JP6562361B2 - ベンゾチアゾール化合物及びこれを含有する医薬 - Google Patents
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Description
一方、Aβに関しては、AβペプチドのMet酸化体(AβペプチドのMet残基の硫黄原子が酸化(O)された酸化体)が生体内に少量残存すること、及び当該Met酸化体はAβペプチドに比べて凝集性が低いことが報告されている(非特許文献1〜3)。かかる観点から、本発明者は、式(a)で表されるAβ結合部位を有するフラビン光触媒を用いてAβペプチドを酸化するとAβペプチド酸化体が得られ、当該Aβペプチド酸化体はAβの凝集を抑制することを報告した(非特許文献4)。
従って、本発明の課題は、生体内に適用可能で、Aβペプチドだけでなく他のアミロイドにも適用可能なアミロイド酸化触媒として有用な化合物及びこれを用いたアミロイド関連疾患予防治療薬を提供することにある。
R1は、置換基を有していてもよい炭化水素基を示し;
R2は水素原子、又は置換基を有していてもよい炭化水素基を示し;
R3及びR4は、同一又は異なって、水素原子、置換基を有していてもよい炭化水素基、アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基、又はシアノ基を示し;
R2とR4は一緒になってアルキレン基を形成してもよく、
R5はアニオンを示す)
で表されるベンゾチアゾール化合物。
〔2〕R1、R2、R3及びR4における炭化水素基に置換し得る基が、同一又は異なって、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基、シアノ基、アルコキシ基、アシル基、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、芳香族炭化水素基及び複素環式基から選ばれる1〜3個である〔1〕記載のベンゾチアゾール化合物。
〔3〕R1が、炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基である〔1〕又は〔2〕記載のベンゾチアゾール化合物。
〔4〕R1が、炭素数1〜12のアルキル基である〔1〕〜〔3〕のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物。
〔5〕R3が、水素原子又は炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基である〔1〕〜〔4〕のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物。
〔6〕R3が、水素原子である〔1〕〜〔5〕のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物。
〔7〕R2が、R4と一緒になってC2−C4アルキレン基を形成するか、あるいは炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基(このアルキル又はアルケニル基には、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、アミノ−CO基又はジペプチド〜ヘキサペプチド−CO−基が置換し、このアミノ酸、ジペプチド〜ヘキサペプチドにはさらにC6-14アリール基及びアルコキシカルボニル基から選ばれる1〜2個が置換していてもよい。)である〔1〕〜〔6〕のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物。
〔8〕〔1〕〜〔7〕のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物を有効成分とする医薬。
〔9〕病原性アミロイドが関与する疾患の予防又は治療薬である〔8〕記載の医薬。
〔10〕〔1〕〜〔7〕のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物及び薬学的に許容される担体を含有する医薬組成物。
〔11〕病原性アミロイドが関与する疾患の予防又は治療に使用するための〔1〕〜〔7〕のいずれかに記載の化合物。
〔12〕病原性アミロイドが関与する疾患の予防又は治療薬製造のための〔1〕〜〔7〕のいずれかに記載の化合物の使用。
〔13〕〔1〕〜〔7〕のいずれかに記載の化合物を投与することを特徴とする病原性アミロイドが関与する疾患の予防又は治療方法。
直鎖又は分岐鎖のアルキル基又はアルケニル基としては、炭素数1〜12の直鎖又は分岐鎖のアルキル基、炭素数2〜12の直鎖又は分岐鎖のアルケニル基が好ましく、炭素数1〜6の直鎖又は分岐鎖のアルキル基、炭素数2〜6の直鎖又は分岐鎖のアルケニル基がより好ましい。これらのアルキル基又はアルケニル基の具体例としては、メチル基、エチル基、n−プロピル基、イソプロピル基、n−ブチル基、n−ペンチル基、n−ヘキシル基、ビニル基、アリル基等が挙げられる。
