JPH05322889A - ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量方法およびハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量キット - Google Patents
ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量方法およびハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量キットInfo
- Publication number
- JPH05322889A JPH05322889A JP12464192A JP12464192A JPH05322889A JP H05322889 A JPH05322889 A JP H05322889A JP 12464192 A JP12464192 A JP 12464192A JP 12464192 A JP12464192 A JP 12464192A JP H05322889 A JPH05322889 A JP H05322889A
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- hemoglobin
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の迅速
算出を可能にする遠心分離法により使用する遊離ヘモグ
ロビン吸着材を提供する。 【構成】 ポリスチレン、ポリメタクリル酸およびその
誘導体或いはこれらの共重合体などまたは、多孔質ガラ
スに、遊離ハプトグロビン等を固定し、この遊離ハプト
グロビンによって検体中の遊離ヘモグロビンを除去また
は捕集することを用いるハプトグロビン−ヘモグロビン
複合体の定量方法。
算出を可能にする遠心分離法により使用する遊離ヘモグ
ロビン吸着材を提供する。 【構成】 ポリスチレン、ポリメタクリル酸およびその
誘導体或いはこれらの共重合体などまたは、多孔質ガラ
スに、遊離ハプトグロビン等を固定し、この遊離ハプト
グロビンによって検体中の遊離ヘモグロビンを除去また
は捕集することを用いるハプトグロビン−ヘモグロビン
複合体の定量方法。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、不溶性担体に遊離ハプ
トグロビン等を固定した担体（吸着材）を検体と接触さ
せ、当該担体により、検体中の遊離ヘモグロビンを除去
または捕集した後、検体中のハプトグロビン−ヘモグロ
ビン複合体を定量することを特徴とするハプトグロビン
−ヘモグロビン複合体の定量方法とその定量キットに関
する。
トグロビン等を固定した担体（吸着材）を検体と接触さ
せ、当該担体により、検体中の遊離ヘモグロビンを除去
または捕集した後、検体中のハプトグロビン−ヘモグロ
ビン複合体を定量することを特徴とするハプトグロビン
−ヘモグロビン複合体の定量方法とその定量キットに関
する。
【０００２】
【従来の技術】人工腎臓、人工心肺等の血液体外循環療
法施行時の副作用として機械的溶血が起こる。また、再
生不良性貧血等の疾病により、血液中に多量の遊離ヘモ
グロビンが生ずる場合がある。軽度の溶血の場合には、
遊離ヘモグロビンは血液中の遊離ハプトグロビンと結合
し、ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体を形成する。
当該複合体は、引き続き、網内系で処理される。血液中
に存在する遊離ハプトグロビンの結合能力以上の溶血が
あった場合には、遊離ヘモグロビンは毒性物質として作
用し、腎障害、腎不全等を引き起こす。従って、大量溶
血時に、遊離ヘモグロビンを迅速に定量し、早期に適切
な処置をすることは、極めて重要なことである。
法施行時の副作用として機械的溶血が起こる。また、再
生不良性貧血等の疾病により、血液中に多量の遊離ヘモ
グロビンが生ずる場合がある。軽度の溶血の場合には、
遊離ヘモグロビンは血液中の遊離ハプトグロビンと結合
し、ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体を形成する。
当該複合体は、引き続き、網内系で処理される。血液中
に存在する遊離ハプトグロビンの結合能力以上の溶血が
あった場合には、遊離ヘモグロビンは毒性物質として作
用し、腎障害、腎不全等を引き起こす。従って、大量溶
血時に、遊離ヘモグロビンを迅速に定量し、早期に適切
な処置をすることは、極めて重要なことである。
