KR100764515B1 - Artificial seedling production and farming method of Kadashima - Google Patents
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Abstract
본 발명은 개다시마의 인공 종묘 생산 및 양식 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 조직절단으로 성 성숙이 완숙단계로 판정된 개다시마 모조로부터 유주자를 채묘하여 생장에 적합한 온도 및 조도에서 배양함으로써 포자의 아포체 생성 활성을 높여 결과적으로 종묘의 인공 생산을 가능하게 하는 것이다. 또한, 인공 생산된 종묘를 개다시마의 대량 양식에 이용하여, 서식지에서 점차 감소되어 멸종위기의 개다시마 군락지를 복원하고, 해조류 양식 품종을 다양화하며, 양식 기술을 보급하여 어업인의 소득증대에 기여할 수 있다. 또한, 개다시마의 대량 생산을 통해 고부가 가치성을 창출하는 의약품 및 건강식품 원료 공급원으로 활용할 수 있다.The present invention relates to an artificial seedling production and culture method of Gaedamashima, and more particularly, by cutting the intestines from Gaidashima imitation, which has been determined to be mature stage by tissue cutting, and cultured at the temperature and roughness suitable for growth It will increase the apoptotic activity and consequently enable the artificial production of seedlings. In addition, artificially produced seedlings can be used for the large-scale farming of Kadashima Island, which will gradually decrease in habitat to restore endangered Kadashima colony, diversify seaweed farming varieties, and spread farming technology to contribute to the increase of income of fishers. Can be. In addition, it can be used as a source of medicine and health food raw materials that create high value through mass production of Kadashima.
개다시마, 인공 종묘, 양식 Kadashima, artificial seedlings, aquaculture
Description
도 1은 용무늬가 뚜렷한 개다시마의 사진을 나타낸 도이다. 1 is a view showing a picture of a Kadamashima with a clear dragon pattern.
도 2는 자낭반이 형성된 성숙된 개다시마 모조의 사진을 나타낸 도이다. Figure 2 is a diagram showing a photograph of a mature ganoderma simula with a vesicle plaque.
도 3은 개다시마 모조로부터 자낭반을 채취하고, 이들로부터 유주자를 방출시키는 사진을 나타낸 도이다. Fig. 3 is a diagram showing a photograph in which the sleeping vesicles are collected from a Kadashima imitation and releasing dwellers from them.
도 4는 개다시마 모조의 성숙된 생식소와 세포 분열하는 유주자의 현미경 사진을 나타낸 도이다. Fig. 4 shows the micrographs of mature gonads and cell divisions in the Kadashima imitation.
도 5는 유주자를 플레이트에서 배양하는 과정을 나타낸 도이다. 5 is a diagram illustrating a process of incubating the resident in the plate.
도 6은 아포체의 현미경 관찰 사진을 나타낸 도이다. Fig. 6 is a diagram showing a microscopic picture of apoptosis.
도 7은 온도에 따른 개다시마 유주자의 생장을 나타낸 도이다. 7 is a diagram showing the growth of Kadashima strainer according to temperature.
도 8은 조도에 따른 개다시마 유주자의 생장을 나타낸 도이다. 8 is a view showing the growth of the Kadashima sake in accordance with the illuminance.
도 9는 유리배양으로 생산된 종묘의 사진을 나타낸 도이다. 9 is a view showing a photograph of the seedling produced by the glass culture.
도 10은 인공 종묘 생산된 개다시마(채묘줄에 부착된 종묘, 종사)의 사진을 나타낸 도이다. Fig. 10 is a diagram showing a photograph of a dog shimama (seeds attached to a seedling line, engaged) produced by artificial seedlings.
도 11은 우량 모조 생산을 위한 친승이식된 종묘의 사진을 나타낸 도이다. 11 is a view showing a photograph of a seedling seedling transplanted for excellent imitation production.
도 12는 개다시마 종묘의 실내적응시험 및 수심 30 m 에서 생장 시험 과정을 나타낸 도이다. FIG. 12 is a diagram illustrating an indoor adaptation test and a growth test procedure at a depth of 30 m of a Kadashima seedling.
도 13은 수심에 따른 개다시마 생장을 나타낸 도이다. FIG. 13 is a view showing growth of Gadashishima according to water depth. FIG.
도 14는 개다시마의 양식 과정을 나타낸 도이다. 14 is a diagram illustrating a culture process of Gadamashima.
도 15는 개다시마 양식장 시설도를 나타낸 도이다. 15 is a diagram showing a Kadashima fish farm facility drawing.
본 발명은 개다시마(Kjellaniella crassifolia) 인공 종묘 생산 및 양식 방법에 관한 것이다.The present invention is Gadshima ( Kjellaniella) crassifolia ) relates to artificial seedling production and aquaculture methods.
바다에 서식하는 생물은 총 30만 종으로 지구 동식물의 80%가 바다에서 서식하고 있고, 바다에서의 해조류는 1차 생산자로서 무척추동물, 어류 및 원생동물 등 다양한 동물들의 산란장, 쉼터 등 서식 환경을 제공하고 있어, 해양 생태계에 있어서 중요한 역할을 하는 위치에 있다. 또한 전복, 성게, 고둥류 등의 먹이 역할을 하고 있으며, 식용뿐만 아니라 비타민, 미네랄 및 다양한 생리활성 물질의 공급원 및 가축의 사료나 농작물의 비료로도 이용되어 왔다.There are 300,000 species of creatures in the sea, and 80% of the animals and plants of the world live in the sea, and the seaweeds in the sea are the primary producers, and the habitats of various animals such as invertebrates, fish and protozoa It is in a position to play an important role in marine ecosystems. In addition, it serves as a food for abalone, sea urchin, and shellfish, and has been used as a source of vitamins, minerals and various physiologically active substances as well as food, and as a fertilizer for livestock feed or crops.
우리나라에 서식하고 있는 해조류는 총 735종이며, 식용 또는 산업적으로 이용되고 있는 종류는 약 20여 종으로 대량 양식이 가능한 것은 김, 미역, 다시마, 톳, 쇠미역 등의 몇 종에 국한되어 있다. 따라서, 효율적인 해조 자원의 이용 및 해조류 양식 산업의 품종 다변화를 위하여, 다양한 양식 대상종의 개발에 노력을 기울일 필요가 있다.A total of 735 seaweeds inhabit in Korea, and about 20 species of edible or industrially used foods are limited to a few species such as laver, seaweed, seaweed, seaweed, and seaweed. Therefore, in order to efficiently use the seaweed resources and diversify the variety of the seaweed farming industry, it is necessary to make efforts to develop various farming target species.
