질량비와 농도를 조절할 수 있다.
또한, 선-동결건조 용액에 수크로오스, 키토산 및 만니톨을 포함하면 시간에 걸쳐 응집되지 않은 노로바이러스 항원의 안정성에 나쁜 효과를 갖지 않은데, 즉, 제제에서 응집된 항원/응집되지 않은 항원의 비율은 약 12달 이상의 기간 동안 건조 분말로 저장될 때 증가하지 않는다(실시예 10 참조). 따라서, 이 동결건조 방법은 응집된 노로바이러스 항원 대 응집되지 않은 노로바이러스 항원의 예상가능하고 제어가능한 비율로 안정한 제제를 얻게 한다.
면역반응 자극 방법
각 항원 또는 백신 제제에서 항원의 양은 현저한 부작용 없이 강한 면역반응을 유도하는 양으로 선택된다. 이런 양은 특이적 항원(들)이 사용되고, 투여 경로 및 사용된 항원보강제에 따라 변할 것이다. 일반적으로, 본 발명의 내용에서 환자에게 투여된 복용량은 시간이 지남에 따라 환자에서 유익한 치료 반응을 일으키거나 항원-특이적 항체들의 생산을 유도하는데 충분해야 한다. 따라서, 조성물은 특이적 항원에 대한 면역반응을 유발 및/또는 질환 또는 감염으로부터의 증상 및/또는 합병증을 완화, 감소 또는 치료하는데 충분한 양으로 환자에게 투여되어야 한다. 이것을 이루지는데 적합한 양은 "치료적으로 유효한 복용량"으로 정의된다.
실질적으로 순수한 형태의 노로바이러스 항원의 경우, 각 복용량은 제제에서 각 노로바이러스 항원의 경우 약 1㎍ 내지 10mg, 바람직하게는 약 2-50㎍을 포함할 것이다. 본 발명의 항원 제제를 사용하는 전형적인 면역 방법에서, 제제들은 여러 번(예를 들어 1-4) 투여될 수 있고, 각 복용량은 1-100㎍의 각 항원을 함유한다. 복용량은 생산된 조성물의 면역 활성 및 환자의 상태뿐만 아니라 치료할 환자의 체중 또는 표면적에 의해 결정될 것이다. 복용량의 크기는 특정 환자에서 특정 조성물의 투여와 동반할 수 있는 부작용들의 존재, 특성 및 정도에 의해 결정될 것이다.
본 발명의 항원 및 백신 제제는 비-점막 또는 점막 경로를 통해 투여될 수 있다. 이런 투여는 비경구 주사(예를 들어, 정맥, 피하 및 근육내) 또는 볼/설하, 직장, 경구, 비강, 국부(경피 및 눈), 질, 폐, 동맥내, 복강, 안구내 또는 비강 경로 또는 특정 조직에 직접과 같은 다른 전통적인 직접 경로를 통한 인비보 투여를 포함한다. 선택적으로, 본 발명의 백신은 경구, 국부, 피하, 점막, 정맥, 근육내, 비강, 설하, 경피, 피하, 피내, 및 좌약과 같은 여러 경로 중 임의의 것에 의해 투여될 수 있다. 투여는 패치, 바늘, 카테테르 또는 관련 장치를 사용하여, 1회 또는 수회 직접 투여함으로써 간단하게 이루어질 수 있다.
한 바람직한 실시예에서, 본 발명의 항원 및 백신 제제들은 점막 표면에 투여된다. 점막 표면을 통한 면역화는 면역화의 다른 경로들을 통해 여러 가능한 장점들을 제공한다. 가장 뚜렷한 이점들은 1) 점막 면역화는 투여를 위해 바늘 또는 숙련자를 필요로 하지 않으며 2) 면역반응이 병원균 침투 부위(들) 뿐만 아니라 전신에서 일어난다(Isaka et al 1999; Kozlowski et al. 1997; Mestecky et al. 1997; Wu et al. 1997)는 것이다.
다른 태양에서, 본 발명은 환자의 점막 표면(바람직하게는 비강 또는 경구)에 하나 이상의 노로바이러스 항원, 적어도 하나의 유효 항원보강제 및/또는 적어도 하나의 전달 물질을 포함하는 항원 또는 백신 조성물을 투여하여 IgA 점막 면역반응 및 IgG 전신 면역반응을 유발하는 방법을 제공한다.
본 발명은 본 발명에서 정의된 노로바이러스 항원들 및 적어도 하나의 항원보강제 또는 본 발명에서 정의된 적어도 하나의 전달 물질의 비강 제제를 분산하기 위한 수단을 제공하는 것을 고려한다. 예를 들어, 분산 장치는 에어로졸 전달 시스템 형태를 가지며 단지 1회 복용량 또는 다수 복용량을 분산하도록 준비될 수 있다. 이런 장치는 백신 또는 항원 제제의 계량된 복용량을 비강으로 전달할 것이다. 적절한 장치들의 다른 예는 드롭퍼, 면봉, 에어로졸화기, 취입기(예를 들어, Valois Monopowder Nasal Administration Device, Bespak UniDose DP), 연무기 및 흡입기를 포함하나 이에 제한되지 않는다. 장치들은 피험자가 제제를 비강 속으로 흡입하는 것을 필요로 하는 수동적 수단에 의해 항원 또는 백신 제제를 전달할 수 있다. 선택적으로, 장치는 복용량을 비강으로 투입하거나 분사함으로써 제제를 능동적으로 전달할 수 있다. 투여는 피험자 당(콧구멍 당 한 장치) 두 개의 장치를 포함한다. 활성 성분(노로바이러스 항원)의 실제 복용량은 약 5-1000㎍일 수 있다. 한 바람직한 실시예에서, 항원 또는 백신 제제는 비강 속에 가깝게 유지되거나 삽입된 제제를 함유하는 장치로부터 비강 내로 빠른 침적에 의해 비강 점막으로 투여된다.
또한 본 발명은 하나 이상의 노로바이러스 항원에 대해 항체들을 발생하는 방법을 제공하며, 상기 방법은 상기한 대로 본 발명의 백신 또는 항원 제제를 피험자에게 투여하는 단계를 포함한다. 이런 항체들은 당업계에서 통상의 방법에 의해 분리될 수 있고 정제될 수 있다. 노로바이러스 항원들에 대해 특이적인 분리된 항체들은 진단 면역분석법의 개발에서 사용될 수 있다. 이런 분석법은 임상적 샘플에서 노로바이러스를 탐지하고 감염을 일으키는 특정 바이러스(예를 들어, 놀워크, 휴스톤, 설산 등)를 동정하는데 사용될 수 있다. 선택적으로, 분리된 항체들은 수동 또는 단기 면역성을 제공하는 노로바이러스 감염에 약한 피험자들에게 투여될 수 있다.
상기한 대로, 본 발명의 백신 제제들은 노로바이러스 감염의 증상들을 치료하기 위해 피험자에게 투여될 수 있다. 노로바이러스 감염의 증상들은 당업계에 주지되어 있고 구역질, 구토, 설사 및 위 경련을 포함한다. 또한, 노로바이러스 감염된 환자는 낮은 등급 열, 두통, 한기, 근육통 및 피로를 가질 수 있다. 본 발명은 피험자에게 본 발명의 백신 제제를 투여함으로써 노로바이러스 감염을 앓고 있는 피험자의 면역반응을 유도하는 방법을 포함하며 노로바이러스 감염과 관련된 적어도 하나의 한 증상은 완화 및/또는 감소된다. 증상의 감소는, 예를 들어, 피험자에 의한 자가평가, 의사의 평가 또는 삶의 질 평가, 노로바이러스 감염 또는 다른 증상들의 느린 진행, 노로바이러스 증상의 심각성 감소를 포함하는 적절한 분석 또는 측정(예를 들어, 체온) 또는 적절한 분석(예를 들어, 항체 역가 및/또는 T-세포 활성화 분석)을 수행함으로써 주관적으로 또는 객관적으로 측정될 수 있다. 객관적 평가는 동물 및 인간 평가를 모두 포함한다.
도 1은 10㎍ VLP로 인비보 비강 면역화 후 설치류 경부 림프절 세포의 인비트로 항원-특이적 증식 분석법을 도시한다.
도 2는 10㎍ VLP로 인비보 비강 면역화 후 비장세포의 인비트로 항원-특이적 증식 분석법을 도시한다.
도 3은 25㎍ VLP로 인비보 경피 면역화 후 비장세포의 인비트로 항원-특이적 증식 분석법을 도시한다.
도 4는 ELISPOT 분석법에 의해 측정된 항체 분비 세포(ASCs)로부터 VLP-특이적 IgG 또는 IgA를 도시한다.
도 5는 ELISA로 측정된 VLP-특이적 IgG 또는 IgA를 도시한다.
도 6은 놀워크 VLPs에 대한 혈청 IgG 반응에 대한 역가검증의 결과를 도시한다.
도 7은 항원의 액체 제제 또는 건조 분말로 재구성된 제제로 면역된 생쥐에서 놀워크 VLPs에 대한 혈청 IgG 반응을 포함하는 역가검증의 결과를 도시한다. 그래프는 다른 제제에서 놀워크 VLPs의 효능 대 농도를 도시한다.