【０００３】遊離ヘモグロビンの吸着方法として従来か
ら知られている方法は、特公昭５５−４４１７号公報お
よび、特公昭５６−５１７８０号公報に開示されてい
る。これらの方法は、何れも体外循環に関するもので、
血液中の遊離ヘモグロビンを体外循環により吸着除去す
る目的で利用されるものであり、定量に利用されるもの
ではない。
ら知られている方法は、特公昭５５−４４１７号公報お
よび、特公昭５６−５１７８０号公報に開示されてい
る。これらの方法は、何れも体外循環に関するもので、
血液中の遊離ヘモグロビンを体外循環により吸着除去す
る目的で利用されるものであり、定量に利用されるもの
ではない。
【０００４】また、遊離ヘモグロビンの定量方法は、特
公平３−２７２６９８公報に開示されている。当該方法
は、遊離ハプトグロビン固定化担体に遊離ヘモグロビン
を結合させ、結合させたヘモグロビンに標識抗体を結合
させ、発色定量する方法である。当該方法は、標識抗体
を使用する為、測定費用が割高で、測定に時間がかかる
という難点がある。
公平３−２７２６９８公報に開示されている。当該方法
は、遊離ハプトグロビン固定化担体に遊離ヘモグロビン
を結合させ、結合させたヘモグロビンに標識抗体を結合
させ、発色定量する方法である。当該方法は、標識抗体
を使用する為、測定費用が割高で、測定に時間がかかる
という難点がある。
【０００５】更に、遊離ヘモグロビン値の算出方法に
は、簡易分別定量法が知られている。当該方法は、総ハ
プトグロビン値と総ヘモグロビン値から遊離ヘモグロビ
ン値を算出する方法であるが、ハプトグロビンには、３
種類の型（１−１型、１−２型、２−１型）が存在する
為、正確で迅速な定量が困難を極めるという難点があっ
た。
は、簡易分別定量法が知られている。当該方法は、総ハ
プトグロビン値と総ヘモグロビン値から遊離ヘモグロビ
ン値を算出する方法であるが、ハプトグロビンには、３
種類の型（１−１型、１−２型、２−１型）が存在する
為、正確で迅速な定量が困難を極めるという難点があっ
た。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、上記
従来技術の欠点を克服することにある。即ち、本発明
は、ハプトグロビン固定化担体を用いて、検体中の遊離
ヘモグロビンを吸着除去し、ヘモグロビン−ハプトグロ
ビン複合体を分画し、当該複合体のヘモグロビン値を求
め、総ヘモグロビン値との差から、遊離ヘモグロビン値
を算出する方法に関するものである。
従来技術の欠点を克服することにある。即ち、本発明
は、ハプトグロビン固定化担体を用いて、検体中の遊離
ヘモグロビンを吸着除去し、ヘモグロビン−ハプトグロ
ビン複合体を分画し、当該複合体のヘモグロビン値を求
め、総ヘモグロビン値との差から、遊離ヘモグロビン値
を算出する方法に関するものである。
【０００７】
【課題を解決するための手段】本発明にかかわるハプト
グロビン−ヘモグロビン定量は、遊離ハプトグロビンを
固定した不溶性担体をカラムに充填し、更にそのカラム
を遠沈管に挿入したもので、検体を添加した後、遠心分
離することにより、遊離ヘモグロビンを除去し、ヘモグ
ロビン−ハプトグロビン複合体を迅速に分画、定量する
ことを特徴とするものである。
グロビン−ヘモグロビン定量は、遊離ハプトグロビンを
固定した不溶性担体をカラムに充填し、更にそのカラム
を遠沈管に挿入したもので、検体を添加した後、遠心分
離することにより、遊離ヘモグロビンを除去し、ヘモグ
ロビン−ハプトグロビン複合体を迅速に分画、定量する
ことを特徴とするものである。
【０００８】本発明に関わる遊離ヘモグロビン吸着材に
は、既知の遊離ヘモグロビン吸着材を用いる事ができ
る。即ち、遊離ヘモグロビン吸着に供する不溶性担体
は、合成有機高分子化合物、天然有機高分子化合物、改
質天然有機高分子化合物が考えられる。また、当該担体
は、スペーサーを保有することも可能である。更に、当
該不溶性担体の型状は、粒子状、繊維状、膜状等、何れ
の公知の形状も用いられ得る。また、担体表面には、有
効表面積を拡大する為、微小孔が存在することが好まし
い。上記の担体に、リガンドである遊離ハプトグロビン
または、抗遊離ヘモグロビン抗体を導入する。
は、既知の遊離ヘモグロビン吸着材を用いる事ができ
る。即ち、遊離ヘモグロビン吸着に供する不溶性担体
は、合成有機高分子化合物、天然有機高分子化合物、改
質天然有機高分子化合物が考えられる。また、当該担体
は、スペーサーを保有することも可能である。更に、当
該不溶性担体の型状は、粒子状、繊維状、膜状等、何れ
の公知の形状も用いられ得る。また、担体表面には、有
