JP5312028B2 - インターロイキン−1コンジュゲート及びその使用 - Google Patents
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Description
本発明は、医学野、公衆衛生、免疫学、分子生物学及びウイルス学の分におけるものである。本発明は、ウイルス様粒子(VLP)又はウイルス粒子と少なくとも一の抗原を含有してなる組成物であって、該抗原がVLP又はウイルス粒子に共有結合したインターロイキン-1(IL-1)タンパク質、IL-1断片ないしはペプチド又はIL-1変異タンパク質である、組成物を提供する。また、本発明は組成物を産生するための方法を提供する。本発明の組成物は、関節リウマチ、骨関節炎などを含む様々なヒトの疾患の治療のためのワクチンの産生に有用である。本発明の組成物によって有効な免疫応答、特に抗体応答が誘導される。
IL-1は、マクロファージ、樹状細胞、B細胞及びT細胞を含む様々な種類の細胞によって産生される強力な炎症誘発性サイトカインである(Dinarello C.A., 1991. Blood 77(8): 1627-1652)。限定した配列の同一性しか有しないが、IL-1レセプタータイプI(IL-1RI)への結合により類似の生物学的な活性を及ぼす2種の分子、IL-1α及びIL-1βからなる(Dinarello C.A.等, 1997, Cytokine & Growth Factor Rev. 8: 253)。また、両IL-1分子は細胞内シグナル伝達ドメインを欠く第二IL-1レセプター(IL-1RII)にも結合し、デコイレセプターとして調節的な役割を果たすと考えられる(Dinarello C.A.等, 1997, Cytokine & Growth Factor Rev. 8: 253)。さらに、IL-1ファミリーの第三のメンバーであるIL-1レセプターアンタゴニスト(IL-1ra)は、アゴニスト活性を全く及ぼすことなく両レセプターに結合する。IL-1RII及びIL-1RI及びIL-1RIIのシェド(shed)型とIL-1raは、IL-1α及びIL-1βのを中和し、炎症応答を厳密に調節する。
IL-1媒介性炎症応答の調節不全は、関節リウマチ、炎症性腸疾患、腎症、骨粗鬆症などを含む多くのヒトの疾患において観察される。これらの疾患それぞれにおいて、IL-1の過剰産生及び/又はIL-1raの過少産生は疾患の発症の素因となる(Arend W.P., 2002, Cytokine & Growth Factor Reviews 13:323-340)。IL-1raの組み換えバージョン(アナキンラ、Kineret(登録商標))は、炎症の低減及びいくつかの炎症性疾患の組織損傷の予防に効果的であるが、高い全身濃度と薬剤の短い半減期が必要であるため高用量(〜100mg)の頻回(毎日)投与を要する。この結果、費用が高く、患者のコンプライアンスの問題が生じうる(Kineret(登録商標)処方情報、Amgen; Granowitz E.V.等 1992, Cytokine 4:353)。さらに、大多数の患者はKineret(登録商標)に対する抗体を産生し、薬剤の生物学的活性を中和しうる(Fleischmann R.M.,等, 2003, Arthritis Rheum 46:2287)。
米国特許第6093405号は、化学的又は物理的に不活性化されたサイトカイン自体を含有する免疫原性組成物による免疫化によって循環サイトカインのレベルを減少する方法を開示する。この方法では、天然のサイトカインが物理的又は化学的な処置によって免疫原性になるのに対して、本発明は、VLPの表面上に高度に反復した様式で天然のサイトカインを提示することによって天然のサイトカインを免疫原性にするための方法を開示する。さらに、国際公開第2003/084979号は、サイトカインの過剰産生に関係する疾患の治療のための5−40のアミノ酸長のサイトカイン由来ペプチドを含有する免疫原性化合物の使用を記述する。