도 8은 노로바이러스 VLP 백신의 다른 제제의 투여 후 21일(왼쪽 패널) 및 42일(오른쪽 패널)에 토끼에서 혈청 IgG 반응을 도시한다.
도 9는 놀워크 VLPs의 액체 제제 또는 건조 분말 제제로 비강으로 면역된 토끼에서 혈청 IgG 반응을 도시한다.
도 10은 정량 SDS-PAGE 분석 및 크기 배제 크로마토그래피(SEC)에 의해 측정된 대로 건조 분말 제제의 안정성을 도시한다. 회귀 분석은 1년 동안 10mg 건조 분말당 전체 또는 응집되지 않은 ㎍ VLP에서 통계적 경향을 나타내지 않았다. 응집된 비율은 정량적 SDS-PAGE에 의해 전체 VLP 단백질과 비교된, SEC에 의해 탐지되지 않은 VLP 단백질은 응집되지 않는다는 것을 추측하는 계산 결과이다.
도 11은 여러 노로바이러스 항원으로 복강내로 면역된 생쥐에서 항-노로바이러스 항체 반응의 ELISA 분석법의 결과를 도시한다. 얇은 화살표는 단지 놀워크 VLPs를 함유하는 제제에 의한 보강 주사를 나타낸다. 두꺼운 화살표는 놀워크 및 g휴스톤 VLPs를 함유하는 제제에 의한 보강 주사를 나타낸다.
도 12는 놀워크 VLPs, 또는 놀워크 및 휴스톤 VLPs로 복강내로 면역된 항-노로바이러스 항체 반응의 ELISA 분석법의 결과를 도시한다.
도 13은 생쥐를 놀워크 VLPs로 비강 면역화 후 114일에 생쥐의 비장세포(A), 경부 림프절(B) 및 골수(C)에서 놀워크 VLP-특이적 장수 혈장 세포들의 존재를 나타낸다.
도 14는 놀워크 VLPs로 비강으로 면역된 생쥐의 비장세포에서 놀워크 특이적 기억 B 세포 반응을 나타낸다. 패널 A는 놀워크 VLPs로 배양하고 0일(왼쪽 그래프) 및 4일(오른쪽 그래프)에 IgA 항체 분비 세포들을 도시한다. 패널 B는 놀워크 VLPs로 배양하고 0일(왼쪽 그래프) 및 4일(오른쪽 그래프)에 IgG 항체 분비 세포들을 도시한다. 0일 내지 4일 사이에 세포들의 수의 차이는 기억 B 세포 팽창과 분화의 수준을 나타낸다.
도 15는 놀워크 VLP 백신 제제로 비강으로 면역된 토끼들로부터 분리된 말초 혈액 단핵 세포들의 ELISPOT 분석 결과를 도시한다. 왼쪽 패널은 0일(조직 배양일)에 놀워크 VLP-특이적 항원 분비 세포들(ASCs)의 수를 나타내는 반면, 오른쪽 패널은 놀워크 VLPs로 배양하고 4일 후 놀워크 VLP-특이적 ASCs의 수를 나타낸다. 0일 내지 4일 사이에 세포들의 수의 차이는 기억 B 세포 반응을 나타낸다.
도 16은 놀워크 VLP 백신 제제로 비강으로 면역된 토끼들로부터 분리된 비장세포들의 ELISPOT 분석 결과를 도시한다. 왼쪽 패널은 0일(조직 배양일)에 놀워크 VLP-특이적 항원 분비 세포들(ASCs)의 수를 나타내는 반면, 오른쪽 패널은 놀워크 VLPs로 배양하고 4일 후 놀워크 VLP-특이적 ASCs의 수를 나타낸다. 0일 내지 4일 사이에 세포들의 수의 차이는 기억 B 세포 반응을 나타낸다.
도 17은 놀워크 VLP 백신 제제로 비강으로 면역된 토끼들로부터 분리된 골수 세포들의 ELISPOT 분석 결과를 도시한다. 왼쪽 패널은 0일(조직 배양일)에 놀워크 VLP-특이적 항원 분비 세포들(ASCs)의 수를 나타내는 반면, 오른쪽 패널은 놀워크 VLPs로 배양하고 4일 후 놀워크 VLP-특이적 ASCs의 수를 나타낸다. 0일에 ASCs의 존재는 장수 혈장 세포들의 존재를 나타낸다. 0일 내지 4일 사이에 세포들의 수의 차이는 기억 B 세포 반응을 나타낸다.
도 18은 놀워크 VLP 백신 제제로 비강으로 면역된 토끼들로부터 분리된 장간막 림프절 세포들의 ELISPOT 분석 결과를 도시한다. 패널 A는 놀워크 VLPs에 특이적인 IgG 양성 항체 분비 세포들(ASCs)을 나타낸다. 패널 B는 놀워크 VLPs에 특이적인 IgA 양성 ASCs를 도시한다. 왼쪽 패널은 0일(조직 배양일)에 놀워크 VLP-특이적 세포들(ASCs)의 수를 나타내는 반면, 오른쪽 패널은 놀워크 VLPs로 배양하고 4일 후 놀워크 VLP-특이적 ASCs의 수를 나타낸다. 0일 내지 4일 사이에 세포들의 수의 차이는 기억 B 세포 팽창과 분화의 수준을 나타낸다.
도 19는 토끼에 인비보 비강 면역화 후 인비트로 항원-특이적 증식 분석법을 도시한다. 왼쪽 패널은 놀워크 VLPs에 의한 재자극 후 T 세포 증식을 나타내는 반 면에, 오른쪽 패널은 놀워크 VLPs에 의한 재자극 후 CD4+T 세포 증식을 나타낸다.
본 발명은 다음 실시예들에서 개시된 특정 실시예들을 참조하여 더욱 상세하게 설명될 것이다. 실시예들은 본 발명의 순수하게 설명하기 위한 것이고 어떤 경우에도 이의 범위를 제한하려는 것이 아니다.
실시예 1. 다른 노로바이러스 항원 형태에 대한 면역반응 연구
백신 제제의 효과를 연구하기 위해, 생쥐들을 미세피펫에 의해 액체 현탁액 백신 제제로 비강으로(i.n.) 면역시켰다. 생쥐들은 단지 1회 백신 복용량(프라임)을 제공받았다.
실험을 위해서, 세 개 백신 제제를 제조하였다. 100% 응집체로 불리는 제 1 제제를 VLP의 고유 구조를 분리하고 응집을 유도하는 조건하에서 VLPs의 동결건조시켜 제조하였다. 100% 응집되지 않은 제 2 제제를 동결건조되지 않은 VLP 원료로부터 100% 고유 단분산 VLPs를 섞은 재수화된 동결건조 위약으로 제조하였다. 50/50 Mix인 제 3 제제를 1:1의 비율로 상기 두 제제를 혼합하거나 ~50% 응집되지 않은 VLPs 및 50% 응집된 VLPs를 생산하는 조건하에서 동결건조함으로써 제조하였다. 응집되지 않은 고유 VLP의 구조적 상태와 농도는 크기 배제 고성능 액체 크로마토그래피(SE-HPLC) 및 자외선(UV) 흡수도에 의해 분석하였다. 제제들의 전체 단백질 농도(응집체 포함)는 소듐 도데실 설페이트 폴리아크릴아마이드 겔 전기영동(SDS-PAGE)-재용해 단백질의 정량적 염색에 의해 측정하였다. 응집된/응집되지 않은 비율은 응집되지 않은 고유 VLP 대 전체 단백질의 비율로 계산하였다.
아래 나타낸 혼합물들은 실험 605.125, 생쥐 i.n. 액체 백신 접종을 위해 제조되었다.
그룹 번호 키토산 (mg/mL) 만니톨 (mg/mL) 수크로오스 (mg/mL) MPL (mg/mL) 놀워크 VLP (mg/mL)
1 3.5 0.750 0.750 1.0 1.0
2 3.5 0.750 0.750 1.0 1.0
3 3.5 0.750 0.750 1.0 1.0
4 3.5 0.750 0.750 1.0 0
표1. 실험 605.125(생쥐 i.n.)을 위한 프라임 값은 제제들의 최종 농도를 나타낸다.
복용량: 생쥐 당 20μL, 콧구멍 당 10μL.
그룹 1, 100% Agg: 재수화된 100% 응집 VLP.
그룹 2, 100% Intact: 비-동결건조 VLP 원료로부터의 100% 응집되지 않은 VLPs로 섞인 재수화된 동결건조 위약.
그룹 3, 50/50 mix: 그룹 1 및 2의 용액들의 1:1 혼합물.
그룹 4, 나이브(Naive): 재수화된 동결건조 위약.