ここで、ハロゲン原子としては、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子が挙げられる。アルコキシ基としては、炭素数1〜12のアルコキシ基が挙げられ、炭素数1〜6のアルコキシ基が好ましく、メトキシ基、エトキシ基、n−プロピルオキシ基、イソプロピルオキシ基、n−ブチルオキシ基等がより好ましい。アルコキシカルボニル基としては、C1-6アルコキシカルボニル基が挙げられる。アシル基としては、アルカノイル基、アロイル基、カルボキシアルキルカルボニル基、アルコキシカルボニルアルキルカルボニル基、アミノ酸−CO−基、ペプチド−CO−基等が挙げられ、炭素数1〜12のアルカノイル基、C6-14−アロイル基、カルボキシC1-12アルキルカルボニル基、C1-12アルコキシカルボニルC1-12アルキルカルボニル基、アミノ酸−CO−基、ジペプチド〜ヘキサペプチド−CO−基が挙げられる。芳香族炭化水素基としては、炭素数6〜14の芳香族炭化水素基が好ましく、フェニル基、ナフチル基等が挙げられる。複素環式基としては、N、O又はSから選ばれるヘテロ原子を1〜3個有する5員〜10員の複素環式基が挙げられ、具体的にはピロリル基、チエニル基、フラニル基、イミダゾリル基、オキサゾリル基、チアゾリル基、ピリジル基、ピリミジニル基等が挙げられる。
R2が水素原子、炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基、炭素数3〜8のシクロアルキル又はシクロアルケニル基、又は炭素数6〜14の芳香族炭化水素基であり、これらの基は置換を有していてもよく;
R3及びR4が同一又は異なって、水素原子、炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基、炭素数3〜8のシクロアルキル又はシクロアルケニル基、炭素数6〜14の芳香族炭化水素基(これらの基は置換基を有していてもよい)、アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基又はシアノ基であり;
R2及びR4が一緒になってC2−C4アルキレン基を形成してもよく;
R5がアニオンであり;
前記の置換基が、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基、シアノ基、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、アルコキシ基、アシル基、芳香族炭化水素基及び複素環式基から選ばれる1〜3個であるのが好ましい。
R2が水素原子、炭素数1〜6のアルキル又はアルケニル基、炭素数3〜6のシクロアルキル又はシクロアルケニル基、又は炭素数6〜14の芳香族炭化水素基であり、これらの基は置換を有していてもよく;
R3及びR4が同一又は異なって、水素原子、炭素数1〜6のアルキル又はアルケニル基、炭素数3〜6のシクロアルキル又はシクロアルケニル基、炭素数6〜14の芳香族炭化水素基(これらの基は置換基を有していてもよい)、C1-6アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基又はシアノ基であり;
R2及びR4が一緒になってC2−C4アルキレン基を形成してもよく;
R5がアニオンであり;
前記の置換基が、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基、シアノ基、C1-12アルコキシ基、C1-12アルカノイル基、C6-14アロイル基、カルボキシC1-12アルキルカルボニル基、C1-12アルコキシカルボニルC1-12アルキルカルボニル基、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、アミノ酸−CO−基、ジペプチド〜ヘキサペプチド−CO−基、C6-14アリール基、及びN、O又はSから選ばれるヘテロ原子を1〜3個有する5員〜10員の複素環式基から選ばれる1〜3個であるのがより好ましい。
R1が炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基であり、より好ましくは炭素数1〜12のアルキル基であり;
R3が水素原子又は炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基であり、より好ましくは水素原子であり;
R2が、R4と一緒になってC2−C4アルキレン基を形成するか、あるいは炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基(このアルキル又はアルケニル基には、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、アミノ−CO基又はジペプチド〜ヘキサペプチド−CO−基が置換し、このアミノ酸、ジペプチド〜ヘキサペプチドにはさらにC6-14アリール基及びアルコキシカルボニル基から選ばれる1〜2個が置換していてもよい。)であり;
R5がアニオンであるのがさらに好ましい。
