JP7378091B2 - Virucide - Google Patents
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Description
本発明は殺ウイルス剤に関する。詳細には、微細藻類の抽出物又はその成分を有効成分とした殺ウイルス剤及びその用途等に関する。本出願は、2018年7月31日に出願された日本国特許出願第2018-143049号に基づく優先権を主張するものであり、当該特許出願の全内容は参照により援用される。 The present invention relates to virucides. In particular, the present invention relates to a virucidal agent containing an extract of microalgae or its components as an active ingredient, and its uses. This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2018-143049 filed on July 31, 2018, and the entire contents of the patent application are incorporated by reference.
ウイルス感染症はHIV(ヒト免疫不全ウイルス)やインフルエンザウイルスなどの病原性ウイルスによる疾患である。これまでのウイルス感染症対策としては、ワクチンと抗ウイルス薬の開発が中心であった。しかし、ワクチンが開発されている感染症は限定されており、ウイルス側に抗原変異が生じれば効力を失ってしまう。また、抗ウイルス薬については、対象感染症が限定されている上に、副作用や薬剤耐性ウイルスの出現、経済的負担の増大などの問題を抱えている。特に、薬剤耐性ウイルスの出現は、その薬剤の寿命を縮める深刻な問題である。耐性が生じる原因としては、ほとんどの抗ウイルス薬がウイルス酵素を標的としていることにある。つまり、細胞内でのウイルス増殖段階に阻害的に作用するのである。このことから、薬剤耐性を回避するには、細胞内でのウイルス増殖ではなく、細胞外に存在するウイルス粒子そのものを標的にすればよいと考えられる。このような作用はウイルス粒子の感染力を失わせることであり、殺ウイルス活性(virucidal effect)、或いは不活化効果(inactivation)等と呼ばれている。これまでに開発ないし提案された殺ウイルス剤の例を以下に示す(特許文献1~3)。また、モノガラクトシルジアシルグリセロールの抗ウイルス活性に関する論文も以下に示す(非特許文献1~3)。非特許文献1には、漢方薬(Clinacanthus)が含有するモノガラクトシルジアシルグリセロールが抗ヘルペス活性を発揮したことが示されている。一方、非特許文献2では海藻由来のモノガラクトシルジアシルグリセロールに抗HSV-1活性及び抗HSV-2活性があることが示されている。また、非特許文献3は、漢方薬(Clinacanthus)が含有するモノガラクトシルジアシルグリセロールの抗HSV-1活性及び抗HSV-2活性を報告する。
Viral infections are diseases caused by pathogenic viruses such as HIV (human immunodeficiency virus) and influenza virus. Until now, measures against viral infections have focused on the development of vaccines and antiviral drugs. However, vaccines have only been developed for a limited number of infectious diseases, and if antigenic mutations occur on the virus side, they will lose their effectiveness. In addition, antiviral drugs are limited in their target infectious diseases, and also have problems such as side effects, emergence of drug-resistant viruses, and increased economic burden. In particular, the emergence of drug-resistant viruses is a serious problem that shortens the lifespan of the drugs. Resistance arises because most antiviral drugs target viral enzymes. In other words, it acts in an inhibitory manner on the stage of virus proliferation within cells. This suggests that in order to avoid drug resistance, it would be better to target the virus particles themselves that exist outside the cells, rather than the virus propagation inside the cells. Such an action causes the virus particles to lose their infectivity, and is called a virucidal effect or an inactivation effect. Examples of virucides that have been developed or proposed so far are shown below (
これまでにも殺ウイルス剤の報告はあるものの、活性ないし効果の点、或いは安全性の点などにおいて克服すべき課題や改善の余地があり、実用性に優れた殺ウイルス剤に対するニーズは依然として高い。また、特定のウイルスだけでなく、複数のウイルスに対して殺傷作用を示す殺ウイルス剤の開発に対するニーズは大きい。そこで本発明は、実用性に優れ、ヒトの感染症への適用も含め、広範な用途に使用可能な殺ウイルス剤を提供することを主たる課題とする。 Although there have been reports of virucidal agents to date, there are still issues to be overcome and room for improvement in terms of activity, effectiveness, and safety, and the need for highly practical virucidal agents remains high. . Furthermore, there is a great need for the development of a virucidal agent that can kill not only a specific virus but also multiple viruses. Therefore, the main object of the present invention is to provide a virucidal agent that is highly practical and can be used for a wide range of purposes, including application to human infectious diseases.
上記課題に鑑み研究を進める中、コッコミクサ属(Coccomyxa)微細藻類のモノガラクトシルジアシルグリセロールを含有する抽出物が優れた殺ウイルス活性を示すことが判明した。特筆すべきことに、当該抽出物は特定のウイルスだけでなく、複数種類のウイルスに対して殺ウイルス活性を発揮した。一方、更なる検討によって、抽出物中の有効成分であるモノガラクトシルジアシルグリセロールの構造が明らかになった。また、当該抽出物の利用価値が極めて高いことを裏付ける更なる知見が得られた。 While conducting research in view of the above issues, it was discovered that an extract containing monogalactosyldiacylglycerol from microalgae of the genus Coccomyxa exhibits excellent virucidal activity. Remarkably, the extract exhibited virucidal activity not only against a specific virus but also against multiple types of viruses. On the other hand, further studies revealed the structure of monogalactosyldiacylglycerol, the active ingredient in the extract. Furthermore, further findings were obtained that support the extremely high utility value of the extract.
一方、クロレラ・ブルガリス、ナンノクロロプシス・オキュラータ、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)及びユーグレナ・グラシリス由来のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物にも、コッコミクサ属微細藻類由来のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物と同様の効果を期待できることが明らかとなった。
主として上記の成果及び考察に基づき、以下の発明が提供される。
[1]単細胞藻類のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物を有効成分として含む殺ウイルス剤。
[2]前記単細胞藻類がコッコミクサ属、クロレラ属、ナンノクロロプシス属、アルスロスピラ属又はミドリムシ属に属する微細藻類である、[1]に記載の殺ウイルス剤。
[3]前記単細胞藻類がコッコミクサ属に属する微細藻類である、[1]に記載の殺ウイルス剤。
[4]前記微細藻類がコッコミクサ sp. KJ株又はその変異株である、[3]に記載の殺ウイルス剤。
[5]主成分がモノガラクトシルジアシルグリセロールである、[1]~[4]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤。
[6]前記モノガラクトシルジアシルグリセロールが、以下の(1)~(6)からなる群より選択される、一以上のモノガラクトシルジアシルグリセロールである、[5]に記載の記載の殺ウイルス剤:
(1)構成脂肪酸がC16:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(2)構成脂肪酸がC16:2とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(3)構成脂肪酸がC18:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(4)構成脂肪酸がC16:2とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(5)構成脂肪酸がC18:3とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール;及び
(6)構成脂肪酸がC16:1とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール。
[7]前記有効成分が、前記単細胞藻類のエタノール抽出物をクロマトグラフィー精製し、モノガラクトシルジアシルグリセロールの含有量を高めたものである、[1]~[6]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤。
[8]前記有効成分中のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有量が70%(w/v)~99%(w/v)である、[1]~[7]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤。
[9]以下の(1)~(6)からなる群より選択される、一以上のモノガラクトシルジアシルグリセロールが有効成分の殺ウイルス剤:
(1)構成脂肪酸がC16:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(2)構成脂肪酸がC16:2とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(3)構成脂肪酸がC18:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(4)構成脂肪酸がC16:2とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(5)構成脂肪酸がC18:3とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール;及び
(6)構成脂肪酸がC16:1とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール。
[10]標的のウイルスが、エンベロープを持つウイルスである、ヘルペスウイルス又はインフルエンザウイルスである、[1]~[9]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤。
[11]標的のウイルスが、エンベロープを持たないウイルスである、ノロウイルス又はネコカリシウイルスである、[1]~[9]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤。
[12]不可逆的不活化作用により殺ウイルス活性を示す、[1]~[11]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤。
[13][1]~[12]のいずれか一項に記載の殺ウイルス剤を含む組成物。
[14]ウイルス感染症に対する医薬である、[13]に記載の組成物。
[15]消毒剤又は殺菌洗浄剤である、[13]に記載の組成物。
[16]食品又は餌である、[13]に記載の組成物。On the other hand, monogalactosyldiacylglycerol-containing extracts derived from Chlorella vulgaris, Nannochloropsis oculata, Arthrospira platensis (Spirulina), and Euglena gracilis are similar to monogalactosyldiacylglycerol-containing extracts derived from microalgae of the genus Coccomyxa. It has become clear that this effect can be expected.
Mainly based on the above results and considerations, the following invention is provided.
[1] A virucidal agent containing a monogalactosyldiacylglycerol-containing extract of unicellular algae as an active ingredient.
[2] The virucide according to [1], wherein the unicellular algae is a microalgae belonging to the genus Coccomyxa, genus Chlorella, genus Nannochloropsis, genus Arthrospira, or genus Euglena.
[3] The virucide according to [1], wherein the unicellular algae are microalgae belonging to the genus Coccomyxa.
[4] The virucide according to [3], wherein the microalgae is Coccomyxa sp. KJ strain or a mutant strain thereof.
[5] The virucidal agent according to any one of [1] to [4], wherein the main component is monogalactosyldiacylglycerol.
[6] The virucide according to [5], wherein the monogalactosyldiacylglycerol is one or more monogalactosyldiacylglycerols selected from the group consisting of the following (1) to (6):
(1) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:3 and C18:3;
(2) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:3;
(3) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:3;
(4) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:2;
(5) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:2; and
(6) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:1 and C18:2.
[7] The active ingredient according to any one of [1] to [6], wherein the ethanol extract of the unicellular algae is purified by chromatography to increase the content of monogalactosyldiacylglycerol. Virucide.
[8] The virucidal according to any one of [1] to [7], wherein the content of monogalactosyldiacylglycerol in the active ingredient is 70% (w/v) to 99% (w/v). agent.
[9] A virucidal agent containing one or more monogalactosyldiacylglycerol as an active ingredient selected from the group consisting of (1) to (6) below:
(1) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:3 and C18:3;
(2) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:3;
(3) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:3;
(4) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:2;
(5) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:2; and
(6) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:1 and C18:2.
[10] The virucidal agent according to any one of [1] to [9], wherein the target virus is an enveloped virus, such as a herpes virus or an influenza virus.
[11] The virucide according to any one of [1] to [9], wherein the target virus is a non-enveloped virus, such as Norovirus or Feline Calicivirus.
[12] The virucidal agent according to any one of [1] to [11], which exhibits virucidal activity through irreversible inactivation.
[13] A composition comprising the virucidal agent according to any one of [1] to [12].
[14] The composition according to [13], which is a medicament for viral infections.
[15] The composition according to [13], which is a disinfectant or a disinfectant.
[16] The composition according to [13], which is a food or bait.
1.用語、作用
殺ウイルス剤とは、標的のウイルスに対して殺ウイルス活性を示す剤である。殺ウイルス活性はウイルスに対する直接的な不活化作用であり、感染予防/感染拡大の阻止、感染症の治療等に優れた効果を発揮する。不活化作用は、可逆的不活化と不可逆的不活化に大別される。後者、即ち不可逆的不活化は、回復不可能な状態にウイルスを不活化するものであり、その効果、意義等は前者と決定的に相違する。1. Terminology, Action A virucide is an agent that exhibits virucidal activity against a target virus. Virucidal activity is a direct inactivation effect on viruses, and exhibits excellent effects in preventing infection, inhibiting the spread of infection, and treating infectious diseases. Inactivation effects are broadly classified into reversible inactivation and irreversible inactivation. The latter, ie, irreversible inactivation, inactivates the virus to an irrecoverable state, and its effect, significance, etc. are definitely different from the former.
本発明の殺ウイルス剤によれば、ウイルス粒子の破壊による不可逆的不活化作用を期待できる(後述の実施例を参照)。作用メカニズムがウイルス粒子の破壊であれば標的特異性が低い(即ち標的が特定のウイルスに限定されない)と考えられる。事実、本発明の殺ウイルス剤の有効成分がエンベロープ(外被)を持たないRNAウイルスのノロウイルス、エンベロープを持つDNAウイルスの単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)、及びエンベロープを持つRNAウイルスのインフルエンザウイルスに対して殺ウイルス活性を示した事実は、本発明の殺ウイルス剤の汎用性の高さを裏付ける。一方、「ウイルス粒子の破壊」という作用によれば、増殖サイクルにないウイルスを殺傷することができ、極めて効果的であることはもとより、ウイルスの薬剤耐性化の阻止にも有効である。 The virucidal agent of the present invention can be expected to have an irreversible inactivation effect by destroying virus particles (see Examples below). If the mechanism of action is destruction of virus particles, target specificity is considered to be low (that is, the target is not limited to a specific virus). In fact, the active ingredient of the virucidal agent of the present invention is effective against the non-enveloped RNA virus norovirus, the enveloped DNA virus herpes simplex virus type 2 (HSV-2), and the enveloped RNA virus influenza. The fact that it showed virucidal activity against viruses supports the high versatility of the virucidal agent of the present invention. On the other hand, the action of "destruction of virus particles" can kill viruses that are not in the reproduction cycle, and is not only extremely effective, but also effective in preventing viruses from becoming drug resistant.
2.殺ウイルス剤の有効成分
本発明の殺ウイルス剤は、単細胞藻類のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物を有効成分とする。そのモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物に殺ウイルス活性が認められる限り、単細胞藻類(トレボウクシア藻綱、真正眼点藻綱、藍藻綱、ユーグレナ藻綱等)は特に限定されない。好ましい単細胞藻類として、コッコミクサ属(Coccomyxa)微細藻類(具体例はコッコミクサ sp.KJ株)、クロレラ属(Chlorella)微細藻類(具体例はクロレラ・ブルガリス)、ナンノクロロプシス属(Nannochloropsis)微細藻類(具体例はナンノクロロプシス・オキュラータ)、アルスロスピラ属(Arthrospira)微細藻類(具体例はアルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ))又はミドリムシ属(Euglena)微細藻類(具体例はユーグレナ・グラシリス)を挙げることができる。この中でも、コッコミクサ属微細藻類は特に好ましい。換言すれば、本発明の特に好ましい一態様では、コッコミクサ属微細藻類のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物を有効成分とする。そのモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物に殺ウイルス活性が認められる限り、コッコミクサ属微細藻類は特に限定されないが、好ましい例として、コッコミクサ sp. KJ株又はその変異株を挙げることができる。コッコミクサ sp. KJ株(KJデンソー)は、2013年6月4日付で独立行政法人製品評価技術基盤機構 バイオテクノロジーセンター 特許生物寄託センター(NITE-IPOD)(千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120号室)に受託番号FERM P-22254として寄託され、2015年6月2日付でプタベスト条約の規定下で受託番号FERM BP-22254として国際寄託に移管されている。尚、以前のシュードココミクサ属(Pseudococcomyxa)は、最新の分類ではコッコミクサ属に含まれることになった(参考文献:PLoS One. 2015 Jun 16;10(6):e0127838. doi: 10.1371/journal.pone.0127838. eCollection 2015.)。2. Active ingredient of virucide The virucide of the present invention contains a monogalactosyldiacylglycerol-containing extract of unicellular algae as an active ingredient. Unicellular algae (such as Trebouxiaphyceae, Eophthalmophyceae, Cyanobacteria, Euglenaphyceae, etc.) are not particularly limited as long as the monogalactosyldiacylglycerol-containing extract has virucidal activity. Preferred unicellular algae include Coccomyxa microalgae (a specific example is Coccomyxa sp. KJ strain), Chlorella microalgae (a specific example is Chlorella vulgaris), and Nannochloropsis microalgae (a specific example is Chlorella vulgaris). Specific examples include Nannochloropsis oculata), microalgae of the genus Arthrospira (specific example is Arthrospira platensis (Spirulina)), and microalgae of the genus Euglena (specific example is Euglena gracilis). Among these, microalgae of the genus Coccomyxa are particularly preferred. In other words, in a particularly preferred embodiment of the present invention, a monogalactosyldiacylglycerol-containing extract of microalgae of the genus Coccomyxa is used as an active ingredient. Microalgae of the genus Coccomyxa are not particularly limited as long as their monogalactosyldiacylglycerol-containing extract has virucidal activity, but preferred examples include Coccomyxa sp. KJ strain or its mutants. Koccomyxa sp. KJ strain (KJ Denso) was registered as of June 4, 2013 at the National Institute of Technology and Evaluation, Biotechnology Center, Patent Organism Depositary (NITE-IPOD) (2-5 Kazusa Kamatari, Kisarazu City, Chiba Prefecture). 8 (Room 120) under accession number FERM P-22254, and as of June 2, 2015, it was transferred to the International Deposit under the provisions of the Ptabest Treaty under accession number FERM BP-22254. The former genus Pseudococcomyxa is now included in the genus Coccomyxa in the latest classification (Reference: PLoS One. 2015 Jun 16;10(6):e0127838. doi: 10.1371/journal. pone.0127838. eCollection 2015.).
コッコミクサ sp. KJ株の変異株は、紫外線、X線、γ線などの照射、変異原処理、重ビーム照射、遺伝子操作(外来遺伝子の導入、遺伝子破壊、ゲノム編集による遺伝子改変等)等によって得ることができる。殺ウイルス活性を示すモノガラクトシルジアシルグリセロールを産生する変異株が得られる限りにおいて、変異株の取得方法、特性等は特に限定されない。 Mutant strains of Coccomyxa sp. KJ strain can be obtained by irradiation with ultraviolet rays, X-rays, γ-rays, etc., mutagen treatment, heavy beam irradiation, genetic manipulation (introduction of foreign genes, gene destruction, genetic modification by genome editing, etc.). be able to. As long as a mutant strain that produces monogalactosyldiacylglycerol exhibiting virucidal activity can be obtained, the method for obtaining the mutant strain, its characteristics, etc. are not particularly limited.
コッコミクサ属微細藻類の培養方法は特に限定されない。コッコミクサ属微細藻類を培養するための培地としては、微細藻類の培養に通常使用されているものでよく、例えば、各種栄養塩、微量金属塩、ビタミン等を含む公知の淡水産微細藻類用の培地、海産微細藻類用の培地のいずれも使用可能である。培地としては、例えば、AF6培地が挙げられる。AF6培地の組成(100mlあたり)は以下のとおりである。
NaNO3 14mg
NH4NO3 2.2mg
MgSO4・7H2O 3mg
KH2PO4 1mg
K2HPO4 0.5mg
CaCl2・2H2O 1mg
CaCO3 1mg
Fe-citrate 0.2mg
Citric acid 0.2mg
Biotin 0.2μg
Thiamine HCl 1μg
Vitamin B6 0.1μg
Vitamin B12 0.1μg
Trace metals 0.5ml
Distilled water 99.5mlThe method for culturing Coccomyxa microalgae is not particularly limited. The medium for culturing Coccomyxa microalgae may be one that is normally used for culturing microalgae, such as a known medium for freshwater microalgae containing various nutrients, trace metal salts, vitamins, etc. , a culture medium for marine microalgae can be used. Examples of the medium include AF6 medium. The composition of AF6 medium (per 100ml) is as follows.
NaNO3 14mg
NH4NO3 2.2mg
MgSO4・7H2O 3mg
KH2PO4 1mg
K2HPO4 0.5mg
CaCl2・2H2O 1mg
CaCO3 1mg
Fe-citrate 0.2mg
Citric acid 0.2mg
Biotin 0.2μg
Thiamine HCl 1μg
Vitamin B6 0.1μg
Vitamin B 12 0.1μg
Trace metals 0.5ml
Distilled water 99.5ml
栄養塩としては、例えば、NaNO3、KNO3、NH4Cl、尿素などの窒素源、K2HPO4、KH2PO4、グリセロリン酸ナトリウムなどのリン源が挙げられる。また、微量金属としては、鉄、マグネシウム、マンガン、カルシウム、亜鉛等が挙げられ、ビタミンとしてはビタミンB1、ビタミンB12等が挙げられる。Examples of nutrient salts include nitrogen sources such as NaNO 3 , KNO 3 , NH 4 Cl, and urea, and phosphorus sources such as K 2 HPO 4 , KH 2 PO 4 , and sodium glycerophosphate. Further, examples of trace metals include iron, magnesium, manganese, calcium, zinc, etc., and examples of vitamins include vitamin B1, vitamin B12, etc.
培養方法は、通気条件で二酸化炭素の供給とともに攪拌を行えばよい。その際、蛍光灯で12時間の光照射、12時間の暗条件などの明暗サイクルをつけた光照射、又は、連続光照射して培養する。培養条件も、コッコミクサ属微細藻類の増殖に悪影響を与えない範囲内であれば特に制限はされないが、例えば培養液のpHは3~9とし、培養温度は10~35℃にする。 The culture may be carried out by supplying carbon dioxide and stirring under aeration conditions. At this time, the cells are cultured by irradiation with a light/dark cycle such as 12 hours of light irradiation using a fluorescent lamp and 12 hours of darkness, or by continuous light irradiation. The culture conditions are not particularly limited as long as they do not adversely affect the growth of microalgae of the genus Coccomyxa, but for example, the pH of the culture solution is 3 to 9, and the culture temperature is 10 to 35°C.
尚、コッコミクサ sp. KJ株の培養方法に関しては、特開2015-15918、WO 2015/190116 A1、Satoh, A. et al., Characterization of the Lipid Accumulation in a New Microalgal Species, Pseudochoricystis ellipsoidea (Trebouxiophyceae) J. Jpn. Inst. Energy (2010) 89:909-913.等が参考になる。 Regarding the culture method of Coccomyxa sp. KJ strain, please refer to JP 2015-15918, WO 2015/190116 A1, Satoh, A. et al., Characterization of the Lipid Accumulation in a New Microalgal Species, Pseudochoricystis ellipsoidea (Trebouxiophyceae) J Jpn. Inst. Energy (2010) 89:909-913. etc. may be helpful.
コッコミクサ属微細藻類以外の単細胞藻類についても常法で培養することができる。各藻類の培養に使用する培地は特に限定されない。例えば、クロレラ属(Chlorella)微細藻類の培養には、淡水産藻類の培養に一般的な培地、又は塩水産藻類の培養に一般的な培地を使用することができ、好適な培地の一例はC培地(図11)である。同様に、ナンノクロロプシス属微細藻類の培養には、海産藻類の培養に一般的な培地、又は汽水産藻類の培養に一般的な培地を使用することができ、好適な培地の一例はESM培地(図11)である。アルスロスピラ属微細藻類の培養についても同様であり、淡水産藻類の培養に一般的な培地、又は塩水産藻類の培養に一般的な培地を使用することができ、好適な培地の一例はMA培地(図12)である。ミドリムシ属藻類の培養についても同様であり、淡水産藻類の培養に一般的な培地、又は塩水産藻類の培養に一般的な培地を使用することができ、好適な培地の一例はHUT培地(図12)である。 Unicellular algae other than microalgae of the genus Coccomyxa can also be cultured by conventional methods. The medium used for culturing each algae is not particularly limited. For example, for culturing Chlorella microalgae, a medium commonly used for culturing freshwater algae or a common medium for culturing saltwater algae can be used, and an example of a suitable medium is C. Medium (Figure 11). Similarly, for culturing Nannochloropsis microalgae, a medium commonly used for culturing marine algae or a common medium for culturing brackish water algae can be used, and an example of a suitable medium is ESM medium. (FIG. 11). The same applies to the culture of Arthrospira microalgae, and a medium commonly used for culturing freshwater algae or a common medium for culturing saltwater algae can be used. An example of a suitable medium is MA medium ( Figure 12). The same applies to the culture of Euglena algae, and a medium commonly used for culturing freshwater algae or a common medium for culturing saltwater algae can be used. An example of a suitable medium is HUT medium (Fig. 12).
本発明の殺ウイルス剤の有効成分、即ち、「単細胞藻類(特に好ましくはコッコミクサ属に属する微細藻類)のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物」の抽出方法は、モノガラクトシルジアシルグリセロールを含有する抽出物が得られる限り、特に限定されない。抽出方法として例えばエタノール抽出を採用することができる。好ましくは、エタノール抽出後に精製し、モノガラクトシルジアシルグリセロールの含有量を高めたものを「単細胞藻類(特に好ましくはコッコミクサ属に属する微細藻類)のモノガラクトシルジアシルグリセロール含有抽出物」として用いる。精製方法の例として、シリカゲル、アルミナ等の充填剤を用いたカラムクロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、濃縮等を例示することができる。 The method for extracting the active ingredient of the virucide of the present invention, that is, the "monogalactosyldiacylglycerol-containing extract of unicellular algae (particularly preferably microalgae belonging to the genus Coccomyxa)" is such that the extract containing monogalactosyldiacylglycerol is There are no particular limitations as long as it can be obtained. For example, ethanol extraction can be employed as an extraction method. Preferably, the extract is purified after ethanol extraction and has an increased content of monogalactosyldiacylglycerol, and is used as a "monogalactosyldiacylglycerol-containing extract of unicellular algae (particularly preferably microalgae belonging to the genus Coccomyxa)". Examples of purification methods include column chromatography using fillers such as silica gel and alumina, gel filtration chromatography, and concentration.
抽出に先立ち、回収した藻体を乾燥処理及び又は破砕処理に供してもよい。言い換えれば、乾燥した藻体、乾燥且つ破砕された藻体(典型的には乾燥粉末)、又は破砕された藻体を調製し、これを用いて抽出操作を行うことにしてもよい。単細胞藻類が予め加工処理されたもの(例えば、乾燥した藻体、その粉末/粉体、或いは錠剤(賦形剤等が含まれていても良い)等)を入手し、抽出操作に供することにしてもよい。例えば、クロレラ・ブルガリス、ナンノクロロプシス・オキュラータ、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)、ユーグレナ・グラシリス等についてはその加工品が市販されている。 Prior to extraction, the collected algal bodies may be subjected to drying treatment and/or crushing treatment. In other words, dried algae, dried and crushed algae (typically dry powder), or crushed algae may be prepared and used for the extraction operation. It is decided to obtain pre-processed unicellular algae (for example, dried alga bodies, their powder/powder, or tablets (which may contain excipients, etc.)) and use them for the extraction operation. It's okay. For example, processed products of Chlorella vulgaris, Nannochloropsis oculata, Arthrospira platensis (Spirulina), Euglena gracilis, etc. are commercially available.
有効成分中のモノガラクトシルジアシルグリセロールの含有量は、抽出物が殺ウイルス活性を示す限り特に限定されず、例えば70%(w/v)~99%(w/v)、好ましくは80%(w/v)~99%(w/v)、更に好ましくは90%(w/v)~99%(w/v)より一層好ましくは95%(w/v)~99%(w/v)(具体例として96%(w/v)、97%(w/v)、98%(w/v))である。原則、モノガラクトシルジアシルグリセロールの含有量が高い程、強い殺ウイルス活性を期待できる。「モノガラクトシルジアシルグリセロール」とは、グリセロ糖脂質の一つであり、植物の葉緑体チラコイド膜の構成成分として知られる。モノガラクトシルジアシルグリセロールはガラクトースがグリセロールにβ結合した骨格を有する。 The content of monogalactosyldiacylglycerol in the active ingredient is not particularly limited as long as the extract exhibits virucidal activity, for example 70% (w/v) to 99% (w/v), preferably 80% (w/v). /v) to 99% (w/v), more preferably 90% (w/v) to 99% (w/v), even more preferably 95% (w/v) to 99% (w/v) ( Specific examples are 96% (w/v), 97% (w/v), 98% (w/v)). In principle, the higher the content of monogalactosyldiacylglycerol, the stronger the virucidal activity can be expected. "Monogalactosyldiacylglycerol" is one of the glyceroglycolipids and is known as a component of the chloroplast thylakoid membrane of plants. Monogalactosyldiacylglycerol has a backbone in which galactose is β-bonded to glycerol.
好ましくは、本発明の殺ウイルス剤ではモノガラクトシルジアシルグリセロールが主成分となる。本発明の殺ウイルス剤が含有し得るモノガラクトシルジアシルグリセロールの例を挙げると、(1)構成脂肪酸がC16:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール、(2)構成脂肪酸がC16:2とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール、(3)構成脂肪酸がC18:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール、(4)構成脂肪酸がC16:2とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール、(5)構成脂肪酸がC18:3とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール及び(6)構成脂肪酸がC16:1とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロールである。これらのモノガラクトシルジアシルグリセロールは、殺ウイルス活性を示すコッコミクサ属微細藻類抽出物が含有するものとして同定された(詳細は後述の実施例の欄に示した「11.MGDG調製物中の成分の同定2」)。後述の実施例の欄に示した「10.MGDG調製物中の成分の同定1」の解析結果も考慮すれば、上記の(1)の構成脂肪酸C18:3は好ましくはC18:3(n-3)であり、上記(3)の構成脂肪酸C18:3の少なくとも片方は好ましくはC18:3(n-3)であり、上記(4)の構成脂肪酸C18:2は好ましくはC18:2(n-6)であり、上記(5)の構成脂肪酸C18:3は好ましくはC18:3(n-3)、同C18:2は好ましくはC18:2(n-6)である。特定のモノガラクトシルジアシルグリセロールを単独で含有することを除外するものではないが、通常、本発明の殺ウイルス剤には、構造の異なる2種類以上のモノガラクトシルジアシルグリセロールが含有され、その場合の組合せ、含有比率などは特に限定されない。本発明の殺ウイルス剤は、好ましくは上記(1)~(6)の中の二つ以上、更に好ましくは上記(1)~(6)の中の三つ以上、更に更に好ましくは上記(1)~(6)の中の四つ以上、一層好ましくは上記(1)~(6)の中の五つ以上、より一層好ましくは上記(1)~(6)の全て、を含有する。後述の実施例に示す通り、(5)のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG5)には特に高い殺ウイルス活性が認められた。そこで、特に好ましい態様の殺ウイルス剤には、(5)のモノガラクトシルジアシルグリセロールが単独又は(1)、(2)~(4)及び(6)の中の一つ以上との組合せで含有されることになる。
Preferably, the virucide of the present invention contains monogalactosyldiacylglycerol as the main component. Examples of monogalactosyldiacylglycerol that can be contained in the virucide of the present invention include (1) monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:3 and C18:3, (2) monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18. :3 monogalactosyldiacylglycerol, (3) monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:3, (4) monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:2, (5) composition The fatty acids are monogalactosyldiacylglycerol with C18:3 and C18:2, and (6) the constituent fatty acids are monogalactosyldiacylglycerol with C16:1 and C18:2. These monogalactosyldiacylglycerols were identified as being contained in a microalgae extract of the genus Coccomyxa that exhibits virucidal activity (see 11. Identification of Components in MGDG Preparation in the Examples section below for details). 2”). Considering the analysis results of "10. Identification of components in
殺ウイルス活性を示すコッコミクサ属微細藻類抽出物の主要な含有成分として同定されたモノガラクトシルジアシルグリセロールはそれ自体に殺ウイルス活性を期待できる。そこで本発明の一態様では、上記(1)~(6)からなる群より選択される、一以上のモノガラクトシルジアシルグリセロールが有効成分の殺ウイルス剤が提供される。2種類以上のモノガラクトシルジアシルグリセロールを有効成分とする場合の組合せ、含有比率等は特に限定されない。この態様においても、好ましくは上記(1)~(6)の中の二つ以上、更に好ましくは上記(1)~(6)の中の三つ以上、更に更に好ましくは上記(1)~(6)の中の四つ以上、一層好ましくは上記(1)~(6)の中の五つ以上、より一層好ましくは上記(1)~(6)の全て、を含有する。上記の通り、(5)のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG5)には特に高い殺ウイルス活性が認められた。そこで、特に好ましい態様では、(5)のモノガラクトシルジアシルグリセロールが有効成分の少なくとも一つとなる。 Monogalactosyldiacylglycerol, which has been identified as a major component of the Coccomyxa microalgae extract that exhibits virucidal activity, can be expected to have virucidal activity by itself. Accordingly, one aspect of the present invention provides a virucidal agent containing as an active ingredient one or more monogalactosyldiacylglycerols selected from the group consisting of (1) to (6) above. When two or more types of monogalactosyldiacylglycerol are used as active ingredients, the combination, content ratio, etc. are not particularly limited. Also in this embodiment, preferably two or more of the above (1) to (6), more preferably three or more of the above (1) to (6), and even more preferably (1) to (6) above, It contains four or more of the above (1) to (6), more preferably five or more of the above (1) to (6), and even more preferably all of the above (1) to (6). As mentioned above, monogalactosyldiacylglycerol (MGDG5) (5) was found to have particularly high virucidal activity. Therefore, in a particularly preferred embodiment, monogalactosyldiacylglycerol (5) is at least one of the active ingredients.
ここで、各種脂肪酸(脂肪酸の例を以下に示す)を構成脂肪酸として含むモノガラクトシルジアシルグリセロールが存在する。本発明の教示を考慮すれば、公知のモノガラクトシルジアシルグリセロールを含め、モノガラクトシルジアシルグリセロールが一般に殺ウイルス活性を発揮し得ることを合理的に期待できる。
<脂肪酸の例>
C12:0, C13:0, C14:0, C14:1, C14:2, C15:0, C15:1, C16:0, C16:1, C16:4, C17:0, C17:1, C18:0, C18:1, C18:4, C19:0, C19:1, C20:0, C20:1, C20:2, C20:3, C20:4, C20:5, C22:0, C22:5, C24:0Here, there is monogalactosyldiacylglycerol containing various fatty acids (examples of fatty acids are shown below) as constituent fatty acids. In view of the teachings of the present invention, it can be reasonably expected that monogalactosyldiacylglycerols, including known monogalactosyldiacylglycerols, can generally exhibit virucidal activity.
<Example of fatty acids>
C12:0, C13:0, C14:0, C14:1, C14:2, C15:0, C15:1, C16:0, C16:1, C16:4, C17:0, C17:1, C18: 0, C18:1, C18:4, C19:0, C19:1, C20:0, C20:1, C20:2, C20:3, C20:4, C20:5, C22:0, C22:5, C24:0
3.標的のウイルス
上でも言及したように、本発明の殺ウイルス剤の作用メカニズム、並びに本発明の殺ウイルス剤の有効成分がノロウイルス、ネコカリシウイルス(FCV)、単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)及びインフルエンザウイルス(IFV)に対して殺ウイルス活性を示した事実は、本発明の殺ウイルス剤の汎用性の高さを裏付ける。本発明の殺ウイルス剤が特に有効である標的ウイルスとして、ノロウイルス、ネコカリシウイルス、ヘルペスウイルス及びインフルエンザウイルスを例示することができる。ノロウイルスは外被(エンベロープ)を持たないRNAウイルスであり、ウイルス分類上はカリシウイルス科に属する。ノロウイルスは界面活性剤やアルコール等に対して高い抵抗性を示す。ネコカリシウイルスはカリシウイルス科のウイルスであり、ネコの感染症であるネコカリシウイルス感染症の病原体として知られている。外被(エンベロープ)を持たないRNAウイルスであり、ノロウイルスと類似した特性を示す。そのため、ノロウイルスの代替として実験に用いられている。3. Target Virus As mentioned above, the mechanism of action of the virucidal agent of the present invention and the active ingredient of the virucidal agent of the present invention target viruses such as norovirus, feline calicivirus (FCV), and herpes simplex virus type 2 (HSV-2). The fact that the virucidal activity was shown against influenza virus (IFV) and influenza virus (IFV) supports the high versatility of the virucidal agent of the present invention. Target viruses for which the virucidal agent of the present invention is particularly effective include norovirus, feline calicivirus, herpesvirus, and influenza virus. Norovirus is an RNA virus without an envelope and belongs to the Caliciviridae family. Norovirus shows high resistance to surfactants, alcohol, etc. Feline calicivirus is a virus of the family Caliciviridae, and is known as the pathogen of feline calicivirus infection, which is an infectious disease in cats. It is an RNA virus without an envelope and exhibits characteristics similar to norovirus. Therefore, it is used in experiments as a substitute for norovirus.
ヘルペスウイルスは二本鎖DNAをゲノムとしてもつウイルスである。ヘルペスウイルスは、3種類のヘルペスウイルス亜科(αヘルペスウイルス亜科、βヘルペスウイルス亜科、γヘルペスウイルス亜科)に分類される。αヘルペスウイルス亜科には単純ヘルペスウイルス1型(HSV-1)、単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)、水痘・帯状疱疹ウイルス(VZV)が属し、βヘルペスウイルス亜科にはサイトメガロウイルス(CMV)、ヒトヘルペスウイルス6(HHV-6)、ヒトヘルペスウイルス7(HHV-7)が属し、γヘルペスウイルス亜科にはエプスタイン・バール・ウイルス(EBV)、ヒトヘルペスウイルス8(HHV-8、別名:カポジ肉腫関連ヘルペスウイルス(KSHV))が属する。 Herpesvirus is a virus that has double-stranded DNA as its genome. Herpesviruses are classified into three types of herpesvirinae (α-herpesvirinae, β-herpesvirinae, and γ-herpesvirinae). The α-herpesvirinae subfamily includes herpes simplex virus type 1 (HSV-1), herpes simplex virus type 2 (HSV-2), and varicella-zoster virus (VZV), and the β-herpesvirinae family includes cytomegalovirus. (CMV), human herpesvirus 6 (HHV-6), and human herpesvirus 7 (HHV-7), and the gammaherpesvirus subfamily includes Epstein-Barr virus (EBV) and human herpesvirus 8 (HHV-8). , also known as Kaposi's sarcoma-associated herpesvirus (KSHV).
インフルエンザウイルスは一本鎖RNAウイルスであり、ウイルス粒子を構成するタンパク質、抗原性、形態などが異なる、3つの属、即ち、A型インフルエンザウイルス、B型インフルエンザウイルス及びC型インフルエンザウイルスに大別される。A型インフルエンザウイルスはヒト、鳥類、ウマ、ブタなどを宿主とし、一般にその感染による症状(病態)は他の型の場合よりも重篤である。A型インフルエンザは毎年、大流行(エピデミック)を引き起こす。また、世界的大流行(パンデミック)が懸念されており、その対策が急務となっている。A型インフルエンザウイルスはHA分子の型によって二つのグループ、即ち、H2、H5、H1、H6(以上、H1クラスター;H1a)、H13、H16及びH11(以上、H1クラスター;H1b)からなるグループ1と、H8、H12、H9(以上、H9クラスター)、H4、H14、H3(以上、H3クラスター)、H15、H7及びH10(以上、H7クラスター)からなるグループ2に大別される。A型インフルエンザウイルスの種類として、H1N1型、H1N2型、H2N2型、H3N2型、H5N1型、H5N2型、H6N1型、H7N2型、H7N3型、H7N7型、H7N9型、H9N2型及びH9N1型を例示することができる。
Influenza viruses are single-stranded RNA viruses, and are broadly divided into three genera: influenza A viruses, influenza B viruses, and influenza C viruses, which differ in the proteins that make up virus particles, antigenicity, and morphology. Ru. Influenza A virus hosts humans, birds, horses, pigs, etc., and the symptoms (pathology) caused by its infection are generally more severe than those of other types. Influenza A causes an epidemic every year. Furthermore, there are concerns about a global pandemic, and countermeasures are urgently needed. Influenza A viruses are divided into two groups depending on the type of HA molecules:
上記の各ウイルスの他、エンベロープを持つ各種DNAウイルス(例えば天然痘ウイルス)、エンベロープを持つ各種RNAウイルス(例えば麻疹ウイルス、風疹ウイルス、ムンプスウイルス、コロナウイルス)、エンベロープを持たない各種DNAウイルス(例えばアデノウイルス、パピローマウイルス)、エンベロープを持たない各種RNAウイルス(例えばポリオウイルス、ロタウイルス、ノロウイルス)等も、本発明の殺ウイルス剤の標的となり得る。 In addition to the viruses mentioned above, various enveloped DNA viruses (e.g. smallpox virus), various enveloped RNA viruses (e.g. measles virus, rubella virus, mumps virus, coronavirus), and various non-enveloped DNA viruses (e.g. Adenovirus, papillomavirus), various non-enveloped RNA viruses (eg poliovirus, rotavirus, norovirus), etc. can also be targeted by the virucidal agent of the present invention.
4.殺ウイルス剤の用途・使用方法
本発明の殺ウイルス剤はそれを含む組成物として各種用途に用いることができる。ここでの組成物の例は医薬(治療薬又は予防薬)、消毒剤、殺菌洗浄剤、食品、餌である。その用途を考慮しつつ、本発明の組成物に、アシクロビル、ガンシクロビル、バラシクロビル、ビタラビン、ホスカルネット、トリフルリジン、オセルタミビルリン酸塩(商品名タミフル)、ザナミビル水和物(商品名リレンザ)、ペラミビル水和物(商品名ラピアクタ)、ラニナミビルオクタン酸エステル水和物(商品名イナビル)、バロキサビル マルボキシル(商品名ゾフルーザ)等の抗ウイルス剤、塩化ベンザルコニウム、塩化セチルピリジニウム、フェノキシエタノール、イソプロピルメチルフェノール、グルコン酸クロルヘキシジン等の抗菌ないし除菌成分等を含有させてもよい。4. Applications and methods of using the virucidal agent The virucidal agent of the present invention can be used as a composition containing it for various purposes. Examples of compositions here are medicines (therapeutic or prophylactic), disinfectants, disinfectant cleaners, foods, feeds. Considering its use, the composition of the present invention includes acyclovir, ganciclovir, valacyclovir, vitarabine, foscarnet, trifluridine, oseltamivir phosphate (trade name Tamiflu), zanamivir hydrate (trade name Relenza), peramivir. Antiviral agents such as hydrate (trade name Rapiacta), laninamivir octanoate hydrate (trade name Inavir), baloxavir marboxil (trade name Xofluza), benzalkonium chloride, cetylpyridinium chloride, phenoxyethanol, isopropylmethyl Antibacterial or sterilizing ingredients such as phenol and chlorhexidine gluconate may also be included.
本発明の殺ウイルス剤の用途の具体例の一つとして、ノロウイルスに汚染された牡蠣の浄化を挙げることができる(後述の実施例を参照)。当該用途では、典型的には、殺ウイルス剤の溶液を用意し、ノロウイルスに汚染された牡蠣(または、汚染の可能性がある牡蠣)を浸漬する(例えば、数時間から数日程度、飼育するとよい)。 One specific example of the use of the virucidal agent of the present invention is the purification of oysters contaminated with norovirus (see Examples below). In such applications, oysters contaminated with norovirus (or oysters that may be contaminated) are typically immersed in a solution of a virucidal agent (e.g., after being raised for a period of several hours to several days). good).
(1)医薬
本発明の医薬はウイルス感染症の治療又は予防に用いられる。本発明の医薬はウイルス感染症に対して治療的効果又は予防的効果(これら二つの効果をまとめて「医薬効果」と呼ぶ)を発揮し得る。ここでの医薬効果には、(1)ウイルス感染の阻止、(2)ウイルス感染症の発症の阻止、抑制又は遅延、(3)ウイルス感染症に特徴的な症状又は随伴症状の緩和(軽症化)、(4)ウイルス感染症に特徴的な症状又は随伴症状の悪化の阻止、抑制又は遅延、等が含まれる。尚、治療的効果と予防的効果は一部において重複する概念であることから、明確に区別して捉えることは困難な場合があり、またそうすることの実益は少ない。(1) Pharmaceutical The pharmaceutical of the present invention is used for the treatment or prevention of viral infections. The medicament of the present invention can exert a therapeutic effect or a prophylactic effect (these two effects are collectively referred to as a "medicinal effect") against viral infections. The medicinal effects here include (1) prevention of viral infection, (2) prevention, suppression or delay of the onset of viral infection, and (3) alleviation of symptoms characteristic or accompanying symptoms of viral infection (mild symptoms). ), (4) prevention, suppression, or delay of the worsening of symptoms characteristic of viral infections or accompanying symptoms, etc. It should be noted that since therapeutic effects and preventive effects are partially overlapping concepts, it may be difficult to clearly distinguish them, and there is little practical benefit in doing so.
医薬の製剤化は常法に従って行うことができる。製剤化する場合には、製剤上許容される他の成分(例えば、担体、賦形剤、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水など)を含有させることができる。賦形剤としては乳糖、デンプン、ソルビトール、D-マンニトール、白糖等を用いることができる。崩壊剤としてはデンプン、カルボキシメチルセルロース、炭酸カルシウム等を用いることができる。緩衝剤としてはリン酸塩、クエン酸塩、酢酸塩等を用いることができる。乳化剤としてはアラビアゴム、アルギン酸ナトリウム、トラガント等を用いることができる。懸濁剤としてはモノステアリン酸グリセリン、モノステアリン酸アルミニウム、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ラウリル硫酸ナトリウム等を用いることができる。無痛化剤としてはベンジルアルコール、クロロブタノール、ソルビトール等を用いることができる。安定剤としてはプロピレングリコール、アスコルビン酸等を用いることができる。保存剤としてはフェノール、塩化ベンザルコニウム、ベンジルアルコール、クロロブタノール、メチルパラベン等を用いることができる。防腐剤としては塩化ベンザルコニウム、パラオキシ安息香酸、クロロブタノール等を用いることができる。 Pharmaceutical preparations can be carried out according to conventional methods. When formulating, other pharmaceutically acceptable ingredients (e.g., carriers, excipients, disintegrants, buffers, emulsifiers, suspending agents, soothing agents, stabilizers, preservatives, preservatives, physiological saline solution, etc.). As excipients, lactose, starch, sorbitol, D-mannitol, white sugar, etc. can be used. As the disintegrant, starch, carboxymethyl cellulose, calcium carbonate, etc. can be used. Phosphates, citrates, acetates, etc. can be used as buffers. As the emulsifier, gum arabic, sodium alginate, tragacanth, etc. can be used. As the suspending agent, glyceryl monostearate, aluminum monostearate, methylcellulose, carboxymethylcellulose, hydroxymethylcellulose, sodium lauryl sulfate, etc. can be used. As a soothing agent, benzyl alcohol, chlorobutanol, sorbitol, etc. can be used. As the stabilizer, propylene glycol, ascorbic acid, etc. can be used. As the preservative, phenol, benzalkonium chloride, benzyl alcohol, chlorobutanol, methylparaben, etc. can be used. As the preservative, benzalkonium chloride, paraoxybenzoic acid, chlorobutanol, etc. can be used.
製剤化する場合の剤形も特に限定されない。剤形の例は錠剤、散剤、細粒剤、顆粒剤、カプセル剤、シロップ剤、注射剤、外用剤(軟膏剤、クリーム剤、ローション剤、液剤、ゲル剤、パップ剤、プラスター剤、テープ剤、エアゾール剤等)、及び座剤である。医薬はその剤形に応じて経口投与又は非経口投与(患部への局所注入、静脈内、動脈内、皮下、皮内、筋肉内、又は腹腔内注射、経皮、経鼻、経粘膜など)によって対象に適用される。また、全身的な投与と局所的な投与も対象により適応される。これらの投与経路は互いに排他的なものではなく、任意に選択される二つ以上を併用することもできる。 The dosage form used for formulation is also not particularly limited. Examples of dosage forms are tablets, powders, fine granules, granules, capsules, syrups, injections, and external preparations (ointments, creams, lotions, liquids, gels, poultices, plasters, and tapes). , aerosols, etc.), and suppositories. Medications can be administered orally or parenterally depending on their dosage form (local injection into the affected area, intravenous, intraarterial, subcutaneous, intradermal, intramuscular, or intraperitoneal injection, transdermal, nasal, transmucosal, etc.) applied to the target by. Systemic administration and local administration are also indicated depending on the subject. These administration routes are not mutually exclusive, and two or more arbitrarily selected routes can also be used in combination.
本発明の医薬には、期待される効果を得るために必要な量(即ち治療又は予防上有効量)の有効成分が含有される。本発明の医薬中の有効成分量は一般に剤形によって異なるが、所望の投与量を達成できるように有効成分量を例えば約0.1重量%~約99重量%の範囲内で設定する。 The medicament of the present invention contains the active ingredient in an amount necessary to obtain the expected effect (ie, a therapeutically or prophylactically effective amount). The amount of the active ingredient in the medicament of the present invention generally varies depending on the dosage form, but the amount of the active ingredient is set, for example, within the range of about 0.1% by weight to about 99% by weight so as to achieve the desired dosage.
本発明の医薬の投与量は、期待される効果が得られるように設定される。治療又は予防上有効な投与量の設定においては一般に症状、患者の年齢、性別、及び体重などが考慮される。当業者であればこれらの事項を考慮して適当な投与量を設定することが可能である。投与量の例を示すと、成人(体重約60kg)を対象として一日当たりの有効成分量が1 mg~20 mg、好ましくは5 mg~10 mgとなるよう投与量を設定することができる。投与スケジュールとしては例えば一日一回~数回、二日に一回、或いは三日に一回などを採用できる。投与スケジュールの作成においては、患者の状態や有効成分の効果持続時間などを考慮することができる。 The dosage of the medicament of the present invention is determined so as to obtain the expected effect. In setting a therapeutically or prophylactically effective dose, the symptoms, age, sex, and weight of the patient are generally taken into consideration. Those skilled in the art can take these matters into account and set an appropriate dosage. To give an example of the dosage, the dosage can be set so that the daily amount of the active ingredient is 1 mg to 20 mg, preferably 5 mg to 10 mg, for adults (body weight approximately 60 kg). The administration schedule can be, for example, once to several times a day, once every two days, or once every three days. When creating a dosing schedule, the patient's condition and the duration of effect of the active ingredient can be taken into consideration.
本発明の医薬による治療又は予防に並行して他の医薬(例えば、アシクロビル、ガンシクロビル、バラシクロビル、ビタラビン、ホスカルネット、トリフルリジン、オセルタミビルリン酸塩(商品名タミフル)、ザナミビル水和物(商品名リレンザ)、ペラミビル水和物(商品名ラピアクタ)、ラニナミビルオクタン酸エステル水和物(商品名イナビル)、バロキサビル マルボキシル(商品名ゾフルーザ)等の抗ウイルス剤)による処置を施すことにしてもよい。本発明の有効成分と作用機序の異なる薬剤を併用すれば、複合的な作用/効果が得られ、例えばウイルス感染症の治療に適用した場合には治療効果の増大を図ることができる。 In parallel with treatment or prophylaxis with the medicament of the present invention, other medicaments (e.g., acyclovir, ganciclovir, valacyclovir, vitarabine, foscarnet, trifluridine, oseltamivir phosphate (trade name Tamiflu), zanamivir hydrate (trade name Treatment with antiviral agents such as Relenza), peramivir hydrate (trade name Rapiacta), laninamivir octanoate hydrate (trade name Inavir), and baloxavir marboxil (trade name Xofluza) may be performed. . If the active ingredient of the present invention and drugs with different mechanisms of action are used together, a complex action/effect can be obtained, and for example, when applied to the treatment of viral infections, the therapeutic effect can be increased.
以上の記述から明らかな通り本願は、ウイルス感染症に罹患した対象又は罹患するおそれのある対象に対して、本発明の殺ウイルス剤を含む医薬を、治療又は予防上有効量投与することを特徴とする、各種ウイルス感染症を治療又は予防する方法も提供する。治療又は予防の対象は典型的にはヒトであるが、ヒト以外の哺乳動物(例えばサル、ウシ、ブタ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、イヌ、ネコ、ウサギ、等)、鳥類(ニワトリ、ウズラ、七面鳥、ガチョウ、アヒル、ダチョウ、カモ、インコ、文鳥等)等に適用することにしてもよい。 As is clear from the above description, the present application is characterized in that a therapeutically or prophylactically effective amount of a medicament containing the virucidal agent of the present invention is administered to a subject suffering from or at risk of suffering from a viral infection. Also provided are methods for treating or preventing various viral infections. Targets of treatment or prevention are typically humans, but may also include non-human mammals (e.g. monkeys, cows, pigs, horses, goats, sheep, dogs, cats, rabbits, etc.), birds (chickens, quail, turkeys, etc.). , geese, ducks, ostriches, ducks, parakeets, sparrows, etc.).
(2)消毒剤、殺菌洗浄剤
本発明の消毒剤又は殺菌洗浄剤は、例えば、居室(病室を含む)、調理室、トイレ、洗面所、浴室等の消毒又は殺菌洗浄、食器、カトラリー(ナイフ、フォーク、スプーン等)、調理器具(包丁、ナイフ、鍋、ミキサー、電子レンジ、オーブン等)、医療器具・装置等の消毒又は殺菌洗浄、手、指先や口腔等の消毒又は殺菌洗浄に用いられる。本発明の消毒剤又は殺菌洗浄剤は、例えば、液状(例えばスプレー剤、ローション)、ゲル状、固形状(例えば粉末)に構成され、塗布、噴霧、散布等によって適用される。天然繊維や合成繊維等からなる担体(例えばシート状)に本発明の消毒剤又は殺菌洗浄剤を担持ないし付着させ、拭き取り用途等に使用される製品や感染予防用マスク等としてもよい。(2) Disinfectant, sterilizing cleaning agent The disinfecting agent or sterilizing cleaning agent of the present invention can be used, for example, to disinfect or sterilize cleaning living rooms (including hospital rooms), cooking rooms, toilets, washrooms, bathrooms, etc., tableware, cutlery (knives), etc. , forks, spoons, etc.), cooking utensils (knives, knives, pots, mixers, microwave ovens, ovens, etc.), medical instruments and equipment, etc., and used for disinfecting or sterilizing cleaning of hands, fingertips, oral cavity, etc. . The disinfectant or sterilizing cleaning agent of the present invention is configured, for example, in a liquid form (for example, a spray, a lotion), a gel form, or a solid form (for example, a powder), and is applied by coating, spraying, scattering, or the like. The disinfectant or sterilizing cleaning agent of the present invention may be supported or adhered to a carrier (for example, sheet-like) made of natural fibers or synthetic fibers, and may be used as a product used for wiping purposes, a mask for infection prevention, or the like.
塩化ベンザルコニウム、塩化セチルピリジニウム、フェノキシエタノール、イソプロピルメチルフェノール、グルコン酸クロルヘキシジン等の抗菌ないし除菌成分、pH調整剤、界面活性剤、吸着剤、担体等を本発明の消毒剤又は殺菌洗浄剤に添加することにしてもよい。 Antibacterial or sterilizing ingredients such as benzalkonium chloride, cetylpyridinium chloride, phenoxyethanol, isopropylmethylphenol, and chlorhexidine gluconate, pH adjusters, surfactants, adsorbents, carriers, etc. are added to the disinfectant or sterilizing cleaning agent of the present invention. You may decide to add it.
本発明の消毒剤又は殺菌洗浄剤には、消毒又は殺菌洗浄効果が期待できる量の有効成分が含有される。添加量は、その用途や形態等を考慮して定めることができる。 The disinfectant or sterilizing cleaning agent of the present invention contains an amount of active ingredient that can be expected to have a sterilizing or sterilizing cleaning effect. The amount to be added can be determined by taking into consideration the use, form, etc.
(3)食品、餌
本発明の食品の例として一般食品(穀類、野菜、食肉、各種加工食品、菓子・デザート類、牛乳、清涼飲料水、果汁飲料、珈琲飲料、野菜汁飲料、アルコール飲料等)、栄養補助食品(サプリメント、栄養ドリンク等)、食品添加物、愛玩動物用食品、愛玩動物用栄養補助食品を挙げることができる。栄養補助食品又は食品添加物の場合、粉末、顆粒末、タブレット、ペースト、液体等の形状で提供することができる。食品組成物の形態で提供することによって、本発明の有効成分を日常的に摂取したり、継続的に摂取したりすることが容易となる。(3) Foods, feed Examples of the foods of the present invention include general foods (cereals, vegetables, meat, various processed foods, confectionery/desserts, milk, soft drinks, fruit juice drinks, coffee drinks, vegetable juice drinks, alcoholic drinks, etc.) ), nutritional supplements (supplements, nutritional drinks, etc.), food additives, pet food, and pet nutritional supplements. In the case of nutritional supplements or food additives, they can be provided in the form of powders, granules, tablets, pastes, liquids, and the like. By providing the food composition in the form of a food composition, it becomes easy to take the active ingredient of the present invention on a daily basis or continuously.
本発明の餌の例は、飼料(例えば家畜、家禽などの餌)、ペットフードである。 Examples of the feed of the present invention are feed (for example, feed for livestock, poultry, etc.) and pet food.
本発明の食品又は餌には、治療的又は予防的効果が期待できる量の有効成分が含有される。添加量は、それが使用される対象となる者の状態、年齢、性別、体重などを考慮して定めることができる。 The food or feed of the present invention contains an amount of active ingredient that can be expected to have a therapeutic or preventive effect. The amount added can be determined by considering the condition, age, sex, weight, etc. of the person to whom it will be used.
1.微細藻類コッコミクサ sp. KJ株の抽出物の調製、及び抽出物の精製
既報の方法に準じてコッコミクサ sp. KJ株を培養した。具体的には、AF6培地にコッコミクサ sp. KJ株を植藻した後、2%CO2(v/v)を通気し、光(300μmol/m2/s)を照射しながら室温(25℃)で48時間培養した。培養液から遠心分離により藻体を回収した。回収した藻体をドラムドライヤで乾燥させるとともに微粉砕機で粉砕し、粉末状とした(藻体の乾燥粉末)。次に、100gの乾燥粉末に対して1 lのエタノールを添加して分散させ、暗所で3日間静置した。静置後、ろ過して、1次ろ液と残渣とに分離した。この残渣に上記と同様に1 lのエタノールを添加して分散させ、3日間静置した後、再度ろ過して2次ろ液と残渣とに分離した。このろ過操作をもう一度繰り返し、3次ろ液と残渣とを得た。1. Preparation of extract of microalgae Coccomyxa sp. KJ strain and purification of extract Coccomyxa sp. KJ strain was cultured according to a previously reported method. Specifically, after planting Coccomyxa sp. KJ strain on AF6 medium, it was incubated at room temperature (25℃) while aerating with 2% CO 2 (v/v) and irradiating with light (300 μmol/m 2 /s). The cells were cultured for 48 hours. Algal bodies were collected from the culture solution by centrifugation. The collected algae were dried with a drum dryer and pulverized with a pulverizer to form a powder (dried algae powder). Next, 1 L of ethanol was added to 100 g of dry powder to disperse it, and the mixture was allowed to stand in the dark for 3 days. After standing still, it was filtered and separated into a primary filtrate and a residue. 1 L of ethanol was added to this residue in the same manner as above to disperse it, and after allowing it to stand for 3 days, it was filtered again to separate the secondary filtrate and the residue. This filtration operation was repeated once again to obtain a tertiary filtrate and a residue.
1次ろ液、2次ろ液、及び3次ろ液を混合し、エバポレーターでエタノールを留去し、減圧乾燥してエタノール抽出物DEとした。次に、DEをDIAION HP-20(三菱化学(株)製、3.5 x 57 cm)カラムクロマトグラフィーに供した。H2O、50%エタノール (EtOH)、EtOH及びアセトンで順次溶出し、各溶出フラクションを室温で減圧乾燥した(DE1, 400.9 mg; DE2, 310.3 mg; DE3, 2.25 g; DE4, 4.86 g)。アセトンフラクション(DE4)をシリカゲルカラム(3 x 42 cm)クロマトグラフィーに供した。ヘキサン、ヘキサン-酢酸エチル (AcOEt) (1:1)、AcOHt、AcOHt-アセトン (1:1)、アセトン及びメタノール (MeOH)で順次溶出し、各溶出フラクション、DE4A (55.4 mg)、DE4B (2.0 g)、DE4C (89.0 mg)、DE4D (1.01 g)、DE4E (95.5 mg)及びDE4F (177.1 mg)を得た。次に、DE4Dを、AcOEt-アセトンを溶媒系としたシリカゲルカラム(1.5 x 35 cm)クロマトグラフィーに供し、3フラクション、DE4D1 (49.9 mg)、DE4D2 (705.1 mg)及びDE4D3 (16.2 mg)を得た。続いて、DE4D2をシリカゲルカラム(1.5 x 35 cm)クロマトグラフィーに供し、CHCl3-MeOH-H20 (10:1:0.1)で溶出することでDE4D2A (15.6 mg)とDE4D2B (686.5 mg)を得た。この内、DE4D2Bを、クロロホルム (CHCl3)-MeOH (3:1)を溶媒系としたLH-20カラム(シグマアルドリッチ社製)クロマトグラフィーに供し、DE4D2Bl (11.6 mg)とDE4D2B2 (652.3 mg)を得た。DE4D2B2をシリカゲルカラム(2 x 50 cm)クロマトグラフィーに供し、CHCl3、CHCl3-MeOH (20:1)及びCHCl3-MeOH-H20(10:3:1)で溶出することで4フラクション、DE4D2B2A (4.8 mg)、DE4D2B2B (3.5 mg)、DE4D2B2C (25.1 mg)及びDE4D2B2D (620.5 mg)を得た。最後に、CHCl3-MeOH-酢酸 (AcOH)-H20 (80:9:12:2)で展開した分取液体クロマトグラフィー(PLC)でDE4D2B2Dを精製し、MGDG調製物 (578.9 mg)とした。The primary filtrate, secondary filtrate, and tertiary filtrate were mixed, ethanol was distilled off using an evaporator, and the mixture was dried under reduced pressure to obtain an ethanol extract DE. Next, DE was subjected to DIAION HP-20 (manufactured by Mitsubishi Chemical Corporation, 3.5 x 57 cm) column chromatography. Elution was carried out sequentially with H 2 O, 50% ethanol (EtOH), EtOH and acetone, and each eluted fraction was dried under reduced pressure at room temperature (DE1, 400.9 mg; DE2, 310.3 mg; DE3, 2.25 g; DE4, 4.86 g). The acetone fraction (DE4) was subjected to silica gel column (3 x 42 cm) chromatography. Elution was carried out sequentially with hexane, hexane-ethyl acetate (AcOEt) (1:1), AcOHt, AcOHt-acetone (1:1), acetone and methanol (MeOH), and each eluted fraction, DE4A (55.4 mg), DE4B (2.0 g), DE4C (89.0 mg), DE4D (1.01 g), DE4E (95.5 mg) and DE4F (177.1 mg) were obtained. Next, DE4D was subjected to chromatography on a silica gel column (1.5 x 35 cm) using AcOEt-acetone as a solvent system to obtain 3 fractions, DE4D1 (49.9 mg), DE4D2 (705.1 mg) and DE4D3 (16.2 mg). . Subsequently, DE4D2 was subjected to silica gel column (1.5 x 35 cm) chromatography and DE4D2A (15.6 mg) and DE4D2B (686.5 mg) were eluted with CHCl 3 -MeOH-H 2 0 (10:1:0.1). Obtained. Among them, DE4D2B was subjected to LH-20 column chromatography (manufactured by Sigma-Aldrich) using chloroform (CHCl 3 )-MeOH (3:1) as a solvent system, and DE4D2Bl (11.6 mg) and DE4D2B2 (652.3 mg) were separated. Obtained. DE4D2B2 was subjected to chromatography on a silica gel column (2 x 50 cm) and 4 fractions were collected by elution with CHCl 3 , CHCl 3 -MeOH (20:1) and CHCl 3 -MeOH-H 2 0 (10:3:1). , DE4D2B2A (4.8 mg), DE4D2B2B (3.5 mg), DE4D2B2C (25.1 mg) and DE4D2B2D (620.5 mg) were obtained. Finally, DE4D2B2D was purified by preparative liquid chromatography (PLC) developed with CHCl 3 -MeOH-acetic acid (AcOH)-H 2 0 (80:9:12:2) and combined with the MGDG preparation (578.9 mg). did.
2.ヘルペスウイルス及びインフルエンザウイルスを標的とした殺ウイルス活性
MGDG調製物の殺ウイルス活性を評価するため、Time-of-addition実験と殺ウイルス活性試験を実施した。標的ウイルスはHSV-2及びA型インフルエンザウイルスとした。2. Virucidal activity targeting herpes virus and influenza virus
Time-of-addition experiments and virucidal activity tests were performed to evaluate the virucidal activity of the MGDG preparation. The target viruses were HSV-2 and influenza A virus.
2-1.Time-of-addition実験
<方法>
(1)48ウェルプレートに細胞(Vero細胞又はMDCK細胞)を単層状に培養する。
(2)MGDG調製物(10μg/ml、25μg/ml又は50μg/ml)を以下の添加時間で培地へ添加する。
試験区1:ウイルス感染前の3時間
試験区2:ウイルス感染前の1時間
試験区3:ウイルス感染中(室温で1時間)のみ
試験区4:ウイルス感染3時間前から24時間後まで
試験区5:ウイルス感染1時間前から24時間後まで
試験区6:ウイルス感染中から24時間後まで
試験区7:ウイルス感染直後から24時間後まで
試験区8:ウイルス感染1時間後から24時間後まで
試験区9:ウイルス感染3時間後から24時間後まで
試験区10:ウイルス感染6時間後から24時間後まで
(3)感染24時間後に培養物を収穫し、別に35 mm培養皿に準備した細胞を用いてプラークアッセイを行う。
(4)MGDG調製物の代わりに溶媒(MEM培地)を加えたコントロールのプラーク数を基準(100%)とし、各試験区のウイルス増殖率を算出する。2-1. Time-of-addition experiment <method>
(1) Culture cells (Vero cells or MDCK cells) in a monolayer in a 48-well plate.
(2) Add the MGDG preparation (10 μg/ml, 25 μg/ml or 50 μg/ml) to the medium at the following addition times.
Test group 1: 3 hours before virus infection Test group 2: 1 hour before virus infection Test group 3: Only during virus infection (1 hour at room temperature) Test group 4: From 3 hours before virus infection to 24 hours after virus infection Test group 5: From 1 hour before to 24 hours after virus infection Test group 6: From 24 hours after virus infection Test group 7: From immediately after virus infection to 24 hours after virus infection Test group 8: From 1 hour to 24 hours after virus infection Test group 9: From 3 hours to 24 hours after virus infection Test group 10: From 6 hours to 24 hours after virus infection (3) Cultures were harvested 24 hours after infection, and cells were prepared separately in a 35 mm culture dish. Perform plaque assay using
(4) Using the number of plaques in a control in which a solvent (MEM medium) was added instead of the MGDG preparation as a standard (100%), calculate the virus proliferation rate for each test group.
<結果・考察>
試験結果(2回の測定値の平均)を図1(HSV-2が標的)及び図2(インフルエンザウイルスが標的)に示す。MGDG調製物の濃度依存的にHSV-2増殖は阻害された(図1)。いずれの濃度においても、試験区3(ウイルス感染中のみサンプルが存在する)の効果が強いようであった。これは、ウイルスの宿主細胞への吸着・侵入段階をMGDG調製物が阻害しているかのようであるが、同時期にサンプルが存在する他の試験区(試験区4、5、6)においては、同様の結果が得られなかったことから、この段階をMGDG調製物の作用標的とみなすことはできない。また、ウイルスのタンパクや遺伝子の合成が細胞内で行なわれている時期(試験区8、9、10)において顕著な阻害効果がみられなかったことから、MGDG調製物は宿主細胞内でのウイルス増殖段階に選択的に作用するとは考えにくい。<Results/Discussion>
The test results (average of two measurements) are shown in Figure 1 (targeting HSV-2) and Figure 2 (targeting influenza virus). HSV-2 proliferation was inhibited in a concentration-dependent manner of the MGDG preparation (Figure 1). At all concentrations, the effect in test group 3 (sample present only during virus infection) seemed to be strong. This seems to indicate that the MGDG preparation inhibits the adsorption/invasion stage of the virus into host cells, but in other test plots (
一方、インフルエンザウイルス(IFV)を標的とした場合は、HSV-2に比べて、MGDG調製物の濃度依存的なウイルス増殖阻害効果は顕著ではなかった(図2)。他の点では、HSV-2の場合に似た傾向が認められた。 On the other hand, when targeting influenza virus (IFV), the concentration-dependent inhibitory effect on virus growth of the MGDG preparation was not as pronounced as compared to HSV-2 (Figure 2). In other respects, trends similar to those for HSV-2 were observed.
2-2.殺ウイルス活性試験
上記のTime-of-addition実験からは直接的に評価できないウイルス不活化作用(殺ウイルス活性)を検討した。
<方法>
(1)ウイルス液(2 x 105 PFU/ml)0.1 mlと2倍濃度のサンプル液(混合後の濃度を0.01~50μg/mlとしたMGDG調製物)0.1 mlを1.5 ml チューブに加えて混合し、37℃に置く。
(2)0~6時間後に、各チューブから10μlずつ採取して氷上に移し、PBS 990μlを加えて100倍希釈する。
(3)直ちに、この希釈液0.1 mlを、別に準備した宿主細胞(35 mm培養皿)に感染させる(室温、1時間)。
(4)プラークアッセイ用培地を重層する。
(5)2日後にプラークの出現を確認し、クリスタルバイオレット液で細胞を固定・染色する。
(6)プラーク数を測定する。
(7)ウイルス液と希釈液(PBS)とを混合した直後(0分)のプラーク数を基準(100%)とし、各試験区の相対プラーク数(%)を算出する。2-2. Viricidal activity test Virus inactivation effect (viricidal activity), which cannot be directly evaluated from the above-mentioned time-of-addition experiment, was investigated.
<Method>
(1) Add 0.1 ml of virus solution (2 x 10 5 PFU/ml) and 0.1 ml of double-concentration sample solution (MGDG preparation with a concentration of 0.01 to 50 μg/ml after mixing) to a 1.5 ml tube and mix. and place it at 37℃.
(2) After 0 to 6 hours, collect 10 μl from each tube, transfer to ice, and add 990 μl of PBS to dilute 100 times.
(3) Immediately infect separately prepared host cells (35 mm culture dish) with 0.1 ml of this diluted solution (room temperature, 1 hour).
(4) Overlay the medium for plaque assay.
(5) After 2 days, confirm the appearance of plaques and fix and stain the cells with crystal violet solution.
(6) Measure the number of plaques.
(7) Calculate the relative number of plaques (%) for each test group using the number of plaques immediately after mixing the virus solution and diluent solution (PBS) (0 minutes) as the standard (100%).
<結果・考察>
試験結果(2回の測定値の平均)を図3(HSV-2が標的)及び図4(インフルエンザウイルスが標的)に示す。HSV-2を標的とした場合(図3)、コントロール(MGDG調製物濃度0μg/ml)は、6時間の処理時間中に感染力を約40%にまで徐々に低下させた。MGDG調製物は、濃度依存的にコントロールよりもウイルスを死滅させた。特に、10μg/ml以上の濃度で殺ウイルス活性が極めて強く、50μg/mlの濃度ではウイルスと混合した時点で感染力を半減させた。0.01μg/ml (10 ng/ml)の極めて低濃度でも、MGDG調製物はコントロールに比べて高いウイルス不活化効果を示した。<Results/Discussion>
The test results (average of two measurements) are shown in Figure 3 (targeting HSV-2) and Figure 4 (targeting influenza virus). When targeting HSV-2 (Figure 3), the control (
一方、MGDG調製物はインフルエンザウイルス(IFV)に対しても、濃度依存的にコントロールよりもウイルスを死滅させた(図4)。HSV-2の場合と同様に、MGDG調製物は10μg/ml以上の濃度で強い殺ウイルス活性を示した。但し、HSV-2に比べて、ウイルス不活化には時間を要した。 On the other hand, the MGDG preparation also killed influenza virus (IFV) better than the control in a concentration-dependent manner (Figure 4). As with HSV-2, the MGDG preparation showed strong virucidal activity at concentrations above 10 μg/ml. However, compared to HSV-2, it took longer to inactivate the virus.
以上の二つの試験結果から、MGDG調製物は2種類のウイルス(HSV-2、IFV)のいずれに対しても殺ウイルス活性をもたらすことが明らかになった。 The above two test results revealed that the MGDG preparation had virucidal activity against both types of viruses (HSV-2 and IFV).
図5に示す通り、インフルエンザウイルス(IFV)をMGDG調製物(50μg/ml)で処理(30分間、室温)し、形態観察した結果、ウイルスエンベロープの崩壊が認められ、MGDG調製物が不可逆的な不活性作用を示したことが明らかとなった。 As shown in Figure 5, influenza virus (IFV) was treated with the MGDG preparation (50 μg/ml) (30 minutes, room temperature) and the morphology was observed. As a result, collapse of the viral envelope was observed, and the MGDG preparation It became clear that it exhibited an inert effect.
3.ノロウイルスを標的とした殺ウイルス活性
エンベロープを持たないウイルスに対してもMGDG調製物が殺ウイルス活性を示すか否かを評価した。MGDG調製物について、マウスノロウイルス(MNV)に対する不活化作用を評価した。
<方法>
(1)ウイルス(MNV)のストックをPBS (リン酸緩衝生理食塩水)で希釈して2×105 PFU/mlに調製する。
(2)1.5 mlマイクロチューブにサンプル(所定濃度のMGDG調製物)0.5mlとウイルス液0.5 mlを入れて混合する。尚、コントロールは、サンプルの代わりにPBSを加える。
(3)サンプルとウイルス液の混合液を室温に置き、0分後、1分後、10分後及び30分後に10μlずつ採取して990μlのPBSと混合する(100倍希釈)。尚、この希釈は、以下で行う残存ウイルス量の測定時にサンプルの影響が出る事を防止するためである。
(4)100倍希釈液100μlを、前もって単層状に培養しておいた宿主細胞(マウスマクロファージ様細胞であるRAW264.7細胞)に加え、室温で1時間感染させる。
(5)プラークアッセイ用培地を重層し、37℃で2~3日間培養する。
(6)プラークの出現を確認後、ニュートラルレッド液で細胞を固定・染色し、顕微鏡下でプラーク数を測定する。
(7)0時間のプラーク数を基準(100%)とし、各処理時間後の残存ウイルス量(相対プラーク数)を算出する。3. Virucidal activity targeting norovirus We evaluated whether the MGDG preparation exhibits virucidal activity against non-enveloped viruses. The MGDG preparation was evaluated for its inactivating effect on murine norovirus (MNV).
<Method>
(1) Dilute virus (MNV) stock with PBS (phosphate buffered saline) to 2×10 5 PFU/ml.
(2) Add 0.5 ml of the sample (MGDG preparation at a predetermined concentration) and 0.5 ml of the virus solution to a 1.5 ml microtube and mix. As a control, add PBS instead of the sample.
(3) Place the sample and virus solution mixture at room temperature, collect 10 μl each at 0 minutes, 1 minute, 10 minutes, and 30 minutes and mix with 990 μl of PBS (100-fold dilution). Note that this dilution is to prevent the sample from affecting the measurement of the amount of residual virus, which will be performed below.
(4) Add 100 μl of the 100-fold diluted solution to host cells (RAW264.7 cells, which are mouse macrophage-like cells) that have been cultured in a monolayer in advance, and infect them for 1 hour at room temperature.
(5) Overlay with plaque assay medium and culture at 37°C for 2 to 3 days.
(6) After confirming the appearance of plaques, fix and stain the cells with neutral red solution, and measure the number of plaques under a microscope.
(7) Calculate the amount of remaining virus (relative plaque number) after each treatment time using the number of plaques at 0 hours as a reference (100%).
<結果・考察>
MGDG調製物(1~100μg/ml)は、濃度依存的・時間依存的にMNVに対して殺ウイルス活性を示した(図6)。<Results/Discussion>
The MGDG preparation (1-100 μg/ml) exhibited virucidal activity against MNV in a concentration- and time-dependent manner (FIG. 6).
4.ネコカリシウイルスを標的とした殺ウイルス活性
ノロウイルスの代替として用いられるネコカリシウイルス(FCV)に対してもMGDG調製物が殺ウイルス活性を示すか否かを評価した。
<方法>
(1)ウイルス(FCV)のストックをPBS (リン酸緩衝生理食塩水)で希釈して2×105 PFU/mlに調製する。
(2)1.5 mlマイクロチューブにサンプル(所定濃度のMGDG調製物)0.5mlとウイルス液0.5 mlを入れて混合する。尚、コントロールは、サンプルの代わりにPBSを加える。
(3)サンプルとウイルス液の混合液を室温に置き、0分後、1分後、10分後、30分後及び60分後に10μlずつ採取して990μlのPBSと混合する(100倍希釈)。尚、この希釈は、以下で行う残存ウイルス量の測定時にサンプルの影響が出る事を防止するためである。
(4)100倍希釈液100μlを、前もって単層状に培養しておいた宿主細胞(ネコ腎由来のCRFK細胞)に加え、室温で1時間感染させる。
(5)プラークアッセイ用培地を重層し、37℃で2~3日間培養する。
(6)プラークの出現を確認後、ニュートラルレッド液で細胞を固定・染色し、顕微鏡下でプラーク数を測定する。
(7)0時間のプラーク数を基準(100%)とし、各処理時間後の残存ウイルス量(相対プラーク数)を算出する。4. Viricidal activity targeting feline calicivirus We evaluated whether the MGDG preparation also exhibited virucidal activity against feline calicivirus (FCV), which is used as an alternative to norovirus.
<Method>
(1) Dilute virus (FCV) stock with PBS (phosphate buffered saline) to 2×10 5 PFU/ml.
(2) Add 0.5 ml of the sample (MGDG preparation at a predetermined concentration) and 0.5 ml of the virus solution to a 1.5 ml microtube and mix. As a control, add PBS instead of the sample.
(3) Place the sample and virus solution mixture at room temperature, collect 10 μl each at 0 minutes, 1 minute, 10 minutes, 30 minutes, and 60 minutes and mix with 990 μl of PBS (100-fold dilution) . Note that this dilution is to prevent the sample from affecting the measurement of the amount of residual virus, which will be performed below.
(4) Add 100 μl of the 100-fold diluted solution to host cells (CRFK cells derived from cat kidney) that have been cultured in a monolayer in advance, and infect them for 1 hour at room temperature.
(5) Overlay with plaque assay medium and culture at 37°C for 2 to 3 days.
(6) After confirming the appearance of plaques, fix and stain the cells with neutral red solution, and measure the number of plaques under a microscope.
(7) Calculate the amount of remaining virus (relative plaque number) after each treatment time using the number of plaques at 0 hours as a reference (100%).
<結果・考察>
MGDG調製物(10~200μg/ml)は、濃度依存的・時間依存的にFCVに対して殺ウイルス(不活化)活性を示した(図7)。<Results/Discussion>
The MGDG preparation (10-200 μg/ml) exhibited virucidal (inactivating) activity against FCV in a concentration- and time-dependent manner (FIG. 7).
5.ヘルペスウイルスを標的とした殺ウイルス活性の不可逆性の検討(実験動物を用いたin vivo実験)
上記の通り、MGDG調製物がHSV-2を不活化することを、培養細胞を用いたin vitroアッセイで確認した。この不活化が、生体内で不可逆的に維持されて、ウイルス感染症(性器ヘルペス)を抑制できるのかを評価した。具体的には、MGDG調製物で処理したウイルスを性器に接種し、感染3日後のウイルス量、ヘルペス症状の程度(lesion scores)、死亡率を検討した。
<方法>
(1)BALB/cマウス(6週齢、雌)に、ウイルス接種6日前及び1日前に、medroxyprogesterone (3 mg/0.1 ml/mouse)を皮下注射する。
(2)0日目に、下記のように処理したウイルス液(20μl/mouse)を、マウスの性器に接種する。
コントロール: 溶媒(PBS)を同量のウイルス液(HSV-2(UW268株)、4 x 104 PFU/20 μl)(最終ウイルス量 2 x 104 PFU/20μl/mouse)と混合して、30分間、室温で処理する。
試験区(MGDG調製物): 2倍濃度(20μg/ml、100μg/ml、500μg/ml)のMGDG調製物を同量のウイルス液(HSV-2(UW268株)、4 x 104 PFU/20μl)(最終ウイルス量 2 x 104 PFU/20 μl/mouse)と混合して、30分間、室温で処理する。
(3)感染3日後に、性器をPBS(100μl/mouse)で洗浄し、洗浄液中のウイルスをプラークアッセイで定量する。
(4)感染14日後まで、発症の程度を観察し、0~5の6段階のlesion scoresで評価する。
(5)感染14日後まで、マウスの生死を記録する。5. Examination of irreversibility of virucidal activity targeting herpesvirus (in vivo experiment using laboratory animals)
As mentioned above, it was confirmed by an in vitro assay using cultured cells that the MGDG preparation inactivates HSV-2. We evaluated whether this inactivation could be irreversibly maintained in vivo and suppress viral infection (genital herpes). Specifically, the virus treated with the MGDG preparation was inoculated into the genitals, and the viral load, lesion scores, and mortality rate were examined three days after infection.
<Method>
(1) BALB/c mice (6 weeks old, female) are injected subcutaneously with medroxyprogesterone (3 mg/0.1 ml/mouse) 6 days and 1 day before virus inoculation.
(2) On
Control: Mix the solvent (PBS) with the same amount of virus solution (HSV-2 (UW268 strain), 4 x 10 4 PFU/20 μl) (final virus amount 2 x 10 4 PFU/20 μl/mouse) and incubate for 30 Process for 1 minute at room temperature.
Test plot (MGDG preparation): Double concentration (20 μg/ml, 100 μg/ml, 500 μg/ml) of MGDG preparation was added to the same amount of virus solution (HSV-2 (UW268 strain), 4 x 10 4 PFU/20 μl. ) (final virus amount 2 x 10 4 PFU/20 μl/mouse) and incubate for 30 minutes at room temperature.
(3) Three days after infection, wash the genitals with PBS (100 μl/mouse), and quantify the virus in the wash by plaque assay.
(4) Observe the severity of the disease until 14 days after infection and evaluate it using a 6-level lesion score from 0 to 5.
(5) Record whether the mice are alive or dead until 14 days after infection.
<結果・考察>
(1)発症の時間的経過及び死亡例(図8、表1)
コントロール群は、感染10日後までに全例(5匹中5匹)が死亡した。これに対して、250μg/ml及び50μg/mlのMGDG濃度でウイルスを前処理した場合には、全てのマウスでヘルペス症状はみられず、全例生存した。10μg/mlでの処理時には、5匹中3匹に発症が認められて死亡し、2匹は無症状で経過して生存した。
(1) Time course of onset and death cases (Figure 8, Table 1)
In the control group, all animals (5 out of 5 animals) died by 10 days after infection. On the other hand, when the virus was pretreated with MGDG concentrations of 250 μg/ml and 50 μg/ml, no herpes symptoms were observed in any of the mice, and all of the mice survived. When treated with 10 μg/ml, 3 out of 5 animals developed symptoms and died, while 2 animals remained asymptomatic and survived.
(2)感染3日後のウイルス量(図9)
250μg/ml及び50μg/mlの濃度でウイルスを前処理した場合には、全てのマウスでウイルスは検出されなかった(***p<0.001)。10μg/mlの濃度では、5匹中4匹にウイルスが検出され、その平均値は、コントロール群に比べて有意に(*p<0.05)低かった。(2)
No virus was detected in all mice when pretreated with virus at concentrations of 250 μg/ml and 50 μg/ml (***p<0.001). At a concentration of 10 μg/ml, virus was detected in 4 out of 5 animals, and the average value was significantly (*p<0.05) lower than that in the control group.
以上の結果とin vitroでの殺ウイルス活性試験の結果(上記の項目2.)とを考え合わせると、MGDG調製物はHSV-2に対して不可逆的な不活化作用を及ぼすことが明らかになった。この結果は、形態的観察によってウイルスのエンベロープが破壊されていると推察された結果(図10)と矛盾しない。
Considering the above results and the results of the in vitro virucidal activity test (
in vitroとin vivoでのMGDG調製物の殺ウイルス活性の評価結果を以下の表2にまとめて示す。
6.クロレラ・ブルガリス、ナンノクロロプシス・オキュラータ、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)及びユーグレナ・グラシリスのMGDGの調製
クロレラ・ブルガリス、ナンノクロロプシス・オキュラータ、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)及びユーグレナ・グラシリスからMGDGを抽出する。各藻類の培養は、各々に適した培地(例えば、クロレラ・ブルガリスであれば、図11に示すC培地、ナンノクロロプシス・オキュラータであれば、図11に示すESM培地、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)であれば、図12に示すMA培地、ユーグレナ・グラシリスであれば、図12に示すHUT培地)を用い、常法で行えばよい(上記コッコミクサ sp. KJ株と同様の培養条件を採用してもよい)。培養液から遠心分離により回収した藻体をドラムドライヤで乾燥させるとともに微粉砕機で粉砕することにより、各藻体の乾燥粉末を得ることができる。乾燥粉末からコッコミクサ sp. KJ株の場合と同様の抽出操作によって、各藻類のMGDG調製物を得ることができる。但し、今回の検討では、各藻類の加工品(クロレラ・ブルガリスは「クロレラ・ブルガリス乾燥粉末」(株式会社葵製茶)、ナンノクロロプシス・オキュラータは「ナンノクロロプシス・オキュラータ凍結品」(マリンテック株式会社)、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)は「スピルリナパウダー」(DICライフテック株式会社)、ユーグレナ・グラシリスは「いのちのユーグレナ極み」(シックスセンスラボ株式会社)とバイオザイム(ユーグレナ)を購入し、MGDGの抽出に供した(抽出操作はコッコミクサ sp. KJ株の場合と同様)。得られた各MGDG調製物を以下の検討に用いる。市販のホウレンソウ(Spinacia oleracea)からも、凍結乾燥後に微粉砕機で粉砕し、MGDGを抽出することによってMGDG調製物を得た。6. Preparation of MGDG from Chlorella vulgaris, Nannochloropsis oculata, Arthrospira platensis (Spirulina) and Euglena gracilis Extraction of MGDG from Chlorella vulgaris, Nannochloropsis oculata, Arthrospira platensis (Spirulina) and Euglena gracilis do. Each algae is cultured on a medium suitable for each (for example, for Chlorella vulgaris, C medium shown in Figure 11, for Nannochloropsis oculata, ESM medium shown in Figure 11, Arthrospira platensis (Spirulina ), use the MA medium shown in Figure 12; for Euglena gracilis, use the HUT medium shown in Figure 12), and use the conventional method (adopt the same culture conditions as the above-mentioned Coccomyxa sp. KJ strain). ). Dry powder of each algae can be obtained by drying the algae collected from the culture solution by centrifugation using a drum dryer and pulverizing them using a pulverizer. MGDG preparations of each algae can be obtained from the dry powder by extraction operations similar to those for Coccomyxa sp. KJ strain. However, in this study, processed products of each algae (Chlorella vulgaris is "Chlorella vulgaris dried powder" (Aoi Seicha Co., Ltd.), Nannochloropsis oculata is "Nannochloropsis oculata frozen product" (Marine) Tech Co., Ltd.), Arthrospira platensis (Spirulina), ``Spirulina Powder'' (DIC Life Tech Co., Ltd.), and Euglena gracilis, ``Euglena Kiwami of Life'' (Six Sense Lab Co., Ltd.) and Biozyme (Euglena). , MGDG was extracted (the extraction procedure was the same as in the case of Coccomyxa sp. KJ strain). Each obtained MGDG preparation was used for the following studies. Commercially available spinach (Spinacia oleracea) was also used to extract finely divided MGDG after freeze-drying. MGDG preparation was obtained by grinding with a grinder and extracting MGDG.
7.牡蠣に濃縮されたノロウイルスを標的とした殺ウイルス活性(ノロウイルスに汚染された牡蠣の浄化試験)
(1)汚染牡蠣の作出
活牡蠣を購入し、水道水流水下、ブラシを使って殻の表面をよく洗浄した後、クリーンベンチ内に静置して紫外線下で殻表面を殺菌する。次に、ろ過(穴径0.2μm;ミリポア社製)滅菌した海水(水温10℃)に殻の表面を紫外線処理した牡蠣を入れ、通気しながら1昼夜絶食飼育する。次いで、あらかじめ調製しておいたマウスノロウイルスのストックを、このろ過滅菌海水に終濃度で2×105 PFU/mlになるように投入する。そして、さらに1昼夜飼育し、マウスノロウイルスに汚染された牡蠣を作出する。7. Virucidal activity targeting norovirus concentrated in oysters (purification test of oysters contaminated with norovirus)
(1) Creation of contaminated oysters Live oysters are purchased, and after thoroughly cleaning the shell surface with a brush under running tap water, the shell surface is sterilized by leaving it in a clean bench and sterilizing it under ultraviolet light. Next, the oysters, whose shell surfaces have been treated with ultraviolet rays, are placed in filtered (pore diameter: 0.2 μm; manufactured by Millipore) sterilized seawater (water temperature: 10°C) and reared without food for a day and night while being aerated. Next, a stock of mouse norovirus prepared in advance is added to this filter-sterilized seawater at a final concentration of 2×10 5 PFU/ml. The oysters are then raised for another day and night to produce oysters contaminated with mouse norovirus.
(2)MGDG調製海水の作製
MGDG調製物(コッコミクサ sp. KJ株MGDG調製物、クロレラ・ブルガリスMGDG調製物、ナンノクロロプシス・オキュラータMGDG調製物、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)MGDG調製物、ユーグレナ・グラシリスMGDG調製物、ホウレンソウMGDG調製物)又はそれを精製したMGDGにDMSOを添加して均質に懸濁する(MGDG懸濁液)。ついで、ろ過(穴径0.2μm;ミリポア社製)滅菌海水10Lに対してMGDGの終濃度が100ppmになるようにMGDG懸濁液を添加し、白濁したMGDG調製滅菌海水を得る。(2) Preparation of MGDG prepared seawater
MGDG preparation (Coccomyxa sp. KJ strain MGDG preparation, Chlorella vulgaris MGDG preparation, Nannochloropsis oculata MGDG preparation, Arthrospira platensis (Spirulina) MGDG preparation, Euglena gracilis MGDG preparation, Spinach MGDG preparation DMSO is added to MGDG or purified MGDG to homogeneously suspend it (MGDG suspension). Next, the MGDG suspension is added to 10 L of filtered (pore diameter: 0.2 μm; manufactured by Millipore) sterilized seawater so that the final concentration of MGDG is 100 ppm, to obtain cloudy MGDG-prepared sterile seawater.
(3)浄化試験
MGDG処理区は汚染牡蠣を各種MGDG 100ppmのろ過滅菌海水1L入りのビーカーに1個ずつ収容する。対照区(MGDG処理なし)ではMGDG未添加のろ過滅菌海水1L入りビーカーに1個収容して比較とする。海水温を10℃に設定し通気しながら48時間飼育する。48時間経過後、牡蠣を海水から取りあげ、殻から身を取り出し、ろ紙に乗せ、水分をよくふき取る。そして、ビニール袋に入れて-80℃で冷凍保存する。この操作により、牡蠣に蓄積するマウスノロウイルスが流出することなく保存される。尚、実験数は、比較による有意差を見出すに十分な数を設定する。(3) Purification test
In the MGDG treatment area, each contaminated oyster is stored in a beaker containing 1L of filter-sterilized seawater containing 100ppm of MGDG. In the control group (without MGDG treatment), one sample was placed in a beaker containing 1 L of filtered sterilized seawater to which MGDG was not added for comparison. The seawater temperature was set to 10℃ and the animals were kept for 48 hours with ventilation. After 48 hours have passed, remove the oysters from the seawater, remove them from their shells, place them on filter paper, and pat dry. Then, put it in a plastic bag and freeze it at -80℃. This operation preserves the mouse norovirus that accumulates in oysters without leaking out. Note that the number of experiments is set to be a sufficient number to find a significant difference through comparison.
(4)残存マウスノロウイルスの評価
牡蠣の消化管中でマウスノロウイルスは増殖しないので、基本的には、添加したマウスノロウイルスはすべて牡蠣に取り込まれ消化管に蓄積するものと考えられる。(3)で凍結した牡蠣を解凍し、牡蠣から消化管を摘出し、この消化管内を一定量のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗浄し、その洗浄液をPBSで100倍に希釈する。この100倍希釈液100μlを、前もって単層状に培養しておいた宿主細胞(マウスマクロファージ様細胞であるRAW264.7細胞)に添加し、室温で1時間感染させる。そして、プラークアッセイ用培地を重層し、37℃で2~3日間培養する。プラークの出現を確認後、ニュートラルレッド液で細胞を固定・染色し、顕微鏡下でプラーク数を測定する。初期のマウスノロウイルスの濃度2×105 PFU/mlを基準(100%)とし、48時間後の牡蠣消化管中の生存ウイルス量(相対プラーク数)を算出する。(4) Evaluation of residual mouse norovirus Since mouse norovirus does not proliferate in the gastrointestinal tract of oysters, it is thought that basically all the added mouse norovirus is taken into the oysters and accumulated in the gastrointestinal tract. Thaw the oysters frozen in step (3), remove the digestive tract from the oyster, wash the inside of the digestive tract with a certain amount of phosphate buffered saline (PBS), and dilute the
MGDG処理区では、牡蠣汚染したマウスノロウイルスは、取り込まれたMGDGとの接触により感染能力が失われ、宿主細胞からはほとんどプラークが発生しないとの結果が得られる。 In the MGDG-treated area, the murine norovirus contaminated with oysters loses its ability to infect through contact with the ingested MGDG, and the results show that almost no plaques are generated from host cells.
8.有機物存在下における殺ウイルス効果
ノロウイルス感染者の吐しゃ物や糞便中にはノロウイルスが含まれ、これらによる二次感染が問題となる。また、ノロウイルスは一般に用いられるアルコール系消毒剤では殺ウイルス効果が低いとされ、主に塩素系の消毒剤が使用される。しかし、塩素は吐しゃ物や糞便等に含まれる有機物により分解されることから、塩素系消毒剤では殺ウイルス効果が減衰してしまう。そこで、MGDG調製物が有機物存在下でも殺ウイルス効果を発揮するか検討することにした。8. Virucidal effect in the presence of organic matter Norovirus is contained in the vomit and feces of people infected with norovirus, and secondary infection due to these is a problem. Additionally, commonly used alcohol-based disinfectants are said to have low virucidal effects against norovirus, and chlorine-based disinfectants are mainly used. However, since chlorine is decomposed by organic matter contained in vomit, feces, etc., the virucidal effect of chlorine-based disinfectants is diminished. Therefore, we decided to investigate whether MGDG preparations exhibit virucidal effects even in the presence of organic substances.
<使用したウイルス・試薬等>
ウイルス:ノロウイルスの代替としてネコカリシウイルス(FCV)を使用
使用薬剤と濃度:次亜塩素酸ナトリウム又はコッコミクサ sp. KJ株MGDG調製物 各1,000μg/ml
有機物:BSA(アルブミン) 5%を使用
<方法>
(1)ネコカリシウイルス(FCV)を2×105 PFU/mlに調製する。
(2)MGDG調製物または次亜塩素酸ナトリウムを、最終検定濃度(1,000μg/ml)の4倍濃度に調製する。
(3)有機物としてウシ血清アルブミン(BSA)を最終濃度(5%)の4倍濃度に調製する。
(4)ウイルス液:MGDG調製物または次亜塩素酸ナトリウム:BSA=2:1:1で混合する。MGDG調製物または次亜塩素酸ナトリウムの代わりにPBSを加えたサンプルをコントロールとした。
(5)室温にて1分、10分、60分間放置後、PBSで100倍希釈する。35mm培養皿に単層状に培養したCRFK細胞へ100μl/培養皿の量を加えて、室温で1時間、感染処理する。
(6)1% SeaPlaque Agarose添加MEM培地を重層する。
(7)2日後に、出現したプラークをクリスタルバイオレット液で固定・染色する。
(8)顕微鏡下でプラーク数を計算する。<Virus, reagents, etc. used>
Virus: Feline calicivirus (FCV) is used as a substitute for norovirus Drugs used and concentration: Sodium hypochlorite or Coccomyxa sp. KJ strain MGDG preparation 1,000μg/ml each
Organic matter: Use 5% BSA (albumin) <Method>
(1) Prepare feline calicivirus (FCV) to 2×10 5 PFU/ml.
(2) Prepare the MGDG preparation or sodium hypochlorite to a
(3) Prepare bovine serum albumin (BSA) as an organic substance to a
(4) Mix virus solution: MGDG preparation or sodium hypochlorite: BSA = 2:1:1. MGDG preparations or samples with PBS added instead of sodium hypochlorite served as controls.
(5) Leave at room temperature for 1 minute, 10 minutes, and 60 minutes, then dilute 100 times with PBS. Add 100 μl/culture dish to CRFK cells cultured in a monolayer on a 35 mm culture dish and infect for 1 hour at room temperature.
(6) Overlay MEM medium supplemented with 1% SeaPlaque Agarose.
(7) After 2 days, the plaques that appear are fixed and stained with crystal violet solution.
(8) Calculate the number of plaques under a microscope.
<結果>
図13示す通り、次亜塩素酸ナトリウムは有機物(BSA)が存在しない場合、1分間でウイルスを100%不活化した。しかし、5%の有機物存在下では不活化効果が著しく減弱した。一方で、MGDGの不活化効果は有機物存在下でもほとんど変化がなく、次亜塩素酸ナトリウムと比較して高い不活化効果を示した。<Results>
As shown in Figure 13, sodium hypochlorite inactivated 100% of the virus in 1 minute in the absence of organic matter (BSA). However, in the presence of 5% organic matter, the inactivation effect was significantly weakened. On the other hand, the inactivation effect of MGDG was almost unchanged even in the presence of organic matter, and showed a higher inactivation effect compared to sodium hypochlorite.
9.口唇ヘルペスに対する効果
MGDG調製物の口唇ヘルペスに対する効果を検証した。
<方法>
(1)ハンドクリーム(moina、デンソー製) 30gを準備する。
(2)オリーブ油((株)J-オイルミルズ社製)0.610gにコッコミクサ sp. KJ株MGDG調製物を0.165g加え、混練し溶解させる(MGDG溶解物)。
(3)(1)で用意したハンドクリームに対し、均一になるよう混錬しながらMGDG溶解物を少量ずつ加え、全てを加え終えたものを塗布用サンプルとする。
(4)口唇ヘルペス発症した患者(以下の2名の患者を被験者とした)の患部に対し、毎日(1~3回)適量を塗り込み、患部の様子を経時的に観察する。
患者1:45歳女性;口唇ヘルペスの発症経験(複数回)あり。普段はビダラビンを有効成分とする市販薬アラセナS(佐藤製薬株式会社)を使用して治療し、治癒までに2~3週間を要する。
患者2:25歳男性;口唇ヘルペスの発症経験(複数回)あり。普段は薬を使用せず(自然に治癒するのを待つ)、2~3週後には目立たない程度に回復する。9. Effect on cold sores
The effect of MGDG preparation on cold sores was verified.
<Method>
(1) Prepare 30g of hand cream (Moina, manufactured by Denso).
(2) Add 0.165 g of Coccomyxa sp. KJ strain MGDG preparation to 0.610 g of olive oil (manufactured by J-Oil Mills Co., Ltd.), knead, and dissolve (MGDG dissolved product).
(3) Add the MGDG melt little by little to the hand cream prepared in (1) while kneading it until it becomes uniform, and use the mixture after all the addition as a sample for application.
(4) Apply an appropriate amount to the affected area of patients with cold sores (the following two patients were used as subjects) every day (1 to 3 times) and observe the condition of the affected area over time.
Patient 1: 45-year-old female; had experienced cold sores (multiple times). It is usually treated with the over-the-counter drug Aracena S (Sato Pharmaceutical Co., Ltd.), which contains vidarabine as the active ingredient, and it takes two to three weeks to heal.
Patient 2: 25-year-old male; had experienced cold sores (multiple times). Usually, no medication is used (you wait for it to heal naturally), and the condition recovers to an unnoticeable level after 2 to 3 weeks.
