KR102119461B1 - Dna 분자 시각화를 이용한 dna 서열 분석용 화합물 및 그 이용 방법 - Google Patents

Dna 분자 시각화를 이용한 dna 서열 분석용 화합물 및 그 이용 방법 Download PDF

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    • C12Q2563/107—Nucleic acid detection characterized by the use of physical, structural and functional properties fluorescence

Abstract

본 발명은 DNA 서열 분석용 조성물 및 시료에 이를 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법에 관한 것으로, 구체적으로는 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물 및 시료에 이를 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법에 관한 것이다.
본 발명의 화학식 1로 표시되는 화합물은 TAMRA가 연결된 폴리피롤을 포함함으로써, A/T 염기 쌍(W)에 특이적으로 결합하여 단독으로 형광을 낼 수 있으면서도 DNA 분자는 광분해 되지 않는 바, 특히 단일 DNA 분자(single DNA molecule) 수준에서 DNA 분석 용도로 유용하게 사용될 수 있다.

Description

DNA 분자 시각화를 이용한 DNA 서열 분석용 화합물 및 그 이용 방법{Chemicals and Method for Analyzing DNA Sequences by Visualizing Single-molecule DNA}
본 발명은 DNA 서열 분석용 조성물 및 이를 이용한 DNA 서열 분석 방법에 관한 것으로, 구체적으로는 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물 및 시료에 이를 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법에 관한 것이다.
개별 DNA 분자를 직접적으로 시각화하는 것은 DNA 서열의 맥락에서 생화학적 특성을 확인하기 위하여 매우 중요하다. 단일 뉴클레오타이드(nucleotide) 수준에서 시퀀싱(sequencing)하는 기술이 발전하고 있지만, 이러한 기술은 긴 게놈 내의 짧은 판독 길이 및 이에 따른 정보 손실 등 아직 미해결된 생물학적 문제를 가지고 있다.
DNA 분석의 궁극적인 목표는 단편화 또는 증폭 없이 염색체 DNA로부터 직접적으로 염기 서열 및 후성(epigenetic) 유전 정보를 얻는 것이다. 이러한 필요를 고려할 때, 단일 DNA 분자(Single DNA molecule)는 현재의 시퀀싱 기술의 한계를 극복하기 위한 유망한 플랫폼이라 할 수 있다.
이에, 커다란 DNA 분자를 시각화하여 유전 정보를 얻는 광학 매핑(Optical Mapping) 방법이 계속하여 개발되었다. 이는 단일 DNA 분자(Single DNA molecule)로부터 바코드와 같은 패턴을 만들어 시각화하는 방법이다.
다만, 종래의 서열-특이적 제한 효소(Restriction enzyme)를 사용하여 분석하는 방법은 DNA가 분해된다는 근본적인 문제가 존재하고, A/T 염기 쌍에 대한 서열-특이적인 물질(Netropsin 등) 및 형광 염료 표지를 사용하여 분석하는 방법은 상기 형광 염료로 사용된 YOYO-1에 의해 광-유도 DNA 절단이 유발된다는 문제가 존재한다.
따라서, DNA가 분해되지 않으면서 서열-특이적으로 결합하여 단독으로 형광을 낼 수 있는 물질의 개발이 필요한 실정이다.
국내공개특허 10-2018-0001712
본 발명자들은 DNA가 분해되지 않으면서 서열-특이적으로 결합하는 조성물을 개발하고자 예의 연구 노력하였다. 그 결과, TAMRA가 연결된 폴리피롤이 A/T 염기 쌍(W)에 특이적으로 결합하여 단독으로 형광을 낼 수 있으면서도 DNA 분자는 광분해 되지 않음을 규명함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.
따라서, 본 발명의 목적은 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 DNA 서열 분석용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 DNA 서열 분석용 조성물을 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법을 제공하는 것이다.
