JPH09508116A - Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cytolytic activity - Google Patents

Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cytolytic activity

Info

Publication number
JPH09508116A
JPH09508116A JP7519439A JP51943995A JPH09508116A JP H09508116 A JPH09508116 A JP H09508116A JP 7519439 A JP7519439 A JP 7519439A JP 51943995 A JP51943995 A JP 51943995A JP H09508116 A JPH09508116 A JP H09508116A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cells
cancer
treatment
activity
ifn
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP7519439A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
マーティン エイ. シュワルツ,
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Merck Sharp and Dohme Corp
Original Assignee
Schering Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Schering Corp filed Critical Schering Corp
Publication of JPH09508116A publication Critical patent/JPH09508116A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/20Interleukins [IL]
    • A61K38/2013IL-2
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/20Interleukins [IL]
    • A61K38/2066IL-10
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/21Interferons [IFN]
    • A61K38/212IFN-alpha
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/46Cellular immunotherapy
    • A61K39/461Cellular immunotherapy characterised by the cell type used
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/46Cellular immunotherapy
    • A61K39/464Cellular immunotherapy characterised by the antigen targeted or presented
    • A61K39/4643Vertebrate antigens
    • A61K39/4644Cancer antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2239/00Indexing codes associated with cellular immunotherapy of group A61K39/46
    • A61K2239/46Indexing codes associated with cellular immunotherapy of group A61K39/46 characterised by the cancer treated
    • A61K2239/48Blood cells, e.g. leukemia or lymphoma

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Abstract

(57)【要約】 本発明は、末梢血単核細胞の細胞溶解活性の刺激によって新生物疾患を処置するためのIL-10単独の使用、またはIL-2および/またはα-IFNと組み合わせての使用に関する。   (57) [Summary] The present invention relates to the use of IL-10 alone or in combination with IL-2 and / or α-IFN to treat neoplastic diseases by stimulating the cytolytic activity of peripheral blood mononuclear cells.