이 실험은 다른 노로바이러스 VLP 제제들에 대한 생쥐의 면역반응을 측정한다. 생쥐의 그룹들(그룹당 5 마리)을 표 1에 도시된 재수화된 건조 분말 제제로 1회 비강으로(i.n.) 백신접종 하였다. VLP-함유 제제들로 백신 접종된 동물들은 동일한 양의 전체 단백질을 제공받았다. 100% Agg(100% 응집된 VLP 단백질); 100% Intact(100% 고유한, 단분산 VLPs); 50/50 Mix(단분산 및 응집된 VLP의 1:1 혼합물); 나이브(VLP 단백질 없음). i.n. 면역화 후 14일에, 생쥐들을 안락사시켰고, 경부 림프절 및 비장을 채취하고 인비트로 항원-특이적 세포 증식 분석을 위해 단일 세포 현탁액을 제조하였다. 이런 분석에서 경부 림프절 세포들 또는 비장세포들의 반응은 인비보 면역화 후 항원에 대한 면역반응을 측정하기 위해 평가되었다. 경부 림프절 세포들 또는 비장세포들을 고유 단분산 VLPs(고유 VLP, 검은 막대) 또는 열-변형 VLP 단백질(△VLP, 흰색 막대)로 다시 자극하고 각 항원 형태(100% Agg, 100% Intact, 50/50 Mix 또는 naive)로부터의 세포 증식의 정도는 세로 좌표축(CPM)에 나타낸 대로 삼중수소화 티미딘 포함에 의해 측정하였다(도 1, 경부 림프절 세포; 도 2, 비장세포).
실시예 2. 인비트로 항원-특이적 증식 분석
백신 제제들의 효과를 더 연구하기 위해서, 생쥐들을 액체 현탁액 백신 제제로 복강내로(i.p.) 면역시켰다. 생쥐들은 단지 1회 백신 복용량(프라임)을 제공받았다.
실시예 1과 유사하게, 생쥐의 그룹들(그룹당 5마리)을 백신접종 하였고, 표 2에 도시된 재수화된 건조 분말 제제들로, 이번에는 1회 복강내로(i.p.) 백신접종 하였다. 다시, VLP-함유 제제들로 백신 접종된 동물들은 동일한 양의 전체 단백질을 제공받았다. 100% Agg(100% 응집된 VLP 단백질); 100% Intact(100% 고유한, 응집되지 않은 VLPs); 50/50 Mix(응집되지 않은 및 응집된 VLP의 1:1 혼합물); 나이브(VLP 단백질 없음).
아래 나타낸 혼합물들은 실험 605.127, 생쥐 i.p. 액체 면역화를 위해 제조되었다.
그룹 번호 키토산 (mg/mL) 만니톨 (mg/mL) 수크로오스 (mg/mL) MPL (mg/mL) 놀워크 VLP (mg/mL)
1 7 1.475 1.475 0.025 0.025
2 7 1.475 1.475 0.025 0.025
3 7 1.475 1.475 0.025 0.025
4 7 1.475 1.475 0.025 0
실험 605.127(생쥐 i.p.)을 위한 프라임 값은 제제들의 최종 농도를 나타내고 1회 10mg 전달 장치와 동일하다.
복용량: 생쥐 i.p. 당 1mL.
그룹 1, 100% Agg: 재수화된 100% 응집 VLP.
그룹 2, 100% Intact: 비-동결건조 VLP 원료로부터의 100% 응집되지 않은 VLPs로 섞인 재수화된 동결건조 위약.
그룹 3, 50/50 mix: 동결건조된 50/50 응집되지 않은 VLP/응집체로부터 재수화.
그룹 4, 나이브: 재수화된 동결건조 위약.
이 분석에서, 인비보 면역화 이후 다른 설치류 세포들 대 VLPs의 반응을 측정하였다. 면역화 후 14일에, 생쥐들을 안락사시켰고, 비장을 채취하고 1회 세포 현탁액을 제조하였다. 비장세포들을 응집되지 않은 고유 VLPs(고유 VLP, 점선 막대) 또는 열-변형 VLP 단백질(△VLP, 흰색 막대)로 다시 자극하고 각 항원 형태(100% Agg, 100% Intact, 50/50 Mix 또는 naive)로부터의 세포 증식의 정도는 세로 좌표축(CPM)에 나타낸 대로 삼중수소화 티미딘 포함에 의해 측정하였다(도 3). 이런 데이터는 백신 제제들로 제조된 VLPs의 다른 생물물리학적 형태가 필적할만한 T 세포 반응들을 유도하는 것을 나타낸다.
실시예 3. VLP -특이적 ELISPOT 분석
VLP-특이적 항체-분비 세포(ASC) 반응들은 실시예 2에 개시된 다른 NV-VLP 제제로 복강내로 면역된 생쥐들로부터 측정하였다. 생쥐의 그룹(그룹당 5마리)을 표 2(실시예 2)에 도시된 재수화된 건조 분말 제제로 1회 복강으로(i.P.) 백신접종 하였다. VLP-함유 제제들로 백신 접종된 동물들은 동일한 양의 전체 단백질을 제공받았다. 100% Agg(100% 응집된 VLP 단백질); 100% Intact(100% 고유한, 응집되지 않은 VLPs); 50/50 Mix(응집되지 않은 및 응집된 VLP의 1:1 혼합물); 나이브(VLP 단백질 없음). 14일에, 생쥐를 안락사시키고 경부 림프절을 채취하였다. 경부 림프절 세포들을 고유한, 응집되지 않은 VLP-코팅 ELISPOT 플레이트 상에서 밤새 배양하였고 적절한 HRP-접합 2차 항체를 사용하여 IgG 또는 IgA-특이적 ELISPOTS를 위해 성장시켰다(도 4). 이런 데이터는 3개 VLP 항원 제제는 모두 항원-특이적 B 세포 반응을 유발한다는 것을 나타낸다. 100% Agg VLPs로 면역된 그룹은 최대 면역반응을 나타내었다.
실시예 4. VLP -특이적 ELISA
VLP-특이적 항체-분비 세포(ASC) 반응들은 실시예 2에 개시된 다른 NV-VLP 제제로 복강내로 면역된 생쥐들로부터 측정하였다. 생쥐의 그룹(그룹당 5마리)을 표 2(실시예 2)에 도시된 재수화된 건조 분말 제제로 1회 복강으로(i.P.) 백신접종 하였다. VLP-함유 제제들로 백신 접종된 동물들은 동일한 양의 전체 단백질을 제공받았다. 100% Agg(100% 응집된 VLP 단백질); 100% Intact(100% 고유한, 응집되지 않은 VLPs); 50/50 Mix(응집되지 않은 및 응집된 VLP의 1:1 혼합물); 나이브(VLP 단백질 없음). 14일에, 혈청은 수집하고 항-VLP-특이적 혈청 IgG에 대해 ELISA로 분석하였다(도 5). 이런 데이터는 실시예 3에 도시된 결과와 관련이 있고, 3개 VLP 항원 제제는 모두 항원-특이적 B 세포 반응을 유발한다는 것을 나타낸다. 다시, 100% Agg VLPs로 면역된 그룹은 최대 면역반응을 나타내었다.
실시예 5. 토끼의 백신 제제.
제제들을 발로이스 모노파워 비강 투여 장치를 사용하여 토끼에 비강(i.n.)으로 투여하였다. 건조 분말 제제들은 표 3 및 4에 도시된다.
아래 나타낸 제제들은 605.129, 토끼 i.n. 건조 분말(DP) 백신접종을 위해 제조되었다. 실험 605.129(토끼 i.n.)에 대한 프라임 제제(DP 백신을 위한 최종량).
그룹 번호 키토산 (mg/10mgDP) 만니톨 (mg/10mg) 수크로오스 (mg/10mg) MPL (mg/10mg) 놀워크 VLP (mg/10mg)
1 7 1.475 1.475 0.025 0.025
2 7 1.475 1.475 0.025 0.025
3 7 1.475 1.475 0.025 0.025
4 7 1.475 1.475 0.025 0
값들은 전체 복용량의 1/2인 단일 장치(10mg DP)를 기초로 한 제제들의 최종 농도를 나타낸다.
복용량: 동물당 20mg DP, 콧구멍 당 10mg.
그룹 1, 100% Agg: 응집된 동결건조 VLP.
그룹 2, 100% Intact: 100% 응집되지 않은 동결건조 VLP
그룹 3, 50/50 mix: 50/50 응집되지 않은 VLP/응집된 동결건조 VLP(1 & 2의 혼합물 아님)
그룹 4, 나이브: 위약.
아래 나타낸 제제들은 605.129, 토끼 i.n. 건조 분말(DP) 백신접종을 위해 제조되었다. 실험 605.129(토끼 i.n.)에 대한 추가 제제(DP 백신을 위한 최종량).
그룹 번호 키토산 (mg/10mgDP) 만니톨 (mg/10mg) 수크로오스 (mg/10mg) MPL (mg/10mg) 놀워크 VLP (mg/10mg)
1 7 1.475 1.475 0.025 0.025
2 7 0 2.95 0.025 0.025
3 7 1.475 1.475 0.025 0.025
4 7 1.475 1.475 0.025 0
값들은 전체 복용량의 1/2인 단일 장치(10mg DP)를 기초로 한 제제들의 최종 농도를 나타낸다.
복용량: 동물당 20mg DP, 콧구멍 당 10mg.
그룹 1, 100% Agg: 100% 응집된 동결건조 VLP.
