JPH07115998A - Got測定用試薬 - Google Patents

Got測定用試薬

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JPH07115998A
JPH07115998A JP17215494A JP17215494A JPH07115998A JP H07115998 A JPH07115998 A JP H07115998A JP 17215494 A JP17215494 A JP 17215494A JP 17215494 A JP17215494 A JP 17215494A JP H07115998 A JPH07115998 A JP H07115998A
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JP
Japan
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reagent
acid
mdh
ldh
nadh
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JP17215494A
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Yoko Koga
洋子 古賀
Toshio Tsuchiko
敏雄 土子
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Iatron Laboratories Inc
Mitsubishi Kagaku Iatron Inc
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Iatron Laboratories Inc
Mitsubishi Kagaku Iatron Inc
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 保存安定性を有する液状のGOT測定用試薬
を提供する。 【構成】 L−アスパラギン酸とα−ケトグルタル酸か
らGOTにより生成されるオキザロ酢酸をMDHにより
リンゴ酸に変え、共存NADHの減少量を測定するGO
T測定法試薬において、NADH、MDH、LDH及び
アミノ酸を含有する第一試薬と、L−アスパラギン酸及
びα−ケトグルタル酸を含有する第二試薬とからなり、
第一試薬pHが8.5〜10で、第二試薬pHが5〜8
で、それぞれ液状である。 【効果】 液状で長期間安定に保存しておき、使用に際
して溶解操作の必要なく、そのまま自動分析機などに適
用できる。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、グルタミン酸オキザロ
酢酸トランスアミナーゼ(GOT)測定用試薬に関す
る。より詳細には、長期間安定なGOT測定用の改良さ
れた液状試薬に関する。
【0002】
【従来の技術】グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミ
ナーゼ(以下、GOTと略称する)は、心臓や肝に多く
分布する酵素であり、各種疾患時に血中に遊出されるの
で、尿や血液等の生体液中のGOTの測定は心疾患、肝
疾患の診断や治療の経過観察の指標として重要な項目の
一つである。
【0003】GOTの測定法としては、L−アスパラギ
ン酸とα−ケトグルタル酸とを基質として、GOTによ
って生成されるオキザロ酢酸をリンゴ酸脱水素酵素(以
下、MDHと略称する)によってリンゴ酸に変え、共存
させておいた還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオ
チド(以下、NADHと略称する)量の減少量を、波長
340nm付近で測定することによりGOTを測定する
方法が汎用されている。
【0004】この反応式を示せば、以下のとおりであ
る。 前記の式中で、NADは酸化型ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチドである。
【0005】一般的に酵素を含む試薬は、その保存安定
性の面を考慮して、反応に必要な組成物を含む凍結乾燥
品として提供され、使用時に緩衝液等で溶解して用いら
れていた。しかし、作業性やコスト面から、溶解後の試
薬の安定性も要求されるようになり、例えば特開昭57
−39799号公報のようにGOT試薬の安定性に関す
る技術が開示されている。
【0006】前記の特開昭57−39799号公報記載
の技術は、特にMDH及びLDHの安定化のために、従