Description

【発明の詳細な説明】 末梢血単核細胞溶解活性を刺激するためのIL-10の使用 本発明は、末梢血単核細胞(PBMC)の細胞溶解活性の刺激による、新生物疾患( ガン)の処置における養子免疫法(adoptive immunotherapy)のための、インター ロイキン-10(IL-10)、正式にはサイトカイン合成阻害因子(CSIF)の使用に関する 。 発明の背景 ガンの治療への免疫学的アプローチは、例えば、Klein(Immunology,Wiley-Int erscience,New York,1982,pp.623-648)によって論じられるように、ガン細胞が 、異常型のまたは外来の細胞および分子に対する身体の防御をどうゆうわけか回 避すること、そしてこれらの防御は、ガン細胞の増殖を断つかまたは阻害するた めに治療学的に刺激され得るという概念に基づいている。免疫エフェクターが、 直接的または間接的に腫瘍増殖を阻害し得るという最近の観察は、ガン治療に対 するこのアプローチにおける新しい関心を導いてきた[Heberman,Concepts Immu nopath.1:96(1985)(natural killer cells resist tumor growth);Rosenberg ら、Ann.Rev.Immunol.4:681(1988)(use of IL-2-activated killer cells to t reat cancer);Ralfら、J.Exp.Med 167:712(1988)(tumoricidal activity of ma crophages stimulated by lymphokines);Tepperら、Cell 57:503(1989)(IL-4 h as tumoricidal activity);M.Cohen,「lymphokines and Tumor Immunity],pp.2 37-253 S.Cohen編、Lymphokines and the Immune Response(CRC Press,Boca Rat on,1990)]。 新生物に対する免疫応答性は、様々な細胞のタイプによって調節され、そして T-細胞および単核球由来のサイトカインの作用を伴う。臨床的有望性を示す1つ の免疫学的アプローチは、IL-2活性化キラー細胞を用いるいわゆる「養子免疫法」 であった[Rosenberg、上述、Sci.Am.pp.62-69(1990年5月)]。IL-2単独または より習慣的な化学療法剤との組み合わせは、特定の悪性腫瘍(例えば、腎細胞ガ ン)の処置において効果的なようであるが、IL-2の有効用量の投与に関連した、 血管床漏出(vascular bed leakage)および浮腫などの望ましくない毒性副作用に より、利益よりも危険が勝ることが示唆された[Cotranら、J.Immunol.139:1882( 1987);Edwardsら、Cancer Res.52:3425(1992)]。 ヒト血管内皮細胞は、増加した血管の透過性(すなわち血管漏出症候群)および 浮腫により証明されるように、IL-2毒性に特に感受性であるようである。この病 理学に貢献する要素の1つは、以前にインビトロで注目されたように[Edwardsら 、上述;Damleら、138:1779(1987)]、IL-2活性化T細胞および好中球の内皮単層 に対する癒着の増加であり得る。 新生物疾患の免疫学的処置に対する別の治療アプローチは、免疫細胞の養子移 入である。養子免疫法は、直接的または間接的のいずれかで、抗腫瘍効果を媒介 し得る抗腫瘍活性を持つ細胞のように、活性な免疫学的薬品を腫瘍を有する宿主 に移入することであると定義される。養子免疫法は、新生物疾患治療の魅力的な アプローチを示す。活性な免疫学的薬品が宿主に移入されるので、完全な宿主の 免疫能(immunocompetence)は要求されないことは注目すべきである。従って、一 般に腫瘍を有している状態に関連する免疫抑制は、この治療選択に主要な問題を 示さない。宿主の免疫能が要求されず、そして、実際、免疫細胞の養子移入の効 果に利益をもたらし得るので、養子免疫法は、化学療法または放射療法などの他 の治療法と容易に組み合わせられ得る。また、他の治療法と対照的に、免疫抑制 はこの処置が原因するのではないようである。 化学療法または放射療法を受けている患者は、免疫無防備状態(immunocomprom ised)でありがちで、そして活性化に利用し得る末梢血単核細胞(PBMC)エフェク ターの供給は一般的に少ない。従って、低エフェクター細胞:標的細胞の割合で 効力を示す治療法は、このような患者にとって特に有益である。 新生物に対する免疫応答性は、様々な細胞タイプによって調節され、そしてT- 細胞および単核球由来のサイトカインの作用を伴う。組換えヒトサイトカインを 使用する養子免疫法は、生体外的に刺激された末梢血単核細胞(PBMC)の投与を包 含し[Phillipsら、J.Clin.Oncol.5:1933:(1987);Perussia,Curr.Opin.Immuno l.3:49:(1991)]、次にIL-2が投与される[Rosenbergら、J.Immunol.138:1779(198 5)]。PBMCの生体外処置は、活性化されたリンパ球-活性化キラー(LAK)細胞およ び様々な腫瘍細胞に対して細胞溶解活性を有する活性化された天然キラー(NK)細 胞を生成する。 組換えヒトIL-5[Nagasawaら、Cell.Immunol.133:317(1991)]、IL-7[Stotter およびLotze、Arch.Surgery 126:1525(1991)]およびIL-12[Gatelyら、J.Immunol .147:874(1991)]は、ヒトPBMCにおいて細胞溶解活性を刺激することが報告され た。インターロイキン-10(IL-10)は、当初、マウスにおいて特定のヘルパーT-細 胞サブセットにより分泌されるサイトカイン合成阻害因子として記載され、ネズ ミ細胞傷害性T-細胞の分化を調節するようである[ChenおよびZlotnik、J.Immuno l 147:528(1991)]。ヒトIL-10 cDNAでトランスフェクトされたCOS細胞から回収 された上清と共にインキュベートされたヒトPBMCが、インビトロで腫瘍細胞標的 を溶解することもまた見出された。IL-10に応答し、増加した細胞溶解潜在能を 有するT-細胞が、NK細胞を暗示するCD56+の表現型であることが同定された。 いくつかの情況において、IL-4は、IL-2によるLAK活性の生成に不利に影響し 得る[Naglerら、J.Immunol.141:2349(1988)]。例えば、ヒトPBMCがIL-2およびIL -4の両方の存在下で培養される場合、LAK感受性標的の溶解は、大きく減少する[ Spitsら、J.Immunol.141:29(1988)]。しかし、PBMCがIL-4を添加する前にIL-2を 補充した培地中で3日間前培養される場合、細胞溶解活性が増加する[Spitsら、 前述]。さらに、αインターフェロン(α-IFN)または腫瘍壊死因子α(TNF-α)が 、初めのインキュベーション混合液中に含まれる場合、IL-2が行う細胞傷害性の IL-4による阻害は減じられ得る[Swisherら、Cell.Immunol.128:450(1990)]。 Kedarら、[Cancer Immunol.Immunother.35:63(1992)]は、最近、IL-2およびα -IFNの連続投与が、マウス腫瘍モデルにおけるMCA-105肉腫およびM109ガンの処 置のために効果的な免疫療法処方であることを示した。本研究の主たる発見は、 サイトカインの連続投与が、両方のサイトカインの同時投与よりも大きな効果を 有するようであるということであった。 様々な疾患の処置(特にヒトにおける新生物疾患(ガン)の処置)のための治療様 式としての養子免疫法の可能性および効力は、Rosenbergらの米国特許第4,690,9 15号に記載された。しかし、上記で既に述べたように、IL-2を単独で用いる処置 と同じほど有毒性でない処置を行う方法が必要とされる。低い割合のエフェクタ ー細胞:標的細胞で効果的である治療法もまた必要とされる。 発明の要旨 本発明は、PBMC細胞の細胞溶解活性、特にLAK細胞およびNK細胞の細胞溶解活 性を増加するために、IL-10単独の使用、またはIL-2および/またはα-IFNを組 み合わせる使用の方法を提供することによってこれらの必要性を満たす。 より特定すると、本発明は効果量のIL-10活性化PBMCを、ガンで苦しむ患者に 投与して、このようなガンの症状を後退させる工程を包含するガンの処置の方法 を提供する。好ましくは活性化PBMCの投与はIL-10の投与を同時に行うおよび/ または後に行う。 1つの実施態様において、IL-10はLAK細胞の活性化を増加させるが、IL-2の単 独投与が原因の毒性副作用を生じない程度に十分な量のIL-2との組み合わせで投 与される。 別の実施態様において、IL-10はLAK細胞の活性化を増加するのに十分な量のα -IFNとの組み合わせで投与される。 さらに別の実施態様において、IL-10は(a)LAK細胞の活性化を増加させるが、I L-2の単独投与が原因の毒性副作用を生じない程度に十分な量のIL-2および(b)LA K細胞の活性化を増加するのに十分な量のα-IFNとの組み合わせで投与される。 本発明はさらに、内因性IL-4によるIL-2誘導細胞傷害性の阻害を中和する方法 であって、このような処置の必要に応じて、効果量のIL-10を患者に投与する工 程を包含する方法を提供する。 さらに本発明は、IL-2および/またはα-IFN、および薬学的に受容可能なキャ リアと組み合わせたIL-10を含有する、薬学的組成物を提供する。 好ましくは、ヒトIL-10、IL-2およびα-IFNが前記の方法および組成物におい て使用され、最も好ましくは、組換えヒトIL-10、IL-2およびα-IFNが使用され る。 発明の詳細な説明 本明細書中で引用される全ての参考文献は、それゆえ参考文献によってそれら 全体が参考として援用される。 本発明はNK細胞およびLAK細胞において細胞溶解活性を誘導するためにIL-2を 使用する先行技術の方法の改良である。本発明は、代表的に、先行技術の方法に おいてIL-2の使用が原因である毒性副作用を、IL-2を完全に除去するか、または 使用されるべきIL-2の量を大幅に減少させることによって大きく減少させる。 他で定義しない限り、本明細書中で使用される種々の用語は、本発明が向けら れた当該分野において十分に理解されるのと同じ意味を有する。 本明細書中で使用される、用語「養子免疫法」は、活性化された機能的な免疫細 胞を患者に移入することを包含する治療を意味する。好ましくは、これらの細胞 は、処置を受けている実際の患者から生じるLAK細胞およびNK細胞を含む。 用語「後退」は、当該分野において習慣的に測定されるように、1つまたはそれ 以上の腫瘍の大きさにおける測定可能な減少を意味するとして、本明細書中で定 義される。 本明細書中で使用される、「インターロイキン-10」または「IL-10」は、(a)米国 特許出願第07/917,806号、1992年6月20日出願(国際出願第WO 91/00349号に対応 )に開示されるように、成熟(例えば、分泌性のリーダー配列を欠失する)IL-10の アミノ酸配列を有するタンパク質、および(b)天然IL-10に共通の生物学的活性を 有するタンパク質として定義される。本発明の目的のために、グリコシル化(例 えば、CHO細胞などの真核細胞において産生される)IL-10、および非グリコシル 化(例えば、化学的に合成されるかまたはE.coliにおいて産生される)IL-10は等 価であり、および交換可能に用いられ得る。また、突然変異タンパク質(mutein) および他のアナログも包含され、IL-10の生物学的活性を有するBCRFI(Epstein B arr Virus viral IL-10)タンパク質を含む。 本発明で使用するために適切なIL-10は、多くの供給源から得られ得る。例え ば、IL-10は、このタンパク質を分泌している活性化細胞の培養培地から単離さ れ得る。さらに、IL-10、またはその活性フラグメントは、当該分野において公 知の標準的な技術を使用して化学的に合成され得る。Merrifield,Science 233:3 41(1986)およびAthertonら、Solid Phase Peptide Synthesis:A Practical Appr oach,1989,I.R.L.Press,Oxfordを参照のこと。 好ましくは、タンパク質またはポリペプチドは、IL-10ポリペプチドをコード する単離された核酸を使用する組換え技術によって得られる。分子生物学の一般 的な方法は、例えば、Sambrookら、Molecular Cloning,A laboratory Manual,Co ld Spring Harbor,New York,第2版,1989およびAusubelら(編)Current Protocol s in Molecular Biology,Green/Woley,New York(1987および定期増刊)に記載さ れている。適切な配列は、ゲノムライブラリーまたはcDNAライブラリーから標準 的な技術を使用して得られ得る。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)技術も使用され得 る。例えば、PCR Protocols:A Guide to Methods and Applications,1990,Innis ら(編)、Academic Press,New York,New Yorkを参照のこと。 ライブラリーは、適切な細胞から抽出された核酸から構築される。例えば、IL -10作製のための組換え方法を開示する国際出願公開第WO91/00349号を参照のこ と。例えば、種々の配列データベース(例えば、GenBankおよびBMPLまたはnuclei c acidおよびPIR、ならびにタンパク質のためのSwiss-Prot、c/o Intelligeneti cs、Mountain View,California、あるいはGenetics Computer Group、Universit y of Wisconsin Biotechnology Center,Madison,Wisconsinにおいて有用な遺伝 子配列が見出され得、本明細書中に参考として援用される。 ヒトIL-10をコードする配列を含有するクローンは、アメリカンタイプカルチ ャーコレクション(ATCC),Rockville,Marylandに受託番号68191および68192で寄 託された。IL-10をコードする配列を有する他のクローンの同定は、発現ベクタ ーが使用される場合、核酸ハイブリダイゼーションまたはコードタンパク質の免 疫学的検出のいすれかによって実施される。国際出願公開第WO 91/00349号に開 示される寄託配列に基づくオリゴヌクレオチドプローブは、特に有用である。オ リゴヌクレオチドプローブ配列はまた、他の種における関連遺伝子の保存領域か らも調製され得る。あるいは、IL-10のアミノ酸配列に基づく縮重(degenerate) プローブも使用され得る。 大量のポリペプチドを発現する形質転換原核細胞株、形質転換哺乳動物細胞株 、形質転換酵母細胞株、または形質転換昆虫細胞株を生成するために、標準的な 方法が使用され得る。発現およびクローニングの両方に適切な、例示的なE.coli 株はW3110(ATCC Bi,27325)、X1776(ATCC番号31244)、X2282,RR1(ATCC Mp/31343) を含む。例示的な哺乳動物細胞株は、COS-7細胞、マウスL細胞およびCHP細胞を 含む。Sambrook(1989)およびAusubelら、1987 増刊を参照のこと。 種々の発現ベクターが、IL-10をコードするDNAを発現するために使用され得る 。原核細胞または真核細胞において組み換えタンパク質を発現するために、使用 される習慣的なベクターが使用され得る。好ましいベクターは、Okayamaら、Mol .Cell.Biol 3:280(1983);およびTakebeら、Mol.Cell.Biol.8:466(1988)に記載 されたpcDベクターを含む。他のSV40をベースにした哺乳動物発現ベクターは、K aufmanら、Mol.Cell.Biol.2:1304(1982)および米国特許第4,675,285号に開示さ れるベクターを含む。これらのSV40をベースにしたベクターは、COS-7サル細胞( ATCC番号CRL1651)、およびマウスL細胞のような他の哺乳動物細胞において特に 有用である。Pouwelsら(1989および増刊)Cloning Vectors:A Laboratory Manual ,Elsevier,New Yorkを参照のこと。 IL-10は、形質転換されたまたはトランスフェクトされた酵母細胞または哺乳 動物細胞の分泌産物のような可溶化形態で産生され得る。次いで、このペプチド は当該分野において公知の標準的な手順により精製され得る。例えば、精製工程 は硫酸アンモニウム沈澱、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、電気泳動 、アフィニティークロマトグラフィーなどを包含し得る。Methods in Enzymolog y Purification Principles and Practices(Springer-Verlag,New York,1982)を 参照のこと。 あるいは、IL-10は、集合体(aggregate)または封入体などの不溶化形態で産生 され得る。このような形態のIL-10は、当該分野において周知の標準的な手順に よって、精製される。精製工程の例は、粉砕した宿主細胞からの遠心分離による 封入体の分離、次いで、カオトロピック剤による封入体の可溶化、およびペプチ ドが生物学的に活性な構造をとるための薬品の還元を包含する。これらの手順の 詳細については、例えば、Winklerら、Biochemistry,25:4041(1986);Winklerら 、Bio/Technology 3:9923(1985);Kothsらおよび米国特許第4,569,790号を参照 のこと。 宿主細胞をトランスフェクトするために使用されるヌクレオチド配列は、種々 の所望の特性を有するIL-10またはそのフラグメントを作製するための標準的な 技術に従って改変され得る。このような改変IL-10は、例えば、アミノ酸、挿入 、置換、欠失および融合によって、1次構造レベルで天然に生じる配列を変化さ せ 得る。これらの改変は最終的な改変タンパク質鎖を生成するために、多くの組み 合わせで使用され得る。 アミノ酸配列変異体は、考慮中の種々の目的によって調製され得、血清半減期 の増大、精製または調製を容易にすること、治療効果を改良すること、および治 療的使用の間、副作用の重篤度または発生を軽減することを含む。アミノ酸配列 変異体は、通常天然には見出されない予め決定されている変異体であるが、翻訳 後変異体(例えば、グリコシル化変異体、またはポリエチレングリコール(PEG)な どに結合されるタンパク質など)でもあり得る。このような変異体は、それらがI L-10の生物学的活性を保持している限り、本発明において使用され得る。 ポリペプチドをコードする配列の改変は、部位特異的変異[Gillmanら、Gene8: 81(1987)]のような種々の技術により容易に達成され得る。大部分の改変が、所 望の特徴に適切なアッセイで慣例的なスクリーニングによって評価される。例え ば、国際出願公開第WO 91/00349号は、IL-10活性を測定するのに適切な多くのイ ンビトロアッセイを記載した。 好ましくは、ヒトIL-10は、ヒトの処置に使用されるが、ウイルスIL-10または いくつかの他の哺乳動物種由来のIL-10もおそらく使用され得る。最も好ましく は、使用されるIL-10は組換えヒトIL-10である。ヒトIL-10およびマウスIL-10の 調製は、国際出願第WO 91/00349号に記載された。エプスタインバーウイルス由 来のウイルスIL-10(BCRF1タンパク質)のクローニングおよび発現はMooreら、Sc ience 248:1230(1990)に開示された。組換えヒトIL-10はまた、例えば、Prepro Tech,Inc.,Rocky Hill,NJから商業的に購買可能な商品である。 本発明の方法による処置に適切な個体は、PBMC細胞溶解活性、特にLAK細胞活 性化およびNK細胞細胞活性化の刺激から利益を受ける新生物疾患を有する任意の 個体を含む。具体的なガン患者は、例えば、上記の特許およびRosenbergのScien tific Americanの論文に記載される。また、本発明の方法による処置に適切な個 体は、内因性IL-4レベルの上昇が前もって処理される患者であり、その結果IL-4 は、細胞溶解の活性のIL-2活性化をブロックする。このような個体において、好 ましい処置はIL-2投与の前にIL-10で予め処置することを包含する。 本発明の使用のためのIL-10を作製する記載された標準的な方法および技術は 、 IL-2およびα-IFNを作製するためにもまた使用され得る。本発明の使用のための IL-2およびα-IFNもまた、商業的供給源から入手可能である(例えば、IL-2はCet us,Corporation,Emeryville,CAから入手可能であり、そしてα-IFNはScherimg C orp.,Kenilworth,NJから入手可能である)。 PBMC(好ましくは、処置される患者から標準的な方法によって得られる)の生体 外活性化およびこのような細胞の投与は、IL-10が減少したレベルのIL-2および /またはα-IFNと共に本明細書に記載されるように使用される以外は、本質的に は上記のRosenbergの参考文献に記載されるように行われる。投与される活性化P BMCの数は、約106細胞〜約1012細胞の範囲内である。好ましくは、必ずしも必要 ではないが、このような活性化細胞の投与は、本明細書で記載のようにIL-10の 投与を同時に行うかおよび/または後から行う。 1つの実施態様において、PBMCは、予めIL-10で処置する(例えば、4ng/ml(10 0ユニット/ml)、または40ng/mlのヒトIL-10の存在下で37℃で約3日間インキュ ベートする)ことによって、活性化される。次いで細胞を遊離IL-10を取り除くた めに洗浄し、そして低レベルのIL-2(代表的に約2ユニット/ml)を添加する。 