効表面積を拡大する為、微小孔が存在することが好まし
い。上記の担体に、リガンドである遊離ハプトグロビン
または、抗遊離ヘモグロビン抗体を導入する。
【０００９】ヒトハプトグロビンは主に肝実質細胞で生
合成されるほか、網内系組織、脾臓、リンパ節、胞腺で
も生合成される。ヒトハプトグロビンは 1-1型、1-2
型、2-1 型に区別される。ヒトハプトグロビンは免疫グ
ロブリンと同様に、２本のＨ鎖（β鎖）と２本のＬ鎖
（α鎖）からなる。ヒトハプトグロビンの型は、α鎖の
一次構造の違いによるもので、α1 （α1 はα1Fとα1S
の２種類がある）とα2 の３種類があり、α鎖は、優劣
のない対立遺伝子ＨP1F 、ＨP1S およびＨP2によって決
定されている。β鎖はヒトハプトグロビンの各型に共通
している。分子組成は 1-1型は（α1 β）2 : 分子量約
80,000 、2-1 型は（α1 β）2 と（α2 β）n : 分子
量約 200,000の混合した組成を持つものと考えられてい
る。また、2-2 型は種々の程度に重合したポリマーから
なっており、分子組成は（α2 β）n：分子量約400,000
で表される。ヒトハプトグロビンの主要な生理的機能
は、ヘモグロビンと特異的に結合して安定なハプトグロ
ビン・ヘモグロビン複合体を形成することである。この
複合体は、抗原抗体複合体と異なり、ｐＨの低下によっ
ても容易に解離しない。ヒトハプトグロビン 1-1型１分
子はヘモグロビン１分子と結合する。2-1 型、2-2 型に
ついては不明のままである。ヒトハプトグロビンはテト
ラマーであるヘモグロビンと直接結合するのではなく、
テトラマーから解離したαβダイマーと結合する。従っ
て、ヒトハプトグロビン 1-1型は２価として働き、２つ
のαβダイマーと結合する。遊離ハプトグロビンの固定
化方法は、共有結合、物理的吸着、イオン結合、生化学
的特異結合等、特に制限されないが、血液中での結合安
定性を考慮すると、共有結合が好ましい。
合成されるほか、網内系組織、脾臓、リンパ節、胞腺で
も生合成される。ヒトハプトグロビンは 1-1型、1-2
型、2-1 型に区別される。ヒトハプトグロビンは免疫グ
ロブリンと同様に、２本のＨ鎖（β鎖）と２本のＬ鎖
（α鎖）からなる。ヒトハプトグロビンの型は、α鎖の
一次構造の違いによるもので、α1 （α1 はα1Fとα1S
の２種類がある）とα2 の３種類があり、α鎖は、優劣
のない対立遺伝子ＨP1F 、ＨP1S およびＨP2によって決
定されている。β鎖はヒトハプトグロビンの各型に共通
している。分子組成は 1-1型は（α1 β）2 : 分子量約
80,000 、2-1 型は（α1 β）2 と（α2 β）n : 分子
量約 200,000の混合した組成を持つものと考えられてい
る。また、2-2 型は種々の程度に重合したポリマーから
なっており、分子組成は（α2 β）n：分子量約400,000
で表される。ヒトハプトグロビンの主要な生理的機能
は、ヘモグロビンと特異的に結合して安定なハプトグロ
ビン・ヘモグロビン複合体を形成することである。この
複合体は、抗原抗体複合体と異なり、ｐＨの低下によっ
ても容易に解離しない。ヒトハプトグロビン 1-1型１分
子はヘモグロビン１分子と結合する。2-1 型、2-2 型に
ついては不明のままである。ヒトハプトグロビンはテト
ラマーであるヘモグロビンと直接結合するのではなく、
テトラマーから解離したαβダイマーと結合する。従っ
て、ヒトハプトグロビン 1-1型は２価として働き、２つ
のαβダイマーと結合する。遊離ハプトグロビンの固定
化方法は、共有結合、物理的吸着、イオン結合、生化学
的特異結合等、特に制限されないが、血液中での結合安
定性を考慮すると、共有結合が好ましい。
【００１０】抗遊離ヘモグロビン抗体は常法により調製
された遊離ヘモグロビンを、常法により哺乳類、或い
は、鳥類に免疫することにより、哺乳類では血液中に、
鳥類では、卵黄中に産生させることが可能である。産生
された抗体を常法に従い分画し、上記担体に直接、間接
にリガンドとして固定する。
された遊離ヘモグロビンを、常法により哺乳類、或い
は、鳥類に免疫することにより、哺乳類では血液中に、
鳥類では、卵黄中に産生させることが可能である。産生
された抗体を常法に従い分画し、上記担体に直接、間接
にリガンドとして固定する。
【００１１】
【実施例】以下、実施例を用いて本発明を説明する。 〈実施例１〉 ＜ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体の定量＞ヒト遊
離ハプトグロビン固定担体１ｍｌを容量３ｍｌのカラム
