JP6950886B2 - 三胚葉の製造方法 - Google Patents
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Description
(1) 培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養することを含む、三胚葉のいずれかの製造方法。
(2) 前記三胚葉のいずれかが、内胚葉系細胞である(1)に記載の方法。
(3) 前記培地成分の少なくとも一部が、グルコースである、(1)又は(2)に記載の方法。
(4) 膜の分画分子量が500〜17,000である、(1)から(3)の何れか一に記載の方法。
(5) 前記第一領域と前記第二領域とが膜を隣接して配置され、前記膜を介して前記第一領域と前記第二領域との間で物質交換がなされる、(1)から(4)の何れか一に記載の方法。
(6) 第一領域の培地におけるグルコース濃度が培養中において1.0g/L以上に維持される、(1)から(5)の何れか一に記載の方法。
(7) 第一領域の培地における乳酸濃度が培養中において7mM以下に維持される、(1)から(6)の何れか一に記載の方法。
(8) 前記分化誘導因子が、少なくともTGFβスーパーファミリーシグナル活性化剤を含む、(1)から(7)の何れか一に記載の方法。
(9) 前記TGFβスーパーファミリーシグナル活性化剤が、アクチビンA、FGF2及びBMP4からなる群から選択される少なくとも1種類である、(8)に記載の方法。
(10) 第一領域におけるアクチビンAの添加初期濃度が、1ng/mL〜1,000ng/mLである、(9)に記載の方法。
(11) 第一領域におけるFGF2の添加初期濃度が、1ng/mL〜1,000ng/mLである、(9)又は(10)に記載の方法。
(12) 第一領域におけるBMP4の添加初期濃度が、1ng/mL〜1,000ng/mLである、(9)から(11)の何れか一に記載の方法。
(13) 前記分化誘導因子が、さらにWNTシグナル活性化剤を含む、(1)から(12)の何れか一に記載の方法。
(14) 多能性幹細胞が、iPS細胞である、(1)から(13)の何れか一に記載の方法。
(15) 前記第一領域と前記第二領域が培地を含み、第一領域の培地量と第二領域の培地量の体積比が、1:100から1:1である、(1)から(14)の何れか一に記載の方法。
(16) 前記第一領域における細胞の密度が、10の5乗〜10の7乗cells/mLである、(1)から(15)の何れか一に記載の方法。
本発明の方法においては、多能性幹細胞を培養することによって三胚葉のいずれか(内胚葉系細胞、中胚葉系細胞、又は外胚葉系細胞)の細胞集団を製造する。
多能性幹細胞とは、生体を構成する全ての種類の細胞に分化することができる多分化能(多能性)を有する細胞であって、適切な条件下のインビトロ(in vitro)での培養において多能性を維持したまま無限に増殖を続けることができる細胞をいう。具体的には胚性幹細胞(ES細胞)、胎児の始原生殖細胞由来の多能性幹細胞(EG細胞:Proc Natl Acad Sci U S A.1998,95:13726−31)、精巣由来の多能性幹細胞(GS細胞:Nature.2008,456:344−9)、人工多能性幹細胞(induced pluripotent stem cells;iPS細胞)、ヒトの体性幹細胞(組織幹細胞)などが挙げられる。多能性幹細胞は、好ましくは、iPS細胞又はES細胞であり、より好ましくはiPS細胞である。
(i)Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子、Myc遺伝子
(ii)Oct遺伝子、Sox遺伝子、NANOG遺伝子、LIN28遺伝子
(iii)Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子、Myc遺伝子、hTERT遺伝子、SV40 largeT遺伝子
(iv)Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子
本発明の方法によれば、多能性幹細胞から三胚葉のいずれかを製造できる。
三胚葉としては、内胚葉系細胞、中胚葉系細胞、又は外胚葉系細胞のいずれでもよい。
内胚葉系細胞は、消化管、肺、甲状腺、膵臓、肝臓などの器官の組織、消化管に開口する分泌腺の細胞、腹膜、胸膜、喉頭、耳管、気管、気管支、尿路(膀胱、尿道の大部分、尿管の一部)などへと分化する。多能性幹細胞から内胚葉系細胞への分化は、内胚葉系細胞に特異的な遺伝子の発現量を測定することにより確認することができる。内胚葉系細胞に特異的な遺伝子としては、例えば、SOX17、FOXA2、CXCR4、AFP、GATA4、EOMES等を挙げることができる。
腸系では、クリプト細胞などの腸前駆細胞を得た場合には、これをカテーテルなどで移植することにより、潰瘍性大腸炎、クローン病、短腸症などの治療へ利用できる。
肝臓系では、例えばアルブミン産生細胞を得た場合には、これをカテーテルなどであるいは免疫遮断デバイスに封入して移植することにより、大量出血を伴う外傷治療などへ利用できる。
本発明においては、培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養する。
上記したメカニズムにより、第一領域1において多能性幹細胞の分化誘導を効率的に行うことが可能になる。
上記した膜を有する培養装置を用いて多能性幹細胞の分化誘導を行う前の多能性幹細胞は、未分化維持培地を用いて未分化性を維持したものとすることが好ましい。非分化誘導化培地を用いて多能性幹細胞の未分化性を維持する培養のことを、多能性幹細胞の維持培養ともいう。
多能性幹細胞の維持培養は継代しながら所望の期間行うことができ、例えば、維持培養後の継代数1〜100、好ましくは継代数10〜50、より好ましくは継代数25〜40の多能性幹細胞を用いることが好ましい。
本発明において、膜を用いた培養によって多能性幹細胞を三胚葉のいずれかに分化誘導する際には、分化誘導培地を使用して多能性幹細胞の培養を行う。分化誘導培地としては、多能性幹細胞を分化誘導させる培地であれば特に限定されるものではないが、例えば、血清含有培地や、血清代替成分を含有した無血清培地等が挙げられる。
分化誘導培地にはさらに分化誘導因子を添加する。分化誘導因子については後記する。
CO2インキュベーターなどを利用して、約1〜10%、好ましくは5%のCO2濃度雰囲気下で培養を行うことが好ましい。
第一領域の培地に添加する分化誘導因子は、分化誘導の目的に応じて、当業者であれば適宜することができる。即ち、多能性幹細胞から内胚葉系細胞を製造することを意図する場合には内胚葉への分化を誘導する分化誘導因子を添加すればよく、多能性幹細胞から中胚葉系細胞を製造することを意図する場合には、中胚葉への分化を誘導する分化誘導因子を添加すればよく、多能性幹細胞から外胚葉系細胞を製造することを意図する場合には、外胚葉への分化を誘導する分化誘導因子を添加すればよい。
TGFβスーパーファミリーシグナル活性化剤としては、アクチビンA、GDF8(Growth differentiation factor 8)及びBMP4(Bone morphogenetic protein 4)からなる群から選択される少なくとも1種類を使用することが好ましい。
(1)透析膜を底面にもつ透析培養容器の作製
気液界面培養に汎用的に使用されるカルチャーインサート膜(コーニングインターナショナル株式会社 353091)の底面に、分画分子量が3.5 kDの透析膜(素材:再生セルロース、メーカー:スペクトラムラボラトリーズ)をアロンアルファA(第一三共株式会社)で接着し、風乾させた。使用前にカップを滅菌バッグに入れ、EOG滅菌器(SEMMEL−380B)で滅菌した。
ヒト多能性幹細胞はTkDN4−M株(東京大学で樹立)を使用した。Vitronectin(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)をコートした細胞培養用ディッシュ上にヒト多能性幹細胞を播種し、培地はEssential 8TM(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)に抗生剤として最終濃度1%(体積/体積)のペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンB懸濁溶液(和光純薬工業株式会社)を添加して維持培養した。継代時の細胞剥離剤としては、Accutase(ライフテクノロジーズジャパン株式会社)を用いた。また、細胞播種時のみ、Culture sure Y−27632(和光純薬工業株式会社)を10μMとなるように添加した。培地交換は毎日実施した。実験には、継代数27−30のものを用いた。