驚くべきことに近年、発明者等は、少なくとも1のIL-1分子を含有する本発明の組成物及びワクチンのそれぞれがIL-1に対する免疫応答、これによる特に抗体応答を誘導するだけでなく、さらにインビボでのIL-1の炎症誘発性の活性を中和することができることを明らかにした。さらに驚くべきことに、発明者等は、本発明に従ってVLPに共有結合させたIL-1分子が、関節リウマチのマウスモデルの関節炎の臨床徴候及び炎症から防御しうることを明らかにした。さらに、発明者等は、本発明の組成物が、ヒトの関節リウマチの治療が承認されている組み換えIL-1レセプターアンタゴニストであるKineret(登録商標)より良好に関節炎症状の発達からマウスを防御したことを明らかにした(実施例7)。さらに驚くべきことに、発明者等は、本発明の組成物を遺伝的に罹患しやすいマウスに注射した場合に、アテローム硬化性症状の発達を阻害することが可能であり(実施例4)、ゆえにアテローム性動脈硬化の有効な治療であることを明らかにした。さらに、発明者等は、IL-1αがアテローム性動脈硬化の発症に関与することを示した。
さらに、本発明は、ヒト又は動物、好ましくは哺乳類へワクチン組成物を投与する方法を提供する。本発明のワクチン組成物は、典型的及び好ましくは少なくとも1のアジュバントの非存在下で、強力な免疫応答、特に抗体応答を誘導することができる。ゆえに、ある好適な実施態様では、ワクチンはアジュバントを欠いている。アジュバントの使用を避けると、望ましくない炎症性T細胞応答が生じる可能性が減少しうる。
ある好適な実施態様では、VLPはRNAバクテリオファージのVLPである。 更なる好適な実施態様では、前記RNAバクテリオファージは、Qβ、fr、GA及びAP205からなる群から選択されるRNAバクテリオファージである。更なる好適な実施態様では、組成物及びワクチン組成物のそれぞれに含まれるRNAバクテリオファージの前記VLPは宿主内で組み換えて産生され、RNAバクテリオファージのVLPは宿主のRNA、好ましくは宿主の核酸を本質的に欠いている。望ましくないT細胞応答並びに熱などの他の望ましくない副作用を避けるために、宿主のRNAの量を減らす、好ましくは取り除くことは有用である。
更なる態様では、本発明は、本発明の組成物と受容可能な製薬的担体とを含有してなる製薬的組成物を提供する。
また更なる態様では、本発明は、(a) 少なくとも1の第一付着部位を有するVLPを供給すること、(b) 少なくとも1の第二付着部位を有する少なくとも1の抗原を供給すること、このとき該抗原がIL-1分子、IL-1タンパク質、IL-1成熟断片、IL-1ペプチド又はIL-1変異タンパク質であること、そして、(c) 組成物を生産するために該VLPと該少なくとも1の抗原を結合させること、このとき該少なくとも1の抗原と該VLPが該少なくとも1の第一付着部位と該少なくとも1の第二付着部位を介して結合するものであること、を含んでなる本発明の組成物の産生方法を提供する。
特に定義しない限り、本明細書で使用する技術用語及び科学用語はすべて、本発明が属する分野の当業者によって一般的に理解されているのと、同じ意味を有する。
アジュバント:本明細書中で用いられる「アジュバント」なる用語は、本発明のワクチン及び薬剤組成物のそれぞれと組み合わせると、より亢進した免疫応答を供給しうる、宿主内の貯蔵所となる物質ないしは免疫応答の非特異的刺激因子を意味する。様々なアジュバントが用いられうる。例として、完全及び不完全なフロイントアジュバント、アルミニウム水酸化物及び修飾ムラミルジペプチドなどがある。更なるアジュバントは、ミネラルゲル、例えば酸化アルミニウム三水和物、界面活性物質、例えばリゾレシチン、プルロニックポリオル、ポリアニオン、ペプチド、油乳濁液、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール及び潜在的に有用なヒトアジュバント、例えばBCG (ウシ型弱毒結核菌ワクチン)及びコリネバクテリウムパルバムである。このようなアジュバントも当分野で公知である。本発明の組成物とともに投与されうる更なるアジュバントには、モノホスホリル脂質免疫修飾物質、AdjuVax 100a、QS-21、QS-18、CRL1005、アルミニウム塩類(ミョウバン)、MF-59、OM-174、OM-197、OM-294及びVirosomalアジュバント技術が含まれるが、これらに限定するものではない。また、アジュバントは、これらの物質の混合物を含んでもよい。VLPは一般的にアジュバントとして記載されている。しかしながら、本明細書中の文脈で用いる「アジュバント」なる用語は、本発明の組成物に用いたVLPでないアジュバントであり、むしろ更なる遠位の成分に関する。