来からの殺菌剤の添加のみならず、スルフヒドリル化合
物(例えば還元型グルタチオン、N−アセチルシステイ
ン等)とキレート剤(例えばEDTA、EGTA)を併
用・添加してMDH及びLDHの安定化を図ったもので
ある。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】近年、特に試薬形態を
供給時から液状とし、ユーザーの作業性を向上させるこ
とが求められている。また、これらの試薬は多くの場
合、自動分析機にて使用されるので、試薬構成を2試薬
系とし、しかも試薬組成物の安定性を長期間(例えば半
年から1年)維持する必要がある。これに対して、前記
の特開昭57−39799号公報記載の技術は3試薬系
であり、MDH及びLDHの室温での安定性はせいぜい
10日程度である。更に、MDH及びLDHの安定性に
主眼をおいており、GPT測定に必要なその他の配合成
分、特にNADHの安定性については、単にpH9〜1
1のアルカリ性条件下におけば、それらの寿命に問題は
なく、更に基質のα−ケトグルタル酸及びL−アスパラ
ギン酸についても殺菌剤を使用すればそれらの安定性に
問題はないと記載しているに過ぎない。しかしながら、
この系で使用する酵素や基質を2試薬系の溶液状態で、
長期間安定させるには、未だ不十分であった。本発明者
等はこうした従来の問題点を解消すべく種々鋭意検討し
た結果、液状試薬としての充分な保存安定性を有するG
OT測定試薬組成を見出した。本発明は、こうした知見
に基づくものである。
【0008】
【課題を解決するための手段】本発明は、L−アスパラ
ギン酸とα−ケトグルタル酸を基質としてグルタミン酸
オキザロ酢酸トランスアミナーゼ(GOT)によって生
成されるオキザロ酢酸をリンゴ酸脱水素酵素によってリ
ンゴ酸に変え、共存させておいた還元型ニコチンアミド
アデニンジヌクレオチド量の減少量を測定することから
なる前記グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼ
(GOT)の測定法の試薬において、少なくとも還元型
ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、リンゴ酸脱水
素酵素、乳酸脱水素酵素及びアミノ酸を含有する第一試
薬と、少なくともL−アスパラギン酸及びα−ケトグル
タル酸を含有する第二試薬とからなり、第一試薬のpH
が8.5〜10であり、第二試薬のpHが5〜8.5で
あり、そしてそれぞれ液状試薬であることを特徴とす
る、グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼ(G
OT)測定用試薬に関する。
【0009】以下、本発明を詳細に説明する。本発明の
GOT測定用試薬は、(1)NADHと、MDHと、L
DHと、アミノ酸とを含み、pHが8.5〜10の液状
第一試薬と、(2)L−アスパラギン酸と、α−ケトグ
ルタル酸とを含み、pHが5〜8.5の液状第二試薬と
から構成される。
【0010】本発明者が見出したところによれば、GO
T測定で使用する酵素や基質を安定な条件で維持し、な
おかつ、反応時のpHをGOTの至適pHであるpH
7.5付近に設定するためには、補酵素NADHを含む
試薬を単にアルカリ性に維持するのみでは、充分な安定
化が得られない。更に、特に2試薬系で構成する場合
に、一定濃度のアミノ酸を第一試薬に添加することによ
り、NADHの安定性が飛躍的に向上するばかりか、M
DH及びLDHの安定化も可能となった。
【0011】第一試薬に添加するアミノ酸としては、M
DH及びLDHの基質とならない任意のアミノ酸を用い
ることができる。具体的には、グリシン、、ロイシン等
の中性アミノ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸等の酸
性アミノ酸、リシン、アルギニン等の塩基性アミノ酸を
適宜選択して用いることができる。
【0012】前記アミノ酸の添加濃度は、使用するアミ
ノ酸の種類により変化するので特に限定されるものでは
ないが、一般的には前記アミノ酸を10〜200mMの
範囲内で適宜添加濃度を調整して用いることができる。
具体的には、例えばアミノ酸としてL−アスパラギン酸
を用いる場合、10〜200mM、好ましくは10〜1
50mM、より好ましくは10〜100mMの量で添加
すれば期待される効果が得られる。また、アミノ酸とし
てグリシンを用いる場合、10〜400mM、好ましく
は10〜200mM、より好ましくは10〜150mM
の量で添加すれば同様の効果が得られる。
【0013】アミノ酸を添加した第一試薬のpHを8.
