JPH0378133B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、新規な化学修飾シクロデキストリン
固定相及びこれを用いる高速液体クロマトグラフ
イーに関するものである。
シクロデキストリンは、ある一定の大きさと形
をもつた疎水性の空洞を有し、有機化合物及び無
機化合物からイオンまで広範囲にわたる各種ゲス
ト化合物を包接するという興味深い特徴を有して
いることが知られている。
本発明者らは、その包接作用における分子の形
や大きさを認識する能力に着目し、液体クロマト
グラフイーへの応用について研究を進めてきた。
即ち、先ず、各種ジイソシアナートによりシク
ロデキストリンを架橋して得られたポリウレタン
樹脂を用いて、芳香族アミノ酸の分離を行なつ
た。Y.Mizobuchi、M.Tanaka and T.Shono、
J.Chromatogr.、208;35(1981)。次に分離能を
向上させるために、シクロデキストリンを化学結
合させたポリアクリルアミドゲルを合成し、ベン
ゼン二置換体の異性体分離を行なつた。M.
Tanaka、Y.Mizobuchi、T.Sonoda and T.
Shono、Anal.Lett.、14(A4)、281(1981)。川口、
溝渕、田中、庄野、分析化学会第30年会1A13
(1981)。中江、川口、溝渕、田中、庄野、日本化
学会第45春季年会1T38(1982)。次いで、分離時
間の短縮を目的として、シリカゲルを支持体とす
るシクロデキストリン固定相を合成し、各種芳香
族化合物の分離を行なつた。川口、溝渕、田中、
庄野、分析化学会第30年会1A13(1981)。川口、
溝渕、田中、庄野、日本化学会第45春季年会
1T39(1982)。又は、化学結合型シクロデキスト
リン固定相による分離の結果についてまとめて、
最近、報告している。川口、中江、溝渕、田中、
庄野、第43回分析化学討論会1C15(1982)。
このように、本発明者らは、シクロデキストリ
ンのもつ選択的な包接体形成能に着目し、シクロ
デキストリンを利用した液体クロマトグラフイー
の充填剤の開発を行なつてきた。その結果、シク
ロデキストリンを化学結合により固定したポリア
クリルアミドゲルやシリカゲルは芳香族化合物の
分離に非常に有効であることを明らかにした。
しかしながら、ただ単に、シクロデキストリン
を化学結合により固定した従来の固定相を用いる
場合は、主として、次の(1)乃至(3)の問題点が存在
する。
(1) ジニトロベンゼンのm−体とp−体の分離が
不可能である。
(2) トルイジンのo−体とm−体の分離が不可能
である。
(3) 安息香酸誘導体等のカルボキシ基をもつ化合
物を溶離させるには溶離時間との関係で、溶離
液液にリン酸緩衝液の混合が不可欠である。
川口、中江、溝渕、田中、庄野、第43回分析化
学討論会1C15(1982)。
本発明者らは、上記問題点に鑑み鋭意研究の結
果、そのような問題点は、シクロデキストリンを
化学結合により固定した従来の固定相として、シ
リカゲルに固定した固定相を選択し、その選択さ
れた固定相のシリカゲルに化学結合により固定化
されたシクロデキストリンの水酸基をアセチル基
によつて修飾し、その修飾された、新規な化学修
飾シクロデキストリン固定相を用いることによ
り、全て解消されることを見出だし、本発明を完
成するに至つた。
即ち、本発明は、化学結合によりシリカゲルに
固定化されたシクロデキストリンの水酸基がアセ
チルされた。新規な化学修飾シクロデキストリン
固定相及びこれを用いる高速液体クロマトグラフ
イーである。
本発明の本質を把握する目的で、シクロデキス
トリンを化学結合によりシリカゲルに固定した
後、シクロデキストリンの水酸基を化学修飾する
ことによつてアセチル化前と保持挙動がどのよう
に変化するか比較検討を行なつた研究結果を、述
べると、次のとおりである。
即ち、シクロデキストリンを化学結合によりシ
リカゲルに固定した従来の化学結合型シクロデキ
ストリン固定相(α−en−or β−en−SuAPS−
S。川口、中江、溝渕、田中、庄野、第43回分析
化学討論会1C15(1982)。)をピリジン中無水酢酸
でアセチル化することにより、そのシクロデキス
トリンの水酸基がアセチル化された化学結合型シ
クロデキストリン固定相(Ic−α−en−or Ac−
β−en−SuAPS−S。)を得ることができる。
得られた固定相(Ac−α−en−or Ac−β−
en−SuAPS−S。)の推定構造を示すと、第1図
に示されるとおりである。
アセチル化によつて生じた保持挙動の顕著な変
化は次の2点である。
(1) β−en−SuAPS−Sでは異性体の完全分離
が不可能であつたジニトロベンゼンとトルイジ
ンの異性体分離が可能となつた。第2図参照。
(2) アセチル化前にはカルボキシル基をもつ化合
物を溶離させるには、溶離液にリン酸緩衝溶液
の混合が不可欠であつたが、アセチル化後は水
による溶離が可能となつた。
これら(1)及び(2)の変化は、シクロデキストリン
の水酸基がアセチル化によつてキヤツプされたこ
ととシクロデキストリン内孔が深くなつたことに
起因していると考えられる。
これらのことは、本発明は、その本質が、化学
結合によりシリカゲルに固定化されたシクロデキ
ストリンの水酸基がアセチル基によつて化学修飾
された、化学修飾シクロデキストリン固定相及び
これを用いる高速液体クロマトグラフイーにある
ことを示している。
本発明は、特に、ジニトリロベンゼン、クレゾ
ール、トルイジン、ヨードアニリン、ニトロアニ
リン、ニトロフエノール、ニトロ安息香酸、アミ
ノ安息香酸のようなベンゼン二置換体の全てにつ
いて例外なくそれら各々のo−、m−又はp−異
性体を容易に分離することができる高速液体クロ
マトグラフイー及びこれに用いられる新規且つ極
めて有用な化学修飾シクロデキストリン固定相を
提供するものであり、斯業に貢献するところ大な
るものがある。
以下に実施例を示す。
実施例 1
アセチル化シクロデキストリン固定相の合成
反応式 1
参 照
比較実験例の合成方法のようにして合成したシ
クロデキストリン固定相(α−en−又はβ−en
−SuAPS−S)1.7gを脱水ピリジン10ml中に入
れ、無水酢酸6mlを加えた後、45℃で6時間加熱
する。濾別後、メタノールでよく洗つた後、80℃
で12時間減圧乾燥する。
得られた固定相(Ac−α−en−又はAc−β−
en−SuAPS−Sの推定構造は、反応式1の最後
の構造式で示される。
以下にアセチル化シクロデキストリン固定相の
合成反応式を示す。
測定方法
すべて、15×0.4cmI.D.のステンレスカラムを使
用した。その他の条件は、比較実験例の従来のシ
クロデキストリン固定相の場合と同じである。
クロマトグラム
アセチル化シクロデキストリン固定相を用いて
得られた典型的なクロマトグラムを第4図(Ac
−α(β)−en−SuAPS−Sを用いた典型的液体
クロマトグラム)に示す。Ac−α−en−SuAPS
−S、Ac−β−en−SuAPS−S共、ほぼ対称的
なピークで溶離しており、又、良好な分離が得ら
れている。
表1、2に、アセチル化シクロデキストリン固
定相における各種ベンゼン二置換異性体の保持時
間を示す。この場合も、シクロデキストリン固定
