JPH02215379A - 新規制限酵素及びその製造方法 - Google Patents
新規制限酵素及びその製造方法Info
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
【産業上の利用分野】
本発明は新規な制限酵素及びその製造法に関するもので
ある。 [従iゝに技術] 制限酵素とはデオキシリボ核酸(DNA)上のある特定
の塩基配列を認識し、この配列内または近傍の2本鎖を
切断するエンドメクレアーゼである。 この酵素は1、その酵素活性に高い基質特異性と再現性
を備えており、遺伝子の単離、塩基配列の解析や蛋白質
の構造解析を初め、遺伝物質の大量生産などの遺伝子操
作を行う上で不可欠である。 また、今後の遺伝病の解明や治療、遺伝子の人工変換等
に重大な産業的意義を有する試薬でもある。 制限酵素は種々の微生物より単離されており、その認識
する塩基配列、切断様式により、現在までに約100種
類が知られている。 しかし、これらの中には病原微生物を生産するものや、
数種類の制限酵素を持っているため精製が困難なもの、
酵素活性が不安定なもの、極めて特異な条件のもとでし
か活性を持たないものなど多くの問題を抱えるものがあ
る。 また、 ↓ 5’−T T CG A A−3゜3
’−A ′A G CT T−’a↑ というm基配列を認識し、矢印の部位で切断する酵素と
してはNap(7524)Vなどが知られている。しか
しこれらは生産量が低いこと、精製が困難などの問題点
があった。 [本発明の目的] 本発明者等は有能な制限酵素の開発の目的で多数の制限
酵素生産菌の研究を行った結果、クロストリジウム属に
属する菌が、精製が簡便で、しかも従来知られている N5p(7524)Vよりも極めて安定していて取扱い
やすい制限酵素を生産することを突き止め、本発明を完
成するに至った。 すなわち、本発明は従来知られている制限」ン′ 酵素より安定していて取扱いやすい新規制限酵素および
より簡便な工業的生産方法を提供できるようにした。 [問題点を解決する為の手段] 本発明中の第1発明は次ざの酵素化学的諸性質を有する
。新規制限酵素Cbi1に関するものである。 a)作用及び基質特異性 制限酵素CbIは2本鎖デオキシリボ核酸中の ↓ 5’−T T CG A A−3’3
’−A A G CT T−5’↑ という塩基配列を認識し、矢印の部位で切断する酵素で
ある。 制限酵素CbIの認識部位の決定は、大腸菌ファージN
DNA 、動物ウィルスAd2ffNA、動物ウィルス
5V40DNA 、大腸菌ファージ$ X174RF[
lNA 、大腸菌プラスミドpBR322DNAの各D
NAの切断数を調べ、ロバートの表(Nucleic
Ac1ds R+、+eaTeh 11185.
13.r185)に照らし合せて行った。 その結果、制限酵素CbIは制限酵素 Nsp (7524)Vのアイソシゾマーであることが
示された。 さらに、、e物つィルスAd2t)HAに制限酵素Cb
iIと制限酵素N5p(7524)Vを同時に作用させ
、切断片が変化しないことでこれらの酵素がアイソシゾ
マーの関係にあることを確認した。 切断点の決定は次ぎの方法にて行った。 まず大腸菌ファージλDMAを制限酵素CbIで切断し
、最少のDNA断片をポリアクリルアミドゲル電気泳動
にて分取した。 このDNA断片をアルカリフォスファターゼで処理し、
DNA断片の5°末端のリン酸を取除いた。 次ぎにポリヌクレオチドカイネース及び[γ−32P]
アデノシン玉リン酸を用1.%てDNA断片の5°末
端に放射性リン酸を付加した。 この放射性リン酸を付加したDNA断片を制限酵素!c
o01091で切断し、ポリアクリルアミドゲル電気泳
動で2つの小断片に分離Φ分取した。 それぞれの口HA断片をマクサム・ギルバート法により
各5°末端からの塩基配列を調べた。 これらの実験から制限酵素CbIは ↓ ↑ という塩基配列を認識し、矢印の位置で切断していると
判明した。 b)酵素反応の至適条件及び酵素の安定性至適pH:制
限酵素CbiIの至適p)Iは5.5〜7.0であった
。 安定pH:4℃24時間の処理に対し、pH4,0〜7
.5で100%の酵素活性を維持していた。 至−槌′度:制限−素qb弓の至適温度は30〜40℃
であった。 安定温度:55°0で5分間の加熱に対し、100%の
酵素活性を維持してい た。 塩濃度:塩化ナトリウムはO−150mMで、塩化カル
シウムは0〜50mMで、硫 酸アンモニウムは0〜IQOmMで安 定に酵素活性を示した。 塩化マグネシウム濃度: 1〜io■にで高い酵素活性を示し た。7mMが至適濃度であった。 C)分子量 丁SKgel G3QOQSW Glags (東ソー
■製)を用いたゲルろ適法で49.200.0.1%S
O3を含むポリアクリルアミドゲル電気泳動法にて48
,800であった。制限酵素CbIは分子j約4i9.
000の単量体であった。 本発明中の第2発明は、クロストリジウム属に属する制
限酵素CbI生産菌を栄養培地で培養し、*Pζ書り制
限酵素CbiXを採取することを特徴とするものである
。 本発明で使用する微生物はクロストリジウム属に属する
CbI生産菌であればいずれでもよいが、例えば人糞便
中より分離されたクロストリジウム・ビファーメンタン
スB−4(Clogtridiui+ biferme
+5tana B−4微工研菌条寄第10518号)で
ある。 培養法に制限はなく1通常行われるクロストリジウム属
細菌の培養法で増殖可能であるものなら何でもよい。 また、本酵素の抽出、精製は一般の制限酵1g精製法に
従った方法で行なえる。 すなわち培養菌体は常法に従って集菌 し、超音波処理などの方法により菌体な破砕する。 破砕の後、遠心分離などの方法で無細胞抽出液を得る。 この抽出液をイオン交換クロマトグラ フィー法、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー法
、ゲルる適法、アフィニ ティークロマトグラライ−法などのクロマトグラフィー
法の組合せにより精製を行い、Gbilを得る。 CbIの活性測定を次ざのとおり行った。 下記表1の組成からなる反応系に酵素を加えて全量を5
01j、1とし、37℃で1時間反応させる。1%S
[IS(ドデシル硫酸ナトリウム)、50%グリセロー
ル、0.1%BPB(ブロモフェノールブルー)からな
る酵素反応停止液を5JJ、l加えて反応を停止させる
0反応液中の大腸菌ファージ入DNAを1%アガロース
ゲル電気泳動法にて分離する。ゲルにO−51Lg/m
lのエチジウムブロマイドを含ませておき、uv熱照射
DNAのバンドを検出し、バンドの数と量が変化しなく
なった時を終点とする。 上記反応においてlpg入[INAを完全に切断する酵
素活性を1単位とする。 表1 10mM ) リ ス塩酸、 PH7,5
7膳M2−メルカプトエタノール7 l終g入DNA (宝酒造■製) [実施例] クロストリジウム・ビファーメンタンス日−4(微工研
菌条寄第10518号)をスチールジャーにて37℃で
24時間嫌気培養を行った。 この前培養液をカザミノ酸培地に1/100 !接種し
、37℃で48時間嫌気培養を行った.遠心分離で菌体
を集めたところ,約20gの湿菌体を得た。 カザミノ酸液体培地 i!L 塩化ナトリウム 1.5g ツイーン80 1,3gシスティン
塩酸 0.4g pH7.0(NaOH) 得られた菌体に緩衝液A (10−圓トリス塩酸, p
H7.5, lOmM i!−メルカプト! タ/ −
)Lt、7鳳舅塩化マグネシウム) 200mlを加
え、超音波で処理し、菌体を破砕した.遠心分離で無細
胞抽出液を得、0.45p讃のフィルターに通した.得
られた無細胞抽出液を100■Xの塩化ナトリウムを含
む緩衝液B(50■にトリス塩酸, pH7.5 、
7■に塩化マグネシウムJに一夜透析を行った.この透
析後の無細胞抽出液を以下の高速液体クロマトグラフィ
ー(東ソー■製)にて精製を行った。 初めに100mMの塩化ナトリウムを含む緩衝液Bで平
衡したDEAE− )ヨパールパック850M (イオ
ン交換クロマトグラフィー)に無細胞抽出液を吸着させ
、300履Xの塩化ナトリウムを含む緩衝液Bでタンパ
ク質を溶出させた.初めのピークを制限酵素画分として
得、これを再び緩衝液Bで一夜透析した。 この制限酵素画分を緩衝液Bで平向したTSKgel
DEAE−5PW Glass(イオン交換1) el
−2 トゲラフイー)に吸着させた.O〜50G−M
の塩化ナトリウムの直線的濃度勾配を持つ緩衝IBで溶
出させ、170〜27OmN塩化ナトリウム濃度に制限
酵素画分を得た.この制限酵素画分を緩衝液C (10
1舅リン酸ナトリウム、 pH7.5, 0.02mM
塩化カルシウム)に−夜透析した。 この制限酵素画分を緩衝液Cで平衡したTSKgel
HA−1000 Glass (ヒドロキシアパタイト
クロマトグラフィー)に吸着させ,ls衝液Cから緩衝
液D ( 500■阿リン酸ナトリウムpH7.5,
0.02mM塩化カルシウム)までの直線的濃度勾配で
溶出を行った.200〜220+にリン酸ナトリウム濃
度に制限酵素画分を得た。 この制限酵素画分を緩衝液E(50層にトリス塩酸,
p)!7,.5, 7嘗M2ーメルカプトエタノール’
?+M塩化マネシウム, 10%グリセロール)にてT
SKgel G3000SlI GIassCゲルろ過
)に供した.リテンションタイム14.5分のピークを
制限酵素画分として得た。 得られた制限酵素画分を50%グリセロールを含む緩衝
液Aで一夜透析を行い,最終酵素標本とした。ゲルろ過
画分はもとよりヒドロキシアパタイト画分にも非特異的
なりNA分解酵素は見られなかった。 以上の方法により湿菌体20gから10,G00単位の
制限酵素CbIが得られた。 [効 果] 上述した本発明により,精製が容易で、しかも酵素活性
が安定した制限酵素CbIおよびその製造が可能となっ
た。
ある。 [従iゝに技術] 制限酵素とはデオキシリボ核酸(DNA)上のある特定
の塩基配列を認識し、この配列内または近傍の2本鎖を
切断するエンドメクレアーゼである。 この酵素は1、その酵素活性に高い基質特異性と再現性
を備えており、遺伝子の単離、塩基配列の解析や蛋白質
の構造解析を初め、遺伝物質の大量生産などの遺伝子操
作を行う上で不可欠である。 また、今後の遺伝病の解明や治療、遺伝子の人工変換等
に重大な産業的意義を有する試薬でもある。 制限酵素は種々の微生物より単離されており、その認識
する塩基配列、切断様式により、現在までに約100種
類が知られている。 しかし、これらの中には病原微生物を生産するものや、
数種類の制限酵素を持っているため精製が困難なもの、
酵素活性が不安定なもの、極めて特異な条件のもとでし
か活性を持たないものなど多くの問題を抱えるものがあ
る。 また、 ↓ 5’−T T CG A A−3゜3
’−A ′A G CT T−’a↑ というm基配列を認識し、矢印の部位で切断する酵素と
してはNap(7524)Vなどが知られている。しか
しこれらは生産量が低いこと、精製が困難などの問題点
があった。 [本発明の目的] 本発明者等は有能な制限酵素の開発の目的で多数の制限
酵素生産菌の研究を行った結果、クロストリジウム属に
属する菌が、精製が簡便で、しかも従来知られている N5p(7524)Vよりも極めて安定していて取扱い
やすい制限酵素を生産することを突き止め、本発明を完
成するに至った。 すなわち、本発明は従来知られている制限」ン′ 酵素より安定していて取扱いやすい新規制限酵素および
より簡便な工業的生産方法を提供できるようにした。 [問題点を解決する為の手段] 本発明中の第1発明は次ざの酵素化学的諸性質を有する
。新規制限酵素Cbi1に関するものである。 a)作用及び基質特異性 制限酵素CbIは2本鎖デオキシリボ核酸中の ↓ 5’−T T CG A A−3’3
’−A A G CT T−5’↑ という塩基配列を認識し、矢印の部位で切断する酵素で
ある。 制限酵素CbIの認識部位の決定は、大腸菌ファージN
DNA 、動物ウィルスAd2ffNA、動物ウィルス
5V40DNA 、大腸菌ファージ$ X174RF[
lNA 、大腸菌プラスミドpBR322DNAの各D
NAの切断数を調べ、ロバートの表(Nucleic
Ac1ds R+、+eaTeh 11185.