エピトープ:エピトープなる用語は、MHC分子の環境におけるT細胞レセプター又は抗体によって特異的に結合される抗原、好ましくはポリペプチドの連続的な又は非連続的な部位を意味する。抗体に関して、特異的な結合は、非特異的な結合が除外されるが必ずしも交差反応が除外されない。典型的に、エピトープは、抗原性部位に特有の空間的な立体構造内に5−10アミノ酸を含有する。
特異的な結合(IL-1/IL-1レセプター):レセプターとレセプターリガンドとの相互作用は、一般に当分野で公知の生物物理学的な方法、例えばELISA又はBiacore分析によって特徴付けされうる。IL-1レセプターへのIL-1の結合親和性(Ka)が少なくとも105M−1、好ましくは少なくとも106M−1、より好ましくは少なくとも107M−1、さらにより好ましくは少なくとも108M−1、及び最も好ましくは少なくとも109M−1であり、好ましくは該IL-1レセプターがマウス又はヒト、最も好ましくはヒトのIL-1レセプターである場合に、IL-1分子はIL-1レセプターを特異的に結合することができるとみなす。さらに好ましくは、前記IL-1レセプターは、配列番号:166から配列番号:169のいずれか一の配列を含むか、より好ましくはこれからなり、最も好ましくは前記IL-1レセプターは配列番号:166及び配列番号:167のいずれかの配列を含むか、好ましくはこれからなる。
IL-1β分子:本明細書中で用いる「IL-1β分子」又は単に「IL-1β」なる用語は、配列番号:49から62、配列番号:64、配列番号:66、配列番号:89から配列番号:116、配列番号:130から配列番号:140、配列番号:164及び配列番号:165からなる群から選択されるいずれか一の配列に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%及び最も好ましくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを含むか、あるいはこれからなるIL-1βタンパク質、IL-1β断片、IL-1β成熟断片、IL-1βペプチド又はIL-1β変異タンパク質を指す。IL-1βの特に好適な実施態様は、ヒトIL-1β117−269(配列番号:64)である。
好適なIL-1α成熟断片は、(a) ヒトIL-1α119−271(配列番号:63);(b) マウスIL-1α117−270(配列番号:65);(c) マウスIL−1α117-270s(配列番号:163);及び、(e) 配列番号:63、配列番号:65及び配列番号:163のいずれか一に、少なくとも80%、又は好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、又は最も好ましくは少なくとも99%の同一性があるアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むか、好ましくはこれからなる。
好適なIL-1β成熟断片は、(a) ヒトIL-1β117−269(配列番号:64);(b) ヒトIL-1β116−269(配列番号:165);(c) マウスIL-1β119−269(配列番号:66);(d) マウスIL-1β119−269s(配列番号:164);及び、(e) 配列番号:64、配列番号:66、配列番号:164及び配列番号:165のいずれか一に、少なくとも80%、又は好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、又は最も好ましくは少なくとも99%の同一性があるアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むか、好ましくはこれからなる。
好適なIL-1変異タンパク質では、前記生物学的な活性は、由来するIL-1分子の生物学的な活性の80%未満、より好ましくは60%未満、さらにより好ましくは40%未満、さらにより好ましくは20%未満である。さらに好適なIL-1変異タンパク質はIL-1成熟断片に由来し、該IL-1変異タンパク質の生物学的な活性は、該IL-1変異タンパク質が由来するIL-1成熟断片の生物学的な活性の80%未満、より好ましくは60%未満、さらにより好ましくは40%未満、さらにより好ましくは20%未満である。非常に好適なIL-1変異タンパク質は生物学的な活性を示さない。さらに好ましくは必須ではないが、IL-1変異タンパク質はIL-1レセプターを特異的に結合することができる。(i) IL-1タンパク質、好ましくは配列番号:36から配列番号:62;又は、(ii) より好ましくはIL-1成熟断片、好ましくは配列番号:63から配列番号:66、配列番号:130、及び配列番号:163から配列番号:165のいずれかに由来するIL-1変異タンパク質が非常に好ましい。
