JP6942313B2 - Cmv由来改変ウイルス様粒子 - Google Patents
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Description
過去30年間にわたり、ウイルス様粒子(VLP)は発展し、特にワクチン開発の分野で受け入れられる技術になってきた(Zeltins A,Mol Biotechnol(2013)53:92−107)。ますます大きくなるこれらのVLPへの関心は、特に、それぞれB型肝炎およびヒトパピローマウイルス(HPV)誘発子宮頸癌に対するB型肝炎ウイルス(HBV)表面抗原およびHPVカプシドタンパク質L1の市販ワクチンとしての開発と導入の成功により、高められた。さらに、ウイルス様粒子は、複合抗原に対して強力な免疫反応を誘発できる免疫キャリアとして特徴付けられてきた(Jennings GT and Bachmann MF,Annu Rev Pharmacol Toxicol(2009)49:303−26、Jennings GT and Bachmann MF,Biol Chem(2008)389:521−536、国際公開第2002/056905号、同第2003/024481号)。後者は、近い将来に、医学的および獣医学的目的のためのVLP系ワクチンを開発することを目的とした別の臨床的検討段階に入っている、いくつかのVLP系ワクチン候補をもたらした(Liu F,et al.,Research in Veterinary Science(2012)93:553−559;Roldao A.,et al.,Expert Review of Vaccines(2010)9:1149−1176)。
実施例1
キュウリモザイクウイルス(CMV)のコートタンパク質(CP)の単離とクローニング
ラトビアのリガの個人庭園から収集したCMV感染ユリ葉由来の総RNAをTRI試薬(Sigma,Saint Louis,USA)を使い、製造業者の推奨条件に従って単離した。cDNA合成のために、OneStep RT−PCRキット(Qiagen,Venlo,Netherlands)を使用した。CMV CP遺伝子の増幅のために、ジェンバンク由来のCMV配列の解析後、次のプライマー配列を選択した。CMcpF(CACCATGGACAAATCTGAA TCAACCAGTGCTGGT)(配列番号8)およびCMcpR(CAAAGCTTATCAAACTGGGAGCA CCCCAGATGTGGGA)(配列番号9);NcoIおよびHindIII部位にアンダーラインをした。対応するPCR産物をpTZ57R/Tベクター(Fermentas,Vilnius,Lithuania)に挿入した。大腸菌XL1−Blue細胞をクローニングおよびプラスミド増幅用の宿主として使用した。RT−PCRエラーを避けるために、BigDyeサイクルシークエンシングキットおよびABI Prism3100 Genetic analyzer(Applied Biosystems,Carlsbad,USA)を使って、いくつかのCP遺伝子含有pTZA57プラスミドクローンの配列を決定した。配列決定後、配列番号1のCMVコートタンパク質をコードする、配列エラーのないCMV CP遺伝子のcDNA(配列番号10)をpET28a(+)発現ベクター(Novagen,San Diego,USA)のNcoI/HindIII部位中にサブクローニングし、発現プラスミドpET−CMVwt(図1)を生成した。
CMV由来のVLPをもたらす大腸菌中の配列番号1のCPの発現
CMV VLPを得るために、大腸菌C2566細胞(New England Biolabs,Ipswich,USA)をCMV CP遺伝子含有プラスミドpET−CMVwtで形質転換した。最高の発現レベルの標的タンパク質を有するクローンを選択した後、大腸菌培養液を回転振盪機(200回転/分;Infors,Bottmingen,Switzerland)を使って、カナマイシン(25mg/l)含有2xTY培地中、30℃で0.8〜1.0のOD600まで増殖させたその後、細胞を0.2mMのIPTGで誘導し、培地を5mMのMgCl2で補充した。回転振盪機を使って、20℃で18時間、インキュベーションを継続した。得られたバイオマスを低速遠心分離により集め、−20℃で凍結した。氷上で解凍後、細胞を50mMのクエン酸ナトリウム、5mMのホウ酸ナトリウム、5mMのEDTA、5mMのメルカプトエタノール含有緩衝液(pH9.0、緩衝液A)中に懸濁し、超音波処置により粉砕した。不溶性タンパク質および壊死組織片を遠心分離(13,000rpm、5℃で30分)により除去した。透明化したライセート中の可溶性CMV CPタンパク質を、飽和硫酸アンモニウム(1:1、vol/vol)を+4℃で一晩使用してペレット化した。沈殿したタンパク質を同じ緩衝液A(メルカプトエタノール不含)中、+4℃で4時間可溶化した。不溶性タンパク質を低速遠心分離(13,000rpm、4℃で15分)により除去した。ショ糖勾配(緩衝液A中の20〜60%のショ糖、メルカプトエタノール不含、0.5%トリトンX−100を補充)中の超遠心分離(SW28ローター、Beckman,Palo Alto,USA;25,000rpm、6時間、5℃)により可溶性CMV CP含有タンパク質溶液を細胞タンパク質から分離した。勾配液の底部から開始して、勾配液を6つの画分に分割し、画分をSDS−PAGEにより分析した(図2)。組換え型CMV CPを含む画分No.2およびNo.3を合わせて、200倍量の緩衝液(5mMのホウ酸ナトリウム、2mMのEDTA、pH9.0)に対して透析し、ショ糖およびトリトンX−100を除去した。透析後、0.2μmフィルタを通した濾過によりCMV CP溶液を滅菌した。次に、無菌条件下で20%ショ糖「クッション」を通すType70ローター(Beckman,Palo Alto,USA)超遠心分離(50,000rpm、+5℃、4時間)を使って、CMV CPを濃縮した。精製されたCMVwtの濃度は、製造業者推奨条件(Invitrogen,Eugene,USA)に従ってQuBit蛍光光度計を使って推定した。濃縮VLP溶液(約3mg/ml)を4℃で5mMのホウ酸ナトリウム、2mMのEDTA緩衝液(pH9.0)中に貯蔵した。VLPの発現および精製に関する全ステップを12.5%ゲルを使ったSDS−PAGEによりモニターした。
破傷風トキソイドエピトープ含有CMV(CMV−Ntt830)の改変コートタンパク質のクローニング
配列番号1のCMV CPのN末端の元のアミノ酸を外来性エピトープ配列で置き換えるために、PCR増幅および変異誘発のテンプレートとして、pET−CMVwtプラスミドを使用した。CMVwt遺伝子の内部に位置するにSalI部位(図1)をPCR産物に対応するクローニングのために使用した。
CMV由来改変VLPをもたらす大腸菌中でのCMV−Ntt830の発現
CMV−Ntt830の発現および精製の手順は、実質的にCMVwtに対する物と同じとし、これは実施例2に記載されている。CMV VLP中の破傷風エピトープの存在を示すために、精製されたCMV−Ntt830 VLPの質量分析を使用した。図4Cに示すように、第1メチオニンが大腸菌細胞でのタンパク質合成中に除去される場合には、得られる主ピークは、タンパク質の理論的分子量に相当する。動的光散乱および電子顕微鏡分析により、CMVwt VLPに類似の等軸粒子形態が確認される(図5)。
