JPH01144984A - 酸化物の製造方法 - Google Patents
酸化物の製造方法Info
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- JPH01144984A JPH01144984A JP30258487A JP30258487A JPH01144984A JP H01144984 A JPH01144984 A JP H01144984A JP 30258487 A JP30258487 A JP 30258487A JP 30258487 A JP30258487 A JP 30258487A JP H01144984 A JPH01144984 A JP H01144984A
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野コ
本発明は酸化物の製造方法に関し、詳しくはメタン資化
性菌の共酸化能を利用して酸化物を製造するにあたり、
反応系に炭酸ガスおよび/または無機炭酸塩を添加して
共酸化能を向上させることを特徴とする酸化物の製造方
法に関する。
性菌の共酸化能を利用して酸化物を製造するにあたり、
反応系に炭酸ガスおよび/または無機炭酸塩を添加して
共酸化能を向上させることを特徴とする酸化物の製造方
法に関する。
[従来の技術、発明が解決しようとする問題点]メタン
資化性菌の有するメタン酸化酵素(メタンモノオキシゲ
ナーゼ)はアルカン、アルケン。
資化性菌の有するメタン酸化酵素(メタンモノオキシゲ
ナーゼ)はアルカン、アルケン。
環式化合物等を酸化して相応する酸化物に変換する能力
を有することが知られている(特公昭58−31198
号)。
を有することが知られている(特公昭58−31198
号)。
しかし、該メタン資化性菌の共酸化能を利用して酸化物
を製造する場合、該酸化能が低下しやすく、長時間にわ
たり安定的に目的とする酸化物を得ることができなかっ
た。
を製造する場合、該酸化能が低下しやすく、長時間にわ
たり安定的に目的とする酸化物を得ることができなかっ
た。
[問題点を解決するための手段]
そこで本発明者らは、メタン資化性菌の共酸化能を高め
る方法について検討を重ねた結果、反応液中の炭酸イオ
ン濃度を制御することによって該メタン資化性菌の共酸
化能を高めることができることを見出し、かかる知見に
基いて本発明を完成したのである。
る方法について検討を重ねた結果、反応液中の炭酸イオ
ン濃度を制御することによって該メタン資化性菌の共酸
化能を高めることができることを見出し、かかる知見に
基いて本発明を完成したのである。
すなわち本発明は、電子供与体の存在下、アルカン、ア
ルケンもしくは環状化合物にメタン資化性菌を接触させ
て酸化物を製造するにあたり、反応系に炭酸ガスおよび
/または無機炭酸塩を加えることを特徴とする酸化物の
製造方法を提供するものである。
ルケンもしくは環状化合物にメタン資化性菌を接触させ
て酸化物を製造するにあたり、反応系に炭酸ガスおよび
/または無機炭酸塩を加えることを特徴とする酸化物の
製造方法を提供するものである。
本発明において原料として用いるアルカンとしてはメタ
ン、エタン、プロパン、ブタン、ヘキサン、オクタンな
どがあり、アルケンとしてはエチレン、プロピレン、ブ
テン類などがある。また、環状化合物としてはシ゛クロ
ヘキサンなどの脂環式化合物;ベンゼン、トルエンなど
の芳香族化合物が挙げられる。
ン、エタン、プロパン、ブタン、ヘキサン、オクタンな
どがあり、アルケンとしてはエチレン、プロピレン、ブ
テン類などがある。また、環状化合物としてはシ゛クロ
ヘキサンなどの脂環式化合物;ベンゼン、トルエンなど
の芳香族化合物が挙げられる。
これら原料から誘導される酸化物は、アルカンからアル
コール;アルケンからエポキサイド;環状化合物から環
状アルコールである。
コール;アルケンからエポキサイド;環状化合物から環
状アルコールである。
本発明に使用できるメタン資化性菌としては、たとえば
メチロコッカス・カプスラツスφ (Meth 1ococcus cgy土atus)
NCIB 11132などのメチロコッカス属細菌、メ
チロモナス・アルバス(Math lomonas a
lbus) NCIB 11123などのメチロモナス
