JP5838969B2 - 低分子化合物とアルギニンとを含有するウイルス不活化用組成物 - Google Patents
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Description
インフルエンザウイルス、ヘルペスウイルス、HIVなど、ウイルスの感染力が強いにも関わらず、ウイルス自体は比較的容易に不活化され得る場合、特にこの自主的な感染予防対策が有効となる。このような考えに基づき、アフリカ諸国のHIV感染リスクの高い人々に対し、界面活性剤を主成分とした処方箋不要の安価な消毒剤を用いるHIV感染抑制臨床研究が複数例実施されたが、一時的なウイルス不活化効果は確認されたものの、被験者の粘膜組織に炎症を生じたことから、HIV感染を逆に高めてしまうという、悲劇的な結果を招いた(非特許文献2〜4)。
界面活性剤は一般に、ウイルスを高度に不活化できるが、界面活性剤の持つ組織障害性は生体の免疫応答を誘導する傾向があるため、粘膜組織上でウイルスが増殖する疾患の場合には、その適用は極めて限定される。
いわゆる生体防御機構の促進剤(mucosal environment protection enhancer)を目指す例だが、この酸性緩衝剤ゲルが本当に酸性pHに基づいてウイルスを不活化するのか、現段階でも結論は得られていない。このゲルの場合、酸性pHは実際には機能せず、ゲルの物理障壁が有効だと結論付ける報告もある(非特許文献8)。
しかし、天然物由来であっても、ウイルスに対する不活化効果と生体に対する安全性の両立する成分を見出すことは容易ではない。さらに、多くの場合はそれら活性天然物の作用機構が判然とせず、そのことが天然物由来成分の感染症治療薬、あるいは感染抑制剤としての開発を難しくしている(非特許文献9)。
他方、生体構成アミノ酸の一種であるアルギニンは、アミノ酸ゆえに生体にとって極めて安全な成分でありながら、その濃度とpHとを適切に調整することで、高度なウイルス不活化効果を発揮することがわかっている(特許文献1、非特許文献10、11)。
すなわち、本発明は、(A)0.02〜0.3Mのアルギニンと、
(B)以下の(B-1)〜(B-3)のいずれかとを含有し、pHが3.8〜5.5であることを特徴とするウイルス不活化用組成物を提供する:
(B-1)0.01〜10 mMのフラボノイド類、ポリフェノール類又はアスコルビン酸誘導体、
(B-2)0.005〜5質量%のアルギニン誘導体、及び
(B-3)0.1〜2.5質量%の天然物の抽出液。
本発明はまた、
(A)0.02〜0.3Mのアルギニンと、
(B)以下の(B-1)〜(B-3)のいずれかとを含有し、pHが3.8〜5.5であることを特徴とするウイルス不活化用組成物:
(B-1)0.01〜10 mMのフラボノイド類、ポリフェノール類又はアスコルビン酸誘導体、
(B-2)0.005〜5質量%のアルギニン誘導体、及び
(B-3)0.1〜2.5質量%の天然物の抽出液
を、ウイルスに接触させる工程を含む、ウイルス不活化方法を提供する。
本発明のウイルス不活化用組成物中のアルギニンの濃度は、0.02 M以上であればウイルス不活化に有効であるが、ウイルス不活化の有効性と経済性とから上限は0.3Mとする。好ましくは0.03〜0.25 M、更に好ましくは0.05〜0.2 Mである。
アルギニンはL-体、D-体のいずれも使用できる。アルギニンはまた酸付加塩の形態で使用することもできる。酸付加塩を形成し得る酸としては、塩酸、硫酸等があげられる。
本発明のウイルス不活化用組成物中のポリフェノール類、フラボノイド類又はアスコルビン酸誘導体の濃度は、生体への刺激性や細胞毒性などの好ましくない作用を発揮する心配の無い程度の低濃度に留められる。具体的には、0.01〜10 mM、好ましくは0.02〜5 mM、より好ましくは0.05〜1 mMである。なお、ポリフェノール類はフラボノイド類を含む概念であることから、本発明において、ポリフェノール類とは、フラボノイド類以外のポリフェノール類をいう。
フラボノイド類、ポリフェノール類及びアスコルビン酸誘導体は生体への利用実績が豊富であり、医薬品、医薬品添加剤、医薬部外品添加剤、あるいは食品添加剤として承認されているものも多いが、本発明で使用可能なものとしては以下のものがあげられる。