に充填し、更に、当該カラムを遠沈管に挿入し、当該遠
沈管を３，０００ｒｐｍで５分間、遠心分離し、担体か
ら水分を分離した。当該カラムを別の遠沈管に入れ替え
た後、被検検体０．５ｍｌを添加し、３，０００ｒｐｍ
で５分間、遠心分離し、検体からヘモグロビン−ハプト
グロビン複合体を分画した。分画したヘモグロビン−ハ
プトグロビン複合体をテトラメチルベンジジン法により
定量した。予め、定量した総ヘモグロビン値と当該担体
の値の差から遊離ヘモグロビン値を算出した。
離ハプトグロビン固定担体１ｍｌを容量３ｍｌのカラム
に充填し、更に、当該カラムを遠沈管に挿入し、当該遠
沈管を３，０００ｒｐｍで５分間、遠心分離し、担体か
ら水分を分離した。当該カラムを別の遠沈管に入れ替え
た後、被検検体０．５ｍｌを添加し、３，０００ｒｐｍ
で５分間、遠心分離し、検体からヘモグロビン−ハプト
グロビン複合体を分画した。分画したヘモグロビン−ハ
プトグロビン複合体をテトラメチルベンジジン法により
定量した。予め、定量した総ヘモグロビン値と当該担体
の値の差から遊離ヘモグロビン値を算出した。
【００１２】〈実施例２〉 ＜標準ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体の調製＞市
販ハプトグロビンの濃縮操作、或いは希釈操作により調
整したハプトグロビン溶液と、対応する同濃度の遊離ヘ
モグロビン溶液を等量混合し、４ｍｇ／ｍｌ、２ｍｇ／
ｍｌ、１ｍｇ／ｍｌ、０．５ｍｇ／ｍｌ、０．２５ｍｇ
／ｍｌ、０．１２５ｍｇ／ｍｌの濃度のヘモグロビン-
ハプトグロビン複合体を調製し、前述の遠心分離法によ
り遊離ハプトグロビン固定化装置を通過させた後、凍結
乾燥し、標準ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体とし
た。
販ハプトグロビンの濃縮操作、或いは希釈操作により調
整したハプトグロビン溶液と、対応する同濃度の遊離ヘ
モグロビン溶液を等量混合し、４ｍｇ／ｍｌ、２ｍｇ／
ｍｌ、１ｍｇ／ｍｌ、０．５ｍｇ／ｍｌ、０．２５ｍｇ
／ｍｌ、０．１２５ｍｇ／ｍｌの濃度のヘモグロビン-
ハプトグロビン複合体を調製し、前述の遠心分離法によ
り遊離ハプトグロビン固定化装置を通過させた後、凍結
乾燥し、標準ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体とし
た。
【００１３】〈実施例３〉抗遊離ハプトグロビン抗体固
定化担体を用いて調製したウシ、ウマ、ブタ由来の遊離
ハプトグロビンを固定化し、キトサン−エポキシド−ウ
シ遊離ハプトグロビン担体、キトサン−エポキシド−ウ
マ遊離ハプトグロビン担体、キトサン−エポキシド−ブ
タ遊離ハプトグロビン担体を各々調製した。各担体２ｍ
ｌをカラムに充填し、以下、実施例１と同様の方法でヘ
モグロビン−ハプトグロビン複合体の定量を行い、遊離
ヘモグロビン値を算出した。
定化担体を用いて調製したウシ、ウマ、ブタ由来の遊離
ハプトグロビンを固定化し、キトサン−エポキシド−ウ
シ遊離ハプトグロビン担体、キトサン−エポキシド−ウ
マ遊離ハプトグロビン担体、キトサン−エポキシド−ブ
タ遊離ハプトグロビン担体を各々調製した。各担体２ｍ
ｌをカラムに充填し、以下、実施例１と同様の方法でヘ
モグロビン−ハプトグロビン複合体の定量を行い、遊離
ヘモグロビン値を算出した。
【００１４】〈実施例４〉遺伝子組み替え操作により得
られたヒト遊離ハプトグロビンを多孔質ガラスに固定化
し、多孔質ガラス−ＰＥＧ−遺伝子操作ヒト遊離ハプト
グロビン担体を調製した。同担体２ｍｌを充填したカラ
ムを用いてヘモグロビン−ハプトグロビン複合体の定量
を行った。即ち、テトラメチルベンジジン法により、検
体の総ヘモグロビン値（ａ）を求めた。次に、実施例１
の方法に準じてヘモグロビン−ハプトグロビン複合体を
分画し、テトラメチルベンジジン法により、結合型ヘモ
グロビン値（ｂ）を求めた。（ａ）値から（ｂ）値の差
から遊離ヘモグロビン値を算出した。
られたヒト遊離ハプトグロビンを多孔質ガラスに固定化
し、多孔質ガラス−ＰＥＧ−遺伝子操作ヒト遊離ハプト
グロビン担体を調製した。同担体２ｍｌを充填したカラ
ムを用いてヘモグロビン−ハプトグロビン複合体の定量
を行った。即ち、テトラメチルベンジジン法により、検
体の総ヘモグロビン値（ａ）を求めた。次に、実施例１
の方法に準じてヘモグロビン−ハプトグロビン複合体を
分画し、テトラメチルベンジジン法により、結合型ヘモ
グロビン値（ｂ）を求めた。（ａ）値から（ｂ）値の差
から遊離ヘモグロビン値を算出した。