본 발명자들은 DNA가 분해되지 않으면서 서열-특이적으로 결합하는 조성물을 개발하고자 예의 연구 노력하였다. 그 결과, TAMRA가 연결된 폴리피롤이 A/T 염기 쌍(W)에 특이적으로 결합하여 단독으로 형광을 낼 수 있으면서도 DNA 분자는 광분해 되지 않음을 규명하였다.
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 DNA 서열 분석용 조성물 및 시료에 이를 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법에 관한 것이다.
이하, 본 발명을 더욱 자세히 설명하고자 한다.
본 발명의 일 양태는 하기 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 DNA 서열 분석용 조성물에 관한 것이다.
[화학식 1]
Figure 112018073299913-pat00001
상기 화학식 1에서,
n, m, o 및 p는 각각 독립적으로 1 내지 10의 정수이고,
X는 형광단백질(fluorescent protein), 발광단백질(photoprotein), 발색 반응(color reaction)-촉매, 바이오틴(biotin), 형광물질(fluorescent substance), 발광물질(luminescent substance) 및 화학발광물질(chemiluminescent substance)로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있다.
상기 발색반응-촉매는, 예를 들어, 알칼린 포스파타아제(alkaline phosphatase), 퍼옥시다아제(peroxidase), β-갈락토시다아제(β-galactosidase) 또는 β-글루코시다아제(β-glucosidase)일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 형광물질은, 예를 들어, TAMRA(carboxytetramethylrhodamine), 플루오레세인(fluorescein), Cy5(Cyanine 5), Cy3(Cyanine 3), HEX(5'-Hexachloro-Fluorescein), TET(5'-Tetrachloro-Fluorescein), Dabsyl(4-(dimethylaminoazo)benzene-4-carboxylic acid) 또는 FAM(Fluorescein amidite)일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 화학식 1로 표시되는 화합물의 n, m, o 및 p는 각각 독립적으로 1 내지 5의 정수이고, X는
Figure 112018073299913-pat00002
일 수 있다.
또한, 상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 하기 화학식 2로 표시되는 화합물일 수 있다.
[화학식 2]
Figure 112018073299913-pat00003
상기 조성물은 아데닌/티민(A/T) 염기 쌍(W)에 특이적으로 결합할 수 있다.
상기 DNA는 예를 들어, 단일 DNA 분자(Single DNA molecule), 염색체(chromosome) 또는 염색사(chromatin fiber) 일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 조성물은 폴리피롤(polypyrrole)과 DNA의 마이너 그루브(minor groove) 간의 수소 결합을 통해 DNA에 결합하고, 결합 시 조성물 내 TAMRA(carboxytetramethylrhodamine)는 DNA 백본(backbone)에서 멀리 떨어져서 존재하므로, 기존 DNA 염색물질로 자주 사용되는 YOYO-1의 심각한 문제인 DNA 광분해 현상을 억제하여, DNA 신장(elongation) 및 이완(relaxation) 사이클이 반복될 때 DNA를 절단하지 않는 장점이 있다.
또한, 상기 조성물은 전통적인 시퀀싱 방법과 달리, 화학적으로 변형(modified)되거나 손상(damaged)된 DNA 서열이나 백본(backbone)의 분석이 가능하므로, 단일 DNA 분자(single DNA molecule) 수준에서 유용하게 사용될 수 있다.
본 발명의 다른 일 양태는 시료에 하기 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 DNA 서열 분석용 조성물을 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법 에 관한 것이다.
[화학식 1]
Figure 112018073299913-pat00004
상기 화학식 1에서,
n, m, o 및 p는 각각 독립적으로 1 내지 10의 정수이고,
X는 형광단백질(fluorescent protein), 발광단백질(photoprotein), 발색 반응(color reaction)-촉매, 바이오틴(biotin), 형광물질(fluorescent substance), 발광물질(luminescent substance) 및 화학발광물질(chemiluminescent substance)로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있다.
상기 방법은 분석 대상의 전체 게놈(Genome) 중 아데닌/티민(A/T) 프리퀀시(Frequency)와 상기 조성물을 처리한 시료의 A/T 프리퀀시를 비교하는 단계를 더 포함할 수 있다.