그룹 2, 100% Intact: 100% 응집되지 않은** VLP*
그룹 3, 50/50 mix: 50/50 응집되지 않은 VLP/응집된 동결건조 VLP(1 & 2의 혼합물 아님)
그룹 4, 나이브: 동결건조 위약.
*응집되지 않은 VLP 동결건조 후의 양을 증가시키기 위해 만니톨 없이 제제화하였다.
**제제는 단지 ~80% 응집되지 않은 VLP를 생산하였다.
실시예 6. 생쥐에서 노로바이러스 백신 제제의 효능 분석
암컷 C57B16 생쥐들을 재조합된 놀워크 VLP 건조 분말 백신(놀워크 VLP, MPL 및 키토산 함유)의 다른 용액으로 0일에 복강내(i.p.)로 면역시켰다. 각 동물을 나타낸 100μL의 제제로 주사하였다. 혈청을 주마다 수집하고 혈청 항-VLP IgG를 ELISA로 측정하였다. 면역화 후 3주에 수집한 혈청들에 대한 값들은 도 6에 도시된다.
각 개별 생쥐에 대한 값은 그룹 평균을 나타내는 막대로 나타내어진다. 혈청 항-VLP IgG 값들은 나타낸 백신들의 복용량과 상관관계가 있다. 이런 실험 설계는 개선되었고 인간 임상 실험을 위한 GMP 제조된 백신들의 방출을 위해 필요한 효능 분석법으로 개발되었다(도 6).
실시예 7. 생쥐에서 액체 vs . 재조합 노로바이러스 제제의 효능
암컷 C57B16 생쥐들을 키토산, 만니톨, MPL 및 100μL의 부피의 다양한 농도의 놀워크 VLP(표 5)를 함유한 제제로 0일에 i.p.로 면역시켰다. 내부 표준 곡선을 정제수에 10mg/mL의 건조 분말 기질(만니톨, MPL, 및 키토산)을 용해시키고 특정량의 액체 놀워크 VLP를 첨가하여 생성되었다(그룹 1-5). 반대로, GMP VLP 로트는 미리 동결건조하였고 1.0ml의 정제수에 용해시켰다(그룹 608). 혈청을 14일, 21일 및 30일에 생쥐로부터 수집하였고 혈청 항-놀워크 VLP IgG를 ELISA에 의해 측정하였다.
생쥐를 면역(i.p.)시키는데 사용된 액체 및 재조합 놀워크 제제.
그룹 치료 95% Cl 계산된 효능
효능 최소 최대
1 위약에 5㎍ VLP 0.173 58.0 39.0 86.3
2 위약에 2.5㎍ VLP 0.192 23.3 15.0 36.3
3 위약에 1.25㎍ VLP 0.182 11.2 7.4 17.0
4 위약에 0.63㎍ VLP 0.287 5.4 2.8 10.4
5 위약에 0.31㎍ VLP 0.114 3.8 2.9 4.9
6 2.5㎍ GMP 로트 0.276 11.3 6.0 21.3
7 7.5㎍ GMP 로트 0.221 96.8 58.2 161.0
8 25㎍ GMP 로트 0.147 113.6 80.9 159.5
각 제제에 대한 상대 효능은 다음 식을 사용하여 계산한다: Inv Log(평균- Y 절편/기울기). 효능은 제제에서 VLP 농도에 대해 표시하고 기질 백그라운드 속에 섞인 공지된 양의 VLP를 사용하여 생산된 표준 곡선에 관해 보고되었다. 도시된 결과들은 3개의 개별 혈청 수집 시간 지점을 나타낸다. 이런 데이터는 건조 분말 놀워크 VLP 제제는 액체 제제보다 전체적으로 더 높은 효능을 가진다.
실시예 8. 토끼에서 건조 분말 제제의 효능
43마리 암컷 뉴질랜드 흰색 토끼를 건조 분말 속에 제제화된 5㎍(낮음) 또는 25㎍(높음)의 놀워크 VLPs±MPL 및±키토산으로 발로이스 모노파워 비강 투여 장치를 사용하여 비강(i.n.)으로 면역시켰다. 한 그룹은 액체로 제제화된 높은 복용량의 VLPs 및 MPL을 제공받았고 근육내(i.m)로 투여하였다. 토끼들을 0일 및 21일에 백신접종하였다. 사용할 때 MPL은 VLPs와 같은 복용량(즉, 5㎍ 놀워크 VLPs 및 5㎍ MPL)으로 사용하였다. 사용할 때 키토산은 7mg/dose이었다.
놀워크 VLPs에 특이적인 혈청 IgG(ELISA에 의해 측정)는 도 8에 도시된다. 각 치료 그룹에 대한 평균값들은 21일(추가 면역화 직전에 수집된 왼쪽 패널) 및 42일(오른쪽 패널)에 대해 도시된다. 값들을 U/mL의 VLP-특이적 IgG에 나타내었고, 1U는 대략 1㎍이다. 표준편차는 막대로 나타낸다. 음성 대조군(3마리 토끼) 및 근육내 면역된 그룹(4마리 동물)을 제외하고, 모든 치료 그룹들은 6마리 동물을 가졌다. 이런 데이터는 일반적으로 VLP가 높으면 높을수록 더 큰 혈청 항-VLP IgG 수준을 발생시킨다는 것을 보여준다. 특히 키토산은 비강 백신에 대한 반응들을 향상시킨다. i.m. 면역된 그룹은 최대의 반응들을 보여주었다. 그러나, 비강으로 면역된 그룹들에서 VLP-특이적 IgG 수준도 매우 강했다.
실시예 9. 토끼에서 비강으로 제공된 액체 vs . 건조 노로바이러스 제제의 효능
암컷 뉴질랜드 흰색 토끼들을 건조 분말 또는 액체 속에 제제화된 50㎍의 놀워크 VLPs + 50㎍ MPL + 14mg 키토산을 가진 발로이스 모노파워 비강 투여 장치를 사용하여 비강으로 면역시켰다. 백신 함량은 물리적 상태를 제외하고 동일하였다. 최초 백신 이후에 3주 및 다시 6주에 추가 면역화 이전에 수집한 혈청으로 0일 및 21일(0주 및 3주)에 면역화하였다. 놀워크 VLPs에 특이적인 혈청 IgG를 ELISA로 측정하였고 결과는 도 9에 도시된다.
그룹 평균이 표시되며, 막대들은 표준 편차를 나타낸다. 건조 분말 면역화 그룹은 6마리 토끼를 가지며 액체 면역화 그룹은 10마리 토끼를 가진다. 8마리 음성 대조군 토끼를 나타내었다. 3주에 액체 및 건조 분말 면역화 그룹 사이에 약간의 차이가 보였다; 그러나, 최초 면역 이후 6주에, 건조 분말 제제로 면역된 토끼들은 액체 면역화 그룹과 비교해서 뛰어난 항체 항-VLP IgG 반응을 가졌다.
실시예 10. 노로바이러스 건조 분말 제제의 안정성
건조 분말 VLP 제제의 안정성을 조사하기 위해서, 다량의 약품을 25㎍ MPL, 700㎍ 키토산 글루타메이트, 1.475mg 만니톨 및 1.475mg 수크로오스를 가진 용액에 (10mg 약품당) 25㎍의 유전자 그룹 I VLP를 혼합함으로써 제조하였다. 용액을 동결건조하고, 추가로 6.3mg 키토산 글루타메이트(10mg 약품당)와 혼합하고, 아주 적은 10mg의 건조 분말로 베스파크 1회 복용 장치에 채우고 건조 캡슐로 밀봉된 호일 주머니에 저장하였다. 전체 VLP 함량은 임페리얼 스태인드 SDS-PAGE(Imperial stained SDS- PAGE)를 사용하여 측정하였고 크기 배제 크로마토그래피(SEC)를 사용하여 응집되지 않은 VLP 함량을 정량하였다. 이런 측정값들은 실험 오차 내에서, 전체 또는 응집되지 않은 VLP의 변화가 12달 동안에 걸쳐 탐지되지 않았다는 것을 나타내었다(도 10). SDS-PAGE 결과와 비교했을 때, SEC에 의한 더 낮은 VLP 단백질 회수율은 응집 때문이며, 계산된 % 응집체는 시간이 지남에 따라 증가하지 않았으나 12달의 저장기간 동안 일정하거나 감소하였다. 단백질에 관한 더욱 일반적인 안정성 문제 중 하나는 저장에 의해 응집이 증가하는 것이다. 도 10에서 이런 결과를 기초로하여, 제제는 안정적인 비율의 응집되지 않은 VLPs를 만들어 생성물을 제조하고 적어도 1년 동안 사용하게 한다.