フラボノイド類としては、(-)エピカテキンガレート、(-)エピガロカテキンガレート、(-)エピガロカテキン、(-)エピカテキン、(-)ガロカテキンガレート、などである。(-)エピカテキンガレート、(-)エピガロカテキンガレートが好ましい。
ポリフェノール類としては、カフェ酸、カフェ酸フェネチルエステル、タンニン、セサミン、セサミノール及びこれらと塩基との塩等があげられる。塩を形成する塩基としては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等があげられる。カフェ酸、カフェ酸フェネチルエステルが好ましい。
アスコルビン酸誘導体としては、デヒドロアスコルビン酸、リン酸-アスコルビン酸、アスコルビン酸グルコシド、ステアリン酸アスコビルやアスコルビン酸-2リン酸-6パルミチン酸のようなエステル類、及びこれらと塩基との塩等があげられる。塩を形成する塩基としては、水酸化ナトリウムや水酸化カリウム等があげられる。デヒドロアスコルビン酸が好ましい。
本発明のウイルス不活化用組成物中のアルギニン誘導体の濃度は、0.005〜5%である。該誘導体が界面活性効果を有する場合は、0.005 %以上であれば有効である。しかし、不必要に高濃度で用いると刺激性を発揮する可能性があることから、0.005〜0.5 %、好ましくは0.0075〜0.25 %、更に好ましくは0.01〜0.1 %である。該誘導体が界面活性効果を有さない場合は、好ましくは0.2〜5%、より好ましくは0.5〜3%である。
アルギニン誘導体の中には、医薬品、医薬品添加剤、食品添加剤、あるいは香粧品原料として承認されているものも多いが、本発明で使用可能なアルギニン誘導体としては炭素数8〜16個のアシル鎖を持つアシルアルギニン及びこれらと酸又は塩基との塩等があげられる。塩を形成する酸としては、塩酸等があげられる。塩を形成する塩基としては、水酸化ナトリウム等があげられる。炭素数8〜16個のアシル鎖を持つアシルアルギニンの具体例としては、ココイルアルギニンエチルエステル、ラウロイルアルギニンエチルエステル等があげられる。ココイルアルギニンエチルエステル、ラウロイルアルギニンエチルエステルが好ましい。
天然物の抽出液の中には、上記(B-1)の少なくとも一成分を含有するものがある。このような天然物の抽出液も本発明において使用できる。例えば、緑茶抽出液にはフラボノイド類、すなわち、カテキン類が高濃度に含まれることがわかっており、エピガロカテキンガレート、エピカテキンガレート、エピガロカテキン、エピカテキンの4種類で代表される主要カテキン類の含量は約0.3 %との報告がある(FFI Reports、2010年2月25日アクセス:www.saneigenffi.co.jp/foods/img1/catechin.pdf)。緑茶抽出液を添加する場合は、本発明のウイルス不活化用組成物中の天然物の抽出液の含量を0.1〜2.5 %に、好ましくは0.2〜1.5 %に、更に好ましくは0.4〜1.2 %に調整する。これは、本発明の組成物中の主要カテキン類の含量に換算すると、0.0003 %〜0.0075 %となり、モル濃度では0.007〜0.175 mMという濃度に相当する。この濃度は(B-1)に関して上で説明した濃度よりも低い。これは、如何なる理論にも制限されるものではないが、天然物の抽出液には、主要カテキン類に加えて、その他のカテキン類、カテキン以外のポリフェノール類、アスコルビン酸類などが含まれており、主要カテキン類と相まって、更に強い効果を発揮することが期待されるためである。
pH調整に用いる緩衝液成分としては、乳酸、乳酸ナトリウム、クエン酸、クエン酸ナトリウム、グリコール酸、コハク酸、酒石酸、dl−リンゴ酸、ホウ酸、ホウ砂、リン酸水素ナトリウム、2−アミノ−2−メチル−1−プロパノール、2−アミノ−2−メチル−1,3−プロパンジオール、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、トリエタノールアミン、炭酸カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素アンモニウム等などが挙げられる。緩衝液成分は、沈殿物を形成しないように、CaやMgを含まないのが良い。