상기 조성물은 아데닌/티민(A/T) 염기 쌍(W)에 특이적으로 결합할 수 있다.
상기 시료는 예를 들어, 단일 DNA 분자(Single DNA molecule), 올리고DNA(oligo DNA), 염색체(chromosome), 다사염색체(polytene chromosome) 또는 염색사(chromatin fiber) 등을 포함하는 유전물질(Genetic Material) 일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 방법은 예를 들어, Python 프로그램을 사용하여 인 실리코(in silico) 맵(map)에서 분석 대상의 전체 게놈 A/T 빈도를 스캐닝하고, 상기 DNA 서열 분석용 조성물을 처리한 시료의 이미지와 상기 스캐닝한 전체 게놈 A/T 빈도 사이의 가장 적절한 얼라인먼트(Alignment) 위치를 탐색함으로써 대상 DNA 서열을 분석할 수 있다.
상기 조성물의 중복되는 내용은 본 명세서의 복잡성을 고려하여 생락한다.
본 발명은 DNA 서열 분석용 조성물 및 이를 이용한 DNA 서열 분석 방법에 관한 것으로, 구체적으로는 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 조성물 및 시료에 이를 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법에 관한 것이다.
본 발명의 화학식 1로 표시되는 화합물은 TAMRA가 연결된 폴리피롤을 포함함으로써, A/T 염기 쌍(W)에 특이적으로 결합하여 단독으로 형광을 낼 수 있으면서도 DNA 분자는 광분해 되지 않는 바, 특히 단일 DNA 분자(single DNA molecule) 수준에서 DNA 분석 용도로 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 의해 아데닌(A) 및 티민(T) 염기 쌍-풍부 지역 특이적으로 염색된 DNA 분자를 나타내는 모식도이다.
도 2a는 본 발명의 일 실시예에 의해 염색된 λ DNA(48.5 kbp)의 흐름이 없는 조건에서 버섯 모양의 형태를 보여주는 도이다.
도 2b는 본 발명의 일 실시예에 의해 염색된 λ DNA의 100 μL/분의 흐름이 있는 조건에서 완전히 신장된 형태를 보여주는 도이다.
도 2c는 본 발명의 일 비교예에 의해 염색된 false-labeled DNA를 보여주는 도이다.
도 3a는 본 발명의 일 실시예에 의해 염색된 λ DNA의 인 실리코(in silico) 서열 빈도 게놈 서열(W, W4 및 W9)을 실험적으로 측정한 형광 강도(빨간색 선)와 비교한 결과이다.
도 3b는 본 발명의 일 실시예에 의해 염색된 λ DNA의 게놈 20 분자 이미지의 비교하여 정렬함으로써 교차-상관 계수(cross-correlation coefficient) 값을 측정하여 비교한 결과이다.
도 4a는 본 발명의 일 실시예에 의해 염색된 노랑초파리(D. melanogaster)의 다사염색체에 대한 얽힌(tangle) 및 확산(spread) 이미지이다.
도 4b는 본 발명의 일 실시예 및 DAPI에 의해 염색된 λ DNA에 대한 형광 이미지이다.
도 5는 본 발명의 일 실시예 및 YOYO-1에 의해 염색된 λ DNA의 광-절단 겔 전기영동 분석 결과이다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당 업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
제조예. TAMRA-β 2 -Py 4 -β-Py 4 -Dp의 제조
Fmoc-Py-COOH, 옥심(oxime) 수지, HCTU, DIEA 및 다이메틸포름아마이드(Dimethylformamide; DMF)를 사용하여 50 mg Fmoc-Py-옥심 수지(0.40 mmol/g)를 제조하였다.