化合物(5)と還元剤との反応は、水、アルコール等の溶媒中、室温で10分〜2時間行えばよい。また、化合物(4)と化合物(6)の反応は、室温から100℃で30分〜12時間行えばよい。
また、Aβに本発明化合物(1)を添加し、生理的条件下で光照射すると、経時的にネイティブAβが減少するとともに、酸素原子が1〜4個付加した酸素化Aβが増加した。その酸化効率は、チオフラビンTに比べて顕著に高かった。また、本発明化合物(1)は、Aβ1−42(非凝集体)に対する酸化力に比べてクロスβ−シート構造を有するAβオリゴマー及びAβ凝集体に対する酸化力が顕著に強く、Aβオリゴマー及びAβ凝集体のクロスβシート構造特異的に酸化することにより、Aβの神経毒性を抑制するものと考えられる。また、本発明化合物(1)による酸素化反応は、アンギオテンシンIV、メチオニンエンケファリン、デスアシルグレリン、ソマトスタチン等の非アミロイド性タンパクに対しては極めて弱く、アミロイドタンパクに選択的である。さらに、本発明化合物(1)のアミロイド酸素化反応は、細胞存在下でも確認された。従って、本発明化合物(1)は、Aβペプチド、アミリン、トランスサイレチン、αシアヌクレイン、タウ蛋白質、ハンチントン等の病原性アミロイドを選択的に酸化する触媒として作用する。これらの病原性アミロイドは、酸化されるとβ−シート構造の積層体を形成しなくなるため、病原性を生じなくなる。従って、本発明化合物(1)は、ヒトを含む動物のアルツハイマー病、パーキンソン病、糖尿病、ハンチントン病、全身性アミロイド−シス等の病原性アミロイドが関与する疾患の予防治療薬として有用である。
液体製剤としては溶液、懸濁液、乳液剤等を挙げることができるが添加剤として懸濁化剤、乳化剤等を含むこともある。
(4)化合物(1b)(288.9mg)を溶解したメタノール(50mL)に、1M NaOH水溶液(8.28mL)を氷浴中でゆっくりと加え、室温で10時間撹拌した。その反応液を2M塩酸で中和、減圧下濃縮、NaClで飽和させ、酢酸エチルで抽出した。その有機相をNa2SO4で乾燥、減圧下乾燥した。その残渣を分取用HPLC(0.1% aqueous TFA/MeCN=80/20 to 30/70,50分間)により精製して化合物(1c)(48.6mg,エステル体から7%)を得た。黄色固体;1H NMR(500MHz,CDCL3)δ:8.06(d,J=1.8Hz,1H),7.86(dd,J=8.6,1.7Hz,1H),7.80(d,J=9.2Hz,1H),7.60(dd,J=9.2,2.3Hz,1H),7.35(d,J=2.3Hz,1H),6.75(d,J=8.6Hz,1H),4.31(s,3H),3.46(t,J=6.3Hz,2H),3.41(t,J=7.5Hz,2H),2.81(t,J=6.3Hz,2H),2.37(t,J=6.9Hz,2H),1.97−1.99(m,2H),1.65−1.71(m,4H),1.39−1.45(m,2H);HRMS(ESI):m/z calcd for C23H26BrN2O2S+
[M]+ 473.0893,found 473.0904.
A.方法
(1)酸化反応
Aβ1−42(20μM)、アミリン(5μM)、アンジオテンシンIV(30μM)又はメチオニンエンケファリン(30μM)を含むリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に、チオフラビンT(20μM)、リボフラビン(4μM)、化合物a(20μM)又は化合物(1a)(20μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃でインキュベートした後、質量分析装置(MALDI−TOF MS)又はLC/MS(ESI−Q)にて反応を追跡した。
酸化Aβ1−42及び酸化アミリンのアミノ酸分析(ペプチド研究所によって実施)を行った。また、酸化Aβ1−42及び酸化アミリンをそれぞれエンドペプチダーゼLys−C及びキモトリプシンで酵素消化し、得られた消化物を質量分析装置(MALD−TOF MS)及びLC/MS/MS(ESI−Q−TOF)にて分析した。
リン酸緩衝液(10mM,pH7.4)中、Aβ1−42(20μM)共存下又は非共存下でチオフラビンT(20μM)又は化合物(1a)(20μM)を溶解し、37℃にて3時間インキュベートした後、吸光及び蛍光スペクトルを測定した。チオフラビンT及び化合物(1a)の励起波長はそれぞれ420及び460nmとした。
予め凝集させたAβ1−42(凝集条件:20μM、リン酸緩衝液(10mM,pH7.4)、37℃、3時間)を、チオフラビンT又は化合物(1a)を含むリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に加え(Aβの最終濃度:0.5μM、チオフラビンT又は化合物(1a)の最終濃度:0〜20μM)、室温で1時間インキュベート後に蛍光強度を測定した。チオフラビンTについては励起波長420nm、蛍光波長485nmとし、化合物(1a)については励起波長460nm、蛍光波長515nmとした。蛍光強度からKaleidaGraph 4.5(Synergy Software, Reading, PA)を用いてKd結合曲線を得た。