相の場合と同様に溶離液中のメタノール含量が増
加するにつれて保持時間が減少する。分離時間と
分離度との兼ね合いにより、これら7種のベンゼ
ン二置換体の異性体分離の際の最適溶離液は、
Ac−α−en−SuAPS−Sで水、Ac−β−en−
SuAPS−Sでメタノール/水、20/80と決定し
た。この条件下で、Ac−β−en−SuAPS−Sで
はアミノ安息香酸、ニトロ安息香酸以外の異性体
分離が完全に行なえた。β−en−SuAPS−Sで
はジニトロベンゼンのm−体とp−体、トルイジ
ンのo−体とm−体が不分離。又、溶離液に水を
用いれば、アミノ安息香酸、ニトロ安息香酸も完
全に異性体分離できた。このことにより、ベンゼ
ン二置換体異性体分離用の充填剤としては、Ac
−β−en−SuAPS−Sが最適であるといえる。
次に、アセチル化によつて生じた変化について
述べる。表3、4にシクロデキストリン固定量の
等しい固定相における、アセチル化前とアセチル
化後の保持時間を示す。この結果より次のような
変化がわかる。
(1) 少数の異性体を除いてアセチル化シクロデキ
ストリン固定相のほうが保持が強い。
(2) アセチル化により溶離順序の変化したものが
ある。
β−:ニトロフエノールm、o、po、
m、p
α−:ニトロアニリン m、o、po、
m、p
(第5図a,b)
(3) アセチル化前はカルボキシル基を有する化合
物を溶離する際には溶離液へのリン酸緩衝液の
混合が不可欠であつたが、アセチル化後は水の
みによつて溶離が可能となつた。(第5図c,
b)。
以上の変化は、アセチル化によつて水素結合に
関与するシクロデキストリンの水酸基がキヤツプ
されたこと、および、シクロデキストリン空洞が
深くなつたことに起因していると考えられる。
The present invention relates to a novel chemically modified cyclodextrin stationary phase and high performance liquid chromatography using the same. Cyclodextrins have a hydrophobic cavity with a certain size and shape, and are known to have the interesting feature of inclusion of a wide variety of guest compounds ranging from organic and inorganic compounds to ions. There is. The present inventors have focused on the ability to recognize the shape and size of molecules through the inclusion effect, and have been conducting research on its application to liquid chromatography. That is, first, aromatic amino acids were separated using a polyurethane resin obtained by crosslinking cyclodextrin with various diisocyanates. Y. Mizobuchi, M. Tanaka and T. Shono,
J. Chromatogr., 208; 35 (1981). Next, in order to improve the separation ability, a polyacrylamide gel chemically bonded with cyclodextrin was synthesized, and the isomers of benzene disubstituted products were separated. M.
Tanaka, Y.Mizobuchi, T.Sonoda and T.
Shono, Anal. Lett., 14(A4), 281 (1981). Kawaguchi,
Mizobuchi, Tanaka, Shono, 30th Annual Meeting of the Society of Analytical Chemistry 1A13
(1981). Nakae, Kawaguchi, Mizobuchi, Tanaka, Shono, 45th Spring Annual Meeting of the Chemical Society of Japan 1T38 (1982). Next, in order to shorten the separation time, a cyclodextrin stationary phase using silica gel as a support was synthesized, and various aromatic compounds were separated. Kawaguchi, Mizobuchi, Tanaka,
Shono, 30th Annual Meeting of the Society of Analytical Chemistry 1A13 (1981). Kawaguchi,
Mizobuchi, Tanaka, Shono, 45th Spring Annual Meeting of the Chemical Society of Japan
1T39 (1982). Or, summarize the results of separation using chemically bonded cyclodextrin stationary phase.
Recently reported. Kawaguchi, Nakae, Mizobuchi, Tanaka,
Shono, 43rd Analytical Chemistry Symposium 1C15 (1982). Thus, the present inventors have focused on the selective clathrate-forming ability of cyclodextrin and have been developing a packing material for liquid chromatography using cyclodextrin. As a result, it was revealed that polyacrylamide gel and silica gel, in which cyclodextrin is immobilized by chemical bonds, are very effective for separating aromatic compounds. However, when simply using a conventional stationary phase in which cyclodextrin is immobilized by chemical bonds, the following problems (1) to (3) mainly exist. (1) It is impossible to separate the m-form and p-form of dinitrobenzene. (2) It is impossible to separate the o- and m-forms of toluidine. (3) In order to elute compounds with carboxy groups such as benzoic acid derivatives, it is essential to mix a phosphate buffer with the eluent due to the elution time. Kawaguchi, Nakae, Mizobuchi, Tanaka, Shono, 43rd Analytical Chemistry Symposium 1C15 (1982). As a result of intensive research in view of the above problems, the present inventors have found that such problems can be solved by selecting a stationary phase fixed on silica gel as a conventional stationary phase in which cyclodextrin is fixed by chemical bonding. By modifying the hydroxyl groups of cyclodextrin immobilized by chemical bonds on the silica gel stationary phase with acetyl groups, and using a new chemically modified cyclodextrin stationary phase, all of these problems can be solved. This heading led to the completion of the present invention. That is, in the present invention, the hydroxyl group of cyclodextrin immobilized on silica gel is acetylated by chemical bonding. A novel chemically modified cyclodextrin stationary phase and high performance liquid chromatography using the same. In order to understand the essence of the present invention, a comparative study was conducted to see how the retention behavior changes compared to before acetylation by chemically modifying the hydroxyl group of cyclodextrin after fixing cyclodextrin to silica gel through chemical bonding. The results of the research conducted are as follows. That is, the conventional chemically bonded cyclodextrin stationary phase (α-en-or β-en-SuAPS-
S. Kawaguchi, Nakae, Mizobuchi, Tanaka, Shono, 43rd Analytical Chemistry Symposium 1C15 (1982). ) with acetic anhydride in pyridine to form a chemically bonded cyclodextrin stationary phase (Ic-α-en- or Ac-
β-en-SuAPS-S. ) can be obtained. The obtained stationary phase (Ac-α-en-or Ac-β-
en-SuAPS-S. ) is shown in FIG. 1. The following two points are notable changes in retention behavior caused by acetylation. (1) It became possible to separate the isomers of dinitrobenzene and toluidine, which was impossible with β-en-SuAPS-S. See Figure 2. (2) Before acetylation, it was necessary to mix a phosphate buffer solution with the eluent to elute compounds with carboxyl groups, but after acetylation, elution with water became possible. These changes (1) and (2) are thought to be due to the fact that the hydroxyl groups of cyclodextrin were capped by acetylation and that the cyclodextrin internal pores became deeper. The essence of the present invention is to provide a chemically modified cyclodextrin stationary phase in which the hydroxyl group of cyclodextrin immobilized on silica gel by chemical bonding is chemically modified with an acetyl group, and a high performance liquid chromatography using the same. It shows that there is a graph. The invention particularly relates to all disubstituted benzenes such as dinitrilobenzene, cresol, toluidine, iodoaniline, nitroaniline, nitrophenol, nitrobenzoic acid, aminobenzoic acid, without exception to their respective o-, m- The present invention provides high-performance liquid chromatography that can easily separate p-isomers and a novel and extremely useful chemically modified cyclodextrin stationary phase for use therein, making a major contribution to this industry. There is. Examples are shown below. Example 1 Synthesis reaction formula of acetylated cyclodextrin stationary phase 1 Reference Cyclodextrin stationary phase (α-en- or β-en-