우리나라 해안 가운데 동해는 남쪽에서 북상하는 대마난류와 북쪽에서 하강하는 한류 세력이 교차하는 등 해양 환경 변화가 심하고, 또한 봄철에 나타나는 냉수대 등의 영향으로 해조의 형태 변이가 심한 편이다. 동해안에서 서식하고 있는 해조류는 어떤 서식 장소의 서식환경에 오랜 기간에 걸쳐 적응된 결과로 현재의 형태를 지니고 있다. 특히 해조류는 하등한 생물군으로 유전적으로 불안정한 형질요소를 많이 포함한다. 예를 들면, 일정 환경에 적응된 해조류를 다른 서식환경으로 이식시켰을 때, 그들의 발현 형질은 새로운 서식환경에 따라 다른 형태로 나타날 수 있다. 또한 새로운 형질일지라도 해조류가 가지는 세대교번 상에 나타나는 감수분열 때문에 유지관리는 매우 어렵다. 이러한 이유뿐만 아니라 살아있는 생물을 대상으로 하는 수산양식의 경우, 어떤 양식 대상종의 이식은 기존의 해양생태계에 미치는 영향이 어떻게 나타날지 충분히 예측하기 매우 어렵다. 육상의 동·식물 이식에서 많은 예를 보고 있고, 이들의 생태계 파괴현상은 심각한 수준이다. 유전자원의 개발 및 보존을 위한 방법이 개발될 것이며, 이미 선진국에서 시행하고 있는 미래의 생물자원 관리 측면에도 시급히 이루어져야 한다. 암·수배우체의 분리 및 보존기술, 조직배양, 원형질체 분리 및 재생기법 개발은 연중 종묘생산이 가능한 측면과 종자를 보유한다는 측면에서 종자은행 운영을 위한 필수적인 기술이다. In the coast of Korea, the East Sea has severe changes in the marine environment, such as the crossing of the Great Manna Current from the north and the descending Korean Wave from the North. The algae inhabiting the east coast have a current form as a result of their adaptation to the habitat environment of a habitat for a long time. In particular, algae are inferior biota and contain many genetically unstable traits. For example, when algae adapted to a certain environment are transplanted into different habitats, their expression traits may appear differently depending on the new habitat. In addition, maintenance is very difficult because of the meiosis that occurs on the alternation of algae, even with new traits. For this reason as well as for aquaculture with living organisms, it is very difficult to predict how the transplantation of any species will affect the existing marine ecosystem. There are many examples of terrestrial animal and plant transplants, and their destruction of ecosystems is serious. Methods for the development and conservation of genetic resources will be developed and should be urgently addressed for future biological resource management already being implemented in developed countries. Separation and preservation techniques of female and female organisms, tissue culture, protoplast separation and development of regeneration techniques are essential for seed bank operation in terms of the availability of seed production throughout the year and the availability of seeds.
우리나라에 분포하는 다시마속 식물은 원산만 이북의 다시마속(Laminaria)과 이남의 개다시마속(Kjellmaniella)으로 크게 나누어 볼 수 있다. 토종다시마라고도 하는 개다시마는 강원도 연안의 저조선 이하 수심이 깊은 곳에 주로 서식하는 한해성 해조류로서 현재 여러 가지 상품으로 개발되어 산업적으로도 그 중요성을 인정받고 있는 지역 특산종이다.The kelp plants distributed in Korea can be divided into Laminaria in the north of Wonsan Bay and Kjellmaniella in the south. Gadamashima, also called indigenous Tashima, is a seaweed seaweed that lives mainly in deep waters below the low ships off the coast of Gangwon-do.
개다시마(Kjellaniella crassifolia)는 다시마목(目) 다시마과(科)에 속하는 다년생 갈조류로서, 일본명은 가고메(Gagome)이다. 개다시마의 뿌리형태는 섬유상으로 뿌리에서 윤생하고 엽장이 1 ~ 2 m, 엽폭은 20 ~ 30 ㎝로 비교적 넓으며, 억세고 점질이 많다. 두께는 2 ~ 3 ㎜, 중대부는 엽폭의 1/3 ~ 1/4로, 중대부의 양측에는 용무늬가 있어 노성하면 불분명해진다. 줄기의 하부는 원주상, 위쪽은 편원되고 길이 4 ~ 6 ㎝, 지름 10 ~ 12 ㎜이다. 점심대(漸深帶)에 서식하며, 12월 이후에 유체가 출현하여 다음 가을까지 충분히 생장하고, 유주자가 방출하면 엽체의 끝녹음 현상으로 더 생장하지 않다가 11월경이 되면 다시 생장대에서 생장을 시작하여 첫 해 자란 엽체를 위로 밀어 올리면서 2년생 엽체가 된다. 2년째에는 생장이 빠르게 자라서 1년 엽체와 2년 엽체의 구분이 뚜렷하게 나타난다. 자낭반은 처음 한쪽에만 발생되나 차차 반대편에도 형성된다. Kjellaniella crassifolia ( Kjellaniella crassifolia ) is a perennial brown algae belonging to the kelp family Kelpaceae. The Japanese name is Kagome. The root shape of Gadamashima is fibrous, rotatively rooted, with a leaf length of 1 to 2 m, and a leaf width of 20 to 30 ㎝, relatively broad. The thickness is 2 to 3 mm, the middle part is 1/3 to 1/4 of the leaf width, and there are dragon patterns on both sides of the middle part, and it becomes unclear when aging. The lower part of the stem is circumferential, the upper part is circular, and is 4-6 cm in length and 10-12 mm in diameter. It lives in the lunch zone, and after the fluid appears after December, it grows sufficiently until the next autumn, and when the user releases it, it does not grow more because of the end recording of the leaf, but it grows again in November. Beginning with the first year, the leaf is pushed up to become a biennial leaf. In the second year, growth grows rapidly, and the distinction between one-year and two-year leaves is clearly visible. The papules occur only on one side but gradually on the other side.
개다시마는 우리나라에서는 강원 북부 연안(고성군, 아야진, 속초시, 강릉시 사근진)의 수심 20 ∼ 30 m 에 서식하고 있으며, 90년대 중반까지만 해도 동해안 최대 군락지인 강릉시 사근진 해역은 약 50 ha의 서식 면적에 10 ㎡당 약 500 개체가 서식하고 있었으나, 현재는 10 ㎡당 1∼2 개체가 서식하고 있을 뿐만 아니라 서식 면적도 2 ha로 현저히 축소되었다. 봉포 해역에는 약 1 ha에 걸쳐 분포하고 있었으며, 서식 밀도는 현저히 낮은 10 ㎡당 1 개체로 나타났다. 또한, 과거 서식했던 지역으로 고성군 대진 및 초도 해역에서는 현재 발견되지 않고 있으며, 아야진, 문암 해역은 소수 개체는 발견되나 거의 소실된 것으로 나타났다.Gadshima is inhabited from 20 to 30 m deep in the northern coast of Gangwon (Goseong-gun, Ayajin, Sokcho-si, Gangneung-si). About 500 individuals per 10 m 2 were inhabited, but now 1 to 2 individuals per 10 m 2 have been inhabited, and the habitat area has been significantly reduced to 2 ha. It was distributed over about 1 ha in the sea area of Bongpo, and the density of habitat was found to be 1 individual per 10 m2. In addition, the area where it was inhabited in the past has not been found in the Gojin-gun Daejin and the early seas, and the Ayajin and Munam seas have been found but few disappeared.