실시예 11. 여러 노로바이러스 항원
8마리 C57B1/6 생쥐(암컷, 9주)들을 0.7mg 키토산 2.5㎍ MPL 및 0.3mg 만니톨로 제제화하고 물로 0.1mL를 만든 2.5㎍ 놀워크 VLP로 0일 및 14일에 복강내(IP)로 면역시켰다. 2마리 대조군 생쥐를 함염물로 면역시켰다. 28일 및 49일에, 0.7mg 키토산 2.5㎍ MPL 및 0.3mg 만니톨로 제제화하고 물로 0.1mL를 만든 2.5㎍ 놀워크 VLP + 2.5㎍ 휴스턴 VLP으로 IP로 다시 면역시켰다. 대조군 생쥐들에 함염수를 제공하였다. 혈청 샘플들을 5주(35일)를 시작으로 매주 채취하였고 놀워크 VLPs 또는 휴스톤 VLPs에 의한 반응성을 ELISA로 분석하였다. 놀워크 만의 혼합물에 의한 추가 면역화의 시간은 얇은 화살표로 나타내고 놀워크 + 휴스톤 VLP 혼합물은 두꺼운 화살표로 나타낸다. U/mL(1U는 대략 1㎍의 IgG)으로 놀워크 VLPs(상부 패널) 또는 휴스턴 VLPs(바닥 패널)에 특이적인 개별 혈청 IgG 반응들이 도시된다. 평균은 막대로 나타낸다. 항-놀워크 반응들은 0일 및 14일(0 및 2주)에서 2개의 이전 면역화 때문에 훨씬 더 강하기 때문에 Y-축 값은 다르다는 것을 유의해야 한다. 그러나, 휴스톤 VLPs에 대한 반응들은 매우 강하고, 추가 면역화 후 2주에 큰 증가가 나타났다. 이런 데이터는 특이적 면역 반응들은 동일한 면역 혼합물에서 다른 항원 균주의 노로바이러스 VLPs에 대해 발생할 수 있다는 것을 증명한다(도 11).
실시예 12. 다른 노로바이러스 항원들에 대한 면역 반응
암컷 C57B16 생쥐들을 25㎍ 놀워크 VLP, 25㎍ 휴스턴 VLP, 또는 25㎍의 놀워크 및 휴스턴 VLP의 조합으로 0일 및 14일에 비강(IP)으로 면역시켰다. 혈청을 매주 채취하였고 혈청 항-VLP IgG를 ELISA로 측정하였다. 면역화 후 4주에 수집된 혈청에 대한 값들은 도 12에 도시하였다.
면역화의 VLP의 함량은 X축에 나타내었다. 각 생쥐에 대한 값을 나타내었고, 막대는 그룹 평균을 나타낸다. 항체 수준은 U/mL로 나타내었고, 1U는 대략 1㎍의 혈청 IgG이다. 왼쪽 패널의 값은 포획 물질로서 놀워크 VLPs를 사용하여 측정하였고, 휴스턴 VLPs는 오른쪽 패널 상의 값을 측정하기 위해서 ELISA 플레이트를 코팅하는데 사용하였다. 이런 데이터는 놀워크 VLP에 의한 면역화는 휴스턴 VLPs를 인식할 수 있는 혈청 항체들을 유도하지 않을 수 있거나 그 반대라는 것을 나타낸다.
실시예 13. 수크로오스 및 키토산의 혼합물은 건조 분말 제제에서 노로바이 러스 VLP 구조를 보존한다
다음 실험들은 동결건조하는 동안 고유 놀워크 VLP 4차 구조에 대한 선-동결건조 용액에서 수크로오스, 키토산, 및 만니톨 단독 또는 조합의 효과를 검사하였다. 표 6은 관심 성분의 선-동결건조 용액의 농도를 나타내는 여러 실험들의 혼합이다. 모든 용액들은 수동으로 교반하고 부드럽게 환류시켜 균질화한 후, 액체 질소에서 껍질을 동결하고 약 30 내지 60시간 동안 사이드-암 용기를 사용하여 유닛에 대해 외부를 동결건조하였다.
놀워크 VLP 4차 구조에 대한 수크로오스, 키토산 글루타메이트(키토산) 및 만니톨의 다른 농도 및 조합의 효과들을 검사하기 위해 사용된 선-동결건조 용액 혼합물.
실험 및 샘플 성분 선-동결건조의 용액 농도(mg/mL) 전체 부피 (mL) 질량 해당량 S = 수크로오스 C = 키토산 M = 만니톨
수크로오스 키토산 만니톨 VLP(단백질) S C M
LE1 0 0 100 0.83 0.30 0 0 1
LE2 0 0 75.0 0.62 0.40
LE3 0 0 50.0 0.42 0.60
LE4 0 0 25.0 0.21 1.20
LE5 0 0 10.0 0.08 3.00
LG1-LG3 0 7.83 0 0.20 1.28 0 1 0
LG4-LG6 0 5.06 0 0.13 1.98
LG7-LG9 0 2.09 0 0.05 4.78
LG10 19.32 1.93 0 0.05 5.18 10 1 0
LG11 10.05 2.01 0 0.05 4.98 5 1
LG12 5.13 2.05 0 0.05 4.88 2.5 1
LG13 9.52 0.00 0 0.09 2.63 1 0
LJ1-LJ2 5.29 2.51 0 0.09 2.79 2 1 0
LJ3-LJ4 4.17 1.98 0 0.07 3.54
LJ5-LJ6 3.65 1.73 0 0.06 4.04
LJ7-LJ8 2.93 1.39 0 0.05 5.04
LJ9-LJ10 5.25 2.49 0 0.09 2.81
LJ11-LJ12 4.14 1.97 0 0.07 3.56
LJ13-LJ14 3.63 1.72 0 0.06 4.06
LIG1d-Sa 2.98 1.42 0.00 1.12 4.94 2 1 0
LIG1d-S1 12.89 6.12 0.00 1.12 2.29 2 1 0
LIG1d-S2 12.26 5.82 12.26 0.67 2.41 1 0.5 1
LIG1d-Sb 2.95 1.40 2.95 0.67 5.00 1 0.5 1
LIG1d-S3 29.32 0.00 29.32 0.83 1.01 0 0 1
표 7은 표 6에 나타낸 동결건조 샘플들의 크기 배제-고성능 액체 크로마토그래피(SE-HPLC) 분석의 결과를 나타낸다. 동결건조 샘플들은 물로 재구성되고 SE-HPLC로 분석하였다. 동시에 분석한 가공되지 않은 NV-VLPs는 재구성 검사 샘플들의 NV-VLP 함량을 정량하기 위한 참조 표준으로 사용되었다. 정량화를 위해 UV 및 형광 탐지기를 사용하였다(도시된 데이터는 형광 탐지기로부터 얻었다). 10mM 인산 나트륨, 10mM 시트르산, pH 5 및 500mM NaCl로 이루어진 이동상으로, 0.5mL/min의 유속에서 슈퍼로스TM 6 10-300 컬럼을 사용하여 SE-HPLC를 수행하였다. 단백질 농도를 용출 피크의 적분 면적을 사용하여 정량화하였다. "VLP"는 컬럼으로부터 약 15분에 용출된 피크이고 참조 기준 NV-VLP의 대략 용출 시간 원도우 내의 임의의 앞선 숄더 및/또는 피크 테일도 동시에 분석하였다. 약 32분에서 컬럼으로부터 용출된 VLP 단편은 VLP의 불안정화 및 결과적인 분해로부터 발생한 매우 안정한 단일 종들이다. 중간 및 소형 단편들은 발견되지 않았다.
결과들은 수크로오스와 키토산의 조합이 최고(대략 100% 회수율) 후-동결건조(샘플 LG10-LG12)를 포함하는 넓은 범위의 고유 단분산 NV-VLP 회수율을 만들었다. 또한, 이런 샘플들로부터의 NV-VLP는 용출 피크 모양들은 고유 구조의 높은 보존을 나타내는 미가공된 NV-VLP 참조 표준과 동일하였다. 수크로오스만을 함유하는 샘플들은 참조 표준과 유사한 피크 모양을 나타내었으나, NV-VLP 회수율은 낮았다(대략 60% 회수율(샘플 LG13)). 만니톨만을 함유했던 샘플들은 거의 완전히 응집된 VLPs를 생산하였다(샘플 LE1-LE6 및 LIG1d-S3). NV-VLP 구조에 대한 만니톨의 해로운 효과들은 키토산과 수크로오스의 존재에 의해 반대로 작용하였다(샘플 LIG1d - S2 및 LIG 1d-SB).
실험 및 샘플 동정, 동결 및 동결건조하는 동안 NV-VLP 구조의 안정성에 대한 수크로오스, 키토산 및 만니톨 또는 이의 조합의 효과를 검사하기 위한 결과.