13.r185)に照らし合せて行った。 その結果、制限酵素CbIは制限酵素 Nsp (7524)Vのアイソシゾマーであることが
示された。 さらに、、e物つィルスAd2t)HAに制限酵素Cb
iIと制限酵素N5p(7524)Vを同時に作用させ
、切断片が変化しないことでこれらの酵素がアイソシゾ
マーの関係にあることを確認した。 切断点の決定は次ぎの方法にて行った。 まず大腸菌ファージλDMAを制限酵素CbIで切断し
、最少のDNA断片をポリアクリルアミドゲル電気泳動
にて分取した。 このDNA断片をアルカリフォスファターゼで処理し、
DNA断片の5°末端のリン酸を取除いた。 次ぎにポリヌクレオチドカイネース及び[γ−32P]
アデノシン玉リン酸を用1.%てDNA断片の5°末
端に放射性リン酸を付加した。 この放射性リン酸を付加したDNA断片を制限酵素!c
o01091で切断し、ポリアクリルアミドゲル電気泳
動で2つの小断片に分離Φ分取した。 それぞれの口HA断片をマクサム・ギルバート法により
各5°末端からの塩基配列を調べた。 これらの実験から制限酵素CbIは ↓ ↑ という塩基配列を認識し、矢印の位置で切断していると
判明した。 b)酵素反応の至適条件及び酵素の安定性至適pH:制
限酵素CbiIの至適p)Iは5.5〜7.0であった
。 安定pH:4℃24時間の処理に対し、pH4,0〜7
.5で100%の酵素活性を維持していた。 至−槌′度:制限−素qb弓の至適温度は30〜40℃
であった。 安定温度:55°0で5分間の加熱に対し、100%の
酵素活性を維持してい た。 塩濃度:塩化ナトリウムはO−150mMで、塩化カル
シウムは0〜50mMで、硫 酸アンモニウムは0〜IQOmMで安 定に酵素活性を示した。 塩化マグネシウム濃度: 1〜io■にで高い酵素活性を示し た。7mMが至適濃度であった。 C)分子量 丁SKgel G3QOQSW Glags (東ソー
■製)を用いたゲルろ適法で49.200.0.1%S
O3を含むポリアクリルアミドゲル電気泳動法にて48
,800であった。制限酵素CbIは分子j約4i9.
000の単量体であった。 本発明中の第2発明は、クロストリジウム属に属する制
限酵素CbI生産菌を栄養培地で培養し、*Pζ書り制
限酵素CbiXを採取することを特徴とするものである
。 本発明で使用する微生物はクロストリジウム属に属する
CbI生産菌であればいずれでもよいが、例えば人糞便
中より分離されたクロストリジウム・ビファーメンタン
スB−4(Clogtridiui+ biferme
+5tana B−4微工研菌条寄第10518号)で
ある。 培養法に制限はなく1通常行われるクロストリジウム属
細菌の培養法で増殖可能であるものなら何でもよい。 また、本酵素の抽出、精製は一般の制限酵1g精製法に
従った方法で行なえる。 すなわち培養菌体は常法に従って集菌 し、超音波処理などの方法により菌体な破砕する。 破砕の後、遠心分離などの方法で無細胞抽出液を得る。 この抽出液をイオン交換クロマトグラ フィー法、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー法
、ゲルる適法、アフィニ ティークロマトグラライ−法などのクロマトグラフィー
法の組合せにより精製を行い、Gbilを得る。 CbIの活性測定を次ざのとおり行った。 下記表1の組成からなる反応系に酵素を加えて全量を5
01j、1とし、37℃で1時間反応させる。1%S
[IS(ドデシル硫酸ナトリウム)、50%グリセロー
ル、0.1%BPB(ブロモフェノールブルー)からな
る酵素反応停止液を5JJ、l加えて反応を停止させる
0反応液中の大腸菌ファージ入DNAを1%アガロース
ゲル電気泳動法にて分離する。ゲルにO−51Lg/m
lのエチジウムブロマイドを含ませておき、uv熱照射
DNAのバンドを検出し、バンドの数と量が変化しなく
なった時を終点とする。 上記反応においてlpg入[INAを完全に切断する酵
素活性を1単位とする。 表1 10mM ) リ ス塩酸、 PH7,5
7膳M2−メルカプトエタノール7 l終g入DNA (宝酒造■製) [実施例] クロストリジウム・ビファーメンタンス日−4(微工研
菌条寄第10518号)をスチールジャーにて37℃で
24時間嫌気培養を行った。 この前培養液をカザミノ酸培地に1/100 !接種し
、37℃で48時間嫌気培養を行った.遠心分離で菌体
を集めたところ,約20gの湿菌体を得た。 カザミノ酸液体培地 i!L 塩化ナトリウム 1.5g ツイーン80 1,3gシスティン
塩酸 0.4g pH7.0(NaOH) 得られた菌体に緩衝液A (10−圓トリス塩酸, p
H7.5, lOmM i!−メルカプト! タ/ −
)Lt、7鳳舅塩化マグネシウム) 200mlを加
え、超音波で処理し、菌体を破砕した.遠心分離で無細
胞抽出液を得、0.45p讃のフィルターに通した.得
られた無細胞抽出液を100■Xの塩化ナトリウムを含