酸化防止剤としては、ジブチルヒドロキシトルエン、ブチルヒドロキシアニソール、没食子酸プロピル、アスコルビン酸などが挙げられる。
キレート剤としては、エデト酸二ナトリウム、エタンヒドロキシジホスフエート、ピロリン酸塩、ヘキサメタリン酸塩、クエン酸、酒石酸、グルコン酸等が挙げられる。
油脂類としては、液状油剤として、メドフォーム剤、マカデミナナッツ油、ツバキ油、トウモロコシ油、ミンク油、オリーブ油、アボガド油、サザンカ油、ヒマシ油、サフラワー油、キョウニン油、ホホバ油、ブドウ油、ヒマワリ油、アルモンド油、ナタネ油、ゴマ油、小麦胚芽油、米胚芽油、米ヌカ油、綿実油、大豆油、落花生油、茶実油、月見草油、卵黄油、トリグリセリン、トリオクタン酸グリセリン、トリイソパルミチン酸グリセリンなどが挙げられる。固形油剤として、セタノール、セトステアリルアルコール、ステアリルアルコール、ベヘニルアルコール、カカオ脂、ヤシ油、パーム油、パーム核油、硬化油、硬化ヒマシ油、モクロウ、シアバターなどが挙げられる。
エステル油類としては、オクタン酸セチルなどのオクタン酸エステル、ラウリン酸ヘキシルなどのラウリン酸エステル、ミリスチン酸イソプロピル、ミリスチン酸オクチルドデシルなどのミリスチン酸エステル、パルミチン酸オクチルなどのパルミチン酸エステル、ステアリン酸イソセチルなどのステアリン酸エステル、イソステアリン酸イソプロピルなどのイソステアリン酸エステル、イソパルミチン酸オクチルなどのイソパルミチン酸エステル、オレイン酸イソデシルなどのオレイン酸エステルなどが挙げられる。
炭化水素油としては、流動パラフィン、オゾケライト、スクワラン、パラフィン、イソパラフィン、セレシン、ワセリン、マイクロクリスタリンワックスなどが挙げられる。
シリコーン油としては、ジメチルポリシロキサン、メチルフェニルポリシロキサンなどの鎖状シリコーン、オクタメチルシクロテトラシロキサン、デカメチルシクロペンタシロキサン、ドデカメチルシクロヘキサシロキサンなどの環状シリコーンなどが挙げられる。
ステロールとしては、コレステロール、シトステロール、フィトステロール、ラノステロールなどが挙げられる。
本発明のウイルス不活化用組成物はさらに、必要に応じて、適当な香料、色素等を、透明性や安定性を損なわない範囲で含むことができる。
なお、本明細書において、特に記載の無い限り、「%」は、本発明のウイルス不活化用組成物の全質量を基準とした質量%を意味する。
0.5 % ウシ胎児血清を添加したMEM培地(Eagle's minimum essential medium)中で、Vero細胞を用いてHerpes simplex virus type 1, strain F(HSV-1)を増殖させ、濃いウイルス液を調製した。該ウイルス液は、使用するまで-80 ℃で保管した。該ウイルス溶液のウイルス濃度は、約108 PFU (Plaque Forming Units)/mlであった。
一方、カフェ酸(シグマアルドリッチ製)及びアルギニンを用い、表1に示す種々の濃度のサンプル溶液を調製した。サンプル溶液は全て、20 mM酢酸ナトリウム緩衝液でpH 4.0(25℃)に調整した。
これと同時に、同じウイルス液10μlを、ダルベッコ等張リン酸緩衝液(Ca、Mg不含)190μlに添加し、30℃で5分間保温した。保温終了後、前記Plaque Assayを用いて感染力を有するウイルス量を測定した。これをウイルス不活化反応が進行しなかった場合のウイルス量、すなわち、不活化前のウイルス量とした。
0.1、0.5、1.0 mMのカフェ酸のみを添加した各サンプル溶液の場合、不活化効率は1〜1.4倍にとどまり、カフェ酸には濃度依存的な不活化効率の上昇は認められなかった。
一方、0.2 Mアルギニンを各サンプル溶液に共存させると、カフェ酸の添加濃度依存的に不活化効率は上昇し、1 mMでは最初の7.8倍に達した。すなわち、アルギニンとカフェ酸が共存して初めて、カフェ酸は濃度依存的にウイルスを不活化することがわかった。
カフェ酸をカフェ酸フェネチルエステル(シグマアルドリッチ製)に変更し、濃度を表2に記載のものに変更したこと以外は実施例1と同様にして、各サンプル溶液のウイルス不活化効率を測定した。各サンプル溶液の不活化効率を、0.01 mMカフェ酸フェネチルエステル単独での不活化効率に対する相対値で示した。結果を表2に示す。