IL-10単独でまたは本明細書中で使用の他のサイトカインとの組み合わせによ り活性化された細胞溶解性細胞の投与は、好ましくは静脈内注射による。このこ とは、例えば中心静脈カテーテルを介して、大末梢静脈中に、または経皮カテー テルを介して肝動脈中に行われる。 IL-10は、一般的に、薬学的キャリアおよび効果量のIL-10単独、またはIL-2お よび/またはα-IFNとの組み合わせを包含する薬学的組成物として投与される。 薬学的キャリアは、患者への本発明の送達に適切な任意の適合性の非毒性物質で あり得る。このような薬剤の非経口投与に有用な組成物は周知であり、例えば、 Remington's Pharmaceutical Science,15版(Mack Publishing Company,Easton,P A,1980)を参照のこと。あるいは、本発明の組成物は、移植可能なまたは注射可 能な薬物送達システム(例えば、Urquhartら、Ann.Rev.Pharmacol.Toxicol.24:1 99(1984);Lewis編、Controlled Release of Pesticides and Pharmaceuticals( Plenum Press,NY,1981);米国特許第3,270,960号など)によって患者の身体に導 入され得る。 サイトカイン投与は、任意の周知の投与の経路によって行われ得、静脈内投与 、腹腔内投与および皮下投与を包含する。静脈内投与が好ましい。 非経口的に投与される場合、組成物は、薬学的キャリアと一緒に単位投薬量の 注射可能な形態(溶液、懸濁液、乳濁液)で処方される。このようなキャリアの例 は、通常の生理食塩水、Ringer's溶液、デキストロース溶液およびHank's溶液で ある。固定油およびオレイン酸エチル(ethyl oleate)などの非水性キャリアもま た使用され得る。好ましいキャリアは、5%デキストロース/生理食塩水である 。キャリアは、例えば、緩衝液および保存剤などの浸透圧安定性および化学安定 性を増強する物質のような少量の添加物を含有し得る。IL-10は、好ましくは、 約5〜20μg/mlの範囲の濃度で集合体および他のタンパク質が実質的に存在しな い精製された形態で処方される。 本発明の組成物はまた、標準的な遺伝子治療技術(例えば、組織への直接DNA注 入、組換えウイルスベクターの使用およびトランスフェクトされた細胞の移植を 含む。)によって送達され得る。例えば、Rosenberg,J.Clin.Oncol.10:180(1992 )を参照のこと。 本明細書に記載の1つ以上の治療剤の同時投与は、付随的(IL-10の投与と共に )または連続的であり得る。好ましくは、IL-10はIL-2の投与の前に投与される。 α-IFNの投与はIL-10および/またはIL-2に付髄するか、あるいは連続的である 。腫瘍を後退させるのに治療的に効果的である十分なレベルで、すべての投与剤 が患者中に存在すべきである。 本明細書中で使用される用語「効果量」は、養子免疫法における副作用を減じる かまたは阻止するために十分であり、同時にLAK細胞およびNK細胞の細胞溶解活 性を促進するのに十分なIL-10の容量を意味する。特定の患者に必要とされるサ イトカインの効果量は、処置する新生物疾患の状態およびタイプ、患者の全体的 な健康度、投与の方法、副作用の重篤度、同時に使用される他の薬物の量および 種類などの要因に依存して変化し得る。 「LAK細胞の活性化を増加するために十分な」サイトカインの量は、Daudi細胞を 基にした細胞溶解アッセイにおいて、IL-10のみによって誘導される細胞溶解活 性のレベルにおいて、少なくとも約25%の増加を生じるために必要なサイトカイ ンの量を意味すると本明細書中で定義する。好ましくは、増加は少なくも約50% であり、最も好ましくは、少なくとも約100%である。 好ましくは、IL-10は、最大限に許容される用量で投与され、1日当たり約10U /kg体重〜約108U/kg体重である。同様に、IL-2およびα-IFNもまた最大限に許容 される用量で投与される(例えば、IL-2用量は:105U/kg体重が、キャリアとして 5%のアルブミンを有する0.9%の生理食塩水50mlで、8時間毎に静脈内に与えら れる;α-IFN用量は:106U/Kg体重が、キャリアとして5%のアルブミンを有する 0.9%の生理食塩水で、8時間毎に静脈内で与えられる)。以前に述べたように、 投薬量は、かかる医師によって調製され、各個人の患者に許容可能であると決め られた容量の限度内である。 本発明の方法はまた、ガン処置に対する習慣的アプローチ(例えば、放射線療 法、およびVincaアルカロイド、プラチナ化合物、および5-フルオロウラシルの ような習慣的な化学療法剤を使用する化学療法)とも組み合わされ得る。 IL-10単独または他のサイトカインとの組み合わせによるヒト末梢血単核細胞 の処置は、ヒト腫瘍標的に対する細胞溶解活性の増加を導く。免疫療法の効力は 、大部分、腫瘍荷(tumor burden)に依存しているので、大量の一次腫瘍マスが切 除された後、本明細書中に記載される処置方法を使用することは特に有用である 。代表的に手術部位で生じる炎症性反応もまた、治療的成果に有益であり得る。 実施例 以下の制限されない実施例を、本発明の例証として提供する。ヒト末梢血単核細胞における細胞溶解活性に対するIL-10の効果 ヒト末梢血単核細胞における細胞溶解活性のインビトロ生成に対するIL-10の 効果を研究した。結果は、以下のようにまとめ得る。 1.IL-10は、ヒト末梢血単核細胞において、リンホカイン活性化キラー(LAK) 活性およびナチュラルキラー(NK)活性を刺激する。IL-10が行う細胞溶解活性は 、IL-10に対するラットのモノクローナル抗体によって中和化され得る。 2.CHO発現系およびE.coli発現系に由来するIL-10は、LAK活性およびNK活性 の刺激において同様の濃度応答パターンを示し、従って生物学的に等価である。 3.IL-10および低濃度のIL-2で処置したPBMCは、いずれかのサイトカイン単 独単独の場合に観察されるよりも高いLAK活性を示す。 4.予め2日間IL-10で処理したPBMCは、続くIL-2の投与に際して増加した細 胞溶解活性を示す。 5.IL-10は、IL-2で誘導されるLAK活性を阻害するIL-4の能力を弱める。 6.IL-10にIL-2を加えると、エフェクター細胞:標的細胞の低い比率で、増 強されたLAK細胞溶解活性を生じる。 PBMCで見られる効果に加えて、IL-10の存在下で培養された内皮細胞は外因性 因子(すなわち、γ-IFNおよびTNF-α)に対して弱められていない応答を示すこと が見出されたが、IL-2の存在下でインキュベートされた内皮細胞は、IL-2の毒性 のため応答しなかった。材料および方法 組換えヒトサイトカインおよび抗IL-10抗体 組換えヒトIL-10(E.coli由来およびCHO由来の両方)を、標準的な方法によって 生成した。標準的な方法による精製に従って得られた比活性は、MC-9細胞増殖ア ッセイ[Thompson-Snipesら、J.Exp.Med.173:507(1991)]によって測定されたよ うに、4.1×107ユニット/mg(E.coli)および2.1×107ユニット/mg(CHO)であった 。従って、約4ngの本質的に均一なIL-10は、約100ユニットの生物学的活性を有 すると規定した。 19F1と呼ばれるラット抗ヒトIL-10モノクローナル抗体を、Molecular Biology ,Palo Alto,CAのthe DNAX InstituteのDr.John Abramsから得た。ヒト末梢血単核細胞(PBMC)の単離 末梢血を、ヘパリンまたはEDTAを抗凝固剤として使用して、健康な成人のドナ ーから静脈穿刺により得た。PBMCを、デキストラン沈澱法、次いでFICOLL PAQU 主にリンパ球および単球からなる境界面のバンドを回収し、そして10%ウシ胎児 血清を含有するRPMI(完全培地)(JRH Biosciences)で少なくとも2回洗浄した。細胞傷害性アッセイ Daudi(LAK感受性)標的細胞およびK562(NK-感受性)標的細胞を、American Type Tissue Collectionから、それぞれ、受託番号CCL 213およびCCL 243で得た。Sp itsら[J.Immunol.141:29(1988)]によって記載されたように、DaudiおよびK562 を51Crで標識した。培養期間の後、PBMC細胞を回収し、2回洗浄し、そして51Cr 放出アッセイ(Spitsら、前出)においてエフェクター細胞として使用した。V型底 96ウェルプレートの100μl中で、51Cr標識で標識された5×103の標的細胞を、 エフェクター細胞の数を変化させて(E/T=20:1;5:1および2:1)混合し た。このプレートを、湿潤5% CO2雰囲気中で、4時間、37℃でインキュベート する前に、5分間、1000rpmで遠心分離した。4時間後、プレートを5分間、500 ×g し、そしてγカウンター(LKB-Pharmacia)でカウントした。51Crで標識された標 的を1%のSDSとインキュベートすることにより細胞の全溶解を測定した。データ は、3回の測定の平均値として表した。 溶解パーセントは、以下のように計算される: ヒトPBMCとサイトカインとのインキュベーション a. IL-10単独でのインキュベーション 上記のように単離したPBMCを、特定しない限り、10%ウシ胎児血清を含有し、 IL-10またはヒトIL-10(CHO)を補充したRPMI-1640中で、1×106細胞/mlの濃度 で、37℃で3日間維持した。細胞溶解活性を上記のように測定した。 b. IL-10とIL-2との同時インキュベーション ヒトIL-2(Genzyme)(2または20U/ml)と共にまたはなしで、4ng/mlのIL-10とPB MCを37℃で3日間インキュベートした。 c. IL-10とIL-2との連続インキュベーション PBMCを完全培地中で2日間、4ng/mlのIL-10とインキュベートした。ヒトIL-2 を最終濃度2U/mlまたは20U/mlで添加した。一晩インキュベーションした後、LA K細胞溶解活性およびNK細胞溶解活性を測定した。LAK細胞およびNK細胞のIL-10活性に対する抗IL-10モノクローナル抗体の効果 PBMCを、2μg/mlの抗IL-10モノクローナル抗体(19F1)またはアイソタイプコ ントロール(ラットIgG2a)の存在下で、40ng/mlのIL-10と3日間インキュベート した。ヒト末梢血単核細胞中のリンホカイン活性化キラー細胞およびナチュラルキラー 細胞の細胞溶解活性に対するIL-10の効果 LAK細胞およびNK細胞の細胞溶解活性は、使用される標的腫瘍細胞に基づいて 、作用によって(operationally)区別され得る。ヒトBurkitt'sリンパ腫に由来す るDaudi細胞は、活性化されたLAK細胞の細胞溶解解活性の、習慣的な標的である 。K562細胞株由来の細胞は、ヒト赤白血病細胞株であり、活性化されたNK細胞の 細胞溶解活性の特異的な標的として使用される。これらの実験において、ヒトPB MCを、3日間、種々の濃度のIL-10で処理した。細胞溶解活性を上記の標準的な5 1 Cr放出アッセイで測定した。 LAK活性に基づく結果を表1に示し、標準誤差は平均値の下に示される。 表1のデータは、6人のヒトドナーから得られたPBMCでの、IL-10のLAK活性に 対する効果を示す。ドナー間の変動が明白であるが、IL-10は、6人の全てのド ナーにおいて、細胞溶解能力の濃度依存的増加を誘導した。統計学的に有意な活 性(p≦0.05)が、0.4ng/ml以上のIL-10の濃度で観察された。5%のベースレベル 以下の細胞溶解活性(すなわちサイトカインの非存在下において)を示すドナーの PBMCは、試験した全てのエフェクター細胞:標的細胞の比で、IL-10に最も応答 した(データ示さず)。 他の腫瘍標的細胞(ヒト腎臓細胞癌腫株、2つの異なるヒト黒色腫株およびヒ ト結腸ガン株を含む)に対して、同様の結果を得た。腎臓癌腫細胞株および黒色 腫細胞株はまた、Rosenbergによって使用され、そしてこのような腫瘍を有する 患者は、Rosenbergによって、IL-2を用いる養子免疫法を使用して、インビボで 処置された。全ての場合において、標的細胞の溶解パーセントは、IL-10の濃度 に依存性であった。 別の実験において、IL-10単独またはIL-2との組み合わせは、U937細胞(ヒト組 織球腫)、SW620(ヒト結腸ガン)、およびSKBR3細胞(ヒト乳ガン)に対する細胞溶 解活性の増加を導くことが見出された。HS294T細胞(ヒト黒色腫)を標的として使 用した実験において、IL-10は、試験した用量での応答を導かないようであった 。 基礎的なNK細胞溶解活性(すなわち、サイトカイン非存在下でのK562標的の溶 解)は、基礎的なLAK活性よりも高い傾向を示した。NK活性は、IL-2のようなサイ トカインによって、さらに増加され得た[Perussia、上記;PhillipsおよびLanie r,J.Exp.Med 164:814(1986)]。 NK活性に対するIL-10の効果を、上記の同じ6人のドナー由来のPBMCにおいて 評価し、実験は、LAKアッセイと平衡して行った。結果を表2に示す。標準誤差 を平均値の下に示す。 表2から明らかなように、ドナー由来のPBMCにおいて、IL-10はNK細胞が仲介 する細胞傷害性の有意な用量依存性の増強を誘導した。4ng/ml以上のIL-10の濃 度での溶解活性において、統計学的に有意な増加があった。LAK活性の場合のよ うに、NK活性に対するIL-10の効果は、ドナー間で変化した。内皮細胞に対するIL-2の効果とIL-10の効果との比較 IL-10に曝露後の内皮細胞一重層の生存性を評価するために実験を行った。IL- 10の存在下で培養した内皮細胞は、外因性サイトカイン(γ-IFNおよびTNF-α)に 対して弱められていない応答を示したが、同じインキュベーション期間で同単位 の用量のIL-2に曝露した平行培養物は、IL-2の毒力に起因して応答能力を失って いた。LAK細胞およびNK細胞のIL-10活性化に対する抗IL-10モノクローナル抗体の効果 表3および表4に示すように、平均値は標準誤差と共に示されており、40ng/m l IL-10によるLAK細胞溶解活性およびNK細胞溶解活性の剌激は、それぞれ、2μ g/mlの抗IL-10モノクローナル抗体19F1の存在下で3倍量(p≦0.05)減少した。 2μg/mlのラットIgG2aアイソタイプコントロール抗体を代わりに使用して得ら れた結果は、40ng/mlのIL-10を単独で使用して得られる結果と統計学的に区別が つかない細胞溶解活性のレベルを生じた。 IL-10および他のサイトカインとの組み合わせにより誘導される細胞溶解活性 a.IL-10およびIL-2の同時インキュベーション ヒトPBMCを、IL-10の存在下、5:1のエフェクター対標的の比を用いて、準 最大(submaximal)刺激濃度のIL-2(2U/mlまたは20U/ml)でインキュベートした。 表5に結果を示し、標準誤差は平均値の下に示す。 表5に示すように、2U/mlのIL-2と4ng/mlのIL-10との同時インキュベーショ ンの後では、LAK活性(エフェクター細胞:標的細胞の比は5:1)において付加 的な増加があった。この活性レベルは、どちらかのサイトカイン単独において見 られるよりも著しく高く、10倍高い濃度のIL-2を用いて生成されるレベルに近づ いた。この結果は、Studentのt-検定により測定されたp≦0.05で統計学的に有 意であった。 b.IL-10およびα-IFNの同時インキュベーション IL-10およびα-IFNで同時インキュベートしたPBMCは、Daudiに対する細胞溶解 活性の類似する付加的な増加を示すが、NK標的細胞は示さない。このことは、表 6に示されており、表6中で標準誤差を、平均値の下に示す。 ドナーPBMCにおいて、IL-10またはα-IFN単独によって誘導される細胞溶解活 性と比べて、IL-10およびα-IFNによって誘導される細胞溶解活性で観察される 違いは、Studentのt-検定により決定されたp<0.05で統計学的に有意であった 。 反対に、IL-10およびIL-4、IL-5、GMCSFまたはγ-IFNとの同時インキュベーシ ョンは、IL-10単独よりも効果的ではなかった(データは示さず)。IL-10およびIL-2の連続インキュベーション 上記の手順を使用して、PBMCを培地単独またはIL-10を補充した培地中で維持 した。2日後、IL-2を最終濃度2U/mlまたは20U/mlの濃度で添加した。さらに一 晩インキュベートした後に、Daudi細胞に対する細胞傷害性活性を評価した。5 人のドナーのプールから得た結果を表7に示す。表7において、平均値の標準誤 差を平均値の下に示す。 表7に示すように、ドナーPBMCをIL-2の添加の前にIL-10で予め処置したグル ープにおいて、IL-2を添加する前に完全培地単独中で維持される培養物において 観察されるレベル(41.7%+/-11.4)に比べると、約2倍高いレベル(71.8+/-17.9%) の細胞溶解活性が観察された。IL-10で予め処置したサンプルとIL-10で処置しな かったサンプルとの間で観察される相違は、p≦0.14で統計学的に有意であった 。 増強された細胞溶解活性の類似パターンが、IL-10に続いてα-IFNによる連続 インキュベーションにおいて見られた(データは示さず)。IL-2誘導細胞傷害性の、IL-10およびIL-4による妨害 6人のヒトドナー由来のPBMCを、20U/mlのIL-2のみを含有する培地、20U/mlの IL-2と1000U/mlのIL-4を含有する培地、または20U/mlのIL-2と1000U/mlのIL-4と 4ng/mlのIL-10とを含有する培地中で培養した。結果を表8に示す。表8におい て、平均値の標準誤差を平均値の下に示す。 表8のデータは、20U/mlのIL-2のみでの処置の後に、LAK感受性標的の約34.2% の溶解が観察されたことを示す。1000U/mlのヒトIL-4をインキュベーション期間 の開始時から含んだ場合、細胞溶解能力は約2倍抑制された。しかし、インキュ ベーションの最初の24時間の間に4ng/mlのIL-10を添加した場合、IL-4によるこ の抑制は観察されなかった。 IL-2単独によって生じる結果と、これらの3つ全てのサイトカインを共に使用 することによって得られる結果との間に有意な差は見られず(Studentのt-検定に より決定された、p≦0.05)、IL-10の阻害による拮抗作用が本質的に完全である ことを示す。 本発明の多くの改変および変型が、当業者に明白になるように、本発明の意図 および範囲から逸脱することなくなられ得る。本明細書で記載した特定の実施態 様は、実施例としてのみ提供され、そして本発明は添付の請求項の用語によって のみ、限定される。Detailed Description of the Invention             Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cytolytic activity   The present invention, by stimulating the cytolytic activity of peripheral blood mononuclear cells (PBMC), a neoplastic disease ( For the use of adoptive immunotherapy in the treatment of cancer. Leukin-10 (IL-10), formally related to the use of cytokine synthesis inhibitor (CSIF) .                                Background of the Invention   Immunological approaches to the treatment of cancer include, for example, Klein (Immunology, Wiley-Int erscience, New York, 1982, pp.623-648). , Somehow defuse the body's defenses against abnormal or foreign cells and molecules Evasion, and these defenses, can block or inhibit the growth of cancer cells. It is based on the concept that it can be stimulated therapeutically. Immune effector The recent observation that tumor growth can be directly or indirectly inhibited has been associated with cancer treatment. Has led to new interest in this approach [Heberman, Concepts Immu nopath. 1:96 (1985) (natural killer cells resist tumor growth); Rosenberg Et al. Ann. Rev. Immunol. 4: 681 (1988) (use of IL-2-activated killer cells to t reat cancer); Ralf et al., J. Exp. Med 167: 712 (1988) (tumoricidal activity of ma. crophages stimulated by lymphokines); Tepper et al., Cell 57: 503 (1989) (IL-4 h as tumoricidal activity); M. Cohen, "lymphokines and Tumor Immunity], pp.2 37-253 S. Cohen, Lymphokines and the Immune Response (CRC Press, Boca Rat on, 1990)]].   