JPS61280438A - B型肝炎表面抗原の改良単離精製法 - Google Patents
B型肝炎表面抗原の改良単離精製法Info
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- JPS61280438A JPS61280438A JP61125590A JP12559086A JPS61280438A JP S61280438 A JPS61280438 A JP S61280438A JP 61125590 A JP61125590 A JP 61125590A JP 12559086 A JP12559086 A JP 12559086A JP S61280438 A JPS61280438 A JP S61280438A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
発明の分野
本発明は、ワクチンとして有用なり型肝炎表面抗原(H
B sAg )の改良単離精製法およびその調製方法に
関する。
B sAg )の改良単離精製法およびその調製方法に
関する。
本発明の方法により得られるHBsAg抗原は、17〜
20 nmのHBSAg粒子の形態である。これは、ワ
クチンの調製に有用である。
20 nmのHBSAg粒子の形態である。これは、ワ
クチンの調製に有用である。
発明の背景
B型肝炎は、広範囲に広まり、潜在的に致命性のウィル
ス性疾病である。その病原体、即ち、B型肝炎ウィルス
は、何年も前に、この病気にかかっている患者の血液か
ら単離°されているが、商業的B型肝炎ワクチンの開発
は、大きな問題に直面している。即ち、B型肝炎ウィル
スは、(a)コアプロティン結合したウィルス性ゲノム
、および免疫原性でないコア抗原()IBcAg)を含
有するコア、および[b)免疫原性表面抗原(HBsA
g)を含有するエンベロープからなるゾーン粒子(Da
ne partic −1e)と称する4 2 nm粒
子である。HBgAgは、形態学的に不均質な複合巨大
分子構造群である。
ス性疾病である。その病原体、即ち、B型肝炎ウィルス
は、何年も前に、この病気にかかっている患者の血液か
ら単離°されているが、商業的B型肝炎ワクチンの開発
は、大きな問題に直面している。即ち、B型肝炎ウィル
スは、(a)コアプロティン結合したウィルス性ゲノム
、および免疫原性でないコア抗原()IBcAg)を含
有するコア、および[b)免疫原性表面抗原(HBsA
g)を含有するエンベロープからなるゾーン粒子(Da
ne partic −1e)と称する4 2 nm粒
子である。HBgAgは、形態学的に不均質な複合巨大
分子構造群である。
即ち、これは、タンパク質、炭水化物、糖タンパク質お
よび脂質を含有し、その主成分は、ホスファチジルコリ
ン、コレステリルエステル、コレステロールおよびトリ
グリセリドである。B型肝炎ウィルス(HBVJでの感
染は、ゾーン粒子の産生ばかりでな(,22nm粒子お
よび表面エンベロープの成分を含有するフィラメントの
過剰産生をきたす。これらの22nm粒子は、七ツマー
HBsAgタンパク質よりも、約1000倍免疫原性が
大きいことが知られているが、HBVの複製および発現
は、in vitroで該ウィルスを増殖させるのに適
当な細胞培養系がないため、長い間妨げられてきた。ウ
ィルスを効率よく増殖させることができるin vit
roの培養系がないため、組換DNA技術を用いること
によりHBsAg様分子の合成または別の宿主系におけ
るl(BsAgの発現のいずれかに対する研究開発がな
された。例えば、HBsAgに関する遺伝子を担うDN
Aベクターで形質転換された酵母セルからのHBsAg
の発現が報告されており、また、酵母中で合成されたH
BsAgが直径17〜201mで、ヒト細胞から分泌さ
れる2 2 nm粒子と類似した性質を有する粒子にな
ることが知られている(ピー・バレンツエラら、ネイチ
ャー(P、VALENZ[JELA et al、。
よび脂質を含有し、その主成分は、ホスファチジルコリ
ン、コレステリルエステル、コレステロールおよびトリ
グリセリドである。B型肝炎ウィルス(HBVJでの感
染は、ゾーン粒子の産生ばかりでな(,22nm粒子お
よび表面エンベロープの成分を含有するフィラメントの
過剰産生をきたす。これらの22nm粒子は、七ツマー
HBsAgタンパク質よりも、約1000倍免疫原性が
大きいことが知られているが、HBVの複製および発現
は、in vitroで該ウィルスを増殖させるのに適
当な細胞培養系がないため、長い間妨げられてきた。ウ
ィルスを効率よく増殖させることができるin vit
roの培養系がないため、組換DNA技術を用いること
によりHBsAg様分子の合成または別の宿主系におけ
るl(BsAgの発現のいずれかに対する研究開発がな
された。例えば、HBsAgに関する遺伝子を担うDN
Aベクターで形質転換された酵母セルからのHBsAg
の発現が報告されており、また、酵母中で合成されたH
BsAgが直径17〜201mで、ヒト細胞から分泌さ