0.01 mMカフェ酸フェネチルエステル単独で不活化したときの残存ウイルス量は、不活化前の0.3 %に低下した。カフェ酸フェネチルエステルのみの濃度を0.1 mMまで上昇させても、不活化効率はまったく変化しなかった。
一方、0.2 Mアルギニンを各サンプル溶液に共存させたとき、カフェ酸フェネチルエステルの添加濃度依存的に不活化効率は上昇し、0.1 mMでは最初の243倍を越える高値にまで達した。すなわち、アルギニンとカフェ酸フェネチルエステルが共存して初めて、カフェ酸フェネチルエステルは濃度依存的にウイルスを不活化することがわかった。
カフェ酸をデヒドロアスコルビン酸(和光純薬製)に変更し、濃度を表3に記載のものに変更したこと以外は実施例1と同様にして、各サンプル溶液のウイルス不活化効率を測定した。各サンプル溶液の不活化効率を、0.1 mMデヒドロアスコルビン酸単独での不活化効率に対する相対値で示した。結果を表3に示す。
0.1 mMデヒドロアスコルビン酸単独で不活化したときの残存ウイルス量は、不活化前の7.3 %に低下した。デヒドロアスコルビン酸の濃度を10 mMまで上昇させても、不活化効率はまったく変化しなかった。
一方、0.2 Mアルギニンを各サンプル溶液に共存させたとき、デヒドロアスコルビン酸の添加濃度依存的に不活化効率が上昇し、10 mMでは最初の7200倍を越える高値にまで達した。すなわち、アルギニンとデヒドロアスコルビン酸が共存して初めて、デヒドロアスコルビン酸は濃度依存的にウイルスを不活化することがわかった。
カフェ酸を、(-)エピカテキンガレート又は(-)エピガロカテキンガレート(いずれも和光純薬製)に変更し、濃度を表4に記載のものに変更したこと以外は実施例1と同様にして、各サンプル溶液のウイルス不活化効率を測定した。各サンプル溶液の不活化効率を、0.1 mM(-)エピカテキンガレート又は(-)エピガロカテキンガレート単独での不活化効率に対する相対値で示した。結果を表4に示す。
0.1 mM(-)エピカテキンガレート又は(-)エピガロカテキンガレート単独で不活化したときの残存ウイルス量は、ぞれぞれ、不活化前の0.04 %、0.02 %に低下した。(-)エピカテキンガレートの濃度を0.5 mMに上昇させると、不活化効率は最初の27倍に、(-)エピガロカテキンガレートの濃度を0.5 mMに上昇させると、不活化効率は最初の268倍に、それぞれ上昇した。
一方、0.2 Mアルギニンを各サンプル溶液に共存させたとき、不活化効率は、アルギニン無添加の場合の不活化効率の59倍に上昇し、更に0.5 mMでは最初の6408倍を越える高値に達した。また、(-)エピガロカテキンガレートについても、0.2 Mアルギニンを共存させると、0.1 mM(-)エピガロカテキンガレートの不活化効率は12倍に上昇し、更に0.5 mMでは最初の2650倍を越える高値に達した。すなわち、アルギニンを共存させることにより、カテキン類の不活化効果を劇的に上昇させることがわかった。
0.1 % ウシ血清アルブミンおよび4 μg/ml アセチル化トリプシンを添加したMEM培地(Eagle's minimum essential medium)中で、MDCK細胞を用い、Influenza virus A/Aichi (H3N2)を増殖させ、濃いウイルス溶液を調製した。該ウイルス溶液は、使用するまで-80 ℃で保管した。該ウイルス溶液のウイルス濃度は、約108 PFU (Plaque Forming Units) /mlであった。
このようにして得られた種々の濃度緑茶抽出希釈液のpHを4.2又は4.8に調整し、アルギニン無添加のサンプル溶液とした。
同時に、上で得られた種々の濃度緑茶抽出希釈液にアルギニンを添加して0.115 Mとした後に、pHを4.2又は4.8(25℃)に調整し、アルギニンを添加したサンプル溶液とした。
これと同時に、同じウイルス溶液10μlを、ダルベッコ等張リン酸緩衝液(Ca、Mg不含)190μlに添加し、30℃で5分間保温した。保温終了後、前記Plaque Assayを用いて感染力を有するウイルス量を測定した。これをウイルス不活化反応が進行しなかった場合のウイルス量、すなわち、不活化前のウイルス残存量とした。