PADREエピトープ含有CMV(CMV−Npadr)の改変コートタンパク質のクローニング
CMVwt遺伝子中にPADREエピトープコード配列を導入するために、増幅およびサブクローニングのテンプレートとしてpET−CMVwtプラスミドを使用してPCR変異誘発を実施した(実施例3も参照されたい)。増幅用として、次のプライマーを使用した:pET−220(配列番号11)およびCMV−padrSal−R(GACGTCGACGCGCGGCCGCCTTGAGGGTCCACGCGGCCACAAATTT CGCCATGGT)(配列番号15)。得られたPCR産物(配列番号7のCMV−Npadrをコードする配列番号16のcDNA)をpET−CMVwtのBglII/SalI部位中に再度サブクローン化した。正確なクローンを配列決定により特定し、pET−CMV−Npadrと表記した。
CMV由来改変VLPをもたらす大腸菌中でのCMV−Npadrの発現
CMV−Npadrの発現および精製の手順は、実質的にCMVwtに対するものと同じとし、これは実施例2に記載されている。CMV VLP中のPADREエピトープの存在を示すために、精製されたCMV−Npadr VLPの質量分析を使用した。図4Bに示すように、第1メチオニンが大腸菌細胞でのタンパク質合成中に除去される場合には、得られる主ピークは、タンパク質の理論的分子量に相当する。動的光散乱および電子顕微鏡分析により、CMVwtおよびCMV−Ntt830 VLPとは少し異なる等軸粒子形態が確認される(図6)。
CMVwt、CMV−Ntt830およびCMV−Npadrによるマウスの免疫化
4匹の雌BALB/cマウスからなる群を、CMVwt、CMV−Npadr VLPおよびCMV−Ntt830 VLPのいずれかで免疫化した。VLPを150mMのPBS(pH7.4)中に配合し、150μlを0日目および7日目にi.v.注射した。CMVwt、CMV−Npadr VLPおよびCMV−Ntt830 VLPを次の3種の量:10、1または0.1μgで注射した。マウスから、0日目(免疫前)、7日目、14日目、および25日目に採血し、CMVwt VLP、CMV−Npadr VLPおよびCMV−Ntt830 VLP特異的ELISAを使って、血清を分析した。全ての免疫血清を、免疫化に使用したそれぞれのVLPに対して試験した。
示した時間でのマウス血清の抗体応答を分析した。CMVwt、CMV−Npadr VLPおよびCMV−Ntt830 VLP特異的抗体力価の決定のために、ELISAプレート(Nunc Immuno MaxiSorp,Rochester,NY)をコーティング緩衝液(0.1Mの炭酸水素ナトリウム緩衝液、pH9.6)中の100μlの対応するVLP(1μg/mL)を使って、4℃で一晩コーティングした。非特異的結合を回避するために、ELISAプレートを200μlのPBST中2%BSAでブロッキングし、室温で2時間インキュベートした。血清試料を2%BSA/PBSTで希釈した。予め希釈された血清をコーティングしたプレートに移し、さらに系列希釈して、OD50の計算による抗体力価を得た。室温で2時間のインキュベーション後、ELISAプレートを200μlのPBSTで5回洗浄した。血清抗体の結合を西洋わさびペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスIgG(Jackson ImmunoResearch)により検出した。検出抗体を2%BSA/PBSTで1:1000に希釈し、試料当たり100μlの体積を移した。プレートを室温で1時間インキュベートした。ELISAプレートを以前に述べたように洗浄した。洗浄前に、基質溶液を調製した。この目的のために、1錠(10mg)のOPD(1,2−フェニレンジアミンジヒドロクロリド)および9μlの30%H2O2を25mlのクエン酸緩衝液(0.066MのNa2HPO4、0.035Mのクエン酸、pH5.0)に溶解した。100μlの体積の基質溶液をプレートにピペットで採取し、室温で7分間正確にインキュベートした。反応を停止させるために、50μlの停止液(H2O中の5%H2SO4)をプレートにピペットで直接加えた。1,2−フェニレンジアミンジヒドロクロリドカラー反応の450nmでの吸光度読み値を解析した。図7は、CMVwt(図7A)、CMV−Npadr(図7B)およびCMV−Ntt880(図7C)特異的抗体を用量依存的様式で示す。
組換え型Fel d1コンストラクトのVLP CMV−NpadrおよびVLP CMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応
rFel d1(配列番号17)の共有結合融合を以前記載したように生成した(Schmitz N,et al.,J Exp Med(2009)206:1941−1955)。手短に言えば、鎖2および鎖1の共有結合ダイマーをコードした相補的なDNAであって、Fel d1の鎖2がそのC末端を介して、15aaリンカー(GGGGS)3の間隔を置いて、Fel d1の鎖1のN末端に融合される相補的なDNAが、一連のオーバーラップしているDNAプライマーを使って、PCR増幅により得られた(このコンストラクトを「rFel−2−G3−1−コンストラクト」と命名する)。この相補的DNAをインフレームで改変バージョンのpET−42a(+)(EMD)中に挿入し、rFel−2−G3−1−コンストラクトのC末端に、LEHHHHHHGGC(配列番号35)のコード配列を付加した。付加配列は、精製用のヒスチジンタグ、続けて、このFel d1融合タンパク質のCMV−NpadrおよびCMV−Ntt830へのカップリングに使用されるGGCリンカーを含む。
5匹の雌Balb/cマウスからなる群を、SMPHを介してrFel d1に結合したCMV−Npadr VLPおよびCMV−Ntt830 VLPのいずれかで免疫化した。5μgの量のrFel d1−CMV−NpadrおよびrFel d1−CMV−Ntt830を、それぞれ150mMのPBS、pH7.4中で150μlに希釈し、0日目および7日目に静脈内に注射した。マウスから、0日目(免疫前)、7日目、14日目、および25日目に採血し、Fel d1特異的ELISAを使って、血清を分析した。
示した時間でのマウス血清の抗体応答を分析した。ELISAプレートを、PBS(pH7.2)中の1μg/mLの濃度の100μlを使って、4℃下、一晩コーティングすることにより、Fel d1に特異的な抗体を分析した。0.05%のツイーン20を含む200μlのPBS(pH7.2、PBST)でELISAプレートを5回洗浄した。非特異的結合を回避するために、ELISAプレートを200μlのPBST中2%BSAでブロッキングし、室温で2時間インキュベートした。血清試料を2%BSA/PBSTで希釈した。予め希釈された血清をコーティングしたプレートに移し、さらに系列希釈して、OD50の計算による抗体力価を得た。室温で2時間のインキュベーション後、ELISAプレートを200μlのPBSTで5回洗浄した。血清抗体の結合を西洋わさびペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスIgG(Jackson ImmunoResearch)により検出した。検出抗体を2%BSA/PBSTで1:1000に希釈し、試料当たり100μlの体積を移した。プレートを室温で1時間インキュベートした。ELISAプレートを以前に述べたように洗浄した。洗浄前に、基質溶液を調製した。この目的のために、1錠(10mg)のOPD(1,2−フェニレンジアミンジヒドロクロリド)および9μlの30%H2O2を25mlのクエン酸緩衝液(0.066MのNa2HPO4、0.035Mのクエン酸、pH5.0)に溶解した。100μlの体積の基質溶液をプレートにピペットで採取し、室温で7分間正確にインキュベートした。反応を停止させるために、50μlの停止液(H2O中の5%H2SO4)をプレートにピペットで直接加えた。1,2−フェニレンジアミンジヒドロクロリドカラー反応の450nmでの吸光度読み値を解析した。図8は、本発明の組成物rFel d1−CMV−Npadr(図8A)およびrFel d1−CMV−Ntt830(図8B)により、Fel d1特異的抗体がマウス中で誘導されたことを示す。