れる2 2 nm粒子と類似した性質を有する粒子にな
ることが知られている(ピー・バレンツエラら、ネイチ
ャー(P、VALENZ[JELA et al、。
Naturす、 298;347−350(1982)
およびアール・エイ・ヒツツエマンラ、ニュークレイツ
ク・アシツズ・リサーチ(R,A、HITZEMANN
et al。
およびアール・エイ・ヒツツエマンラ、ニュークレイツ
ク・アシツズ・リサーチ(R,A、HITZEMANN
et al。
Nucl、Ac、 Res、)11 :2745−2
763C1983)参照)。操作処理セル培養物、例え
ば、処理酵母培養物における、組換え技術によるHB
sAgの産生は公知である(例えば、ヨーロッパ特許出
願公開第0106828号;ダブリi−・ジエイ・マツ
カリ−ら、ネイチャー(W、 J 、McALEERe
t a 1 、 。
763C1983)参照)。操作処理セル培養物、例え
ば、処理酵母培養物における、組換え技術によるHB
sAgの産生は公知である(例えば、ヨーロッパ特許出
願公開第0106828号;ダブリi−・ジエイ・マツ
カリ−ら、ネイチャー(W、 J 、McALEERe
t a 1 、 。
Nature)3旺: 178−180(198j)お
よびシー・イー・カーティーら、アブストラクト030
・オブ・ジ・アニュアル・ミーティング・オブ・ジ・ア
メリカン・ソサイエテイーーフォアφマイクロバイオロ
ジー(G、 E、CARTY e c al 、 、A
bstractQ3Q oE ie annual m
eeting of the AmericanSo
ciety Eor Microbiology)(
1984)(第84回会議、1984年3月4日〜9日
〕参照〕。
よびシー・イー・カーティーら、アブストラクト030
・オブ・ジ・アニュアル・ミーティング・オブ・ジ・ア
メリカン・ソサイエテイーーフォアφマイクロバイオロ
ジー(G、 E、CARTY e c al 、 、A
bstractQ3Q oE ie annual m
eeting of the AmericanSo
ciety Eor Microbiology)(
1984)(第84回会議、1984年3月4日〜9日
〕参照〕。
HBsAgの血漿、血清または他の血液製品または生物
学的液体または処理セル培養物からの抽出および精製方
法を記載した記事および特許も多(ある。
学的液体または処理セル培養物からの抽出および精製方
法を記載した記事および特許も多(ある。
本発明の方法は、HB s Agを産生ずる処理酵母セ
ルに適用し得る。
ルに適用し得る。
十分な細胞濃度まで増殖させた処理酵母セル培養物から
のf(BsAgの抽出および精製は、一般に以下の様な
3つの連続した段階を要する:(1)セル内部からのH
B sAg の除去;(2)培地のHB sAgでの
濃化: (3)培地からの実質的に全ての汚染物質の除去。
のf(BsAgの抽出および精製は、一般に以下の様な
3つの連続した段階を要する:(1)セル内部からのH
B sAg の除去;(2)培地のHB sAgでの
濃化: (3)培地からの実質的に全ての汚染物質の除去。
たいていの方法において、工程(1)は、機械的力、例
えば剪断力(例えば、X−プレスまたはフレンチプレス
)によるか、またはガラスピーズとともに振とうし、最
後に界面活性剤を添加することにより行なう。非イオン
性界面活性剤(トリトンX−100)の使用が、ケイ・
ムレイら、ヨーロピアン・モレキュラ・バイオロジー・
オーガニゼイション・ジー? −す/l/ CK、Mt
JRRAY e t a 1. 、TheEMBOJ、
)3:<−1984)および前記アール・エイ・ヒツツ
エマンら(RlA、HITZEMAN e t a l
、 )により報告されている。
えば剪断力(例えば、X−プレスまたはフレンチプレス
)によるか、またはガラスピーズとともに振とうし、最
後に界面活性剤を添加することにより行なう。非イオン
性界面活性剤(トリトンX−100)の使用が、ケイ・
ムレイら、ヨーロピアン・モレキュラ・バイオロジー・
オーガニゼイション・ジー? −す/l/ CK、Mt
JRRAY e t a 1. 、TheEMBOJ、
)3:<−1984)および前記アール・エイ・ヒツツ
エマンら(RlA、HITZEMAN e t a l
、 )により報告されている。
HBsAgを界面活性剤を用いてインキュベートするこ
とにより、粒子が破壊されることも報告されている。こ
の点に関して、 英国特許第2093039号は、HBsAgを非イオン
性界面活性剤(トリトンX−100,1で処理してポリ
ペプチド混合物を形成し、これをスクロースグラジェン
トを有する水性緩衝溶液の上部に導入し、実質的に界面
活性剤゛を含まず、ポリペプチド混合物のミセルを含有
するフラクションを回収することを開示している。
とにより、粒子が破壊されることも報告されている。こ
の点に関して、 英国特許第2093039号は、HBsAgを非イオン
性界面活性剤(トリトンX−100,1で処理してポリ
ペプチド混合物を形成し、これをスクロースグラジェン