-SuAPS-S) 1.7g is placed in 10ml of dehydrated pyridine, 6ml of acetic anhydride is added, and then heated at 45°C for 6 hours. After filtering and washing thoroughly with methanol, heat at 80°C.
Dry under reduced pressure for 12 hours. The resulting stationary phase (Ac-α-en- or Ac-β-
The estimated structure of en-SuAPS-S is shown by the last structural formula of Reaction Formula 1. The synthesis reaction formula of the acetylated cyclodextrin stationary phase is shown below. Measurement method A 15 x 0.4 cm I.D. stainless steel column was used in all measurements. Other conditions were the same as in the case of the conventional cyclodextrin stationary phase in the comparative example. Chromatogram A typical chromatogram obtained using an acetylated cyclodextrin stationary phase is shown in Figure 4 (Ac
-α(β)-en-SuAPS-S). Ac−α−en−SuAPS
-S and Ac-β-en-SuAPS-S both elute with approximately symmetrical peaks, and good separation is obtained. Tables 1 and 2 show the retention times of various benzene disubstituted isomers in the acetylated cyclodextrin stationary phase. In this case as well, as with the cyclodextrin stationary phase, the retention time decreases as the methanol content in the eluent increases. Depending on the balance between separation time and resolution, the optimal eluent for isomer separation of these seven benzene disubstituted products is:
Ac-α-en-SuAPS-S is water, Ac-β-en-
It was determined by SuAPS-S to be methanol/water, 20/80. Under these conditions, Ac-β-en-SuAPS-S was able to completely separate isomers other than aminobenzoic acid and nitrobenzoic acid. In β-en-SuAPS-S, the m-form and p-form of dinitrobenzene and the o-form and m-form of toluidine are inseparable. Furthermore, when water was used as the eluent, aminobenzoic acid and nitrobenzoic acid could be completely separated into isomers. As a result, Ac
-β-en-SuAPS-S can be said to be optimal. Next, changes caused by acetylation will be described. Tables 3 and 4 show the retention times before and after acetylation in stationary phases with equal amounts of cyclodextrin immobilized. The results reveal the following changes. (1) Except for a few isomers, the acetylated cyclodextrin stationary phase has stronger retention. (2) The elution order may have changed due to acetylation. β-: Nitrophenol m, o, po,
m, p α-: Nitroaniline m, o, po,
m, p (Figure 5 a, b) (3) Before acetylation, when eluting compounds with carboxyl groups, it was essential to mix phosphate buffer into the eluent, but after acetylation, Elution became possible with water alone. (Figure 5c,
b). The above changes are thought to be due to the capping of the hydroxyl groups of cyclodextrin involved in hydrogen bonding by acetylation and the deepening of the cyclodextrin cavity.