チオフラビンT及び化合物(1a)について、基底状態の各二面角における構造最適化及びエネルギー計算はB3LYP/LAV3P*(Maestro 9.3/Jaguar 7.9;Schrodinger,LLC,New York,NY,2012)を用いたDFT計算によって行った。励起状態の各二面角におけるエネルギー計算は、B3LYP/LAV3P*を用いたTDDFT計算によって行った。励起状態(S1)のエネルギーは、基底状態(S0)のエネルギーと遷移エネルギーの和として算出した。
グリセロール/水(0:100、12.5:87.5、50:50、62.5:37.5又は75:25)にチオフラビンT(20μM)又は化合物(1a)(20μM)を加え、蛍光スペクトルを測定した。チオフラビンT及び化合物(1a)の励起波長はそれぞれ420及び460nmとした。
また、フルフリルアルコール(200μM)またはベンゾイルメチオニン(200μM)を溶解した上記グリセロール/水の溶液に、リボフラビン(4μM)又は化合物a(20μM)を加え、室温でLED照射(波長500nm)した後、LC/MS(ESI−Q)にて反応を追跡した。
Aβ1−42(20μM)又はアミリン(5μM)が溶解したリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に化合物(1a)(20μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃でインキュベートした。その溶液の一部を、ナイルレッドを含むリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に加え(Aβ1−42又はアミリンの最終濃度:0.5μM、ナイルレッドの最終濃度:5μM)、室温で1時間インキュベート後、ナイルレッドの蛍光強度(励起波長:530nm、蛍光波長:610nm)を測定した。
Aβ1−42(20μM)が溶解したリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に化合物(1a)(20μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃でインキュベートした。その溶液の一部をマイカ上にのせ、室温で3分間インキュベートした後、水(20μL)で洗浄し、風乾した。測定は、Nano Wizard II(JPK instruments AG,Berlin,Germany)を使用し、空気中室温でタッピングモードにより行った。
Aβ1−42(20μM)又はアミリン(5μM)が溶解したリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に化合物(1a)(20μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃でインキュベートした。その溶液の一部を、Model 202SF(AVIV Biomedical,Inc.,Lakewood,NJ)を使用して分析した。
Aβ1−42(20μM)が溶解した0.1%ウマ血清を含むダルベッコ変法イーグル培地に化合物(1e)(10μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃で30分間インキュベートした後、質量分析装置(MALD−TOF MS)にて反応を追跡した。
ポリDリジンコート96穴プレートに播種したラット副腎髄質由来褐色細胞腫PC12細胞(理化学研究所から購入)に、50μLの上記溶液を加えて同様に反応させた。50μLの0.1%ウマ血清を含むダルベッコ変法イーグル培地で希釈した後(Aβ最終濃度:10μM)、5%CO2雰囲気下、37℃で48時間インキュベートした。WST−8を含む生細胞数測定試薬SF(10μL:ナカライから購入)を加え、5%CO2雰囲気下、37℃で3時間インキュベートした後、450nm(参照波長:655nm)における吸光度から細胞生存率を測定した。
(1)合成した化合物(1a)の最大吸光波長(456nm)は、ジュロリジンのより強い電子供与性に起因して、チオフラビンTと比べて50nm程度長波長シフトしていた(図1a左)。Aβ存在下では、Aβ非存在下の場合と比べて、吸光波長のわずかな長波長化が観察されるとともに、顕著に高い蛍光が観測された(図1a)。本結果より、化合物(1a)はチオフラビンTと同様、Aβと結合して分子内のねじれが阻害される結果、蛍光を放出することが示唆された。蛍光強度に基づく結合曲線より、化合物(1a)がAβに対してチオフラビンTと同程度のKd値(1:2.9μM,4:1.1μM)を有することも明らかとなった(図1b)。
以上の結果より、Aβ非存在下においては、TICTが進行して酸素化が起こらない一方、Aβ結合時においては、S1 stateからT1 stateへの項間交差が進み、T1 stateによる一重項酸素の産生と、続く一重項酸素によるAβの酸素化が進行した結果、高いAβ選択的酸素化が実現できたものと考えられる(図3d)。