トを有する水性緩衝溶液の上部に導入し、実質的に界面
活性剤゛を含まず、ポリペプチド混合物のミセルを含有
するフラクションを回収することを開示している。
ヨーロッパ特許第0005864号は、粒子径が少なく
とも20 nmのB型肝炎表面抗原(HB SAg )
およびコア抗原(HBCAg、l を含有する抗原性物
質を界面活性剤(例えば、ツイーン20または80〕と
接触させ、次いで、抗原性組成物を含有する界面活性剤
を水性アルデヒド溶液で処理することを開示している。
とも20 nmのB型肝炎表面抗原(HB SAg )
およびコア抗原(HBCAg、l を含有する抗原性物
質を界面活性剤(例えば、ツイーン20または80〕と
接触させ、次いで、抗原性組成物を含有する界面活性剤
を水性アルデヒド溶液で処理することを開示している。
得られた生成物は、粒子径20nm以下、特に5nm以
下の粒子である。
下の粒子である。
日本国特開昭53−104724号(ダーウエント・ア
ブストラクト第75324A−1i:りは%HB sA
g粒子を(1)非イオン性界面活性剤(即ち、7〜10
のオキシエチレン鎖を有するポリオキシエチレンアルキ
ルフェニル) 、(2)タンパク質変性剤(即ち、尿素
またはグアニジン)、および(3)所望により還元剤の
存在下に加熱する方法を開示している。得られた生成物
は、10〜20nmの粒子径を有する。日本国特開昭5
0−160420号(ダーウエント・アブストラクト第
27420A号月よ、HBsAgを異なった界面活性剤
で処理して、サブユニット生成物を産生ずる方法を開示
している。
ブストラクト第75324A−1i:りは%HB sA
g粒子を(1)非イオン性界面活性剤(即ち、7〜10
のオキシエチレン鎖を有するポリオキシエチレンアルキ
ルフェニル) 、(2)タンパク質変性剤(即ち、尿素
またはグアニジン)、および(3)所望により還元剤の
存在下に加熱する方法を開示している。得られた生成物
は、10〜20nmの粒子径を有する。日本国特開昭5
0−160420号(ダーウエント・アブストラクト第
27420A号月よ、HBsAgを異なった界面活性剤
で処理して、サブユニット生成物を産生ずる方法を開示
している。
西ドイツ国特許出願第2611723号は、抗原を脱脂
界面活性剤の存在下で加温することにより、HBsAg
球状粒子を得る方法を開示している。
界面活性剤の存在下で加温することにより、HBsAg
球状粒子を得る方法を開示している。
米国特許第4113712号は、HBsAgを、はぼ中
性のpHの脱脂質可能な界面活性剤を含有する塩化ナト
リウム等張溶液中で加熱することにより調製される一種
のポリペプチドサブユニットからなるFIISsAg粒
子を開示している。
性のpHの脱脂質可能な界面活性剤を含有する塩化ナト
リウム等張溶液中で加熱することにより調製される一種
のポリペプチドサブユニットからなるFIISsAg粒
子を開示している。
米国特許第4481189号は、界面活性剤(例えば、
非イオン性界面活性剤つと接触させることにより、血漿
および血清誘導体を滅菌化する方法を開示している。
非イオン性界面活性剤つと接触させることにより、血漿
および血清誘導体を滅菌化する方法を開示している。
工程(2)および(3)は、種々の技術、とりわけ、コ
ロイド状シリカ、更に詳しくは、「アエロジル(’AE
λ05ILI)」(デグッサ社(西独) (DEGUS
SA 、 Franc for t 、 FRG )
ヨり市販の製品)を用いた吸着/脱着を取り入れたも
のである。
ロイド状シリカ、更に詳しくは、「アエロジル(’AE
λ05ILI)」(デグッサ社(西独) (DEGUS
SA 、 Franc for t 、 FRG )
ヨり市販の製品)を用いた吸着/脱着を取り入れたも
のである。
かかる技術は、以下に示す°文献に記載されている:
ダブリュー・ジエイ・エム・デュイメルら、フオクス・
サンギニス(W、 J 、M、 D(JIMEL et
a l 、。
サンギニス(W、 J 、M、 D(JIMEL et
a l 、。
Vox Sang、)23:249〜255(1972
)ジエイ・ビロットら、ジャーナル・サブ・クリニカル
・マイクロバイオロジー(J、PILLOT et a
l、。
)ジエイ・ビロットら、ジャーナル・サブ・クリニカル
・マイクロバイオロジー(J、PILLOT et a
l、。
J 、 CIin6MicrCl1n6.) 4 :2
05−/207(1976)およびモレキュラ・イムノ
ロジー(Mo l e c 、 Irrra+nol
。
05−/207(1976)およびモレキュラ・イムノ
ロジー(Mo l e c 、 Irrra+nol
。
)炎1;53〜60(1984)
エフ・バリンら、アニュマル・マイクロバイオロジー(
パスツール研究所) CF、BARIN et al、
。
パスツール研究所) CF、BARIN et al、
。
Ann、 Microbiolす(Inst、Pa5t
euす129B :た 前記文献では、せいぜい、吸着さg、、mBsAgのフ