【００１５】〈実施例５〉 遊離ハプトグロビン固定化担体を用いたヘモグロビン-
ハプトグロビン複合体の通過試験 遊離ハプトグロビンを固定化したＳｅｐｈａｒｏｓｅ１
ｍｌを容量３ｍｌのカラムに充填し、更にそのカラムを
遠沈管に挿入した。当該遠沈管を３，０００ｒｐｍで５
分間遠心分離し、Ｓｅｐｈａｅｏｓｅの水分を分離し
た。当該カラムを別の遠沈管に移した後、ヘモグロビン
−ハプトグロビン複合体０．５ｍｌを添加し、３，００
０ｒｐｍで遠心分離し、流下液を得、ヘモグロビン−ハ
プトグロビン複合体の定量を行った。Ｓｅｐｈａｒｏｓ
ｅ量、ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体の量を変え
て同様の操作を行い、結果を表１に示した。表１に示し
た様に、溶液はほぼ１００％回収された。
ハプトグロビン複合体の通過試験 遊離ハプトグロビンを固定化したＳｅｐｈａｒｏｓｅ１
ｍｌを容量３ｍｌのカラムに充填し、更にそのカラムを
遠沈管に挿入した。当該遠沈管を３，０００ｒｐｍで５
分間遠心分離し、Ｓｅｐｈａｅｏｓｅの水分を分離し
た。当該カラムを別の遠沈管に移した後、ヘモグロビン
−ハプトグロビン複合体０．５ｍｌを添加し、３，００
０ｒｐｍで遠心分離し、流下液を得、ヘモグロビン−ハ
プトグロビン複合体の定量を行った。Ｓｅｐｈａｒｏｓ
ｅ量、ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体の量を変え
て同様の操作を行い、結果を表１に示した。表１に示し
た様に、溶液はほぼ１００％回収された。
【００１６】
【表１】
【００１７】〈実施例６〉 ＜抗遊離ヘモグロビン抗体固定化担体を用いたヘモグロ
ビン−ハプトグロビン複合体の通過試験＞抗遊離ヘモグ
ロビン抗体を固定化したＳｅｐｈａｒｏｓｅ１ｍｌを容
量３ｍｌのカラムに充填し、更にそのカラムを試験管に
挿入した。当該試験管を３，０００ｒｐｍで５分間遠心
分離し、Ｓｅｐｈａｅｏｓｅの水分を分離した。当該カ
ラムを別の試験管に移した後、ヘモグロビン−ハプトグ
ロビン複合体０．５ｍｌを添加し、３，０００ｒｐｍで
遠心分離し、流下液を得、ヘモグロビン−ハプトグロビ
ン複合体の定量を行った。Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ量、ヘモ
グロビン−ハプトグロビン複合体の量を変えて同様の操
作を行い、結果を表２に示した。表２に示した様に、溶
液はほぼ１００％回収された。
ビン−ハプトグロビン複合体の通過試験＞抗遊離ヘモグ
ロビン抗体を固定化したＳｅｐｈａｒｏｓｅ１ｍｌを容
量３ｍｌのカラムに充填し、更にそのカラムを試験管に
挿入した。当該試験管を３，０００ｒｐｍで５分間遠心
分離し、Ｓｅｐｈａｅｏｓｅの水分を分離した。当該カ
ラムを別の試験管に移した後、ヘモグロビン−ハプトグ
ロビン複合体０．５ｍｌを添加し、３，０００ｒｐｍで
遠心分離し、流下液を得、ヘモグロビン−ハプトグロビ
ン複合体の定量を行った。Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ量、ヘモ
グロビン−ハプトグロビン複合体の量を変えて同様の操
作を行い、結果を表２に示した。表２に示した様に、溶
液はほぼ１００％回収された。
【００１８】
【表２】 以上の結果から明かなように、本発明の遊離ヘモグロビ
ン吸着材は血中の遊離ヘモグロビンを選択的かつ簡便に
除去でき、ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体を迅速
に分画でき、遊離ヘモグロビン値も簡便に算出できるこ
とがわかった。
ン吸着材は血中の遊離ヘモグロビンを選択的かつ簡便に
除去でき、ヘモグロビン−ハプトグロビン複合体を迅速
に分画でき、遊離ヘモグロビン値も簡便に算出できるこ
とがわかった。
【００１９】
【発明の効果】本発明の遊離ヘモグロビン吸着材は、遠
心分離法により使用する為、ヘモグロビン−ハプトグロ
ビン複合体を迅速に分画でき、総ハプトグロビンの定量
を行うことなく、ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体
値の迅速な算出を可能にする。本方法は、体外循環時の
機械的溶血や、再生不良性貧血患者の溶血によって生ず
る遊離ヘモグロビンの迅速除去に広く利用され得る。
心分離法により使用する為、ヘモグロビン−ハプトグロ
ビン複合体を迅速に分画でき、総ハプトグロビンの定量
を行うことなく、ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体
値の迅速な算出を可能にする。本方法は、体外循環時の
機械的溶血や、再生不良性貧血患者の溶血によって生ず
る遊離ヘモグロビンの迅速除去に広く利用され得る。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 田中 昌和 滋賀県大津市堅田二丁目１番１号 東洋紡 績株式会社総合研究所内
Claims (2)
- 【請求項１】 不溶性担体に遊離ハプトグロビンまた
は、抗遊離ヘモグロビン抗体を固定し、当該担体によ
り、検体中の遊離ヘモグロビンを除去または捕集した
後、検体中の残余のハプトグロビン−ヘモグロビン複合
体を定量することを特徴とするハプトグロビン−ヘモグ
ロビン複合体の定量方法。 - 【請求項２】 不溶性担体に遊離ハプトグロビンまた
は、抗遊離ヘモグロビン抗体を固定した遊離ヘモグロビ
ンの吸着材を少なくとも構成要素として有することを特
徴とするハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量キ
ット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12464192A JPH05322889A (ja) | 1992-05-18 | 1992-05-18 | ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量方法およびハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量キット |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12464192A JPH05322889A (ja) | 1992-05-18 | 1992-05-18 | ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量方法およびハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量キット |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05322889A true JPH05322889A (ja) | 1993-12-07 |
Family
ID=14890439
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP12464192A Pending JPH05322889A (ja) | 1992-05-18 | 1992-05-18 | ハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量方法およびハプトグロビン−ヘモグロビン複合体の定量キット |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05322889A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2016114573A (ja) * | 2014-12-18 | 2016-06-23 | 国立大学法人金沢大学 | オキシトシン検出のためのサンプルの前処理方法 |
| WO2020066722A1 (ja) * | 2018-09-26 | 2020-04-02 | 栄研化学株式会社 | ヘモグロビンの測定試薬、測定キット及び測定方法 |
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1992
- 1992-05-18 JP JP12464192A patent/JPH05322889A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2016114573A (ja) * | 2014-12-18 | 2016-06-23 | 国立大学法人金沢大学 | オキシトシン検出のためのサンプルの前処理方法 |
| WO2020066722A1 (ja) * | 2018-09-26 | 2020-04-02 | 栄研化学株式会社 | ヘモグロビンの測定試薬、測定キット及び測定方法 |
| JPWO2020066722A1 (ja) * | 2018-09-26 | 2021-09-16 | 栄研化学株式会社 | ヘモグロビンの測定試薬、測定キット及び測定方法 |
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