組み換えVLP:本明細書中で用いる「組み換えVLP」なる用語は、少なくとも1工程の組み換えDNA技術を含む方法によって得られるVLPを指す。本明細書中で用いる「組み換えて産生されたVLP」なる用語は、少なくとも1工程の組み換えDNA技術を含む方法によって得られるVLPを指す。ゆえに、「組み換えVLP」及び「組み換えて産生されたVLP」なる用語は本明細書中で交換可能に用い、同一の意味を有しなければならない。
ここで用いられるウイルス様粒子(VLP)は、非複製性又は非感染性、好ましくは非複製性かつ非感染性のウイルス粒子を指し、又はウイルス粒子、好ましくはウイルスのキャプシドに類似する非複製性又は非感染性、好ましくは非複製性かつ非感染性の構造を指す。本明細書中で用いる「非複製性」なる用語は、VLPに含まれるゲノムを複製することができないことを意味する。本明細書中で用いる「非感染性」なる用語は、宿主細胞に侵入できないことを意味する。好ましくは、本発明のウイルス様粒子は、ウイルスゲノムないしはウイルスゲノム機能の全て又は一部を欠いているため、非複製性及び/又は非感染性である。一実施態様では、ウイルス様粒子はウイルス粒子であり、このウイルスゲノムは物理的又は科学的に不活性化されている。典型的かつより好ましくは、ウイルス様粒子はウイルスゲノムの複製性及び感染性の相等物のすべて又は一部を欠いている。本発明のウイルス様粒子は、それらのゲノムと異なる核酸を含みうる。本発明のウイルス様粒子の典型的かつ好ましい実施態様では、対応するウイルス、バクテリオファージ、好ましくはRNAバクテリオファージのウイルスキャプシド等の、ウイルスキャプシドである。「ウイルスキャプシド」又は「キャプシド」なる用語は、ウイルスタンパク質のサブユニットから構成される巨大分子の集合体を指す。典型的には、60、120、180、240、300、360及び360以上のウイルスタンパク質サブユニットである。典型的かつ好ましくは、これらのサブユニットの相互作用により、固有の反復して組織化される、ウイルスキャプシド又はウイルスキャプシド様構造が形成される。前記構造は典型的には球状又は管状である。例えば、RNAバクテリオファージのキャプシド又はHBcAgは、正二十面体の対称の球状形である。本明細書中で用いる「キャプシド様構造」なる用語は、上記に定義された文脈においてキャプシドの形態に似ているが典型的な対称の集合体(アセンブリ)から逸脱しており、なおかつ十分な程度の規則性及び反復性を維持しているウイルスタンパク質サブユニットからなる高分子集合体を意味する。ウイルス粒子とウイルス様粒子のある共通の特徴は、そのサブユニットの非常に規則的な反復した配位である。
ポリペプチドのアミノ酸相同性は、ベストフィット(Bestfit)などの公知のコンピュータプログラムを用いて慣習的に測定することができる。ベストフィットないしは任意の他の配列アラインメントプログラムを用いて、好ましくはベストフィットを用いて、特定の配列が例えば参照するアミノ酸配列に対して95%の相同性があるかどうかを決定するために、参照アミノ酸配列の完全長に対する相同性の割合が算出され、参照配列中のアミノ酸残基の合計数の5%以下の相同性にギャップが挿入されるようにパラメータを設定する。ポリペプチド間の相同性の割合を測定する前述の方法は、本発明に開示するすべてのタンパク質、ポリペプチドないしはその断片に適するものである。
規則的で反復性の構造を有する当分野で公知の任意のウイルスは、本発明のVLP又はウイルス粒子として選択してもよい。VLPの調整のために使用されうる具体的なDNAないしRNAウイルスのコート又はキャプシドタンパク質は、国際公開第2004/009124号の25頁の10−21行目、26頁の11−28行目及び28頁の4行目から31頁の4行目に開示されている。これらの開示内容は出典明記により本明細書中に援用される。
好適な実施態様では、コア粒子はウイルス粒子であり、好ましくは該ウイルス粒子はバクテリオファージであり、さらに好ましくは該バクテリオファージはRNAバクテリオファージであり、よりさらに好ましくは該RNAバクテリオファージは、Qβ、fr、GA又はAP205から選択されるRNAバクテリオファージである。