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
【表】
以下に、参考の目的で、従来のシクロデキスト
リン固定相に関する。比較実験例を示す。
1 合成方法(反応式2参照)
通常の方法(1)によつて合成した、末端にカル
ボキシル基をもつシリカゲル(SuAPS−S)
5gを、mono〔6−deoxy−6−〔N−(2−
aminoethyl)〕amino〕−α−cyclodextrion(α
−en)(2)または、mono〔6−deoxy−6−〔N−
(2−aminoethy)〕amion〕−β−
cyclodextrin(β−en)(3)2gの0.15M PH5.5リ
ン酸緩衝液100ml(α−enまたはβ−en溶解
後、IN HClでPH5.5に調整する。)に分散し、
室温でモーターによつて撹拌しながら、1−
ethyl−3−(3−dimethylainopropyl)
carbodiimideを1g、0.5g、0.3gの順に2時
間間隔で添加する。撹拌を24時間行なつた後、
濾別、脱イオン水によつてよく洗い、次いで、
メタノールで洗つた後、80℃で12時間減圧乾燥
する。
(1) Methods in Enzymology、34、59(1974)
(2) L.D.Melton and K.N.Slessor、
Carbohyd.Res.、18、29(1971)
(3) Y.Matsui、T.Yokoi and K.Mochida、
Chem.Lett.、Ocd.、1037(1971)
以下にシリカゲルへのα−又はβ−シクロデ
キストリンの固定化に至る合成反応式を示す。
2 測定方法
カラムは、15×0.4cmI.D.(シクロデキストリ
ン固定相の場合)または30×0.4cmI.D.(対照と
して用いた、SuAPS−Sの場合)のステンレ
スカラムを用い、平衡スラリー法によつて充填
を行なつた。
用いた装置は次のとおりである。
検出器:応用分光機器 UV検出器UVILOG−7
ポンプ:協和精密 KHD−W−52
ダンパー:協和精密 KHP−UI−130A
インジエクター:協和精密 KDI
溶離液は、水/メタノールまたは0.15Mリン
酸緩衝液(PH4.7、5.5、6.8)であり、混合比
(v/v)は100/0、90/10、80/20、70/
30、50/50のいずれかに設定した。流速は、1
ml/min(アミノ酸分離のときのみ0.55ml/
min)とした。
分離用のサンプルはすべて各0.2mMの混合
溶液を用い、20μを注入した。
3 実験結果
シクロデキストリン固定相によるベンゼン二
置換体の異性体分離の一例を第6図(ニトロア
ニリン異性体のクロマトグラム)に示す。この
クロマトグラムからわかるように、シクロデキ
ストリン固定相では良好な分離がなされてい
る。
表5〜7には、各種ベンゼン二置換異性体の
保持時間を示す。これらの結果から次のような
特徴が見出だされる。
(1) 保持にシクロデキストリンの包接作用が大
きな役割を果たしている。
ΓSuAPS−S(表8)では、カラムの長さが
2倍で、かつ、溶離条件が最も弱い水であ
つても、あまり良好な分離はなされていな
いが、シクロデキストリン固定相では保持
が強く、分離も良好である。
Γ一部の溶質について、シクロデキストリン
の包接平衡定数を測定したところ、異性体
に対する数値の順は溶離順序と一致した。
(2) 溶離液中のメタノール含量が増加するにつ
れて、保持は弱くなる。(表5、6)
Γシクロデキストリンの包接力はメタノール
濃度の増加により減少するという事実と、
逆相的挙動であるということで説明され
る。
(3) イオンの存在により保持の弱くなる溶質が
ある、ニトロフエノール、特に、カルボン酸
類。(表7)
(4) 溶離液のPHによつて、保持時間が変化す
る。(表7)
(5) 構造の似かよつた化合物の分離が可能であ
る。(第7図:アミノ酸のクロマトグラム)
Γ SuAPS−Sでは分離不可能な2〜5の
アミノ酸が良好に分離されている。
本実験に使用した8種の二置換ベンゼンの異性
体分離の際の最適溶離液は次の通りである。
α−en−SuAPS−S:0.15M PH5.5リン酸緩
衝液。ジニトロベンゼンm−、p−が不分離。最
長はp−ヨードアニリンの74分。
β−en−SuAPS−S:メタノール/0.15M
PH5.5リン酸緩衝液30/70。ジニトロベンゼンm
−、p−とトルイジンo−、m−が分離せず。最
長はp−ヨードアニリンの25分。
また、β−シクロデキストリン固定相の場合、
フエノール、芳香族アルコール類の分離(第8
図)、芳香族カルボン酸の分離(第9図)にも使
用でき、モノ置換ナフタレンの分離もまた可能で
ある(ナフトール、ナフタレンカルボン酸、ナフ
タレンスルホン酸ナトリウム)。[Table] The following relates to conventional cyclodextrin stationary phases for reference purposes. A comparative experimental example is shown. 1 Synthesis method (see reaction formula 2) Silica gel with a carboxyl group at the end (SuAPS-S) synthesized by the usual method (1)
5g of mono[6-deoxy-6-[N-(2-
aminoethyl)〕amino〕−α−cyclodextrion(α
-en) (2) or mono[6-deoxy-6-[N-
(2-aminoethy)〕amion〕−β−
Disperse 2 g of cyclodextrin (β-en) (3) in 100 ml of 0.15M PH5.5 phosphate buffer (adjust to PH5.5 with IN HCl after dissolving α-en or β-en),
While stirring with a motor at room temperature, 1-
ethyl-3-(3-dimethylainopropyl)
Carbodiimide is added in the order of 1 g, 0.5 g, and 0.3 g at 2 hour intervals. After stirring for 24 hours,
Filter, wash well with deionized water, then
After washing with methanol, dry under reduced pressure at 80°C for 12 hours. (1) Methods in Enzymology, 34 , 59 (1974) (2) LDMelton and KNSlessor,
Carbohyd.Res., 18 , 29 (1971) (3) Y.Matsui, T.Yokoi and K.Mochida,
