JPS59220184A - 新規アルカリゲネス・フエ−カリス - Google Patents
新規アルカリゲネス・フエ−カリスInfo
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- JPS59220184A JPS59220184A JP9524883A JP9524883A JPS59220184A JP S59220184 A JPS59220184 A JP S59220184A JP 9524883 A JP9524883 A JP 9524883A JP 9524883 A JP9524883 A JP 9524883A JP S59220184 A JPS59220184 A JP S59220184A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- reaction
- strain
- acrylic acid
- alcohol
- alcaligenes
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- Pending
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
技術分野:
本発明は新規な微生物アルカリゲネス・7エーカリx
(Alcaligenes faecalis)に関す
る。
(Alcaligenes faecalis)に関す
る。
従来技術:
従来から知られてイルAIca目genes faec
alisは。
alisは。
1グラム陰性であシ運動性を有し0分裂によシ増殖する
好気性の短桿菌であり光合成によっては増殖せずガス状
窒素を固定しない」などのAlcaligenes属と
しての一般的性質の他に、単一炭素源・エネルギー源と
してプロピオン酸や酪酸を資化するという顛独特の性質
を有することが「Berge3’sManual or
Determinative Bacteriolo
gy 、 Btheditor、 1974 Jなど
の細菌分類書にも示されている。
好気性の短桿菌であり光合成によっては増殖せずガス状
窒素を固定しない」などのAlcaligenes属と
しての一般的性質の他に、単一炭素源・エネルギー源と
してプロピオン酸や酪酸を資化するという顛独特の性質
を有することが「Berge3’sManual or
Determinative Bacteriolo
gy 、 Btheditor、 1974 Jなど
の細菌分類書にも示されている。
本発明の目的は、新規なAlcaligeties f
aecalisを提供することにある。本発明の他の目
的は、工業的に極めて有用な新規なAlcaligen
es faecalisを提供することにある。
aecalisを提供することにある。本発明の他の目
的は、工業的に極めて有用な新規なAlcaligen
es faecalisを提供することにある。
本発明の新規Alcaligenes faecali
s は10ピオン酸および酪酸の黄化性能を欠き、そ
のことによシ上記目的が達成される。本発明の新規微生
物は、化学工業原料を扱っている工場などの土壌(茨木
市、豊橋市)から分離・採集されたもので。
s は10ピオン酸および酪酸の黄化性能を欠き、そ
のことによシ上記目的が達成される。本発明の新規微生
物は、化学工業原料を扱っている工場などの土壌(茨木
市、豊橋市)から分離・採集されたもので。
よシ具体的にはAlcaligenes faecal
is TH836株(受託番号:微工研菌寄第7083
号(FERMP−7083))およびAlcalige
nes faecalis TK4935株(受託番号
:微工研菌寄第7084号(FERMP−7084))
である。この新菌株は、後述する菌学的性状をもとにt
i” B’ergey′s Manual ofDet
erminative Bacteriology、
Bth edktor、1974 Jの細菌分類書を参
考にして同定された。
is TH836株(受託番号:微工研菌寄第7083
号(FERMP−7083))およびAlcalige
nes faecalis TK4935株(受託番号
:微工研菌寄第7084号(FERMP−7084))
である。この新菌株は、後述する菌学的性状をもとにt
i” B’ergey′s Manual ofDet
erminative Bacteriology、
Bth edktor、1974 Jの細菌分類書を参
考にして同定された。
菌学的性質
本発明ノAlcaligenes faecalis
TH836株とAlcaligenes faocal
is TK4935株の菌学的性質を第1表に示す。
TH836株とAlcaligenes faocal
is TK4935株の菌学的性質を第1表に示す。
以下余白
11111111111
11111111111
□−ト1訃−−□□−雫□□−−―訃−→丙株の同定
次に本発明の菌株をAlcaligenes属に属する
菌株であると同定した根拠を以下に示す。
菌株であると同定した根拠を以下に示す。
本菌株Tl1836株およびTK4935株はいづれも
上記試験結果よシ「ダラム陰性であり1分裂により増殖
する好気性細菌であり光合成によっては増殖しない」と
いう特徴を有する。このような細菌は、 Bergey
’s Manua lによれば第7部に分類されている
。ここに属する科および属は次のようになる。
上記試験結果よシ「ダラム陰性であり1分裂により増殖
する好気性細菌であり光合成によっては増殖しない」と
いう特徴を有する。このような細菌は、 Bergey
’s Manua lによれば第7部に分類されている
。ここに属する科および属は次のようになる。
1、Pseudo+nonadaceao科2、Azo
tobacteraceae科3、Rh1zobiac
eae科 4、 Methylomonadaceae科5.1
(alobacteriaceae科6、Alcali
genes +1 7、 Acetobacter属 8、Brucella属 9、 nordel;ella 1g10、Fran
cisella属 U乃 111I Thermus 属 これら11の科と屑の性状と1本閑抹THIII!36
株およびTK4935株の性状とを以下に比較する。
tobacteraceae科3、Rh1zobiac
eae科 4、 Methylomonadaceae科5.1
(alobacteriaceae科6、Alcali
genes +1 7、 Acetobacter属 8、Brucella属 9、 nordel;ella 1g10、Fran
cisella属 U乃 111I Thermus 属 これら11の科と屑の性状と1本閑抹THIII!36
株およびTK4935株の性状とを以下に比較する。
本菌株はいづれもAlcaligenes属を除<10
の科・+71とは第2表に示すΩj学的訃質において全