Immune responsiveness to neoplasms is regulated by various cell types, and It is accompanied by the action of cytokines derived from T-cells and mononuclear cells. One showing clinical promise The immunological approach of the so-called "adoptive immunization method" using IL-2 activated killer cells [Rosenberg, supra, Sci. Am. pp.62-69 (May 1990)]. IL-2 alone or Combinations with more addictive chemotherapeutic agents have been associated with certain malignancies (e.g. , But is associated with the administration of an effective dose of IL-2, For unwanted toxic side effects such as vascular bed leakage and edema Suggest that risk outweighs profit [Cotran et al., J. Immunol. 139: 1882 ( 1987); Edwards et al., Cancer Res. 52: 3425 (1992)].   Human vascular endothelial cells have increased vascular permeability (i.e. vascular leak syndrome) and It appears to be particularly susceptible to IL-2 toxicity, as evidenced by edema. This disease One of the contributing factors to science, as previously noted in vitro [Edwards et al. , Supra; Damle et al., 138: 1779 (1987)], endothelial monolayers of IL-2-activated T cells and neutrophils. Can be an increase in adhesions to.   Another therapeutic approach to immunological treatment of neoplastic diseases is adoptive transfer of immune cells. It is on. Adoptive immunity mediates anti-tumor effects either directly or indirectly Tumor-bearing host with active immunological agents, such as cells with potential anti-tumor activity Is to be populated. Adoptive immunity is an attractive treatment for neoplastic diseases Show approach. Since the active immunological drug is transferred to the host, It should be noted that immunocompetence is not required. Therefore, one Immunosuppression, commonly associated with tumor-bearing conditions, poses a major challenge to this treatment choice. Not shown. The immunity of the host is not required, and in fact the effect of adoptive transfer of immune cells Adoptive immunization is not used for other purposes such as chemotherapy or radiation therapy because it can benefit the fruit. Can be easily combined with the above treatment methods. Also, in contrast to other treatments, immunosuppression Seems not to be the cause of this treatment.   Patients undergoing chemotherapy or radiation therapy may be immunocompromised (immunocomprom Peripheral blood mononuclear cell (PBMC) effects that tend to be ised) and available for activation The supply of tar is generally small. Therefore, in the ratio of low effector cells: target cells Efficient therapies would be particularly beneficial to such patients.   Immune responsiveness to neoplasms is regulated by various cell types, and T- It is accompanied by the action of cytokines derived from cells and monocytes. Recombinant human cytokine The adoptive immunization method used involves the administration of in vitro stimulated peripheral blood mononuclear cells (PBMC). Include [Phillips et al., J. Clin. Oncol. 5: 1933: (1987) ; Perussia, Curr.Opin.Immuno l.3: 49: (1991)], followed by IL-2 [Rosenberg et al., J. Immunol. 138: 1779 (198). Five)]. In vitro treatment of PBMC involves activation of activated lymphocyte-activated killer (LAK) cells and And activated natural killer (NK) cells with cytolytic activity against various tumor cells Generate a cell.   Recombinant human IL-5 [Nagasawa et al., Cell. Immunol. 133: 317 (1991)], IL-7 [Stotter And Lotze, Arch. Surgery 126: 1525 (1991)] and IL-12 [Gately et al., J. Immunol. .147: 874 (1991)] was reported to stimulate cytolytic activity in human PBMCs. Was. Interleukin-10 (IL-10) was initially identified as a specific helper T-cell in mice. Described as a cytokine synthesis inhibitor secreted by vesicle subsets. It appears to regulate the differentiation of mitotoxic T-cells [Chen and Zlotnik, J. Immuno. l 147: 528 (1991)]. Recovered from COS cells transfected with human IL-10 cDNA Human PBMCs incubated with incubated supernatant target tumor cells in vitro Was also found to dissolve. Responds to IL-10 with increased cytolytic potential Having T-cells were identified to be the CD56 + phenotype implying NK cells.   In some situations, IL-4 adversely affects the production of LAK activity by IL-2. Obtain [Nagler et al., J. Immunol. 141: 2349 (1988)]. For example, human PBMC has IL-2 and IL Lysis of LAK-sensitive targets is greatly reduced when cultured in the presence of both -4 [ Spits et al., J. Immunol. 141: 29 (1988)]. However, IL-2 was added to the PBMC before it was added. Cytolytic activity increases when pre-cultured in supplemented medium for 3 days [Spits et al. Above]. In addition, alpha interferon (alpha-IFN) or tumor necrosis factor alpha (TNF-alpha) , The cytotoxicity of IL-2 when included in the initial incubation mixture Inhibition by IL-4 can be reduced [Swisher et al., Cell. Immunol. 128: 450 (1990)].   Kedar et al. [Cancer Immunol. Immunother. 35:63 (1992)] recently reported IL-2 and α. -Continuous administration of IFN treats MCA-105 sarcoma and M109 cancer in a mouse tumor model It was shown to be an effective immunotherapy prescription for placement. The main findings of this research are Sequential administration of cytokines is more effective than simultaneous administration of both cytokines Was to have.   Therapies for the treatment of various diseases, especially neoplastic diseases (cancer) in humans The potential and efficacy of adoptive immunization as a formula has been demonstrated by Rosenberg et al., U.S. Pat. Described in No. 15. However, as already mentioned above, treatment with IL-2 alone There is a need for methods of performing treatments that are not as toxic as. Low percentage effectors -Cells: There is also a need for therapeutics that are effective with target cells.                                Summary of the Invention   The present invention is directed to the cytolytic activity of PBMC cells, in particular of LAK cells and NK cells. Use of IL-10 alone or in combination with IL-2 and / or α-IFN to increase sex These needs are met by providing a method of interlocking use.   More particularly, the present invention provides an effective amount of IL-10 activated PBMC to patients suffering from cancer. Method of treating cancer comprising administering to reverse the symptoms of such cancer I will provide a. Preferably the administration of activated PBMC is concomitant with the administration of IL-10 and / or Or later.   In one embodiment, IL-10 increases activation of LAK cells, but IL-2 alone. Administration in combination with IL-2 in an amount sufficient to prevent toxic side effects caused by single administration Given.   In another embodiment, IL-10 has an amount of α sufficient to increase LAK cell activation. -Administered in combination with IFN.   In yet another embodiment, IL-10 (a) increases LAK cell activation, but I A sufficient amount of IL-2 and (b) LA to cause no toxic side effects due to the single administration of L-2 It is administered in combination with α-IFN in an amount sufficient to increase activation of K cells.   The invention further provides a method of neutralizing the inhibition of IL-2-induced cytotoxicity by endogenous IL-4. Depending on the need for such treatment, an effective amount of IL-10 may be administered to the patient. A method is provided that includes:   Furthermore, the present invention relates to IL-2 and / or α-IFN, and a pharmaceutically acceptable carrier. Provided is a pharmaceutical composition containing IL-10 in combination with L.   Preferably human IL-10, IL-2 and α-IFN are present in the above methods and compositions. Most preferably recombinant human IL-10, IL-2 and α-IFN You.                             Detailed description of the invention   All references cited herein are therefore incorporated by reference. The whole is incorporated by reference.   The present invention uses IL-2 to induce cytolytic activity in NK and LAK cells. It is an improvement on the prior art methods used. The present invention typically resides in prior art methods. To eliminate the toxic side effects caused by the use of IL-2, completely eliminate IL-2, or Significantly reduced by greatly reducing the amount of IL-2 to be used.   Unless otherwise defined, various terms used in this specification are directed to the present invention. Has the same meaning as is well understood in the art.   As used herein, the term "adoptive immunity" refers to activated functional immunological immunity. Treatment of the bleb to the patient. Preferably these cells Includes LAK cells and NK cells that originate from the actual patient undergoing treatment.   The term "receding" refers to one or more, as routinely measured in the art. These are defined herein as meaning a measurable reduction in tumor size. Is meant   As used herein, "interleukin-10" or "IL-10" refers to (a) US Patent application No. 07 / 917,806, filed June 20, 1992 (corresponding to International Application No. WO 91/00349 ) Of mature (e.g., lacking a secretory leader sequence) IL-10 A protein having an amino acid sequence and (b) a biological activity common to natural IL-10. Is defined as having a protein. For the purposes of the present invention, glycosylation (eg IL-10, produced in eukaryotic cells such as CHO cells, and non-glycosyl IL-10 (e.g., chemically synthesized or produced in E. coli) is Valuable and can be used interchangeably. In addition, mutein BCRFI (Epstein B), which has the biological activity of IL-10, is also included. arr Virus viral IL-10) protein.   IL-10 suitable for use in the present invention can be obtained from many sources. example For example, IL-10 was isolated from the culture medium of activated cells secreting this protein. Can be Furthermore, IL-10, or an active fragment thereof, is not known in the art. It can be chemically synthesized using standard techniques known in the art. Merrifield, Science 233: 3 41 (1986) and Atherton et al., Solid Phase Peptide Synthesis: A Practical Appr. oach, 1989, I.R.L. See Press, Oxford.   