α−シヌクレインのCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
配列番号22のα−シヌクレインペプチドの、CMV−Ntt830(配列番号6)から形成されたVLPへのカップリングを次のように行った。20mMのヘペス、50mMのNaCl、pH7.3中の1mg/mlのCMV−Ntt830の1mlの溶液を、室温で、79.3mlのSMPH溶液(DMSO中の10mM)と60分間反応させた。同様に、20mMのヘペス、50mMのNaCl(pH7.3)中の1mg/mlのCMV−Ntt830の1mlの溶液を、室温で、79.3mlのSulfo−KMUS溶液(20mMのヘペス中の10mM、pH7.4)と60分間反応させた。反応物を3倍の2Lの20mMのヘペス、50mMのNaCl、pH7.3に対し、2時間、14時間および10kDaのMWCOを有するSlide−A−Lyzer透析カセット中で2時間、4℃で透析を行った。800μlの誘導体化および透析CMV−Ntt830溶液を、21.5μlのα−シヌクレインペプチド(22.32mg/ml)と混合し、化学架橋のために、500rpmの振盪Eppendorf Thermomixerを使って、室温で3時間インキュベートした。カップリング反応物を4℃、20000xgで10分間の遠心分離により清澄化した。誘導体化CMV−Ntt830コートタンパク質およびカップリング生成物を、還元条件下、NuPAGE(登録商標)4〜12%ビス−トリスゲルを使ったSDS−PAGE分析により分析した。その後、クマシー染色したゲル剤の濃度分析を実施した。CMV−Ntt830コーティングモノマーに比較して、増加した分子量を示すいくつかのバンドが認められ、α−シヌクレインペプチドのCMV−Ntt830への架橋に成功したことを明確に示している(クマシー染色したNuPAGE(登録商標)、図示せず)。結合密度は、1.0を超え、カップリング効率は約60%であった。誘導体化およびカップリング後のCMV−Ntt830 VLPの健全性を試験するために、誘導体化CMV−Ntt830およびカップリング生成物を、1xTAEを使って、続けて、クマシー染色および臭化エチジウム染色を使って、1%アガロースゲル電気泳動により分析した。誘導体化およびカップリングCMV−Ntt830 VLPのタンパク質バンドおよび核酸バンドは、それぞれ、同時移動し、非誘導体化および非カップリングCMV−Ntt830と類似の移動挙動を示す。コートタンパク質と核酸との同時移動は、CMV−Ntt830 VLPがまだ無傷であり、核酸がCMV−Ntt830 VLPから放出されなかったことを明確に示した。
4匹の雌C57B/6マウスの群を、SMPHを介してα−シヌクレインペプチド(配列番号22)に結合したCMV−Ntt830 VLPで免疫化した。250μgの量の総タンパク質を、150mMのPBS、pH7.4中で150μlに希釈し、0日目および14日目にi.v.注射した。マウスから、0日目(免疫前)、7日目、14日目、21日目、28日目、および34日目に採血し、α−シヌクレイン特異的ELISAを使って、血清を分析した。
化学架橋剤sulfo−SPDPを使って、α−シヌクレインペプチドをウシRNアーゼAに結合した。ELISAプレートを5μg/mlの濃度のα−シヌクレインペプチド結合RNアーゼ配合物でコーティングした。プレートをブロッキングした後、系列希釈マウス血清と共にインキュベートした。結合抗体を酵素標識抗マウスIgGで検出した。対照として、同じマウスの免疫前血清を同様に試験した。全マウスは、図9に見られるように、α−シヌクレイン由来ペプチドに対し明確で強力なIgG応答をした。
IL−17AペプチドのCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
マウスIL17Aタンパク質(配列番号20)のCMV−Ntt830コートタンパク質(配列番号6)へのカップリングを行った。mIL−17タンパク質は、2ステップ法により、CMV−Ntt830に共有結合した。第1ステップでは、CMV−Ntt830 VLP(50mMのNaH2PO4中2mg/ml、10%グリセロール、pH7.4)を、室温で、等モル量のヘテロ二機能性化学架橋剤スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)と60分間反応させた。おなじ緩衝液(50mMのNaH2PO4、10%グリセロール、pH7.4)を使って、PD−10脱塩カラムを備えたゲル濾過により未反応の架橋剤を除去した。コンジュゲーションステップの前に、精製mIL−17タンパク質を室温で5分間、10倍過剰のトリ(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP−HCl)と共にインキュベートし、リンカー中の全てのシステイン残基を還元した。その後、等モル量のmIL−17タンパク質とVLPを室温で3時間反応させることにより、mIL−17タンパク質を誘導体化VLPに共有結合させた。ワクチンをSDS−PAGE、続けて、クマシー染色および抗Hisタグ抗体とのイムノブロッティングにより分析した。カップリング反応の種々の成分に対応するクーマシーブルー染色バンドの強度をデンシトメトリーにより測定し、カップリング効率の計算に使用した。モノマーの誘導体化CMV−Ntt830は、離れた28kDaバンドとして移動し、一方、CMV−Ntt830−mIL−17コンジュゲートは、45kDa(28kDaのCMV−Ntt830モノマー+17kDaのmIL−17タンパク質)に移動した。SDS−PAGEおよびクマシー染色による解析により、CMV−Ntt830コートタンパク質と比較していくつかの増加した分子量のバンドが認められ、IL−17タンパク質のCMV−Ntt830 VLPへの架橋に成功したことを示している。カップリング効率は、mIL−17に結合したCMV−Ntt830モノマー(45kDaバンド)の、総CMV−Ntt830モノマー(28と45kDaバンドの合計)に対する比として定義される。カップリング効率は、少なくとも15.3%と決定され、6.5分子CMV−Ntt830当たり1分子のmIL−17に相当する。この方式で計算されたカップリング効率は、カップリングの程度の最小推定である。理由は、この方式が、2つ以上のmIL−17分子に結合したCMV−Ntt830モノマーを考慮していないためである。したがって、IL−17Aなどの目的のタンパク質は、効率的にCMV−Ntt830 VLPに結合できる。