く異なる。
の科・+71とは第2表に示すΩj学的訃質において全
く異なる。
以下余白
笛 2 表
他方1車間株(・J、いずれも、第3表に示すように。
Alcaligenas属と多くの点で性質が共通ずる
。
。
第 3 表
2 グラム陰性
3 醗酵的でない
4 運動性有、鞭毛(1〜8本)
5 大きさ 0.5−1.2 pm IIJ 0.5−
2,611m6 通常単独で仔在 7 色素を作らない 8 オキシグーセ二陽性 9 寒天を分解しない 10 カゼイン・セフチンを分解しない11 生付
の適温20〜37°C 12PH7,0ですばやく生首する 以上の結果から2本発明の菌株TH836株およびTK
4935株はAlcaligenas lj4に1^す
る@uiであると同定される。仄に9本発明の菌株の柚
を決定・するためにこの属の既知の4種と比較した結果
を第4表に示す。
2,611m6 通常単独で仔在 7 色素を作らない 8 オキシグーセ二陽性 9 寒天を分解しない 10 カゼイン・セフチンを分解しない11 生付
の適温20〜37°C 12PH7,0ですばやく生首する 以上の結果から2本発明の菌株TH836株およびTK
4935株はAlcaligenas lj4に1^す
る@uiであると同定される。仄に9本発明の菌株の柚
を決定・するためにこの属の既知の4種と比較した結果
を第4表に示す。
第 4 表
種名 性質 ・TK4935との比較
1、A、faeaalis
単一炭素源・エネルギー源として次の化合物を資化する
acetate ±
propionate
−bu$yrate
−aspar*1cacid 十 asparagine +h
istidine +gl
utathione + 炭水化物を利用しない 同
じ2、A+aquamarinus グルコース、フラクトース、マvドース。
propionate
−bu$yrate
−aspar*1cacid 十 asparagine +h
istidine +gl
utathione + 炭水化物を利用しない 同
じ2、A+aquamarinus グルコース、フラクトース、マvドース。
他の炭水化物を酸化する 酸化
しないデン7゛ンを加水分解する
加水外界しないアンモニウム塩と硝酸塩を利用し
ない 利用する3、A、eutrophus グルコース、フラクトース、テストステロンフェノール
、ベンゾエートを利用できる 利用できない本
発明の菌株は、いづれもAlcaligenes fa
ecalisとは、プロピオン酸と醋酸の質化性能を欠
く点が異なるにすぎず、他の特徴はすべてこれと一致す
る。よって2本菌株をAlcaligenes fae
calis にきわめて近緑の菌株であI) Alc
aligenes faecalisと同定した。
しないデン7゛ンを加水分解する
加水外界しないアンモニウム塩と硝酸塩を利用し
ない 利用する3、A、eutrophus グルコース、フラクトース、テストステロンフェノール
、ベンゾエートを利用できる 利用できない本
発明の菌株は、いづれもAlcaligenes fa
ecalisとは、プロピオン酸と醋酸の質化性能を欠
く点が異なるにすぎず、他の特徴はすべてこれと一致す
る。よって2本菌株をAlcaligenes fae
calis にきわめて近緑の菌株であI) Alc
aligenes faecalisと同定した。
培養条件
培地としては格別である必要はなく、肉エキス。
酵母エキス、麦芽エキス、ペフ“トンなどの有機栄養源
、およびリン酸、マグネシウム、ナトリウム。
、およびリン酸、マグネシウム、ナトリウム。
カリウム、マンガン、鉄などの無機栄養源等を適宜含有
する通常の培地でよい。
する通常の培地でよい。
炭素源としては、炭g源貸化性試験において基質となっ
た各種アミノ酸、TCA+jイクルメンバーの有機酸な
どが用いられる。窒紮源としては。
た各種アミノ酸、TCA+jイクルメンバーの有機酸な
どが用いられる。窒紮源としては。
機窒素やアミ7基の有機屋紮などが用いられる。
培養温度は20°C〜35°C好ましくは258C〜3
0゜Cである。培養pHは5〜8好ましくは6.5〜7
.5であり、1日〜3日間好気的に攪拌又は振盪しなが
ら培養を行なう。
0゜Cである。培養pHは5〜8好ましくは6.5〜7
.5であり、1日〜3日間好気的に攪拌又は振盪しなが
ら培養を行なう。
用 途
本発明の新規法Alcaligenes faecal
i8 TH836株およびTK4935株の用途の一例
を挙げれば、これら菌株はいずれも、アクリル酸と一般
式ROH(ただし、Rは炭素数1〜8の直鎖のアルキル
基)で表わされるアルコールおよびアクリル酸と一般式
HOROH(ただしRは炭素数2〜6の直鎖のアルキレ
ン基)で表わされる二価アルコールからアクリル酸ニス
7−/L/を生産しうる。
i8 TH836株およびTK4935株の用途の一例
を挙げれば、これら菌株はいずれも、アクリル酸と一般
式ROH(ただし、Rは炭素数1〜8の直鎖のアルキル
基)で表わされるアルコールおよびアクリル酸と一般式
HOROH(ただしRは炭素数2〜6の直鎖のアルキレ
ン基)で表わされる二価アルコールからアクリル酸ニス
7−/L/を生産しうる。
アクリル酸エステルは、ビニル基をnするため。
種々の工業材料となシ得る重合体原料として極めて有用
である。例えば、このアクリル酸ニス7−/I/を他の
単量体と共重合して得られる高分子は、粘着剤、接着剤
、およびフィルムなどとして用いられる。きらに、また
、このアクリル酸エステルが水酸基を有する場合(上記
HOROHを用いたとき)には、親水性を持ち官能基と
しても作用するため、それによυ得られる重自体は易架
橋性ポリマーとなシ、接着剤、塗料、その他の多くの用
途を有しかつ新規な用途開発も期待される。このような
アクリル酸エステルの合成は、化学合成によシ可能では
ある。しかし、化学合成によると9反応条件が過酷であ
るため、そのだめの付帯設備とスペースと費用がかさむ
。しかも作業環境が汚染されやすく環境公害の原因にも
なる。このエステル合成を微生物を用いた生物学的反応
により行うと。
である。例えば、このアクリル酸ニス7−/I/を他の
単量体と共重合して得られる高分子は、粘着剤、接着剤
、およびフィルムなどとして用いられる。きらに、また
、このアクリル酸エステルが水酸基を有する場合(上記
HOROHを用いたとき)には、親水性を持ち官能基と
しても作用するため、それによυ得られる重自体は易架
橋性ポリマーとなシ、接着剤、塗料、その他の多くの用
途を有しかつ新規な用途開発も期待される。このような
アクリル酸エステルの合成は、化学合成によシ可能では
ある。しかし、化学合成によると9反応条件が過酷であ
るため、そのだめの付帯設備とスペースと費用がかさむ
。しかも作業環境が汚染されやすく環境公害の原因にも
なる。このエステル合成を微生物を用いた生物学的反応
により行うと。
低温・低圧という温和な条件下で反応できしかも基質特