보다 구체적으로, 20 % 피페리딘/DMF(500 μL)를 4 분간 2 회 디블로킹(deblocking)하고, Fmoc-Py-COOH(77 mg, 0.21 mmol) 또는 Fmoc-β-COOH(66 mg, 0.21 mmol)-HCTU 혼합물에 10 % DIEA/N-메틸피롤리돈(N-methyl pyrrolidone; NMP)(364 μL, DIEA는 0.21 mmol)을 첨가하고 60 분간 커플링 반응을 진행하였다(순차적으로 Fmoc-Py-COOH 4 회, Fmoc-β-COOH 1 회, Fmoc-Py-COOH 4 회 및 Fmoc-β-COOH 2 회). 각 단계마다 DMF로 5 회 세척하였다. 마지막 커플링 반응 후, N-말단에서 아미노 그룹의 탈보호가 수행되었으며, 모든 커플링 반응은 단일-커플링 사이클로 수행되었다. 모든 라인을 용액으로 제거하고, 수지를 교반하기 위해 질소 가스로 버블링시켰다.
그 다음, N, N-다이메틸-1,3-프로판다이아민(N, N-dimethyl-1,3-propanediamine) 또는 3,3-다이아미노-N-메틸다이프로필아민(3,3'-diamino-N-methyldipropylamine) 0.60-1.0 mL를 55 ℃에서 3 시간 동안 처리하여 수지 상에서 폴리피롤을 절단하였다. 여과를 통해 수지를 제거하고 다이클로로메탄으로 완전히 세척한 후, 남은 용액을 진공 농축시켰다. 잔류물을 다이클로로메탄-메탄올 혼합물 1.0 내지 2.0 mL에 용해시킨 후, 10 배 초과의 다이에틸에터를 첨가하고 10,000 xg로 10 분 동안 원심분리하여 상청액을 제거하였다. 백색 침전이 수득될 때까지 이 공정을 반복하였다.
수득된 원 생성물(crude) 을 4.3 g 역상 플래시 칼럼(C18 RediSep Rf)에서 아세토나이트릴(용리액) 및 0.1 % TFA(in water)를 사용하여 역상 플래시 크로마토그래피(CombiFlash Rf, Teledyne Isco, Lincoln, NE)로 정제하였다. 모은 분획을 동결 건조하여 H2N-(β-알라닌)2-(N-메틸피롤)4-(β-알라닌)-(N-메틸피롤)4-(3-(다이메틸아미노)프로필아민)(H2N-β2-Py4-β-Py4-Dp)(19 mg, 1.5x10-2 mmol)을 얻었다.
그 다음, DMF(190 μL) 및 DIEA(0.70 μL, 4.0x10-3 mmol)에 상기 얻어진 H2N-β2-Py4-β-Py4-Dp(1.3 mg, 1.0x10-3 mmol) 및 5-TAMRA NHS 에스터(1.2 mg, 2.3x10-3 mmol)를 실온에서 빛을 차폐하면서 혼합하였다. 반응액을 역상 고성능액체크로마토그래피(high performance liquid chromatography; HPLC)로 정제한 후, 동결 건조하여 (5-카복시테트라메틸로다민)-(β-알라닌)2-(N-메틸피롤)4-(β-알라닌)-(N-메틸피롤)4-(3-(다이메틸아미노)프로필아민)(TAMRA-β2-Py4-β-Py4-Dp)(1.7 mg, 1.0x10-3 mmol, quant)을 자색 분말로서 얻었다.
HPLC: tR=18.2 min. MALDI-TOF-MS m/z calcd for C87H98N23O15 +[M+H]+ 1704.761 found 1704.766.
비교예 1. TAMRA-β 2 -Py 4 -Dp의 제조
Fmoc-Py-COOH 또는 Fmoc-β-COOH의 커플링 반응 횟수 차이(순차적으로 Fmoc-β-COOH 2 회, Fmoc-Py-COOH 4 회)에 따라 100 mg Fmoc-Py-옥심 수지(0.36 mmol/g)를 이용한 것을 제외하고, 제조예와 동일한 방법을 이용하여 H2N-β2-Py4-Dp 를 제조하였다.