3匹の雌BALB/cマウスの群を、マウスIL17Aタンパク質に結合したCMV−Ntt830コートタンパク質で免疫化した。20μgの量の総タンパク質を、PBS、pH7.4中で150μlに希釈し、0日目および14日目に静脈内に注射した。マウスから、0日目(免疫前)、7日目、14日目、21日目、および34日目に採血し、マウスIL17A特異的ELISAを使って、血清を分析した。
ELISAプレートを1μg/mlの濃度のマウスIL17Aでコーティングした。プレートをブロッキングした後、0日目、4日目、14日目、21日目および34日目に採取した系列希釈マウス血清と共にインキュベートした。結合抗体を酵素標識抗マウスIgG抗体で検出した。450nmで最大半減光学密度に達するそれらの希釈液の平均として、マウス血清の抗体力価を計算した。IL17Aに結合したCMV−Ntt830 VLPで免疫化したマウスは、IL17タンパク質に対し強力な免疫反応を開始した(図10)。
上述のようにCMV−Ntt830に結合したマウスIL17で免疫したマウスの血清を、マウスIL17Aタンパク質のIL−17レセプターに対する結合を阻害するそれらの能力に関して試験する。したがって、ELISAプレートを1μg/mlの濃度のマウスIL−17レセプターAタンパク質でコーティングした。35日目に採取した系列希釈のマウス血清を10ng/mLのビオチン化マウスIL−17Aと1時間プレインキュベートした後、IL−17レセプターAをコーティングしたプレートに加えた。IL−17のレセプターへの結合を、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンで検出する。450nmで最大半減光学密度に達するそれらの血清希釈液の平均として、中和抗体価を計算する。
雌SJLマウスを上述のようにして免疫化し、最後の免疫化の1週間後に完全フロインドアジュバントと混合した100μgのPLPペプチドを皮下に注射した。同じ日に、全マウスに400ngの百日咳毒素を腹腔内に注射した。次のスキームに従って、神経学的症状の発症に対し、毎日マウスをスコア化した。0,臨床的疾患なし;0.5、尾端のひきずり;1、尾完全ひきずり;1.5、尾ひきずりおよび後肢脱力(後肢の不安定歩行および不十分なにぎり);2、片側性部分的後肢運動麻痺;2.5、両側性部分的後肢運動麻痺;3、完全な両側性後肢運動麻痺;3.5、完全な両側性後肢運動麻痺および片側性前肢運動麻痺;4、後肢および前肢の全体運動麻痺。上述のようにCMV−Ntt830−mIL17AまたはCMV−Ntt830で免疫化したマウスの平均臨床的スコアを評価する。CMV−Ntt830−mIL17A免疫化マウスは、CMV−Ntt830免疫化マウスに比べて、53日目と61日目との間で臨床症状を大きく低減した。これは、CMV−Ntt830−mIL17Aでの免疫化により生成した抗IL−17抗体が多発性硬化症のマウスモデルの臨床症状を改善できることを示している。
マウスIL−5のCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
記載のようにIL−5を発現させ、精製した(Zou Y,et al.,Vaccine 28(2010)3192−3200)。mIL−5(配列番号23)の配列番号6の改変CPを有するVLP CMV−Ntt830へのカップリングを次のように行った。IL−5に結合させるために、CMV−Ntt830 VLPを、最初に30倍過剰のヘテロ二機能性化学架橋剤、スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)で誘導体化した。非結合SMPHをPBSに対する透析により除去した。PBS(pH8.0)中の等モル量のトリ(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP)を使ってrIL−5を1時間還元した。還元したrIL−5(80μM)を、40μMのSMPH誘導体化CMV−Ntt830と共に22℃で4時間インキュベートした。反応物をPBS pH8.0に対し12時間透析した。
4匹の雌Balb/cマウスの群を、SMPHを介してIL−5(配列番号23)に結合したCMV−Ntt830 VLPのいずれかで免疫化した。50μgの総タンパク質を、20mMのヘペス、50mMのNaCl(pH7.3)中で200μlに希釈し、0日目および14日目に皮下に注射した(両腹側に2箇所に100μl)。マウスから、0日目(免疫前)、14日目、および21日目に採血し、IL−5およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清を分析した。
ELISAプレートを10μg/mlの濃度のIL−5または2μg/mlの濃度のCMV−Ntt830 VLPでコーティングした。プレートをブロッキングした後、系列希釈マウス血清と共にインキュベートした。結合抗体を酵素標識抗マウスIgGで検出した。対照として、同じマウスの免疫前血清を同様に試験した(デーは示さず)。全マウスは、ペプチドならびにCMV−Ntt830に対し明確で強力なIgG応答をした。
アレルギー性気道炎症を誘導するために、雌BALB/cマウス(群当たり5匹)に、2mgのミョウバン(水酸化アルミニウムゲルアジュバント、Brenntag Biosector,Denmark)と混合した10μgのOVA(Grade V、Sigma−Aldrich)を注射(i.p.)した。10日後、100μgのOVAを4日間、マウスに鼻腔内投与した。最後の投与の24時間後、気管支肺胞洗浄を行い、肺を組織学検査に供した。OVAおよびミョウバンをi.p.注射したが、OVAを鼻腔内投与しなかったマウスは、これらの実験の疾患誘導のための陰性対照としての役割を持たせた。
CMV−Ntt830ウイルス様粒子へのM2ペプチドのカップリング
PBS/10%グリセロール(pH7.2)中の1mg/mlの配列番号6の改変CPを有するCMV−Ntt830 VLPの2mlの溶液を、室温で、42.6μlのSMPH溶液(DMSO中の150mM)と60分間反応させた。反応溶液を、2回の2 1交換の20mMのヘペス/10%グリセロール(pH7.2)に対して、4℃で、12時間および4時間にわたり透析した。0.6mlの誘導体化および透析CMV−Ntt830溶液を、21.45μlの10mMのインフルエンザペプチドM2(配列番号24)のDMSO溶液と混合し、化学架橋させるために室温で4時間インキュベートし、CMV−Ntt830−M2コンジュゲートワクチンを得た。20mMのヘペス/10%グリセロール、pH7.2に対し、12時間および4時間透析することによりカップリングしていないペプチドを除去した。カップリングした生成物を還元条件下、12%ビス−トリス−ポリアクリルアミドゲルで分析した。CMV−Ntt830カプシドモノマーに比較して、増加した分子量のいくつかのバンドが認められ、インフルエンザM2ペプチドのCMV−Ntt830カプシドへの架橋に成功したことを明確に示している。
群当たり4匹の雌Balb/cマウスを200μlのPBS中に配合された40μgのCMV−Ntt830−M2ワクチンで免疫化するために0日目および20日目に皮下に注射した。マウスから、34日目に採血し、M2特異的およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清を分析した。