好適な一実施態様では、ウイルス様粒子は、a) RNAバクテリオファージ;b) バクテリオファージ;c) B型肝炎ウイルス、好ましくはそのキャプシドタンパク質(Ulrich, 等, Virus Res. 50: 141-182 (1998))又はその表面タンパク質(国際公開公報92/11291);d) はしかウイルス(Warnes, 等, Gene 160:173-178 (1995));e) シンドビスウイルス;f) ロタウイルス(米国特許第5,071,651号及び米国特許第5,374,426号);g) 口蹄疫ウイルス(Twomey, 等, Vaccine 13:1603 1610, (1995));h) ノーウォークウイルス(Jiang, X., 等, Science 250:1580 1583 (1990);Matsui, S.M., 等, J. Clin. Invest. 87:1456 1461 (1991));i) アルファウイルス属;j) レトロウイルス、好ましくはそのGAGタンパク質(国際公開公報96/30523);k) レトロトランスポゾンTy、好ましくはタンパク質p1;l) ヒトパピローマウイルス(国際公開公報98/15631);m) ポリオーマウイルス;n) タバコモザイク病ウイルス;及びo) Flockハウスウイルスからなる群から選択されるウイルスの組み換えタンパク質、その変異体ないしはその断片を含むか、あるいはこれからなる。
さらに、「組み換えタンパク質の断片」又は「コートタンパク質の断片」なる用語は、上で定義した「組み換えタンパク質の断片」又は「コートタンパク質の断片」のそれぞれと、少なくとも80%、好ましくは90%、さらにより好ましくは95%のアミノ酸配列同一性を有し、好ましくはウイルス様粒子内に集合化することができるポリペプチドを指す。
好適な一実施態様では、本発明のウイルス様粒子はB型肝炎ウイルスである。B型肝炎ウイルス様粒子の調整は、特に国際公開第00/32227号、同第01/85208号及び同第01/056905号に開示されている。これら3つすべての文書は出典明記によって本明細書中に特別に組み込まれる。本発明の実施における使用に好適なHBcAgの他の変異体は国際公開公報01/056905の34−39頁に開示されている。
本発明のある好適な実施態様では、組成物はRNAバクテリオファージのコートタンパク質、その変異体ないしはその断片を含み、該コートタンパク質は(a) Qβ CPと称する配列番号:3;(b) 配列番号:3及び配列番号:4(Qβ A1タンパク質)の混合物;(c) 配列番号:5(R17キャプシドタンパク質);(d) 配列番号:6(frキャプシドタンパク質);(e) 配列番号:7(GAキャプシドタンパク質);(f) 配列番号:8(SPキャプシドタンパク質);(g) 配列番号:8及び配列番号:9の混合物;(h) 配列番号:10(MS2キャプシドタンパク質);(i) 配列番号:11(M11キャプシドタンパク質);(j) 配列番号:12(MX1キャプシドタンパク質);(k) 配列番号:13(NL95キャプシドタンパク質);(l) 配列番号:14(f2キャプシドタンパク質);(m) 配列番号:15(PP7キャプシドタンパク質);及び(n) 配列番号:21(AP205キャプシドタンパク質)からなる群から選択されるアミノ酸配列を有する。
非常に好適な一実施態様では、VLPはRNAファージの2つの異なるコートタンパク質を含むか、あるいはそれらからなるものであり、該2つのコートタンパク質はCP Qβ(配列番号:3)とCP Qβ A1(配列番号:4)、又はCP SP(配列番号:8)とCP SP A1(配列番号:9)のアミノ酸配列を有する。
本発明の好適な実施態様では、本発明のウイルス様粒子は、RNA-バクテリオファージQβ、fr、AP205又はGAの組み換えコートタンパク質、その変異体ないしはその断片を含むか、又はそれらから本質的になるか、又はそれらからなる。
他の好適な実施態様では、本発明のVLPは、RNAバクテリオファージAP205のVLPである。また、アミノ酸5のプロリンがスレオニンに置換しているAP205コートタンパク質を含む、AP205 VLPの集合体コンピテント変異体型を本発明の実施に使用してもよく、本発明の他の好適な実施態様となる。国際公開第2004/007538号の特に実施例1及び実施例2には、AP205コートタンパク質を含有するVLPの入手方法、とりわけその発現と精製について記載されている。国際公開第2004/007538号は出典明記によって本明細書中に組み込まれる。AP205 VLPは高い免疫原性があり、IL-1分子と結合して、典型的かつ好ましくは、反復様式で配位するIL-1分子をディスプレイするワクチンコンストラクトを生成することができる。