그 다음, DMF(140 μL) 및 DIEA(0.52 μL, 3.0x10-3 mmol)에 H2N-β2-Py4-Dp(1.1 mg, 1.5x10-3 mmol)를 실온에서 빛을 차폐하면서 혼합하였다. 반응액을 역상 고성능액체크로마토그래피로 정제한 후, 동결 건조하여 (5-카복시테트라메틸로다민)-(β-알라닌)2-(N-메틸피롤)4-(3-(다이메틸아미노)프로필아민)(TAMRA-β2-Py4-Dp)(1.5 mg, 1.3x10-3 mmol)을 자색 분말로서 얻었다.
HPLC: tR=17.2 min. MALDI-TOF-MS m/z calcd for C60H69N14O10 +[M+H]+ 1145.532 found 1145.559.
비교예 2. TAMRA-β 2 -Py 4 -TAMRA의 제조
Fmoc-Py-COOH 또는 Fmoc-β-COOH의 커플링 반응 횟수 차이(순차적으로 Fmoc-β-COOH 2 회, Fmoc-Py-COOH 4 회)에 따라 85 mg Fmoc-Py-옥심 수지(0.27 mmol/g)를 이용한 것을 제외하고, 제조예와 동일한 방법을 이용하여 H2N-β2-Py4-NH2 를 제조하였다.
그 다음, DMF(200 μL) 및 DIEA(10 μL, 5.7x10-2 mmol)에 H2N-β2-Py4-NH2(2.3 mg, 3.0x10-3 mmol) 및 5-TAMRA NHS 에스터(3.1 mg, 5.9x10-3 mmol)를 실온에서 빛을 차폐하면서 혼합하였다. 반응액을 역상 고성능액체크로마토그래피로 정제한 후, 동결 건조하여 (5-카복시테트라메틸로다민)-(β-알라닌)2-(N-메틸피롤)4-(5-카복시테트라메틸로다민)(TAMRA-β2-Py4-TAMRA)(1.2 mg, 7.5x10-4 mmol)을 자색 분말로서 얻었다.
HPLC: tR=18.2 min. MALDI-TOF-MS m/z calcd for C87H94N17O14 +[M+H]+ 1600.716 found 1600.779.
형광 현미경 및 DNA 시각화
역방향 광학 현미경(Olympus IX70, Tokyo, Japan)에 60x Olympus UPlanSApo oil immersion 대물렌즈를 연결하였고, LED 광원(SOLA SM II light engine, Lumencor, Beaverton, OR)을 사용하였다. 빛은 여기(excitation) 및 방출(emission) 파장을 설정하기 위하여 corresponding filter sets(Semrock, Rochester, NY)를 통해 집속되었다. 최대 빛 강도는 140 mW/cm2로 측정되었다. 형광 현미경 사진은 EMCCD(electron-multiplying charge-coupled device) 디지털 카메라 장치(Evolve EMCCD, Roper Scientific, Tucson, AZ)를 통해 16-bit TIFF 형식으로 저장하였으며, 소프트웨어로 Micro-manager를 사용하였다. 이미지 보정과 분석을 위하여, ImageJ 소프트웨어와 본 발명자들이 개발한 Java plug-in 및 python 프로그램을 사용하였다.
Python 프로그램
- ImageCompare.py: 기능 라이브러리(a library of functions).
- seq2map.py: 인 실리코(in silico) 맵(map)의 FASTA 서열 파일을 이용하여 선택한 서열에 대해 빈도가 높은 부분을 백색으로, 낮은 부분을 흑색으로 표현한 그림으로 변환.
- insilicoMapFolder.py: 폴더 내의 모든 이미지에 대하여, 인 실리코 그림 파일과 실험으로 얻은 DNA 그림을 스캐닝하여 대조하고, 교차 상관 계수가 가장 높은 지점의 위치와 그 값을 반환, 새로운 기록 파일에 저장.
- sortView.py: insilicoMapFolder.py로 얻은 기록 파일을 읽어 신호 비교, 교차 상관 계수 탐색, 이미지 비교를 시각화하여 새 창에 생성.
- randomtiff.py: 임의의 밝기 값을 갖는 tiff 이미지를 생성.