ELISAプレートを10μg/mlの濃度のM2ペプチド(配列番号24)または10μg/mlの濃度のCMV−Ntt830ウイルス様粒子でコーティングした。プレートをブロッキングした後、系列希釈マウス血清と共にインキュベートした。結合抗体を酵素標識抗マウスIgG抗体で検出した。マウス血清の抗体力価は、飽和時測定ODの50%(OD50)になる希釈の逆数として、定義される。34日目のマウスの平均抗M2抗体力価および抗CMV−Ntt830力価は、1:10000超であった。M2ペプチド単独では免疫原性がないことから、このデータは、M2ペプチドのCMV−Ntt830カプシドへのカップリングがM2ペプチドの免疫原性を強力に高めることを示す。
CMV−Ntt830ウイルス様粒子へのAβ1−6ペプチドのカップリング
PBS/10%グリセロール(pH7.2)中の1mg/mlの配列番号6の改変CPを有するCMV−Ntt830 VLPの2mlの溶液を、室温で、42.6μlのSMPH溶液(DMSO中の150mM)と60分間反応させた。反応溶液を、2回の2 1交換の20mMのヘペス/10%グリセロール(pH7.2)に対して、4℃で、12時間および4時間にわたり透析した。0.6mlの誘導体化および透析CMV−Ntt830溶液を、21.45μlの10mMのAβ1−6(配列番号25)のDMSO溶液と混合し、化学架橋するために室温で4時間インキュベートし、CMV−Ntt830−Aβ1−6コンジュゲートワクチンを得た。20mMのヘペス/10%グリセロール、pH7.2に対し、12時間および4時間透析することによりカップリングしていないペプチドを除去した。カップリングした生成物を還元条件下、12%ビス−トリス−ポリアクリルアミドゲルで分析した。CMV−Ntt830カプシドモノマーに比較して、増加した分子量のいくつかのバンドが認められ、Aβ1−6ペプチドのCMV−Ntt830への架橋に成功したことを明確に示している。
群当たり4匹の雌Balb/cマウスを200μlのPBS中に配合された40μgのCMV−Ntt830−Aβ1−6ワクチンで免疫化するために0日目および20日目に皮下に注射した。マウスから、34日目に採血し、Aβ1−6特異的およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清を分析した。
ELISAプレートを10μg/mlの濃度のRNアーゼに結合したAβ1−6または2μg/mlの濃度のCMV−Ntt830ウイルス様粒子でコーティングした。プレートをブロッキングした後、系列希釈マウス血清と共にインキュベートした。結合抗体を酵素標識抗マウスIgG抗体で検出した。マウス血清の抗体力価は、飽和時測定ODの50%(OD50)になる希釈の逆数として、定義される。34日目のマウスの平均抗Aβ1−6抗体力価および抗CMV−Ntt830力価は、1:10000超であった。Aβ1−6ペプチド単独では免疫原性がないことから、このデータは、Aβ1−6ペプチドのCMV−Ntt830カプシドへのカップリングがAβ1−6ペプチドの免疫原性を強力に高めることを示す。ヒトアルツハイマー患者の脳切片をマウス血清で染色し、プラークが明瞭に見えるようになった。
Fel d1融合タンパク質のクローニング
15個のアミノ酸配列(GGGGS)3(配列番号47)を介してFel d1の鎖2のN末端に融合したFel d1鎖1からなり、Fel d1の鎖2のC末端に融合したHHHHHHGGC配列(配列番号48)を組み込んだFel d1融合タンパク質(F12H6GGCと命名)を、オリゴヌクレオチド特異的遺伝子合成により産生した。対応するオリゴヌクレオチド配列は、配列番号49の配列を有し、F12H6GGCのタンパク質配列は、配列番号50:MEICPAVKRDVDLFLTGTPDEYVEQVAQYKALPVVLENARILKNCVDAKMTEEDKENALSVLDKIYTSPLCGGGGSGGGGSGGGGSVKMAETCPIFYDVFFAVANGNELLLDLSLTKVNATEPERTAMKKIQDCYVENGLISRVLDGLVMTTISSSKDCMGEAVQNTVEDLKLNTLGRHHHHHHGGCの配列を有する。
MEICPAVKRDVDLFLTGTPDEYVEQVAQYKALPVVLENARILKNCVDAKMTEEDKENALSVLDKIYTSPLCGGGGSGGGGSGGGGSVKMAETCPIFYDVFFAVANGNELLLDLSLTKVNATEPERTAMKKIQDCYVENGLISRVLDGLVMTTISSSKDCMGEAVQNTVEDLKLNTLGRGGC(配列番号56)
Fel d1融合タンパク質の発現と精製
大腸菌中のFel d1融合タンパク質の発現
Fel d1発現ベクターpET42−F12H6GGCおよびpET42−F12GGCを、大腸菌C2566細胞(New England Biolabs,Ipswich,USA)中に形質転換した。標的タンパク質の発現が最も高レベルであるクローンを選択し、さらに実験に使用した。種々の組換え型Fel d1融合タンパク質の発現を次の方法により実施した。発現プラスミド含有大腸菌の培養液を回転振盪機(200回転/分;Infors,Bottmingen,Switzerland)を使って、カナマイシン(25mg/l)含有2xTY培地中、30℃で0.8〜1.0のOD600まで増殖させた。次に、0.2mMのIPTGを加えることにより、Fel d1融合タンパク質遺伝子の発現を誘導した。培地を5mMのMgCl2で補充した。回転振盪機を使って、20℃で18時間、インキュベーションを継続した。得られたバイオマスを低速遠心分離により集め、精製まで−20℃で凍結した。
F12H6GGC融合タンパク質の精製のために、製造業者のインストラクションに従って、USB PrepEaseキット(Affymetrix,High Wycombe,UK)を使用した。氷上で解凍後、100mlの培養液由来の大腸菌細胞(約0.75g)を5mMのDTT含有1xLEW緩衝液中に懸濁させた後、超音波処理により粉砕した。不溶性タンパク質および壊死組織片を遠心分離(13,000rpm、5℃で30分)により除去した。清澄化ライセートをNi−IDAカラムにアプライし、同じ緩衝液(DTT不含)で2回洗浄し、2x1.5mlのイミダゾール含有1xE緩衝液で溶出した。Fel d1含有画分をSDS/PAGEにより特定し(図11A)、200倍量の緩衝液(20mMのリン酸ナトリウム、2mMのEDTA、pH7.0)に対し2回透析した。透析後、製造業者のインストラクション(Invitrogen,Eugene,USA)に従いQuBit蛍光光度計を使って、または280nmでのUV分光光度測定によりタンパク質濃度を推定した。精製タンパク質の同定は、質量分析(図11B)および抗Hisタグ抗体(Novagen、カタログ番号71840−3;データは示さず)を使ってウェスタンブロットにより確認した。