pH 4.2、4.8のいずれにおいても、0.1〜2.5 %緑茶抽出液単独では、インフルエンザウイルス不活化効率の濃度依存的な上昇は明瞭には観察されなかった。
0.115 Mアルギニンを共存させると、緑茶抽出液濃度、0.1〜2.5 %において、pH 4.2では最初の3〜9倍に、pH 4.8では最初の1.27〜3.28倍に達した。すなわち、アルギニンの共存は緑茶抽出液のインフルエンザ不活化効果を上昇させることがわかった。
実施例1と同様に、10 mMクエン酸ナトリウム緩衝液にてpH 4.0(25℃)に調整された0.005 %のアルギニン誘導体(ココイルアルギニンエチルエステル、Cocoyl Arginine Ethylester、CAE;味の素(株)製)、および0.058〜0.287 Mのアルギニンを含む各サンプルのヘルペスウイルス不活化効果を測定し、実施例1と同様に、各サンプルの不活化効率を0.005 % CAE単独の不活化効率に対する相対値で示した(表6)。
0.005 % CAE単独で不活化したときの残存ウイルス量は、不活化前の0.4 %に低下した。0.058 Mアルギニン単独の不活化効率は0.005 % CAE単独の0.03倍に過ぎなかったが、この両者を混合すると、不活化効率は1.13倍に上昇した。0.005 % CAEに0.115 Mアルギニンを混合すると、不活化効率は20倍に達し、0.172、0.230、0.287 Mアルギニンを混合すると、不活化効率は同じく最初の283倍を超える高値を示した。すなわち、アルギニン誘導体とアルギニンとの共存は、ヘルペスウイルスの不活化効果を劇的に上昇させることがわかった。
実施例5と同様に、10 mMクエン酸ナトリウム緩衝液にてpH 4.8(25℃)に調整された0.01 %、あるいは0.02 %のアルギニン誘導体(ココイルアルギニンエチルエステル、Cocoyl Arginine Ethylester、CAE;味の素(株)製)、および0 Mまたは0.115 Mのアルギニンを含む各サンプルのインフルエンザウイルス不活化効果を測定し、実施例5と同様に、各サンプルの不活化効率を0.01 % CAE単独の不活化効率に対する相対値で示した(表7)。
0.01 % CAE単独で不活化したときの残存ウイルス量は、不活化前の3.1 %に低下した。ここに0.115 Mのアルギニンを共存させると、ウイルス不活化効果は一挙に82倍に上昇した。また、0.02 % CAE単独の不活化効果は4倍に過ぎなかったが、ここに0.115 Mアルギニンを共存させると、同様に63倍へと不活化効果は上昇した。すなわち、pH 4.8においても、アルギニン誘導体とアルギニンとの共存は、ウイルス不活化効果を劇的に上昇させることがわかった。
カフェインとアルギニンの混合によるウイルス不活化効果の変化
10 mMクエン酸ナトリウム緩衝液にてpH 4.0(25℃)に調整された0.5〜2 mMのカフェイン(和光純薬製)と0.2 Mのアルギニンとを混合したサンプルを調整し、実施例1と同様に、各サンプルの不活化効率を0.5 mMカフェイン単独の不活化効率に対する相対値で示した(表8)。
0.5 mMカフェイン 単独で不活化したときの残存ウイルス量は、不活化前の3.4 %に低下した。カフェイン濃度を単独で2 mMまで上昇させても、不活化効率は全く変化しなかった。
一方、0.2 Mアルギニン単独の不活化効率は0.5 mMカフェインの1075倍と高かったが、ここに濃度を変えたカフェインを共存させても、不活化効率は上昇することなく、むしろ低下する傾向を示した(253〜717倍)。これら結果より、カフェインとアルギニンとを共存させても、ウイルス不活化効果を改善することはできないとわかった。
実施例1のアルギニンの代わりに0.2 M NaClを用いて、カフェ酸とNaClとの共存効果を調べた。20 mM酢酸ナトリウム緩衝液にてpH 4.0(25℃)に調整された0.1〜1 mMのカフェ酸(シグマアルドリッチ製)と0.2 MのNaClとを混合したサンプルを調製し、実施例1と同様に、各サンプルの不活化効率を0.1 mMカフェ酸単独の不活化効率に対する相対値で示した(表9)。