실험 및 샘플 이론적 VLP 농도(mg/mL) N 측정된 SE-HPLC 평균 단백질 농도 및 피크 용출 시간 이론적 비율로서 인식된 단백질의 평균 비율 값 질량 해당량 S = 수크로오스 C = 키토산 M = 만니톨
"VLP" ~15분 (mg/mL) VLP 단편 ~32분 (mg/mL) 전체 단백질 (%) "VLP" (%)
S C M
LE1-LE5 0.25 5 0.02 0.12 56.0 6.3 0 0 1
LG1-LG9 0.25 9 0.06 0.00 24.0 24.0 0 1 0
LG10 0.25 1 0.25 0.00 101 101 10 1 0
LG11 0.25 1 0.25 0.00 101 101 5 1 0
LG12 0.25 1 0.25 0.00 100 100 2.5 1 0
LG13 0.25 1 0.16 0.00 65 65 1 0 0
LJ1-LJ14 0.25 14 0.22 0 85.4 85.4 2 1 0
LIG1d-S1 0.25 1 0.21 0 88 88 2 1 0
LIG1d-Sa 0.25 1 0.12 0 50 50 2 1 0
LIG1d-S2 0.25 1 92 0 92 92 1 0.5 1
LIG1d-Sb 0.25 1 60 0 60 60 1 0.5 1
LIG1d-S3 0.25 1 <1 <1 <1 <1 0 0 1
실시예 14. 비강으로 면역된 생쥐들에서 노로바이러스 -특이적 장수 혈장 세포 및 기억 B 세포의 유도
A. 놀워크 VLP-특이적 장수 혈장 세포들
BALB/c 생쥐들을 노로바이러스 VLPs 및 항원보강제로 비강으로 면역시켰다. 나이브 대조군들은 항원보강제만을 투여하였다. 면역화 후 114일에, 비장, 경부 림프절 및 골수를 두 그룹들의 생쥐로부터 채취하였다. 조직들을 채취하는 날(0일), 항원-특이적 항체-분비 세포들(ASCs)의 존재를 대해 ELISPOT 분석법을 사용하여 세포들을 분석하였다. 결과들은 다른 조직들에 대한 도 13A-C에 제공된다. 이런 조직들에서 면역글로불린(IgG, IgA 및 IgM)의 탐지는 노로바이러스-특이적 장수 혈장 세포들의 존재를 나타낸다.
B. 놀워크 VLP-특이적 기억 B 세포들
인비트로 분석법은 놀워크 VLPs로 비강으로 면역된 생쥐들로부터의 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포들의 존재를 탐지하기 위해 개발하였다. 여러 림프 조직 또는 전혈(말초 혈액 단핵 세포, 비장세포, 림프절 세포 등)은 이런 분석법을 사용하여 기억 B-세포들의 존재를 분석할 수 있는 세포들의 원료로 사용될 수 있다.
이 실험에서, 비장을 면역된 및 면역되지 않은 동물(대조군)로부터 채취하고 가공하였고, 비장세포들은 놀워크 VLPs(20㎍/ml)의 존재 또는 부존재(대조군)하에서 4일 동안 배양하였다. 최초 VLP-특이적 ELISPOT 분석법을 ASCs의 백그라운드 레벨을 설정하기 위해 조직 채취하는 날(0일) 수행하였다(상기 섹션 A 참조). 배양 4일 후, 세포들을 채취하고 VLP-특이적 ASCs의 수를 정량하기 위해 ELISPOT 분석법으로 다시 분석하였다. 분석 0일 내지 4일 사이의 VLP-특이적 ASC 수의 차이는 항원-특이적 기억 B-세포 집단을 나타낸다. 이런 실험의 결과들은 도 14a 및 b에 도시된다.
실시예 15. 토끼들에서 노로바이러스 기억 B 세포 반응들
2마리의 암컷 뉴질랜드 흰색 토끼를 발로이스 마크 4 비강 전달 장치에 채운 10mg의 건조 분말당 25㎍ 놀워크, 25㎍ MPL, 1.5mg 만니톨, 1.5mg 수크로오스 및 7.0mg 키토산으로 이루어진 건조 분말 제제로 비강으로 면역시켰다. 2마리 토끼들을 14일 간격으로 전체 3회 면역화하였다. 이런 실험들의 경우, 면역되지 않은 암컷 토끼는 나이브 대조군으로 사용하였다.
A. 토끼 조직들의 수집 및 가공
말초 혈액 단핵 세포(PBMCs): 전혈(~50mL)은 응집을 막기 위해 EDTA를 함유하는 수집 튜브로 토끼들로부터 얻었다. 전혈을 살균 D-PBS로 1:3으로 희석하고 ~35mL의 희석된 전혈을 살균 50mL 원심분리 튜브로 15mL의 림프구 분리 매질 위에 층을 이루게 하였다. 튜브를 실온에서 20분 동안 800 x g에서 원심분리하였다. PBMCs를 함유하는 황갈색 코팅층을 살균 5mL 피펫을 사용하여 조심스럽게 제거하고 세포들을 D-PBS로 2회 세척하였다. 필요한 경우, 오염시키는 적혈구 세포들은 ACK 용해로 제거하였다. 세포들을 RPMI-1640-10% FBS(1640-C)에 재현탁하고 트립판 배제 방법을 사용하여 혈구계산기로 계수하였다.
장간막 림프절 세포들: 림프절들은 안락사 후 각 토끼로부터 개별적으로 무균상태로 얻었다. 조직들을 ~10mL의 RPMI-1640-No 혈청(1640-NS)을 함유하는 살균 플라스틱 페트리 접시에 놓았다. 림프절들을 살균 막자를 사용하여 살균 메시 스키린을 통과하도록 압축시켜 조직을 분산시키고 림프절 세포들의 단일 세포 현탁액을 얻었다. 세포들을 수집히고, 1640-NS로 2회 세척하고 마지막으로 살균된 70㎛ 필터를 통과시켜 여과하여 세균 덩어리와 잔해를 제거하였다. 세포들을 1640-C에 재현탁하고 트립판 블루 배제 방법을 사용하여 혈구계산기에서 계수하였다.
비장세포: 비장을 안락사 후 각 토끼로부터 개별적으로 무균상태로 얻었다. 비장을 대략 10mL의 1640-NS를 함유하는 살균 페트리 접시에 놓았다. 살균 22-게이지 바늘과 주사기를 사용하여 매질을 조직에 반복해서 주사하여 비장 피막을 파괴시켜 세포들을 동화시켰다. 살균 핀셋을 사용하여 잔존하는 조직 단편들을 가늘게 찢었다. 페트리 접시의 내용물을 살균 원심분리 튜브에 옮기고 세포 현탁액과 파괴된 혈장 조직을 6-8분 동안 큰 조직 단편이 침전되도록 가만히 두었다. 단 세포 현탁액을 제 2 살균 원심분리 튜브에 옮기고 세포들을 1640-NS로 1회 세척하였다. 비장세포 조제액 속의 적혈구 세포들을 ACK 용해(8mL ACK 버퍼, 8분, 실온)에 의해 제거하고 세포들을 세척하고 마지막으로 살균된 70㎛ 필터를 통과시켜 여과하여 세균 덩어리와 잔해를 제거하였다. 최종 세포 펠렛을 1640-C에 재현탁하고 트립판 블루 배제 방법을 사용하여 혈구계산기에서 계수하였다.
골수 세포들: 뒷다리의 경골 벼를 안락사 후 개별 토끼로부터 제거하였다. 골수 세포들을 제거하기 위해 뼈들의 단부를 뼈 톱을 사용하여 살균상태로 제거하고 뼈의 내용물을 1640-NS 매질을 반복해서 주사하여 씻었다. 골수 세포들을 끊어질 때까지 반복해서 피펫으로 들었다 놓고 세포들의 덩어리를 분산시켰다. 세포들을 1640-NS로 1회 세척하였고; 적혈구 세포들을 ACK로 용해하고 세포들을 1640-NS로 1회 이상 세척하였다. 마지막으로, 세포들을 살균된 70㎛ 필터를 통과시켜 여과하여 세균 덩어리와 잔해를 제거하였다. 최종 세포 펠렛을 1640-C에 재현탁하고 트립판 블루 배제 방법을 사용하여 혈구계산기에서 계수하였다.
B. ELISPOT 분석법
미리 적시고 세척한 후, 96-웰 밀리포어 PVDF 필터 플레이트들을 50㎕/well의 최종 부피로 40㎍/ml의 농도로 고유 놀워크 VLPs의 살균 용액으로 코팅하였다. 플레이트들을 4℃에서 밤새 배양하고 D-PBS로 세척하고 1640-C를 첨가하여 봉쇄하였다. 면역된 토끼들 및 나이브 대조군 토끼들로부터의 장간막 림프절 세포들, 비장 세포들 및 골수 세포들을 다양한 농도(1x106, 5x105, 2x105 및 1x105cells/well)로 웰에 첨가하고 플레이트들을 37℃에서 밤새 배양하였다. 플레이트들을 PBS-트윈으로 완전히 세척하고 IgG 및 IgA에 특이적인 보조 시약들을 웰들에 첨가하고 실온에서 추가로 2시간 동안 배양하였다. 깨끗이 세척한 후, 플레이트를 DAB 크로마겐/기질로 현상하고 ELISPOT 플레이트 리더로 읽었다. 나이브 대조군 동물들로부터 웰들 상에 나타난 점들을 실험 그룹들로부터 배제하였다. 데이터는 놀워크 VLP-특이적 항체-분비 세포(ASCs)로 표시되며 1x106 세포당 정상화된다.