好適な一実施態様では、本発明の組成物及びワクチンは、0.5〜4.0の抗原密度を有する。ここで使用される「抗原密度」なる用語は、サブユニット当たり、好ましくはVLPのコートタンパク質当たり、好ましくはRNAバクテリオファージのVLPのコートタンパク質当たりに結合するIL-1分子の平均数を意味するものである。よって、この値は、本発明の組成物又はワクチン中での、VLP、好ましくはRNAバクテリオファージのVLPのサブユニット全体の平均として算出される。
露出したリジン残基がアルギニンに置換されているQβ変異体を本発明のために用いることができる。ゆえに、本発明の他の好適な実施態様では、ウイルス様粒子は、変異体Qβコートタンパク質を含むか、本質的にこれからなるか、あるいはこれからなる。好ましくは、これらの変異体コートタンパク質は、a) Qβ-240(配列番号:16、配列番号:3のLys13-Arg)、b) Qβ-243(配列番号:17、配列番号:3のAsn10-Lys);c) Qβ-250(配列番号:18、配列番号:3のLys2-Arg)、d) Qβ-251(配列番号:19、配列番号:3のLys16-Arg);及び、e) Qβ-259(配列番号:20、配列番号:3のLys2-Arg、Lys16-Arg)からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むか、あるいはこれからなる。上記のQβ変異体コートタンパク質、変異体Qβコートタンパク質VLP及びキャプシドの構築、発現及び精製はそれぞれ、国際公報第02/056905号に記述される。したがって、特に上記出願の実施例18を参照のこと。
さらにまた、RNAバクテリオファージコートタンパク質は、細菌宿主内で発現すると自己集合体化することが示されている(Kastelein, RA. 等, Gene 23:245-254 (1983)、Kozlovskaya, TM. 等, Dokl. Akad. Nauk SSSR 287:452-455 (1986)、Adhin, MR. 等, Virology 170:238-242 (1989)、Priano, C. 等, J. Mol. Biol. 249:283-297 (1995))。特に、GA (Ni, CZ., 等, Protein Sci. 5: 2485-2493 (1996)、Tars, K 等, J. Mol.Biol. 271:759-773(1997))及び、fr (Pushko P. 等, Prot. Eng. 6: 883-891 (1993)、Liljas, L 等 J Mol. Biol. 244:279-290, (1994))の生物学的及び生化学的性質は開示されている。いくつかのRNAバクテリオファージの結晶構造が決定されている(Golmohammadi, R. 等, Structure 4:543-554 (1996))。そのような情報を用いて、表面に曝された残基を同定して、RNAバクテリオファージコートタンパク質を修飾して、一又は複数の反応性のアミノ酸残基を挿入又は置換によって挿入することができる。RNAバクテリオファージ由来のVLPの他の利点は、安価で大量の物質を産生することが可能となる細菌での発現回収率が高いことである。
更なる好適な実施態様では、前記IL-1分子はラット又はマウス、好ましくはマウス由来であり、該IL-1分子は、配列番号:45、配列番号:46、配列番号:53、配列番号:54、配列番号:65、配列番号:66、配列番号:111から116のいずれか一、配列番号:163、及び配列番号:164のいずれか一に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%、最も好ましくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを好ましくは含むか、さらにより好ましくはこれからなる。