属細菌、メチロモナス・スポリウム(Methylos
inus sporium) BI811126 など
のメチロシヌス属細菌、メチロシスチス・バルバム(M
ethylocystis ■二」) NCl3111
29などのメチロシスチス属細菌、メチロバクテリウム
・オルガノフィラム(Meth lobacteriu
m organo hilum)ATCC27B88な
どのメチロバクテリウム属細菌などを挙げることができ
る。
メチロコッカス・カプスラツスφ (Meth 1ococcus cgy土atus)
NCIB 11132などのメチロコッカス属細菌、メ
チロモナス・アルバス(Math lomonas a
lbus) NCIB 11123などのメチロモナス
属細菌、メチロモナス・スポリウム(Methylos
inus sporium) BI811126 など
のメチロシヌス属細菌、メチロシスチス・バルバム(M
ethylocystis ■二」) NCl3111
29などのメチロシスチス属細菌、メチロバクテリウム
・オルガノフィラム(Meth lobacteriu
m organo hilum)ATCC27B88な
どのメチロバクテリウム属細菌などを挙げることができ
る。
上記メタン資化性菌を培養するために用いる培地として
は該細菌が十分に増殖しつるものであればよく、通常は
炭素源としてメタン、メタノールなどを用いる。また、
窒素源としては塩化アンモニウム、硝酸カリウム、硝酸
アンモニウムなど常用のものを使用すればよい。その他
にリン酸、カルシウム塩、マグネシウム塩および微量の
無機塩(第2銅塩、第1鉄塩、コバルト塩など)等を適
宜加える。好適な培地としてホイッテンベリー等の培地
(J、 Gen、 Mtcrobiol、、 61.2
05〜208頁。
は該細菌が十分に増殖しつるものであればよく、通常は
炭素源としてメタン、メタノールなどを用いる。また、
窒素源としては塩化アンモニウム、硝酸カリウム、硝酸
アンモニウムなど常用のものを使用すればよい。その他
にリン酸、カルシウム塩、マグネシウム塩および微量の
無機塩(第2銅塩、第1鉄塩、コバルト塩など)等を適
宜加える。好適な培地としてホイッテンベリー等の培地
(J、 Gen、 Mtcrobiol、、 61.2
05〜208頁。
1970年)がある。培地を入れた培養容器の空間はメ
タンと酸素含有ガス(空気など)との混合ガスにて置換
し、該ガスと接触している培地にメタン資化性菌を接種
する。
タンと酸素含有ガス(空気など)との混合ガスにて置換
し、該ガスと接触している培地にメタン資化性菌を接種
する。
本発明に用いるメタン資化性菌は好気性細菌であり、そ
の培養は20〜50℃にて好気的条件下に回分培養もし
くは連続培養を行なえばよい。
の培養は20〜50℃にて好気的条件下に回分培養もし
くは連続培養を行なえばよい。
培養物はそのまま前記原料の酸化反応に使用することが
できるが、遠心分離等の操作により固液分離して得た微
生物菌体を用いることが好ましい。さらに、リン酸緩衝
液等の適当な溶液で洗浄し、該溶液に懸濁した微生物菌
体は一層好適である。そのほか、微生物菌体破砕物、同
抽出物等のメタン酸化酵素を含むものを使用したり、微
生物菌体を常法により固定化したもの等を使用すること
もできる。ここで、破砕処理は常法により行なえばよく
、たとえば微生物菌体を超音波、フレンチプレスなどに
より破砕する方法がある。また、抽出処理は前記破砕処
理をしたのち遠心分離を行ない可溶性抽出物を得る方法
などを採用することができる。
できるが、遠心分離等の操作により固液分離して得た微
生物菌体を用いることが好ましい。さらに、リン酸緩衝
液等の適当な溶液で洗浄し、該溶液に懸濁した微生物菌
体は一層好適である。そのほか、微生物菌体破砕物、同
抽出物等のメタン酸化酵素を含むものを使用したり、微
生物菌体を常法により固定化したもの等を使用すること
もできる。ここで、破砕処理は常法により行なえばよく
、たとえば微生物菌体を超音波、フレンチプレスなどに
より破砕する方法がある。また、抽出処理は前記破砕処
理をしたのち遠心分離を行ない可溶性抽出物を得る方法
などを採用することができる。
上記メタン資化性菌を原料と接触させるにあたり、電子
供与体を存在させることが必要である。
供与体を存在させることが必要である。
ここで電子供与体としてはメチルアルコール、エチルア