Preferably the protein or polypeptide encodes an IL-10 polypeptide Obtained by recombinant technology using the isolated nucleic acid. General of molecular biology For example, Sambrook et al., Molecular Cloning, A laboratory Manual, Co. ld Spring Harbor, New York, 2nd Edition, 1989 and Ausubel et al. (eds.) Current Protocol s in Molecular Biology, Green / Woley, New York (1987 and special edition). Have been. Appropriate sequences are standardized from genomic or cDNA libraries Can be obtained using conventional techniques. Polymerase chain reaction (PCR) techniques may also be used. You. For example, PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, 1990, Innis (Eds.), Academic Press, New York, New York.   The library is constructed from nucleic acids extracted from the appropriate cells. For example, IL See International Application Publication No. WO 91/00349, which discloses a recombination method for producing -10. When. For example, various sequence databases (eg GenBank and BMPL or nuclei Swiss-Prot, c / o Intelligeneti for c acid and PIR, and proteins cs, Mountain View, California, or Genetics Computer Group, Universit y of Wisconsin Biotechnology Center, Madison, Wisconsin Useful Genetics Child sequences can be found and are incorporated herein by reference.   A clone containing the sequence encoding human IL-10 is an American type culture. Collection (ATCC), Rockville, Maryland with accession numbers 68191 and 68192. Was entrusted. The identification of other clones containing sequences encoding IL-10 is described in Expression Vectors. Nucleic acid hybridization or encoding protein exclusion Performed by any of the epidemiological detections. Opened in International Application Publication No. WO 91/00349 Oligonucleotide probes based on the deposited sequences shown are particularly useful. Oh Is the ligonucleotide probe sequence also a conserved region for related genes in other species? Can also be prepared. Alternatively, degenerate based on the amino acid sequence of IL-10 Probes may also be used.   Transformed prokaryotic cell line expressing large amount of polypeptide, transformed mammalian cell line , To produce a transformed yeast cell line, or a transformed insect cell line, Methods can be used. An exemplary E. coli suitable for both expression and cloning Strains are W3110 (ATCC Bi, 27325), X1776 (ATCC No. 31244), X2282, RR1 (ATCC Mp / 31343). including. Exemplary mammalian cell lines include COS-7 cells, mouse L cells and CHP cells. Including. See Sambrook (1989) and Ausubel et al., 1987 supplement.   Various expression vectors can be used to express DNA encoding IL-10 . Used to express recombinant proteins in prokaryotic or eukaryotic cells Customary vectors can be used. Preferred vectors are Okayama et al., Mol. .Cell.Biol 3: 280 (1983); and Takebe et al., Mol.Cell.Biol. 8: 466 (1988) Included pcD vector. Other SV40-based mammalian expression vectors are aufman et al., Mol. Cell. Biol. 2: 1304 (1982) and U.S. Pat.No. 4,675,285. Included vectors. These SV40-based vectors are available in COS-7 monkey cells ( ATCC No. CRL1651), and especially in other mammalian cells such as mouse L cells. Useful. Pouwels et al. (1989 and special edition) Cloning Vectors: A Laboratory Manual , Elsevier, New York.   IL-10 can be used to transform transformed or transfected yeast cells or mammalian cells. It can be produced in solubilized form, such as the secreted product of animal cells. Then this peptide Can be purified by standard procedures known in the art. For example, the purification process Ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography, gel filtration, electrophoresis , Affinity chromatography and the like. Methods in Enzymolog y Purification Principles and Practices (Springer-Verlag, New York, 1982) See.   Alternatively, IL-10 is produced in an insolubilized form such as an aggregate or inclusion body. Can be done. Such forms of IL-10 are compatible with standard procedures well known in the art. Therefore, it is purified. An example of a purification process is by centrifugation from crushed host cells. Inclusion body separation, then inclusion body solubilization with chaotropic agents, and peptization It involves the reduction of a drug to give it a biologically active structure. Of these steps For details, see, for example, Winkler et al., Biochemistry, 25: 4041 (1986); Winkler et al. See Bio / Technology 3: 9923 (1985); Koths et al. And US Pat. No. 4,569,790. That.   The nucleotide sequences used to transfect host cells may vary. Standard for making IL-10 or fragments thereof with the desired properties of It can be modified according to the technique. Such modified IL-10 includes, for example, amino acids, insertions , Substitutions, deletions and fusions alter the naturally occurring sequence at the primary structural level. Let obtain. These modifications are often combined in order to produce the final modified protein chain. Can be used together.   Amino acid sequence variants can be prepared for a variety of purposes under consideration, with serum half-life , Facilitating purification or preparation, improving therapeutic effect, and healing. Includes reducing the severity or occurrence of side effects during therapeutic use. Amino acid sequence A variant is a predetermined variant that is not normally found in nature, but Post-mutants (e.g., glycosylation variants, or polyethylene glycol (PEG) To which it is bound, etc.). Such mutants are As long as the biological activity of L-10 is retained, it can be used in the present invention.   Modification of the sequence encoding the polypeptide is a site-specific mutation [Gillman et al., Gene 8: 81 (1987)] and can be easily achieved by various techniques. Most of the modifications It is evaluated by routine screening in an assay appropriate for the desired characteristics. example For example, International Application Publication No. WO 91/00349 describes a number of suitable assays for measuring IL-10 activity. An in vitro assay was described.   Preferably human IL-10 is used for the treatment of humans, but viral IL-10 or IL-10 from several other mammalian species could probably also be used. Most preferred The IL-10 used is recombinant human IL-10. Of human IL-10 and mouse IL-10 The preparation was described in International Application WO 91/00349. Epstein-Barr virus Cloning and expression of the native virus IL-10 (BCRF1 protein) is described by Moore et al., Sc. ience 248: 1230 (1990). Recombinant human IL-10 has also been described, for example, in Prepro It is a product that can be purchased commercially from Tech, Inc., Rocky Hill, NJ.   Individuals suitable for treatment by the methods of the invention have PBMC cytolytic activity, especially LAK cell activity. Any with neoplastic disease that would benefit from stimulation of sexual activation and NK cell activation Including individuals. Specific cancer patients are described, for example, in the above patent and Rosenberg's Scien. Described in a tific American paper. Also suitable for treatment by the method of the invention. The body is a patient who is pre-treated with elevated levels of endogenous IL-4, resulting in IL-4 Blocks IL-2 activation of cytolytic activity. In such individuals, A preferred treatment involves pre-treatment with IL-10 prior to IL-2 administration.   The described standard methods and techniques for making IL-10 for use in the present invention are: , It can also be used to make IL-2 and α-IFN. For use in the present invention IL-2 and α-IFN are also available from commercial sources (eg IL-2 is Cet Available from us, Corporation, Emeryville, CA, and α-IFN is Scherimg C orp., Kenilworth, NJ).   PBMC (preferably obtained by standard methods from the patient to be treated) Exoactivation and administration of such cells results in IL-10 at reduced levels of IL-2 and <RTIgt; / or </ RTI> except that it is used as described herein with α-IFN Is performed as described in the Rosenberg reference above. Activated P administered The number of BMC is about 106Cells to about 1012Within the range of cells. Preferably not always required However, the administration of such activated cells will result in the administration of IL-10 as described herein. Administration is simultaneous and / or later.   In one embodiment, PBMCs have been previously treated with IL-10 (eg, 4 ng / ml (10 0 unit / ml) or 40 ng / ml of human IL-10 at 37 ° C for about 3 days. Beate) to activate. The cells were then depleted of free IL-10 To wash and add low levels of IL-2 (typically about 2 units / ml).   IL-10 alone or in combination with other cytokines used herein Administration of the reactivated cytolytic cells is preferably by intravenous injection. this child Is, for example, via a central venous catheter, into the great peripheral vein, or percutaneous catheter. It is performed in the hepatic artery via tel.   IL-10 is generally a pharmaceutical carrier and an effective amount of IL-10 alone or IL-2. And / or as a pharmaceutical composition comprising a combination with α-IFN. The pharmaceutical carrier is any compatible, non-toxic substance suitable for delivery of the invention to the patient. possible. Compositions useful for parenteral administration of such agents are well known and include, for example: Remington's Pharmaceutical Science, 15th Edition (Mack Publishing Company, Easton, P A, 1980). Alternatively, the composition of the invention is implantable or injectable. Efficient drug delivery system (eg Urquhart et al., Ann. Rev. Pharmacol. Toxicol. 24: 1). 99 (1984); Edited by Lewis, Controlled Release of Pesticides and Pharmaceuticals ( Plenum Press, NY, 1981); US Pat. No. 3,270,960, etc.) Can be entered.   