ラクション(即ち、約60%)を、溶出液にデオキシコ
レートを添加せずに回収する(低イオン強度の緩衝液で
溶出する場合に、最も良い結果が得られる)ことを示唆
しているのみである。
euす129B :た 前記文献では、せいぜい、吸着さg、、mBsAgのフ
ラクション(即ち、約60%)を、溶出液にデオキシコ
レートを添加せずに回収する(低イオン強度の緩衝液で
溶出する場合に、最も良い結果が得られる)ことを示唆
しているのみである。
他の研究(シーブケら、アクタ・バンロジカ・マイクロ
バイオロジー・エト・イムノロシカ・スカンジナビ力、
セクションB (SIEBKE et al、。
バイオロジー・エト・イムノロシカ・スカンジナビ力、
セクションB (SIEBKE et al、。
ACta Path、 Microbiol、 5ca
nd、 5ection B)炙免 : 935−9
36(1972月こおいては、オーストラリア抗原は、
2%ツイーン80により、アエロジルから一部溶出され
、同様に、界面活性剤の存在下で、吸着されにくいこと
が指摘されている。
nd、 5ection B)炙免 : 935−9
36(1972月こおいては、オーストラリア抗原は、
2%ツイーン80により、アエロジルから一部溶出され
、同様に、界面活性剤の存在下で、吸着されにくいこと
が指摘されている。
発明の開示
シリカゲルへの吸着およびデオキシコリン酸緩衝液を用
いた脱着を取り入れた公知の技術を、非イオン性界面活
性剤を添加することにより得られる後培養HBsAg産
生セルの溶解物から得られる上清に適用する場合、破裂
させたセルの透明な上清が得られないだけでなく、コロ
イド状シリカからの脱着にデオキシコリン酸を用いてモ
、HBSAgが部分的にしか脱着されず、−万、セファ
ロース4B−CI!上クロマトグラフィーにより示され
る如(、通常の位置(Kd :0.25 )に肝炎抗原
が検出されないことから、酵母粒子が破壊されているこ
とが判明した。
いた脱着を取り入れた公知の技術を、非イオン性界面活
性剤を添加することにより得られる後培養HBsAg産
生セルの溶解物から得られる上清に適用する場合、破裂
させたセルの透明な上清が得られないだけでなく、コロ
イド状シリカからの脱着にデオキシコリン酸を用いてモ
、HBSAgが部分的にしか脱着されず、−万、セファ
ロース4B−CI!上クロマトグラフィーにより示され
る如(、通常の位置(Kd :0.25 )に肝炎抗原
が検出されないことから、酵母粒子が破壊されているこ
とが判明した。
スクロース中勾配遠心分離°によって、0.5%(W/
V) トIJトンX−100の存在下で酵母セルの破
壊を行なった場合、HB sAg粒子の構造は無傷でな
くなるが、−万、0.5%(v/v )ポリソルベート
(例えば、ポリソルベート20)をトリトンX−100
にかえた場合、無傷のHB s A gの収率が、実質
的に向上することも判明した。
V) トIJトンX−100の存在下で酵母セルの破
壊を行なった場合、HB sAg粒子の構造は無傷でな
くなるが、−万、0.5%(v/v )ポリソルベート
(例えば、ポリソルベート20)をトリトンX−100
にかえた場合、無傷のHB s A gの収率が、実質
的に向上することも判明した。
さらに、ポリソルベート非イオン性界面活性剤(例えば
、ポリソルベート20または80)で破裂させた酵母セ
ルの上清を、尿素(最終濃度2〜6Mまで〕で補足した
場合、(例えば、室温にて30分間撹拌することにより
〕部分的に清澄化された溶液が得られることが判明した
。
、ポリソルベート20または80)で破裂させた酵母セ
ルの上清を、尿素(最終濃度2〜6Mまで〕で補足した
場合、(例えば、室温にて30分間撹拌することにより
〕部分的に清澄化された溶液が得られることが判明した
。
さらに、該清澄化溶液をアエロジルで処理することによ
り、尿素/非イオン性界面活性剤添加剤を前に用いたデ
スオキシコレート添加剤にかえた場合、低いイオン強度
の緩衝液系で、HBsAgが完全に脱着され得ることが
判明した。
り、尿素/非イオン性界面活性剤添加剤を前に用いたデ
スオキシコレート添加剤にかえた場合、低いイオン強度
の緩衝液系で、HBsAgが完全に脱着され得ることが
判明した。
この様にして行なわれるHB sAg脱着の完全性は。
脱着されたコロイド状シリカにおいて、22にのバンド
が存在しないことにより示され、単離されたHBsAg
が、約22 nmの粒子となり、これを被験動物に非経
口投与すると、高いレベルの)LBsAg抗体が惹起さ
れることが判明した。
が存在しないことにより示され、単離されたHBsAg
が、約22 nmの粒子となり、これを被験動物に非経
口投与すると、高いレベルの)LBsAg抗体が惹起さ
れることが判明した。
従って、本発明の第1の目的は、ワクチンの目的に有用
fj B型肝炎表面抗原を、発現されたHasAgを有
する処理酵母セルの培養物から調製する改良された方法
であって、非イオン性界面活性剤、更に詳しくは、ポリ
ソルベート(例えば、0.3%V/Vポリンルベート2