予め37℃で6時間インキュベートさせたAβ1−42(20μM)、アンジオテンシンIV(20μM)、メチオニンエンケファリン(20μM)、デスアシルグレリン(20μM)又はソマトスタチン(20μM)を含むリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)に、リボフラビン(4μM)、化合物(a)(20μM)又は化合物(1a)(4μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃で60分インキュベートした後、質量分析装置(MALDI−TOF MS)又はLC/MS(ESI−Q)にて反応を追跡した。
(1)リン酸緩衝液(10mM,pH7.4)中のAβ1−42(20μM)を37℃で0、1、3、6時間インキュベートして調製した4種類の凝集Aβ1−42それぞれにチオフラビンTを加え、この蛍光強度を測定した。また、原子間力顕微鏡を用いて形状を解析した。
その結果、図9aに示すように、インキュベートしなかったもの(0時間)に対しては蛍光を示さなかったが、1、3、6時間インキュベートしたものに対してはいずれについても蛍光を示し、インキュベート時間が長いほうがより強い蛍光を示した。また、インキュベートしなかったもの(0時間)は凝集が観測されなかったが、1、3、6時間インキュベートしたものについてはそれぞれオリゴマー(1時間)、前原線維(3時間)及び強硬な線維(6時間)が観測された。
酸素化強度率(%)の増加は、(凝集Aβ1−42の酸素化強度率(37℃、所定時間インキュベート))−(凝集Aβ1−42の酸素化強度率(37℃、0時間インキュベート))で算出した。
酸素化強度率(%)は、(酸素付加体の強度の合計)/((非酸素付加体(Native)の強度)+(酸素付加体の強度の合計))で算出した。
(1)リン酸緩衝液(10mM,pH7.4)中のAβ1−42(20μM)を0℃(サンプルE)及び室温(サンプルF)で24時間インキュベートして調製した2種類のAβ1−42それぞれについて、原子間力顕微鏡を用いてサイズ分布を解析した。
その結果、図10aに示すように、0℃及び室温でインキュベートして調製したAβ1−42のいずれについても均一なオリゴマーが観測された。尚、室温でインキュベートして調製したAβ1−42オリゴマーのほうがより大きなサイズのオリゴマーが観測された。
その結果、図10bに示すように、0℃及び室温でインキュベートして調製したAβ1−42オリゴマーのいずれについても蛍光を示し、化合物(1a)がAβ1−42オリゴマーに結合していることが明らかとなった。また、室温でインキュベートして調製したAβ1−42オリゴマーのほうがより強い蛍光を示した。
酸素化強度率(%)は、(酸素付加体の強度の合計)/((非酸素付加体(Native)の強度)+(酸素付加体の強度の合計))で算出した。
その結果、図10cに示すように、0℃及び室温でインキュベートして調製したAβ1−42オリゴマーのいずれについても、化合物(1a)が酸素化できることが明らかとなった。また、室温でインキュベートして調製したAβ1−42オリゴマーのほうがより大きな酸素化強度を示した。
その結果、図10dに示すように、0℃及び室温でインキュベートして調製したAβ1−42オリゴマーのいずれについてもNativeと比較して弱い蛍光強度を示し、化合物(1a)がAβ1−42オリゴマーのクロスβ構造の増加を抑えていることが明らかとなった。また、線維化も同様に抑えられていた。
(1)25mM塩酸溶液中のインスリン(400μM)を60℃で撹拌(1000rpm)しながらインキュベートして調製した非凝集(0時間インキュベート)及び凝集(12時間インキュベート)インスリン(160μM)を含む中性緩衝液に、化合物(1a)(20μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃で30分インキュベートした後、質量分析装置(MALDI−TOF MS)にて反応を追跡した。
その結果、図11aに示すように、非凝集インスリンでは酸素化の進行は認められず、凝集インスリンにおいては酸素化の進行が観察された。尚、光照射を行わなかった場合、凝集インスリンの酸素化は観測されなかった。
その結果、図11bに示すように、非凝集β2ーミクログロブリンでは酸素化の進行は認められず、凝集β2ーミクログロブリンの酸素化が観察された。尚、光照射を行わなかった場合は、凝集β2ーミクログロブリンの酸素化は観測されなかった。
その結果、図11c〜図11eに示すように、非凝集ランスサイレチンでは酸素化の進行は認められず、凝集トランスサイレチンの酸素化が観察された。尚、光照射を行わなかった場合は、凝集トランスサイレチンの酸素化は観測されなかった。
その結果、図11f及び図11gに示すように、非凝集αーシヌクレインでは酸素化の進行は認められず、凝集αーシヌクレインの酸素化が観察された。尚、光照射を行わなかった場合は、凝集αーシヌクレインの酸素化は観測されなかった。