Cytokine administration can be by any known route of administration, including intravenous administration. , Intraperitoneal and subcutaneous administration. Intravenous administration is preferred.   When administered parenterally, the composition is in unit dosage form with a pharmaceutical carrier. It is formulated in injectable form (solution, suspension, emulsion). Examples of such carriers With normal saline, Ringer's solution, dextrose solution and Hank's solution is there. Non-aqueous carriers such as fixed oils and ethyl oleate may also be used. Could be used. The preferred carrier is 5% dextrose / saline. . Carriers may be osmotic and chemically stable, eg buffers and preservatives. Small amounts of additives such as sex enhancing substances may be included. IL-10 is preferably Substantially free of aggregates and other proteins at concentrations ranging from about 5 to 20 μg / ml Formulated in a purified form.   The compositions of the present invention also include standard gene therapy techniques (e.g., direct DNA injection into tissues). Input, use of recombinant viral vectors and transplantation of transfected cells Including. ). For example, Rosenberg, J. Clin. Oncol. 10: 180 (1992 )checking.   Co-administration of one or more therapeutic agents described herein is concomitant (with administration of IL-10. ) Or continuous. Preferably IL-10 is administered prior to the administration of IL-2. α-IFN administration is myelinated or continuous to IL-10 and / or IL-2 . All doses at levels sufficient to be therapeutically effective in tumor regression Should be present in the patient.   The term "effective amount" as used herein reduces side effects in adoptive immunization. Or sufficient to block or at the same time the cytolytic activity of LAK and NK cells. By IL-10 is meant a sufficient capacity to promote sex. The services required for a particular patient The effective dose of itocaine depends on the condition and type of neoplastic disease being treated, the patient's overall Health, mode of administration, severity of side effects, amount of other drugs used at the same time and It may change depending on factors such as type.   The amount of cytokine "sufficient to increase activation of LAK cells" is -Based cytolytic activity induced by IL-10 alone Cytokines required to produce an increase in sex levels of at least about 25% As defined herein. Preferably, the increase is at least about 50% And most preferably at least about 100%.   Preferably, IL-10 is administered at a maximally tolerated dose of about 10 U / day. / kg body weight ~ 108U / kg body weight. Similarly, IL-2 and α-IFN are also maximally tolerated (Eg, IL-2 dose: 10FiveU / kg body weight as a carrier 50 ml of 0.9% saline with 5% albumin was given intravenously every 8 hours. The dose of α-IFN is: 106U / Kg body weight has 5% albumin as carrier 0.9% saline, given intravenously every 8 hours). As mentioned earlier, The dosage should be adjusted by such physician and determined to be acceptable to the individual patient. Within the capacity limits.   The method of the invention also provides a habitual approach to cancer treatment (e.g., radiation therapy). Method of, and Vinca alkaloids, platinum compounds, and 5-fluorouracil Chemotherapy using such customary chemotherapeutic agents).   Human peripheral blood mononuclear cells with IL-10 alone or in combination with other cytokines Treatment leads to increased cytolytic activity against human tumor targets. The efficacy of immunotherapy , Depends in large part on the tumor burden, so large volumes of primary tumor It is particularly useful to use the treatment methods described herein after being ablated . Inflammatory reactions, which typically occur at the surgical site, may also be beneficial for therapeutic outcome.                                  Example   The following non-limiting examples are provided as illustrations of the invention.Effect of IL-10 on cytolytic activity in human peripheral blood mononuclear cells   IL-10 for in vitro generation of cytolytic activity in human peripheral blood mononuclear cells Studied the effect. The results can be summarized as follows.   1. IL-10 is a lymphokine-activated killer (LAK) in human peripheral blood mononuclear cells Stimulates activity and natural killer (NK) activity. IL-10's cytolytic activity , Can be neutralized by a rat monoclonal antibody against IL-10.   2. IL-10 derived from CHO expression system and E. coli expression system has LAK activity and NK activity. Show similar concentration response patterns upon stimulation and are therefore bioequivalent.   3. PBMC treated with IL-10 and low concentrations of IL-2 showed that either cytokine alone It shows higher LAK activity than that observed by itself alone.   4. PBMCs that had been treated with IL-10 for 2 days in advance had increased fines upon subsequent administration of IL-2. Shows cytolytic activity.   5. IL-10 weakens the ability of IL-4 to inhibit IL-2-induced LAK activity.   6. Addition of IL-2 to IL-10 increased the effector cells to target cells at a low ratio. It produces an enhanced LAK cytolytic activity.   In addition to the effects seen in PBMC, endothelial cells cultured in the presence of IL-10 are exogenous Show an undiminished response to factors (ie, γ-IFN and TNF-α) Was found, but endothelial cells incubated in the presence of IL-2 showed toxicity of IL-2. I didn't respond.Materials and methods Recombinant human cytokine and anti-IL-10 antibody   Recombinant human IL-10 (both E. coli and CHO) was prepared by standard methods. Generated. The specific activity obtained following purification by standard methods is based on the MC-9 cell growth assay. Essay [Thompson-Snipes et al., J. Exp. Med. 173: 507 (1991)] Sea urchin 4.1 × 107Unit / mg (E.coli) and 2.1 x 107Unit / mg (CHO) . Therefore, about 4 ng of essentially homogeneous IL-10 has about 100 units of biological activity. Stipulated.   A rat anti-human IL-10 monoclonal antibody called 19F1 was added to Molecular Biology. Obtained from Dr. John Abrams of the DNAX Institute, Palo Alto, CA.Isolation of human peripheral blood mononuclear cells (PBMC)   Peripheral blood was tested on healthy adult donors using heparin or EDTA as an anticoagulant. Obtained by venipuncture. PBMCs were dextran precipitated followed by FICOLL PAQU Boundary bands consisting mainly of lymphocytes and monocytes were collected, and 10% fetal calf Washed at least twice with RPMI (complete medium) containing serum (JRH Biosciences).Cytotoxicity assay   Daudi (LAK-sensitive) target cells and K562 (NK-sensitive) target cells were  Obtained from the Tissue Collection under accession numbers CCL 213 and CCL 243, respectively. Sp its et al. [J. Immunol. 141: 29 (1988)], as described by Daudi and K562. To51Labeled with Cr. After the culture period, PBMC cells were harvested, washed twice, and51Cr Used as effector cells in the release assay (Spits et al., Supra). V-shaped bottom In 100 μl of 96 well plate,515 × 10 labeled with Cr labelThreeTarget cells of Mix with varying numbers of effector cells (E / T = 20: 1; 5: 1 and 2: 1) Was. This plate is moistened with 5% CO2Incubate at 37 ° C for 4 hours in atmosphere Prior to centrifugation at 1000 rpm for 5 minutes. After 4 hours, plate for 5 minutes, 500 × g And counted on a gamma counter (LKB-Pharmacia).51Marks labeled with Cr Total lysis of cells was determined by incubating the target with 1% SDS. data Was expressed as the average of three measurements.   Percent lysis is calculated as follows: Incubation of human PBMC with cytokines a. Incubation with IL-10 alone   PBMCs isolated as described above contained 10% fetal bovine serum unless otherwise specified, 1 x 10 in RPMI-1640 supplemented with IL-10 or human IL-10 (CHO)6Cell / ml concentration And maintained at 37 ° C for 3 days. Cytolytic activity was measured as described above. b. Co-incubation with IL-10 and IL-2   4 ng / ml IL-10 and PB with or without human IL-2 (Genzyme) (2 or 20 U / ml) MC were incubated at 37 ° C for 3 days. c. Continuous incubation with IL-10 and IL-2   PBMC were incubated with 4 ng / ml IL-10 in complete medium for 2 days. Human IL-2 Was added at a final concentration of 2 U / ml or 20 U / ml. After overnight incubation, LA K cell lysis activity and NK cell lysis activity were measured.Effect of anti-IL-10 monoclonal antibody on IL-10 activity of LAK and NK cells   2 μg / ml anti-IL-10 monoclonal antibody (19F1) or isotype Incubate with 40 ng / ml IL-10 in the presence of control (rat IgG2a) for 3 days did.Lymphokine-activated killer cells and natural killer in human peripheral blood mononuclear cells Effect of IL-10 on cytolytic activity of cells   The cytolytic activity of LAK and NK cells is based on the target tumor cells used , Can be distinguished operationally. Derived from human Burkitt's lymphoma Daudi cells are habitual targets for cytolytic activity of activated LAK cells . Cells derived from the K562 cell line are human erythroleukemia cell lines, which are activated NK cells. Used as a specific target for cytolytic activity. In these experiments, human PB MCs were treated with various concentrations of IL-10 for 3 days. Cytolytic activity above the standardFive 1 It was measured by Cr release assay.   The results based on LAK activity are shown in Table 1 and the standard error is shown below the mean value.   The data in Table 1 show the LAK activity of IL-10 in PBMCs obtained from 6 human donors. Shows the effect against. Although variability between donors is apparent, IL-10 was found to Induced a concentration-dependent increase in cell lysis capacity. Statistically significant activity Sex (p ≦ 0.05) was observed at concentrations of IL-10 above 0.4 ng / ml. 5% base level A donor showing the following cytolytic activity (ie, in the absence of cytokines) PBMC are most responsive to IL-10 at all effector cell: target cell ratios tested (Data not shown).   