更なる好適な実施態様では、前記IL-1分子はIL-1タンパク質であり、該IL-1タンパク質は、配列番号:36から62のいずれか一に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%、最も好ましくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを好ましくは含むか、さらにより好ましくはこれからなる。
更なる好適な実施態様では、前記IL-1タンパク質はIL-1αタンパク質であり、該IL-1αタンパク質は、配列番号:36から48からなる群から選択される配列のいずれか一に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%、最も好ましくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを好ましくは含むか、さらにより好ましくはこれからなる。最も好ましくは、前記IL-1αタンパク質はヒトIL-1αタンパク質であり、該ヒトIL-1αタンパク質は、配列番号:36に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%、最も好ましくは100%の配列同一性を有するポリペプチドを好ましくは含むか、さらにより好ましくはこれからなる。
更なる好適な実施態様では、前記IL-1分子はIL-1断片、好ましくはIL-1成熟断片であり、該IL-1断片又は該IL-1成熟断片は好ましくはマウス又はヒト、最も好ましくはヒト由来である。好ましくは前記IL-1断片又は前記IL-1成熟断片は、配列番号:63から配列番号:66、配列番号:130、及び配列番号:163から配列番号:165のいずれか一に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%、最も好ましくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを好ましくは含むか、さらにより好ましくはこれからなる。
更なる好適な実施態様では、前記IL-1成熟断片はIL-1β成熟断片であり、該IL-1β成熟断片は好ましくは生物学的な活性を含み、さらに該IL-1β成熟断片は、配列番号:64、配列番号:66及び配列番号:130のいずれか一、最も好ましくは配列番号:64に少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、より好ましくは少なくとも95%、さらにより好ましくは少なくとも99%、最も好ましくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドを好ましくは含むか、さらにより好ましくはこれからなる。
更なる好適な実施態様では、前記IL-1分子はIL-1変異タンパク質であり、好ましくは該IL-1変異タンパク質は生物学的な活性を低減しているか、より好ましくは生物学的な活性を持たず、さらに該IL-1変異タンパク質はIL-1レセプターを結合することができる。更なる好適な実施態様では、前記IL-1変異タンパク質は、1〜3、より好ましくは1〜2、最も好ましくはちょうど1のアミノ酸残基がIL-1成熟断片のアミノ酸配列と異なるアミノ酸配列を有するポリペプチドを含むか、好ましくはこれからなる。更なる好適な実施態様では、前記IL-1変異タンパク質はIL-1β変異タンパク質、好ましくはヒトIL-1β変異タンパク質、最も好ましくは配列番号:131から配列番号:140から選択されるヒトIL-1β変異タンパク質である。
隣接するアミノ酸残基を付加して、コートタンパク質と外来性のエピトープの間の間隙を増やしてもよい。隣接配列に用いるためにはグリシン残基及びセリン残基が特に好ましい。このような隣接配列によってフレキシビリティが付加される。このフレキシビリティの付加により、VLPサブユニットの配列内へ外来性の配列を融合する際に生じうる不安定性作用が軽減され、外来性のエピトープの存在による集合体化の阻害が軽減される。
よって、さらに非常に好適な実施態様では、VLPと少なくとも一の抗原、すなわちIL-1分子との付随又は結合は、ジスルフィド結合を含まない。さらに好ましくは、少なくとも一の第二の付着は、スルフヒドリル基を含むか、又は該基である。さらにまた本発明の非常に好ましい実施態様では、VLPと少なくとも一のIL-1分子との付随又は結合は、硫黄-硫黄結合を含まない。さらに非常に好ましい実施態様では、前記少なくとも一の第二付着部位は、スルフヒドリル基を含むか、好ましくは該基である。さらに非常に好適な実施態様では、前記少なくとも一の第一付着部位はスルフヒドリル基でないか、又は該基を含まない。またさらに非常に好ましい実施態様では、前記少なくとも一の第一の付着部位は、システインのスルフヒドリル基ではないか、又は該基を含まない。