또한, 동해안에서 서식하는 애기다시마의 10월 자낭반 형성 면적은 엽체 중량의 약 23%에 걸쳐 형성되나, 개다시마의 경우 약 5%에 불과하여 생식 능력이 매우 떨어지는 경향을 보였다. 이러한 특성을 감안할 때에 서식지가 한번 파괴되면 자연 스스로 회복하기엔 오랜 시간이 필요하고 많은 변수가 있다. 따라서 서식지 복원을 위해서는 우량 모조의 확보가 절실하나, 자연 상태에는 극히 희박하다.In addition, the occidental plaque formation area of Aegidashima inhabiting the east coast was formed over 23% of the weight of the leaf body, but only about 5% in the case of Gaedamashima, which showed a very low reproductive capacity. Given these characteristics, once a habitat is destroyed, nature takes a long time to recover itself and there are many variables. Therefore, it is necessary to secure high-quality imitation for habitat restoration, but it is extremely rare in nature.
개다시마는 일반 다시마류에 비하여 비대도가 2배 이상이며, 푸코이단, 글루탐산, 아스파라긴산, 미네랄 등이 더 풍부하게 함유하고 있어 예로부터 식용으로 사용되어 왔고, 최근 기술의 진전으로 유용성분이 많이 추출됨에 따라 의학 및 신물질, 건강식품으로 개발이 되고 있다. 그러나, 1990년에는 자연 생산량이 연간 생체 1,000여 톤에 달하였으나 최근 무분별한 채취, 태풍의 영향으로 종이 사라질 위기에 있어 복원의 필요성 및 우량 모조의 생산이 절실하며, 우리나라 고유종의 보존과 개발을 위하여 암·수 배우체 분리 및 보존 기술 개발이 무엇보다도 필요하다. Gadamashima is more than twice as large as ordinary kelp, and contains more abundant fucoidan, glutamic acid, aspartic acid, minerals, etc., and has been used for food since ancient times. It is being developed as medicine, new substance and health food. However, in 1990, natural production amounted to 1,000 tons of biomass per year, but recently, indiscriminate sampling and typhoon threats have caused species to disappear, and the necessity of restoration and the production of high quality imitation are urgent. · Development of technology for separation and preservation of spouses is essential.
이에 본 발명자들은, 개다시마의 서식지를 복원하고 종묘를 대량으로 생산할 수 있는 방법을 연구하던 중, 개다시마를 유전 형질을 변화시키지 않는 방법으로 개다시마의 배우체 생성에 적합한 조건을 구명하고, 이를 통해 생성된 종묘를 양식에 이용하여 대량 생산이 가능함을 확인하여 본 발명을 완성하였다.Therefore, the present inventors, while researching a method for restoring the habitat and mass production of seedlings in Gadashishima, found the conditions suitable for the production of Gadashima's materate without changing the genetic traits of Gadshima. Using the resulting seedlings in aquaculture, it was confirmed that mass production is possible to complete the present invention.
본 발명은 개다시마의 인공 종묘 생산 방법을 제공하고자 한다.The present invention is to provide a method for producing artificial seedlings of Gaedamashima.
또한, 본 발명은 개다시마의 양식 방법을 제공하고자 한다.It is also an object of the present invention to provide a method for farming Gaedamashima.
본 발명은 개다시마의 인공 종묘 생산 방법을 제공한다.The present invention provides a method for producing artificial seedlings of Gaedamashima.
또한, 본 발명은 개다시마의 양식 방법을 제공한다.In addition, the present invention provides a method for farming a sea bream.
이하, 본 발명에 대하여 상세히 설명한다.EMBODIMENT OF THE INVENTION Hereinafter, this invention is demonstrated in detail.
본 발명은The present invention
(a) 유주자 방출 전의 개다시마 모조로부터 자낭반을 채취하여 유주자를 얻는 채묘 단계; 및(a) a harvesting step of obtaining a resident by collecting a vesicle plaque from a Kadashima imitation before the resident release; And
(b) 상기 유주자를 배양하여 종묘를 얻는 단계를 포함하는 개다시마의 인공 종묘 생산 방법을 제공한다.(b) providing a method of artificial seedling production of dog shimashima comprising the step of culturing the jujube to obtain a seedling.
보다 바람직하게는, 상기 단계(b)인 유주자를 배양하여 종묘를 얻는 단계는More preferably, the step (b) to obtain a seedling by culturing the strainer
(1) 유주자를 배양하여 배우체를 얻는 단계;(1) culturing the strainer to obtain a spore;
(2) 상기 배우체를 배양하여 아포체를 얻는 단계; 및(2) culturing the spores to obtain apoptosis; And
(3) 상기 아포체를 배양하여 종묘를 얻는 단계를 포함한다.(3) culturing the apoptosis to obtain seedlings.
우선, 단계(a)의 채묘 단계에서 유주자를 방출하기 전의 개다시마 모조로부터 유주자를 준비한다. 생장 상태가 좋은 개다시마의 종묘를 생산하기 위하여, 자낭반이 형성된 성숙한 개다시마 모조를 채취한다. 모조로부터 자낭반 형성 부위를 잘라내고, 11 ~ 13시간, 바람직하게는 12시간 동안 3.5 ~ 4.5 ℃, 바람직하게는 4℃에서 냉장음건 방법으로 유주자 방출자극을 준다. 다음으로, 멸균 해수 또는 필터 등으로 여과한 여과 해수가 담긴 수조에 상기의 채취된 자낭반 부위를 넣어 천천히 저어준다. 8 ~ 12분, 바람직하게는 10분 후부터 현미경으로 유주자의 움직임과 밀도를 조사하고, 현미경 100배 시야에서 약 30개체 이상 보이고 움직임이 활발하면 건강하고 적절한 유주자로 판정한다. 수조에서 모조를 제거하고, 유주자가 부착하여 생장할 수 있도록 채묘줄 또는 채묘틀 등을 수평으로 넣은 다음, 채묘한다.First, the drunkard is prepared from the Kadashima imitation before releasing the drunkard in the stage of the seeding in step (a). To produce seedlings of good-growing ganoderma lucidum, mature ganoderma cysts with porcine plaques are harvested. A cutaneous plaque forming region is cut out from the dummy and subjected to the drift stimulus by refrigeration in a dry and dry method at 3.5 to 4.5 ° C., preferably 4 ° C. for 11 to 13 hours, preferably 12 hours. Next, put the collected porcine bag part into a tank containing filtered seawater filtered through sterile seawater or a filter and stir slowly. After 8 to 12 minutes, preferably 10 minutes, the movement and density of the resident are examined under a microscope, and if the movement is visible at about 30 or more in a 100-fold microscope, it is determined to be a healthy and appropriate resident. The imitation is removed from the tank, and horizontally lined with a line or a line, so that the rider can attach and grow.