Chem. Lett., Oct., 1037 (1971) The synthetic reaction formula leading to immobilization of α- or β-cyclodextrin on silica gel is shown below. 2 Measurement method A stainless steel column of 15 x 0.4 cm I.D. (for cyclodextrin stationary phase) or 30 x 0.4 cm I.D. (for SuAPS-S used as a control) was used, and the equilibrium slurry method was used. Filling was carried out by The equipment used is as follows. Detector: Applied spectroscopic equipment UV detector UVILOG-7 Pump: Kyowa Seimitsu KHD-W-52 Damper: Kyowa Seimitsu KHP-UI-130A Injector: Kyowa Seimitsu KDI The eluent was water/methanol or 0.15M phosphate buffer ( PH4.7, 5.5, 6.8), and the mixing ratio (v/v) is 100/0, 90/10, 80/20, 70/
It was set to either 30 or 50/50. The flow rate is 1
ml/min (0.55ml/min only for amino acid separation)
min). All samples for separation were mixed solutions of 0.2mM each, and 20μ of each was injected. 3. Experimental Results An example of isomer separation of disubstituted benzene using a cyclodextrin stationary phase is shown in FIG. 6 (chromatogram of nitroaniline isomers). As can be seen from this chromatogram, good separation was achieved with the cyclodextrin stationary phase. Tables 5 to 7 show the retention times of various benzene disubstituted isomers. The following characteristics can be found from these results. (1) The inclusion effect of cyclodextrin plays a major role in retention. In ΓSuAPS-S (Table 8), the column length is twice as long, and even with water as the weakest elution condition, the separation is not very good, but the cyclodextrin stationary phase shows strong retention. Separation is also good. ΓWhen the inclusion equilibrium constants of cyclodextrin were measured for some solutes, the numerical order for the isomers matched the elution order. (2) The retention becomes weaker as the methanol content in the eluent increases. (Tables 5 and 6) The fact that the inclusion power of Γ cyclodextrin decreases with increasing methanol concentration,
This can be explained by its antiphase behavior. (3) Nitrophenols, especially carboxylic acids, which have solutes whose retention becomes weaker due to the presence of ions. (Table 7) (4) Retention time changes depending on the pH of the eluent. (Table 7) (5) Compounds with similar structures can be separated. (Figure 7: Amino acid chromatogram) 2 to 5 amino acids that cannot be separated by Γ SuAPS-S are well separated. The optimal eluent for isomer separation of the eight disubstituted benzenes used in this experiment is as follows. α-en-SuAPS-S: 0.15M PH5.5 phosphate buffer. Dinitrobenzene m- and p- are not separated. The longest time is 74 minutes for p-iodoaniline. β-en-SuAPS-S: Methanol/0.15M
PH5.5 phosphate buffer 30/70. dinitrobenzene m
-, p- and toluidine o-, m- were not separated. The longest time is 25 minutes for p-iodoaniline. In addition, in the case of β-cyclodextrin stationary phase,
Separation of phenols and aromatic alcohols (Chapter 8)
), it can also be used for the separation of aromatic carboxylic acids (Fig. 9), and the separation of monosubstituted naphthalenes is also possible (naphthol, naphthalene carboxylic acid, sodium naphthalene sulfonate).