異性を有するだめ、環境汚染のおそれがないうえに設@
背なども安くつく。
異性を有するだめ、環境汚染のおそれがないうえに設@
背なども安くつく。
本発明の新規アルカリゲネス・フエーカリスは。
既述のように、アクリル酸と一般式ROH(ただし。
Rは炭素数1〜8の直鎮のアルキル基)で表わされるア
ルコ−μとからアクリル酸エステルを生産する。アルカ
リゲネス・7エーカリスはアルカリゲネス・7工−カリ
スTH836株およびアルカリゲネス・フエーカリスT
K4935体のうちの少なくとも一方である。ア!レコ
ールとしては炭素数1〜8の直鎮状アルコールであり、
それはメチルアルコール、エチルアルコール、プロピル
アルコール。
ルコ−μとからアクリル酸エステルを生産する。アルカ
リゲネス・7エーカリスはアルカリゲネス・7工−カリ
スTH836株およびアルカリゲネス・フエーカリスT
K4935体のうちの少なくとも一方である。ア!レコ
ールとしては炭素数1〜8の直鎮状アルコールであり、
それはメチルアルコール、エチルアルコール、プロピル
アルコール。
フチルアルコール、ペンチルアルコール、ヘキシルアル
コール、ヘプチルアルコールおよびオクチルアルコール
である。本発明によシ生産されるアクリル酸エステルは
原料として用いるアIレコールにより規定され、上記各
アルコールに対応して。
コール、ヘプチルアルコールおよびオクチルアルコール
である。本発明によシ生産されるアクリル酸エステルは
原料として用いるアIレコールにより規定され、上記各
アルコールに対応して。
アクリル酸メチル、アクリル酸ブチル、アクリル酸プロ
ピル、アクリル酸ブチル、アクリμ酸ヘンチル、アクリ
ル酸ヘキシル、アクリ/I/酸へブチルおよびアクリル
酸オクチルが生産される。
ピル、アクリル酸ブチル、アクリμ酸ヘンチル、アクリ
ル酸ヘキシル、アクリ/I/酸へブチルおよびアクリル
酸オクチルが生産される。
本発明におけるエステル反応は、既述の培養条件のもと
て本発明菌株を培養しその休止菌体、菌体抽出液(粗酵
素液)、精製酵素、固定化菌体および固定化酵素状態の
うちの少なくとも一つを適当に選A、で用いる。本発明
のアクリル酸エステルの合成に必要な反応系の基本組成
は第5表に示される。なお2合成に当って、媒体として
は水媒体で行なうのが一般的である。
て本発明菌株を培養しその休止菌体、菌体抽出液(粗酵
素液)、精製酵素、固定化菌体および固定化酵素状態の
うちの少なくとも一つを適当に選A、で用いる。本発明
のアクリル酸エステルの合成に必要な反応系の基本組成
は第5表に示される。なお2合成に当って、媒体として
は水媒体で行なうのが一般的である。
第5表
リン酸パンファー(PH8,0) 0.2Mア
クリル酸 1%(v/v )各
種アルコール 1%CVAυ水 菌体および抽出液の添加量は、固体懸濁液として最終1
JtJ1.が66 Q nmの吸光度(0D660 )
で0.1以上9通常は1.0〜20 の範囲にある。
クリル酸 1%(v/v )各
種アルコール 1%CVAυ水 菌体および抽出液の添加量は、固体懸濁液として最終1
JtJ1.が66 Q nmの吸光度(0D660 )
で0.1以上9通常は1.0〜20 の範囲にある。
菌体抽出液は、菌体を超音波破砕機やフレンチプレスで
処理して得られ、280nmの吸光度(A280)が0
.1以上2通常は0.5〜20.0 の範囲で用いら
れる。
処理して得られ、280nmの吸光度(A280)が0
.1以上2通常は0.5〜20.0 の範囲で用いら
れる。
反応pHは5〜9の範囲にあればよい。好ましくは6〜
8の範囲に調整される。
8の範囲に調整される。
酸成分はアクリル酸である。メタクリル酸は使用できな
い。アクリル酸の便用可1jピな濃度は、最終濃度が0
.1%(■/v)〜5%(V/V)−t’あり、好まし
くは0.5%(v/v)〜2%(V/V)ノ範囲に選ば
れる。アクリル酸の使用によシ反応系組成のI)Hが低
下しアクl) w酸の消°aと共にpHが上昇する。
い。アクリル酸の便用可1jピな濃度は、最終濃度が0
.1%(■/v)〜5%(V/V)−t’あり、好まし
くは0.5%(v/v)〜2%(V/V)ノ範囲に選ば
れる。アクリル酸の使用によシ反応系組成のI)Hが低
下しアクl) w酸の消°aと共にpHが上昇する。
このようなpH変動を極小にし反応系のpHが常時7前
後になるようにするために本基本組成ではパンファーと
して0.2Mのリン1竣パンフアーが用いられる。リン
酸パン7アーに代えて重炭酸−炭酸Naバッファー、ト
リス塩酸バッファーなどを用いることもできる。パン7
ア一濃度も0.2Mに限定されるこ七はなく、使用され
るアクリル酸量や反応速度などに応じて適宜選択される
。
後になるようにするために本基本組成ではパンファーと
して0.2Mのリン1竣パンフアーが用いられる。リン
酸パン7アーに代えて重炭酸−炭酸Naバッファー、ト
リス塩酸バッファーなどを用いることもできる。パン7
ア一濃度も0.2Mに限定されるこ七はなく、使用され
るアクリル酸量や反応速度などに応じて適宜選択される
。
アルコール(ROH)の使用量は、アクリル1峻1モル
当シ1通常、 0.1〜10モル程度とされるが。
当シ1通常、 0.1〜10モル程度とされるが。
過剰モ/l/量使用するのが好ましく、アクリル酸1モ
ル当9,1〜5モル使用するのが望ましい。しかし、ア
ルコールをあまシ多く使用すると酵素失活のおそれがあ
るので1通常、最終濃度で04%(V/V )〜10%
(V/V ) 、好ましくは0.5%(V/V )〜反
応温度は通常20°C〜40’Cの範囲内でろiシば良
い。好ましくは25°C〜35°Cである。
ル当9,1〜5モル使用するのが望ましい。しかし、ア
ルコールをあまシ多く使用すると酵素失活のおそれがあ
るので1通常、最終濃度で04%(V/V )〜10%
(V/V ) 、好ましくは0.5%(V/V )〜反
応温度は通常20°C〜40’Cの範囲内でろiシば良
い。好ましくは25°C〜35°Cである。
反応時間は基質添加量により幾分穴なるが約10分以上
であれば生成物の検出が可能である。
であれば生成物の検出が可能である。
反応は均−系で行うことが好゛ましい。アルコールがブ
クノールの場合にはその(吏用量が多くなると水と1ざ
D l/C< くなるため、撹拌して系を均一ンiエマ
ルジョンとすることが好ましい。炭素数が5以上のア/
I/コールについても同様な理由から(jffi拌など
の手段によシ均−系にすることが好ましい。
クノールの場合にはその(吏用量が多くなると水と1ざ
D l/C< くなるため、撹拌して系を均一ンiエマ
ルジョンとすることが好ましい。炭素数が5以上のア/
I/コールについても同様な理由から(jffi拌など
の手段によシ均−系にすることが好ましい。
一般的に2反応終了後は系から1体を遠心分離によシ除
く。その上澄液を直接ガスクロマドグラスあるいは液体
クロマトグラフにかけ生成物質の検出定量を行なうか、