다음으로, 단계(b)에서는 상기 단계(a)에서 채묘한 유주자를 배양하여 종묘를 얻는다. 채묘줄 또는 채묘틀 등에 부착된 상태로 채묘된 유주자를 건조가 되지 않도록 빨리 수조에 넣고, 공기를 약하게 공급하면서 배양한다. 이때, 배양은 개다시마가 서식하는 환경과 유사한 최적의 조건인 7 ~ 13 ℃, 바람직하게는 10 ℃ 온도에서, 1500 ~ 2500 룩스, 바람직하게는 2000 룩스의 조도에서 35 ~ 45일, 바람직하게는 40일 동안 배양한다. 유주자는 수십 세포 정도로 이루어진 실모양의 배우체(配偶體)를 형성하고(단계(1)), 알과 정자를 만들며 수정하여 수정란이 된 후, 현미경적인 크기의 아포체(芽胞體)를 이루었다가(단계(2)) 새로운 포자체의 유엽의 개다시마가 된다(단계(3)). 종묘는 본 양성하기 전 유엽체를 의미하며, 육안으로 유엽을 확인할 수 있는 1 ㎝ 전후의 개다시마가 바람직하다. 개다시마의 유주자는 상기 배양 온도 및 조도의 범위를 벗어나면, 개다시마 포자의 생장이 저조하거나 고사하여 바람직하지 못하다. 이는 개다시마가 심해의 차가운 환경에 적응되어 유주자 및 포자체, 즉 다시마 본체의 발생에도 같은 환경이 가장 적합하다. 본 단계는 통상적으로 아포체가 규조류나 부니에 묻히지 않을 정도의 크기까지 실시하는, 채묘틀에 잠긴 그대로 수면하 2 ~ 4 m 에 매달아 배양하는 가이식 단계를 더 포함할 수 있다. Next, in step (b), seedlings are obtained by culturing the drunk seeded in the step (a). The runners drawn in the state of being attached to a seedling line or a seedling frame are placed in a tank as soon as possible so as not to be dried, and cultured with a weak air supply. At this time, the culture is 35 to 45 days, preferably at a roughness of 1500 to 2500 lux, preferably 2000 lux at a temperature of 7 ~ 13 ℃, preferably 10 ℃, which is similar to the environment in which the Kadashima inhabit Incubate for 40 days. The resident forms a thread-shaped spouse consisting of tens of cells (step (1)), fertilizes eggs by making eggs and sperm, and then forms microscopic aposomes ( Step (2)) It becomes Gaidashima of the leaves of the new spores (step (3)). Seedling means a leaflet before the formation of the seed. The seedlings of about 1 cm that can identify the leaflets with the naked eye are preferable. It is unfavorable that the resident of Gadashishima is low or dies because of the growth of Gadamashima spores outside the range of the culture temperature and illuminance. This is best suited to the development of the drift and spores, ie, the kelp body, because Gadashishima is adapted to the cold environment of the deep sea. This step may further comprise a transplanting step of culturing suspended 2 ~ 4 m under water as it is immersed in the chaff frame, which is usually carried out to the size of the apoptosis is not buried in the diatoms or bunnies.
상기와 같이 인공 배양된 종묘는 개다시마의 대량 생산을 위한 양식에 이용될 수 있다.The artificially cultivated seedlings as described above can be used in aquaculture for mass production of Gadashishima.
또한, 본 발명은In addition, the present invention
(A) 종묘를 수하연에 이식하여 수심 4 ~ 6 m 에 시설하여 1차 양식하는 단계;(A) transplanting the seedlings into the water drop and planting them at a depth of 4 to 6 m to form a first stage;
(B) 단계(A)에서 양식된 종묘를 수심 20 ~ 30 m 에서 2차 양식하는 단계를 포함하는 개다시마의 양식 방법을 제공한다.(B) Provides a method of farming Kadashima including the second step of farming the seedlings grown in step (A) at a depth of 20 ~ 30 m.
우선, 단계(A)에서는 종묘를 수하연에 이식하여 수심 4 ~ 6 m, 바람직하게는 5m 에 시설하여 1차 양식한다. 개다시마의 종묘를 수하연에 이식하여 개다시마가 서식할 수 있는 7 ~ 13 ℃, 바람직하게는 10 ℃의 수온 및 1500 ~ 2500 룩스, 바람직하게는 2000 룩스의 조도 조건이 만족되는 수심 3.5 ~ 6.5 m 에서, 가장 바람직하게는 5 m 에서 양식한다. 다시마를 비롯한 굴, 담치, 우렁쉥이 등의 부착성 무척추동물의 양식을 위해서는, 이들 생물이 부착할 수 있는 기질, 예를 들어, 뗏목이나 밧줄 등이 필요하다. 부착용 기질은 생물의 종류에 따라 다르며, 채묘된 부착 기질을 일정 간격을 두고 꿴 줄을 수하연이라 한다.First, in step (A), the seedlings are transplanted to the lower plume and planted at a depth of 4 to 6 m, preferably 5 m, and the first culture. Depths of 7 to 13 ° C, preferably 10 ° C and 1500 to 2500 lux, preferably 2000 lux, which can be inhabited by transplanting the seedlings of the Kadashima to the water drop 3.5-6.5 at m, most preferably at 5 m. For aquatic invertebrates such as oysters, oysters, mussels, and oysters, such as kelp, substrates to which these organisms can attach, such as rafts and ropes, are required. Attachment substrates vary depending on the type of organism, and the attached attachment substrates are called Ha-yeon.
다음으로, 단계(B)에서는 단계(A)에서 양식된 종묘를 수심 20 ~ 30 m 에서 양식한다. 개다시마 양식에 있어 해수 온도가 중요하게 작용하는데, 수온이 상승하는 7월부터는 수심 4 ~ 6 m, 바람직하게는 5 m의 수온이 개다시마 양식에 적합하지 않을 정도로 상승하므로, 개다시마의 끝녹음 방지 및 성성숙을 위하여 수온이 양식에 적합한 20 ~ 30 m 에서 양식한다.Next, in step (B), the seedlings grown in step (A) are grown at a depth of 20 to 30 m. Seawater temperature plays an important role in the culture of Kadashima Island. Since July, when the water temperature rises, the water temperature of 4 ~ 6m, preferably 5m, rises to the point that it is not suitable for Kadashima Island culture. For prevention and maturation, the water temperature should be from 20 to 30 m suitable for aquaculture.
상기 양식은 통상적으로 설계된 양식장에서 실시될 수 있으며, 상기의 양식 조건을 만족시켰을 때, 개다시마가 다년생으로 생장될 것으로 예측된다.The aquaculture may be carried out in a conventionally designed aquaculture farm, and when the above conditions are satisfied, it is expected that the kadashima will grow perennial.