0または80)の存在下にセルを破裂させ、これに尿素
を添加して最終濃度を2〜6Mにして清澄化HBsAg
溶液を得(例えば、室温にて30分間撹拌することによ
る〕、HBsAgをコロイド状シリカ(アエロジルなど
〕上に吸着させ(例えば、4℃にて一夜撹拌することに
よる〕、HBsAgを、最終濃度8Mの尿素、および非
イオン性界面活性剤、更に詳しくは、ポリソルベート(
例えば、最終濃度0.1〜1チのポリソルベート20ま
たは80)で補足した低イオ9.5.37℃にてHBs
Agを°脱着すらζ特徴とする方法を提供することであ
る。
fj B型肝炎表面抗原を、発現されたHasAgを有
する処理酵母セルの培養物から調製する改良された方法
であって、非イオン性界面活性剤、更に詳しくは、ポリ
ソルベート(例えば、0.3%V/Vポリンルベート2
0または80)の存在下にセルを破裂させ、これに尿素
を添加して最終濃度を2〜6Mにして清澄化HBsAg
溶液を得(例えば、室温にて30分間撹拌することによ
る〕、HBsAgをコロイド状シリカ(アエロジルなど
〕上に吸着させ(例えば、4℃にて一夜撹拌することに
よる〕、HBsAgを、最終濃度8Mの尿素、および非
イオン性界面活性剤、更に詳しくは、ポリソルベート(
例えば、最終濃度0.1〜1チのポリソルベート20ま
たは80)で補足した低イオ9.5.37℃にてHBs
Agを°脱着すらζ特徴とする方法を提供することであ
る。
脱着物は、精製HBsAg粒子を含有し、これは、公知
の技術、例えば、限外濾過、アガロース上クロマトグラ
フィー、硫酸デキストラン/塩化カルシウムを用いた沈
降および透析などに従って、さらに処理することができ
る。
の技術、例えば、限外濾過、アガロース上クロマトグラ
フィー、硫酸デキストラン/塩化カルシウムを用いた沈
降および透析などに従って、さらに処理することができ
る。
本発明を、以下の実施例により説明する。
実施例1
培養物11につき乾燥セル重量30gまで増殖させたH
BsAgを発現する処理酵母セル培養菌のペレット化セ
ル80Li(湿潤セル重量) ヲNa2HPO4水性溶
液(7,098f//1)150尻g中に懸濁させる。
BsAgを発現する処理酵母セル培養菌のペレット化セ
ル80Li(湿潤セル重量) ヲNa2HPO4水性溶
液(7,098f//1)150尻g中に懸濁させる。
コノ懸濁液を4%CW/V)EDTA溶液3rnl、ポ
リソルベート20 0.9 atおよびフッ化フェニル
メチルスルホニル(PMSFJ 60〜を含有すルイ
ンプロパノール90m1で補足する。NaOH(10%
w/v水中溶液)でpHを8.1に調節する。懸濁液を
水浴中で冷却し、冷ガラスビiズホモジナイザーに2度
通して破裂させる。ホモジネートを次いで13000
fJにて30分間遠心操作に付す。
リソルベート20 0.9 atおよびフッ化フェニル
メチルスルホニル(PMSFJ 60〜を含有すルイ
ンプロパノール90m1で補足する。NaOH(10%
w/v水中溶液)でpHを8.1に調節する。懸濁液を
水浴中で冷却し、冷ガラスビiズホモジナイザーに2度
通して破裂させる。ホモジネートを次いで13000
fJにて30分間遠心操作に付す。
粗抽出上清160m/を、尿素の最終濃度を4Mとし、
室温にて30分間撹拌して、HBsAg粒子を汚染酵母
細胞膜から分離し、これに、0.3%(、V/V)ポリ
ソルベート20および4M尿素を含有する50mMリン
酸緩衝液(NaH2PO4/Na0H) (pH7,2
)中子備洗浄したアエロジル■380(,2,5%w/
v)を添加する。溶液を室温にて一夜撹拌し、HBSA
g粒子をシリカ粒子上に最大量吸着させる。
室温にて30分間撹拌して、HBsAg粒子を汚染酵母
細胞膜から分離し、これに、0.3%(、V/V)ポリ
ソルベート20および4M尿素を含有する50mMリン
酸緩衝液(NaH2PO4/Na0H) (pH7,2
)中子備洗浄したアエロジル■380(,2,5%w/
v)を添加する。溶液を室温にて一夜撹拌し、HBSA
g粒子をシリカ粒子上に最大量吸着させる。
コロイド状シリカを次いで6500S’にて15分間遠
心操作に付し、250 rtteの10%(W/V)N
aClで2回洗浄する。
心操作に付し、250 rtteの10%(W/V)N
aClで2回洗浄する。
洗浄シたシリカを、0.5%(V/V )ポリソルベー
ト20および尿素(最終濃度8M)で補足した1 0
mMホウ酸緩衝液PH9,0(Na2B407/I″l
C1!〕中に懸濁させ、懸濁液を37℃にて4時間撹拌
する。
ト20および尿素(最終濃度8M)で補足した1 0
mMホウ酸緩衝液PH9,0(Na2B407/I″l
C1!〕中に懸濁させ、懸濁液を37℃にて4時間撹拌
する。
脱着したコロイド状シリカを、次いで、27000gに
て30分間遠心操作に付し、最大量のコロイド状シリカ
粒子を沈降させる。
て30分間遠心操作に付し、最大量のコロイド状シリカ
粒子を沈降させる。
スクロースグラジェント中の勾配遠心分離および電子顕
微鏡により、直径約22nmの粒子形態で抗原が存在す
ることがわかる。