실험예 1. 단일 분자(Single molecule) 수준에서 DNA 염색 확인
먼저, 1xTE(10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8.0)를 이용하여 λ DNA(NCBI: NC_001416.1)를 5 ng/μL(0.16 nM; 염기 쌍 7.76 μM)로 희석하고, 70 μM 제조예와 1:1의 부피비로 혼합하였다. 그 다음, 실온에서 15 분 동안 항온 배양한 후, 4 % β-메르캅토에탄올(β-mercaptoethanol; β-ME)을 함유한 1xTE를 이용하여 20 배 희석하였다.
별도로, 산(Acid)으로 세척된 커버 슬립위에 아크릴 지지체를 놓고 양면테이프를 벽면으로 하는 플로우 챔버(Flow Chamber, 5x10x0.1 mm(LxWxH))를 준비하고, NE-1000 주사기 펌프(New Era Pump Systems Inc., Wantagh, NY)를 사용하여 완충액을 조절하였다.
플로우 챔버에 40 μg/ML 바이오티닐화(biotinylated) 소 혈청 알부민(Bovine serum albumin; BSA)을 넣고 10 분 동안 실온에서 배양하고, T50 솔루션(10 mM Tris, 50 nM NaCl, pH 8.0)으로 희석한 Neutravidin 20 μg/ML를 플로우 챔버에 넣고 10 분 동안 실온에서 배양하였다.
그 다음, 1 μM의 λ DNA 오버행 올리고(overhang oligo)(5'-p-GGGCGGCGACCT-Triethyleneglycol-biotin-3')를 넣고 10 분 동안 실온에서 유지하였다. λ DNA, 200 U T4 DNA 리가아제 및 반응 완충액을 첨가하고 실온에서 30 분 동안 배양하였다.
잔류 효소 혼합물을 1xTE로 세척한 후, 희석된 제조예 용액을 흘려주어 결합된 DNA(tethered DNA)를 시각화하였다. 염색된 DNA 분자는 1xTE의 연속 흐름(100 μL/분) 하에서 가시화하였다.
도 2a 내지 2c에서 확인할 수 있듯이, 제조예는 서열 특이성을 가진 λ DNA 분자를 시각화할 뿐만 아니라, 밝기도 향상시켰다. 제조예로 염색된 λ DNA 분자는 흐름이 없는 조건에서 버섯 모양의 구조(도 2a)였으나, 100 μL/분의 흐름이 있는 조건에서 완전히 신장(도 2b)되었다.
반면, 비교예 1은 AT-풍부(AT-rich) 지역을 부분적으로만 시각화하였으며, 원하지 않는 부분에도 결합하였고, DNA 백본(backbone)을 효율적으로 시각화할 만큼 충분히 밝지 않았다(도 2c). 또한, 비교예 2는 이중 가닥 DNA에 전혀 결합하지 않아, 형광을 관찰할 수 없었다. 이는, 양쪽 말단에 존재하는 두 개의 TAMRA의 입체 장애로 인해 테트라-피롤(Py4)이 DNA에 결합할 수 없었던 것으로 판단된다.
실험예 2. 단일 분자 수준에서 DNA 결합 확인
하기와 같이 3 종류(W, W4 및 W9)의 바인딩 서열에 대한 제조예의 결합 가능성을 확인하였다: 1) 연속하는 9 개의 A/T 염기 쌍에 결합하는 경우(W9). 2) 테트라-피롤(Py4)이 연속하는 4 개의 A/T 염기 쌍에 결합하고 나머지 부분이 링커로 작용하는 경우(W4). 3) 연속적인 서열이 아닌 불규칙적으로 1 개의 A/T 염기 쌍에 결합하는 경우(W).
상기 3 종류의 바인딩 서열(W, W4 및 W9) 20 분자 이미지의 얼라인먼트(alignment)를 게놈과 비교하여 교차-상관 계수(cross-correlation coefficient) 값을 측정하였다. 이때, 대조군 교차-상관 계수(이하, cc)는 100 컴퓨터-생성 랜덤 서열과 인 실리코 이미지를 비교하여 얻었다(***p < 0.0001 for random-sequences paired t-test).