0.1 mMカフェ酸単独で不活化したときの残存ウイルス量は、不活化前の0.13 %に低下した。0.1 mMカフェ酸に0.2 M NaClを共存させると、ウイルス不活化効率は0.01倍にまで劇的に低下した。カフェ酸濃度を0.5、1.0 mMまで上昇させても、不活化効率は全く回復しなかった(それぞれ、0.009倍、0.007倍)。pH 4.0の0.2 M NaClの不活化効率は0.011倍であり、各濃度のカフェ酸の共存させた各サンプルの不活化効率とほぼ同程度であったことから、NaClの特性に支配されてしまったことがわかった。
最近、200MPaを超える高圧ウイルス不活化処理において、不活化検体にNaClやスクロースを共存させると、不活化効果が顕著に阻害されることが報告された(International Journal of Food Microbiology 130, 61-64 (2009))。比較例2で示されたNaCl共存下でのウイルス不活化効果の劇的な低下は、高圧ウイルス不活化処理で観察されたウイルス安定化効果と類似の現象である。
一方、実施例1〜7で示されたとおり、アルギニンの共存は、共存相手である各化合物に濃度依存的なウイルス不活化効果を発揮させたり、不活化効率を増進させたりしており、NaClなどの塩類やポリオール類について報告された安定化作用のちょうど正反対の効果である。
Claims (13)
- (A)0.02〜0.3Mのアルギニンと、
(B)以下の(B-1)〜(B-2)のいずれかとを含有し、pHが3.8〜5.5であることを特徴とするウイルス不活化用組成物:
(B-1)0.01〜10 mMのフラボノイド類、ポリフェノール類又はアスコルビン酸誘導体であって、
フラボノイド類が、(-)エピカテキンガレート、(-)エピガロカテキンガレート、(-)エピガロカテキン、(-)エピカテキン及び(-)ガロカテキンガレートからなる群から選ばれ、
ポリフェノール類が、カフェ酸、カフェ酸フェネチルエステル、タンニン、セサミン、セサミノール、及びこれらのいずれかと塩基との塩からなる群から選ばれ、
アスコルビン酸誘導体が、デヒドロアスコルビン酸、リン酸-アスコルビン酸、アスコルビン酸グルコシド、ステアリン酸アスコビルやアスコルビン酸-2リン酸-6パルミチン酸、及びこれらのいずれかと塩基との塩からなる群から選ばれ、及び
(B-2)0.005〜5質量%のアルギニン誘導体であって、
アルギニン誘導体が、炭素数8〜16個のアシル鎖を持つアシルアルギニン、該アシルアルギニンと酸との塩、及び該アシルアルギニンと塩基との塩からなる群から選ばれる。 - フラボノイド類が緑茶抽出液である請求項1記載のウイルス不活化用組成物。
- フラボノイド類が、(-)エピカテキンガレート又は(-)エピガロカテキンガレートである請求項1記載のウイルス不活化用組成物。
- ポリフェノール類が、カフェ酸又はカフェ酸フェネチルエステルである請求項1記載のウイルス不活化用組成物。
- アスコルビン酸誘導体が、デヒドロアスコルビン酸である請求項1記載のウイルス不活化用組成物。
- アルギニン誘導体が、炭素数8〜16個のアシル鎖を持つアシルアルギニンである請求項1記載のウイルス不活化用組成物。
- アシルアルギニンがココイルアルギニンエチルエステルである請求項6記載のウイルス不活化用組成物。
- アシルアルギニンがラウロイルアルギニンエチルエステルである請求項6記載のウイルス不活化用組成物。
- ウイルスが、ヒト又は動物の皮膚又は粘膜組織に存在する脂質エンベロップを有するウイルスである、請求項1〜8のいずれか1項記載のウイルス不活化用組成物。
- ウイルスが、インフルエンザウイルス、ヘルペスウイルス、又はコロナウイルスである、請求項9記載のウイルス不活化用組成物。
- 請求項1〜10のいずれか1項記載のウイルス不活化用組成物を、ウイルスに接触させる工程を含む、ウイルス不活化方法(ただし、人間の治療方法を除く)。
- ウイルスが、ヒトを除く動物の皮膚又は粘膜組織に存在する脂質エンベロップを有するウイルスである、請求項11記載のウイルス不活化方法。
- ウイルスが、インフルエンザウイルス、ヘルペスウイルス、又はコロナウイルスである、請求項12記載のウイルス不活化方法。
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