ルコールなどの低級アルコール;ホルムアルデヒド、ア
セトアルデヒド、プロピオンアルデヒドなどの低級アル
デヒド;ギ酸もしくはギ酸ナトリウムなどのギ酸塩類;
メタン;水素; NADH2;NADPH2などがある
。これらは単独であるいは組合せて用いる。
ルコールなどの低級アルコール;ホルムアルデヒド、ア
セトアルデヒド、プロピオンアルデヒドなどの低級アル
デヒド;ギ酸もしくはギ酸ナトリウムなどのギ酸塩類;
メタン;水素; NADH2;NADPH2などがある
。これらは単独であるいは組合せて用いる。
上記原料とメタン資化性菌を接触させて酸化物を得るに
あたり、反応系に炭酸ガスおよび/または無機炭酸塩を
加えることが必要である。炭酸ガスを用いる場合、空気
:炭酸ガス= 1 : 0.1〜0.75 (容量比)
の混合ガスとして用いることが好ましい。さらに、炭酸
ガスを加えると反応液のpHが低下するため、水酸化カ
リウム、水酸化ナトリウム、アンモニア等の塩基性物質
で中和してpH5,5〜9.0の範囲で使用すべきであ
る。また、無機炭酸塩としては、たとえば炭酸カリウム
、炭酸ナトリウム、重炭酸ナトリウム、炭酸アンモニウ
ムなとがあり、1〜140ミリモル/U、好ましくは1
〜130ミリモル/Uの割合で添加する。゛最適添加量
は菌株により多少異なる。
あたり、反応系に炭酸ガスおよび/または無機炭酸塩を
加えることが必要である。炭酸ガスを用いる場合、空気
:炭酸ガス= 1 : 0.1〜0.75 (容量比)
の混合ガスとして用いることが好ましい。さらに、炭酸
ガスを加えると反応液のpHが低下するため、水酸化カ
リウム、水酸化ナトリウム、アンモニア等の塩基性物質
で中和してpH5,5〜9.0の範囲で使用すべきであ
る。また、無機炭酸塩としては、たとえば炭酸カリウム
、炭酸ナトリウム、重炭酸ナトリウム、炭酸アンモニウ
ムなとがあり、1〜140ミリモル/U、好ましくは1
〜130ミリモル/Uの割合で添加する。゛最適添加量
は菌株により多少異なる。
なお、上記原料とメタン資化性菌との反応は、使用する
微生物の種類等によっても異なるが、−船釣にはpH5
,5〜9.0、温度15〜60℃、好ましくは20〜5
0℃の条件で目的とする酸化物が効率よく得られるよう
に設定すればよい。
微生物の種類等によっても異なるが、−船釣にはpH5
,5〜9.0、温度15〜60℃、好ましくは20〜5
0℃の条件で目的とする酸化物が効率よく得られるよう
に設定すればよい。
この反応により、前述した如く、原料に相応するアルコ
ール、エポキサイド、環状アルコールが得られる。これ
ら生成物は相分離、抽出、蒸留。
ール、エポキサイド、環状アルコールが得られる。これ
ら生成物は相分離、抽出、蒸留。
吸着等の公知の手法を適用して分離、採取することがで
きる。
きる。
[実施例コ
次に、実施例により本発明の詳細な説明する。
実施例1
下記の培地(1)8℃を10に容ジャーファーメンタ−
に仕込み、120℃で20分間殺菌したのち冷却した。
に仕込み、120℃で20分間殺菌したのち冷却した。
一方、別個に120℃で20分殺菌した下記の培地(2
) 85mβを該培地(1)に加えた。
) 85mβを該培地(1)に加えた。
同様に培地(1)50mfずつ500mj!容マイヤー
フラスコに入れ、120℃で20分間殺菌後、別殺菌し
た培地(2)0.5m!!を加えたものにメチロコッカ
ス・カプスラツスNCIB 11132を1白金耳接種
した。その後、ゴム栓で密栓し、50+njlのメタン
を加えて45℃で3日間振どう培養した。
フラスコに入れ、120℃で20分間殺菌後、別殺菌し
た培地(2)0.5m!!を加えたものにメチロコッカ
ス・カプスラツスNCIB 11132を1白金耳接種
した。その後、ゴム栓で密栓し、50+njlのメタン
を加えて45℃で3日間振どう培養した。
このフラスコ培養液8本を種菌として前記ジャーファー
メンタ−に無菌的に仕込んだ後、メタン:空気=1:4
(容量比)の混合ガスを毎分4℃の割合で供給し、3日
間培養した。菌濃度が1.5mg/++lに達した後、
培地(1)と培地(2)を100 : 1.5の割合
で混合した培地にさらに(:uSO4・5H20を1
rng#+の割合で加えて調製した培地を無菌フィルタ
ーで除菌しながら1.6fl/時間の割合で供給して連