Figure 112018073299913-pat00005
(
Figure 112018073299913-pat00006
= 샘플의 개수,
Figure 112018073299913-pat00007
= 각 지점에서의 값,
Figure 112018073299913-pat00008
= 샘플 평균)
도 3a 및 도 3b에서 확인할 수 있듯이, 3 종류의 형광 강도 프로필을 실험적으로 측정한 형광 강도(빨간색 선)와 비교한 결과(도 3a), W4 및 W9 보다 단순 A/T(W) 프리퀀시가 가장 많이 일치하였다. 또한, Python 프로그램을 이용하여 cc를 계산한 결과(도 3b), cc 값도 단순 A/T(W) 프리퀀시가 가장 높게 나타났다.
실험예 3. DNA 염색에 의한 광-유도 DNA 절단 현상 확인
먼저, λ DNA 용액(500 ng/μL) 1 μL를 총 반응 부피 50 μL가 되도록 제한 효소(HindIII)가 포함 된 반응액에 넣고 1 시간 동안 37 ℃에서 반응시킨 후, 65 ℃에서 15 분 동안 반응시켜 제한 효소 반응을 비활성화하였다.
- YOYO-1 염색된 DNA: 상기 λ DNA 100 ng에 최종 농도가 4 μM이 되도록 YOYO-1을 혼합한 후, 실온에서 15 분 동안 배양하였다. 488 nm의 빛을 30 분 동안 조사하였다.
- 제조예 염색된 DNA: 상기 λ DNA 100 ng에 최종 농도가 100 μM이 되도록 제조예를 혼합한 후, 실온에서 15 분 동안 배양하였다. 580 nm의 빛을 30 분 동안 조사하였다.
- 대조군: 염색물질을 포함하지 않은 λ DNA 용액 및 빛을 조사하지 않은
Figure 112020000740197-pat00013
DNA 용액을 사용하였다.
상기 각 용액을 0.7 % 아가로즈 겔을 이용하여 30 분 동안 전기영동 후 관찰하였다.
도 5에서 확인할 수 있듯이, YOYO-1 염색된 DNA는 완전히 사라졌으나, 제조예 염색된 DNA는 전혀 영향을 받지 않았다.
실험예 4. 염색체(Chromosomal) 수준에서 DNA 염색 확인
노랑초파리(Drosophila melanogaster)의 타액선의 다사염색체(Polytene chromosome)를 염색하여 형광 현미경에서 일반적으로 다사염색체를 시각화하는 데 사용되는 DAPI와 비교하였다.
보다 구체적으로, 노랑초파리(Drosophila melanogaster)의 3 번째 유충(larvae)의 절개된 타액선(salivary gland)을 프로판산(propionic acid), 탈이온수(deionized water) 및 아세트산(acetic acid)이 1:2:3 비율로 포함된 용액으로 고정하였다. 이후 양전하를 띠는 커버슬립에 올린 다음, 슬라이드 글라스 및 커버슬립 사이에 세포를 두고, 개별 세포를 조심스럽게 스프레딩(spreading) 하였다. 15 분 안에 슬라이드 글라스 위에서 커버슬립을 앞뒤로 움직인 후, 퍼진(spread) 세포를 으깬 다음, 슬라이드 글라스 및 커버슬립을 액체 질소에 살짝 담갔다. 기포가 더 이상 생성되지 않는 즉시 슬라이드 글라스로부터 커버슬립을 제거하고, 4 % β-ME 의 수용액으로 희석된 2.5 μM 제조예를 사용하여 염색하였다.