もしくはその上澄液を必要に応じてさらに熱処理(例え
ば100’、Cにて1分間)を行い夾雑する蛋白を除去
してからガスクロマトグラフもしくは液体クロマトグラ
フにかけ生成物質の検出定量を行なう。
く。その上澄液を直接ガスクロマドグラスあるいは液体
クロマトグラフにかけ生成物質の検出定量を行なうか、
もしくはその上澄液を必要に応じてさらに熱処理(例え
ば100’、Cにて1分間)を行い夾雑する蛋白を除去
してからガスクロマトグラフもしくは液体クロマトグラ
フにかけ生成物質の検出定量を行なう。
生成物質の確認は仄のようにして行なつ/ζ。
1、 アクリル酸、アルコールおよびNIAの3者が同
時に存在したときだけ、生成物のピークが見られ(ン戊
体クロマトグラフにて)、そのピークが時間とともに増
加する。
時に存在したときだけ、生成物のピークが見られ(ン戊
体クロマトグラフにて)、そのピークが時間とともに増
加する。
2、 ガスクロマトグラフおよび/もしくはirN体ク
ロマトグラフによシ既知物質と同じリテンションタイム
を示した。(既知物質は化学合成にて入手した) 3、 GC−Mass (日立製)によるCI法にょ
シ生成物質が既知物質と同じ分子量であることを確認し
た。
ロマトグラフによシ既知物質と同じリテンションタイム
を示した。(既知物質は化学合成にて入手した) 3、 GC−Mass (日立製)によるCI法にょ
シ生成物質が既知物質と同じ分子量であることを確認し
た。
生成されたアクリル酸ニス7−A/を採取するには常法
の蒸留あるいは溶剤抽出が用いられる。
の蒸留あるいは溶剤抽出が用いられる。
アクリル酸と0H−R−OHの反応
本発明の新規アルカリゲネス・7エーカリスは。
既述のように、アクリ/l/酸と一般弐HOROH(た
だし、Rは炭素数2〜6の直鎖のアルキレン基)で表わ
される二価アルコールとから水酸基を有するアクリル酸
エステルを生匹する。
だし、Rは炭素数2〜6の直鎖のアルキレン基)で表わ
される二価アルコールとから水酸基を有するアクリル酸
エステルを生匹する。
これを反応式で表わすと。
C0OHCo・0ROH
の反応が行われる。
アルカリゲネス・7エーカリスはアルカリゲネス・フエ
ーカリスT8836株υよびアルカリゲネス・フエーカ
リスTK4935株のうちの少なくとも一方である。二
価アルコールとしては両末端に水り試基を・「1する炭
素数2〜6のu¥< 、’i;M状アルコールでアシ、
それはエチレン″グリコール、l・3ジヒドロキシフ”
ロバ〉、l・4ジヒドロキジグタン、1・5ジヒドロキ
シペンクンおよび1#6ジヒドロキシヘキプシである。
ーカリスT8836株υよびアルカリゲネス・フエーカ
リスTK4935株のうちの少なくとも一方である。二
価アルコールとしては両末端に水り試基を・「1する炭
素数2〜6のu¥< 、’i;M状アルコールでアシ、
それはエチレン″グリコール、l・3ジヒドロキシフ”
ロバ〉、l・4ジヒドロキジグタン、1・5ジヒドロキ
シペンクンおよび1#6ジヒドロキシヘキプシである。
本発明に?けるエステル反応は、既述のJFf銚条目−
のもとて本発明j″A株を1.舌、i」シその休止1体
、(!1体抽出液(粗M素液)、清i!A酵累、固定化
閑雌およびkal定化酵巣状態のうちの少なくとも一つ
をス!肩当に迫Aで用いる。本発明の水1β^〜を有す
るアクリルi貢エステルの合成に必z11反応系の基本
7岨成は第6表に示される。なお、この合成に当って媒
体を用いる場合には水媒体とするのが一般的である0 第6表 組 成 最終濃度 り〉・酸バッファー(1)H8,0) 0.2
Mアクリル酸 1%(V/V
)ジヒドロキシアルコール 10%(V/V
)水 菌体もしくは菌体抽出液 菌体および抽出液のンへ加量は、菌体懸濁液として最終
濃度が660 nmの吸光度(OD660)で0.1以
上2通′iシは1.0〜20の範囲にある。自体抽出液
は、菌体を超音波破砕軸やフレンチプレスで処理して得
られp280nmの吸光度(A280)が0.1以上1
通常は0.5〜20.0の範囲で用いられる。
のもとて本発明j″A株を1.舌、i」シその休止1体
、(!1体抽出液(粗M素液)、清i!A酵累、固定化
閑雌およびkal定化酵巣状態のうちの少なくとも一つ
をス!肩当に迫Aで用いる。本発明の水1β^〜を有す
るアクリルi貢エステルの合成に必z11反応系の基本
7岨成は第6表に示される。なお、この合成に当って媒
体を用いる場合には水媒体とするのが一般的である0 第6表 組 成 最終濃度 り〉・酸バッファー(1)H8,0) 0.2
Mアクリル酸 1%(V/V
)ジヒドロキシアルコール 10%(V/V
)水 菌体もしくは菌体抽出液 菌体および抽出液のンへ加量は、菌体懸濁液として最終
濃度が660 nmの吸光度(OD660)で0.1以
上2通′iシは1.0〜20の範囲にある。自体抽出液
は、菌体を超音波破砕軸やフレンチプレスで処理して得
られp280nmの吸光度(A280)が0.1以上1
通常は0.5〜20.0の範囲で用いられる。
反応pHは5〜りの範囲にあればよい。好ましくは6.
5〜7.5である。
5〜7.5である。
アクリルrI!2の使用可能な濃度は、0.1%(V/
V )〜5%(V/V) fあシ、好マシくは0.5%
(V/V)〜2%(V/V)の範囲に選ばれる。アクリ
ル酸の使用によシ反応系組成のpHが低下しアクリルi
浚の消費と共にpHが上昇する。このようなpH変動を
極小にし反応系のpHが% nl 7前後になるように
するために本基本組成ではパンファーきして0.2Mの
リン潴パンファーが用いられる。リン゛故ハンフア−に
代えて重灰酸−炭酸Naパンファー、トリス塩酸パンフ
ァーなどを用いることもできる。バッファー濃度も0.
2Mに限定さ不むることはなく。
V )〜5%(V/V) fあシ、好マシくは0.5%
(V/V)〜2%(V/V)の範囲に選ばれる。アクリ
ル酸の使用によシ反応系組成のpHが低下しアクリルi
浚の消費と共にpHが上昇する。このようなpH変動を
極小にし反応系のpHが% nl 7前後になるように
するために本基本組成ではパンファーきして0.2Mの
リン潴パンファーが用いられる。リン゛故ハンフア−に
代えて重灰酸−炭酸Naパンファー、トリス塩酸パンフ
ァーなどを用いることもできる。バッファー濃度も0.
2Mに限定さ不むることはなく。
使用されるアクリル酸遣や反応速度などに応じて適宜選
択される。
択される。
前記二価アルコールは、酵素の安定化に悪影響を与える
ことがないだめjL的なtlrl限は特にない。
ことがないだめjL的なtlrl限は特にない。
しかし、アクリル酸1モル当り、少なくとも0.5モル
の二価アルコールが用いられる。上記アルコールの使用
量の上限は前記のようにいくら多くてヨイが9通常0.
5%(■/v)〜10%(’V/V )で用いられる。
の二価アルコールが用いられる。上記アルコールの使用
量の上限は前記のようにいくら多くてヨイが9通常0.