F12GGC融合タンパク質の精製のために、アニオン交換および疎水性相互作用クロマトグラフィーを使用した。3gのIPTG誘導大腸菌を、20mlのリシスバッファーLB(20mMのトリス/HCl、pH8.0、50mMのNaCl、5mMのDTT)中での超音波処理により粉砕した。超音波処理後、溶液を15000gで15分間遠心分離し、上清を集めた。一定撹拌下で硫酸アンモニウムを30%飽和の達成まで添加した後、室温で5分間インキュベートした。遠心分離後、回収した上清に固体硫酸アンモニウムを50%飽和まで加えた。遠心分離後、タンパク質ペレットを集め、2mlのLBに溶解し、過剰塩をLBで平衡化した5mlのHiTrap(商標)脱塩カラム(GE Healthcare Life Sciences)で除去した。脱塩したタンパク質溶出液をLBで平衡化した1mlのHiTrap(商標)Capto(商標)DEAEカラムにロードした。結合F12GGCを増加濃度勾配のNaClで溶出した。Fel d1融合タンパク質含有画分を集め、プールした。得られた溶液を4倍量の20mMのトリス/HCl、pH8.0、5mMのDTTで希釈し、MonoQ5/50GLカラムのLB中にロードし、増加NaCl濃度勾配で溶出した。Fel d1融合タンパク質含有画分を集め、プールした。5MのNaClを2.5Mの濃度になるまで加え、DTTをその溶液に添加して5mMの濃度を維持した。その後、1mlHiTrap(商標)Butyl HPカラムの2.5MのNaCl、5mMのDTT中にFel d1含有溶液をロードし、連続して減少するNaCl濃度で溶出した。Fel d1融合タンパク質含有画分を集め、プールした。全精製工程をクマシー染色したSDS/PAGEゲルでモニターした(図11C)。精製タンパク質の同定は、組換え型Fel d1に対し産生したポリクローナル抗体を使ってウェスタンブロットにより確認した(データは示さず)。
組換え型Fel d1融合タンパク質(単一または複数)の信頼性
Fel d1融合タンパク質は、Fel d1特異的モノクローナル抗体により同様に認識される。Fel d1融合タンパク質F12H6GGCおよび天然のFel d1(nFel d1)のFel d1特異的モノクローナル抗体(mAb)への結合を、Indoor Biotechnologies(Cardiff,UK)のサンドイッチELISAのFel d1 ELISAキット(6F9/3E4)を使って比較した。この目的のために、Nunc ELISAプレートを抗Fel d1 mAb 6F9(1μg/ml)で、4℃下、一晩コーティングした。プレートを0.05%ツイーン20含有PBS(PBST)で洗浄し、Superblock(Invitrogen)を使って室温(RT)で2時間ブロッキングした。天然Fel d1ならびにF12H6GGC(1μg/ml)を1:3で系列希釈し、室温で2時間インキュベートした。プレートをPBSTで洗浄し、ビオチン化抗Fel d1 mAb 3E4(1μg/ml)を加え、室温で1時間インキュベートした。検出には、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRPO)標識ストレプトアビジンを利用した。この目的のために、プレートをPBSTで洗浄後、ストレプトアビジン−ペルオキシダーゼ(Sigma、1:1000希釈)をプレートに室温で30分間加えた。検出はOPD基質溶液および停止液としての5%H2SO4を使って実施した。吸光度は、450nmでELISAリーダー(BioRad)を使って測定した。
Fel d1融合タンパク質のCMV−Ntt830およびCMV−VLPへのカップリング
ヘテロ二機能性化学架橋剤、スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)を使って、以下の方法で、Fel d1融合タンパク質F12H6GGCを、CMV−Ntt830およびCMV−Npadr VLPに共有結合させた。
マウスにおけるFel d1−CMV VLPに対する免疫反応
3匹の雌Balb/cマウスの群を、実施例10に記載のように調製した、Fel d1−CMV−Ntt830−VLP、またはFel d1融合タンパク質F12H6GGCと単純に混合したCMV−Ntt830−VLPで免疫化した。両組成物は、同じ量のFel d1融合タンパク質を含む。10μgのそれぞれの組成物を、150mMのPBS(pH7.4)中で調製し、150μlを0日目および14日目に静脈内に注射した。マウスから、0日目(免疫前)、14日目、および21日目に採血し、天然Fel d1特異的IgG抗体に対し、ELISAにより血清を分析した。
ヒトIL−1βのCMV−Ntt830およびCMV−VLPへのカップリング
ヘテロ二機能性化学架橋剤スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)を使って、次の方法で、ヒトIL−1β成熟タンパク質(配列番号60)を、CMV−Ntt830およびCMV−Npadr VLPに共有結合させた。
イヌIL−5のCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
イヌIL−5(cIL−5)(配列番号61)は、Zou Y,et al.,Vaccine 28(2010)3192−3200におけるマウスIL−5に関する記載と同様にして発現した、遊離Cysを含むように改変される。そのように改変されたcIL−5のVLP CMV−Ntt830へのカップリングを以下のように行った。cIL−5に結合させるために、CMV−Ntt830 VLPが、最初に30倍過剰のヘテロ二機能性化学架橋剤、スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)で誘導体化される。非結合SMPHがPBSに対する透析により除去される。PBS(pH8.0)中の等モル量のトリ(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP)を使ってcIL−5を1時間還元した。還元したcIL−5(80μM)を、40μMのSMPH誘導体化CMV−Ntt830と共に22℃で4時間インキュベートした。反応物をPBS、pH8.0に対し12時間透析した。
4匹の雌異系交配イヌ群は、上述のように、SMPHを介してcIL−5に結合したCMV−Ntt830 VLPで免疫化される。50μgの組成物を、20mMのヘペス、50mMのNaCl(pH7.3)中で500μlに希釈し、0日目および14日目に皮下に注射する。イヌから、0日目(免疫前)、14日目、および21日目に採血し、cIL−5およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清を分析する。
ELISAプレートを10μg/mlの濃度のcIL−5または2μg/mlの濃度のCMV−Ntt830 VLPでコーティングする。プレートをブロッキングした後、系列希釈マウス血清と共にインキュベートする。結合抗体が酵素標識抗イヌIgGで検出される。対照として、同じイヌの免疫前血清を同様に試験する(データは示さず)。全イヌは、cIL−5ならびにCMV−Ntt830に対し明確で強力なIgG応答示す。
イヌIL−4のCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
イヌIL−4(cIL−4)(配列番号62)は、Zou Y,et al.,Vaccine 28(2010)3192−3200におけるマウスIL−5に関する記載と同様にして発現した、遊離Cysを含むように改変される。そのように改変されたcIL−4のVLP CMV−Ntt830へのカップリングが以下のように行われる。cIL−4に結合させるために、CMV−Ntt830 VLPが、最初に30倍過剰のヘテロ二機能性化学架橋剤、スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)で誘導体化される。非結合SMPHがPBSに対する透析により除去される。PBS(pH8.0)中の等モル量のトリ(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP)を使ってcIL−4を1時間還元した。還元したcIL−4(80μM)を、40μMのSMPH誘導体化CMV−Ntt830と共に22℃で4時間インキュベートした。反応物をPBS、pH8.0に対し12時間透析した。