Other tumor target cells (human renal cell carcinoma line, two different human melanoma lines and Similar results were obtained (including colon cancer lines). Renal carcinoma cell line and black Tumor cell lines are also used by Rosenberg, and have such tumors Patients were in vivo by Rosenberg using an adoptive immunization with IL-2. I was treated. In all cases, the percent lysis of target cells was determined by the concentration of IL-10. Was dependent on.   In another experiment, IL-10 alone or in combination with IL-2 was used in U937 cells (human population). Lymphoma), SW620 (human colon cancer), and SKBR3 cells (human breast cancer) It was found to lead to an increase in deactivation. Use HS294 T cells (human melanoma) as a target In the experiment used, IL-10 did not appear to induce a response at the doses tested .   Basic NK cytolytic activity (i.e. lysis of K562 target in the absence of cytokines) Solution) tended to be higher than the basal LAK activity. NK activity is similar to that of IL-2. It could be further increased by tocaine [Perussia, supra; Phillips and Lanie. r, J. Exp. Med 164: 814 (1986)].   The effect of IL-10 on NK activity was demonstrated in PBMC from the same 6 donors described above. Evaluations and experiments were performed in equilibrium with the LAK assay. Table 2 shows the results. Standard error Is shown below the average value.   As is clear from Table 2, IL-10 is mediated by NK cells in donor-derived PBMCs. Induced a significant dose-dependent increase in cytotoxicity. Concentration of IL-10 above 4ng / ml There was a statistically significant increase in lytic activity with degrees. In case of LAK activation As such, the effects of IL-10 on NK activity varied among donors.Comparison of the effects of IL-2 and IL-10 on endothelial cells   Experiments were performed to assess the survival of endothelial cell monolayers after exposure to IL-10. IL- Endothelial cells cultured in the presence of 10 were exposed to exogenous cytokines (γ-IFN and TNF-α) Showed an undiminished response to the same unit over the same incubation period. Parallel cultures exposed to different doses of IL-2 lost their ability to respond due to the virulence of IL-2. Was.Effect of anti-IL-10 monoclonal antibody on IL-10 activation of LAK and NK cells   As shown in Tables 3 and 4, the mean values are shown with standard error of 40 ng / m The stimulation of LAK cell lytic activity and NK cell lytic activity by IL-10 was 2 μm, respectively. There was a 3-fold decrease (p ≦ 0.05) in the presence of g / ml of anti-IL-10 monoclonal antibody 19F1. Obtained using 2 μg / ml rat IgG2a isotype control antibody instead The results obtained were statistically distinct from those obtained using 40 ng / ml IL-10 alone. It resulted in a poor level of cytolytic activity. Cytolytic activity induced by combination with IL-10 and other cytokines a.IL-10 and IL-2 co-incubation   Human PBMCs were quantified in the presence of IL-10 using a 5: 1 effector to target ratio. Incubation was with submaximal stimulating concentrations of IL-2 (2 U / ml or 20 U / ml). The results are shown in Table 5, and the standard error is shown below the average value.   As shown in Table 5, simultaneous incubation of 2 U / ml IL-2 and 4 ng / ml IL-10 In LAK activity (effector cell to target cell ratio 5: 1) There was a dramatic increase. This activity level was found in either cytokine alone. Significantly higher than that produced, approaching levels produced with 10-fold higher concentrations of IL-2. Was. This result was statistically significant with p ≦ 0.05 measured by Student's t-test. It was my intention. b.IL-10 and α-IFN co-incubation   PBMCs co-incubated with IL-10 and α-IFN show cytolysis against Daudi It shows a similar additional increase in activity, but not NK target cells. This is a table 6 and in Table 6 the standard error is shown below the mean value.   Cytolytic activity induced by IL-10 or α-IFN alone in donor PBMC Observed in cytolytic activity induced by IL-10 and α-IFN compared to sex Differences were statistically significant at p <0.05 determined by Student's t-test .   Conversely, co-incubation with IL-10 and IL-4, IL-5, GMCSF or γ-IFN Was less effective than IL-10 alone (data not shown).IL-10 and IL-2 continuous incubation   Maintain PBMCs in medium alone or medium supplemented with IL-10 using the procedure above did. After 2 days, IL-2 was added at a final concentration of 2 U / ml or 20 U / ml. One more After overnight incubation, the cytotoxic activity on Daudi cells was evaluated. 5 The results obtained from the pool of human donors are shown in Table 7. In Table 7, the standard error of the average value Differences are shown below the mean.   As shown in Table 7, donor PBMCs were pretreated with IL-10 prior to the addition of IL-2. In cultures maintained in complete medium alone before addition of IL-2 About twice as high level (71.8 +/- 17.9%) compared to the observed level (41.7% + /-11.4) Was observed. Samples pre-treated with IL-10 and untreated with IL-10 The observed difference with the sham sample was statistically significant with p ≦ 0.14 .   A similar pattern of enhanced cytolytic activity was observed with IL-10 followed by α-IFN Seen in incubation (data not shown).Blockade of IL-2-induced cytotoxicity by IL-10 and IL-4   PBMCs from 6 human donors were added to a medium containing 20 U / ml IL-2 alone, 20 U / ml Medium containing IL-2 and 1000 U / ml IL-4, or 20 U / ml IL-2 and 1000 U / ml IL-4 It was cultured in a medium containing 4 ng / ml of IL-10. Table 8 shows the results. Table 8 Smell The standard error of the mean is shown below the mean.   The data in Table 8 show that after treatment with 20 U / ml IL-2 alone, approximately 34.2% of LAK sensitive targets were detected. Indicates that dissolution of was observed. Incubation period with 1000 U / ml human IL-4 When it was included from the beginning, the cytolytic ability was suppressed about 2-fold. However, the incu When 4 ng / ml IL-10 was added during the first 24 hours of basation, IL-4 No inhibition was observed.   Results with IL-2 alone and all three of these cytokines used together There is no significant difference between the results obtained by Antagonism by inhibition of IL-10 is essentially complete, as determined by p ≦ 0.05) Indicates that   Many modifications and variations of the present invention are intended to be obvious to those skilled in the art. And can be made without departing from the scope. Specific embodiments described herein Are provided by way of example only, and the invention is defined by the terms of the appended claims. Only limited.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.ガンの処置のための方法であって、効果量のIL-10活性化PBMCを、ガンに苦 しむ個体に投与して、このようなガンを後退させる工程を包含する、方法。 2.さらに、前記患者への効果量のIL-10の同時投与または連続投与を包含する 、請求項1に記載の方法。 3.IL-10活性化PBMCと薬学的に受容可能なキャリアとを混合する工程を包含す る、ガンの処置のための薬学的組成物の製造方法。 4.前記IL-10が、(a)LAK細胞の活性化を増加させるには十分であるが、毒性副 作用を生じない量のIL-2および/または(b)LAK細胞の活性化を増加するには十分 な量のα-IFNと組み合わせて投与される、請求項1〜3のいずれかに記載の方法 。 5.IL-10活性化PBMCおよび薬学的に受容可能なキャリアを含有する、ガンの処 置のための薬学的組成物。 6.IL-10を単独で、またはIL-2および/またはα-IFNとの組み合わせをさらに 含有する、請求項5に記載の薬学的組成物。 7.ガンを処置するためのIL-10活性化PBMCの使用。 8.ガンの処置用の薬剤の製造のためのIL-10活性化PBMCの使用。 9.前記IL-10活性化PBMCがIL-10単独とまたはIL-2および/またはα-IFNとの組 み合わせで使用される、請求項7または8のいずれかに記載の使用。 10.内因性のIL-4によって、IL-2によって誘導される細胞傷害性阻害を中和す るための方法であって、このような処置の必要に応じて、患者に効果量のIL-10 を投与する工程を包含する、方法。 11.内因性IL-4によって、IL-2によって誘導される細胞傷害性阻害を中和する ための薬剤の製造のためのIL-10の使用。 12.前記IL-10がヒトIL-10である、請求項1〜11のいずれかに記載の方法、 薬学的に受容可能な組成物または使用。[Claims] 1. A method for the treatment of cancer, wherein an effective amount of IL-10-activated PBMC is administered to the cancer. Administering to a swollen individual to reverse such cancer. 2. Further, it includes simultaneous or sequential administration of an effective amount of IL-10 to said patient. The method of claim 1. 3. Comprising mixing IL-10 activated PBMC with a pharmaceutically acceptable carrier A method of manufacturing a pharmaceutical composition for the treatment of cancer. 4. The IL-10 is sufficient to increase the activation of (a) LAK cells, but with toxic side effects. Sufficient to increase the ineffective dose of IL-2 and / or (b) LAK cell activation 4. The method of any of claims 1-3, wherein the method is administered in combination with different amounts of alpha-IFN . 5. Treatment of cancer containing IL-10 activated PBMC and a pharmaceutically acceptable carrier A pharmaceutical composition for storage. 6. IL-10 alone or in combination with IL-2 and / or α-IFN The pharmaceutical composition according to claim 5, which comprises: 7. Use of IL-10 activated PBMCs to treat cancer. 8. Use of IL-10 activated PBMC for the manufacture of a medicament for the treatment of cancer. 9. The IL-10 activated PBMC comprises IL-10 alone or in combination with IL-2 and / or α-IFN Use according to any of claims 7 or 8, used in combination. 10. Endogenous IL-4 neutralizes IL-2 induced cytotoxic inhibition A method of treating the patient with an effective amount of IL-10 as needed for such treatment. Administering to the subject. 11. Endogenous IL-4 neutralizes IL-2 induced cytotoxic inhibition Use of IL-10 for the manufacture of a drug for. 12. The method according to any of claims 1 to 11, wherein the IL-10 is human IL-10. A pharmaceutically acceptable composition or use.
JP7519439A 1994-01-20 1994-01-20 Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cytolytic activity Pending JPH09508116A (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN94194863A CN1142186A (en) 1994-01-20 1994-01-20 Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cell cytolytic activity
PCT/IB1994/000008 WO1995019780A1 (en) 1994-01-20 1994-01-20 Use of il-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cell cytolytic activity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH09508116A true JPH09508116A (en) 1997-08-19