5%(■/v)〜10%(’V/V )で用いられる。
モル比ではアクリル酸1モル当シ通常0.5〜50モル
、好寸しくは1〜20モルの二価アル’:I−N カ用
イラれる。ジヒドロキシアルコールの添力旧dに応じて
生成する水酸基を有するアクリル酸エステルの量も多く
なる。反応温度は200C〜40°Cの範囲内であれば
良い。好ましくは25°C〜35°Cである。反応時間
は基質添加量によシ幾分異なるが約10分以上であれば
検出可能である。
、好寸しくは1〜20モルの二価アル’:I−N カ用
イラれる。ジヒドロキシアルコールの添力旧dに応じて
生成する水酸基を有するアクリル酸エステルの量も多く
なる。反応温度は200C〜40°Cの範囲内であれば
良い。好ましくは25°C〜35°Cである。反応時間
は基質添加量によシ幾分異なるが約10分以上であれば
検出可能である。
反応終了後の系から菌体を遠心分離によシ除く。
その上澄液を直接ガスクロマトグラフあるいは液体クロ
マトグラフにかけ生成物質の検出定量を行なうか、もし
くはその上澄液を必要に応じてさらに熱処理(例えば1
00’ Cにて1分間)し夾雑する蛋白を除去してから
ガスクロマトグラフもしくは液体クロマトグラフにかけ
生成物質の検出定量を行なう。検出は次のような条件で
行なわれる。
マトグラフにかけ生成物質の検出定量を行なうか、もし
くはその上澄液を必要に応じてさらに熱処理(例えば1
00’ Cにて1分間)し夾雑する蛋白を除去してから
ガスクロマトグラフもしくは液体クロマトグラフにかけ
生成物質の検出定量を行なう。検出は次のような条件で
行なわれる。
(Oガスクロマトグラフ
機 fjTl 日立163型ガスクロマト
グラフ検出方法 FID カラム 7enaz GC(1m)カラム温度
230’C キャリアガス 窒素 流ffi 30 ml!/min。
グラフ検出方法 FID カラム 7enaz GC(1m)カラム温度
230’C キャリアガス 窒素 流ffi 30 ml!/min。
■ 液体クロマトグラス
機 種 yarianモデルsoo。
カラム MCH10
溶#IIl 水:アセトントリル−50
: 50流量 1.0 ml/min。
: 50流量 1.0 ml/min。
波長 200nm
例えば、アクリル酸とl・4ブタンジオールとの反応で
生成するヒドロキシブチルアクリレートについてはガス
クロマトグラフでは約5分後、液体クロマトグラフでは
約4分後にピークが現われる。
生成するヒドロキシブチルアクリレートについてはガス
クロマトグラフでは約5分後、液体クロマトグラフでは
約4分後にピークが現われる。
二価アルコールがエチレングリコールであればヒドロキ
シエチルアクリレートが生成され、液体クロマトグラフ
では3.2分にピークが見られる。
シエチルアクリレートが生成され、液体クロマトグラフ
では3.2分にピークが見られる。
生成物質の確認は次のようにして行なった。
1、 アクリル酸、二価アルコールおよヒ酵素の3者が
同時に存在したときだけ、生成物のピークが見られ(2
体クロマトグラフにて)、そのピークが時間とともに増
加する。
同時に存在したときだけ、生成物のピークが見られ(2
体クロマトグラフにて)、そのピークが時間とともに増
加する。
2、 カスクロマトグラフおよび/もしくは液体クロマ
トグラフによりi(も知物質と同じリテンションタイム
を示した。(既知物質は化学合成にて入手した) 3、GC−Mass (日立製)によるCI法により
生成ワ質が既知物質と同じ分子量であることを確認した
。
トグラフによりi(も知物質と同じリテンションタイム
を示した。(既知物質は化学合成にて入手した) 3、GC−Mass (日立製)によるCI法により
生成ワ質が既知物質と同じ分子量であることを確認した
。
生成されたアクリル酸エステルを採取するには常法の蒸
留もしくは溶剤抽出が用いられる。
留もしくは溶剤抽出が用いられる。
Alcaligenes faocalis TH83
6株のエステル化能を有する酵素の安定性について、超
音波破砕時(海上電気(株)のTA4280振動子42
80S、i2〜4Aにて使用)の酵素の安定性を第1図
に示す。
6株のエステル化能を有する酵素の安定性について、超
音波破砕時(海上電気(株)のTA4280振動子42
80S、i2〜4Aにて使用)の酵素の安定性を第1図
に示す。
図ハソニック処理1侍間とヒドロキシブチルアクリレー
トの生成反応活性との開係を示している。活txは、を
分間にヒドロキシブチルアクリレ−1−ヲ1μm07?
生成したとき1ユニツトとした。第1図から車間株
TH836株のエステル化酵素は比較的安定であること
がわかる。
トの生成反応活性との開係を示している。活txは、を
分間にヒドロキシブチルアクリレ−1−ヲ1μm07?
生成したとき1ユニツトとした。第1図から車間株
TH836株のエステル化酵素は比較的安定であること
がわかる。
りるpH
反応系組成とそこに用いる各イノロバソファ−を下記の
ようにai、・J 整し9車重株TH836抹を用いた
ヒドロキシグチルアクリレートの生成に及ぼすpHの影
響を調べた。その結果を雨2図に示す。図から酵素活性
はP H5〜lO付近捷でであることがわ反応組成 各種パン7アー 1rE11 1O%アクリル酸 0.5 tnllO%1−
4ブタンジオール 0.5ml!酵素A280=14
.0 3,0ml以下・Jζ臼 緩砺波 5 3.5 リン酸カリウム 6 4.1(LM
) 7 5.48
6.3 9 7.1 屯炭酸−炭12i2Na 10 8,
1(IM) 11 9.3実
施例 仄に実施例を例示して本発明を具体的に説明する。
ようにai、・J 整し9車重株TH836抹を用いた
ヒドロキシグチルアクリレートの生成に及ぼすpHの影
響を調べた。その結果を雨2図に示す。図から酵素活性
はP H5〜lO付近捷でであることがわ反応組成 各種パン7アー 1rE11 1O%アクリル酸 0.5 tnllO%1−
4ブタンジオール 0.5ml!酵素A280=14
.0 3,0ml以下・Jζ臼 緩砺波 5 3.5 リン酸カリウム 6 4.1(LM
) 7 5.48
6.3 9 7.1 屯炭酸−炭12i2Na 10 8,
1(IM) 11 9.3実
施例 仄に実施例を例示して本発明を具体的に説明する。
実施例1
(菌体懸濁液の調製)
丙エキスlOg、ポリペ7”):/10 g 、 Na
C15g、蒸留水II!、そして1)H7,Qの組成の
肉汁液体培地100m1を調製した。これを500 +
nl!容坂ロフラスコに入れ殺菌後、これにAlca目
genesfaecalis TH836株を植菌した
。これを30°Cにて24時時間上う培養した。この培
養液を遠心分離(io、ooOrpln 、 lo m
in、)(、、沈澱した菌体をpH7,0のリン酸バッ
ファー0.05Mにて1回洗浄した。この洗浄菌体を同
バンファにて0D660=lO00になるように希釈し
、菌体懸司液とした。
C15g、蒸留水II!、そして1)H7,Qの組成の
肉汁液体培地100m1を調製した。これを500 +
nl!容坂ロフラスコに入れ殺菌後、これにAlca目
genesfaecalis TH836株を植菌した
。これを30°Cにて24時時間上う培養した。この培
養液を遠心分離(io、ooOrpln 、 lo m
in、)(、、沈澱した菌体をpH7,0のリン酸バッ