4匹の雌異系交配イヌ群は、上述のように、SMPHを介してcIL−4に結合したCMV−Ntt830 VLPで免疫化される。50μgの組成物を、20mMのヘペス、50mMのNaCl(pH7.3)中で500μlに希釈し、0日目および14日目に皮下に注射する。イヌから、0日目(免疫前)、14日目、および21日目に採血し、cIL−4およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清を分析する。
ELISAプレートは、10μg/mlの濃度のcIL−4または2μg/mlの濃度のCMV−Ntt830 VLPでコーティングされる。プレートをブロッキングした後、系列希釈イヌ血清と共にインキュベートされる。結合抗体が酵素標識抗イヌIgGで検出される。対照として、同じイヌの免疫前血清を同様に試験する(データは示さず)。全イヌは、cIL−4ならびにCMV−Ntt830に対し明確で強力なIgG応答示す。
イヌIL−13のCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
イヌIL−13(cIL−13)(配列番号63)は、Zou Y,et al.,Vaccine 28(2010)3192−3200におけるマウスIL−5に関する記載と同様にして発現した、遊離Cysを含むように改変される。そのように改変されたcIL−13のVLP CMV−Ntt830へのカップリングを以下のように行った。cIL−13に結合させるために、CMV−Ntt830 VLPが、最初に30倍過剰のヘテロ二機能性化学架橋剤、スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)で誘導体化される。非結合SMPHがPBSに対する透析により除去される。PBS(pH8.0)中の等モル量のトリ(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP)を使ってcIL−13を1時間還元した。還元したcIL−13(80μM)を、40μMのSMPH誘導体化CMV−Ntt830と共に22℃で4時間インキュベートした。反応物をPBS、pH8.0に対し12時間透析した。
4匹の雌異系交配イヌ群が、上述のように、SMPHを介してcIL−13に結合したCMV−Ntt830 VLPで免疫化される。50μgの組成物を、20mMのヘペス、50mMのNaCl(pH7.3)中で500μlに希釈し、0日目および113日目に皮下に注射する。イヌから、0日目(免疫前)、14日目、および21日目に採血し、cIL−13およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清を分析した。
ELISAプレートを10μg/mlの濃度のcIL−13または2μg/mlの濃度のCMV−Ntt830 VLPでコーティングした。プレートをブロッキングした後、系列希釈イヌ血清と共にインキュベートされる。結合抗体が酵素標識抗イヌIgGで検出される。対照として、同じイヌの免疫前血清を同様に試験する(データは示さず)。全イヌは、cIL−13ならびにCMV−Ntt830に対し明確で強力なIgG応答示す。
ヒトIL−31のCMV−Ntt830へのカップリングおよび免疫反応の誘導
ヒトIL−31(hIL−31)(配列番号43)は、Zou Y,et al.,Vaccine 28(2010)3192−3200におけるマウスIL−5に関する記載と同様にして発現した、遊離Cysを含むように改変される。そのように改変されたhIL−31のVLP CMV−Ntt830へのカップリングが以下のように行われる。hIL−31に結合させるために、CMV−Ntt830 VLPが、最初に30倍過剰のヘテロ二機能性化学架橋剤、スクシンイミジル−6−(β−マレイミドプロピオンアミド)ヘキサノエート(SMPH)で誘導体化される。非結合SMPHがPBSに対する透析により除去される。PBS(pH8.0)中の等モル量のトリ(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP)を使ってhIL−31が1時間還元される。還元したhIL−31(80μM)が、40μMのSMPH誘導体化CMV−Ntt830と共に22℃で4時間インキュベートされる。反応物をPBS、pH8.0に対し12時間透析した。
4匹の雌BALB/cマウス群が、上述のように、SMPHを介してIL−31に結合したCMV−Ntt830 VLPで免疫化される。50μgの組成物を、20mMのヘペス、50mMのNaCl(pH7.3)中で500μlに希釈し、0日目および113日目に皮下に注射する。イヌから、0日目(免疫前)、14日目、および21日目に採血し、hIL−31およびCMV−Ntt830特異的ELISAを使って、血清が分析される。
ELISAプレートを10μg/mlの濃度のhIL−31または2μg/mlの濃度のCMV−Ntt830 VLPでコーティングした。プレートをブロッキングした後、系列希釈マウス血清と共にインキュベートする。結合抗体が酵素標識抗抗マウスIgGで検出される。対照として、同じマウスの免疫前血清が同様に試験される(データは示さず)。全マウスは、hIL−31ならびにCMV−Ntt830に対し明確で強力なIgG応答示す。
Claims (15)
- キュウリモザイクウイルス(CMV)由来の改変ウイルス様粒子(VLP)であって、前記CMV由来の改変VLPは、少なくとも1種の改変CMVポリペプチドを含み、またはそれから本質的になり、あるいはそれからなり、前記改変CMVポリペプチドは、
(A)CMVポリペプチド、
ここで、前記CMVポリペプチドは、
(i)CMVのコートタンパク質のアミノ酸配列;または
(ii)変異アミノ酸配列であって、変異を受けるアミノ酸配列が、CMVのコートタンパク質のアミノ酸配列であり、前記変異アミノ酸配列と、前記CMVのコートタンパク質とが、少なくとも95%、少なくとも98%または少なくとも99%の配列同一性を示す変異アミノ酸配列を含む、
および
(B)ヘルパーT細胞エピトープ、
ここで、前記ヘルパーT細胞エピトープが前記CMVポリペプチドのN末端領域を置換し、かつ前記CMVポリペプチドの前記N末端領域が配列番号1のアミノ酸2〜12位に対応する、
を含む、CMV由来の改変VLP。 - 前記ヘルパーT細胞エピトープが、ユニバーサルヘルパーT細胞エピトープである;および/または
前記CMVポリペプチドは、
(a)配列番号1を含むCMVのコートタンパク質のアミノ酸配列、
(b)少なくとも90%の配列番号1との配列同一性を有するアミノ酸配列、
(c)配列番号21のアミノ酸配列を含む(b)のアミノ酸配列、または
(d)配列番号21のアミノ酸配列に少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列領域を含む(b)のアミノ酸配列、
を含む、
請求項1に記載のCMV由来の改変VLP。 - 前記CMVポリペプチドが、
(a)配列番号1を含むCMVのコートタンパク質のアミノ酸配列、または