<結果・考察>
観察結果を図14(患者1)と図15(患者2)に示す。患者1では塗布3日目には明らかな改善を認め、塗布5日目には完治に近い状態になった(図14)。また、患者2の場合、塗布2日目から治療効果が認められ、塗布8日目にはほぼ完治した。このように、口唇ヘルペスに対してMGDG調製物は優れた治療効果を発揮した。特筆すべきは、市販薬を凌駕するともいえる驚くべき治療効果が示されたこと(患者1)である。<Results/Discussion>
The observation results are shown in FIG. 14 (patient 1) and FIG. 15 (patient 2). In
10.MGDG調製物中の成分の同定1
HPLC分析により、コッコミクサ sp. KJ株MGDG調製物には5種類のMGDG(MGDG1、MGDG2、MGDG3、MGDG4、MGDG5と呼称する)が含まれていると推定された。これらのMGDGの構造を明らかにすべく、ガスクロマトグラフィー(GC/FID)を利用して脂肪酸組成を分析した。分析にはBPX90カラム(長さ100m×内径0.25mm、膜厚0.25μm)を使用し、水素をキャリアガスとした。同定用標準試料にはFAME Standard(F.A.M.E. Mix, C4-C24, SUPELCO社製)とMGDG(MGDG plant, Avanti社製)を用いた。10. Identification of components in
HPLC analysis estimated that the MGDG preparation of Coccomyxa sp. KJ strain contained five types of MGDG (referred to as MGDG1, MGDG2, MGDG3, MGDG4, and MGDG5). In order to clarify the structure of these MGDGs, the fatty acid composition was analyzed using gas chromatography (GC/FID). A BPX90 column (
各サンプル(MGDG1、MGDG2、MGDG3、MGDG4、MGDG5)のクロマトグラムを図16~20に示す。ここで、C6:0については、一般的な脂質の脂肪酸組成は近接した炭素数(偶数)の脂肪酸も合わせて含まれていることが通常であるところ、今回の分析ではそれらがほとんど検出されなかったため、同ピークは脂肪酸ではない可能性が高いと考えられた。また、Unknown1とUnknown2は、これらのピークの保持時間に検出される脂肪酸は一般的な脂質では想定し難いため、脂肪酸以外の成分である可能性が高いと考えられた。一方、保持時間から、Unknown3及びUnknown4はそれぞれC16:2及びC18:2(n-6以外)と推定された。 Chromatograms of each sample (MGDG1, MGDG2, MGDG3, MGDG4, MGDG5) are shown in Figures 16 to 20. Regarding C6:0, the fatty acid composition of common lipids usually includes fatty acids with adjacent even number of carbon atoms, but these were hardly detected in this analysis. Therefore, it was thought that there was a high possibility that the same peak was not a fatty acid. In addition, Unknown1 and Unknown2 were considered to be highly likely to be components other than fatty acids, since the fatty acids detected at the retention times of these peaks are difficult to imagine in common lipids. On the other hand, based on the retention time, Unknown3 and Unknown4 were estimated to be C16:2 and C18:2 (other than n-6), respectively.
分析の結果を以下の表3、表4に示す。表3は、各サンプルの脂肪酸組成比を面積百分率法で示したものである。表4はC6:0と不明成分1、2(Unknown1, 2)を除外して算出した結果をまとめたものである。尚、MGDG3については、二つの成分の面積比が3:1と極端に偏っている。これは、脂肪酸残基の組み合わせが、(C18:2(n-6以外)とC18:2(n-6以外))と(C18:2(n-6以外)とC18:3 n3)である2種のMGDGがおよそ1:1の割合で混合していると解釈できる。
以上の通り、MGDG調製物には、(1)構成脂肪酸がC16:3とC18:3(n-3)のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG1)、(2)構成脂肪酸がC16:2とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG2)、(3)構成脂肪酸がC18:2とC18:3(n-3)のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG3)、(4)構成脂肪酸がC18:2とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG3)、(5)構成脂肪酸がC16:2とC18:2(n-6)のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG4)、及び(6)構成脂肪酸がC18:2(n-6)とC18:3(n-3)のモノガラクトシルジアシルグリセロール(MGDG5)が含有されていることが明らかとなった。 As mentioned above, MGDG preparation contains (1) monogalactosyldiacylglycerol (MGDG1) whose constituent fatty acids are C16:3 and C18:3 (n-3), (2) constituent fatty acids are C16:2 and C18:2. (3) Monogalactosyldiacylglycerol (MGDG3) whose constituent fatty acids are C18:2 and C18:3 (n-3), (4) Monogalactosyldiacylglycerol (MGDG3) whose constituent fatty acids are C18:2 and C18:2. Monogalactosyldiacylglycerol (MGDG3), (5) Monogalactosyldiacylglycerol (MGDG4) whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:2(n-6), and (6) Monogalactosyldiacylglycerol (MGDG4) whose constituent fatty acids are C18:2(n-6). and C18:3(n-3) monogalactosyldiacylglycerol (MGDG5).
11.MGDG調製物中の成分の同定2
トリプル四重極LC/MSシステムを用い、コッコミクサ sp. KJ株MGDG調製物に含まれるMGDGの構造を更に詳細に調べた。
<解析条件>
装置名:トリプル四重極LC/MSシステム
LCカラム:YMC Triant C-18(長さ100mm×内径2.1mm、粒子径1.9μm)
移動相:メタノール、アセトニトリル、水、酢酸アンモニウム
イオン源:ESI
測定モード:MS2 scan、Product ion scan11. Identification of components in
Using a triple quadrupole LC/MS system, the structure of MGDG contained in the MGDG preparation of Coccomyxa sp. KJ strain was investigated in more detail.
<Analysis conditions>
Equipment name: Triple quadrupole LC/MS system
LC column: YMC Triant C-18 (length 100mm x inner diameter 2.1mm, particle size 1.9μm)
Mobile phase: methanol, acetonitrile, water, ammonium acetate Ion source: ESI
Measurement mode: MS2 scan, Product ion scan
<結果>
分取液体クロマトグラフィー(PLC)で検出した5種のMGDGに加え(10.MGDG調製物中の成分の同定1の欄を参照))、トリプル四重極LC/MS解析により、新たに6個目のMGDGを検出した。これらのMGDG(6個のピーク)について、MS scanとProduct ion scanの結果から、各MGDG(ピーク1:MGDG1、ピーク2:MGDG2、ピーク3:MGDG3、ピーク4:MGDG4、ピーク5:MGDG5、ピーク6:MGDG6)を構成する2つの脂肪酸側鎖を同定することができた。各MGDGの脂肪酸側鎖を以下の表に示す。
In addition to the five MGDGs detected by preparative liquid chromatography (PLC) (see
12.各MGDG画分の殺ウイルス活性
MGDG調製物を構成する各MGDG(MGDG1~MGDG5)の殺ウイルス活性を比較した。
<方法>
(1)コッコミクサ sp. KJ株由来のMGDG調製物をHPLCに供し、各ピークを分取することで5種のMGDG精製物(MGDG1、MGDG2、MGDG3、MGDG4、MGDG5)を得た。また、分取前のMGDG調製物(MGDG1~MGDG5を含有する)をMix品として準備した。
(2)各ウイルス液(2×105 PFU/ml)に対し、終濃度50μg/mlとなるように各サンプルを混合し、37℃にて60分間静置した。使用したウイルス及び宿主細胞を表6に示す。
(4)プラークの出現を確認後、ニュートラルレッド液で細胞を固定・染色し、顕微鏡下でプラーク数を測定した。サンプルを添加しなかった場合のウイルスの出現数を基準(100%)とし、各サンプルのウイルス残存率を算出した。ウイルス残存率から各サンプルの殺ウイルス性能を評価した。12. Viricidal activity of each MGDG fraction
The virucidal activity of each MGDG (MGDG1 to MGDG5) constituting the MGDG preparation was compared.
<Method>
(1) An MGDG preparation derived from Coccomyxa sp. KJ strain was subjected to HPLC, and each peak was fractionated to obtain five types of MGDG purified products (MGDG1, MGDG2, MGDG3, MGDG4, MGDG5). In addition, the MGDG preparation (containing MGDG1 to MGDG5) before fractionation was prepared as a Mix product.
(2) Each sample was mixed with each virus solution (2×10 5 PFU/ml) so that the final concentration was 50 μg/ml, and the mixture was allowed to stand at 37° C. for 60 minutes. Table 6 shows the viruses and host cells used.
(4) After confirming the appearance of plaques, the cells were fixed and stained with neutral red solution, and the number of plaques was measured under a microscope. The virus survival rate of each sample was calculated using the number of viruses that appeared when no sample was added as a standard (100%). The virucidal performance of each sample was evaluated based on the virus residual rate.
<結果・考察>
標的のウイルスによって活性の違いはあるものの、MGDG調製物(Mix品)及びMGDG1~MGDG5の全てについて殺ウイルス(不活化)活性が認められた(図21)。インフルエンザウイルスと単純ヘルペスウイルス2型に対して、MGDG5はMGDG調製物(Mix品)と比較した有意な不活化効果を示した。エンベロープを持たないネコカリシウイルス及びポリオウイルスでは他のサンプルよりも有意に高い活性を示すものはなかった。以上の結果は、MGDG調製物及びそれを構成する各MGDGに殺ウイルス活性があることを裏付けるとともに、MGDG5がインフルエンザウイルスや単純ヘルペスウイルス2型等、エンベロープを持つウイルスに対して特に高い殺ウイルス活性を発揮することを示す。<Results/Discussion>
Although there were differences in activity depending on the target virus, virucidal (inactivating) activity was observed for the MGDG preparation (Mix product) and all of MGDG1 to MGDG5 (FIG. 21). MGDG5 showed a significant inactivating effect on influenza virus and herpes
13.各種MGDG調製物の成分比較
コッコミクサ sp. KJ株MGDG調製物、クロレラ・ブルガリスMGDG調製物、ナンノクロロプシス・オキュラータMGDG調製物、アルスロスピラ・プラテンシス(スピルリナ)MGDG調製物、ユーグレナ・グラシリスMGDG調製物及びホウレンソウMGDG調製物を逆相HPLCで分析し、含有成分(MGDG)を比較した。
<HPLC分析条件>
装置名:Alliance2695
カラム:YMC-Actus Triart C18
移動相:メタノール、水、アセトニトリル混合溶液
検出波長:205nm13. Comparison of components of various MGDG preparations Coccomyxa sp. KJ strain MGDG preparation, Chlorella vulgaris MGDG preparation, Nannochloropsis oculata MGDG preparation, Arthrospira platensis (Spirulina) MGDG preparation, Euglena gracilis MGDG preparation and Spinach MGDG preparations were analyzed by reverse-phase HPLC and the content (MGDG) was compared.
<HPLC analysis conditions>
Device name: Alliance2695
Column: YMC-Actus Triart C18
Mobile phase: methanol, water, acetonitrile mixed solution Detection wavelength: 205nm
HPLCの測定結果(クロマトグラム)を図22及び図23に示す。クロマトグラムの縦軸は、各サンプルにおけるピーク最大値が1となるように規格化している。
・KJ株のMGDG調製物には、少なくとも5本のピークが検出された。一方、KJ株以外の各生物のMGDG調製物にも、KJ株のMGDG調製物と保持時間が一致するか、または非常に近いピークが少なくとも1本検出された。保持時間が一致するピークについてはKJ株由来のMGDGと同じ化学構造を有すると推定される。
・KJ株MGDG調製物由来の5本のピークにはHSV-2、IFV及びFCVに対する殺ウイルス活性が認められている(12.の実験、図21)。上記の通り、KJ株以外の各生物のMGDG調製物には、KJ株MGDG調製物由来の5本のピークに対応するピークが少なくとも1本認められるため、同様に殺ウイルス活性を有すると推察される。即ち、これらのMGDG調製物にもKJ株MGDG調製物と同様の効果を期待できる。尚、KJ株MGDG調製物の5番目のピークはHSV-2、IFVに対し、高い殺ウイルス活性を持つことがわかっている(図21)。The HPLC measurement results (chromatograms) are shown in FIGS. 22 and 23. The vertical axis of the chromatogram is normalized so that the maximum peak value in each sample is 1.
-At least 5 peaks were detected in the MGDG preparation of KJ strain. On the other hand, in the MGDG preparations of each organism other than the KJ strain, at least one peak whose retention time matched or was very close to that of the MGDG preparation of the KJ strain was detected. The peaks with matching retention times are estimated to have the same chemical structure as MGDG derived from KJ strain.
-Virucidal activity against HSV-2, IFV and FCV was observed in the five peaks derived from KJ strain MGDG preparation (
本発明の殺ウイルス剤は、ウイルス粒子の破壊による不可逆的不活化作用を期待できるものであり、特定のウイルスだけでなく、複数のウイルスに対して殺傷作用を示す。本発明の殺ウイルス剤には、広範な用途(例えばノロウイルス、単純ヘルペスウイルス、インフルエンザウイルス等の感染症の予防や治療)への利用が期待される。一方、本発明の殺ウイルス剤には、その有効成分が単細胞藻類(好ましくは微細藻類)由来の物質であるが故に高い安全性も期待できる。 The virucidal agent of the present invention can be expected to have an irreversible inactivation effect by destroying virus particles, and exhibits a killing effect not only on a specific virus but also on a plurality of viruses. The virucidal agent of the present invention is expected to be used in a wide range of applications (eg, prevention and treatment of infectious diseases such as norovirus, herpes simplex virus, and influenza virus). On the other hand, the virucide of the present invention can be expected to have high safety because its active ingredient is derived from unicellular algae (preferably microalgae).
この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。 This invention is in no way limited to the description of the embodiments and examples of the invention described above. This invention includes various modifications that can be easily conceived by those skilled in the art without departing from the scope of the claims. All contents of articles, published patent publications, patent publications, etc. specified in this specification are cited by reference.
Claims (6)
株又はその変異株由来のモノガラクトシルジアシルグリセロールの、殺インフルエンザウイルス剤又は殺ネコカリシウイルス剤の製造のための使用であって、
前記殺インフルエンザウイルス剤又は殺ネコカリシウイルス剤は、前記コッコミクサsp.KJ株又はその変異株のモノガラクトシルジアシルグリセロールを有効成分として含むことを特徴とする使用。 Kokkomixa sp. KJ
Use of monogalactosyldiacylglycerol derived from a strain or a mutant strain thereof for the production of an influenza virus killer or a feline calicivirus killer, comprising:
The influenza virus killing agent or the feline calicivirus killing agent is used for the influenza virus killing agent or the feline calicivirus agent. A use characterized by containing monogalactosyldiacylglycerol of KJ strain or its mutant strain as an active ingredient.
(1)構成脂肪酸がC16:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(2)構成脂肪酸がC16:2とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(3)構成脂肪酸がC18:3とC18:3のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(4)構成脂肪酸がC16:2とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール;
(5)構成脂肪酸がC18:3とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール;及び
(6)構成脂肪酸がC16:1とC18:2のモノガラクトシルジアシルグリセロール。 The use according to claim 1 , wherein the monogalactosyldiacylglycerol is one or more monogalactosyldiacylglycerols selected from the group consisting of the following (1) to (6):
(1) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:3 and C18:3;
(2) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:3;
(3) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:3;
(4) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:2 and C18:2;
(5) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C18:3 and C18:2; and (6) Monogalactosyldiacylglycerol whose constituent fatty acids are C16:1 and C18:2.
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