C. 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포 분석
상기한 다양한 조직들로부터 분리된 림프구 세포들을 mL당 5x106 세포들의 밀도로 놀워크 VLPs(10㎍/mL)의 존재하에서 1640-C 매질에 재현탁하였다. 세포들을 37℃에서 4일 동안 1mL 부피로 24-웰 플레이트에서 배양하였다. VLP-특이적 ELISPOT 분석법을 배양과 동시에 이런 세포들에 수행하였다. 4일 동안 배양한 후 세포들을 채취하고, 1640-NS 매질로 2회 세척하고, 1640-C에 재현탁하고 트립판 블루 배제 방법을 사용하여 혈구계수기에서 계수하였다. 세포들을 놀워크 VLP-특이적 ELISPOT 분석법으로 다시 한 번 검사하였다. 조직 채취일에 수행된 ELISPOT 분석법으로부터 얻은 데이터는 0일(백그라운드)ASC 활성으로 부른다. 0일에 탐지된 임의의 점들은 활성적으로-분비된 혈장 세포 또는 장수 혈장 세포(LLPCs)인 것으로 생각된다. 4일 배양된 세포에 대해 수행된 ELISPOT 분석법으로부터 얻은 데이터는 4일 ASC 활성으로 부르고, 기억 B-세포 활성은 4일 ASC 활성 내지 0일 ASC 활성 사이의 차이로 나타난다.
D. 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포들은 비강으로 면역된 토끼들의 말초 혈액에 존재한다
전혈을 상기한 대로 놀워크 VLPs를 함유하는 건조 분말 제제 백신으로 최종 3회 비강 면역화 이후 141일에 2마리 면역된 토끼(RB735, RB1411)로부터 얻었다. 면역되지 않은 나이브 토끼로부터 혈액을 얻었다. 혈액을 가공하여 말초 혈액 단핵 세포(PBMCs)를 얻었고 PBMCs를 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포 분석법으로 분석하였다(상기 섹션 C). 결과들은 도 15에 도시된다. 왼쪽 패널은 조직 채취 시간(0일 ASCs)에 최초 ELISPOT 분석법의 결과를 도시한다. 오른쪽 패널은 놀워크 VLPs로 배양하고 4일 후(4일 ASCs) ELISPOT 분석법의 결과를 도시한다.
0일 ELISPOT 결과(도 15, 왼쪽 패널)는 놀워크 VLP 건조 분말 백신으로 최종 추가 면역화 후 대략 140일에 말초 혈액에 잔존하는 VLP-특이적 혈장 세포들이 없다는 것을 나타낸다. 도 15의 오른쪽 패널은 ELISPOT 분석은 놀워크 VLPs로 인비트로 4일 동안 배양한 PBMCs로부터 얻는다는 것을 보여준다. 2마리 면역된 토끼에서, 기억 B-세포들의 부차 집단인 현저한 수의 PBMCs는 활성 IgG-분비 놀워크 VLP-특이적 혈장 세포들 속에서 성숙되었다. 비록 IgA-분비 기억 B-세포들에 대한 분석법을 수행하였지만, 단지 IgG-분비 기억 B-세포들만 PBMC 집단에서 탐지하였다. 예상대로, 나이브 동물은 항원-특이적 기억 B-세포들을 나타내지 않았다. 따라서, VLP-특이적 기억 B-세포들은 최종 3회 비강 면역화 이후 140+일에 토끼들의 말초 순환에서 발견되었다.
E. 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포들은 비강으로 면역된 토끼들의 비장에 존재한다
비장 세포들을 2마리 백신 면역된 토끼와 면역되지 않은 대조군 토끼의 비장으로부터 얻었다. 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포 분석법(상기함)을 이런 세포들에 대해 수행하였고 결과는 도 16에 도시된다. PBMC 집단에 대해 관찰함에 따라 0일 ELISPOT 분석은 비장에 존재하는 항원-특이적 혈장 세포들이 없다는 것을 보여준다(도 16, 왼쪽 패널). 그러나, 놀워크 VLPs에 의한 인비트로 배양 4일 후, IgG-분비 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포들은 비장 세포 집단에서 확실히 보인다. 따라서, 비장은 비강 면역화 이후 기억 B-세포들의 이동을 위한 한 부위를 나타낸다.
F. 놀워크 VLP-특이적 장수 혈장 세포들의 집단은 골수에서 발견되나 기억 B-세포들은 존재하지 않는다
골수 세포들은 실험 토끼들의 경골로부터 얻었고 장수 혈장 세포들과 기억 B-세포들의 존재에 대해 분석하였다. 결과는 도 17에 제공된다. 도 17의 왼쪽 패널은 토끼 1411은 골수에 항원-특이적 혈장 세포들의 상당한 집단을 갖는 것으로 나타난다. 골수로 이동하여 면역화 이후 상당 기간 동안 머무는 혈장 세포들은 장수 혈장 세포들(LLPCs)로 부른다. 토끼 735는 많은 수의 LLPCs를 나타내지 않는다. LLPCs는 나이브 토끼의 골수에서 발견되지 않았다. 골수 세포들은 기억 B-세포 분석법으로 배양되고 기억 B-세포들의 존재를 위해 재검사되었다. 도 17의 오른쪽 패널은 골수에 존재하는 항원-특이적 기억 B-세포들이 필수적으로 없다는 것을 보여준다. 따라서, 장수 혈장 세포들은 골수로 이동하나 그곳에서 기억 B-세포들이 발견되지 않는다.
G. IgG-분비 및 IgA-분비 놀워크 VLP-특이적 기억 B-세포들은 비강으로 면역된 토끼들의 장간막 림프절에 존재한다
장간막 림프절은 모든 실험 토끼로부터 얻었고 분리된 세포들은 LLPCs과 기억 B-세포들에 대해 분석하였다. 이런 분석에 의한 결과는 도 18a에 도시된다. 골수를 제외하고 분석된 대부분의 림프 조직과 함께, LLPCs(도 18a 왼쪽 패널)이 장간막절에서 발견되었다. 놀워크 VLPs에 의한 인비트로 배양 후, 매우 많은 수의 IgG-분비 VLP-특이적 기억 B-세포들은 장간막 림프절 집단에서 명백하였다(도 18a, 오른쪽 패널). 장간막 림프절에서 관찰된 기억 B-세포들의 수는 분석된 다른 림프 조직들에 대해 관찰된 수보다 현저하게 많았다.
여러 연구들이 비강 또는 장과 같은 점막 유도 부위에서의 면역화는 소위 점막 면역반응을 유도할 수 있다는 것을 보여주었다. 이런 반응은 일반적으로 점막 림프 조직에 국소화된 IgA+ B-세포 및 IgA-분비 혈장 세포들의 존재에 의해 특징화되었다. 이런 이유로, 장간막 림프절 세포들은 IgA-분비 LLPCs 또는 기억 B-세포들의 존재에 대해 분석되었다. 이런 분석의 결과는 도 18b에 도시된다. 다시 한번, IgA + LLPCs는 장간막 림프절 집단에서 발견되지 않았다(도 18b, 왼쪽 패널). 그러나, 건조 분말 놀워크 VLP 백신 제제에 의한 비강 면역화는 IgG + 및 IgA + 항원-특이적 기억 B-세포들이 장-관련 림프 조직으로 이동하여 발생하는 점막 면역반응을 유도하였다. 놀워크 백신 제제에 의한 면역화에 의해 유도된 항원-특이적 기억 B-세포들의 집단은 백신 효과의 가능한 지표이다. 기억 B 세포들의 존재는 장기간 지속하는 면역성의 한 지표이다.
H. VLP-특이적 CD4 + 기억 T 세포들
면역된 토끼들로부터 채취한 비장세포들은 응집되지 않은 놀워크 VLPs로 재자극하였고 세포 증식의 정도는 세로 좌표(CPM)에 나타낸 삼중수소화 티미딘 포함으로 측정하였다(도 19). 왼쪽 패널은 비장세포들의 미분획 집단의 세포 증식을 보여주며 오른쪽 패널은 CD4+ T 세포들의 세포 증식을 보여준다.
본 발명은 본 발명의 개별 태양의 한 설명인 특정 실시예들에 의해 범위가 제한되지 않으며 기능적으로 균등한 방법 및 구성요소는 본 발명의 범위 내에 있다. 또한, 본 발명에서 도시되고 개시된 것들 이외에 본 발명의 다양한 변형은 일상적인 실험들을 사용하여 상기 설명과 첨부된 도면으로부터 당업자에게 명백해질 것이다. 이런 변형과 균등물은 첨부된 청구항의 범위 내에 해당할 것이다.
본 명세서에서 언급한 모든 공보, 특허 및 특허 출원은 각각의 공보, 특허 또는 특허 출원이 참조로 포함되는 것으로 구체적이고 개별적으로 나타낸 것과 같이 어느 정도 본 명세서에 참조로 포함된다.
본 발명에서 참조문헌의 인용 또는 언급은 이런 문헌이 본 발명에 대한 종래기술이라는 것을 인정하는 것으로 해석되어서는 안 된다.
참조문헌
Figure 112009025822990-PCT00001
Figure 112009025822990-PCT00002
Figure 112009025822990-PCT00003
Figure 112009025822990-PCT00004
본 발명의 내용 중에 포함되어 있음.

Claims (53)

  1. 적어도 하나의 노로바이러스 항원 및 적어도 하나의 항원보강제를 포함하는 조성물.
  2. 제 1 항에 있어서,
    상기 노로바이러스 항원은 펩타이드, 단백질 노로바이러스 바이러스-유사 입자들(VLPs), 변형 LVPs, 캡시드 모노머, 캡시드 멀티머, 응집체 또는 이의 혼합물을 포함하는 조성물.