5〜10とし、第二試薬のpHを5〜8.5に維持する
ことにより、GOT反応時のpHをpH7〜8(特にp
H7.5付近)に設定することができると共に、各構成
成分を長期間安定に保存することができる。第一試薬に
添加するアミノ酸の量が前記範囲以外になると、第一試
薬の組成成分の安定性が著しく低下する。
【0014】第一試薬の緩衝液はGOT反応時のpHを
前記の範囲内にすることができれば、従来公知の緩衝液
を適宜選択して使用すればよい。具体的には、トリス
(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液、N,N−ビ
ス(2−ヒドロキシエチル)グリシン緩衝液等を使用す
ることができる。この際、第一試薬に添加するアミノ酸
としてグリシンを選択する場合には、緩衝液としてグリ
シン緩衝液を用いることにより、グリシンを前記のアミ
ノ酸としてだけでなく、緩衝剤としても利用することが
できるので、第一試薬の構成が簡略化される。また、そ
のpHは8.5〜10、特に9以上が好ましい。
【0015】第二試薬の緩衝液はGOT反応時のpHを
前記の範囲内にすることができれば、従来公知の緩衝液
を適宜選択して使用すればよい。具体的には、トリス
(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液又はN,N−
ビス(2−ヒドロキシエチル)グリシン緩衝液等を使用
することができる。また、そのpHは5〜8.5、特に
5.5〜8.0が好ましい。
【0016】第二試薬の構成成分である基質のL−アス
パラギン酸の添加量は、50〜500mM、より好まし
くは100〜300mMである。また、もう一つの基質
であるα−ケトグルタル酸の添加量は、1〜200m
M、好ましくは3〜150mMである。
【0017】本発明の試薬に用いられるMDHとして
は、サームス・フラブア(Thermus flavu
a)由来や、豚心臓由来のMDHが好ましいが、その由
来は特には限定されない。MDHの添加量としては、少
なくとも500U以上を適宜選択して用いればよい。ま
た、NADHは、0.1〜5mM、好ましくは0.1〜
1.0mMの範囲で使用することができる。
【0018】本発明の試薬に用いられるLDHとして
は、豚心臓由来や、ロイコノストック・メセンテロイデ
ス(Leuconostoc mesenteroid
es)由来のLDHが好ましいが、その由来は特には限
定されない。LDHの添加量としては、少なくとも50
0U以上を適宜選択して用いればよい。LDHはNAD
Hと共に添加しておき、GOT反応開始前に、血清中に
共存するピルビン酸を予め消費するために添加する。こ
れらの構成成分の添加量は、第一試薬と第二試薬の混合
比によって変動するため、上記範囲外であっても、本発
明に含まれる。即ち、本発明の必須要件は、NADH
と、MDHと、LDHと、アミノ酸とを含み、pHが
8.5〜10の液状第一試薬と、基質であるL−アスパ
ラギン酸と、α−ケトグルタル酸とを含み、pHが5〜
8.5の液状第二試薬の2試薬系に構成する点にある。
【0019】前記の第一試薬及び/又は第二試薬には、
前記の必須の配合成分の他に、必要により、一般的に添
加される成分、例えばEDTA等のキレート剤、アジ化
物等の防腐剤、及び各種界面活性剤等を適宜添加するこ
とができる。
【0020】このように構成されたGOT測定用試薬に
よって、被検検体にGOTの基質であるL−アスパラギ
ン酸とα−ケトグルタル酸を作用させると、それらの基
質がグルタミン酸とオキザロ酢酸に変換される。オキザ
ロ酢酸は共役酵素であるMDHにより、NADHを酸化
してリンゴ酸とNADになる。この反応で酸化されるN
ADHの減少速度を測定し、GOT活性を求めることが
できる。
【0021】
【実施例】以下、実施例によって本発明を具体的に説明
するが、これらは本発明の範囲を限定するものではな
い。実施例1 サームス・フラブア(Thermus flavua)
由来MDH(1200U)と、豚心臓由来LDH(12
00U)と、0.39mM−NADHとを0.01Mト
リス(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液(pH
9.5)に溶解し、更にアミノ酸としてのL−アスパラ
ギン酸を0mM、50mM、100mM、150mM、
及び200mMとなるように添加した後、溶液のpHを
4N−KOH液によってpH9.5に調整し、全量を1
リットルとして酵素含有溶液を調製した。この酵素含有
溶液を10℃で保存し、保存当日、1ケ月後、2ケ月
後、及び3ケ月後のMDH、LDH及びNADHの安定
性を以下の試験により確認した。
【0022】(1)MDHの保存安定性:上記の条件で
保存した酵素含有溶液を0.05Mリン酸緩衝液で2倍
に希釈し、その希釈液3μlに、L−リンゴ酸を含むグ
リシン−ヒドラジン緩衝液(pH9.0)300μlと
NAD水溶液(9mg/ml)60μlを加え、37℃
で5分間反応させ、波長340nmにおける1分間当た
りの吸光度変化を測定し、その吸光度変化量からMDH