む緩衝液B(50■にトリス塩酸, pH7.5 、
7■に塩化マグネシウムJに一夜透析を行った.この透
析後の無細胞抽出液を以下の高速液体クロマトグラフィ
ー(東ソー■製)にて精製を行った。 初めに100mMの塩化ナトリウムを含む緩衝液Bで平
衡したDEAE− )ヨパールパック850M (イオ
ン交換クロマトグラフィー)に無細胞抽出液を吸着させ
、300履Xの塩化ナトリウムを含む緩衝液Bでタンパ
ク質を溶出させた.初めのピークを制限酵素画分として
得、これを再び緩衝液Bで一夜透析した。 この制限酵素画分を緩衝液Bで平向したTSKgel
DEAE−5PW Glass(イオン交換1) el
−2 トゲラフイー)に吸着させた.O〜50G−M
の塩化ナトリウムの直線的濃度勾配を持つ緩衝IBで溶
出させ、170〜27OmN塩化ナトリウム濃度に制限
酵素画分を得た.この制限酵素画分を緩衝液C (10
1舅リン酸ナトリウム、 pH7.5, 0.02mM
塩化カルシウム)に−夜透析した。 この制限酵素画分を緩衝液Cで平衡したTSKgel
HA−1000 Glass (ヒドロキシアパタイト
クロマトグラフィー)に吸着させ,ls衝液Cから緩衝
液D ( 500■阿リン酸ナトリウムpH7.5,
0.02mM塩化カルシウム)までの直線的濃度勾配で
溶出を行った.200〜220+にリン酸ナトリウム濃
度に制限酵素画分を得た。 この制限酵素画分を緩衝液E(50層にトリス塩酸,
p)!7,.5, 7嘗M2ーメルカプトエタノール’
?+M塩化マネシウム, 10%グリセロール)にてT
SKgel G3000SlI GIassCゲルろ過
)に供した.リテンションタイム14.5分のピークを
制限酵素画分として得た。 得られた制限酵素画分を50%グリセロールを含む緩衝
液Aで一夜透析を行い,最終酵素標本とした。ゲルろ過
画分はもとよりヒドロキシアパタイト画分にも非特異的
なりNA分解酵素は見られなかった。 以上の方法により湿菌体20gから10,G00単位の
制限酵素CbIが得られた。 [効 果] 上述した本発明により,精製が容易で、しかも酵素活性
が安定した制限酵素CbIおよびその製造が可能となっ
た。
Claims (3)
- (1)次の酵素化学的諸性質を有する新規制限酵素Cb
I イ)作用及び基質特異性 2本鎖デオキシリボ核酸中の塩基配列 【塩基配列が有ります。】 を認識し、かつこれを矢印の位置で切断する(但し、上
記式中のAはアデノシン、Gはグアノシン、Tはチミジ
ン、Cはシチジンを示す)。 ロ)至適pH 5.5〜7.0 ハ)安定pH 4.0〜7.5 ニ)至適温度 30〜40℃ ホ)安定温度 55℃ 但し、5分間の加熱で100%の酵素活性を保持する温
度。 ヘ)安定塩濃度 150mM 但し、塩化ナトリウム、塩の要求性はない。 ト)分子量 49,000 但し、ゲルろ過法及びSDSポリアクリルアミドゲル電
気泳動法による。 - (2)クロストリジウム属に属する制限酵素CbiI生
産菌を栄養培地で培養し、培養物より制限酵素CbiI
を採取することを特徴とする制限酵素CbiIの製造方
法。 - (3)クロストリジウム属に属する制限酵素CbiI生
産菌が、クロストリジウム・ビファーメンタンスB−4
(Clostridium bifermentans
B−4(微工研菌条寄第10518号))である特許
請求の範囲第2項記載の製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1036496A JPH02215379A (ja) | 1989-02-15 | 1989-02-15 | 新規制限酵素及びその製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1036496A JPH02215379A (ja) | 1989-02-15 | 1989-02-15 | 新規制限酵素及びその製造方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02215379A true JPH02215379A (ja) | 1990-08-28 |
Family
ID=12471439
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1036496A Pending JPH02215379A (ja) | 1989-02-15 | 1989-02-15 | 新規制限酵素及びその製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02215379A (ja) |
-
1989
- 1989-02-15 JP JP1036496A patent/JPH02215379A/ja active Pending
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