  3. 제 2 항에 있어서,
    상기 노로바이러스 항원은 노로바이러스 유전자군 I 및 유전자군 II 바이러스 균주로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 조성물.
  4. 제 2 항에 있어서,
    상기 노로바이러스 VLPs는 노로바이러스 핵산 서열을 사용하여 발현 시스템에서 생산된 재조합 VLPs인 조성물.
  5. 제 4 항에 있어서,
    상기 핵산 서열은 캡시드 단백질을 암호화하는 조성물.
  6. 제 5 항에 있어서,
    상기 캡시드 단백질은 VP1 및 VP2로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 조성물.
  7. 제 4 항에 있어서,
    상기 VLPs는 단가 VLPs인 조성물.
  8. 제 4 항에 있어서,
    상기 VLPs는 다가 VLPs인 조성물.
  9. 제 8 항에 있어서,
    상기 다가 VLPs는 노로바이러스 유전자군 I 및 유전자군 II 노로바이러스로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 조성물.
  10. 제 4 항에 있어서,
    상기 발현 시스템은 재조합 세포 발현 시스템 또는 바큘로바이러스-감염 세로 발현 시스템인 조성물.
  11. 제 10 항에 있어서,
    상기 세포 발현 시스템은 효모, 박테리아, 곤충 및 포유류 발현 시스템으로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 조성물.
  12. 제 1 항에 있어서,
    제 2 노로바이러스 항원을 더 포함하는 조성물.
  13. 제 12 항에 있어서,
    상기 제 1 및 제 2 노로바이러스 항원은 다른 유전자군으로부터의 단가 VLPs인 조성물.
  14. 제 1 항에 있어서,
    전달 물질을 더 포함하는 조성물.
  15. 제 14 항에 있어서,
    상기 전달 물질은 항원 흡수를 향상시키고, 저장 효과를 제공하거나 전달 부위에서 항원 잔류 시간을 증가시키는 작용을 하는 조성물.
  16. 제 14 항에 있어서,
    상기 전달 물질은 생체접착제인 조성물.
  17. 제 16 항에 있어서,
    상기 생체접착제는 점막접착제인 조성물.
  18. 제 17 항에 있어서,
    상기 점막접착제는 글리코사미노글리칸(예를 들어, 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 셀페이트 콘드로이틴, 케라탄 설페이트, 헤파린, 헤파린 설페이트, 하이알우로난), 탄화수소 폴리머(예를 들어, 펙틴, 알지네이트, 글리코겐, 아밀라제, 아밀로펙틴, 셀룰로오스, 키틴, 스타키로스, 우눌린, 덱스트린, 덱스트란), 폴리(아크릴산)의 가교 유도체, 폴리바이닐 알콜, 폴리바이닐 파이롤리돈, 폴리사카라이드(뮤신 및 다른 점막폴리사카라이드 포함) 셀룰로오스 유도체(예를 들어, 하이드록시프로필 메틸셀룰로오스, 카복시메틸셀룰로오스), 단백질(예를 들어, 렉틴, 섬모 단백질) 및 데옥시리보핵산으로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 조성물.
  19. 제 18 항에 있어서,
    상기 점막접착제는 폴리사카라이드인 조성물.
  20. 제 19 항에 있어서,
    상기 폴리사카라이드는 키토산, 키토산 염 또는 키토산 염기인 조성물.
  21. 제 14 항에 있어서,
    상기 노로바이러스 항원은 노로바이러스 VLP이고, 상기 항원보강제는 MPL이고 상기 전달 물질은 키토산, 키토산 염 또는 키토산 염기인 조성물.
  22. 제 1 항에 있어서,
    상기 항원보강제는 톨-라이크 리셉터(TLR) 효현제, 모노포스포릴 지질 A(MPL), 합성 지질 A, 지질 A 모방체 또는 유사체, 알루미늄 염, 사이토카인, 사포닌, 무라밀 다이펩타이드(MDP) 유도체, CpG 올리고, 그람-음성 박테리아의 리포폴리사카라이드(LPS), 폴리포스파젠, 에멀젼, 비로솜, 코크리트, 폴리(락티드-코-글리콜리드)(PLG) 미세입자, 폴록사머 입자, 미세입자, 및 리포솜으로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 조성물.
  23. 제 22 항에 있어서,
    상기 항원보강제는 톨-라이크 리셉터(TLR) 효현제인 조성물.
  24. 제 22 항에 있어서,
    상기 항원보강제는 MPL인 조성물.
  25. 제 1 항에 있어서,
    상기 항원보강제는 독소 항원보강제가 아닌 조성물.
  26. 제 1 항에 있어서,
    상기 조성물은 액체 제제인 조성물.
  27. 제 1 항에 있어서,
    상기 조성물은 분말 제제인 조성물.
  28. 제 27 항에 있어서,
    상기 조성물은 지름이 약 10 내지 500 마이크로미터의 입자 크기를 가진 조성물.
  29. 상기 조성물의 1회 이상의 복용량을 투여하기 위해 하나 이상의 장치들과 결합된 제 27 항의 건조 분말 조성물.
  30. 제 29 항에 있어서,
    상기 1회 이상의 복용량은 단위 복용량인 건조 분말 조성물.
  31. 제 29 항에 있어서,
    상기 장치는 1회용 비강 투여 장치인 건조 분말 조성물.
  32. 제 29 항에 있어서,
    상기 조성물은 상기 장치에 저장되는 건조 분말 조성물.
  33. 제 1 항의 조성물을 포함하는 항원 제제.
  34. 제 1 항의 조성물을 포함하는 백신 제제.
  35. 제 33 항 또는 제 34 항에 있어서,
    상기 제제는 점막, 근육내, 정맥, 피하(subcutaneous), 피내, 피하(subdermal) 및 경피 투여 경로로 피험자에게 투여되는 제제.
  36. 제 35 항에 있어서,
    상기 투여 경로는 근육내인 제제.
  37. 제 35 항에 있어서,
    상기 점막 투여 경로는 비강, 경구, 또는 질인 제제.
  38. 제 37 항에 있어서,
    상기 제제는 코 스프레이, 비액 또는 건조 분말의 형태인 제제.
  39. 제 38 항에 있어서,
    상기 제제는 비강에 가깝게 고정되거나 삽입된 제제의 장치로부터 비강 내에서 빠른 침적에 의해 비강 점막으로 투여되는 제제.
  40. 제 39 항에 있어서,
    상기 제제는 콧구멍 하나 또는 모두에 투여되는 제제.
  41. 제 33 항 또는 제 34 항에 있어서,
    상기 노로바이러스 항원은 약 0.01%(w/w) 내지 약 80%(w/w)의 농도로 존재하는 조성물.
  42. 제 33 항 또는 제 34 항에 있어서,
    노로바이러스 항원의 복용량은 복용 당 약 1㎍ 내지 약 100mg의 양으로 존재하는 조성물.
  43. 제 33 항 또는 제 34 항에 있어서,
    노로바이러스 항원의 복용량은 복용 당 약 1㎍ 내지 약 1mg의 양으로 존재하는 조성물.
  44. 제 42 항에 있어서,
    노로바이러스 항원의 복용량은 복용 당 약 1㎍ 내지 약 500㎍의 양으로 존재 하는 조성물.
  45. 제 42 항에 있어서,
    노로바이러스 항원의 복용량은 복용 당 약 1㎍ 내지 약 100㎍의 양으로 존재하는 조성물.
  46. 피험자에게 제 33 항의 항원 제제를 투여하는 단계를 포함하여 노로바이러스 항원에 대한 항체를 생산하는 방법.
  47. 피험자에게 제 34 항의 백신 제제를 투여하는 단계를 포함하여 노로바이러스에 감염된 피험자에서 치료 효과가 있는 면역반응을 유도하는 방법.
  48. (a) 노로바이러스 항원, 수크로오스 및 키토산을 포함하는 선-동결건조 용액을 제조하는 단계(수크로오스 대 키토산의 질량비는 약 0:1 내지 약 10:1이다);
    (b) 용액을 동결하는 단계; 및
    (c) 30-72시간 동안 동결된 용액을 동결건조하는 단계(최종 동결건조된 생성물은 응집된 형태의 상기 노로바이러스 항원 부분을 함유한다)를 포함하여 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법.
  49. 제 48 항에 있어서,
    상기 선-동결건조 용액은 증량제를 더 포함하는 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법.
  50. 제 49 항에 있어서,
    상기 증량제는 만니톨인 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법.
  51. 제 50 항에 있어서,
    상기 선-동결건조 용액은 만니톨과 노로바이러스 항원으로 이루어지고 상기 응집된 노로바이러스 항원의 비율은 90%보다 큰 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법.
  52. 제 48 항에 있어서,
    상기 수크로오스 대 키토산의 질량비는 약 2:1 내지 약 10:1이고 상기 응집된 노로바이러스 항원의 비율은 약 0% 내지 약 50%인 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법.
  53. 제 48 항에 있어서,
    상기 수크로오스 대 키토산의 질량비는 약 0:1이고 상기 응집된 노로바이러스 항원의 비율은 70% 보다 큰 노로바이러스 항원 제제를 제조하는 방법.
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