본 발명은 개다시마의 생태, 생리 등의 생물학적 기초연구와 암·수배우체 분리 및 보존기술을 바탕으로 개다시마의 인공 종묘 생산 및 양식 기술을 제공함으로써, 서식지가 감소하고 있는 개다시마를 보존하고, 해조류 양식 품종을 다양화하 며, 양식 방법을 보급하여 어업인의 소득증대에 기여할 수 있다. 또한, 개다시마의 대량 생산을 통해 고부가 가치성을 창출하는 의약품 및 건강식품 원료 공급원으로 활용할 수 있다.The present invention provides the artificial seedling production and culture technology of Gadamashima based on the biological basic research such as the ecology and physiology of Gadamashima, and the separation and preservation of cancer and aquatic organisms, Diversification of seaweed farming varieties and the spread of farming methods can contribute to the income increase of fishers. In addition, it can be used as a source of medicine and health food raw materials that create high value through mass production of Kadashima.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예 및 실험예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예 및 실험예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, preferred examples and experimental examples are presented to help understand the present invention. However, the following Examples and Experimental Examples are provided only to more easily understand the present invention, and the contents of the present invention are not limited by the Examples.
실시예Example 1: 본 발명에 따른 환경 조절에 의한 1: by environmental control according to the present invention 개다시마의Kadashima 종묘 생산 Seedling production
1-1: 1-1: 유주자zoospore 방출자극 실험 Emission stimulation experiment
개다시마 모조로부터 유주자를 준비하기에 앞서, 효과적이고 대량으로 모조로부터 유주자를 획득하고 또한 건강한 유주자를 확보할 수 있는 방법을 개발하기 위하여, 자극방법을 시험하여 효과적인 방법을 개발하였다.Prior to preparing the resident from the Kadashima mock, the stimulation method was developed to develop an effective method to obtain the resident from the mock and effectively secure the resident.
채취한 개다시마 모조로부터 자낭반을 잘라내고, 각각 전통적인 방법인 12시간 실내음건, 30 분 햇빛건조, 채취 즉시 방출 또는 12시간 냉장음건의 4가지 방법으로 처리하였다. 다음으로, 햇빛이 직접 받는 평평한 장소에 설치된 투명 수조에 넣어 처리한 멸균 해수 또는 1 ㎛ 필터로 여과한 여과 해수에 채취된 자낭반 부위를 넣은 다음, 천천히 막대로 저어주었다. 약 10분부터 현미경으로 유주자 움직임과 밀도를 조사하고, 현미경 100배 시야에서 약 30 개체 이상 보이고 움직임이 활발하면 건강하고 적절한 유주자로 판정하였다. 측정은 10번 반복하였다.The cutaneous plaques were cut out of the sampled Kadashima imitation and treated with four methods: 12 hours indoor dry, 30 minutes sun dry, immediate release or 12 hours refrigerated dry. Next, put the collected vesicles in sterile seawater treated with a transparent water tank installed in a flat place directly exposed to sunlight or filtered seawater filtered with a 1 ㎛ filter, and then stir slowly with a rod. From about 10 minutes, the movement and density of the resident were examined under a microscope, and when the subject showed more than about 30 subjects at 100 times of the microscope, the movement was determined to be a healthy and appropriate resident. The measurement was repeated 10 times.
결과는 표 1에 나타내었다.The results are shown in Table 1.
표 1에 나타난 바와 같이, 12시간 실내음건, 30분 햇빛건조 또는 채취 즉시 방출의 방법으로 유주자 방출을 자극한 개다시마 모조에서보다 본 발명의 방법에 따른 12시간 냉장음건 처리한 모조에서 유주자 방출량이 많았으며, 유주자의 움직임 또한 매우 활발하였다. 따라서, 하기 개다시마 종묘의 인공 생산에서 유주자 방출자극 방법으로 12시간 냉장음건 방법을 사용하였다.As shown in Table 1, the amount of release of resident in the 12-hour cold-drying imitation according to the method of the present invention, rather than in the Kadashima imitation, which stimulated the release of the resident by the method of 12-hour indoor shade, 30-minute sunlight drying or immediate release. The movement of the resident was also very active. Therefore, in the artificial production of the following Kadashima seedlings, a 12-hour refrigeration and drying method was used as the drift stimulating method.
1-2: 1-2: 개다시마Kadashima 모조로부터 From imitation 유주자의Resident 준비 Ready
개다시마 종묘 생산을 위하여, 유주자를 방출하기 전의 개다시마 모조로부터 유주자를 하기와 같이 준비하였다.For the production of seedling seedlings from the Kadashima imitation before releasing the owner The owner was prepared as follows.
모조는 개다시마의 특성인 용무늬가 선명하고, 뿌리 부분에서 하트모양이 분명한 생육 상태가 양호하고, 충분히 성숙된 것을 사용하였다. 모조로부터 자낭반 형성 부위를 잘라내고, 12시간 냉장음건(약 4℃) 방법으로 방출자극을 준 다음, 투명 수조에 넣은 다음, 햇빛이 직접 받는 평평한 장소에 설치하여 처리한 멸균 해수 또는 1㎛ 필터로 여과한 여과 해수에 채취된 자낭반 부위를 넣은 다음 천천히 막대로 저어주었다. 모조를 제거하고 채묘틀을 수평으로 넣은 다음, 약 2시간 동안 채묘하였다.In the imitation, the dragon pattern, which is characteristic of Gadamashima, was clear, the growth state in which the heart shape was apparent at the root part was good, and a mature enough one was used. Cut off the uterine plaque forming area from the imitation, give a stimulus to release by cold drying (approximately 4 ℃) for 12 hours, put it in a transparent water bath, and install it in a flat place where it is directly exposed to sunlight. The collected porcine pelvis was added to the filtrated seawater, which was then slowly stirred with a rod. The imitation was removed and the seedlings were placed horizontally and then chopped for about 2 hours.
도 1에 용무늬가 있는 개다시마 모조의 사진을 나타내었고, 도 2에 자낭반이 형성된 성숙된 개다시마 모조의 사진을 나타내었으며, 도 3에 자낭반을 채취하고 유주자 방출을 유도하는 과정을 사진으로 나타내었다. 또한, 조직 절단에 의한 성숙 생식소 및 이로부터 방출된 유주자의 현미경 관찰 사진을 도 4에 나타내었다.Figure 1 shows a picture of a dragon pattern Gadamashima imitation, Figure 2 shows a picture of a mature ganoderma imitation formed with a vesicle plaque, Figure 3 shows the process of collecting the vesicle plaque and induces the release of the resident It was. In addition, microscopic photographs of the mature gonads and the spleens released therefrom by tissue cleavage are shown in FIG. 4.
1-3: 1-3: 유주자zoospore 생장에 적합한 배양온도 측정 Incubation temperature suitable for growth
본 발명의 효율적인 개다시마 종묘 생산을 위한 개다시마의 유주자가 생장하는 데 적합한 온도를 구명하기 위하여, 하기와 같이 개다시마의 유주자를 배양하였다.In order to determine the temperature suitable for the growth of the infusers of the dogs, the incubators of the dogs are grown as follows.