続的に培養した。
メンタ−に無菌的に仕込んだ後、メタン:空気=1:4
(容量比)の混合ガスを毎分4℃の割合で供給し、3日
間培養した。菌濃度が1.5mg/++lに達した後、
培地(1)と培地(2)を100 : 1.5の割合
で混合した培地にさらに(:uSO4・5H20を1
rng#+の割合で加えて調製した培地を無菌フィルタ
ーで除菌しながら1.6fl/時間の割合で供給して連
続的に培養した。
培地(1)
硫酸マグネシウム・7水塩 1.0g硝酸カリウム
1.Og塩化カルシウム
50 mgNaMoO41// FeSO4・7)!20 500
μgznS04−7H20400ug H3BO415// GoCI!2・6H2050)) MnCj)2・4)120
20 //NjCj!2・6)120
10 ))CuSO4
・51(20200)I EDTA
250 )1蒸留水
IfL培地(2) Na2HPO4・12)120 43
gに82PO415,6g Fe−EDTA 240 m
g蒸留水 1 ℃pHa、a 上記した方法にしたがって連続培養したメチロコッカス
・カプスラツスN(:IB 11132株の培養液20
mI2を遠心分離し、5mMバイブスバツファー(p+
+[i、a、 (:uSO4・5HzO1041Mを含
む)に菌濃度が0.5mg/mρとなるように懸濁した
。
1.Og塩化カルシウム
50 mgNaMoO41// FeSO4・7)!20 500
μgznS04−7H20400ug H3BO415// GoCI!2・6H2050)) MnCj)2・4)120
20 //NjCj!2・6)120
10 ))CuSO4
・51(20200)I EDTA
250 )1蒸留水
IfL培地(2) Na2HPO4・12)120 43
gに82PO415,6g Fe−EDTA 240 m
g蒸留水 1 ℃pHa、a 上記した方法にしたがって連続培養したメチロコッカス
・カプスラツスN(:IB 11132株の培養液20
mI2を遠心分離し、5mMバイブスバツファー(p+
+[i、a、 (:uSO4・5HzO1041Mを含
む)に菌濃度が0.5mg/mρとなるように懸濁した
。
この懸濁液1mρを7mA+容のマイヤーフラスコに入
れ、さらに重炭酸ナトリウムを種々の濃度となるように
加えてゴム栓し、次いで、プロピレン2mfを加え、4
5℃で300rpmにて30秒秒間上う攪拌した後、直
ちにメタノールを1 mMとなるように加えて45℃で
3分間振どう攪拌し、生成したプロピレンオキサイドを
ガスクロマトグラフィーにて定量した。結果を第1表に
示す。
れ、さらに重炭酸ナトリウムを種々の濃度となるように
加えてゴム栓し、次いで、プロピレン2mfを加え、4
5℃で300rpmにて30秒秒間上う攪拌した後、直
ちにメタノールを1 mMとなるように加えて45℃で
3分間振どう攪拌し、生成したプロピレンオキサイドを
ガスクロマトグラフィーにて定量した。結果を第1表に
示す。
第 1 表
実施例2
実施例1に示した培養方法にしたがって連続培養したメ
チロコッカス・カプスラツス NGI811132の培
養液400mj!を遠心分離して得た菌体を新しい培地
(前記培地(1) と培地(2)を100:1.5の割
合で混合したものにCuSO4・5H20を1 m、g
/Rの割合で加えて調製したもの)に菌濃度が1 rn
g/1all どなるように懸濁した。
チロコッカス・カプスラツス NGI811132の培
養液400mj!を遠心分離して得た菌体を新しい培地
(前記培地(1) と培地(2)を100:1.5の割
合で混合したものにCuSO4・5H20を1 m、g
/Rの割合で加えて調製したもの)に菌濃度が1 rn
g/1all どなるように懸濁した。
この懸濁液400m1+を1℃容レジャーファーメンタ
−入れ、空気を毎分80m1+の割合で供給した。
−入れ、空気を毎分80m1+の割合で供給した。
温度を45℃に保ち種々の流量で炭酸ガスを30分間供
給すると共に4M水酸化カリウムでpH6,8に調節し
た。炭酸ガス供給30分後、プロピレン32O+U/分
、メタノール120μmoj!/分の割合で15分間供
給し、プロピレンオキサイドを生産せしめた。
給すると共に4M水酸化カリウムでpH6,8に調節し
た。炭酸ガス供給30分後、プロピレン32O+U/分
、メタノール120μmoj!/分の割合で15分間供