(1)ヌクレオシドホスホリラーゼ(0.1mg/mL)を含むリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)を60℃でインキュベートし蛍光アッセイキット(Protein Stability and Aggregation Assay Kit(ProFoldin、Hudson、MO、USA))を用いて熱凝集度を追跡した。
その結果、図12aに示すように、ヌクレオシドホスホリラーゼを含むリン酸緩衝液をインキュベートしたところ、時間経過に伴いキットの蛍光強度(熱凝集度)の増加が観測された。0時間及び1時間インキュベートして調製したものをそれぞれ非凝集及び凝集ホスホリラーゼとして酸素化反応解析に用いた。
ヌクレオシドホスホリラーゼ(0.1mg/mL)を含むリン酸緩衝液(10mM,pH7.4)を60℃でインキュベートして調製した非凝集(0時間インキュベート)及び凝集(1時間インキュベート)ヌクレオシドホスホリラーゼに、リボフラビン(4μM)又は化合物(1a)(4μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、室温で10分インキュベートした後、エンドプロテイナーゼ(Lys−C)で消化し、質量分析装置(MALDI−TOF MS)にて反応を追跡した。
それぞれの酸素化率の比は、(凝集Aβ1−42の酸素化強度率)/(非凝集Aβ1−42の酸素化強度率)及び(凝集ヌクレオシドホスホリラーゼの酸素化強度率)/(非凝集ヌクレオシドホスホリラーゼの酸素化強度率)として算出した。
非凝集及び凝集ヌクレオシドホスホリラーゼにリボフラビン及び化合物(1a)を添加し、生理的条件下(pH7.4、室温)光照射を行ったところ、リボフラビンを用いた場合の酸素化率比は1.4程度であり、化合物(1a)を用いた場合の酸素化率比は1.2程度であった。
L−アスコルビン酸(500μM)を含む培養培地に、化合物(1a)(20μM)又はリボフラビン(4μM)を加え、LED照射下(波長500nm)、37℃で30分インキュベートした後、質量分析装置(LC−MSMS)にて反応を追跡した。
その結果、図13に示すように、L−アスコルビン酸に化合物(1a)(4.0mmol%)又はリボフラビン(0.8mmol%)を添加し、光照射を行ったところ、化合物(1a)を用いた場合にL−アスコルビン酸は100%残存していた。一方で、リボフラビンを用いた場合はL−アスコルビン酸は完全に消失していた。
この結果から、本発明化合物は、単に光照射を受けただけでは酸化作用を示さず、アミロイド凝集のようなクロスβシート構造に結合して初めて酸化作用を示すことが明らかになった。
Claims (10)
- 次の一般式(1)
R1は、置換基を有していてもよい炭化水素基を示し;
R2は水素原子、又は置換基を有していてもよい炭化水素基を示し;
R3及びR4は、同一又は異なって、水素原子、置換基を有していてもよい炭化水素基、アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基、又はシアノ基を示し;
R2とR4は一緒になってアルキレン基を形成してもよく、
R5はアニオンを示す)
で表されるベンゾチアゾール化合物。 - R1、R2、R3及びR4における炭化水素基に置換し得る基が、同一又は異なって、ハロゲン原子、アミノ基、ニトロ基、シアノ基、アルコキシ基、アシル基、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、芳香族炭化水素基及び複素環式基から選ばれる1〜3個である請求項1記載のベンゾチアゾール化合物。
- R1が、炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基である請求項1又は2記載のベンゾチアゾール化合物。
- R1が、炭素数1〜12のアルキル基である請求項1〜3のいずれか1項に記載のベンゾチアゾール化合物。
- R3が、水素原子又は炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基である請求項1〜4のいずれか1項に記載のベンゾチアゾール化合物。
- R3が、水素原子である請求項1〜5のいずれかに記載のベンゾチアゾール化合物。
- R2が、R4と一緒になってC2−C4アルキレン基を形成するか、あるいは炭素数1〜12のアルキル又はアルケニル基(このアルキル又はアルケニル基には、カルボキシル基、アルコキシカルボニル基、アミノ−CO基又はジペプチド−ヘキサペプチド−CO−基が置換し、このアミノ酸、ジペプチド〜ヘキサペプチドにはさらにC6-14アリール基及びアルコキシカルボニル基から選ばれる1〜2個が置換していてもよい。)である請求項1〜6のいずれか1項に記載のベンゾチアゾール化合物。
- 請求項1〜7のいずれにか1項に記載のベンゾチアゾール化合物を有効成分とする医薬。
- 病原性アミロイドが関与する疾患の予防又は治療薬である請求項8記載の医薬。
- 請求項1〜7のいずれか1項に記載のベンゾチアゾール化合物及び薬学的に許容される担体を含有する医薬組成物。
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