상기 실시예 1-2에서 준비된 개다시마의 유주자가 현미경 100배율의 시야당 약 50개 유주자가 함유된 유주자액으로 만들었다. 유주자액 2 ㎖ 씩을 12 cm 패트리디쉬에 부드럽게 뿌려 접종하였다. 배지는 PESI(표 2)를 사용하였고, 배양 1일째부터 현미경으로 생장 및 특성을 분석하였다. 각각 실험군 당 3개씩 5, 10, 15, 20, 25, 30℃의 온도별로 배양하였으며, 배지는 일주일 간격으로 교환하였다. 또한, 조도는 3,000 룩스(Lux), 광주기는 12시간 명조건:12시간 암조건(12L:12D)으로 하여 40일간 배양하였다. 배양 중에 현미경(100배율)로 관찰하여, 배우체 형성, 생장 상태 등을 관찰하였으며, 배양 한 달 경과 후에 아포체의 생장 길이를 측정하였다.The strainer of Gadashishima prepared in Example 1-2 was made into a strainer containing about 50 strains per field of view under a microscope of 100x magnification. 2 ml of the fermented sap was inoculated gently sprayed into 12 cm Patridish. PESI (Table 2) was used as a medium, and growth and characteristics were analyzed under a microscope from day 1 of culture. Each of the three experimental groups were incubated at a temperature of 5, 10, 15, 20, 25, 30 ° C., and the medium was changed at weekly intervals. In addition, the illumination intensity was incubated for 40 days at 3,000 Lux and photoperiod as 12 hours light condition: 12 hours dark condition (12L: 12D). Observation was carried out under a microscope (100 magnification) during the cultivation to observe the formation of the spheroid, the growth state, etc., and the growth length of the apoliposome was measured after one month of culture.
포자를 플레이트에 접종하는 과정을 도 5에, 아포체의 현미경 관찰 사진을 도 6에 나타내었으며, 온도에 따른 생장 정도는 도 7에 나타내었다.The process of inoculating spores on the plate is shown in FIG. 5, the microscopic photograph of the apoptosis is shown in FIG. 6, and the degree of growth according to temperature is shown in FIG. 7.
도 6에 나타난 바와 같이, 현미경으로 관찰했을 때, 유주자는 수분에서 30분 이내에 커버글라스에 부착하여 부동포자가 되나, 일부는 약 3시간까지 움직임이 관찰되기도 하였다. 배양 1일 만에 세포질 이동을 통한 발아관이 형성하기 시작하여, 포자의 발아는 10 ~ 15℃ 조건에서 배양 3일 만에 90% 이상 발아관이 형성되어 가장 빨리 나타났으며, 가장 늦은 발아 조건은 5℃로서 배양 12일 이내 모든 실험 조건에서 포자의 발아가 관찰되었다. 또한, 최초의 배우체 형성은 배양개시 6일부터 보이기 시작함과 동시에 세포분열이 일어나기 시작하였다. 암·수배우체가 구분되기 시작한 시기는 배양 12일로 암수의 비율은 6:4 정도로 암배우체의 비율이 높게 나타났다. 암·수배우체의 생장과 성숙은 온도조건이 높은 10 ~ 15℃에서 가장 먼저 성숙하여 아포체로 형성되었으며, 높은 온도조건에서도 고조도보다는 저조도 조건에서 생장과 성숙이 먼저 이루어졌다. 20℃ 조건에서도 배우체가 성숙하여 아포체 단계로 진행이 되었지만, 5℃ 조건에서는 암·수배우체가 성숙이 매우 느리고 아포체 단계로 진행율이 매우 낮았다. 아포체를 정치배양하여 그 생장 경향을 파악한 경우, 10 ~ 15℃ 조건에서 가장 높게 나타났다.As shown in FIG. 6, when observed under a microscope, the strainer adhered to the cover glass within 30 minutes in a few minutes to become a spore, but some movements were observed for about 3 hours. Germination of spores began to form after 1 day of culturing, and germination of spores occurred at 10 to 15 ° C in 3 days of culture. Spore germination was observed in all experimental conditions within 5 days at 5 ℃. In addition, the initial formation of the spheroid began to appear from the 6th day of culture and cell division began to occur. The female and female embryos began to be divided into 12 days of culture, and the ratio of female to male females was about 6: 4. The growth and maturation of female and female embryos first formed into apoptoses at 10 to 15 ℃ with high temperature conditions, and growth and maturation occurred first at low and low light conditions, even at high temperature conditions. The spores matured at 20 ° C. and progressed to the apoptotic phase. However, at 5 ° C., the male and female adolescents were very mature and progressed slowly to the apoptotic phase. The apoptotic culture was found to be the highest under the condition of 10 ~ 15 ℃.
또한, 도 7에 나타낸 바와 같이, 5℃ 실험군은 유주자 발달이 느려 배우체 형성이 약 25일 경과 후에 되었으며, 한 달 후의 생장은 215 ㎛였다. 10℃ 실험군은 한 달 후 아포체 상태로 574 ㎛로 생장하여 다른 실험군에 비해 가장 양호하였다. 15℃ 실험군은 한 달 후 480 ㎛로 생장하여 10℃ 실험군과 비슷하였으나, 색상 등에서 다소 활력이 떨어졌다. 20℃ 실험군은 한 달 후 320 ㎛로 생장하였고, 25℃ 실험군은 배양 17일 만에 배우체 단계에서 고사하였으며, 다른 실험군에 비하여 발생 속도도 현저히 느렸다. 또한, 30℃ 실험군은 배양 7일 만에 고사하였으며, 배우체를 형성하지 못하고 세포이동 단계에 머물렀다. In addition, as shown in FIG. 7, the experimental group of 5 ° C. showed slow development of spores, and the formation of spheroids occurred after about 25 days, and the growth after one month was 215 μm. After 10 months, the experimental group grew to 574 μm in the apoptotic state after one month, which was the best compared to the other experimental groups. After 15 months, the experimental group was grown to 480 ㎛ after one month, similar to the 10 ℃ experimental group, but the color was somewhat less vital. The 20 ° C. experimental group was grown to 320 μm one month later, and the 25 ° C. experimental group died at the spore stage in 17 days of culture, and the development rate was significantly slower than that of the other experimental groups. In addition, the 30 ℃ experimental group died in 7 days of culture, and did not form a spore, stayed in the cell migration stage.
따라서, 개다시마의 배우체 생장에 가장 적합한 온도는 10 ℃임을 확인하였다.Therefore, it was confirmed that the most suitable temperature for spore growth of Gadashishima was 10 ° C.
1-4: 1-4: 유주자zoospore 생장에 적합한 조도 측정 Roughness measurement suitable for growth
본 발명의 효율적인 개다시마 종묘 생산을 위한, 개다시마의 배우체가 생장하는 데 적합한 조도를 구명하기 위하여, 하기와 같이 개다시마의 유주자를 배양하였다.In order to elucidate the illuminance suitable for the growth of the spores of Gaedamasma for the production of the cabbage seedlings of the present invention, the runners of Gaidashimas were cultured as follows.