給し、プロピレンオキサイドを生産せしめた。
ガス中および反応液中に生成したプロピレンオキサイド
量をガスクロマトグラフィーにて定量した。結果を第2
表に示す。
量をガスクロマトグラフィーにて定量した。結果を第2
表に示す。
0 1.10
8 1.59
3(11,98 601,87 実施例3,4 前記培地(1)と培地(2)を100 : 1.5の
割合で混合した培地にさらにCuSO4・51(2oを
0.3mg/i)の割合で加えた培地を、あらかじめ乾
熱殺菌した2、5 JZ容のマイヤーフラスコに無菌フ
ィルターを通して250111j’仕込んだ。
3(11,98 601,87 実施例3,4 前記培地(1)と培地(2)を100 : 1.5の
割合で混合した培地にさらにCuSO4・51(2oを
0.3mg/i)の割合で加えた培地を、あらかじめ乾
熱殺菌した2、5 JZ容のマイヤーフラスコに無菌フ
ィルターを通して250111j’仕込んだ。
同じ培地を500m1+容のマイヤーフラスコに50m
!仕込み、メチロモナス・アルバスNCIB 1112
3およびメチロモナス・スボリウムNC:IB 111
26をそれぞれ1白金耳接種し、メタン50mj!を加
えた後、ブチルゴム栓で密栓した。次いで、30℃で3
日間振どう培養したものを種菌とし、上記2.5℃容の
マイヤーフラスコに仕込んだ。さらに、メタン500m
j!を加え、シリコンゴム栓をした後、30℃で24時
時間上う培養した。
!仕込み、メチロモナス・アルバスNCIB 1112
3およびメチロモナス・スボリウムNC:IB 111
26をそれぞれ1白金耳接種し、メタン50mj!を加
えた後、ブチルゴム栓で密栓した。次いで、30℃で3
日間振どう培養したものを種菌とし、上記2.5℃容の
マイヤーフラスコに仕込んだ。さらに、メタン500m
j!を加え、シリコンゴム栓をした後、30℃で24時
時間上う培養した。
その後、菌体を遠心分離により集め、CuSO4・5H
zO0,5mg/jを含む4mMリン酸バッファー(p
He−、a)で2回洗浄した。さらに、菌濃度が0.5
mg/mj)となるように同一バッファーに懸濁した。
zO0,5mg/jを含む4mMリン酸バッファー(p
He−、a)で2回洗浄した。さらに、菌濃度が0.5
mg/mj)となるように同一バッファーに懸濁した。
この懸濁液tm*を7m!!容のマイヤーフラスコに入
れ、さらに重炭酸ナトリウムを種々の濃度となるように
加えてゴム栓をし、直ちにプロピレン2mlを加えた。
れ、さらに重炭酸ナトリウムを種々の濃度となるように
加えてゴム栓をし、直ちにプロピレン2mlを加えた。
この懸濁液を45℃、 300rpmで30秒秒間上う
攪拌した後、直ちにメタノールを1 mMとなるように
加え、45℃で3分間振とう攪拌し、生成したプロピレ
ンオキサイドをガスクロマトグラフィーにて定量した。
攪拌した後、直ちにメタノールを1 mMとなるように
加え、45℃で3分間振とう攪拌し、生成したプロピレ
ンオキサイドをガスクロマトグラフィーにて定量した。
結果を第4表に示す。
第 4 表
75 5Q7
実施例5
実施例1において、培地中の硫酸マグネシウム濃度を3
.0g/βにしたことおよび培養温度を33℃にしたこ
と以外は、実施例1と同様の方法でメチロシスチス・バ
ルバムMCIB 11129を連続培養した。
.0g/βにしたことおよび培養温度を33℃にしたこ
と以外は、実施例1と同様の方法でメチロシスチス・バ
ルバムMCIB 11129を連続培養した。
次いで、菌体を遠心分離により集め、実施例3および4
と同様の方法で重炭酸ナトリウムの添加効果を調べた。
と同様の方法で重炭酸ナトリウムの添加効果を調べた。
結果を第5表に示す。
第 5 表
3 フ20[発
明の効果] メタン資化性菌の共酸化能を利用してアルカン等の原料
から相応する酸化物を製造するにあたり、反応系に安価
な炭酸源を加えることにより、菌体の活性を高め、単位
菌体当りの目的酸化物の生産量を向上させることができ
る。
明の効果] メタン資化性菌の共酸化能を利用してアルカン等の原料
から相応する酸化物を製造するにあたり、反応系に安価
な炭酸源を加えることにより、菌体の活性を高め、単位
菌体当りの目的酸化物の生産量を向上させることができ
る。
この方法は、有用物質の製造に利用されるほか、廃水処