微鏡により、直径約22nmの粒子形態で抗原が存在す
ることがわかる。
脱着物を、100000 ダルトンのカットオフを有
するカートリッジを備えたAMICON DOCアミコ
ン・コーポレイション(AMICON C0RP。
するカートリッジを備えたAMICON DOCアミコ
ン・コーポレイション(AMICON C0RP。
IJANVER5、MA 、 USA) ヨり市販の装
置)で15扉eに濃縮し、0.3%(V/V )ポリソ
ルベート20を含有する10.mMl−ロメタモール/
HCI緩衝液(pH8,0)中平衡化されたセファロー
ス(SEPHARO3E、)4B−CJ(−ファーマシ
ア・ファイン・ケミカルズ(pHARMACIA FI
NE CHEMICALS。
置)で15扉eに濃縮し、0.3%(V/V )ポリソ
ルベート20を含有する10.mMl−ロメタモール/
HCI緩衝液(pH8,0)中平衡化されたセファロー
ス(SEPHARO3E、)4B−CJ(−ファーマシ
ア・ファイン・ケミカルズ(pHARMACIA FI
NE CHEMICALS。
Llpps al a 、Sweden )より製造・
販売されているアガロースゲル9上刃ラム(φ2゜5c
mX100cm)に付す。
販売されているアガロースゲル9上刃ラム(φ2゜5c
mX100cm)に付す。
抗原含有ピーク(Kd、=0.25 )を、最終濃度O
J%(W/■つの硫酸デキストラフ (、MW 5(1
000)および最終濃度4 Q mMのCa CZ’
2で処理する。
J%(W/■つの硫酸デキストラフ (、MW 5(1
000)および最終濃度4 Q mMのCa CZ’
2で処理する。
過剰の硫酸デキストランは、10mM トロメタモール
/HCJ緩衝1(PI(8゜0)中40 mM Ba%
溶液に対して透析すること(こより沈殿する。透析物3
0m1をCsC4勾配遠心操作に付し2、HBsAgB
sAg含有ビーフ9mる。
/HCJ緩衝1(PI(8゜0)中40 mM Ba%
溶液に対して透析すること(こより沈殿する。透析物3
0m1をCsC4勾配遠心操作に付し2、HBsAgB
sAg含有ビーフ9mる。
前記工程の異なる段階でのHB s Agの精製を第り
表1こまとめる。
表1こまとめる。
505−PAGEゲルによる走査分析により、最終生成
物は、HBsAgに関し、少なくとも98%純粋である
ことがわかる。
物は、HBsAgに関し、少なくとも98%純粋である
ことがわかる。
実施例2
培萎物1であたり乾燥セル重量30yまで増殖させたH
BsAgを発現する処理酵母培養菌のベレット化セル(
湿潤セル重量80g〕をNa 2HPO,i水性溶液(
7,098!/l )150ral中に懸濁させる。
BsAgを発現する処理酵母培養菌のベレット化セル(
湿潤セル重量80g〕をNa 2HPO,i水性溶液(
7,098!/l )150ral中に懸濁させる。
コノ懸濁液を4%(w/v ) EDTA溶液3 rn
l、ボ、リソルベート20 0.9m/?およびフッ化
フェニルメチルスルフォニル(PMSF)60〜ヲ含有
スルインプロパツール9fleで補足する。Na0H(
、10%W/V水中溶’/17.)でpi−i 8.1
に調整する。懸濁液を水浴中で冷却し、冷ガラスピーズ
ホモジナイザーに2回通すことにより破裂させる。ホモ
ジネートを次いで13000fjにて30分間遠心操作
に付す。
l、ボ、リソルベート20 0.9m/?およびフッ化
フェニルメチルスルフォニル(PMSF)60〜ヲ含有
スルインプロパツール9fleで補足する。Na0H(
、10%W/V水中溶’/17.)でpi−i 8.1
に調整する。懸濁液を水浴中で冷却し、冷ガラスピーズ
ホモジナイザーに2回通すことにより破裂させる。ホモ
ジネートを次いで13000fjにて30分間遠心操作
に付す。
粗抽出物上清160WLlを、尿素の最終濃度を4Mに
なるよう(こし、室温(こて、30分間撹拌して、汚染
酵母細胞膜からHBsAgを除去し、これに03%(V
/V)ポリソルベート20および4M尿素を含有する5
Q mMリン酸緩衝液(N a H2P O4,/I
N aOH)(pH7,2)中子備洗浄したアエロジル
o380(2,5%w/v)を添加する。溶液を4℃に
て一夜撹拌し、シリカ粒子上に最大量のHBsAg粒子
を吸着させる。
なるよう(こし、室温(こて、30分間撹拌して、汚染
酵母細胞膜からHBsAgを除去し、これに03%(V
/V)ポリソルベート20および4M尿素を含有する5
Q mMリン酸緩衝液(N a H2P O4,/I
N aOH)(pH7,2)中子備洗浄したアエロジル
o380(2,5%w/v)を添加する。溶液を4℃に
て一夜撹拌し、シリカ粒子上に最大量のHBsAg粒子
を吸着させる。
コロイド状シリカを次いで6500fにて15分間遠心
操作に付し、10%CW/すNaCJ 250 meず
つで2回洗浄する。
操作に付し、10%CW/すNaCJ 250 meず
つで2回洗浄する。
洗浄したシ+)4を0.5%い/V)゛ポリソルベート
20および尿素(最終濃度8M)で補足した10mM硼
酸緩衝液(Na2B407/HC1り(pH9,0)8
0me中に懸濁させ、該懸濁液を37℃にて4時間撹拌
する。
20および尿素(最終濃度8M)で補足した10mM硼
酸緩衝液(Na2B407/HC1り(pH9,0)8
0me中に懸濁させ、該懸濁液を37℃にて4時間撹拌
する。
脱着したコロイド状シリカを、次いで2700Ofにて
30分間遠心分離し、最大量のコロイド状シリカ粒子を
沈降させる。
30分間遠心分離し、最大量のコロイド状シリカ粒子を
沈降させる。
尿素を透析により除去するために、脱着物を10000
0 ダルトンのカットオフを有するカートIJ ”7ジ
を備えたAMICON DC中、] QmMトロメタ
モール/HCl緩衝液(pH7,5) に対して透析し
、流速10d/時にて、10 mM ?ロメタモール/
HC1!緩衝液(pH7,5)で平衝化したヘキシルア
ガロース(ファーマシア・ファイン・ケミカルズ(pH
ARMACIA FINE CHEMICALS 、L
lpp s a l a 、 Sweden ) ヨり
製造・販売されている製品)25aeのカラムに付す。
0 ダルトンのカットオフを有するカートIJ ”7ジ
を備えたAMICON DC中、] QmMトロメタ
モール/HCl緩衝液(pH7,5) に対して透析し
、流速10d/時にて、10 mM ?ロメタモール/
HC1!緩衝液(pH7,5)で平衝化したヘキシルア
ガロース(ファーマシア・ファイン・ケミカルズ(pH
ARMACIA FINE CHEMICALS 、L
lpp s a l a 、 Sweden ) ヨり
製造・販売されている製品)25aeのカラムに付す。
カラムを10mMトロメタモール/HC1緩衝H(pH
7,5)で洗浄し、エチレングリコールおよび最終濃度
IMのNaCJで補足した10mM1−ロメタモーノL
/HCl緩衝液(pH7,5)の50150(V/り混
合物で溶出し、その後、最終濃度4Mの尿素で補足した
10mM トロメタモール/HC/緩衝液(pH7,5
)で溶出する。
7,5)で洗浄し、エチレングリコールおよび最終濃度
IMのNaCJで補足した10mM1−ロメタモーノL
/HCl緩衝液(pH7,5)の50150(V/り混
合物で溶出し、その後、最終濃度4Mの尿素で補足した
10mM トロメタモール/HC/緩衝液(pH7,5
)で溶出する。
前記工程の異なる段階でのHBsAgの精製を第■表に
まとめる。
まとめる。
5D5−PAGEゲルによる走査分析により、最終生成
物は、t(BsAgに関して少な(とも97%純粋であ
ることが示される。
物は、t(BsAgに関して少な(とも97%純粋であ
ることが示される。
実施例3
実施例を同じ方法で、ただし、ヘキシノげガロースをフ
ェニルアガロース(ファーマシアeファイン参ケミカル
ズ(pHA■仏CIA FINE CHEMIICAL
S 、 Llppsala 、 Sweden]Cより
製造されている製品)25aeにかえる。
ェニルアガロース(ファーマシアeファイン参ケミカル
ズ(pHA■仏CIA FINE CHEMIICAL
S 、 Llppsala 、 Sweden]Cより
製造されている製品)25aeにかえる。
一連のHBsAg精製工程および最終生成物中のHBs
Ag含量は、実施例2で得られたものと類似している。
Ag含量は、実施例2で得られたものと類似している。
実施例4
NaCJ、リン酸緩衝液(Na2)(1)04/NaH
2PO4)およびアルヒドロゲル(ALHYDkOGE
Lo)(スペルホス・エキスポート・カンパニー(SU
PERPHO5EXPORT Co、、 Copenh
agen 、DemmarJより製造販売されている水
酸化アルミニウムゲル〕(最終濃度は各々、0.9%(
W/す、20 mMおよびAl(OH)30.15%(
W/V)まで、最終pH6,9)を添加することにより
、タンパク質含量を10μグ/rrtlに調節する。
2PO4)およびアルヒドロゲル(ALHYDkOGE
Lo)(スペルホス・エキスポート・カンパニー(SU
PERPHO5EXPORT Co、、 Copenh
agen 、DemmarJより製造販売されている水
酸化アルミニウムゲル〕(最終濃度は各々、0.9%(
W/す、20 mMおよびAl(OH)30.15%(
W/V)まで、最終pH6,9)を添加することにより
、タンパク質含量を10μグ/rrtlに調節する。
調製物を滅菌し、各々1 vtl投与単位のワクチンを
入れた2mlガラスバイアル中に分散させる。
入れた2mlガラスバイアル中に分散させる。
実施例5
種々の希釈度の実施例4のワクチン調製物の投与単位を
、5群の5週令のスイス・マウスに、腹腔西経路で投与
する。
、5群の5週令のスイス・マウスに、腹腔西経路で投与
する。
投与の28日後、被験動物から血液を採取し、AtjS
A Be法(AUSABは、アボット・ダイアグノス
ティック・プロダクツ社(ABBOTT Dia−gn
ostic Products GmbH,W4esb
aden、FRG)により製造・販売されているテスト
キットの登録商標)により、各サンプルについて血清抗
HBs滴定量を測定する。
A Be法(AUSABは、アボット・ダイアグノス
ティック・プロダクツ社(ABBOTT Dia−gn
ostic Products GmbH,W4esb
aden、FRG)により製造・販売されているテスト
キットの登録商標)により、各サンプルについて血清抗
HBs滴定量を測定する。
同時(こ、同じワクチン・スケジュールに従って、実施
例4の技術(ただし、コロイド状シリカの工程なしくこ
実施例1の技術番こより調製した抗原を用いる)により
得られたワクチン調製物の同じ希釈度の投与単位を、5
群の5週令スイスマウスに投与する。
例4の技術(ただし、コロイド状シリカの工程なしくこ
実施例1の技術番こより調製した抗原を用いる)により
得られたワクチン調製物の同じ希釈度の投与単位を、5
群の5週令スイスマウスに投与する。
この比較試験の結果を、第■表(こ示す。表中、tA+
は、尿素を用いた本発明の技術により得られたワクチン
に関するものであり、−万、(Blは、コロイド状シリ
カの段階のない方法により得られるワクチンに関するも
のである。
は、尿素を用いた本発明の技術により得られたワクチン
に関するものであり、−万、(Blは、コロイド状シリ
カの段階のない方法により得られるワクチンに関するも
のである。
第 m 表
Claims (9)
- (1)B型肝炎表面抗原を産生し、非イオン性界面活性
剤、更に詳しくは、ポリソルベートの存在下に破裂させ
た処理酵母セルの上清をコロイド状シリカで処理するこ
とによるB型肝炎表面抗原の単離精製法であつて、尿素
を添加することにより該上清を清澄化し、抗原をコロイ
ド状シリカ上に吸着させ、尿素および非イオン性界面活
性剤で補足した低イオン性緩衝液(pH8〜9.5)を
用いて抗原を脱着させることを特徴とするB型肝炎表面
抗原の単離精製法。 - (2)尿素を、最終濃度が2〜6Mになるまで添加する
ことにより、上清の清澄化を行なう前記第(1)項の方
法。 - (3)清澄化工程を4℃にて行なう前記第(1)項また
は第(2)項の方法。 - (4)低イオン強度緩衝液が10mMである前記第(1
)項〜第(3)項いずれか1つの方法。 - (5)低イオン強度緩衝液に、最終濃度8Mまで尿素を
補足する前記第(1)項〜第(4)項いずれか1つの方
法。 - (6)脱着を37℃にて行なう前記第(1)項〜第(5
)項いずれか1つの方法。 - (7)低イオン強度緩衝液に補足する非イオン性界面活
性剤がポリソルベートである前記第(1)項〜第(6)
項いずれか1つの方法。 - (8)ポリソルベートがポリソルベート20または80
である前記第(7)項の方法。 - (9)ポリソルベートの最終濃度が0.1〜1%(v/
v)である前記第(7)項または第(8)項の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US739415 | 1985-05-30 | ||
US06/739,415 US4649192A (en) | 1985-05-30 | 1985-05-30 | Method for the isolation and purification of hepatitis B surface antigen using polysorbate |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61280438A true JPS61280438A (ja) | 1986-12-11 |
JPH0450294B2 JPH0450294B2 (ja) | 1992-08-13 |
Family
ID=24972199
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61125590A Granted JPS61280438A (ja) | 1985-05-30 | 1986-05-29 | B型肝炎表面抗原の改良単離精製法 |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4649192A (ja) |
EP (1) | EP0204680B1 (ja) |
JP (1) | JPS61280438A (ja) |
AT (1) | ATE42679T1 (ja) |
AU (1) | AU589331B2 (ja) |
CA (1) | CA1259922A (ja) |
DE (1) | DE3663108D1 (ja) |
DK (1) | DK247586A (ja) |
ES (1) | ES8706444A1 (ja) |
GR (1) | GR861357B (ja) |
PT (1) | PT82644B (ja) |
ZA (1) | ZA863935B (ja) |
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1986
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