상기 실시예 1-2에서 준비된 개다시마의 유주자가 현미경 100배율 시야당 약 50개 유주자가 함유된 유주자액으로 만들었다. 유주자액 2 ㎖ 씩을 12 cm 패트리디쉬에 부드럽게 뿌려 접종하였다. 배지는 PESI(표 2)를 사용하였고, 배양 1일째부터 현미경으로 생장 및 특성을 분석하였다. 배양온도는 실시예 1-3의 결과를 근거로 가장 적합한 온도인 10 ℃로 하였고, 일 주일 간격으로 배지를 전량 교체하였다. 조도는 각각의 실험군 별로 500, 1,000, 2,000, 3,000 또는 4,000 룩스로 하여, 한 달 동안 배양하였다. 배양 한 달 경과 후에 아포체의 생장 길이를 측정하였으며, 배양 중에 배우체 형성, 생장 상태 등을 관찰하였다.The strainer of Gadashishima prepared in Example 1-2 was made into a strainer containing about 50 strains per 100x magnification field of view. 2 ml of the fermented sap was inoculated gently sprayed into 12 cm Patridish. PESI (Table 2) was used as a medium, and growth and characteristics were analyzed under a microscope from day 1 of culture. The culture temperature was 10 ° C, which is the most suitable temperature based on the results of Examples 1-3, and the whole amount of the medium was changed at weekly intervals. Roughness was incubated for one month at 500, 1,000, 2,000, 3,000 or 4,000 lux for each experimental group. After one month of incubation, the growth length of apoptosis was measured, and the formation of spores and growth state were observed during the culture.
결과는 도 8에 나타내었다.The results are shown in FIG.
도 8에 나타난 바와 같이, 500 룩스 실험군의 아포체는 155 ㎛, 1,000 룩스 실험군의 아포체는 450 ㎛, 2,000 룩스 실험군의 아포체는 578 ㎛, 3,000 룩스 실험군의 아포체는 369 ㎛로 각각 생장하였고, 4,000 룩스 실험군은 고사하였다. 따라서, 개다시마의 유주자가 생장을 위한 가장 적합한 조도는 2,000 룩스인 것을 확인하였다.As shown in FIG. 8, the aposomes of the 500 lux test group were grown to 155 μm, the aposomes of the 1,000 lux test group were 450 μm, the aposomes of the 2,000 lux test group were 578 μm, and the aposomes of the 3,000 lux test group were 369 μm, respectively. The 4,000 Lux test group died. Therefore, it was confirmed that the most suitable illuminance for the growth of Gadashishima residents was 2,000 lux.
1-5: 1-5: 개다시마Kadashima 종묘의 생산 Production of seedlings
개다시마의 종묘를 생산하기 위하여, 상기 실시예 1-3 및 1-4의 결과를 근거로, 하기와 같이 채묘틀을 이용하여 유주자를 배우체, 아포체를 거쳐 종묘까지 배양하였다.In order to produce a seedling of Gaedamashima, based on the results of the above Examples 1-3 and 1-4, the strainer was incubated to the seedling via the spores and apoptoses using the seedling frame as follows.
온도는 10 ~ 13℃, 조도는 약 2,000 룩스로 하였고, PESI 배지를 해수 1ℓ당 20 ㎖씩 첨가하였으며, 환수는 일주일에 한 번씩 전량 실시하였다. 채묘틀은 18합사 구라론사를 사용하였고, 톤당 10개의 채묘틀을 40일 동안 배양하였다.Temperature was 10 ~ 13 ℃, roughness was about 2,000 lux, PESI medium was added to 20 ㎖ per 1L of seawater, the return was carried out once a week. As for the seedlings, 18 ply Guraron yarn was used and 10 seedlings per ton were incubated for 40 days.
배양 결과, 배양 약 10일에 배우체가 형성되었고, 20일 뒤에 약 400 ㎛의 아포체가 형성되었으며, 한 달 뒤에 1 ~ 2 ㎝의 종묘를 얻었다. 또한, 배우체를 정치배양하는 경우, 종묘가 5 ~ 10 cm 에서 생장이 서서히 둔화하기 시작하기 하였고, 실내배양에서는 전체적으로 고조도 보다는 저조도 조건에서 초기 생장이 활발하였고, 생장 단계에 따라 다양한 온도 조건을 필요로 한다는 것을 알 수 있었다.As a result of culture, spores were formed on about 10 days of culture, and about 400 μm of apoptoids were formed after 20 days, and a seedling of 1-2 cm was obtained one month later. In addition, in the case of political culture, the growth of the seedlings started to slow down slowly at 5 ~ 10 cm, and in the indoor culture, the initial growth was more active at low light conditions than at high light levels, and various temperature conditions were required depending on the growth stage. I could see that.
도 9에 유리배양된 종묘의 사진을 나타내었고, 도 10에 채묘줄을 이용하여 인공 생산된 종묘의 사진을 나타내었으며, 도 11에는 미역, 다시마, 톳, 모자반 등의 바위에만 붙어 살던 생물을 밧줄에 붙어 살 수 있도록 수면 아래의 일정한 깊이에 설치한 밧줄인 어미줄(친승)에 이식된 종묘의 사진을 나타내었다. 친승에는 실내 수조에서 배양한 종묘가 붙어 있는 실, 즉 씨줄을 감아붙이거나 또는 씨줄을 짧게 끊어 일정한 간격으로 친승에 끼워서 싹이 자라도록 한다. 친승에는 5 ~ 6 m 간격으로 뜸을 달며, 뜸과 밧줄 사이는 뜸줄로 연결시키고, 뜸줄의 길이로 친승 잠기는 깊이를 조절한다.9 shows a picture of the seedlings cultured in glass, and a picture of the seedlings artificially produced using a seedling line in Figure 10, Figure 11 shows the ropes living creatures attached to only rocks such as seaweed, kelp, 톳, mabanban Photographs of the seedlings implanted in the parent rope, a rope installed at a certain depth below the surface of the water, were shown. In the parent's room, the thread, which is seedlings grown in the indoor tank, is wrapped around the seed line, or the string is cut short and inserted into the parent's seat at regular intervals so that the shoots grow. Moss hangs at intervals of 5 to 6 m, and the moss and the rope are connected by moss lines.
실시예Example 2: 2: 개다시마의Kadashima 실내 양식 시험 Indoor aquaculture test
개다시마 종묘의 양식 조건을 구명하기 위하여, 상기 실시예 1-5에서 생산된 종사 형태의 종묘를 이용하여 개다시마의 대량 생산을 위한 양식 시험을 하였다.In order to elucidate the culture conditions of the seedling seedlings, aquaculture tests were conducted for mass production of seedlings using the seedlings of the working type produced in Example 1-5.
배양된 종묘(5.7 ± 2.5 ㎜)를 미리 제작한 길이 5 m의 수하연에 35 ± 8.9 개체/10 ㎠로 이식하여 수심별(5, 10, 20, 30 m)로 양식하였다. 배양 시작 후 6개월 경과했을 때의 종묘의 엽장, 엽폭, 중량을 측정하여 생장 정도를 알아보았고, 서식 밀도를 측정하였다.The cultured seedlings (5.7 ± 2.5 mm) were transplanted into 35 ± 8.9 individuals / 10 cm 2 on a previously prepared 5 m-long subterranean and cultured by depth (5, 10, 20, 30 m). At 6 months after the start of the culture, the leaf length, leaf width, and weight of the seedlings were measured to determine the extent of growth, and the habitat density was measured.