Family

ID=37708148

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP7519439A Pending JPH09508116A (en) 1994-01-20 1994-01-20 Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cytolytic activity

Country Status (10)

Country Link
EP (1) EP0740552A1 (en)
JP (1) JPH09508116A (en)
CN (1) CN1142186A (en)
AU (1) AU707019B2 (en)
FI (1) FI962813A0 (en)
NO (1) NO963029L (en)
NZ (1) NZ259584A (en)
PL (1) PL175343B1 (en)
SK (1) SK91696A3 (en)
WO (1) WO1995019780A1 (en)

Families Citing this family (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000037096A2 (en) * 1998-12-22 2000-06-29 Schering Corporation Treatment of hepatitis c virus infections with interleukin-10
EP2295450B1 (en) 2000-09-29 2015-01-28 Merck Sharp & Dohme Corp. Pegylated interleukin-10
RU2322452C2 (en) * 2006-03-27 2008-04-20 Михаил Николаевич Смирнов Immunomodulating composition
WO2008054585A2 (en) * 2006-09-28 2008-05-08 Schering Corporation Use of pegylated il-10 to treat cancer
WO2009003185A1 (en) * 2007-06-27 2008-12-31 Joslin Diabetes Center, Inc. Regulatory t cells in adipose tissue
EP2379115B1 (en) 2008-12-17 2017-10-25 Merck Sharp & Dohme Corp. Mono- and di-peg il-10 production; and uses
JP2016519108A (en) 2013-04-18 2016-06-30 アルモ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド Method for using interleukin-10 for the treatment of diseases and disorders
AU2014281828B2 (en) 2013-06-17 2019-05-09 Armo Biosciences, Inc. Method for assessing protein identity and stability
JP6509867B2 (en) 2013-08-30 2019-05-08 アルモ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド Methods of using interleukin-10 to treat diseases and disorders
CA2928710A1 (en) 2013-11-11 2015-05-14 Armo Biosciences, Inc. Methods of using interleukin-10 for treating diseases and disorders
WO2015187295A2 (en) 2014-06-02 2015-12-10 Armo Biosciences, Inc. Methods of lowering serum cholesterol
JP2017536098A (en) 2014-10-14 2017-12-07 アルモ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド Interleukin-15 composition and use thereof
CN107106655A (en) 2014-10-22 2017-08-29 阿尔莫生物科技股份有限公司 The method that disease and illness are treated using interleukin 10
WO2016126615A1 (en) 2015-02-03 2016-08-11 Armo Biosciences, Inc. Methods of using interleukin-10 for treating diseases and disorders
WO2016191587A1 (en) 2015-05-28 2016-12-01 Armo Biosciences, Inc. Pegylated interleukin-10 for use in treating cancer
CN108025040A (en) 2015-08-25 2018-05-11 阿尔莫生物科技股份有限公司 The method that disease and illness are treated using interleukin-10
WO2023072870A1 (en) * 2021-10-25 2023-05-04 Ellennbe Gmbh Pharmaceutical composition and kit comprising an immunomodulatory substance for treating diseases

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HU218598B (en) * 1991-01-16 2000-10-28 Schering Corp. Process for producing pharmaceutical compositions containing interleukin-10, for treating neoplastic disease
EP0495639A1 (en) * 1991-01-16 1992-07-22 Schering Corporation Use of interleukin-10 in adoptive immunotherapy of cancer
US5055045A (en) * 1991-03-18 1991-10-08 Dickie Robert G Disposable dental matrix retainer clamp

Also Published As

Publication number Publication date
NZ259584A (en) 1998-01-26
NO963029D0 (en) 1996-07-19
NO963029L (en) 1996-09-19
CN1142186A (en) 1997-02-05
PL315513A1 (en) 1996-11-12
SK91696A3 (en) 1997-04-09
FI962813A (en) 1996-07-11
WO1995019780A1 (en) 1995-07-27
AU707019B2 (en) 1999-07-01
PL175343B1 (en) 1998-12-31
FI962813A0 (en) 1996-07-11
EP0740552A1 (en) 1996-11-06
AU5842594A (en) 1995-08-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4416839B2 (en) Treatment of secondary immune deficiency
CN105008521B (en) The method for adjusting the immunoregulation effect of stem cell
JPH09508116A (en) Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cytolytic activity
CN110935025A (en) Agents for treating and/or preventing autoimmune diseases and for forming regulatory T cells
Kojima et al. Hematopoietic growth factors released by marrow stromal cells from patients with aplastic anemia
JPH06505250A (en) Use of interleukin-10 in adoptive immunotherapy of cancer
JPH07503455A (en) Lymphokine gene therapy for cancer
JPH10510147A (en) Method for producing drug for treating secondary immunodeficiency
CN112843222B (en) Application of ANKRD22 protein in preparing product for treating or delaying autoimmune diseases
JP2008517998A (en) Thymus-specific protein
Yuzhalin et al. Interleukins in cancer biology: their heterogeneous role
NZ579795A (en) Uses of mammalian cytokine; related reagents
Nguyen et al. Interleukin (IL)-15 enhances antibody-dependent cellular cytotoxicity and natural killer activity in neonatal cells
EP0629130A1 (en) Use of interleukin-10 to suppress graft-vs.-host disease
US5871725A (en) Use of IL-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cell cytolytic activity
EP0303687A1 (en) Compositions for enhancing adcc therapy.
JP2008505082A (en) Method for presensitizing cancer prior to treatment with radiation and / or chemotherapy and novel cytokine mixtures
KR100225322B1 (en) Synergistic compositions comprising tnf and il-4
AU660493B2 (en) Method for treatment of chronic lymphocytic leukemia using interleukin -6
Terres et al. The role of IL-4 and IL-10 cytokines in controlling an anti-tumor response in vivo.
JP5517394B2 (en) Use of IL-12 in hematopoiesis
JPH11510806A (en) Combination of interleukin 10 and cyclosporin for immunosuppressive treatment
EP3958887B1 (en) Medical uses for inducing or restoring immune tolerance
US20040116344A1 (en) Immunomodulatory properties of bip
HUT78097A (en) Use of il-10 to stimulate peripheral blood mononuclear cell cytolytic activity