(b)少なくとも90%の配列番号1との配列同一性を有するアミノ酸配列
を含み、
この請求項の(b)で定められた前記アミノ酸配列が配列番号21を含む、
請求項1または2に記載のCMV由来の改変VLP。 - 置換される前記N末端領域のアミノ酸の数が、前記ヘルパーT細胞エピトープを構成するアミノ酸の数以下である、請求項1〜3のいずれか1項に記載のCMV由来の改変VLP。
- 前記ヘルパーT細胞エピトープが最大で20アミノ酸からなる、請求項1〜4のいずれか1項に記載のCMV由来の改変VLP。
- 前記ヘルパーT細胞エピトープがPADRE配列である、
前記ヘルパーT細胞エピトープが配列番号5のアミノ酸配列を含むPADRE配列である、または
前記ヘルパーT細胞エピトープが配列番号5のアミノ酸配列を含む、
請求項1〜5のいずれか1項に記載のCMV由来の改変VLP。 - 前記ヘルパーT細胞エピトープがヒトワクチン由来である、
前記ヘルパーT細胞エピトープがヒトワクチン由来であり、かつ破傷風毒素由来である、
前記ヘルパーT細胞エピトープが配列番号4のアミノ酸配列を有するヒトワクチン由来である、または
前記ヘルパーT細胞エピトープが配列番号4のアミノ酸配列を含む、
請求項1〜6のいずれか1項に記載のCMV由来の改変VLP。 - 前記改変CMVポリペプチドが、配列番号6のアミノ酸配列を含む、または
前記改変CMVポリペプチドが、配列番号7のアミノ酸配列を含む、
請求項1に記載のCMV由来の改変VLP。 - (a)請求項1〜8のいずれか1項に記載の改変ウイルス様粒子であって、少なくとも1つの第1結合部位を含む改変ウイルス様粒子;および
(b)少なくとも1つの抗原であって、少なくとも1つの第2結合部位を含む抗原
を含む組成物であって、
(a)および(b)が、前記少なくとも1つの第1結合部位および前記少なくとも1つの第2結合部位を介して結合される、
(a)および(b)が、前記少なくとも1つの第1結合部位および前記少なくとも1つの第2結合部位を介して結合され、ここで前記第1結合部位および前記第2結合部位が、少なくとも1つの共有結合性非ペプチド結合を介して結合される、または
(a)および(b)が、前記少なくとも1つの第1結合部位および前記少なくとも1つの第2結合部位を介して結合され、ここで前記第1結合部位および前記第2結合部位が、少なくとも1つの共有結合性非ペプチド結合を介して結合され、前記第1結合部位が、リジン残基のアミノ基であり、かつ前記第2結合部位が、システイン残基のスルフヒドリル基である、
組成物。 - 前記抗原が、腫瘍抗原、自己抗原、病原体のポリペプチド、アレルゲンまたはハプテンである、請求項9に記載の組成物。
- 前記抗原が、
(a)IL−17;
(b)配列番号42のアミノ酸配列を含む、IL−17;
(c)IL−5;
(d)配列番号41のアミノ酸配列を含むIL−5;
(e)TNFα;
(f)IL−1α;
(g)IL−13;
(h)配列番号46のアミノ酸を含む、IL−13;
(i)Aβ−1−42由来ペプチド;
(j)IgEまたはIgEに含まれるペプチドもしくはドメイン;
(k)α−シヌクレイン、またはα−シヌクレイン由来ペプチド;
(l)6〜14アミノ酸からなるα−シヌクレイン由来ペプチド;
(m)配列番号32、配列番号33および配列番号34のいずれか1つから選択される、α−シヌクレイン由来ペプチド;
(n)IL−4;
(о)配列番号45のアミノ酸を含むIL−4;
(p)GnRH;
(q)エオタキシン;
(r)インフルエンザAウイルスM2タンパク質の細胞外ドメイン、またはその抗原性フラグメント;
(s)IL−31;
(t)配列番号43または配列番号44のアミノ酸配列を含むIL−31;
(u)熱帯熱マラリア原虫もしくは三日熱マラリア原虫由来抗原、またはRSV由来抗原;
(v)ネコアレルゲンFel d1または組換え型Fel d1(rFel d1);
(w)配列番号17または配列番号18を含む、抗原;
(x)イヌアレルゲンCan f1またはCan f2;
(y)カルシトニン遺伝子関連ペプチド(CGRP);および
(z)アミリン
からなる群から選択される、請求項9または10に記載の組成物。 - (a)請求項1〜8のいずれか1項に記載の改変ウイルス様粒子、または請求項9〜11のいずれか1項に記載の組成物と;
(b)薬学的に許容可能なキャリア、希釈剤および/または賦形剤と
を含む、組成物。 - 請求項1〜8のいずれか1項に記載の改変ウイルス様粒子を含む、動物またはヒトの疾患、障害もしくは状態を治療するための医薬。
- 請求項9〜12のいずれか1項に記載の組成物を含む、動物またはヒトの疾患、障害もしくは状態を治療するための医薬。
- (A)前記組成物は、前記抗原が(a)〜(h)、(n)、及び(о)から選択される請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトの炎症性疾患である;
(B)前記組成物は、前記抗原が(a)〜(h)、(n)、及び(о)から選択される請求項11に記載の組成物であり、前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトの炎症性疾患であり、かつ前記炎症性疾患が、RA、MS、乾癬、喘息、クローン病、大腸炎、COPD、糖尿病、神経皮膚炎(アレルギー性皮膚炎)から選択される;
(C)前記組成物は、前記抗原が(i)である請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトのアルツハイマー病である;
(D)前記組成物は、前記抗原が(j)である請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトのアレルギーである;
(E)前記組成物は、前記抗原が(k)、(l)または(m)である請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトのパーキンソン病である;
(F)前記組成物は、前記抗原が(p)である請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトのテストステロンレベル低下である;
(G)前記組成物は、動物またはヒトのインフルエンザAウイルス感染症を治療する、または予防するための、前記抗原が(r)、(s)、または(t)である請求項11に記載の組成物である;
(H)前記組成物は、マラリアを予防する、または治療するための、前記抗原が(u)である請求項11に記載の組成物である;
(I)前記組成物は、RSV感染症を予防する、または治療するための、前記抗原が(u)である請求項11に記載の組成物である;
(J)前記組成物は、ヒトのネコアレルギーを予防する、または治療するための、前記抗原が(v)または(w)である、請求項11に記載の組成物である;
(K)前記組成物は、ヒトのイヌアレルギーを予防する、または治療するための、前記抗原が(x)である請求項11に記載の組成物である;
(L)前記組成物は、前記抗原が(y)である請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトの偏頭痛である;または
(M)前記組成物は、前記抗原が(z)である請求項11に記載の組成物であり、かつ前記疾患、障害もしくは状態は、動物またはヒトのII型糖尿病である;
請求項14に記載の医薬。
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