ファー0.05Mにて1回洗浄した。この洗浄菌体を同
バンファにて0D660=lO00になるように希釈し
、菌体懸司液とした。
(反応系)
次の反応ね成にて306Cで1時間反応させた。
反応組成 添加量
リン酸バフ7アー IM(pH8,0) 0,2
nllアクリ/l/酸l/形水溶液(V/V) ’
0.1 snl各種アルコール lO%水溶M (V
/V ) o、1 ml菌体懸濁液 0D6
60=10 0.6 ml!アルコ−μ成分と
してメチルアルコール、エチルアルコール、プロピルア
ルコール、グチルアルコール、ペンチル7yコール、ヘ
キシルアルコール、オクチルアルコールが用いられた。
nllアクリ/l/酸l/形水溶液(V/V) ’
0.1 snl各種アルコール lO%水溶M (V
/V ) o、1 ml菌体懸濁液 0D6
60=10 0.6 ml!アルコ−μ成分と
してメチルアルコール、エチルアルコール、プロピルア
ルコール、グチルアルコール、ペンチル7yコール、ヘ
キシルアルコール、オクチルアルコールが用いられた。
(分析)
反応終了後、速心分離によシ菌体を除去し、その上澄液
をガスクロマトグラフもしくは液体クロマトグラフによ
り分析し生成物の収量を定量した。
をガスクロマトグラフもしくは液体クロマトグラフによ
り分析し生成物の収量を定量した。
(結果)
その結果を第7表に示す。
以ト余白
天V也例2
実hlII汐1]lと同様にして調製したAlcal
igenesfaecalis 1”H836株の菌
体部1ittl?ffl 20 mlをl U OIn
/容のカラス製ビーカに入れ、氷冷水で冷却しながら海
上電気(抹)製の超音波破砕機にて10分間国体を破砕
した。得られた破砕物を15.00Orpmで20分間
遠心分離し、得られた上澄液を租醇素故とした。この租
酵g液を菌体懸濁液の代シに用いたこ七以外、実施例1
と同じ反応系にてエステル反応を行なった。その結果を
船8表に示す。
igenesfaecalis 1”H836株の菌
体部1ittl?ffl 20 mlをl U OIn
/容のカラス製ビーカに入れ、氷冷水で冷却しながら海
上電気(抹)製の超音波破砕機にて10分間国体を破砕
した。得られた破砕物を15.00Orpmで20分間
遠心分離し、得られた上澄液を租醇素故とした。この租
酵g液を菌体懸濁液の代シに用いたこ七以外、実施例1
と同じ反応系にてエステル反応を行なった。その結果を
船8表に示す。
以下余白
実施例3
(粗l!i1:累液の調製)
実施例1に示し/こ肉汁液体培地にてAlcalige
nesfaecalis TK4935を30°Cで
24時間培養し/こ。培養i反を遠心分離(too、o
o rpm 、 1o min、>し、染めた菌体をp
H7,0のリン酸バッファー0.05 M で1回θd
浄した。この洗浄菌体を同バッファーに°C,0D66
0=10.0になるように希釈して菌体懸濁液を調製し
た。この菌体懸濁(夜20m1を100m1容のガラス
製ビー力に入れ、氷冷水で冷却しながら、海上電機(味
)製の超音波破砕機にて、10分間菌体を破砕した。得
られた破砕物を15.000 r pan で20分間
遠心分離し、得られた上な液を粗酵tA液とし7た。
nesfaecalis TK4935を30°Cで
24時間培養し/こ。培養i反を遠心分離(too、o
o rpm 、 1o min、>し、染めた菌体をp
H7,0のリン酸バッファー0.05 M で1回θd
浄した。この洗浄菌体を同バッファーに°C,0D66
0=10.0になるように希釈して菌体懸濁液を調製し
た。この菌体懸濁(夜20m1を100m1容のガラス
製ビー力に入れ、氷冷水で冷却しながら、海上電機(味
)製の超音波破砕機にて、10分間菌体を破砕した。得
られた破砕物を15.000 r pan で20分間
遠心分離し、得られた上な液を粗酵tA液とし7た。
(反応系)
リン酸パンファー I M (pH8,0) 0.
2 m179 ’) W% 10%水溶故(V
/V ) ” r11eエチルアルコール 2o%沙
溶液(vハυ0.1 n1Jl’粗酵素液 A
280=14.0 0.6 mlさらに、上記エチル
アルコールの代りに、ブチルアルコ−Iし、ヘキシルア
ルコールモl、 < il:オクチルアルコールをそれ
ぞれ最iia及が1%(V/V )になるように用いた
。また、各種アルコールに対し、アクリル酸に代えてメ
タクリル1投を用いた反応も行なった。反応はl000
Gの水浴水に1分間&演することによシ停止させた。沈
澱した蛋白質は5000rpmで10分[−の遠心分に
進にて除去し。
2 m179 ’) W% 10%水溶故(V
/V ) ” r11eエチルアルコール 2o%沙
溶液(vハυ0.1 n1Jl’粗酵素液 A
280=14.0 0.6 mlさらに、上記エチル
アルコールの代りに、ブチルアルコ−Iし、ヘキシルア
ルコールモl、 < il:オクチルアルコールをそれ
ぞれ最iia及が1%(V/V )になるように用いた
。また、各種アルコールに対し、アクリル酸に代えてメ
タクリル1投を用いた反応も行なった。反応はl000
Gの水浴水に1分間&演することによシ停止させた。沈
澱した蛋白質は5000rpmで10分[−の遠心分に
進にて除去し。
その上澄液を液体クロマトグラフにて分析し、生成エス
テルの収I食を定量した。
テルの収I食を定量した。
(結果)
その結果を第9表に示1”。
以ド余白
第 9 表
実施例4
(11体懸濁液の調製)
肉エキスlog、ポリペグト:/ l Og 、 Na
C15g、蒸留水11.そしてp117.0 の組成の
肉汁液体培地100m1をfi’7J袈した。これを5
00 ml谷汲ロフラスコに入れ殺菌して後、これにA
I Oa I igencsfaeealis ′r
H836株を植1油した。これを30°Cにて24時間
振とう培養した。この培養液を遠心分離(10,00O
rpm 、 l□ min、 )し、沈澱した菌体を)
In2,0のリン酸バッファー0.05 Mにて1回6
La t’Jrした。この菌体を同じパンファーにて0
D6(50=IO,0になるように希釈し、これを菌体
懸濁液とした。
C15g、蒸留水11.そしてp117.0 の組成の
肉汁液体培地100m1をfi’7J袈した。これを5
00 ml谷汲ロフラスコに入れ殺菌して後、これにA
I Oa I igencsfaeealis ′r
H836株を植1油した。これを30°Cにて24時間
振とう培養した。この培養液を遠心分離(10,00O
rpm 、 l□ min、 )し、沈澱した菌体を)
In2,0のリン酸バッファー0.05 Mにて1回6
La t’Jrした。この菌体を同じパンファーにて0
D6(50=IO,0になるように希釈し、これを菌体
懸濁液とした。
(粗酵素液の調製)
得られた菌体懸濁液を尋上電気製超音波破砕機にて氷冷
水で冷却しつつ20分間破砕した。これを遠心分離(1
5,000rl’m 、 30分間)L−1その上al
e!、を粗酵素液とし、た。
水で冷却しつつ20分間破砕した。これを遠心分離(1
5,000rl’m 、 30分間)L−1その上al
e!、を粗酵素液とし、た。
(反応組成)
次の反応組成にて30°Cで反応し、得られた生成物を
ガスクロマトグラフを用いて分析した。
ガスクロマトグラフを用いて分析した。
リン酸パン77− lMCPH8,0) 0.
2mlアクリル酸 10%水宕液(Vハυ Q、
l IIIJl・4ブタンジオ−p 各拙a度
0.1m11・4ブタンジオ−μの濃度は最終濃度
でlO00%(V/V)、5.OL;?7 (VAυ
、3.0%(V/v)、1.0%(V/V)、 0.5
’jir (V/V) (!: Lり。
2mlアクリル酸 10%水宕液(Vハυ Q、
l IIIJl・4ブタンジオ−p 各拙a度
0.1m11・4ブタンジオ−μの濃度は最終濃度
でlO00%(V/V)、5.OL;?7 (VAυ
、3.0%(V/v)、1.0%(V/V)、 0.5
’jir (V/V) (!: Lり。
(結果)
■・4グタンジオ一/l/Ω度のエステル生成におよぼ
す影響を調べた。その結果を第3図に示す。エステル生
成量は苅γクリル酸収率(モル%)で表示される。1・
4ブタンジオール垣が多くなるにつれ生成するヒドロキ
シグチルアクリレートのffi%多くなることがわかる
。また、アクリル酸lo%(最終濃度)と1・4ブタン
ジオ一ル1o%(最終濃度)との(1:1の)反応でも
ジアクリレートの生成は生成アクリ7し酸エステルの1
%以下であった。しかし、アクリル酸と二価アルコール
との比が1=2以上になると、ジアクリレートはまった
く生成しなかった。化学合成においてはアクリル酸と二
価アルコールとをl:lで反応させると。
す影響を調べた。その結果を第3図に示す。エステル生
成量は苅γクリル酸収率(モル%)で表示される。1・
4ブタンジオール垣が多くなるにつれ生成するヒドロキ
シグチルアクリレートのffi%多くなることがわかる
。また、アクリル酸lo%(最終濃度)と1・4ブタン
ジオ一ル1o%(最終濃度)との(1:1の)反応でも
ジアクリレートの生成は生成アクリ7し酸エステルの1
%以下であった。しかし、アクリル酸と二価アルコール
との比が1=2以上になると、ジアクリレートはまった
く生成しなかった。化学合成においてはアクリル酸と二
価アルコールとをl:lで反応させると。
生成したアクリル酸エステルに対し5〜15%のジアク
リレートが生成する。ジアクリレートは重合時の反応系
をゲル化させるため、それが生成しないようにするとと
が必要である。化学合成ではぞれはtiKめてなつかし
い。そイtゆ7え、重合1寺の11込み濃度を低くおさ
えね(、まならンよいという欠点があった。本発明のエ
ステル反応においてはジアクリレートの生成は微量もし
くは皆無であるため。
リレートが生成する。ジアクリレートは重合時の反応系
をゲル化させるため、それが生成しないようにするとと
が必要である。化学合成ではぞれはtiKめてなつかし
い。そイtゆ7え、重合1寺の11込み濃度を低くおさ
えね(、まならンよいという欠点があった。本発明のエ
ステル反応においてはジアクリレートの生成は微量もし
くは皆無であるため。
このような問題はない。
実施例5
実施例4で示しだ培地にて目印にAl ca I ig
e口esfaecalis TH836株とAlca
ligenes faecalisTK4935株をそ
れぞれ培養した。得だ各菌体を0D660=10.0に
なるように0.05 Mのリン酸パンファー(pH7,
0)にて、菌体懸濁液を調製した。この菌体懸濁液を実
施例4と同様に処理して4且酵索存支をi報製した。こ
の菌体シ咥濶ン夜もしくは市販の酵!7(fを用いて次
の反応組成にて30°Cで2時間反応を行った。市販の
リパーセとしては。
e口esfaecalis TH836株とAlca
ligenes faecalisTK4935株をそ
れぞれ培養した。得だ各菌体を0D660=10.0に
なるように0.05 Mのリン酸パンファー(pH7,
0)にて、菌体懸濁液を調製した。この菌体懸濁液を実
施例4と同様に処理して4且酵索存支をi報製した。こ
の菌体シ咥濶ン夜もしくは市販の酵!7(fを用いて次
の反応組成にて30°Cで2時間反応を行った。市販の
リパーセとしては。
As pergi I lusに属する糸状菌から生産
されたりパーーレ(リパーゼAP二天¥f製薬(株))
およびMucorに属する糸状菌から生産されたリパー
セ(リパーセM−AP:天野製薬(株))を用いた。
されたりパーーレ(リパーゼAP二天¥f製薬(株))
およびMucorに属する糸状菌から生産されたリパー
セ(リパーセM−AP:天野製薬(株))を用いた。
リンr=バフ77− IM(pH8,0)
0.2rnlアクリル般1o%水溶液 (V/V)
0.1 mlx チL/ツクリコールI7とは1
・4グタンシオールまノこはl・6ヘキツーシジオール
1o(2)0.1 ml市販リパーセの醇素溶液濃度
は3 mg /mlであった。l・6ヘキサンジオール
の使用量は0.1gであった。この場介には反応系の固
形一度を調整する意味で水0.1ml!を系にさらに添
加した。生成物質を液体クロマトグラフもし−くはガス
クロマトグラフで確認し−た。いずれの反応系において
もジアクリレート生成は演出されなかった。結果を第1
0表に示す。
0.2rnlアクリル般1o%水溶液 (V/V)
0.1 mlx チL/ツクリコールI7とは1
・4グタンシオールまノこはl・6ヘキツーシジオール
1o(2)0.1 ml市販リパーセの醇素溶液濃度
は3 mg /mlであった。l・6ヘキサンジオール
の使用量は0.1gであった。この場介には反応系の固
形一度を調整する意味で水0.1ml!を系にさらに添
加した。生成物質を液体クロマトグラフもし−くはガス
クロマトグラフで確認し−た。いずれの反応系において
もジアクリレート生成は演出されなかった。結果を第1
0表に示す。
以下求白
実施例6
実施例4と同様にして得たTH836抹およびTK49
35株の培養菌体を遠心分離後、 0.05M (pH
7,0)のリン酸パンファーにて0D660が10.0
の菌体懸濁液を調製した。この菌体懸濁液に3倍jdの
アセトン<−2o’C>を加え、10分間攪拌した後遠
心分離< io、ooo rpm 、 i o分)した
。沈澱した菌体をさらにアセトンにて2回洗浄した。
35株の培養菌体を遠心分離後、 0.05M (pH
7,0)のリン酸パンファーにて0D660が10.0
の菌体懸濁液を調製した。この菌体懸濁液に3倍jdの
アセトン<−2o’C>を加え、10分間攪拌した後遠
心分離< io、ooo rpm 、 i o分)した
。沈澱した菌体をさらにアセトンにて2回洗浄した。
これを吸引式デシケータ中にて完全に乾燥し1.アセト
ンドライ菌体を得た。この菌体を用いて反応を行なった
。
ンドライ菌体を得た。この菌体を用いて反応を行なった
。
リン酸パフ7アー IM(pH8,0) 0
.2mfアクリル酸 10%水溶液(V/V)
0.1 m11−4ブタンジオ一ルioo%
0.11nl水
0.6 ml!アセトン・ド
ライ菌体 20mg反応は3
0°Cにて2時間行なった。その結果。
.2mfアクリル酸 10%水溶液(V/V)
0.1 m11−4ブタンジオ一ルioo%
0.11nl水
0.6 ml!アセトン・ド
ライ菌体 20mg反応は3
0°Cにて2時間行なった。その結果。
対アクリル酸収率(七ル%)はTH836株では4.2
%、そしてTK4935株では4,5%であった。
%、そしてTK4935株では4,5%であった。
実施例7
実施例4と同様にして得たTH836株の粗酵素液を第
11表に示したように常法に従って清製し。
11表に示したように常法に従って清製し。
比活性が40倍になった813分精製酵素を得た。
以下余白
この活性は、アクリル0と1・4ブタンジオールとの反
応におけるヒドロキシグチルアクリレートの生成によっ
て評価された。
応におけるヒドロキシグチルアクリレートの生成によっ
て評価された。
次にこの卸に精製酵素をセファロース4BにcNBr
H性化法(R,Axen、Nature、214゜1
302(1967)で固定化した。得られた固定化酵素
を内径12mm長さ30CIIIのカラムに詰め、上部
から下記の組成の反応液を10t7R71時間の流速で
流した。その結果、対アクリル酸当1モル%の収率でヒ
ドロキシブチルアクリレートが生成された。
H性化法(R,Axen、Nature、214゜1
302(1967)で固定化した。得られた固定化酵素
を内径12mm長さ30CIIIのカラムに詰め、上部
から下記の組成の反応液を10t7R71時間の流速で
流した。その結果、対アクリル酸当1モル%の収率でヒ
ドロキシブチルアクリレートが生成された。
反応液組成 添加量
リン酸パン7アー IM(pH8,0) 10
0 m179 IJ tv酸 10%水溶液(V
/V) 50 mI!1 ” 47”夕>ジオー
ル 100% 50 ml水
300 m
/実施例8 実施例4と同様にして得たTH836株およびTK49
35株の菌体懸濁液お上び粗酵素液をそれぞれ用い9次
の反J芯系のもとてジアクリレートの加水分解rj目を
調べた。
0 m179 IJ tv酸 10%水溶液(V
/V) 50 mI!1 ” 47”夕>ジオー
ル 100% 50 ml水
300 m
/実施例8 実施例4と同様にして得たTH836株およびTK49
35株の菌体懸濁液お上び粗酵素液をそれぞれ用い9次
の反J芯系のもとてジアクリレートの加水分解rj目を
調べた。
反応組成 添〃ロ量リン酸パン7ア
ー I M CpH8,0) 0.2 ml
ジヒドロキシアクリレート 0.2%
0,21nl菌体懸濁液 0D660=IO0
OQ、(3mlもしくは粗酵県液 0D280=15
.OC0,6m1)上記反応系を30c′Gにインキュ
ベートするとジヒドロシキアクリレートは5〜10時間
のうちに消失し1.それに対応するアクリル酸エステル
とアクリル酸とが生成した。
ー I M CpH8,0) 0.2 ml
ジヒドロキシアクリレート 0.2%
0,21nl菌体懸濁液 0D660=IO0
OQ、(3mlもしくは粗酵県液 0D280=15
.OC0,6m1)上記反応系を30c′Gにインキュ
ベートするとジヒドロシキアクリレートは5〜10時間
のうちに消失し1.それに対応するアクリル酸エステル
とアクリル酸とが生成した。
本発明の新菌株はプロピオン酸および酪酸の資化性能ヲ
欠(Alcaligenes faecalis T
H836およびTK4935であり、これらはアクリル
酸とアルコール類とからアクリル酸エステルを生産する
Fj目力を有する。この菌株を用いることによジアクリ
ル酸と二価アルコールとを含有する反応系から水酸基を
有するアクリル酸ニス7−/I/を製造するととができ
る。エステル化に弘要なijI禦は、培地の柚頓に無関
係に、菌体増殖に比例して土圧される。
欠(Alcaligenes faecalis T
H836およびTK4935であり、これらはアクリル
酸とアルコール類とからアクリル酸エステルを生産する
Fj目力を有する。この菌株を用いることによジアクリ
ル酸と二価アルコールとを含有する反応系から水酸基を
有するアクリル酸ニス7−/I/を製造するととができ
る。エステル化に弘要なijI禦は、培地の柚頓に無関
係に、菌体増殖に比例して土圧される。
この生成物は工業月利となシうる重合体原料として宵月
である。この生成物を他の既知単量体と共重合し−て得
られる高分子は粘着剤、接着剤、フィルムなどとして用
いられうる。しかも、この生成物は水酸基を有するため
、親水性をもぢしかも官能基とじても作用するので、他
の多くの用途に利用されうる。
である。この生成物を他の既知単量体と共重合し−て得
られる高分子は粘着剤、接着剤、フィルムなどとして用
いられうる。しかも、この生成物は水酸基を有するため
、親水性をもぢしかも官能基とじても作用するので、他
の多くの用途に利用されうる。
さらに1車間株を用いたエステル反応においてジアクリ
レートがほとA、ど生成をれない。ジアクリル酸 トが
系内に生成されなければ2重合反応中にゲル化が起こら
ず、したがってエステル反応出発物質の高濃度仕込みが
可能となる。その結果。
レートがほとA、ど生成をれない。ジアクリル酸 トが
系内に生成されなければ2重合反応中にゲル化が起こら
ず、したがってエステル反応出発物質の高濃度仕込みが
可能となる。その結果。
新規な特徴をもつ高分子を得ることも可能である。
微琺ながらジアクリレートが系内に生成でれても。
本菌株はいずれもこれに対応するアクリル酸エステルと
アクリル酸とに加水分解する詣力を有するという利点が
ある。
アクリル酸とに加水分解する詣力を有するという利点が
ある。
第1図は本発明tvm抹Alealigertes f
aeealisTH836のエステル化酵素の安定性を
示す図、第2図は同じ(1’H836抹のエステル化酵
素のPfIによる影響を示す図、第3図は同じ(TH8
36株のエステル生成能の1・4グクンジオ一ル譲度に
よる影響をホず図である。 以 上 代理人 弁理士 山 本 秀 策 第1 図 蓼 H 第31図 反点吟間(qni、)
aeealisTH836のエステル化酵素の安定性を
示す図、第2図は同じ(1’H836抹のエステル化酵
素のPfIによる影響を示す図、第3図は同じ(TH8
36株のエステル生成能の1・4グクンジオ一ル譲度に
よる影響をホず図である。 以 上 代理人 弁理士 山 本 秀 策 第1 図 蓼 H 第31図 反点吟間(qni、)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、10ピオン酸および酪酸の資化性能を欠くアルカリ
ゲネス・フエーカリス。 2、 アルカリゲネス・7工−カリスTH836株もし
くはアルカリゲネス・7エーカリx TK4935株で
ある前記特許請求の範囲第1項に記載のアルカリゲネス
・7エーカリス。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP9524883A JPS59220184A (ja) | 1983-05-30 | 1983-05-30 | 新規アルカリゲネス・フエ−カリス |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP9524883A JPS59220184A (ja) | 1983-05-30 | 1983-05-30 | 新規アルカリゲネス・フエ−カリス |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS59220184A true JPS59220184A (ja) | 1984-12-11 |
Family
ID=14132449
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP9524883A Pending JPS59220184A (ja) | 1983-05-30 | 1983-05-30 | 新規アルカリゲネス・フエ−カリス |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS59220184A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5264361A (en) * | 1991-03-18 | 1993-11-23 | Lonza Ltd. | Microbiological process for the production of 6-hydroxypicolinic acid |
US5270203A (en) * | 1992-03-13 | 1993-12-14 | Lonza Ltd. | Biologically pure culture of Alcaligenes faecalis DSM 6335 |
-
1983
- 1983-05-30 JP JP9524883A patent/JPS59220184A/ja active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5264361A (en) * | 1991-03-18 | 1993-11-23 | Lonza Ltd. | Microbiological process for the production of 6-hydroxypicolinic acid |
US5270203A (en) * | 1992-03-13 | 1993-12-14 | Lonza Ltd. | Biologically pure culture of Alcaligenes faecalis DSM 6335 |
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