理等の分野にも適用される。
理等の分野にも適用される。
Claims (2)
- (1)電子供与体の存在下、アルカン、アルケンもしく
は環状化合物にメタン資化性菌を接触させて酸化物を製
造するにあたり、反応系に炭酸ガスおよび/または無機
炭酸塩を加えることを特徴とする酸化物の製造方法。 - (2)メタン資化性菌がメチロコッカス属、メチロモナ
ス属、メチロシヌス属、メチロシスチス属およびメチロ
バクテリウム属のうちのいずれかに属するものである特
許請求の範囲第1項記載の方法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30258487A JPH01144984A (ja) | 1987-11-30 | 1987-11-30 | 酸化物の製造方法 |
CA 583389 CA1322734C (en) | 1987-11-30 | 1988-11-17 | Method for regenerating deactivated microorganisms |
EP19880119872 EP0318914B1 (en) | 1987-11-30 | 1988-11-29 | Method for regenerating deactivated microorganisms |
DE19883850056 DE3850056T2 (de) | 1987-11-30 | 1988-11-29 | Verfahren zur Regeneration von desaktivierten Mikroorganismen. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30258487A JPH01144984A (ja) | 1987-11-30 | 1987-11-30 | 酸化物の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01144984A true JPH01144984A (ja) | 1989-06-07 |
JPH053277B2 JPH053277B2 (ja) | 1993-01-14 |
Family
ID=17910738
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP30258487A Granted JPH01144984A (ja) | 1987-11-30 | 1987-11-30 | 酸化物の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01144984A (ja) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5847494A (ja) * | 1977-07-04 | 1983-03-19 | ナシヨナル・リサ−チ・デイベロツプメント・コ−ポレイシヨン | バクテリアによる酸化物の製造方法 |
JPS5948088A (ja) * | 1982-06-28 | 1984-03-19 | エクソン・リサ−チ・アンド・エンヂニアリング・コムパニ− | アルカン、ビニル化合物及び第二級アルコ−ルの微生物学的酸化方法 |
-
1987
- 1987-11-30 JP JP30258487A patent/JPH01144984A/ja active Granted
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5847494A (ja) * | 1977-07-04 | 1983-03-19 | ナシヨナル・リサ−チ・デイベロツプメント・コ−ポレイシヨン | バクテリアによる酸化物の製造方法 |
JPS5948088A (ja) * | 1982-06-28 | 1984-03-19 | エクソン・リサ−チ・アンド・エンヂニアリング・コムパニ− | アルカン、ビニル化合物及び第二級アルコ−ルの微生物学的酸化方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH053277B2 (ja) | 1993-01-14 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |