JPH04501065A - Improved baculovirus expression vector - Google Patents

Improved baculovirus expression vector

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JPH04501065A
JPH04501065A JP50875390A JP50875390A JPH04501065A JP H04501065 A JPH04501065 A JP H04501065A JP 50875390 A JP50875390 A JP 50875390A JP 50875390 A JP50875390 A JP 50875390A JP H04501065 A JPH04501065 A JP H04501065A
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vector
gene
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baculovirus
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ミラー,ロイス ケイ.
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ユニバーシティ オブ ジョージア リサーチ ファウンデーション インコーポレイテッド
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    • C12N2710/14143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 サレタバキニロウイルス ベタ9− アメリカ合衆国政府は、本発明の権利を有する。この研究は、国立衛生研究所の 研究費N、r、H,No、Al23719 ニ援助された。[Detailed description of the invention] Saletabakinirovirus Beta9- The United States Government has rights in this invention. This study was conducted by the National Institutes of Health Research funds N, R, H, No, Al23719 were supported.

挾1しし! 本発明は、遺伝子発現の改良に関する方法および組成物に関する。より詳しくは 、本発明は、バキュロウィルス基における異種遺伝子の発現を改良するための新 規なプロモータ類に関する。1 spoon! The present invention relates to methods and compositions for improving gene expression. For more details , the present invention provides a new method for improving the expression of heterologous genes in baculovirus bases. Regarding regular promoters.

及豆旦麓盈 本明細書において、本発明の目的に対して下記の定義が適用される。Soy bean paste Herein, the following definitions apply for the purposes of the invention.

用語”発現”は、下記のように特徴づけられ得る。1個の細胞は、多くのタンパ ク質を合成する能力がある。細胞が合成することができる多くのタンパク質は、 常に合成されるわけではない。所定の遺伝子によりコードされた所定のポリペプ チドが細胞により合成されたときに、その遺伝子は発現されたといえる。発現さ れるために、その所定のポリペプチドをコードするDNA配列は該遺伝子の制御 領域に対して適切に配置されていなければならない。この制御領域の機能は、そ の制御の下に遺伝子の発現を許すことである。The term "expression" can be characterized as follows. One cell contains many proteins. It has the ability to synthesize dark qualities. Many proteins that cells can synthesize are They are not always combined. a given polypep encoded by a given gene The gene is said to be expressed when Tide is synthesized by the cell. expressed In order for the DNA sequence encoding a given polypeptide to be Must be properly placed in relation to the area. The function of this control area is that The goal is to allow gene expression under the control of

用語”ベクター”とは、細胞中で複製され得る、完全なレプリコンを含む2本鎖 のDNAである染色体外分子を指す。一般にベクターは、ウィルス、または細菌 および酵母のプラスミドに由来する。バ牛10ウィルスベクターはパキュロウイ ルスレプリフンを含む。The term "vector" refers to a double stranded vector containing a complete replicon that can be replicated in a cell. This refers to an extrachromosomal molecule that is the DNA of Vectors are generally viruses or bacteria. and from yeast plasmids. Bagyu 10 virus vector is Pacuroui Including Ruslepurifun.

用語”遺伝子”とは、1本のタンパク質鎖の合成のための情報を伝達し、その合 成を指示するDNA配列を指す。The term "gene" means a protein that carries the information for the synthesis of a protein chain and that refers to the DNA sequence that directs the formation of

用語”感染”とは、細胞の複製および増殖に好ましい条件において、細胞への作 用物(例えばウィルス、細菌など)による侵入を指す。The term "infection" refers to an action on a cell under conditions favorable for cell replication and proliferation. This refers to the invasion caused by harmful substances (e.g. viruses, bacteria, etc.).

用語” トランスフェクシ璽ン”とは、ウィルスの精製された核酸を細胞に感染 させる技術を指す。The term "transfection" refers to infecting cells with purified nucleic acid of a virus. It refers to the technology that makes

用語′異種遺伝子”は、ここではバキエロウイルスベクターに関連し、通常はそ のベクターが由来するウィルスにより生産されるのではなく、組換えDNAとし て細胞に導入されるか、あるいは、組換えDNAゲノムを有するウィルス内に存 在するポリペプチドをコードするDNAをさす。ここで使用される用語”パラセ ンジャー遺伝子”あるいは”パラセンジャーDNA”は、用語“異種遺伝子”と 同等である。ここで使用される”外来性の“とは、′異種の”と同意である。The term ``heterologous gene'' here refers to baquierovirus vectors, which are usually The vector is not produced by the virus from which it is derived, but as recombinant DNA. into cells, or reside within a virus containing a recombinant DNA genome. refers to the DNA that encodes the existing polypeptide. The term “parase” used here The term “heterologous gene” or “parasanger DNA” is synonymous with the term “foreign gene”. are equivalent. As used herein, "foreign" is synonymous with 'foreign'.

用語” トランスプレイスメント プラスミド”とは、ウィルスベクターの構築 における中間生成物として使用される細菌ベクターをさす。トランスブレイスメ ンドブラスミドは、同種の組換えにより、外来性ゲノム情報のウィルスゲノムの 特定部位への転移を促進する。上記外来性ゲノム情報とは、例えば、新規プロモ ーター、およびそのプロモーターの制御ノ下に存在する異種構造遺伝子の組み合 せである。この同種の組換えは、そのキメラ遺伝子に隣接するDNA配列により 生じる。The term "transplacement plasmid" refers to the construction of viral vectors. refers to bacterial vectors used as intermediates in trans braces By homologous recombination, the endoblasmid transfers foreign genomic information to the viral genome. Promotes metastasis to specific areas. The above-mentioned exogenous genome information includes, for example, new promotional information. a combination of heterologous structural genes that exist under the control of a promoter and its promoter. It is set. This homologous recombination is caused by DNA sequences flanking the chimeric gene. arise.

遺伝子工学は、生化学的に有用なある種の生産物が多量に生産され得る段階にま で発展してきた。例えば、2つの商業的に成功した医薬品であるヒト成長ホルモ ンおよび組織プラズミノーゲンアクティベーター(t−PA)は、今や多量に生 産され、病理学的な種々の治療に使用されている。しかし、科学者は、種々の生 化学的な系においてタンパク質や他の生産物を生産するための新しくより能率的 な系の発見を絶えず試みている。Genetic engineering has reached the stage where certain biochemically useful products can be produced in large quantities. It has developed in For example, two commercially successful drugs, human growth hormone. protein and tissue plasminogen activator (t-PA) are now produced in large quantities. It is produced and used in various pathological treatments. However, scientists have New and more efficient ways to produce proteins and other products in chemical systems We are constantly trying to discover new systems.

遺伝子を1つの種から他の種に転移し、かつ発現させる技術は、全ての生物のD NAが、同じ4個のヌクレオチドを含有する長い鎖を有する化学的に類似したも のであるという理由により、可能となっている。ヌクレオチド配列は、基本的に 全ての生物種に同様のアミノ酸とヌクレオチド配列との対応関係により特定のア ミノ酸をコードするコドン(トリブレブト)で配列されている。DNAは、遺伝 子の発現の開始を媒介する制御領域およびフード領域を含む遺伝子に組み立てら れている。The technology for transferring and expressing genes from one species to another is Chemically similar NAs with long chains containing the same four nucleotides This is possible because of the fact that The nucleotide sequence is basically Due to the same correspondence between amino acids and nucleotide sequences in all living species, It is arranged in codons (triblebuts) that code for amino acids. DNA is genetic Assembled into a gene containing control and food regions that mediate initiation of offspring expression It is.

これらの制御領域は、一般に、′プロモーター”と呼ばれる。These control regions are commonly referred to as 'promoters.'

RNAポリメラーゼと称される酵素は、プロモーター領域に結合し、さらに活性 化されるか、あるいは何らかの方法で指令を与えられる。このことによりこの酵 素はコード領域に沿って移動し、そのDNAからメツセンジャーリボ核酸(謬R NA)へ二一ドされた情報を転写する。そのmRNAは、認識シグナルを含有す る。それは、リポソーム結合についてのシグナルと、翻訳の開始および終止シグ ナルと、ボリアデニール化についてのシグナルである。次に細胞性リポソームは 、+eRNAのヌクレオチドコドンの情報を、ヌクレオチドコドンにより決定さ れるアミノ酸配列をもつタンパク質に翻訳する。An enzyme called RNA polymerase binds to the promoter region and activates it. be made or given commands in some way. This allows the fermentation The DNA moves along the coding region and extracts Messenger ribonucleic acid from the DNA. 2. Transfer the coded information to NA). The mRNA contains recognition signals. Ru. It provides signals for liposome binding and translation initiation and termination signals. It is a signal about null and boriadenylation. Next, cellular liposomes , the nucleotide codon information of +eRNA is determined by the nucleotide codon. It is translated into a protein with an amino acid sequence.

制限エンドヌクレアーゼの一般的な使用、ならびにDNA配列を操作する能力は 、有用な制限部位の配列を含有する、望ましいヌクレオチド配列を有する2本鎖 のオリゴヌクレオチドを化学的に合成できることができるようになり太き(改良 されている。実質的には、天然に存在する、クローンされた、遺伝的に変化させ られた、あるいは化学的に合成されたDNAセグメントは、適切な配列あるいは 認識部位がDNA分子の末端に接続することにより、他のどのようなセグメント とも対になり得る。この生成物は、適当な制限エンドヌクレアーゼの加水分解作 用によりDNA分子を結合させるために必要な相補的末端を生じる。遺伝子転移 のスキームには、種々の多くの変形が存在し得るが、その技術においては、それ らの配列の発現を可能とするようにプロモーター領域に関して適切なfE置およ び方向に、DNA配列を挿入するこが可能であることに、注目すべきことが重要 である。あらゆるDNA配列は、人工的な組換え分子、あるいはキメラ、あるい はハイブリッドDNAと呼ばれる複合体を構築するためにベクター分子に挿入さ れ得る可能性がある。大部分の目的においては、用いられるベクターは、2本鎖 の染色体外DNA分子であり、このDNA分子は、組換えDNA分子が形質転換 により細菌や酵母に入れられたときに複製され得るための完全なレプリコンを含 有する。通常使用されるベクターは、ウィルス出来であり、あるいは細菌および 酵母に関連するプラスミドである。The general use of restriction endonucleases, as well as their ability to manipulate DNA sequences, , a double strand having the desired nucleotide sequence, containing the sequence of useful restriction sites. It became possible to chemically synthesize oligonucleotides with thicker (improved) has been done. Virtually any naturally occurring, cloned or genetically altered DNA segments that have been synthesized or chemically synthesized have the appropriate sequence or By connecting the recognition site to the end of the DNA molecule, any other segment Can be paired with both. This product can be produced by hydrolysis with a suitable restriction endonuclease. The purpose of this process is to generate the complementary ends necessary to join the DNA molecules. gene transfer Although there may be many variations of the scheme, the technique Appropriate fE placement and It is important to note that it is possible to insert DNA sequences in both directions. It is. Any DNA sequence is an artificial recombinant molecule, or a chimera, or is inserted into the vector molecule to construct a complex called hybrid DNA. There is a possibility that For most purposes, the vectors used are double-stranded. is an extrachromosomal DNA molecule that is transformed into a recombinant DNA molecule. Contains a complete replicon so that it can be replicated when placed in bacteria or yeast. have Commonly used vectors are viral or bacterial and It is a plasmid related to yeast.

遺伝コードの性質のため、挿入された遺伝子あるいはその遺伝子部分は、ベクタ ーが複製する細胞中において発現を調節し得る制御領域(プロモーター)に結合 するならば、それがコードしているアミノ酸配列の生産を指示する。Due to the nature of the genetic code, the inserted gene or portion of the gene is - binds to a control region (promoter) that can regulate expression in the cells in which it replicates If so, it directs the production of the amino acid sequence it encodes.

プロモーター領域に対して適切な関係に、クローン化された遺伝子が配置された 発現ベクターの構築のための一般的な技術は、文献(T、Maniatisら、 (1982)Molecular Cloning ALaboratory  Manual、Co1d Spring Harbor Laboratory )に開示されている。The cloned gene is placed in the proper relationship to the promoter region General techniques for the construction of expression vectors are described in the literature (T., Maniatis et al. (1982) Molecular Cloning A Laboratory Manual, Col1d Spring Harbor Laboratory ) is disclosed.

上記の一般的なスキームと技術とを利用する多くのベクター系は、遺伝子的に修 飾された生物によるタンパク質の、商業的あるいは実験的な合成に使用されるた めに開発された。Many vector systems that utilize the general schemes and techniques described above are genetically modified. For use in the commercial or experimental synthesis of proteins by decorated organisms. It was developed for

これらの多くのベクター系では、ベクターの複製および異種遺伝子の発現のため に、原核性の111rs性の宿主を用いる。さらに、ベクターの複製および異種 遺伝子発現のために真核性の細胞を用いる系も用いられてきた。このような系は B型肝炎ウィルスの表面抗原の合成、およびヒト組織プラスミノーゲンアクティ ベーターの合成に用いられている。In many of these vector systems, for vector replication and expression of heterologous genes, For this purpose, a prokaryotic 111rs host is used. Additionally, vector replication and heterologous Systems using eukaryotic cells for gene expression have also been used. Such a system Synthesis of hepatitis B virus surface antigen and human tissue plasminogen activity It is used in the synthesis of beta.

真核性の宿主は、生物学的に活性になるために、合成のあとに修飾を必要とする (例えば糖付加)、真核細胞のタンパク質の生産に望ましい。原核性細胞は、一 般にこのような修飾を行えない。Eukaryotic hosts require modification after synthesis to become biologically active (e.g. glycosylation), desirable for eukaryotic protein production. Prokaryotic cells are one Generally, such modifications cannot be made.

真核性宿主においてウィルスベクターを使用することは、最近のかなりの量の研 究において課題となっている。ウィルス性ベクター系には、その有用性を減じる 重大な不都合ならびに限界がある。例えば、ある種のウィルス性ベクターは、価 格的に高くつく真核細胞の培養系において経済的にタンパク質を生産するために 、遺伝子発現を十分に高レベルに到達させることができい。ある種の真核細胞に 対するウィルス性ベクターは、哺乳類系において病原性あるいは発ガン性があり 、突発的感染と結び付く重大な、健康および安全性についての潜在性な問題をも たらす可能性がある。ある種のウィルス性ベクターには、そのウィルス粒子の中 へ安定に挿入することができる異種遺伝子の大きさに関して、きびしい制限があ る。The use of viral vectors in eukaryotic hosts has received a considerable amount of recent research. This is an issue in research. Viral vector systems reduce their usefulness There are serious disadvantages and limitations. For example, some viral vectors To economically produce proteins in an extremely expensive eukaryotic cell culture system , unable to reach sufficiently high levels of gene expression. in certain eukaryotic cells Viral vectors are pathogenic or carcinogenic in mammalian systems. , and the potential serious health and safety issues associated with outbreaks. There is a possibility that Some viral vectors contain There are severe limits on the size of a foreign gene that can be stably inserted into Ru.

遺伝子工学の技術がより高度になるにつれて、1個を越える異種遺伝子の、例え ば1個を越えるタンパク質をコードする遺伝子の調和的な発現を達成し、種々の 遺伝子生産物の調和的な活性を得るために、これらを宿主細胞に挿入することの 興味が増している。As genetic engineering techniques become more sophisticated, more than one foreign gene, e.g. achieve the harmonious expression of genes encoding more than one protein, and The process of inserting gene products into host cells in order to obtain their harmonious activity. My interest is increasing.

理想的なウィルス性のベクターとは、異種DNAの大きいセグメントを安定に保 有する能力があり、効果的に細胞を感染させる能力があり、その細胞のタンパク 質合成のすべてを、実質的に外来の遺伝子を高度に発現するように変化させるよ うな能力があるものである。高度に真核的な環境における多くの異種遺伝子の、 増殖ならびに高レベルの発現においてベクターに適したウィルスは、バキユロウ イルスAutOgrapha california 核ポリへドロシス(核多 角体病)ウィルス(AeMNP■)である、(Miller、L、に、(198 1)−Virus Vector forGenetic Engineeri ng in Invertebrates、−Genetic Engines ring in the Plant 5cienses、 N、 Panop olous編、Praeger Publ、、N、Y、、pp、203−224 ;米国特許 No、 4.745.051)バキュロウィルス群には、核ポリへ ドロシスウィルス(NPV)とグラヌロシスウイルス(ay)のサブグループが 存在する。The ideal viral vector stably stores large segments of foreign DNA. have the ability to infect a cell effectively, and have the ability to effectively infect a cell and Virtually all of the protein synthesis is altered to highly express the foreign gene. It has such abilities. of many heterologous genes in a highly eukaryotic environment, Viruses suitable as vectors for propagation and high-level expression are Irus AutOgrapha california nuclear polyhedrosis Keratinosis) virus (AeMNP■), (Miller, L., (198 1)-Virus Vector for Genetic Engineeri ng in Invertebrates, -Genetic Engines ring in the Plant 5 sciences, N, Panop olous ed., Praeger Publ., N. Y., pp. 203-224. ; U.S. Patent No. 4.745.051) The baculovirus group has The subgroups of drosisvirus (NPV) and granulosisvirus (ay) are exist.

バキュロウィルスは、節足動物宿主のみに感染する。NPVおよびGVのウィル ス粒子は、タンパク質性の結晶中にとじこめられている。バキユロウイルスのと じこめられた形態において、ピリオン(エンベロープに包まれたヌクレオカプシ ド)は、結晶性タンパク質マトリックス中に埋め込まれている。この構造は、封 入体ないしは包接体とよばれるが、自然界において生体外で見いだされる形態で あり、そして生物間の感染を広めることに一役かっている。サブグループNPV は、1つの大きい(5μ冒にも達する)多面体結晶中に封入された多くのピリオ ンを生産する。他方、サブグループGvは、小さな結晶中に封入された1個のピ リオンを生産する。そのいずれの形態においても結晶性タンパク質マトリックス は、NPVあるいはGVにおいて各々ポリヘトリンあるいはグラヌリンとして知 られている25kDaから33kDaの単独のポリペプチドから本質的に構成さ れている。Baculoviruses infect only arthropod hosts. Will of NPV and GV The particles are trapped in proteinaceous crystals. Baquillovirus and In the enclosed form, the pillion (enveloped nucleocapsi) ) is embedded in a crystalline protein matrix. This structure It is called a clathrate or a clathrate, but it is a form found outside the body in nature. Yes, and they play a role in spreading infection between organisms. Subgroup NPV is a large number of periods encapsulated in one large (up to 5μ) polyhedral crystal. produce. On the other hand, subgroup Gv consists of one pin encapsulated in a small crystal. Produce Lion. Crystalline protein matrix in either of its forms are known as polyhetrin or granulin in NPV or GV, respectively. consists essentially of a single 25kDa to 33kDa polypeptide It is.

バキユロウィルスの構造ならびに感染の過程についてのより一般的な情報は、下 記の総説にある。: Carstens (1980)−Baculoviru ses−Frfend or Man、Foe of Jnsects?、−T rends and Biochemieal 5cience、52:107 −10; Harrap and Payne (1979)−The 5tr uctural Properties and Indentificati on of 1nsect Viruses−in Advances in  Virus Re5each4o1.25.M、A、Layerら編、Acad e+sic Press、 New York、pp、273−355;および Ml 11er、 L、に、(1981) (、前出)。More general information about the structure of baculovirus and the process of infection can be found below. This is in the review article. : Carstens (1980)-Baculoviru ses-Frfend or Man, Foe of Jnsects? , -T Rends and Biochemical 5science, 52:107 -10; Harrap and Payne (1979) - The 5tr uctural Properties and Indentificati on of 1nsect Viruses-in Advances in Virus Re5each4o1.25. Edited by M. A. Layer et al., Acad. e+sic Press, New York, pp. 273-355; and Ml 11er, L. (1981) (supra).

バキ二ロウイルスヘルパー独立性のウィルス性ベクターは、特に、生物学的に活 性な真核性のタンパク質の高レベルの生産に有用である。い(つかの外来遺伝子 の発現レベルは、組換え感染細胞の総タンパク質の10%から25%であると報 告されている。1本鎖のペプチドの断片、糖付加、りん酸化、重合、複合体の形 成、単離ならびにタンパク質の加水分解などの翻訳後の適当な修飾は、この発現 系を用いて生産された種々の興なる異型タンパク質について報告されている。Baquinirovirus helper-independent viral vectors are especially biologically active. It is useful for the production of high levels of sexual eukaryotic proteins. (some foreign genes) The expression level is reported to be 10% to 25% of the total protein in recombinant infected cells. It has been tell. Single-chain peptide fragments, glycosylation, phosphorylation, polymerization, and complex forms Appropriate post-translational modifications such as synthesis, isolation and protein hydrolysis can improve this expression. A variety of atypical proteins produced using this system have been reported.

現在まで開示されているバキ二ロウイルス発現ベクターは、外来遺伝子発現を導 くために超後期プロモーター(very latepromoter)、たとえ ば、ポリヘトリンあるいはポリペプチド10(plo>プロモーターを使用して いる。(Luckow and Su+smerSによる総説(1988)−T rends in the Develops+ent of Baculov irus Expression Vectors、+旧o/Technolo gy 6:47−55;Miller几、に、 (1988)−Baculo− viruses as Gene ExpressionVectors、 ” Ann、Review of Microbiology、42:177−19 9.)これらのプロモーターは、ウィルス感染の過程の間に調節され、非常に遅 く通常感染後18から24時間後に開始する感染過程において活性化される。ポ リヘトリンならびにp10遺伝子は、細胞培養における複製に欠くことのできな いものではない。従って、この遺伝子は、出芽状態のウィルスの生成に影響する ことなく、問題としている異種遺伝子と置き換えられ得る。しかしながら、ポリ ヘトリン遺伝子置き換えは、ウィルスの封入体形成に影響する。組換え体のプラ ーク中に封入されたウィルスが存在しないことにより、組換えウィルスについて の表現型の選択がなされ得る。これは有用であるが、いくぶん繁雑である。これ はまた、昆虫の幼虫においてより安価にタンパク質を大量生産するのに、組換え ウィルスを使用することの可能性に限界を与える。The baquinirovirus expression vectors disclosed to date are capable of directing foreign gene expression. For example, a very late promoter For example, using polyhetrin or polypeptide 10 (plo> promoter) There is. (Review by Luckow and Su+smerS (1988)-T rends in the Developments+ent of Baculov irus Expression Vectors, + old o/Technolo gy 6:47-55; Miller 几, Ni, (1988) -Baculo- viruses as Gene Expression Vectors,” Ann, Review of Microbiology, 42:177-19 9. ) These promoters are regulated during the process of viral infection and are very slow. It is activated during the infection process, which usually begins 18 to 24 hours after infection. Po The lehetrin and p10 genes are essential for replication in cell culture. It's not something. Therefore, this gene influences the production of virus in the budding state. can be replaced with the foreign gene in question without causing any problems. However, poly Hetrin gene replacement affects viral inclusion formation. recombinant plastic Regarding the recombinant virus, due to the absence of encapsulated virus in the Phenotypic selection can be made. This is useful, but somewhat complicated. this has also used recombinant technology to more cheaply produce large amounts of protein in insect larvae. Limits the possibilities of using viruses.

バキ二ロウイルスベクターの経済的価値および一般的な有用性は、異種遺伝子の 発現を導くために用いられるプロモーターの性質に強く依存している。ポリへド リンプロモーターは、タンパク質の高レベル生産のために広く一般にえらばれる プロモーターである。しかしながら、しばしばより高レベルのタンパク質生産が 経済的な実現性のためには必要とされる。The economic value and general utility of baquinirovirus vectors is due to the It is highly dependent on the nature of the promoter used to direct expression. Polyhedo The phosphopromoter is widely chosen for high-level production of proteins. He is a promoter. However, often higher levels of protein production Required for economic viability.

高生産性に加えて、ベクターには、1個以上の異種遺伝子を発現し得ることが必 要とされてる。このようなベクターの不都合さは、ベクター内でプロモーター配 列が複製されるときにそれらがゲノムとして不安定であることである。その不安 定さを最小限にするために、もう1つ別のプロモーターが、個々の異種遺伝子の 発現のためにもちいられなければならない。これらのプロモーターは、ゲノムの 不安定さの問題を避けるために、ベクター内に自然に生じるウィルス性プロモー ターとは興なる(非相同であるンべきである。ベクターはまた、タンパク質生産 の初期において遺伝子発現を行うプロモーターを含む能力をもたねばならない。In addition to high productivity, the vector must be capable of expressing one or more heterologous genes. It is considered essential. The disadvantage of such vectors is that the promoter arrangement within the vector is They are genomically unstable when the sequences are replicated. that anxiety To minimize stability, another promoter is used for each heterologous gene. It must be used for manifestation. These promoters are Naturally occurring viral promoters in the vector should be used to avoid instability issues. vectors should be non-homologous. Vectors can also be used for protein production. It must have the ability to contain a promoter that carries out gene expression in the early stage of the process.

このことによりタンパク質の品質を同上させ、タンパク質は翻訳後の必要な修飾 を受け生物学的活性あるいは免疫学的性質を有するようになる。このような、翻 訳後の修飾は、AcMNPvベクターの超後期プロモーター、例えばポリヘトリ ンおよびploが活性化されるとき、感染の超後期段階において減少するように みえる。This improves the quality of the protein and ensures that the protein undergoes any necessary post-translational modifications. It becomes biologically active or has immunological properties. This kind of translation Post-translational modifications can be made using the very late promoter of the AcMNPv vector, e.g. and plo are activated to decrease in the very late stages of infection. I can see it.

バキ10ウィルス系において異種遺伝子の著しく増加された発現をもたらすか、 あるいは、高品質タンパク質の生産を可能とする、修飾され、あるいは合成され たプロモーター領域が必要とされる。新しいプロモーターは、十分適応性を有す るべきものであり、単独の異種遺伝子、あるいは一連の異種遺伝子がベクター系 へ挿入され、そのことにより種々のタンパク質が1度に、あるいは異なる時期に 生産され得る。さらに、もしもベクターが適切な昆虫宿主へ経口投与され得るな らば、ポリヘトリン遺伝子が、存在するべきである。results in significantly increased expression of heterologous genes in the Baki10 virus system, Alternatively, it may be modified or synthesized to allow for the production of high quality proteins. A specific promoter region is required. The new promoter is fully adaptable A single heterologous gene, or a set of heterologous genes, can be used in a vector system. , thereby allowing various proteins to be released at once or at different times. can be produced. Additionally, if the vector can be administered orally to a suitable insect host, If so, the polyhetrin gene should be present.

及朋f1枚 本発明は、新規あるいは修飾されたプロモーターの制御の下に、異種遺伝子を配 置することによりその異種遺伝子を発現させるために、バキニロウイルス遺伝子 発現ベクターを用いる改良された方法を提供する。より好ましくは、上記プロモ ーターは遺伝子の高レベル発現を促進し、昆虫細胞における遺伝子生産物の適切 な翻訳後の修飾を可能とする新規プロモーターである。より詳細には、好ましい 実施態様においては、本発明は異種遺伝子が接続され修飾されたバキニロウイル スプロモーターを提供することを包含する。本プロモーターは、トランスブレイ スメンドブラスミドにより、あるいは直接挿入により、ウィルス中へ挿入され、 適当な宿主細胞に感染するために用いられる組換えウィルスベクターが生産され る。その感染された宿主細胞は異種遺伝子産物を生産するために用いられる。Oitomo f1 piece The present invention places a heterologous gene under the control of a new or modified promoter. In order to express the heterologous gene by placing the baquinirovirus gene Improved methods of using expression vectors are provided. More preferably, the above promotion The promoter promotes high-level expression of genes and ensures proper production of gene products in insect cells. This is a novel promoter that enables post-translational modification. More specifically, preferred In embodiments, the present invention provides modified vakinirovirus with a heterologous gene attached thereto. This includes providing a promoter. The Promoter inserted into the virus by the smendo plasmid or by direct insertion, Recombinant viral vectors are produced that are used to infect appropriate host cells. Ru. The infected host cell is used to produce a heterologous gene product.

本発明によれば、異極遺伝子の発現レベルあるいは、遺伝子の収集(colle ctton of genes)のレベルを向上するための方法ならびに組成が 開示される。本発明は、パ牛二ロウイルス発現系において機能する天然バキ:L ロウイルスプロモーターの修飾物あるいは合成的に修飾されたプロモーターを含 む新規プロモーターを包含する。その新規プロモーターは、2個の開始部位を持 つプロモーター(例えば、2個のATAAG)のような組み合せプロモーターま たは、2個の異なるプロモータ期プロモーターのような、プロモーターの組み合 せであり得る。本発明は、また新規な配!ないしはゲノムの方向づけにおける外 来遺伝子の配置を包含することも意図する。全ての前記プロモーターは、ここで は、′修飾されたバキュロウィルスプロモーター”と称する。According to the present invention, the expression level of heteropolar genes or the collection of genes (college Methods and compositions for increasing the level of ctton of genes be disclosed. The present invention provides a natural B. Contains modified versions of virus promoters or synthetically modified promoters. It includes a new promoter. The new promoter has two start sites. A combination promoter such as two promoters (e.g. two ATAAG) or or a combination of promoters, such as two different promoter phase promoters. It can be a set. The present invention also provides a novel arrangement! or outside in the direction of the genome. It is also intended to encompass the location of future genes. All said promoters are listed here is referred to as a 'modified baculovirus promoter'.

本発明の修飾されたバ牛二口ウィルスプロモーターは、A4Tにきわめて富む領 域が隣接したATAAG配列でなる群から選ばれる1またはそれ以上の特性を有 している。このATA、AC配列は、上流の活性化配列であり、転写開始部位の 約10ないし約30bp上流に位置しており、約10bpのGCに富む配列であ り、リンカ−・スキャン・プロモーターであるLSXVI、 LSXIV、およ びLSXVllの上流賦活化配列に類似L7ており、外来遺伝子に偶然に存在す る’rAAG配列から起こるアンチセンス転写を阻止するために、望ましい転写 に対立する配置においてポリアデニル化部位(A2[IA3部位)であり、そし て、3個の非常に遅いプロモーター(vp39. plO,pa、 9)の1個 以上および/または、非常に強く発現する、非常に遅い遺伝子(ポリヘトリン、 、 、 pfo)とからなる選ばれた要素である。これらの要素の選択は、豊富 に発現された後期ならびに超後期遺伝子の非翻訳リーダー配列中での存在または 保存に基づく。修飾されたプロモーターの上流の活性配列(activator  5equence)は、下流に位置する転写開始部位での転写レベルを増すた めに作用する配列である。The modified Babu Futsute virus promoter of the present invention has a region highly enriched in A4T. has one or more characteristics selected from the group consisting of ATAAG sequences with adjacent regions. are doing. This ATA, AC sequence is an activation sequence upstream of the transcription start site. It is located about 10 to about 30 bp upstream, and is a GC-rich sequence of about 10 bp. The linker scan promoters LSXVI, LSXIV, and L7 is similar to the upstream activating sequence of To prevent antisense transcription that occurs from 'rAAG sequences, is the polyadenylation site (A2[IA3 site) in the opposite configuration, and and one of the three very slow promoters (vp39.plO,pa,9) and/or very strongly expressed, very slow genes (polyhetrin, , pfo). The selection of these elements is rich presence in untranslated leader sequences of late and very late genes expressed in Based on conservation. An activator sequence upstream of the modified promoter 5 sequence) increases the transcription level at the transcription start site located downstream. It is an array that acts on

バキニロウイルス発現ベクターにおいては、後期あるいは超後期プロモーターを もちいるためには、上流の活性配列は、GCに富む配列であり、少なくとも約6 0%G+Cのヌクレオチド組成をもつ。Baquinirovirus expression vectors use late or very late promoters. To be useful, the upstream active sequence must be a GC-rich sequence, with at least about 6 It has a nucleotide composition of 0% G+C.

本発明の修飾されたプロモーターは、他のAcMNPVプロモーターと、限られ た配列の相同性あるいは連続性を持っているにすぎない。この新規なプロモータ ーの主たる利点はs AcMNPvゲノムのいかなる領域にも、そのAcMNP Yゲノムの他の領域と組換えをおこさないで安定して組み込まれ得る点にある。The modified promoters of the present invention can be combined with other AcMNPV promoters to a limited extent. They simply have sequence homology or continuity. This new promoter The main advantage of the AcMNPv genome is that its AcMNP The point is that it can be stably integrated without causing recombination with other regions of the Y genome.

この修飾されたプロモーターは、ポリへドリンプロモーターよりも強力に設計さ れ得る。This modified promoter is designed to be stronger than the polyhedrin promoter. It can be done.

本発明の修飾されたプロモーターは、当業者において周知の方法によっていくつ かの異なるトランスブレイスメンドブラスミドに挿入されてきた。例えば、プラ スミドpsynVIは、3.1から6.16 map−L−−/トの間のAcM NPV配列中で、EcoRVからKpnlまでのセグメントの代わりに合成プロ モーターを含有する。本発明の一面によれば、プロモーターの方向は、発現の方 向が正常のポリヘトリン遺伝子発現の方向と反対であり、それ故、外来遺伝子が この方向に位置するとき、遺伝子発現が潜在的に増大するという利点を持つ。外 来遺伝子はこのプラスミドのマルチクローニング部位に位置し得、そして、組換 えウィルスは封入された負の表現型に基づいて同定され得る。The modified promoters of the present invention can be modified by methods well known to those skilled in the art. It has been inserted into different trans-braced plasmids. For example, plastic psynVI has AcM between 3.1 and 6.16 map-L--/to In the NPV sequence, a synthetic protein replaces the EcoRV to Kpnl segment. Contains a motor. According to one aspect of the invention, the orientation of the promoter is in the direction of expression. direction is opposite to that of normal polyhetrin gene expression, and therefore the foreign gene When positioned in this orientation, it has the advantage of potentially increasing gene expression. outside The derived gene can be located in the multiple cloning site of this plasmid and the recombinant Viruses can be identified based on the encapsulated negative phenotype.

第2のトランスブレイスメンドブラスミドpsynVll−wtpは、合成プロ モーター(パラセンジャー遺伝子挿入のためのマルチクローニング部位を有する )、および野生型ポリヘトリンプロモーターの制御下に、ポリヘトリン遺伝子を 有する。このトランスブレイスメンドブラスミドは、ポリへドリンー欠損変異ウ ィルス由来のDNAを共トランスフェクトされると、ポリヘトリンと外来遺伝子 の生産物との両者の生産を指令する組換えウィルスの構築(あるいは形成)が可 能となる。その利点は2倍となる。すなわち、つまり組換えウィルスは、容易に 見え、かつ速やかに選択されうる(正の封体で)表現型を有しており、そして、 その組換えウィルスは経口的に昆虫に感染し得る。それ故に、容易に昆虫におけ る大量生産のために用いられる。The second trans-braced plasmid psynVll-wtp is a synthetic protein. motor (with multiple cloning sites for parasenger gene insertion) ), and the polyhetrin gene under the control of the wild-type polyhetrin promoter. have This trans-braced plasmid is a polyhedrin-deficient mutant strain. When co-transfected with virus-derived DNA, polyhetrin and the foreign gene It is possible to construct (or form) a recombinant virus that directs the production of both products. Becomes Noh. The advantage is twofold. In other words, recombinant viruses can easily have a visible and readily selectable phenotype (positive enclosure), and The recombinant virus can infect insects orally. Therefore, it is easily found in insects. used for mass production.

トランスブレイスメンドブラスミドは、種々の状態で発現を増大する多くの付加 的な方法において操作され得る。例えば、外来遺伝子の挿入に効果的なポリアデ ニル化部位が含有されていない場合に、能率的なポリアデニル化が起きるように 、マルチクローニング部位に、および外来遺伝子挿入の下流にポリアデニル化シ グナルをふくむことが有用である。トランスブレイスメンドブラスミドの構築に 使用されなかったマルチクローニング部位の部分は、ATGの近くのACTに富 むリーダー配列およびAACAAT配列が高発現されたバキュロウィルス遺伝子 (すなわち、vp39. plo、およびpa、 9)にとって好ましいもので あるから、発現を同上するために削除される。Transbraced mendoblasmids contain a number of additions that increase expression in various conditions. can be manipulated in a conventional manner. For example, polyadenyls that are effective for inserting foreign genes Efficient polyadenylation occurs when no nylation sites are included. , at the multiple cloning site, and downstream of the foreign gene insertion. It is useful to include Gunar. For the construction of trans-braced blasmids The portion of the multiple cloning site that was not used was enriched in ACT near ATG. Baculovirus gene with highly expressed leader sequence and AACAAT sequence (i.e., vp39.plo, and pa,9). Since there is, it is deleted to make the expression ditto.

リンカ−スキャン修飾から、あるいは他のプロモーターの要素から修飾されたプ ロモーターを構築する能力は、プロモーターを設計することにおいての新規な試 みである。その新規プロモーターのほとんどの構成要素は、1つの理論的な順序 で配列される。非翻訳リーダー配列の要素の順序には融通性があるようである。proteins modified from linker-scan modifications or from other promoter elements. The ability to construct promoters represents a novel challenge in designing promoters. It is only. Most of the components of the new promoter are in one theoretical order. Arranged in There appears to be flexibility in the order of elements in untranslated leader sequences.

従って、本発明によれば、修飾されたプロモーターにより多数の異種遺伝子が1 つのベクターにより発現されることが可能となる。Therefore, according to the present invention, a large number of heterologous genes can be synchronized by the modified promoter. expression by one vector.

本発明の1つの目的は、1を越える異種遺伝子が1つのベクターで発現されるこ とを可能とする、修飾されたプロモーターを持つバキ二ロウイルスベクターを提 供することにある。One object of the present invention is that more than one heterologous gene can be expressed in one vector. We present a baquinirovirus vector with a modified promoter that allows It is about providing.

本発明のさらにもう1つの目的は、ウィルスゲノムの一部の相同組換えおよびそ れに続いて起こる欠失あるいは変換の可能性を実質上避けるために、ウィルス中 での他のプロモーターとは、その配列において十分に異なる修飾されたプロモー ターを提供することにある。Yet another object of the present invention is the homologous recombination of a portion of the viral genome and its in the virus to virtually avoid the possibility of subsequent deletions or transformations. A modified promoter that differs sufficiently in its sequence from other promoters in The objective is to provide the following.

本発明のさらにもう1つの目的は、適切な昆虫宿主に経口投与され得る組換えバ キニロウイルス発現ベクターを提供し、その結果昆虫宿主ウィルスベクター系が 所望の異型タンノくり質を生産することが可能となることにある。Yet another object of the invention is to provide a recombinant vector that can be orally administered to a suitable insect host. provides a quinyrovirus expression vector, resulting in an insect host virus vector system. It is possible to produce a desired irregularly shaped tanno chestnut material.

さらにもう1つの目的は、ポリヘトリン系と比較して、異型タンパク質の発現の 増加を可能とする、バキュロウィルス基における発現ベクターを提供することに ある。Yet another objective is to reduce the expression of heterologous proteins compared to polyhetrin systems. To provide a baculovirus-based expression vector that allows for the expansion of be.

本発明のこれら、および他の目的の特性と利点は、下記の開示された実施態様の 詳細な記述ならびに添付の請求の範囲により明らかである。These and other object features and advantages of the invention are described below in the disclosed embodiments. This is evident from the detailed description and appended claims.

培養された宿主細胞において複製能力のあるバキユロウィルスは、本発明のベク ターに変換するのに有用である。好ましくは、使用されるバキユロウィルスは、 核ポリへドロシスウィルスであり、更に好ましくは、Autographiea  californLeaである。A baculovirus capable of replication in cultured host cells is a vector of the present invention. useful for converting to Preferably, the baculovirus used is Nuclear polyhedrosis virus, more preferably Autographia It is californLea.

本発明のベクターは、当該分野において周知の遺伝子工学技術により調製され、 好ましくは、本発明の修飾されたプロモーターを含有するキメラ遺伝子を、挿入 することにより調製される。このような挿入は、上記バキユロウィルスの複製機 能を妨害することなく挿入を許容し得る前記ゲノムの領域において、相同組換え を行うことにによってなされ、これらは、当業者にとって明かである。該プロモ ーターの制御の下に配置された異種遺伝子と組み合わせてバキユロウィルスのゲ ノムへ挿入することにより調製される。The vector of the present invention is prepared by genetic engineering techniques well known in the art, Preferably, the chimeric gene containing the modified promoter of the invention is inserted into It is prepared by Such insertion is the replication machine of the baculovirus mentioned above. homologous recombination in regions of the genome that can tolerate insertions without interfering with These can be done by performing the following steps, which will be obvious to those skilled in the art. The promo In combination with a foreign gene placed under the control of a baculovirus, It is prepared by inserting it into the nom.

本発明の修飾されたプロモーターの制御の下の異種遺伝子の発現に有用な宿主細 胞とは、当業者に周知であるようにその中で本発明のバ牛二ロウイルスベクター が、複製および発現の可能な昆虫細胞のことであり、インビトロで培養された昆 虫細胞ならびに昆虫の幼虫をも包含する。Host cells useful for expression of heterologous genes under the control of the modified promoters of the invention As is well known to those skilled in the art, the term "vesicle" refers to the virus vector of the present invention, as is well known to those skilled in the art. is an insect cell capable of replication and expression, and is an insect cell cultured in vitro. Also includes insect cells and insect larvae.

本発明の後期および超後期プロモーターの保存された配列は、当業者にとり容易 に同定され得、そして、表1にその例が示されている。The conserved sequences of the late and very late promoters of the invention are readily available to those skilled in the art. can be identified, and examples are given in Table 1.

当業者に周知のいかなる上流の活性化配列も本発明のキメラ遺伝子の発現を増強 するために使用される。本発明の好ましい上流の活性化配列は、約tobpのG +Cに富む配列であり、さらに好ましくは、配列CCAAGCTTGGにより例 示される旧ndl+1部位リンカ−である。Any upstream activation sequence known to those skilled in the art will enhance expression of the chimeric genes of the invention. used to. A preferred upstream activation sequence of the invention is a G of about tobp. +C-rich sequence, more preferably by the sequence CCAAGCTTGG. The old ndl+1 site linker is shown.

発現ベクターとして作用するバキユロウィルスと相同であり、本発明のキメラ遺 伝子に隣接する、当業者に周知の配列を有するいかなるトランスブレイスメンド ブラスミドも、本発明の実施に使用し得る。この相同の隣接する配列は、バキユ ロウィルスに対するトランスブレイスメンドブラスミドからキメラ遺伝子の相同 組換えを引き起こすのに十分なくらい長くなければならないと理解されている。It is homologous to baculovirus, which acts as an expression vector, and the chimeric gene of the present invention Any trans-braces that flank the gene and have sequences well known to those skilled in the art. Blasmids may also be used in the practice of this invention. This homologous adjacent sequence is Chimeric gene homology from trans-braced mendoplasmids to loviruses It is understood that it must be long enough to cause recombination.

本発明により例示されているトランスブレイスメンドブラスミドは、 pi:v ssおよびその誘導体である。The trans-braced plasmids exemplified by the present invention are pi:v ss and its derivatives.

図面の簡単な説明 第1図は、PhcLSXIVと呼ばれるプラスミドの模式図である。Brief description of the drawing FIG. 1 is a schematic diagram of a plasmid called PhcLSXIV.

第2図は、psynV[−と呼ばれるプラスミドの模式図である。FIG. 2 is a schematic diagram of a plasmid called psynV[-.

第3図は、psynVI+マtpと呼ばれるプラスミドの模式図である。FIG. 3 is a schematic diagram of a plasmid called psynVI+matp.

第4図は、I)SynwtVI−と呼ばれるプラスミドの模式図である。FIG. 4 is a schematic diagram of a plasmid called I) SynwtVI-.

第5図は、psPLsXIVV[+cATと呼ばれるプラスミドの模式図である 。Figure 5 is a schematic diagram of a plasmid called psPLsXIVV[+cAT. .

第6図は、pLsX[VVI+cATと呼ばれるプラスミドの模式図である。FIG. 6 is a schematic diagram of a plasmid called pLsX[VVI+cAT.

第7図は、プラスミドphcvtの模式図である。FIG. 7 is a schematic diagram of plasmid phcvt.

第8図は、プラスミドpEV+eodの模式図である。FIG. 8 is a schematic diagram of plasmid pEV+eod.

第9図は、プラスミドpEV+aodX IVの模式図である。FIG. 9 is a schematic diagram of plasmid pEV+aodX IV.

第10図は、プラスミドpSynV I−CATの模式図である。FIG. 10 is a schematic diagram of plasmid pSynV I-CAT.

第11図は、プラスミドpSynV I+vtpCATlの模式図である。FIG. 11 is a schematic diagram of plasmid pSynVI+vtpCATl.

第12図は、プラスミドpsynwtYI−CATIの模式図である。FIG. 12 is a schematic diagram of plasmid psynwtYI-CATI.

第13図は、プラスミドpLsXIVsVI+の模式図である。FIG. 13 is a schematic diagram of plasmid pLsXIVsVI+.

第14図は、プラスミドpLsXIV2の模式図である。FIG. 14 is a schematic diagram of plasmid pLsXIV2.

第15図は、プラスミドphc39の模式図である。FIG. 15 is a schematic diagram of plasmid phc39.

第16図は、プラスミドpEVvp39/LSXIV CATの模式図である。FIG. 16 is a schematic diagram of plasmid pEVvp39/LSXIV CAT.

箪17図は、プラスミド模式図についての説明書きである。Figure 17 is an explanation of the plasmid schematic diagram.

バされた の な1日 本発明によれば、バキニロウイルス発現ベクター中の遺伝子の発現あるいは遺伝 子の収集を改良するための方法および構成が提供される。より詳細には、本発明 は、外来遺伝子の発現を導くのに用いられ、そして感染の間に生産されるタンパ ク質の質の改良をするための新規なプロモーターを含有するプラスミドを提供す る。この新規なプロモーターは、必要に応じて、合成プロモーター、天然プロモ ーターの修飾物および/または、天然型、修飾型あるいは合成型プロモーターの 組み合せを含有し得る。この新規なプロモーターは、また、組み合されたプロモ ーターを含有する。それには2つの開始部位(すなわち2つの^TAAG)を有 するプロモーター、あるいは、例えば初期/超後期プロモーター、あるいは後期 /超後期プロモーターのような2つの異なるバキユロウィルスのプロモーターの 組み合せが含まれるがこれらに限定されない。A sad day According to the present invention, expression of genes in baquinirovirus expression vectors or Methods and configurations are provided for improving child collection. More specifically, the present invention is used to direct the expression of foreign genes and proteins produced during infection. We provide plasmids containing novel promoters for improving the quality of protein. Ru. This novel promoter can be synthesized from synthetic promoters, natural promoters, etc., depending on your needs. modified promoters and/or natural, modified or synthetic promoters. may contain combinations. This new promoter also supports the combined promotion Contains a meter. It has two initiation sites (i.e. two TAAGs). or, for example, early/very late promoters, or late promoters. / of two different baculovirus promoters, such as the super-late promoter. including but not limited to combinations.

本発明はまた、新規位置へ、あるいはゲノムの位置づけにおいて、プロモーター 外来遺伝子を配置させることをふくむことを意図する。The present invention also provides the ability to It is intended to include the placement of foreign genes.

昆虫バキxoウィルスAutographa caIifornica核ポリへ ドロシスウィルス(AcMNPV)は、広く遺伝子発現ベクターとして用いられ る(LuckovおよびSummersによる総説、Trendsin the  Development of Baculovirus Expressi on Vectors。Insect Baki xo virus Autographa caI fornica to nuclear poly Drosis virus (AcMNPV) is widely used as a gene expression vector. (Review by Luckov and Summers, Trends in the Development of Baculovirus Expressi on Vectors.

B1o/Technology 6:47−55,1988;Miller、L 、に、、 Baculovirusesas Gene Expression  Vectors、Ann、Reviev of Microbiology。B1o/Technology 6:47-55, 1988; Miller, L , , Baculovirusesas Gene Expression Vectors, Ann, Review of Microbiology.

42:17?−199,1988)。ヘルパー独立性ウィルスベクター系は、一 般に、超後期ウィルスプロモーター、つまりポリへドリンプロモーターあるいは plOプロモーターの制御の下にAcMNPVゲノム中で発現される外来遺伝子 の挿入物を含む。この2つの新規なプロモーターは、各々の遺伝子の高レベルの 転写を行わせ、その結果、感染過程の最後の段階、すなわち、封入段階でmRN Aの高い定常状態のレベルをもたらすので、特に有用であると考えられる。封入 、すなわちウィルス粒子が疑似結晶性のタンパク質マトリックス中へ埋め込まれ ることは、宿主幼虫の効果的な経口感染に必要とされるにもかかわらず、細胞培 養におけるウィルスの増殖には必須なものではない。42:17? -199, 1988). Helper-independent viral vector systems are Generally, the very late viral promoter, the polyhedrin promoter or Foreign genes expressed in the AcMNPV genome under the control of the plO promoter Includes insert. These two novel promoters support high levels of each gene. transcription takes place, so that mRNA It is believed to be particularly useful as it provides high steady state levels of A. Enclosure , i.e., the virus particles are embedded in a pseudocrystalline protein matrix. Despite being required for effective oral infection of host larvae, cell culture It is not essential for the growth of viruses in nutrition.

それ故に、封入段階に特定の遺伝子を再配置すること、および封入遺伝子の代わ りに異種遺伝子を高レベルで発現させることは、細胞培養中の感染の原因である 非封入性ウィルス(出芽性ウィルス)による生産に対し何ら観察できる影響を及 ぼさない。Therefore, it is important to relocate specific genes to the inclusion stage and to replace the inclusion genes. Expression of foreign genes at high levels is a cause of infection during cell culture. Does not have any observable effect on production by non-encapsulated viruses (budding viruses). Don't lose it.

バキュロウィルス発現系は、バキュロウィルス遺伝子の構造、あるいはバキュロ ウィルスプロモーターの性質についてのほんのわずかの知識をもとにして当初は 発展した。(上記Miller、 L、 ’1. 、1981)ポリへドリンプ ロモーターに基づくベクター系に対して開発された最初のトランスブレイスメン ドブラスミドの1つはpAc373であった。これは、遺伝子発現の通常レベル に必要な配列のいくつかが、このベクター中にはないことが報告される以前には 広く使用されていた(MatSuuraら(198〕)−Bacul。The baculovirus expression system is based on the structure of the baculovirus gene or Initially, based on very little knowledge of the properties of viral promoters, developed. (Miller, L., '1., 1981) Polyhedrimp First trans bracemen developed for vector systems based on promoters One of the doblasmids was pAc373. This is the normal level of gene expression Previously it was reported that some of the sequences required for the vector were not present in this vector. It was widely used (MatSuura et al. (198))-Bacul.

virus expression vectors:The require ments for high 1evel expression of p roteins、1ncludiB glycoproteins−J。Virus expression vectors: The required ments for high 1 level expression of p protein, 1ncludiB glycoproteins-J.

Gen、Virol、68:1233−1250) o ポリヘトリン遺伝子の +1 (ATGのA)の位置のすぐ上流のヌクレオチドを含有するトランスブレ イスメンドブラスミドは、今やベクターの使用にとり推薦される(上記Luck ov and Summers(198g);Miller、L、に、(198 g))。Gen, Virol, 68:1233-1250) o Polyhetrin gene +1 (A of ATG) containing the nucleotide immediately upstream of the position Ismendo plasmids are now recommended for vector use (Luck, supra). ov and Summers (198g); Miller, L., (198 g)).

+1 (例えば、ポリヘトリンのオープンリーディングフレームの中で)下流の 位置のヌクレオチドは、最適な転写効果には必要とされていない(上記Carb onellら(19Bg)″昆虫特異性サソリ神経毒をコードする遺伝子の合成 およびバキュロウィルスをもちいてそれを発現する試み” Gene、?3:4 09−418)。+1 downstream (e.g. within the polyhetrin open reading frame) The nucleotide at the position is not required for optimal transcriptional efficacy (Carb onell et al. (19Bg)"Synthesis of a gene encoding an insect-specific scorpion neurotoxin and an attempt to express it using baculovirus” Gene, ?3:4 09-418).

本発明により配列をコードするポリヘトリンのすぐ上流領域のリンカ−スキャン 変異分析は、この領域のいくつかの新しい性質をあきらかにした。プロモーター 活性の第一の決定要素は、翻訳開始部位のATG(+1.+2.43)に関して 、−50に位置した転写開始部位の配列TAAGTATT中に存在する。転写開 始部位に接続した配列は、より巧妙な方法により、転写のレベルならびにリポー タ−遺伝子の発現に影響する。TAAGTATTの上流にある10から30まで の配列のリンカ−の再配置により、転写のレベルおよび遺伝子の発現は50%増 大する。一方、TAAGTATTと+1位置(すなわち、翻訳されていないリー ダー領域を特定する配列中のことである)の間でリンカ−を再配置するとプロモ ーター活性は2倍からlO倍調節が減じる。リポータ−遺伝子および93このヌ クレオチドよりなるポリヘトリン”プロモーター″ (すなわち、+1から−9 2までのこと)のゲノム方向を逆にもどることにより、天然の方向において観察 される場合に比べて、リポータ−遺伝子の発現は、同等あるいはわずかに高レベ ルになる。いかなる変異も遺伝子発現の一時的な調節も変化させない。修飾され たポリへドリンブロモータからの全ての遺伝子発現は、非常に遅い段階に限定さ れる(Rankinう(198g)”バキ二ロウイルスポリヘドリン遺伝子発現 のための転写開始点および重要な決定因子を包囲する8塩基対″ Gene 7 0:39−49.ここに取り入れられている参考文献)。Linker scan of the region immediately upstream of polyhetrin encoding sequence according to the invention Mutational analysis revealed several new properties of this region. promoter The first determinant of activity is with respect to the ATG (+1.+2.43) of the translation initiation site. , -50 in the sequence TAAGTATT of the transcription start site. transcription opening Sequences connected to the start site can be used to control the level of transcription as well as reporting by more sophisticated methods. It affects the expression of target genes. 10 to 30 upstream of TAAGTATT Rearrangement of the linker in the sequence increases transcription levels and gene expression by 50%. make it big On the other hand, TAAGTATT and +1 position (i.e. untranslated lead) Relocating the linker between the sequences that specify the programmer region The motor activity decreases by 2-fold to 10-fold regulation. reporter gene and 93 this gene Polyhetrin "promoter" consisting of cleotide (i.e. +1 to -9 Observation in the natural direction by reversing the genome direction of (up to 2) Expression of the reporter gene is at the same or slightly higher level than when Become a le. None of the mutations alter the temporal regulation of gene expression. qualified All gene expression from the polyhedrin promoter is restricted to very late stages. (Rankin (198g) “Baquinirovirus polyhedrin gene expression” 8 base pairs surrounding the transcription start site and key determinants for Gene 7 0:39-49. References incorporated herein).

非常に遅いポリヘトリンおよびplOプロモーターは、たぶん外来遺伝子発現に 対して最も望ましいプロモーターであると考えられているにもかかわらず、外来 遺伝子発現を導く遅いプロモーターの相対的な能力は、直接には験証されたこと がない。vp6.9(コア)ならびにvp39 (カプシド)をコードする最も ひんばんに発現された2つの遅いウィルス構造遺伝子は、位置がきめられ、配列 がきめられ、ならびに転写地図が決められた(Wilsonら(1987)“小 さなアルギニンリッチポリペプチドをコードするバキュロウィルスの配置および 転写ならびに配列″J、 Virology、61:661−666)。これら の遺伝子は、感染後12時間、および強いポリへFリンプロモータからの転写前 約12時間の間に十分に転写された。vp6.9とvp39遺伝子の生産物は、 ウィルスの封入型と出芽型について要求される。それ故に、これらの発現は、感 染後の非常に遅い時期の間中、継続ならびに外来遺伝子に対してポリヘトリンあ るいはp10プロモーターよりさらに長い時間をかけることが期待されている。The very slow polyhetrin and plO promoters are probably responsible for foreign gene expression. Despite being considered the most desirable promoter for The relative ability of slow promoters to direct gene expression has not been directly demonstrated. There is no. most encoding vp6.9 (core) and vp39 (capsid) Two rapidly expressed slow viral structural genes have been located and sequenced. were determined, and a transcriptional map was determined (Wilson et al. (1987) “Small Location and location of baculovirus encoding a small arginine-rich polypeptide Transcription and sequence "J, Virology, 61:661-666). 12 hours postinfection and before transcription from the strong polyF-phosphorylated promoter. The image was fully transferred in about 12 hours. The products of the vp6.9 and vp39 genes are Required for encapsulated and budding forms of the virus. Therefore, these manifestations During the very late period after infection, polyhetrin is present for both continuing and foreign genes. p10 promoter is expected to take a longer time than the p10 promoter.

、非常に遅い時期における外来遺伝子生産物の特異的発現は、その生産物が出芽 性のウィルス合成を妨げるような外来遺伝子の発現にとって望ましいと考えられ る(上記Mii ler、 L、 K。, specific expression of a foreign gene product at a very late stage indicates that the product is considered desirable for the expression of foreign genes that interfere with sexual viral synthesis. (Miiler, L, K.

(1981))。(1981)).

しかしながら、多くの異種遺伝子生産物は、ウィルス合成に不利に作用しないし 、ならびにより早い時期の高レベルの発現は生産展望からして有利である。遅い 段階での発現は。However, many foreign gene products do not adversely affect virus synthesis; , as well as earlier and higher levels of expression are advantageous from a production perspective. slow Expression in stages.

また非常に遅い段階での効果的転写後の修飾に対してより好ましい。宿主の核m RNA転写物は、感染後の12時間から24時間の間に劇的に減少する。そして 翻訳後の修飾は、最初に、宿主遺伝子生産物により伝えられるのであるが、発現 の非常に遅い段階において非効率的にみえる。本発明者は、遅いカプシドプロモ ーター、すなわちvp39プロモーターは、遅い段階において外来遺伝子の発現 を導くのに優れていることを見いだした。ポリへドリンプロモーターは、感染後 12時間から24時間の間に約5から8倍性能が上昇する。It is also more preferred for effective post-transcriptional modification at very late stages. host nucleus m RNA transcripts decrease dramatically between 12 and 24 hours post-infection. and Post-translational modifications are first conveyed by the host gene product, but appears inefficient at a very late stage. The inventors have demonstrated that slow capsid promotion The vp39 promoter promotes the expression of foreign genes at a late stage. I found it to be very good at guiding people. The polyhedrin promoter is activated after infection. Performance increases approximately 5 to 8 times between 12 and 24 hours.

本発明は、天然ウィルスポリヘトリンならびにp10プロモーターのような、非 常に遅いプロモーターによりもたらされるよりも、外来遺伝子の高レベル発現を もたらすためのパキニロウイルス遺伝子発現ベクターの改良を包含する。本発明 はまた、2つの異なる研究方法を含有する=(1)ポリへドリンプロモーターの 転写開始点に接続する上流配列の修飾、および(2)外来遺伝子発現を導くため の遅いvp39 (カプシド)プロモーター、あるいは遅い/非常に遅いプロモ ーターの組み合せの利用である。プロモーターと外来遺伝子のゲノム配置を逆に することは、遺伝子発現のレベルにはほとんど影響がないようであるし、ならび に1個のバキ二口ウイルスベクターにより命令される2個あるいはそれ以上の外 来遺伝子の同時の転移および発現のためのプラスミドのデザインを可能にする。The present invention uses non-viral polyhetrin, such as the natural viral polyhetrin as well as the p10 promoter. Enables higher level expression of foreign genes than would be produced by a consistently slow promoter. This includes improvements to pachinirovirus gene expression vectors to produce a pachinirovirus gene expression vector. present invention also contains two different research methods = (1) polyhedrin promoter modification of upstream sequences connected to the transcription start site, and (2) to direct foreign gene expression. slow vp39 (capsid) promoter or slow/very slow promoter This is the use of a combination of meters. Reverse the genomic arrangement of the promoter and foreign gene appears to have little effect on the level of gene expression, and Two or more viruses directed by one Bakibistovirus vector allows the design of plasmids for simultaneous transfer and expression of incoming genes.

加えて、本発明に従うと、新規な合成プロモーターは、他の天然バキュロウィル スプロモーターと最小のDNA配列の相同性をもつようにデザインされた。In addition, according to the present invention, the novel synthetic promoter It was designed to have minimal DNA sequence homology with the promoter.

このようなプロモーターは、1個の組換えウィルスを用いる1個より多くの外来 遺伝子の発現に有用であり、ならびに、ベクター中で、天然ウィルスプロモータ ー配列を複製する必要性を除外する。それにより、繰り返されたプロモーター配 列の間での同型の組み換えによるゲノムの潜在的な不安定性が最小になる。Such promoters can be used to generate more than one foreign promoter using one recombinant virus. Useful for expression of genes as well as natural viral promoters in vectors – Eliminating the need to duplicate arrays. Thereby, repeated promoter sequences Potential instability of the genome due to homotypic recombination between columns is minimized.

本発明の一部として下記の能力のあるバキ二ロウイルス発現ベクターの形成を仲 介するトランスブレイスメンドブラスミドについて開示している。(1)遺伝子 発現の高められたレベル、(2)2つのパラセンジャー遺伝子の同時発現、(3 )非常に遅い段階および遅い段階におけるパラセンジャー遺伝子の発現、および /または、(4)パラセンジャー遺伝子およびポリヘトワンタンパク賀両者の同 時発現。トランスブレイスメンドブラスミドは、外来遺伝子挿入のための有用な 制限部位、すなわち、プロモーターの下流の適切な部位にあるマルチクローニン グ部位を提供することより、そして外来遺伝子が完全なものにされ得るようにウ ィルスゲノムの領域から、ウィルスDNAの配列を接続させることにより、バキ ニロウイルスゲノムの中への外来遺伝子の挿入を促進する。接続しているウィル ス配列は、組換えられていないウィルスDNAと、組換えウィルスベクターをも たらすために、組換えられたトランスブレイスメンドブラスミドとの間に細胞に より仲介される相同的組換えのための部位を提供する。As part of this invention, we facilitated the formation of baquinirovirus expression vectors capable of: discloses a trans-braced plasmid that is mediated by a trans-braced plasmid. (1) Gene (2) simultaneous expression of two parasenger genes; (3) increased levels of expression; ) Parasenger gene expression at very late and late stages, and / or (4) identical genes for both the parasanger gene and the polyhetoone protein gene. Time expression. Transbraced mened plasmids are useful for foreign gene insertion Restriction sites, i.e. multiclonins at appropriate sites downstream of the promoter by providing a genetic site and allowing the foreign gene to be perfected. By connecting the viral DNA sequences from the region of the virus genome, Facilitates insertion of foreign genes into the nirovirus genome. Will connected The virus sequence contains both non-recombinant viral DNA and recombinant viral vectors. between the recombinant trans-braced mendo plasmid and the cells in order to provides a site for more mediated homologous recombination.

本発明者は、ポリヘトリンTAAGTATTの上流のリンカ−スキャン変異は、 野生型ポリへドリンプロモーター(Rankinう、(1988)上記)に比べ て転写と外来遺伝子発現とを増大することを見いだした。第1図に示されている プラスミドphcLsXIV。The inventors have demonstrated that linker-scanning mutations upstream of polyhetrin TAAGTATT are compared to the wild-type polyhedrin promoter (Rankin (1988) supra). The researchers found that the protein increased transcription and foreign gene expression. As shown in Figure 1 Plasmid phcLsXIV.

およびこれと同じプロモーターと基本的なマルチクローニング部位とをもつがC AT遺伝子を欠< pEV■odXIVは、リンカ−スキャン 変異プロモータ ーを含有し、現在、LSXIVプロモーターといわれている。peEV+*od XIV由来のウィルスあるいはpheLSXIV由来のウィルスは、既知のリン カ−スキャン修飾よりも高レベルのリポータ−遺伝子(CAT)発現をもたらす 。LSXIVプロモーターの制御の下に、CATリポータ−遺伝子をもつウィル スからの発現は、本発明者により、ポリへドリンプロモーター(すなわち、ph cvt由来の、第10図に示されている野生型ポリへドリンプロモーターを含有 する組換えウィルスからのCAT遺伝子発現に比較してのことである)からの発 現に比べて50%高いことが示された。and has the same promoter and basic multiple cloning site but C pEV odXIV lacking the AT gene is a linker-scan mutant promoter It is currently called the LSXIV promoter. peEV+*od XIV-derived viruses or pheLSXIV-derived viruses are known Results in higher levels of reporter gene (CAT) expression than Carscan modification . A virus carrying the CAT reporter gene under the control of the LSXIV promoter Expression from the polyhedrin promoter (i.e., ph containing the wild-type polyhedrin promoter shown in Figure 10, derived from cvt. (compared to CAT gene expression from a recombinant virus). This was shown to be 50% higher than the current level.

それ故に、本発明の好ましい実施態様は、TAAGTATT配列の上流での種々 の修飾を有するプロモーターを含有するいくつかのプラスミドを包含する。第1 図にしめされるphcLsXIVと呼ばれるプラスミドは、このような修飾され たプロモーターを含有するプラスミドの例である。このような性質を持つ他のプ ラスミドとしてphcLsXV IおよびphcLsXYIIが包含される(表 5に示される)。これらのプラスミドは、組換えウィルスへ組込まれるときに、 遺伝子の高レベル発現をもたらす上流で修飾されたプロモーターを含有する。Therefore, preferred embodiments of the invention provide for various upstream sequences of the TAAGTATT sequence. Some plasmids contain promoters with modifications of . 1st A plasmid called phcLsXIV shown in the figure has such a modification. This is an example of a plasmid containing a promoter. Other programs with this property The lasmids include phcLsXV I and phcLsXYII (Table 5). When these plasmids are integrated into recombinant viruses, Contains an upstream modified promoter that results in high level expression of the gene.

もう一つの好ましい実施態様として、本発明は、合成プラスミドを含有してなる プラスミドを有する。合成プロモーターは、異種遺伝子発現を導(のに使用され るプロモーターのヌクレオチド配列に多様性を与え、ならびに外来遺伝子発現の レベルに相異性をもたらす。好ましい合成プロモーターに対する配列は、表1に 示されるDNA配列によってよく説明される。そのDNA配列中の矢印は、開始 点および転写の方向を示す。In another preferred embodiment, the present invention comprises a synthetic plasmid. It has a plasmid. Synthetic promoters are used to direct heterologous gene expression. It provides diversity in the nucleotide sequence of promoters and enhances the expression of foreign genes. Bringing differentness to the levels. Sequences for preferred synthetic promoters are shown in Table 1. Well illustrated by the DNA sequence shown. The arrow in the DNA sequence indicates the start Indicates point and direction of transfer.

プロモーターの要素の配列と順序を可能とする適応性があり、しかも、第2図に 示されるそのプロモーターの配列は、本発明の実施態様の一例であることが理解 される。It is flexible to allow for the arrangement and ordering of the elements of a promoter, and is shown in Figure 2. It is understood that the sequence of its promoter shown is an example of an embodiment of the invention. be done.

上記の合成プロモーターを含有する策2番目の実施態様のトランスブレイスメン ドブラスミドの例は、東2図にその一般的な構築がしめされている。psynV I−と称するこのプラスミドは、表1に示される合成プロモーターおよびここで MCS#2と称されるマルチクローニング部位(MCS)とをもつトランスブレ イスメンドブラスミドである。psynVI−のMOS$2配列は表2に示され ている。合成プロモーターの配向性は、外来遺伝子発現が、配向と反対のゲノム の配向で起こることである。このプロモーターの構築は、野生型ポリへドリンプ ロモーターのレベルの約10%から20%の異種遺伝子の発現を導く。A trans brace member of the second embodiment containing the synthetic promoter described above. As an example of a doblasmid, its general construction is shown in Figure 2. psynV This plasmid, designated I-, carries the synthetic promoter shown in Table 1 and here A transbreeder with a multiple cloning site (MCS) called MCS#2. It's Ismendo Blasmid. The MOS$2 sequence of psynVI- is shown in Table 2. ing. The orientation of the synthetic promoter allows foreign gene expression to occur in the opposite direction of the genome. This is what happens when the orientation is . Construction of this promoter was performed using wild-type polyhedrin Directs expression of the heterologous gene at approximately 10% to 20% of the level of the promoter.

本発明の第2番目の好ましい実施態様のもう一つの例は、pSynV I+vt pと称されるプラスミドである。このプロモーターの図解は第3図に示される。Another example of the second preferred embodiment of the invention is pSynV I+vt It is a plasmid called p. A diagram of this promoter is shown in FIG.

この構築は、上述のpSyn’/I−と同様に上記の合成プロモーターとMCS #2とを含む転移ベクターであり、しかも野生型ポリへドリンプロモーターの制 御の下に、ポリヘトリン遺伝子を発現する。これは、2つの遺伝子を同時に発現 し得るプラスミドの例である。このプラスミドは、選択可能な封入型止の表現型 をもたらし、組換えウィルスは封入型止であるので、昆虫を経口的に感染させる のに使用し得る。このプラスミドの構築は、天然型ポリへドリンプロモーターの 約10%から20%の異種遺伝子の発現を導く。This construction, similar to pSyn'/I- described above, uses the synthetic promoter described above and MCS #2, and is a transfer vector containing the wild-type polyhedrin promoter. Under its control, the polyhetrin gene is expressed. This means that two genes are expressed simultaneously. This is an example of a plasmid that can be used. This plasmid has a selectable encapsulation phenotype. Since the recombinant virus is encapsulated, insects can be infected orally. It can be used for. The construction of this plasmid is based on the native polyhedrin promoter. Leads to approximately 10% to 20% heterologous gene expression.

本発明の簗2番目の好ましい実施態様の一例として含有されるもう一つのプラス ミドは、psynvtV!−と称されたものであり、それは第4図に示される。Another plus included as an example of the second preferred embodiment of the present invention Mido is psynvtV! -, which is shown in FIG.

これは、ポリへドリンプロモーター(MCS部位、MCS#1を持つ)および合 成プロモーター(第2番目MCS部位、MCS#2をもつ)とを含有するトラン スブレイスメンドブラスミドであり、2つの外来遺伝子の発現を特徴とする特徴 がある。このトランスブレイスメンドブラスミドは、それ故に、2個の遺伝子の 発現ベクターの例である。しかしながら、他の合成プロモーターが、上述の合成 プロモーターに対して示された原理に基づいて、ポリへドリンプロモーターを置 き換えるためにデザインされ得るが故に、ポリへドリンプロモーターを使用する 必要性はないと考えられる。This is a polyhedrin promoter (with an MCS site, MCS #1) and A transcript containing an adult promoter (with a second MCS site, MCS#2) It is a sbraid plasmid and is characterized by the expression of two foreign genes. There is. This trans-braced plasmid therefore contains two genes. This is an example of an expression vector. However, other synthetic promoters Place the polyhedrin promoter based on the principles demonstrated for the promoter. Uses the polyhedrin promoter because it can be designed to change It is considered that there is no need.

本発明の第3番目の好ましい実施態様において、そのプラスミドは、自然におけ る配向性とは逆の配向性のプロそ一ターあるいはいくつかのプロモーターを含有 する。psPLsXIVVI+CATおよびpLsXIVVI+cAT (第5 図ならびに第6図)のプラスミドは、逆の配向性を持ったpLsXIVプロモー タープラスミドである(もとのポリヘトリンの方向に関して)。これらのプラス ミドは、逆の配向性でLSXIVプロモーターからのCAT発現をテストするの に使用される。そのpLsXIVVI+cATプラスミドは、タンデム型の2重 プロモーターである。逆の配向性でのLSIIVプロモーターからのCAT遺伝 子発現は、もとの配向性において達成されたレベルと同程度であり得ることが本 発明者により見いだされた。In a third preferred embodiment of the invention, the plasmid is Contains a promoter or several promoters with an orientation opposite to that of do. psPLsXIVVI+CAT and pLsXIVVI+cAT (5th The plasmids shown in Figures and Figure 6) carry the pLsXIV promoter in the opposite orientation. (with respect to the original polyhetrin orientation). these pluses mid to test CAT expression from the LSXIV promoter in the reverse orientation. used for. The pLsXIVVI+cAT plasmid is a tandem double He is a promoter. CAT gene from LSIIV promoter in reverse orientation It is true that offspring expression can be comparable to the level achieved in the original orientation. discovered by the inventor.

そのプロモーターは、発現のレベルを高め得るために異なるゲノムの位置/配向 性で位置され得ることが、本発明の一部として意図される。プラスミドpsPL sXIVVI+cAT (第5図)およびpLsXIV3VI (第13図)と は、逆の方向性での高レベル発現ベクターの2つの実施例である。The promoter may be placed in different genomic locations/orientations to increase the level of expression. It is contemplated as part of this invention that it may be located in any gender. Plasmid psPL sXIVVI+cAT (Figure 5) and pLsXIV3VI (Figure 13) are two examples of high level expression vectors in opposite orientations.

本発明の第4番目の好ましい実施態様は、vp39 (カプシド)プロモーター 配列を含有するプラスミドを包含する。このプロモーターのDNA配列は表3に 示す。リポータ−CAT発現をテストするのに用いられ得るトランスブレイスメ ンドブラスミドは、phc39およびpEVlod39を包含する。そのvp3 9プロモーターは、天然型のポリへドリンプロモーターに比ベテ、感染後12時 間から24時間の時期に、約5から120倍の高レベル発現をもたらす。また本 発明は、例えば、より初期の遺伝子発現ならびに異型タンパク質のより高い最終 レベル(合計レベル)をもたらすポリヘトリンおよびvp39プロモーターのよ うな遅い/非常に遅いプロモーターの組み合せを包含することを意図する。感染 過程のより初期に発現されるが故に(すなわち、ポリヘトリンの場合、感染後1 8時間よりむしろ6時間後に姿をみせることである)、その遅いプロモーターか らの感染後12時間により高レベル発現がえられる。遅い/非常に遅いプロモー ターの組み合せは、感染後約6時間で理想的には作動し、引き続いて感染後70 時間の開作動し続け、こうして遅いおよび非常に遅い遺伝子発現をもたらす。A fourth preferred embodiment of the invention is the vp39 (capsid) promoter. Includes plasmids containing the sequences. The DNA sequence of this promoter is shown in Table 3. show. Transbrace membranes that can be used to test reporter-CAT expression The endoplasmids include phc39 and pEVlod39. that vp3 9 promoter, compared to the natural polyhedrin promoter, at 12:00 p.i. This results in approximately 5- to 120-fold higher levels of expression during the 24-hour period. Also a book The invention can, for example, improve early gene expression as well as higher finality of heterologous proteins. levels (total levels) such as polyhetrin and vp39 promoters. It is intended to encompass such slow/very slow promoter combinations. infection Because it is expressed earlier in the process (i.e., in the case of polyhetrin, 1 postinfection) (showing up after 6 hours rather than 8 hours), the slow promoter? High level expression is obtained by 12 hours after infection. slow/very slow promotion The combination of tars should ideally be activated at about 6 hours post-infection and subsequently at 70 hours post-infection. It continues to operate over time, thus resulting in slow and very slow gene expression.

ム プロモーターおよびA プロモーターをもっ上ランススレイスメンドブラス ミドの ! 本発明者は、ポリヘトリン遺伝子発現に対する重要な決定因子は、ATAAGT ATT配列中に位置するらしいことを発見した。Mu Promoter and A Promoter Lance Srace Mendbrass Mido! The inventors have demonstrated that an important determinant for polyhetrin gene expression is ATAAGT It was discovered that it appears to be located in the ATT sequence.

豊富に転写される遅い遺伝子の転写は、ACTに富む領域により接続されたAT AAG配列中で起こる(Wtlsonら、1987.上記)新規なバキ二口ウイ ルスプロモーターは、他の豊富に発現された遅いおよび非常に遅い遺伝子と共通 の短い配列モチーフを結合することによって、他のウィルスプロモーターに対し て、最小限の配列上の相同性を欠くようにデザインされている。Transcription of abundantly transcribed slow genes is associated with ATs connected by ACT-rich regions. A novel bacteriophage that occurs in the AAG sequence (Wtlson et al., 1987, supra). The rus promoter is shared with other abundantly expressed slow and very slow genes to other viral promoters by joining a short sequence motif of and are designed to lack minimal sequence homology.

新規プロモーターのデザインに組み込まれた2つの付加的な特徴は、ATAAG 上流のG+Cに富む領域に関するLSIIVリンカ−と、およびATGの近くで 非翻訳領域にあるTTTATT配列である。そのTTTATTは、外来遺伝子挿 入で偶然に起こる、ATAAG配列から逆の配向性で起こる転写物に対するポリ アデニル化シグナルとなる。Two additional features incorporated into the design of the new promoter are ATAAG with the LSIIV linker for the upstream G+C-rich region and near the ATG. This is the TTTATT sequence located in the untranslated region. The TTTATT is a foreign gene insertion. Polymerization for transcripts that occur in the opposite orientation from the ATAAG sequence, which happens to occur during Serves as an adenylation signal.

本発明者は、遅いおよび非常に遅いプロモーターは、最もよく起こる転写開始点 にATAAGを含有することを発見した。The inventors have determined that slow and very slow promoters are the most common transcription start sites. It was discovered that ATAAG is contained in .

この配列は、ポリヘトリン発現ならびにプロモーター活性に重要である。さらに 、ポリへドリンプロモーター」のリンカ−・スキャン変異分析は、非翻訳リーダ ー領域を通して、ヌクレオチドが最適の遺伝子発現に寄与するように見えること をしめした。AcMNPVの最も頻ばんに発現される遺伝子の4つのプロモータ ーの非翻訳リーダー領域を特徴づける配列は、すなわち、主カプシドタンパク質 (p39)をコードする遅い遺伝子、塩基性コアタンパク質(p6.9)をコー ドする遅い遺伝子、plOをコードする非常に遅い遺伝子、および、ポリヘトリ ン遺伝子であり、これらは−列に並んでいる。4個ともすべてACTに富む領域 に関しては、ATAAGを含有する。This sequence is important for polyhetrin expression as well as promoter activity. moreover , linker-scanning mutational analysis of the polyhedrin promoter – nucleotides appear to contribute to optimal gene expression throughout the region. It showed. Promoters of the four most frequently expressed genes of AcMNPV The sequence characterizing the untranslated leader region of the main capsid protein is slow gene encoding basic core protein (p6.9); a slow gene encoding plO, a very slow gene encoding plO, and a polyhetri These genes are arranged in a - column. All four areas are rich in ACT. Contains ATAAG.

2個またはそれ以上のプロモーター中にみいだされるいくつかの短いセグメント が、合成プロモーターの構成要素としてえらばれてきた。2こまたはそれ以上の プロモーターに共通して最も長いセグメントは、9このヌクレオチドTAAAT TACAであり、plOおよびp6.9の両者のプロモーター中でみいだされる 。ACAAT配列は、4個のプロモーター(ポリヘトリンではない)中の3個で 、ATG近くに発現され、TACTGTはポリヘトリンとp10プロモーター中 に発見され、TTTGTAはplOとブリへドリンプロモーターとの両方に発見 され、TCAANTCAはplOおよびp39プロモーター中に発見された。さ らに、全てのプロモーターは、少なくとも3個のTの伸びた部分をもっており、 たいていのものは、Aで接続されておりそして少なくとも3Aの伸びをもってお り、たいていはピリミジンが前についている。これらの全ての構成要素は、合成 プロモーターモデルにデザインされできた。この構成要素は、長さを最小限にす るように位置していて、たとえばTの伸びとAの伸びはATAAGのすぐ下流に いちしており、ATTACの下流のACTに富む部分として作用する。Several short segments found in two or more promoters has been selected as a component of synthetic promoters. 2 or more The longest common segment of promoters is 9 nucleotides TAAAT TACA, found in both pIO and p6.9 promoters . ACAAT sequences are present in 3 of the 4 promoters (not polyhetrin). , is expressed near ATG, and TACTGT is expressed in polyhetrin and p10 promoters. TTTGTA was discovered in both plO and brihedrin promoters. and TCAANTCA was found in the pIO and p39 promoters. difference In addition, all promoters have a stretch of at least three T's, Most are connected at A and have a stretch of at least 3A. , usually preceded by a pyrimidine. All these components are synthetic It was designed as a promoter model. This component is designed to minimize length. For example, the T stretch and A stretch are located immediately downstream of ATAAG. It acts as an ACT-rich part downstream of ATTAC.

しかしながら、ACAAT配列は、プロモーターをマルチクローニング部位に結 合する3′制限部位(BglTI)の近くに−している。However, the ACAAT sequence links the promoter to the multiple cloning site. close to the matching 3' restriction site (BglTI).

ならびに、TTTATT (逆行において、ポリアデニル化シグナルである)は 、この配列に接続しており、逆転写物の終止を促進するように、ATAAGから できるだけ遠くに位置し、このことにより5′末端でのアンチセンスRNAの妨 害を最小にする。合成プロモーターモデルを構成するために合成されたSynプ ロモーターと呼ばれる2つのオリゴヌクレオチド配列は、構成要素の標示ととも に表1に示されている。and TTTATT (which in retrograde is the polyadenylation signal) , is connected to this sequence and from ATAAG in a manner that promotes termination of the reverse transcript. located as far away as possible to avoid interference with the antisense RNA at the 5' end. Minimize harm. Syn protein synthesized to construct the synthetic promoter model Two oligonucleotide sequences, called romators, are labeled with component markings. are shown in Table 1.

トランスブレイスメンドブラスミドpSyn−(第2図)は、ポリへドリンプロ モーターとして逆方間に発現を導< Synプロモーターを含有する。それはま た、非常に多くの有用な制限部位を有するマルチクローニング部位(MCS#2 )も包含する。それに、ポリヘトリンのN−末端をコードする627ヌクレオチ ドを欠き、その故に、このトランスブレイスメンドブラスミドを使用することに より、封入型負の表現型との組換え体となる。The trans-braced mendoplasmid pSyn- (Figure 2) is a polyhedrin protein. Contains the Syn promoter that drives expression in the reverse direction as a motor. That's it In addition, the multiple cloning site (MCS#2) has a large number of useful restriction sites. ) is also included. In addition, the 627 nucleotide encoding the N-terminus of polyhetrin Therefore, I decided to use this trans brace mend blasmid. This results in a recombinant with an inclusion-type negative phenotype.

合成プロモーターおよび結合されたマルチクローニング部位(MCS#2)は、 制限エンドヌクレアーゼ(例えば、MCS#2の下流Sac!あるいはプロモー ターの上流にpn+もしくはSeaりを用いて、他のAcMNPVゲノム位置へ の転移のために他のプラスミドへ移動させられ得る。The synthetic promoter and associated multiple cloning site (MCS#2) Restriction endonuclease (e.g. downstream Sac of MCS#2 or promoter) to other AcMNPV genomic locations using pn+ or Sea lig upstream of the target. can be moved to other plasmids for transfer.

本発明は、下記の実施例によりさらに説明される。このことにより本発明は何ら 制限を強制されるものではない。これに対して、この記載を読んだとき、本発明 の精神および/または特許請求の範囲から離れることなく当業者に示唆されると ころの方法が種々の他の実施態様、改変ならびにそれと均等なものを包含するこ とは明かに理解され得る。The invention is further illustrated by the following examples. This makes the present invention in no way There are no forced restrictions. On the other hand, when reading this description, the invention as suggested to one skilled in the art without departing from the spirit and/or scope of the claims. It is understood that the present method encompasses various other embodiments, modifications, and equivalents thereof. can be clearly understood.

(以下余白) 罠亘皿 実施例1 全てのウィルスは、本来、AcMNPVL−1に由来しくLee and Mi 11e’r (197B)“A、 cal 1fornfca核ポリへドロシス ウィルスの遺伝子型変異体の単離″J、Viro1.27:754−767)  、プラーク法aughnら、(1977) −昆虫5podoptera fr ugiperda (Lepidoptera:Noctuidae)からの2 つの昆虫細胞株の樹立″ In Vi工四13: 213−217>中で、以前 に報告された方法(Lee and Miller (1978):Mille rら(1986)同上”外来遺伝子の高レベル発現のためノ昆虫バキュロウィル ス宿主ベクター系“遺伝子工学、原理ress、 N、 Y、 、 pp、 2 77−298.1986)を用いて増殖させる。(Margin below) Trap Wataru plate Example 1 All viruses are originally derived from AcMNPVL-1 and are derived from Lee and Mi. 11e’r (197B) “A, cal 1fornfca nuclear polyhedrosis Isolation of Genotypic Variants of the Virus"J, Viro1.27:754-767) , plaque method aughn et al. (1977) - Insect 5podoptera fr 2 from ugiperda (Lepidoptera: Noctuidae) Establishment of two insect cell lines” In Vi Koushi 13: 213-217, previously The method reported in Lee and Miller (1978): Mille (1986) ``Insect baculovirus for high-level expression of foreign genes'' host vector system “genetic engineering, principles res, N, Y, pp, 2 77-298.1986).

以前に報告されている方法にしたがって(Carbonellら(1985)″ 双翅目の昆虫および哺乳類細胞中での細菌遺伝子のバキコ、ロウイルスにより仲 介された発現” J、Vjrol、56:153−160HRankinら(1 9138)前出: ) CATアブセイされ、そして特異活性が計算された。こ れらの研究に用いられている全てのCAT−含有プラスミドに対するCAT遺伝 子は、CAT遺伝子が5ailカセツトとして挿入されるpcMlcAT(LK B Biotechnology、 Piscataway、 L J。)に由 来する。According to previously reported methods (Carbonell et al. (1985)'' Bacterial genes in Diptera insect and mammalian cells are mediated by Bakico and Loviruses. J, Vjrol, 56:153-160HRankin et al. (1 9138) supra:) CAT assay was performed and specific activity was calculated. child CAT genetics for all CAT-containing plasmids used in these studies. The offspring are pcMlcAT (LK B Biotechnology, Piscataway, LJ. ) due to come

実施例2 pEViodXIV )ランスブレイスメンドブラスミド(第9図)の構築が説 明される。前述の転移プラスミドphcvt (第7図)の構築の基礎となり、 またpEV+modX IV構築のための開始プラスミドとなる。pEY55プ ラスミドは、3.18から7.3のマ・ノブ単位(lU)のAcMNPvDNA を含有している。マルチクローニング部位は、+1から+635までの配列をコ ードするポリヘトリンにおきかわる。pEV5sノptlcヘクタ一部位と3, 18のAcMNPV DNAのSal 1部位の接続にある多くの制限エンドヌ クレアーゼ部位は、マルチクローニング部位に用いられ得る制限部位の型を決定 する。Example 2 pEViodXIV) The construction of the lance bracemend plasmid (Figure 9) It will be revealed. This served as the basis for the construction of the aforementioned transfer plasmid phcvt (Fig. 7), It also serves as a starting plasmid for constructing pEV+modX IV. pEY55 The lasmid contains 3.18 to 7.3 ma-nobu units (lU) of AcMNPvDNA. Contains. The multiple cloning site co-locates sequences from +1 to +635. Replaces polyhetrin, which is coded. pEV5snoptlc hector 1 site and 3, Many restriction endonucleos at the Sal 1 site connection of 18 AcMNPV DNA. The crease site determines the type of restriction site that can be used in the multiple cloning site. do.

それ故に、この接続部位は、Sma I により消化されるpEV55により取 り除かれる。これは、ベクター接続点で切ることであり、ならびにExor目お よびマング豆ヌクレアーゼの組み合わされた作用により、接続点で約70個のヌ クレオチドを削除することにより除去される。この削除部位でのライゲーシヨン によりプラスミドpEVdelをえる。pEVdel中の6.16wuと7.3 +ouとの間のウィルス性配列は、適切なベクター接続点でBan旧(6゜16 mu)およびNotl (7,3+ou)による消化により削除される。削除さ れた接続点セの平滑末端ライゲーシヨンによりpEVmod (東8図)を得る 。pE’/sodのポリへドリンプロモーター(−92のEcoRVから+IB glllまでの)は、phcLSXIV (第1−図)の小EcoRV−Bgl l!セグメントでおきかえられて改良された好都合なブラスミトテあ6 pEV modX IVを得る。pEVmodXIVに基づくトランスブレイスメンドブ ラスミドに由来するウィルスベクターは、pEV55あるいは他のいかなる既知 のプラスミド由来のウィルスベクターよりも約50%高レベルの発現をもたらす 。Therefore, this connection site is removed by pEV55, which is digested by SmaI. removed. This is to cut at the vector connection point, as well as the Exor The combined action of nuclease and mung bean nuclease generates approximately 70 nucleases at the connection point. It is removed by deleting the cleotide. Ligation at this deletion site to obtain plasmid pEVdel. 6.16wu and 7.3 in pEVdel Viral sequences between +ou and Ban old (6°16 mu) and Notl (7,3+ou). deleted pEVmod (Fig. 8) is obtained by blunt-end ligation of the connecting point C. . The polyhedrin promoter of pE'/sod (-92 EcoRV to +IB gllll) is a small EcoRV-Bgl of phcLSXIV (Fig. 1) l! Convenient Blasmitote A6 pEV that has been replaced and improved with segments Obtain modX IV. Trans brace mendob based on pEVmodXIV Viral vectors derived from rasmids can be pEV55 or any other known vector. produces approximately 50% higher levels of expression than plasmid-based viral vectors .

実施例3 phc39 (第15図)およびI)E’Vt1lod39 (第9図)トラン スブレイスメンドブラスミドの構築が説明される。vp39プロモーターを包含 するプラスミドがまず下記のごとく構築される。AcMNPVゲノム上の57. 6から57.9muの間にvp39プロモーターを含むNar IからgcoR Vのセグメントは、プラスミドベクターブルースクリプトKS−(Strata gene、 San Djego、CA)の/1cclおよびEeoRVの両部 位にクロー、ニングされる。この得られたプラスミド、psTVNMは、Xho lおよびApai部位とで切られる。vp39をコードする配列のト末端配列は 、エクソヌクレアー・ゼIIIおよびマング豆ヌクレアーゼによる消化により削 除される。Bgll+リンカ−オリゴヌクレオチドは、 DNAリガーゼを用い てギャップに挿入される。vp39のATG(+1. +2゜+3)に比べて− 2にあるBgl11部位を含有する1つのプラスミドが選択される。p39pr oの構−築のために、458bp カプシドプロモーター領域は、Kpn!およ びEcoRVを用いて、さきに選ばれたプラスミドから除去され、そして、Kp uIとEcoRVで切断されたプラスミドブルースクリプトKst (Stra ngene、San Diego、CA)に連結されるO トランスブレイスメ ンドブラスミドphc39の構築のために、vp39プロモーターを含有するp 39proの、458bpよりなるEcoRVからBglllに至るセグメント は削除され、ついでEcoFIVおよびBgl I!で消化されたphcvtに 挿入される。こうして、phc曹tのポリへドリンプロモーターはvp39プロ モーター領域でおきかえられる。こうしてえられたトランスブレイスメンドブラ スミドphc39(第15図)は、ウィルスベクターvhc39の構築に用いら れる。感染後12時間から24時間の間において、このベクターを用いるCAT 遺伝子発現は、ポリへドリンプロモーターにょるCATに比べて、5倍から10 倍の高レベルになる。外来遺伝子のより初期の発現は、タンパク質生産のより効 果的な翻訳後の修飾をもたらす。さらに好ましいトランスブレイスメンドブラス ミド、例えば、pEV+*od39 (示されていない)は、Bgl 11およ びKpnl末端(例えばMCS#1)を含有するMCS テCAT遺伝子をおき かえることによりphc39から容易に得られる。Example 3 phc39 (Figure 15) and I) E'Vt1lod39 (Figure 9) trans The construction of a sbraithmend blasmid is described. Contains the vp39 promoter A plasmid is first constructed as follows. 57. on the AcMNPV genome. Nar I to gcoR containing the vp39 promoter between 6 and 57.9 mu The V segment was constructed using the plasmid vector Bluescript KS-(Strata gene, San Diego, CA), both /1 ccl and EeoRV. It is cloned to the position. This resulting plasmid, psTVNM, was 1 and the Apai site. The terminal sequence of the sequence encoding vp39 is , excised by exonuclease III and mung bean nuclease digestion. removed. Bgll+linker oligonucleotide is made using DNA ligase. inserted into the gap. - compared to vp39's ATG (+1.+2°+3) One plasmid containing the Bgl11 site at 2 is selected. p39pr For the construction of Kpn! Oyo and EcoRV from the previously selected plasmid, and Kp Plasmid Bluescript Kst (Stra O trans brace connected to ngene, San Diego, CA) For construction of the endoplasmid phc39, p 39pro's 458bp segment from EcoRV to Bgllll was deleted, followed by EcoFIV and Bgl I! to phcvt digested with inserted. Thus, the polyhedrin promoter of phc sulfate is the vp39 promoter. Can be replaced in the motor area. The trans brace mendo bra obtained in this way Sumid phc39 (Figure 15) was used to construct the viral vector vhc39. It will be done. CAT using this vector between 12 and 24 hours after infection. Gene expression is 5 to 10 times higher than that of CAT driven by the polyhedrin promoter. The level will be twice as high. Earlier expression of foreign genes results in more efficient protein production. resulting in effective post-translational modifications. More preferred trans brace mend brass Mid, e.g. pEV+*od39 (not shown), Bgl11 and and a Kpnl terminus (e.g. MCS #1). It can be easily obtained from phc39 by hatching.

実施例4 ポリへドリンプロモーターの位置に、Synプロモーターおよび隣接するマルチ クローニング部位(MCS#2)を含有するプラスミドpSynVI−(第2図 )を構築するために、表1に示される2つのSynプロモーターオリゴヌクレオ チドがアニーリングされ、その2本鎖は、ポリアクリルアミド電気泳動により精 製され、ついでKpnlとEcoRVとで消化されたブルースクリプトプラスミ ドベクターpBSKS (Stratagene、San Diego、C,A 、) ヘ挿入される。このブルースクリプトプラスミドは、マルチクローニング 部位にSma I制限酵素部位を欠く。これにより、ブルースクリプトプラスミ ドのマルチクローニング部位へのオリゴヌクレオチドの強制的なりローニング、 および、EcoRVとKpnlとの両方の再生が可能となる。Example 4 At the position of the polyhedrin promoter, there is a Syn promoter and an adjacent multi Plasmid pSynVI- containing the cloning site (MCS#2) (Fig. ) to construct the two Syn promoter oligonucleotides shown in Table 1. The two strands are annealed and the two strands are purified by polyacrylamide electrophoresis. Bluescript plasmid was prepared and then digested with Kpnl and EcoRV. vector pBSKS (Stratagene, San Diego, C, A , ) is inserted into. This Bluescript plasmid can be used for multiple cloning The site lacks the Sma I restriction enzyme site. This allows BlueScript Plasmi to Forced re-cloning of oligonucleotides into the multiple cloning site of Also, it becomes possible to reproduce both EcoRV and Kpnl.

EeoRVから5scl部位にわたるこのプラスミドのマルチクローニング部位 の部分は、EcoRVとEcoRIと、P+st Iと、Bag旧と、5pel と、Xbalと、Notlと、5acllと5scl部位とをこの順序で含有ス ル。その合成プロモーターおよびこのマルチクローニング部位は5sclとマン グ豆ヌクレアーゼおよびXpnlにより秩序立って消化されて、ブルースクリプ トベクターから除去される。その小さなセグメントは、ゲルで精製され、ついで KpnrとEcoRVとで消化され、ゲル精製されたpEVmod (第8図) の大きいセグメントへ挿入される。MCS#2と称されるS+ga 1部位から 、隣接するマルチクローニング部位を介してのプロモーター配列が決定される。The multiple cloning site of this plasmid spans the 5scl site from EeoRV. The parts include EcoRV, EcoRI, P+st I, old Bag, and 5pel , Xbal, Notl, 5acll and 5scl sites in this order. Le. Its synthetic promoter and this multiple cloning site are linked to 5scl and man. Blue script is digested in an orderly manner by Gumbean nuclease and Xpnl. vector. The small segment is gel purified and then pEVmod digested with Kpnr and EcoRV and gel purified (Figure 8) inserted into the larger segment. From S+ga 1 site called MCS#2 , the promoter sequence via adjacent multiple cloning sites is determined.

その配列は表2に示される。5scl部位は、クローニング過程の間に、予期さ れず偶発的に再生される。The sequence is shown in Table 2. The 5scl site was unexpectedly added during the cloning process. It is played back accidentally.

5scl部位の下流へのマング豆ヌクレアーゼの作用は、観察された連結の原因 となる。The action of mung bean nuclease downstream of the 5scl site is responsible for the observed ligation. becomes.

リポータ−CAT遺伝子を含有するpsynV Iプラスミドは、構築されたC AT−含有プラスミドのCAT遺伝子発現を測定することにより、psynVI プラスミドの遺伝子発現のレベルを測定するために構築される。The psynV I plasmid containing the reporter-CAT gene was constructed psynVI by measuring CAT gene expression on AT-containing plasmids. A plasmid is constructed to measure the level of gene expression.

psynVI−CATプラスミド(第10図)の構築において、CAT遺伝子は 、5ailによりpcMlcATから削除され、マング豆ヌクレアーゼにより平 滑末端とされ、EeoRVにより切断されたpsynVIへ挿入される。CAT 遺伝子のN末端部分で、EcoR1部位を用いることにより方向性が確かめられ る。対応するウィルスベクターvsynV I−CATは、ポリへドリンプロモ ーター制御の下でCATを発現するウィルスベクターで観察されるレベルの、約 10%から約20%のレベルの、CAT発現をもたらす。ポリへドリンプロモー ター発現と同程度ではないが、構成要素である合成プロモーターからのこの発現 レベルは重要である。Synプロモーター、および組み合せにより得られるプロ モーターは、2つの異なる外来遺伝子のおよび/または特異的な翻訳後の修飾を 制御するタンパク質をコードする遺伝子の発現に対して有用である。In the construction of the psynVI-CAT plasmid (Figure 10), the CAT gene was , deleted from pcMlcAT by 5ail and cleared by mung bean nuclease. It is made blunt-ended and inserted into psynVI which is cut by EeoRV. C.A.T. At the N-terminal part of the gene, directionality was confirmed by using the EcoR1 site. Ru. The corresponding viral vector vsynV I-CAT is a polyhedrin promoter. levels observed with viral vectors expressing CAT under the control of It results in CAT expression at a level of 10% to about 20%. polyhedrin promotion This expression from a synthetic promoter is constitutive, although not to the same extent as tar expression. Level is important. Syn promoter and the resulting promoter The motor carries out specific post-translational modifications of two different foreign genes and/or It is useful for the expression of genes encoding regulatory proteins.

実施例5 いくつかの応用において、外来遺伝子発現およびポリヘトリン遺伝子発現を可能 とする組換えウィルスを形成するための遺伝子情報を運ぶことは、トランスブレ イスメンドブラスミドにとって有用である。両者の遺伝子の発現は封入体形成を もたらし、安価で大量のタンパク質生産のための能率的な昆虫幼虫の経口感染を 可能とする。さらに、昆虫の幼虫中での生産は、分化した昆虫細胞(昆虫の主た る分泌性の組織を構成する脂肪体を含む)での発現を可能とし、SF9細胞のよ うな有用な鱗翅類の昆虫細胞系でみられるよりも、より効率的な翻訳後の修飾を もたらす。Example 5 Enables foreign gene expression and polyhetrin gene expression in some applications Carrying the genetic information to form a recombinant virus is a transbreeding process. Useful for ismendoblasmids. Expression of both genes promotes inclusion body formation. Providing efficient oral infection of insect larvae for cheap and large-scale protein production possible. Furthermore, production in insect larvae is carried out in differentiated insect cells (the insect's main (including fat bodies that constitute secretory tissues), such as SF9 cells. more efficient post-translational modifications than seen in useful lepidopteran insect cell systems. bring.

それ故に、psynVI (第2図)は、トランスブレイスメンドブラスミドp synVI+マtp(第3図)を生産するように修飾される。これは、ポリヘト リンおよび外来遺伝子両者が同時に高レベルで発現することを可能とし得る。p synVl+vtpのもう1つの利点は、ポリヘトリン欠損変異体(あるいは、 ポリヘトリン/β−ガラクトシダーゼ融合変異体)のDNAが、ウィルス性のD NAおよびトランスブレイスメンドブラスミドとともに、初期に宿主細胞へ共ト ランスフェクトされる時には、封入体陽性のプラークとして、組換えウィルスを 選択する能力があることである。Therefore, psynVI (Fig. 2) is a trans-braced plasmid p modified to produce synVI+ matp (Figure 3). This is polyheto It may be possible to allow both Lin and the foreign gene to be expressed at high levels at the same time. p Another advantage of synVl+vtp is that the polyhetrin-deficient mutant (or Polyhetrin/β-galactosidase fusion mutant) DNA is a viral D Co-introduces early into host cells with NA and trans-braced plasmids. When transfected, the recombinant virus is present as inclusion body-positive plaques. It is about having the ability to choose.

psyr+vI+マtpトランスブレイスメンドブラスミドは、AcMNPVゲ ノムのEcoRI−1セグメントを有するプラスミドをEcoRVおよびKpn lを用いて消化し、ポリへドリンプロモーターならびにN末端ポリヘトリン領域 を削除することにより構築される。約0.7kbのEcoRV/Kpnlセグメ ントはゲル精製され、Sma IおよびXpnlにより消化されたpsynVl −に挿入される。ライゲージ璽ンによりSmalおよびEcoRVが削除される が、ポリへドリンフード領域に見いだされるKpnlは再生される。さらに詳細 には、ポリへドリンプロモーターおよびEcoRV(−92>からKpnl ( +635>までのN末端コード配列は、トランスブレイスメンドブラスミドps ynVI+豐tpを生産するためにpsy+1VI−に挿入される。このように 、ポリヘトリン+mRNAは、正常なプロモーターの制御の下に正常な方何に転 写され、他方外来遺伝子は合成プロモーターのもとてマルチクローニング部位に 挿入され、そして、ポリヘトリンに対して逆方向に転写される。そのプラスミド の特徴は、茅3図に示される。EcoRV/S+*alの接続と、合成プロモー ター、およびマルチクローニング部位(MCS$2)の配列は表1に示される。The psyr+vI+matp trans-braced plasmid is an AcMNPV gene. A plasmid carrying the EcoRI-1 segment of Nome was transformed into EcoRV and Kpn. The polyhedrin promoter and N-terminal polyhedrin region were digested using Constructed by deleting . EcoRV/Kpnl segment of approximately 0.7kb The sample was gel purified and psynVl digested with SmaI and Xpnl. − will be inserted. Smal and EcoRV will be deleted by Ligege Seal. However, Kpnl found in the polyhedrin hood region is regenerated. More details contains the polyhedrin promoter and EcoRV (-92> to Kpnl ( The N-terminal coding sequence up to Inserted into psy+1VI- to produce ynVI+tp. in this way , polyhetrin + mRNA is normally transferred to something under the control of a normal promoter. The foreign gene is cloned into a multiple cloning site under a synthetic promoter. inserted and transcribed in the opposite direction relative to polyhetrin. the plasmid The characteristics are shown in Figure 3. EcoRV/S+*al connection and synthetic promoter The sequences of the vector and multiple cloning site (MCS$2) are shown in Table 1.

転移ベクターpsynvl+vtpの有効性をテストするために、リポータ−C AT遺伝子は、EcoR’/部位”t’ psynVI+vtp (第3図)の MC5へ挿入され、プラスミドpsynVI+vtpccATI (第11図) が得られる。psynV I+CAT1 ノ構築のために、pCM−1CAT( 1)末端が平滑化されたCAT含有5ailセグメントは、EcoRVで消化さ れたpSynVI+vtpに挿入される。ポリヘトリン遺伝子発現と同時に、リ ポータ−CAT遺伝子を駆動させるSyr+プロモーターの能カバ、組換えウィ ルスvsynVI+vtpcAT 1を単離し、CATの発現のレベルをvsy V I−CATにより得られるレベルと比較することによりテストされる。この 2つのウィルスベクター間にはCAT遺伝子発現における重要な差異は認められ ず、ポリヘトリン遺伝子の同時発現が外来遺伝子発現を妨げないことを示す。ま た、組み換えウィルスvSynVI+vtpCATlは封入体を高いレベル生産 するので、ポリヘトリン遺伝子は豊富に発現される。To test the effectiveness of the transfer vector psynvl+vtp, reporter-C The AT gene is EcoR'/site "t" psynVI+vtp (Figure 3). Inserted into MC5, plasmid psynVI+vtpccATI (Figure 11) is obtained. For construction of psynV I+CAT1, pCM-1CAT ( 1) The blunt-ended CAT-containing 5ail segment was digested with EcoRV. pSynVI+vtp. Simultaneously with polyhetrin gene expression, The ability of Syr+ promoter to drive the porter-CAT gene, recombinant virus vsynVI+vtpcAT1 was isolated, and the level of CAT expression was determined by vsynVI+vtpcAT1. Tested by comparing with the level obtained by VI-CAT. this No significant differences in CAT gene expression were observed between the two viral vectors. First, we show that co-expression of the polyhetrin gene does not interfere with foreign gene expression. Ma Furthermore, the recombinant virus vSynVI+vtpCATl produced high levels of inclusion bodies. Therefore, the polyhetrin gene is abundantly expressed.

実施例6 トランスブレイスメンドブラスミドpsynv t V!−の構築(第4図)が 説明される。このプラスミドは、近接した2つのプロモーターを有しており、2 つの異種遺伝子の同時転移および1このベクターによる2つの遺伝子の協同発現 を可能とする。pEV55EcoRV−Kpnlセグメントは、ポリへドリンプ ロモーターおよびマルチクローニング部位MCS$1を含有しており、Smal およびKpnlにより消化されたpsynVIへ挿入された。Example 6 Trans brace men blasmid psynv t V! - construction (Figure 4) explained. This plasmid has two promoters in close proximity; Simultaneous transfer of two heterologous genes and cooperative expression of two genes by this vector is possible. The pEV55EcoRV-Kpnl segment is a polyhedrin romator and multi-cloning site MCS$1, Small and inserted into psynVI digested with Kpnl.

リポータ−CAT遺伝子を含有するpsynvtVI−は、psynvtVI− の遺伝子発現の指標となるために構築される。そのプラスミドはpsynvtV I−CA、TI (第12図)である。psynvtVI−CATIの構築ノタ メに、pCM−1cATの鈍末端化されたCAT−含有5a11セグメントは、 EcoRV消化psynvtV+−に挿入される。等量のウィルスベクターvs ynwtV1−CATlは、ポリへビリンプロモーター制御下のCAT発現ベク ターで観察されるレベルの10%から20%にCAT活性を発現する。psynvtVI- containing the reporter-CAT gene is psynvtVI- constructed to serve as an indicator of gene expression. The plasmid is psynvtV I-CA, TI (Figure 12). Construction of psynvtVI-CATI Mainly, the blunt-ended CAT-containing 5a11 segment of pCM-1cAT Inserted into EcoRV digested psynvtV+-. Equal amount of viral vector vs. ynwtV1-CATl is a CAT expression vector under the control of the polyhevilin promoter. It expresses CAT activity at 10% to 20% of the level observed in the microorganisms.

実施例7 pSPLSX IVVI+CATおよびpLsXIVYI+−CAT トランス ブレイスメンドブラスミド(第5図および第6図)の構築が説明される。Example 7 pSPLSX IVVI+CAT and pLsXIVYI+-CAT trans The construction of bracemend plasmids (Figures 5 and 6) is illustrated.

psPLsXIVVl+cATの構築のために、CAT遺伝子ならびに接続され たLSXJYプロモーターは、Xpnl消化(ならびにマング豆ヌクレアーゼに より平滑末端化される)ならびにEcoRV消化によりphcLsXIV (第 1図)から削除され、”) イテEC0RV消化によすpSynVI+vtpへ 挿入される。これは、合成プロモーターと縦にならぶ位置にLSXIVプロモー ターを配置する。そのプラスミドは、ついでEcoRVとIpnlとにより切ら れ、大きいベクターセグメントは、ゲルで精製される。野生型ポリへドリンプロ モーターおよびト末端を含有するAcMNPV Ec、oRI−1セグメントの EcoRV/Kpnl セグメントは、ゲルで精製され、pSPLSXIVVt +CATのベクターセグメント(EcoRV/Kpnl)へ挿入されることによ り、 LSXIVプロモーター制御下にCAT遺伝子をモしてポ替ヒドリンプロ モーター制御下に完全なポリヒドリン遺伝子を含有するpLsXIVVr+cA Tを生じる。コれらのプラx ミF (vSPLSXIVVI+CAT及びvL sXIVV+cAT)由来+7)ウィルス性ベクターは、野生型ポリへドリンプ ロモーターの制御下に、CATを発現するウィルスに比べて、CATを等量おあ るいは少し上回ったレベルで発現する。pLsXIVVI+cAT由来のウィル ス性ベクターのさらにもう1つの利点は、ポリヘトリンを高レベルに生産するこ とである。For the construction of psPLsXIVVl+cAT, the CAT gene and the connected The LSXJY promoter was digested with Xpnl (as well as mung bean nuclease). ) and phcLsXIV (more blunt-ended) by EcoRV digestion. 1) to pSynVI+vtp using EC0RV digestion. inserted. This places the LSXIV promoter in tandem with the synthetic promoter. Place the tar. The plasmid was then cut with EcoRV and Ipnl. and large vector segments are gel purified. Wild type polyhedrinpro AcMNPV Ec, oRI-1 segment containing the motor and end The EcoRV/Kpnl segment was gel purified and pSPLSXIVVt +CAT vector segment (EcoRV/Kpnl) By using the CAT gene under the control of the LSXIV promoter, a polyhydrin protein was generated. pLsXIVVr+cA containing the complete polyhydrin gene under motor control produces T. These Plax F (vSPLSXIVVI+CAT and vL sXIVV + cAT) derived +7) viral vector is a wild type polyhedrin Under the control of promoters, CAT can be produced in equal amounts compared to viruses that express CAT. Rui is expressed at slightly higher levels. Virus derived from pLsXIVVI+cAT Yet another advantage of this vector is that it produces high levels of polyhetrin. That is.

実施例8 pLsXIV3VI+およびpLsXIV2 )ランスブレイスメンドブラスミ ド(第13図および茅14図)の構築が説明される。プラスミドpLsXIVV I+cATは、BglllとEcoRTにより消化され、粘着末端は、マング豆 ヌクレアーゼにより削除される。DNAは、Smalによって切られ、大きいセ グメントは、ゲルで精製され、ついで、EcoRVおよびSac■末端を有する マルチクローニング部位(MCS$3)へ結合され、CAT遺伝子を欠< pL sXIV3VI+を形成する。Example 8 pLsXIV3VI+ and pLsXIV2) Lance brace mend blasmi The construction of the board (Figures 13 and 14) is explained. Plasmid pLsXIVV I+cAT is digested by Bgll and EcoRT, and the sticky ends are extracted from mung bean. removed by nuclease. The DNA is cut by Small and a large section The fragment was gel purified and then carried with EcoRV and Sac ends. pL linked to the multiple cloning site (MCS$3) and lacking the CAT gene form sXIV3VI+.

このプラスミドは、ついでEcoRVとKpnlとにより消化される。This plasmid is then digested with EcoRV and Kpnl.

その大きイセグメントは単離され、pEVmodXIV(OEcoRV/Kpn lハ、大きいセグメント」に挿入される。各々自身のMCSを有する2つの隣接 するLSXIVプロモーターをもつpLSX IV2となる。9LSXIV3V l+プラスミドは、力強いLSIIVプロモーターをもちいて外来遺伝子発現を ポリヘトリン遺伝子発現と同程度のレベルにおいてなし得る。pLsXIV2プ ラスミドは、各々LSIIVプロモーター制御の下に2つの外来遺伝子の最上の 発現を可能とする。The large segment was isolated and pEVmodXIV (OEcoRV/Kpn 1) is inserted into the ``large segment''. two neighbors each with its own MCS pLSX IV2 has the LSXIV promoter. 9LSXIV3V The l+ plasmid uses the strong LSIIV promoter to express foreign genes. can be achieved at levels comparable to polyhetrin gene expression. pLsXIV2 The lasmid contains the top of two foreign genes, each under the control of the LSIIV promoter. enable expression.

実施例9 トランスブレイスメンドブラスミドphe39 (第15図)は、vp39プロ モーターの制御の下にCATリポータ−遺伝子によって構築される。vhc39 からのCAT発現は、そのベクターが野生型プロモーターの制御の下にCATを 有するvhcvtに比べて、感染後12時間における約8倍の高レベルを示す。Example 9 The trans brace mend plasmid phe39 (Fig. 15) is the vp39 pro. Constructed by a CAT reporter gene under the control of a motor. vhc39 Expression of CAT from vhcvt at 12 hours post-infection.

phc39のCAT遺伝子は、問題としている異種遺伝子でおきかえられる。感 染過程のより初期の発現は、異型タンパク質生産物のより効果的な翻訳後の修飾 を可能とする。The CAT gene of phc39 is replaced with the foreign gene in question. Feeling Expression earlier in the staining process allows for more effective post-translational modification of heterologous protein products. is possible.

実施例1O トランスブレイスメンドブラスミドは、ウィルスベクターへの2つの外来遺伝子 の同時転移を可能とするため、およびその組換えウィルスにより両者の外来遺伝 子を同時に豊富に発現することを可能とするために構築される。トランスブレイ スメンドブラスミドpsynvtVI (第4図)は、このような2重遺伝子ト ランスブレイスメンドブラスミドの一例である。Example 1O Transbraced mendoblasmids insert two foreign genes into a viral vector. The recombinant virus allows for the simultaneous transfer of both foreign genes. Constructed to allow abundant expression of children simultaneously. transbrai The smendo plasmid psynvtVI (Fig. 4) has such a dual gene site. This is an example of a lance braced blasmid.

このプラスミドは、psynVI−をSmalおよびKpnlにより消化するこ とにより、および野生型ポリへドリンブロモーターとMC11とを含有するpE V5sEeoRV/Ipn+セグメントを挿入することによって構築される。し たがって、このプラスミドは、2つの異なるマルチクローニング部位を含有し、 それぞれ隣接するSynおよび野生型ポリへドリンプロモーターの下流にある。This plasmid can be used to digest psynVI- with Smal and Kpnl. and pE containing wild-type polyhedrin promoter and MC11. Constructed by inserting the V5sEeoRV/Ipn+ segment. death This plasmid therefore contains two different multiple cloning sites, downstream of the adjacent Syn and wild-type polyhedrin promoters, respectively.

実施例11 第2番目の遺伝子の同等の高レベルを可能とする他の例は、pLsXIV2 ( 第14図)である。このプラスミドは、隣接するLSIIVプロモーターをもた らし、その各々は、2つの異なる外来遺伝子を挿入するのに有用な制限部位を含 有マルチクローニング部位(MCS#lおよびMCS#2)をもち、その各々は LSIIVプロモーターの制御の下にある。隣接プロモーターの能率は、vLs XIVVI+cATを用いてテストされる。これは、ポリへドリンプロモーター と隣接しr CAT発現を導< pLsXIVVI+cAT$if築をもつ組換 えウィルスであり、ポリヘトリン遺伝子発現をもたらす。 vLsXIVVI+ cATヘク9−ニよルCAT発現は、CATのみ発現するphcwtのみにより 観察されたときに比較して、同等あるいはわずかに高いレベルである。Example 11 Another example that allows for equally high levels of a second gene is pLsXIV2 ( Fig. 14). This plasmid carries the flanking LSIIV promoter. each of which contains restriction sites useful for inserting two different foreign genes. has multiple cloning sites (MCS#l and MCS#2), each of which It is under the control of the LSIIV promoter. The efficiency of the adjacent promoter is vLs Tested using XIVVI+cAT. This is the polyhedrin promoter A recombinant with pLsXIVVI+cAT$if construction adjacent to r CAT expression This virus causes polyhetrin gene expression. vLsXIVVI+ cAT hec9-Niyor CAT expression is caused only by phcwt, which only expresses CAT. comparable or slightly higher levels compared to when observed.

実施例12 vp39/ポリへドリンプロモーター融合体構築が説明される。Example 12 A vp39/polyhedrin promoter fusion construction is described.

Bindlllリンカ−は、vp39の462bpプロモーターへ挿入される。The Bindlll linker is inserted into the 462 bp promoter of vp39.

vp39のDNA配列は、表3に示されている(Rankin at al、参 照(1988)上記、一般リンカースキャンアプローチのために)。The DNA sequence of vp39 is shown in Table 3 (see Rankin at al. (1988) supra, for a general linker scanning approach).

Bindlllリンカ−は、遅い/非常に遅い組み合せプロモーターを作成する ために、リンカ−スキャン修飾プロモーターのHind[I部位と結び付けるこ とを可能とするように作用する組み合せプロモーターは、(Rankinら(1 988)上記の)LSIIVプロモーターのポリへドリンプロモーターの+1か ら約−60に融合されたvp39部位(例えば−65から−350まテ)17) OCT−Aおよび0CT−Bの領域を含有するように構築される。これを行うた めに、適切な部位(例えば−65のことである)にHindllrリンカ−を有 するこのプラスミドが選ばれる(例えばvp39−65)。Hindlllから Bg’lllへのセグメントはHindlllをphcLSXIVのHindl llからBgl[Iへのセグメントと入れ換えられる。組み合せ体vp39/L SXIVプ・ロモーターを含有するBglllからEcoRVへの全セグメント は、]P・EVS5へ転移され、トランスブレイスメンドブラスミド、すなわち CAT発現を制御する組み合せプロモーターをもつpEVvp39/LSXIV CAT (第16図)、を構築する。Bindlll linker creates slow/very slow combinatorial promoters In order to A combinatorial promoter that acts to allow 988) +1 of polyhedrin promoter of LSIIV promoter (above) vp39 site fused to approximately -60 (e.g. -65 to -350)17) Constructed to contain regions of OCT-A and OCT-B. To do this In order to This plasmid is selected (e.g. vp39-65). From Hindll The segment to Bg’llll is Hindll in phcLSXIV. The segment from ll to Bgl[I is replaced. Combination body vp39/L The entire segment from Bglll to EcoRV containing the SXIV promoter ] is transferred to P.EVS5, forming a trans-braced plasmid, i.e. pEVvp39/LSXIV with a combination promoter controlling CAT expression Construct CAT (Figure 16).

実施例13 トランスブレイスメンドブラスミドpEVvp39/LSXIV (第16図) の構築は上記実施例12に説明された方法に従って達成された。ハイブリッドv p39/LSXIVプロモーター配列は表4に示す。vp39/LSXIV組み 合せプロモーターの接続点配列は、接続点(CCAAGCTTG)のHtndl 11部位および接続点のvp39の約1個から10個のヌクレオチド(Nl−1 0)を指す”N1−10 CCAAGCTTG″により印をつけられる。Example 13 Trans-braced plasmid pEVvp39/LSXIV (Figure 16) The construction of was accomplished according to the method described in Example 12 above. hybrid v The p39/LSXIV promoter sequence is shown in Table 4. vp39/LSXIV group The connection point sequence of the combined promoter is Htndl of the connection point (CCAAGCTTG). 11 sites and approximately 1 to 10 nucleotides of vp39 at the junction (Nl-1 0) is marked by "N1-10 CCAAGCTTG".

もちろん前述したことは、本発明の好ましい実施態様に関係するものであること 、ならびに以後追加請求にあるように、本発明の意図ならびに展望から外れるこ となく、多くの修飾あるいは改変がここに行われるものであることが理解されけ ればならない。Of course, what has been described above pertains to preferred embodiments of the invention. , and any additional claims hereafter, which depart from the spirit and scope of the present invention. It should be understood that many modifications or alterations may be made here. Must be.

4→T4む村;八゛ し己aam ttee aqC亡aqt aaaca亡表2.マルチクσ−二ン グ°%li #2 (/’4cr ffJ−)* il乙PI L 7q r+ pNA 白乙万す 瓢 に 宴 〉 ? 乏 に ■ ミ 5 匠 目 E 藍 61M6B ヨ ト < じ hu< リ <(JIJ(J じ 、u < 0 ← <h< 、< Q ご × 5 淀 ゴ :ご 1 く ← u I−I a 、<t− ト !+ ベ ト U ← U 〉 仁 淀 急 ? 姿 と 曹 巨 、ヨ 砦 E 書 ト ヨ ー矢 phcLsXIV FIG、 1 pSynVI− FIG、 2 psynVI”wtp FIG、 3 p8ynwtVI− FIG、 4 psPL8XIVVf”cAT FIG、 5 pLsXIWl”cAT hcwt FIG、 7 EVmod FIG、 8 pEVmodXIV FIG−9 psynV[CAT FIG、 [0 psynVl〜tpCAT I FIG、lI psynwtVl−CAT I FIG、l2 pt、sx+vsvI+ FIG、 [3 pLsXIV2 FIG、 14 hc3G FIG、 15 pEVvp39/LSXIVCAT FIG、 16 Fig、 17 国際調査報告 PCT/LIS 901028144→T4 village; 8゛ Shimi aam ttee aqC death aqt aaaca death table 2. multi-chip σ-2 G°%li #2 (/’4cr ffJ-) *il Otsu PI L 7q r+ pNA Mansu Shiroto A feast for gourds? in poverty ■ Mi 5 Takumi eyes E Indigo 61M6B Yo To< ji hu< ri <(JIJ(J     u < 0 ← < h < , < Q Go × 5 Go: Go 1 ← u I-I a, <t- to ! +Bet U ← U 〉 Jin   Sudden ? Appearance and Cao Ju, Yo Fortress E Book Toyo -arrow phcLsXIV FIG. 1 pSynVI- FIG. 2 psynVI"wtp FIG.3 p8ynwtVI- FIG. 4 psPL8XIVVf”cAT FIG. 5 pLsXIWl”cAT hcwt FIG. 7 EVmod FIG.8 pEVmodXIV FIG-9 psynV[CAT FIG, [0 psynVl~tpCAT I FIG, lI psynwtVl-CAT I FIG, l2 pt, sx+vsvI+ FIG, [3 pLsXIV2 FIG. 14 hc3G FIG. 15 pEVvp39/LSXIVCAT FIG. 16 Fig, 17 International Search Report PCT/LIS 90102814

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.宿主細胞中において遺伝子生産物を生産するためのバキユロウイルスベクタ ーであって、該ベクターは、修飾されたバキュロウイルスプロモーターならびに 異種遺伝子とを有し、該異種遺伝子は、修飾されたプロモーターの調節制御の下 にある。 2.前記修飾されたバキュロウイルスプロモーターが該修飾プロモーターにより 指示される転写の方向とは逆方向のポリアデニル化部位を有し、そして、該ポリ アデニル化部位が、転写開始部位に対して3′側に位置する、請求項1に記載の ベクター。 3.前記修飾されたバキユロウイルスプロモーターが開始部位を2ケ所含有する 、請求項1に記載のベクター。 4.前記修飾されたバキュロウイルスプロモーターが、バキュロウイルスの後期 /超後期プロモーターの保存されたDNA配列を有する、請求項1に記載のベク ター。 5.転写開始部位の約10から約30bp上流に位置するGCに富む配列の約1 0bpを含む上流活性化配列を有し、該上流活性化配列は該修飾されたプロモー ターにより指示される発現を増大させる、請求項1に記載のベクター。 6.前記修飾されたバキュロウイルスプロモーターがphcLSXIV、phc LSXVIIおよびphcLSXVIからなるプラスミドの群から選ばれるプラ スミドから単離される、請求項1に記載のベクター。 7.前記新規プロモーターが表1に示すDNA配列を含む、請求項1に記載のペ クター。 8.前記修飾されたプロモーターが、pEVmod39の修飾後期プロモーター である、請求項4に記載のベクター。 9.前記修飾されたpSPLSXIVVI+CATプロモーターが、前記プラス ミドから単離される、請求項1に記載のベクター。 10.プラスミドpSynVI−、pSynVI+wtp、pSynwtVI− 、pLSXIVVI+、およびpLSXIV2の修飾されたバキュロウイルスプ ロモーターからなる群から選択されるバキュロウイルスプロモーターを有する、 請求項1に記載のベクター。 11.宿主細胞中の複数の遺伝子生産物の生産のための、請求項1に記載のバキ ユロウイルスベクターであって、複数の修飾されたバキュロウイルスプロモータ ーおよび請求項1の異種遺伝子を有するベクター。 12.前記バキュロウイルス発現ベクターが核ポリヘドロシスウイルス由来であ る、請求項1に記載のベクター・13.前記核ポリヘドロシスウイルスがAut ographica californicaウイルスあるいはcの変異体であ る、請求項12に記載のベクター。 14.宿主細胞での異種遺伝子の発現に適したバキュロウイルス発現ベクターを 調製する方法であり、該方法はバキュロウイルスゲノムへ修飾されたバキュロウ イルスプロモーターおよび異種遺伝子を挿入することを包含し、その異種遺伝子 ほ、該修飾されたバキュロウイルスプロモーターの調節制御の下にある。 15.前記バキュロウイルス発現ベクターが、昆虫細胞中で複製するバキュロウ イルスとトランスプレイスメントプラスミドとを接触させ、そして、該外来遺伝 子によりコードされる遺伝子生産物を発現する組み換えウイルスを選択すること により形成される、請求項14に記載の方法。 16.前田バキユロウイルスが核ポリヘドロシスウイルスである、請求項14に 記載の方法。 17.前記核ポリヘドロシスウイルスがAutoraphica califo nica ウイルスまたはその変異体である、請求項16に記載の方法。 18.表1のDNA配列を有する、修節されたバキュロウイルスプロモーター。 19.プラスミドpSPLSXIVVI+CATに含有される、修飾されたバキ ュロウイルスプロモーター。[Claims] 1. Baquiulovirus vectors for producing gene products in host cells - the vector comprises a modified baculovirus promoter and a heterologous gene, the heterologous gene being under the regulatory control of a modified promoter. It is in. 2. The modified baculovirus promoter is activated by the modified promoter. has a polyadenylation site in the direction opposite to the direction of transcription that is directed, and 2. The adenylation site according to claim 1, wherein the adenylation site is located 3' to the transcription start site. vector. 3. The modified baculovirus promoter contains two initiation sites. , the vector according to claim 1. 4. The modified baculovirus promoter is a late promoter of baculovirus. 2. The vector according to claim 1, which has a conserved DNA sequence of /very late promoter. Tar. 5. About 1 of the GC-rich sequences located about 10 to about 30 bp upstream of the transcription start site has an upstream activation sequence containing 0 bp, and the upstream activation sequence comprises the modified promoter. 2. The vector of claim 1, which increases expression directed by a vector. 6. The modified baculovirus promoter is phcLSXIV, phc A plasmid selected from the group of plasmids consisting of LSXVII and phcLSXVI. 2. The vector of claim 1, which is isolated from Sumid. 7. The vector according to claim 1, wherein the novel promoter comprises the DNA sequence shown in Table 1. ctor. 8. The modified promoter is the modified late promoter of pEVmod39. The vector according to claim 4. 9. The modified pSPLSXIVVI+CAT promoter is 2. The vector of claim 1, which is isolated from the midge. 10. Plasmid pSynVI-, pSynVI+wtp, pSynwtVI- , pLSXIVVI+, and pLSXIV2 modified baculovirus proteins. having a baculovirus promoter selected from the group consisting of promoters; The vector according to claim 1. 11. 2. The strain according to claim 1 for the production of multiple gene products in a host cell. A eurovirus vector comprising multiple modified baculovirus promoters. - and a vector comprising the heterologous gene of claim 1. 12. The baculovirus expression vector is derived from nuclear polyhedrosis virus. 13. The vector according to claim 1. The nuclear polyhedrosis virus is Aut ographica californica virus or a mutant of c. 13. The vector according to claim 12. 14. Baculovirus expression vectors suitable for expression of heterologous genes in host cells This is a method for preparing baculovirus that has been modified to the baculovirus genome. including the insertion of a virus promoter and a heterologous gene; is under the regulatory control of the modified baculovirus promoter. 15. The baculovirus expression vector is a baculovirus that replicates in insect cells. A virus and a transplacement plasmid are contacted, and the foreign gene is Selecting a recombinant virus that expresses the gene product encoded by the offspring. 15. The method of claim 14, formed by: 16. Claim 14, wherein the Maeda baquidurovirus is a nuclear polyhedrosis virus. Method described. 17. The nuclear polyhedrosis virus is Autoraphica califo 17. The method according to claim 16, wherein the virus is a Nica virus or a mutant thereof. 18. A regulated baculovirus promoter having the DNA sequence of Table 1. 19. The modified Baki contained in plasmid pSPLSXIVVI+CAT Urovirus promoter.
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Families Citing this family (33)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK0638124T3 (en) * 1992-04-29 2003-10-13 Thompson Boyce Plant Res Oral infection of insect larvae with pre-occluded baculovirus particles
US6090379A (en) * 1992-04-29 2000-07-18 Boyce Thompson Institute For Plant Research, Inc. Stable pre-occluded virus particle for use in recombinant protein production and pesticides
US5593669A (en) * 1992-04-29 1997-01-14 Boyce Thompson Institute For Plant Research, Inc. Stable pre-occluded virus particle
FR2715664B1 (en) * 1994-01-31 1996-04-12 Proteine Performance Sa Recombinant baculovirus and its use for the production of monoclonal antibodies.
US7026156B1 (en) 1999-02-04 2006-04-11 The University Of Georgia Research Foundation, Inc. Diagnostic and protective antigen gene sequences of ichthyophthirius
US7326568B2 (en) 1999-02-04 2008-02-05 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Recombinant expression of heterologous nucleic acids in protozoa
US6846481B1 (en) 1999-02-04 2005-01-25 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Recombinant expression of heterologous nucleic acids in protozoa
AU2005211362B2 (en) 2004-02-02 2008-03-13 Ambrx, Inc. Modified human interferon polypeptides and their uses
NZ582684A (en) 2004-06-18 2011-05-27 Ambrx Inc Use of an antibody or binding fragment thereof comprising a non naturally encoded amino acid coupled to a linker
MX2007007591A (en) 2004-12-22 2007-07-25 Ambrx Inc Methods for expression and purification of recombinant human growth hormone.
JP4990792B2 (en) 2004-12-22 2012-08-01 アンブレツクス・インコーポレイテツド Compositions of aminoacyl-tRNA synthetases and uses thereof
JP2008525473A (en) 2004-12-22 2008-07-17 アンブレツクス・インコーポレイテツド Modified human growth hormone
JP5425398B2 (en) 2004-12-22 2014-02-26 アンブレツクス・インコーポレイテツド Compositions comprising unnatural amino acids and polypeptides, methods relating to unnatural amino acids and polypeptides, and uses of unnatural amino acids and polypeptides
WO2006071840A2 (en) 2004-12-22 2006-07-06 Ambrx, Inc. Formulations of human growth hormone comprising a non-naturally encoded amino acid
JP2008541769A (en) 2005-06-03 2008-11-27 アンブレツクス・インコーポレイテツド Improved human interferon molecules and their use
PT2339014E (en) 2005-11-16 2015-10-13 Ambrx Inc Methods and compositions comprising non-natural amino acids
MX2009002523A (en) 2006-09-08 2009-03-20 Ambrx Inc Modified human plasma polypeptide or fc scaffolds and their uses.
US9133495B2 (en) 2006-09-08 2015-09-15 Ambrx, Inc. Hybrid suppressor tRNA for vertebrate cells
JP5451390B2 (en) 2006-09-08 2014-03-26 アンブルックス,インコーポレイテッド Transcription of suppressor TRNA in vertebrate cells
WO2008121563A2 (en) 2007-03-30 2008-10-09 Ambrx, Inc. Modified fgf-21 polypeptides and their uses
US8114630B2 (en) 2007-05-02 2012-02-14 Ambrx, Inc. Modified interferon beta polypeptides and their uses
US8946148B2 (en) 2007-11-20 2015-02-03 Ambrx, Inc. Modified insulin polypeptides and their uses
NZ586947A (en) 2008-02-08 2012-11-30 Ambrx Inc Modified leptin polypeptides and their uses
US10138283B2 (en) 2008-07-23 2018-11-27 Ambrx, Inc. Modified bovine G-CSF polypeptides and their uses
CN102232085A (en) 2008-09-26 2011-11-02 Ambrx公司 Modified animal erythropoietin polypeptides and their uses
CN102224238B (en) 2008-09-26 2015-06-10 Ambrx公司 Non-natural amino acid replication-dependent microorganisms and vaccines
NZ600361A (en) 2009-12-21 2014-06-27 Ambrx Inc Modified bovine somatotropin polypeptides and their uses
CN107056929A (en) 2009-12-21 2017-08-18 Ambrx 公司 Porcine somatotropin polypeptide and its purposes by modification
US9567386B2 (en) 2010-08-17 2017-02-14 Ambrx, Inc. Therapeutic uses of modified relaxin polypeptides
SG187736A1 (en) 2010-08-17 2013-03-28 Ambrx Inc Modified relaxin polypeptides and their uses
TWI480288B (en) 2010-09-23 2015-04-11 Lilly Co Eli Formulations for bovine granulocyte colony stimulating factor and variants thereof
TW202124419A (en) 2014-10-24 2021-07-01 美商必治妥美雅史谷比公司 Modified fgf-21 polypeptides and uses thereof
AU2018219283B2 (en) 2017-02-08 2022-05-19 Bristol-Myers Squibb Company Modified relaxin polypeptides comprising a pharmacokinetic enhancer and uses thereof

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2631974B1 (en) * 1988-05-31 1992-12-11 Agronomique Inst Nat Rech MODIFIED BACULOVIRUS, ITS PREPARATION METHOD AND ITS APPLICATION AS A GENE EXPRESSION VECTOR
AU5187190A (en) * 1989-02-23 1990-09-26 University Of Ottawa Improved baculovirus expression system capable of producing foreign gene proteins at high levels

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Publication number Publication date
AU631223B2 (en) 1992-11-19
CA2033070A1 (en) 1990-11-18
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AU5820790A (en) 1990-12-18
EP0426840A1 (en) 1991-05-15

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