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
第1図は固定相(Ac−α−en−又はAc−β−
en−SuAPS−S)の推定構造を表わす。但しAc
−α−en−SuAPS−Sについてはm=12、n=
5、Ac−β−en−SuAPS−Sについてはm=
14、n=6を示す。第2図a及びbは夫々Ac−
β−en−SuAPS−S及びβ−en−SuAPS−Sを
用いて以下の分離条件で得られたジニトロベンゼ
ン異性体の高速液体クロマトグラムを表わす。
カラム:15cm×0.4cmI.D.
溶離液:(a)メタノール/水=20/80
(b)メタノール/PH5.5リン酸緩衝液=30/70
流速:1ml/min
測定波長:254nm
試料:0.2mM、20μ
第3図a及びbは夫々第1図の推定構造に示さ
れているα−CD(α−シクロデキストリン)及び
β−CD(β−シクロデキストリン)の構造を表わ
す。第4図a及びbは夫々Ac−α−en−SuAPS
−S及びAc−β−en−SuAPS−Sを用いた
Figure 1 shows the stationary phase (Ac-α-en- or Ac-β-
represents the estimated structure of en-SuAPS-S). However, Ac
−α−en−SuAPS−S, m=12, n=
5. For Ac-β-en-SuAPS-S, m=
14, n=6. Figure 2 a and b are respectively Ac-
The figure shows high performance liquid chromatograms of dinitrobenzene isomers obtained using β-en-SuAPS-S and β-en-SuAPS-S under the following separation conditions. Column: 15cm x 0.4cmI.D. Eluent: (a) Methanol/Water = 20/80 (b) Methanol/PH5.5 phosphate buffer = 30/70 Flow rate: 1ml/min Measurement wavelength: 254nm Sample: 0.2 mM, 20μ Figures 3a and b represent the structures of α-CD (α-cyclodextrin) and β-CD (β-cyclodextrin), respectively, shown in the predicted structures of Figure 1. Figure 4 a and b are Ac-α-en-SuAPS, respectively.
-S and Ac-β-en-SuAPS-S were used.
【式】の典型的高速液体クロマトグラ
ムを表わす。第4図c及びdは夫々Ac−α−en
−SuAPS−S及びAc−β−en−SuAPS−Sを用
いたRepresents a typical high performance liquid chromatogram of the formula. Figure 4 c and d are Ac-α-en, respectively.
-SuAPS-S and Ac-β-en-SuAPS-S were used.
【式】の典型的高速液体クロマト
グラムを表わす。
溶離液:(a)(c)水(b)メタノール/水=20/80
測定波長:254nm
第5図a及びbは夫々Ac−α−en−SuAPS−
S及びα−en−SuAPS−Sを用いた
Represents a typical high performance liquid chromatogram of the formula. Eluent: (a) (c) water (b) methanol/water = 20/80 Measurement wavelength: 254 nm Figure 5 a and b are Ac-α-en-SuAPS-
Using S and α-en-SuAPS-S
【式】の高速液体クロマトグラムを表
わす。第5図c及びdは夫々Ac−β−en−
SuAPS−S及びβ−en−SuAPS−Sを用いた
Represents the high performance liquid chromatogram of [formula]. Figures 5c and d are Ac-β-en-, respectively.