개다시마 종묘의 실내 적응 시험 및 30 m 에서 생장 시험 과정을 도 12에 나타내었고, 생장 정도를 측정한 결과는 표 3 및 도 13에 나타내었다. The indoor adaptation test and the growth test procedure at 30 m of the Kadashima seedlings are shown in FIG. 12, and the results of measuring the growth are shown in Table 3 and FIG. 13.
표 1 및 도 13에 나타난 바와 같이, 수심 5 m 에서는 엽장 120.4 ± 21.5 ㎝, 엽폭 20.5±6.5 ㎝, 중량 54.7 ± 5.1 g으로 생장하였고, 서식밀도는 12.4 ± 3.7 개체/㎠ 로 생장하였으며, 수심 10 m 에서는 엽장 115.4 ± 25.9 ㎝, 엽폭 18.6 ± 7.6 ㎝, 중량 50.9 ± 7.9 g 및 서식밀도 9.1 ± 4.5 개체/㎠로 생장하였고, 수심 20 m 에서는 엽장 116 ± 20.8 ㎝, 엽폭 17.5 ± 6.5 ㎝, 중량 49.2 ± 11.9 g 및 서식밀도 8.1 ± 3.6 개체/㎠로 생장하였다. 또한, 수심 30 m 에서는 엽장 109 ± 319.5 ㎜, 엽폭 19.6 ± 7.5 cm, 중량 53.8 ± 6.9 g 및 서식밀도 5.6 ± 4.7 개체/㎠로 생장하였다.As shown in Table 1 and FIG. 13, at 5 m depth, the leaves were grown to 120.4 ± 21.5 cm, leaf width 20.5 ± 6.5 cm, weight 54.7 ± 5.1 g, and the density was 12.4 ± 3.7 individuals / cm 2,
따라서, 수심 5 m 에서의 생장과 서식밀도가 가장 양호한 것으로 나타났다. 종묘 크기에서 양성을 시작할 때, 수심 5 m가 가장 접합한 환경이고, 고수온기인 7월부터는 반드시 수심 20 ~ 30 m로 양성해야 다년생으로 생장될 것으로 예상되었다.Therefore, growth and habitat density at 5 m depth were found to be the best. At the start of the seedling size, 5 m depth is the most contiguous environment. From July, when the warm water temperature is high, it is expected to grow to 20 to 30 m depth to grow perennial.
실시예Example 3: 3: 개다시마의Kadashima 양식 form
상기 실시예 1 및 실시예 2의 결과를 근거로, 하기와 같이 개다시마를 양식하였다.Based on the result of the said Example 1 and Example 2, Kadashima was cultured as follows.
우선, 개다시마를 양식하기 위한 양식장을 시설하였다. 동해 바다의 특성을 고려하여 앙카(anchor)는 사각 콘크리트 2톤×3개를 각각 하나씩 만들어, 이 두 뭉치를 결합하여 앙카를 만들었다. 앙카줄은 PE 로프 32 mm를 사용하고, 간승줄은 PE로프 30 mm를 사용하였다. 간승줄 간격은 40 m 이상의 간격을 두어야하고, 주 부자(buoy)는 PVC 지름 520 mm, 보조부자는 PVC 지름 330 mm를 사용하였다. 종묘가 부착된 채묘틀인 종사는 수하연(지름 18 mm)에 두겹 또는 한겹으로 감아서 약 5 m 길이의 수하연을 제작하여 3 ~ 4 m 간격으로 양식하였다. 양식시에는 밑부분에 앙카(추)를 매달아 항상 밑으로 향하게 하였다. 6월까지는 수심 5 m 에서, 7월 이후에는 수심 20 ~ 30 m 에서 양식하였으며, 그 외에 솎음, 보식 및 병충해 대책 등의 다시마 양식에 필요한 과정들은 통상의 방법에 따라 수행하였다.First, a fish farm was established for farming Kadashima. Taking into account the characteristics of the sea in the East Sea, the anchor made two tons of square concrete x 3 pieces one by one and combined these two bundles to create anchors. Anchor strings were used for PE ropes 32 mm, and the rope was used for PE ropes 30 mm. The spacing of the cords should be more than 40 m. The main buoy had a PVC diameter of 520 mm and the auxiliary rich man had a PVC diameter of 330 mm. Kyojo, a seedling attached to a seedling, was wound around two or one layers on a hydrant (18 mm in diameter) to produce a hydrant of about 5 m in length, and was cultured at intervals of 3 to 4 m. At the time of farming, anchors were hung at the bottom so that they were always facing downward. The fish farmed at a depth of 5 m until June and 20 to 30 m after July, and other procedures necessary for kelp farming such as weaning, feeding, and pest control were carried out in the usual manner.
개다시마의 양식 과정을 도 14에, 양식장 설계도를 도 15에 나타내었다.Fig. 14 shows the farming process of the Kadashima Island, and Fig. 15 shows the farm design.
본 발명의 개다시마의 인공 종묘 생산 방법은 조직절단으로 성숙이 완숙단계로 판정된 개다시마 모종으로부터 포자를 채집하여 종사, 종묘를 배양하는 방법으로, 포자를 생장에 적합한 온도 및 조도에서 배양함으로써 포자의 아포체 생성 활성을 높여 결과적으로 종묘의 인공 생산을 가능하게 한다. 또한, 인공 생산된 종묘를 개다시마의 대량 양식에 이용하여, 서식지에서 점차 감소되어 멸종위기의 개다시마 군락지를 복원하고, 해조류 양식 품종을 다양화하며, 양식 기술을 보급하여 어업인의 소득증대에 기여할 수 있다. 또한, 개다시마의 대량 생산을 통해 고부가 가치성을 창출하는 의약품 및 건강식품 원료 공급원으로 활용할 수 있다.The artificial seedling production method of Gaedamashima of the present invention is a method of collecting spores from Gaedamashima seedlings whose maturity has been determined to be mature by tissue cutting, and cultivating seedlings, by incubating the spores at a temperature and roughness suitable for growth. Enhances the apoptotic activity of the seed, resulting in artificial production of seedlings. In addition, artificially produced seedlings can be used for the large-scale farming of Kadashima Island, which will gradually decrease in habitat to restore endangered Kadashima colony, diversify seaweed farming varieties, and spread farming technology to contribute to the increase of income of fishers. Can be. In addition, it can be used as a source of medicine and health food raw materials that create high value through mass production of Kadashima.
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Citations (1)
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|---|---|---|---|---|
| JPH0662690A (en) * | 1992-08-10 | 1994-03-08 | Ishikawajima Harima Heavy Ind Co Ltd | Production of seed of seaweed of brown algae |
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|---|---|---|---|---|
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Non-Patent Citations (1)
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Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR20200019433A (en) | 2018-08-14 | 2020-02-24 | 원광대학교산학협력단 | Spore seedling method of an agarophyte red alga, Gracilaria vermiculophylla |
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