活性の残存率を下記式により算出した。
【0023】MDH活性値(U/l)=(△E/ε)×
(V/v)×103 △E:1分間当たりの吸光度変化量 ε:分子吸光係数(6.22) V:全反応液量 v:試料液量 なお、保存当日の活性値を100%として、それぞれの
MDH活性の残存率を算出した。結果を図1に示す。図
1(並びに後記図2及び図3)において、○はL−アス
パラギン酸0mM、●はL−アスパラギン酸50mM、
□はL−アスパラギン酸100mM、■はL−アスパラ
ギン酸150mM、そして△はL−アスパラギン酸20
0mMである。
【0024】(2)LDHの保存安定性:上記の条件で
保存した酵素含有溶液を0.05Mリン酸緩衝液で2倍
に希釈し、その希釈液15μlに、ピルビン酸リチウム
(27mg/dl)を含む0.05Mリン酸緩衝液(p
H7.5)300μlとNADH水溶液(15mg/1
0ml)60μlを加え、37℃で5分間反応させ、波
長340nmにおける1分間当たりの吸光度変化を測定
し、その吸光度変化量からLDH活性の残存率を下記式
より算出した。結果を図2に示す。
【0025】LDH活性値(U/l)=(△E/ε)×
(V/v)×103 △E:1分間当たりの吸光度変化量 ε:分子吸光係数(6.22) V:全反応液量 v:試料液量 なお、保存当日の活性値を100%として、それぞれの
LDH活性の残存率を算出した。 (3)NADHの保存安定性:上記の条件で保存した酵
素含有溶液320μlに、LDH(1mg/10ml)
を含む0.05Mリン酸緩衝液(pH7.5)15μl
とピルビン酸リチウム(10mg/ml)を含む水溶液
80μlを加え、37℃で5分間反応させ、波長340
nmにおける吸光度変化を測定し、その吸光度変化量か
らNADHの残存率を下記式により算出した。結果を図
3に示す。
【0026】NADH濃度(mmol/l)=(E/
ε)×(V/v) E:吸光度変化量 ε:分子吸光係数(6.22) V:全反応液量 v:試料液量 なお、保存当日の濃度を100%として、NADH量の
残存率を算出した。
【0027】実施例2 サームス・フラブア(Thermus flavua)
由来のMDH(1200U)と、豚心臓由来LDH(1
200U)と、0.39mM−NADHとを0.01M
トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液(pH
9.5)に溶解し、L−アスパラギン酸50mMを添加
した後、4N−KOHにてpH9.5に調整して1リッ
トルとしたものを酵素含有溶液(第一試薬)とした。基
質としてのL−アスパラギン酸(0.4M)とα−ケト
グルタル酸(30mM)とを0.02Mトリス(ヒドロ
キシメチル)アミノメタン緩衝液(pH7.5)に溶解
し、4N−KOHにてpH7.5に調整して1リットル
としたものを基質含有溶液(第二試薬)とした。検体と
して管理血清を用い、その管理血清15μlに第一試薬
260μlを加え37℃で5分間加温した後、第二試薬
130μlを加え、その1分後から4分間波長340n
mにおける吸光度の減少を測定し、単位時間当たりの吸
光度変化を求めた。別に、従来法の試薬〔第一試薬=N
ADH(0.15mM)とアスパラギン酸(400m
M)を含む5mM炭酸緩衝液(pH10.5);第二試
薬=α−ケトグルタル酸(35mM)とMDH(100
0U)とLDH(1000U)とを含む0.5Mリン酸
緩衝液(pH7.3)〕を用いて同様にGOT活性を測
定し、本発明方法との相関を確認した。結果を図4に示
す。
【0028】実施例3 実施例1で用いたL−アスパラギン酸に換え、添加アミ
ノ酸としてグリシンを用いて試験を行った。即ち、MD
H、LDH及びNADHを実施例1と同量含む0.01
Mトリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液(グ
リシン0mM)、前記トリス緩衝液に換えて、同成分を
含む20mMグリシン緩衝液、同様に50mMグリシン
緩衝液、同様に100mMグリシン緩衝液、同様に15
0mMグリシン緩衝液、同様に200mMグリシン緩衝
液、同様に400mMグリシン緩衝液を調製し、溶液の
pHを6N−HCl液にてpH9.2に調整し、全量を
1リットルとして酵素含有溶液とした。この酵素含有溶
液を10℃にて保存し、保存当日、1ケ月後及び3ケ月
後のLDH、NADH及びMDHの安定性を実施例1と
同様の試験により確認した。結果を以下の表1〜表3に
示す。
【0029】
【表1】 LDHの保存安定性 グリシン濃度(mM) 保存当日 1ケ月後 3ケ月後 グリシン無添加 100.0 74.2 63.0 20mM 100.0 95.2 92.8 50mM 100.0 95.0 93.0 100mM 100.0 96.3 94.5 150mM 100.0 97.8 96.4 200mM 100.0 97.1 95.7 400mM 100.0 97.2 96.0
【0030】