ヒトiPS細胞を1mLあたり5×105個となるように分化誘導培地1(組成は後述する)で2.5mLの細胞懸濁液を調製し、透析培養容器に入れ、ディープウェル(コーニングインターナショナル株式会社355467)に組み込み一晩培養した。ディープウェル側には、分化誘導培地1のうち分化誘導因子を除いた培地を15mL入れた。分化誘導培地1には、RPMI1640、ペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンB懸濁液、FGF−2(リプロセル)、BMP4(ミルテニーバイオテク)、CHIR99021(和光純薬工業株式会社)、Activin A(R&Dシステムズ)を含有する。ディープウェル側の培地組成はRPMI1640、CHIR99021、ペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンB懸濁液を含有する。
透析培養によるヒト多能性幹細胞の内胚葉分化誘導5日目に細胞を一部回収し、自然沈降させたあと、上清除去した。TRIZOL試薬(Gibco)を使用して、凝集塊からRNAを抽出した。逆転写(RT)反応には、逆転写酵素(Toyobo)を用いて500 ngのRNAから逆転写を行なった(ASTEC PC320)。1μlの5倍希釈cDNA(逆転写産物の1/100に 相当)についてオリゴdTプライマー(ユーロフィンジェノミクス株式会社)およびKOD sybr qPCR master mix(東洋紡ライフサイエンス事業部)を用いて、リアルタイムPCR解析(Step One Plus)を行なった。リアルタイムPCRに用いたプライマーの塩基配列を表1に示す。
98℃(変性)で60秒、98℃(変性)で15秒、及び68℃(アニーリングと伸長)で30秒を5サイクル、98℃(変性)で15秒、60℃(アニーリング)で10秒、及び68℃(伸長)で30秒を40サイクル、その後95℃、60℃、98℃で順に融解曲線。
リアルタイムPCRの結果より、透析を行なうことで、未分化マーカーの遺伝子発現が低減し、内胚葉分化マーカーの遺伝子発現が向上した。すなわち、透析により、低分子量の栄養素の補充と老廃物の除去が効果的におこなわれたことによる分化誘導向上の可能性が示唆された。
培地交換の際に、培養上清を回収し、バイオアナライザー(王子計測機器株式会社BF−5iD)により培地中のグルコース濃度及び乳酸濃度を測定した。
2 培地
3 第二領域
4 培地成分の少なくとも一部
5 膜
Claims (15)
- 培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養することを含み、前記膜の分画分子量が500〜17,000である、三胚葉のいずれかの製造方法。
- 前記三胚葉のいずれかが、内胚葉系細胞である請求項1に記載の方法。
- 前記培地成分の少なくとも一部が、グルコースである、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記第一領域と前記第二領域とが膜を隣接して配置され、前記膜を介して前記第一領域と前記第二領域との間で物質交換がなされる、請求項1から3の何れか一項に記載の方法。
- 第一領域の培地におけるグルコース濃度が培養中において1.0g/L以上に維持される、請求項1から4の何れか一項に記載の方法。
- 第一領域の培地における乳酸濃度が培養中において7mM以下に維持される、請求項1から5の何れか一項に記載の方法。
- 前記分化誘導因子が、少なくともTGFβスーパーファミリーシグナル活性化剤を含む、請求項1から6の何れか一項に記載の方法。
- 前記TGFβスーパーファミリーシグナル活性化剤が、アクチビンA、FGF2及びBMP4からなる群から選択される少なくとも1種類である、請求項7に記載の方法。
- 第一領域におけるアクチビンAの添加初期濃度が、1ng/mL〜1,000ng/mLである、請求項8に記載の方法。
- 第一領域におけるFGF2の添加初期濃度が、1ng/mL〜1,000ng/mLである、請求項8又は9に記載の方法。
- 第一領域におけるBMP4の添加初期濃度が、1ng/mL〜1,000ng/mLである、請求項8から10の何れか一項に記載の方法。
- 前記分化誘導因子が、さらにWNTシグナル活性化剤を含む、請求項1から11の何れか一項に記載の方法。
- 多能性幹細胞が、iPS細胞である、請求項1から12の何れか一項に記載の方法。
- 前記第一領域と前記第二領域が培地を含み、第一領域の培地量と第二領域の培地量の体積比が、1:100から1:1である、請求項1から13の何れか一項に記載の方法。
- 前記第一領域における細胞の密度が、10の5乗〜10の7乗cells/mLである、請求項1から14の何れか一項に記載の方法。
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