Using SuAPS-S and β-en-SuAPS-S
【式】の高速液体クロマトグラムを表
わす。
溶離液:(a)(b)(c)水(d)メタノール/PH5.5リン酸緩
衝液=30/70
測定波長:254nm
第6図a,b及びcは夫々SuAPS−S、α−
en−SuAPS−S及びβ−en−SuAPS−Sを用い
たニトロアニリン異性体の高速液体クロマトグラ
ムを表わす。
溶離液:(a)水(b)PH5.5リン酸緩衝液(c)メタノー
ル/PH5.5リン酸緩衝液=30/70
測定波長:254nm
第7図a及びbは夫々SuAPS−S及びβ−en
−SuAPS−Sを用いた下記アミノ酸6種の高速
液体クロマトグラムを表わす。
アミノ酸:
溶離液:(a)水(b)PH6.8リン酸緩衝液
測定波長:205nm
第8図a及びbは夫々SuAPS−S及びβ−en
−SuAPS−Sを用いたフエノール及び芳香族ア
ルコール類〔Represents the high performance liquid chromatogram of [formula]. Eluent: (a) (b) (c) water (d) methanol/PH5.5 phosphate buffer = 30/70 Measurement wavelength: 254 nm Figure 6 a, b and c are SuAPS-S, α-
Figure 2 depicts high performance liquid chromatograms of nitroaniline isomers using en-SuAPS-S and β-en-SuAPS-S. Eluent: (a) Water (b) PH5.5 phosphate buffer (c) Methanol/PH5.5 phosphate buffer = 30/70 Measurement wavelength: 254 nm Figure 7 a and b are SuAPS-S and β, respectively −en
-High performance liquid chromatogram of the following six amino acids using SuAPS-S is shown. amino acid: Eluent: (a) Water (b) PH6.8 phosphate buffer Measurement wavelength: 205 nm Figure 8 a and b are SuAPS-S and β-en, respectively.
- Phenols and aromatic alcohols using SuAPS-S [
【式】n=0、
1、2、3〕の高速液体クロマトグラムを表わ
す。
溶離液:(a)水(b)メタノール/PH6.8リン酸緩衝液
=30/70
測定波長:205nm
第9図a及びbは夫々SuAPS−S及びβ−en
−SuAPS−Sを用いた芳香族カルボン酸類
〔[Formula] represents the high performance liquid chromatogram of n=0, 1, 2, 3]. Eluent: (a) Water (b) Methanol/PH6.8 phosphate buffer = 30/70 Measurement wavelength: 205 nm Figure 9 a and b are SuAPS-S and β-en, respectively.
-Aromatic carboxylic acids using SuAPS-S [
【式】m=0、1、2、
3、4〕の高速液体クロマトグラムを表わす。
溶離液:(a)水(b)メタノール/PH6.8リン酸緩衝液
=30/70
測定波長:205nm。[Formula] represents the high performance liquid chromatogram of m=0, 1, 2, 3, 4]. Eluent: (a) water (b) methanol/PH6.8 phosphate buffer = 30/70 Measurement wavelength: 205 nm.
Claims (1)
クロデキストリンの水酸基がアセチル化された、
新規な化学修飾シクロデキストリン固定相。 2 化学結合によりシリカゲルに固定化されたシ
クロデキストリンの水酸基がアセチル化された、
新規な化学修飾シクロデキストリン固定相を用い
る高速液体クロマトグラフイー。[Claims] 1. The hydroxyl group of cyclodextrin immobilized on silica gel by chemical bonding is acetylated.
Novel chemically modified cyclodextrin stationary phase. 2. The hydroxyl group of cyclodextrin immobilized on silica gel by chemical bonding is acetylated.
High performance liquid chromatography using a novel chemically modified cyclodextrin stationary phase.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58051304A JPS59177133A (en) | 1983-03-26 | 1983-03-26 | Novel chemically modified cyclodextrin fixing phase and high performance liquid chromatography using the same |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58051304A JPS59177133A (en) | 1983-03-26 | 1983-03-26 | Novel chemically modified cyclodextrin fixing phase and high performance liquid chromatography using the same |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS59177133A JPS59177133A (en) | 1984-10-06 |
JPH0378133B2 true JPH0378133B2 (en) | 1991-12-12 |
Family
ID=12883173
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58051304A Granted JPS59177133A (en) | 1983-03-26 | 1983-03-26 | Novel chemically modified cyclodextrin fixing phase and high performance liquid chromatography using the same |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS59177133A (en) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4808232A (en) * | 1986-12-08 | 1989-02-28 | American Maize-Products Company | Separation and purification of cyclodextrins |
CN1034851C (en) * | 1990-03-15 | 1997-05-14 | 中国科学院成都有机化学研究所 | Preparation of bonded stationary phase of cyclodextrin used in chromatograph |
CN105170098B (en) * | 2015-10-10 | 2017-09-08 | 常州大学 | A kind of method that utilization microwave esterification modification prepares dewatering silica gel |
CN113797905B (en) * | 2021-10-11 | 2022-07-12 | 南昌大学 | Pyridine dicarboxamide bridged bis-beta-cyclodextrin stationary phase and preparation method and application thereof |
-
1983
- 1983-03-26 JP JP58051304A patent/JPS59177133A/en active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS59177133A (en) | 1984-10-06 |
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