【表2】 NADHの保存安定性 グリシン濃度(mM) 保存当日 1ケ月後 3ケ月後 グリシン無添加 100.0 98.0 94.2 20mM 100.0 98.2 97.0 50mM 100.0 98.5 97.3 100mM 100.0 98.6 97.3 150mM 100.0 98.4 96.9 200mM 100.0 97.5 96.5 400mM 100.0 97.0 94.0
【0031】
【表3】 MDHの保存安定性 グリシン濃度(mM) 保存当日 1ケ月後 3ケ月後 グリシン無添加 100.0 96.8 95.1 20mM 100.0 99.0 98.2 50mM 100.0 99.0 98.1 100mM 100.0 98.4 98.0 150mM 100.0 98.3 97.8 200mM 100.0 98.1 97.3 400mM 100.0 97.0 96.6
【0032】実施例4 サームス・フラブア(Thermus flavua)
由来のMDH(1200U)と、豚心臓由来LDH(1
200U)と、0.39mM−NADHとを、添加アミ
ノ酸をグリシンとした0.02Mグリシン緩衝液(pH
9.2)に溶解し、溶液のpHを6N−HClにてpH
9.2に調整して1リットルとした酵素含有溶液を第一
試薬とした。基質としてのL−アスパラギン酸(0.4
M)とα−ケトグルタル酸(30mM)とをトリス(ヒ
ドロキシメチル)アミノメタン緩衝液(pH7.5)に
溶解し、4N−KOHにてpH7.5に調整して1リッ
トルとした基質含有溶液を第二試薬とした。検体として
血清を用い、その血清15μlに第一試薬260μlを
加え37℃で5分間加温した後、第二試薬130μlを
加え、その1分後から4分間波長340nmにおける吸
光度の減少を測定し、単位時間当たりの吸光度変化を求
めた。別に、日本臨床化学会勧告法試薬〔第一試薬=N
ADH(0.2mM)、MDH(625U)、LDH
(625U)、L−アスパラギン酸(250mM)を含
む88mMトリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩
衝液(pH7.80、30℃);第二試薬=α−ケトグ
ルタル酸(100mM)を含む88mMトリス(ヒドロ
キシメチル)アミノメタン緩衝液(pH7.80、30
℃)〕を用いて常用基準法にてGOT活性を測定し、本
発明方法との相関を確認した。結果を図5に示す。
【0033】
【発明の効果】本発明のGOT測定用試薬は、液状のま
まで、暗所又は明所にて、常温ないし低温下で長期間
(少なくとも半年以上)にわたって安定に貯蔵すること
ができる。従って、臨床検査を実施する現場で長期に保
存しておき、使用に際しては、溶解操作の必要もなく、
そのまま自動分析機などに適用することができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明試薬におけるMDHの保存安定性を示す
グラフである。
【図2】本発明試薬におけるLDHの保存安定性を示す
グラフである。
【図3】本発明試薬におけるNADHの保存安定性を示
すグラフである。
【図4】本発明試薬と従来法試薬による測定結果の相関
関係を示すグラフである。
【図5】本発明試薬と日本臨床化学会勧告法試薬による
測定結果の相関関係を示すグラフである。

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 L−アスパラギン酸とα−ケトグルタル
    酸を基質としてグルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミ
    ナーゼ(GOT)によって生成されるオキザロ酢酸をリ
    ンゴ酸脱水素酵素によってリンゴ酸に変え、共存させて
    おいた還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド量
    の減少量を測定することからなる前記グルタミン酸オキ
    ザロ酢酸トランスアミナーゼ(GOT)の測定法の試薬
    において、少なくとも還元型ニコチンアミドアデニンジ
    ヌクレオチド、リンゴ酸脱水素酵素、乳酸脱水素酵素及
    びアミノ酸を含有する第一試薬と、少なくともL−アス
    パラギン酸及びα−ケトグルタル酸を含有する第二試薬
    とからなり、第一試薬のpHが8.5〜10であり、第
    二試薬のpHが5〜8.5であり、そしてそれぞれ液状
    試薬であることを特徴とする、グルタミン酸オキザロ酢
    酸トランスアミナーゼ(GOT)測定用試薬。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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WO2006106805A1 (ja) * 2005-03-30 2006-10-12 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. 物質の保存安定性向上方法
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