도 5a에서 확인할 수 있듯이, 얽힌(tangle) 및 확산(spread) 이미지는 모두 명확하게 밴드와 밴드 사이의 패턴을 보여주었다. 또한, 도 5b에서 확인할 수 있듯이, 제조예 염색 DNA는 DAPI-염색 DNA와 비교하여 명확한 백본(backbone)을 나타내었다. 제조예는 황색 파장(580 nm)에 의해 여기 되고 DNA를 손상시키지 않는 반면, DAPI는 형광체를 여기 시키기 위해 자외선 광원 또는 동등한 저파장광을 필요로 하며, DNA를 손상시킨다.
소결
상기 내용을 종합한 결과, 본 발명의 조성물은 DNA의 AT-풍부 지역을 특이적으로 염색하고, DNA에 결합 시 DNA 백본(backbone)에서 AT-풍부 서열 특이적인 형광 강도 패턴을 보임을 알 수 있었다. 이러한 서열 특이적 패턴을 이용하면 전체 서열이 제공될 경우, 염색된 DNA의 현미경 이미지로부터 DNA 서열을 결정할 수 있으므로, 본 발명의 조성물은 거대 단일 DNA 분자를 고속 및 고효율로 분석하기 위하여 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 다사염색체 DNA는 고해상도로 밴드와 밴드 간 패턴을 보여줄 수 있기 때문에, 본 발명의 조성물은 체세포 게놈의 불안정성, 게놈의 염색체 구성 및 단백질 면역 조직화(immunolocalization) 등을 연구하는 데 유용하게 사용될 수 있다.

Claims (10)

  1. 하기 화학식 1로 표시되는 화합물을 포함하는 DNA 서열 분석용 조성물:
    [화학식 1]
    Figure 112020000740197-pat00027

    상기 화학식 1에서,
    n은 2이고, m은 4이고, o는 1이고, p는 4이고,
    X는 형광단백질(fluorescent protein), 발광단백질(photoprotein), 발색 반응(color reaction)-촉매, 바이오틴(biotin), 형광물질(fluorescent substance), 발광물질(luminescent substance) 및 화학발광물질(chemiluminescent substance)로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나이다.
  2. 제 1 항에 있어서, 상기 형광물질은 TAMRA(carboxytetramethylrhodamine), 플루오레세인(fluorescein), Cy5(Cyanine 5), Cy3(Cyanine 3), HEX(5'-Hexachloro-Fluorescein), TET(5'-Tetrachloro-Fluorescein), Dabsyl(4-(dimethylaminoazo)benzene-4-carboxylic acid) 및 FAM(Fluorescein amidite)으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나인 것인, DNA 서열 분석용 조성물.
  3. 삭제
  4. 제1항에 있어서, 상기 화학식 1으로 표시되는 화합물은 하기 화학식 2로 표시되는 화합물인 것인, DNA 서열 분석용 조성물:
    [화학식 2]
    Figure 112020000740197-pat00028
    .
  5. 제 1 항에 있어서, 상기 조성물은 아데닌/티민(A/T) 염기 쌍(W)에 결합하는 것인, DNA 서열 분석용 조성물.
  6. 제 1 항에 있어서, 상기 DNA는 단일 DNA 분자(Single DNA molecule), 염색체(chromosome) 및 염색사(chromatin fiber)로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나 이상인 것인, DNA 서열 분석용 조성물.
  7. 시료에 제 1 항의 조성물을 처리하는 단계를 포함하는 DNA 서열 분석 방법.
  8. 제 7 항에 있어서, 상기 방법은 분석 대상의 전체 게놈(Genome) 아데닌/티민(A/T) 빈도(Frequency)와 상기 조성물을 처리한 시료의 A/T 빈도를 비교하는 단계를 더 포함하는 것인, DNA 서열 분석 방법.
  9. 제 7 항에 있어서, 상기 조성물은 A/T 염기 쌍(W)에 결합하는 것인, DNA 서열 분석 방법.
  10. 제 7 항에 있어서, 상기 시료는 단일 DNA 분자(Single DNA molecule), 올리고DNA(oligo DNA), 염색체(chromosome), 다사염색체(polytene chromosome) 및 염색사(chromatin fiber)로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나 이상인 것인, DNA 서열 분석 방법.
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