更なる好適な実施態様では、前記第二付着部位のただ1つは、前記IL-1分子の前記コア粒子への単一及び均一な種類の結合を生じさせる少なくとも1の非ペプチド共有結合を介して、前記第一付着部位に付随し、このとき該第一付着部位に付随する該ただ1つの第二付着部位がスルフヒドリル基であり、該IL-1分子と該コア粒子が該付随を介して相互作用して、規則正しく反復した抗原アレイを形成する。
IL-1分子、特に少なくとも100から300までのアミノ酸、典型的及び好ましくはおよそ140〜160のアミノ酸、最も好ましくはおよそ155のアミノ酸を含むIL-1タンパク質及びIL-1断片は、バクテリオファージのコートタンパク質、好ましくはAP205のコートタンパク質に融合しながら、コートタンパク質のVLPへの自己集合体化(self assemble)能を維持することができる。
本発明の非常に好適な実施態様では、少なくとも一の第一付着部位は、アミノ基、好ましくはリジン残基のアミノ基であり、少なくとも一の第二付着部位は、スルフヒドリル基、好ましくはシステインのスルフヒドリル基である。
リンカーの選択は、IL-1分子の性質、その生化学的特性、例えばpI、電荷分布、及びグリコシル化に依存するであろう。一般的に、フレキシブルなアミノ酸リンカーが好まれる。本発明のさらに好ましい実施態様では、リンカーはアミノ酸からなり、さらに好ましくは、リンカーは最大で25、好ましくは最大で20、より好ましくは最大で15のアミノ酸からなる。本発明のさらに好適な実施態様では、アミノ酸リンカーは1〜10のアミノ酸を含有する。リンカーの好適な実施態様は、(a) CGG(配列番号:171);(b) N末端γ1-リンカー、好ましくはCGDKTHTSPP(配列番号:172);(c) N末端γ3-リンカー、好ましくはCGGPKPSTPPGSSGGAP(配列番号:173);(d) Igヒンジ領域;(e) N末端グリシンリンカー、好ましくはGCGGGG(配列番号:174);(f) n=0〜12及びk=0〜5の(G)kC(G)n(配列番号:175);(g) 1つの更なるシステインを有するN末端グリシン-セリンリンカー、好ましくは(GGGGS)n、n=1〜3(配列番号:176);(h) n=0〜3、k=0〜5、m=0〜10、l=0〜2の(G)kC(G)m(S)l(GGGGS)n(配列番号:177);(i) GGC(配列番号:178);(k) GGC-NH2(配列番号:179);(l) C末端γ1-リンカー、好ましくはDKTHTSPPCG(配列番号:180);(m) C末端γ3-リンカー、好ましくはPKPSTPPGSSGGAPGGCG(配列番号:181);(n) C末端グリシンリンカー、好ましくはGGGGCG(配列番号:182);(o) n=0〜12及びk=0〜5の(G)nC(G)k(配列番号:183);(p) 1つの更なるシステインを有するC末端グリシン-セリンリンカー、好ましくは(SGGGG)n、n=1〜3(配列番号:184);(q) n=0〜3、k=0〜5、m=0〜10、l=0〜2及びo=0〜8の(G)m(S)l(GGGGS)n(G)oC(G)k(配列番号:185)からなる群から選択される。さらに好適な実施態様では、リンカーはIL-1分子のN-末端に融合している。本発明の他の好適な実施態様では、リンカーはIL-1分子のC-末端に融合している。
本発明の他の実施態様では、組成物は、化学的な相互作用を介してIL-1分子に結合したウイルス様粒子を含むか、ないしは本質的にそれからなるものであり、この相互作用の少なくとも一は共有結合ではない。
一又はいくつかの抗原分子、すなわちIL-1分子は、立体的に可能であれば、好ましくはRNAバクテリオファージVLPのコートタンパク質の露出したリジン残基を介して、VLP、好ましくはRNAバクテリオファージコートタンパク質のサブユニットに付着しうる。したがって、RNAバクテリオファージのVLP、特にQβコートタンパク質VLPの特定の特徴は、サブユニットにつきいくつかの抗原をカップリングさせることができることである。これにより密度の高い抗原アレイが生成される。
本発明の非常に好適な実施態様では、IL-1分子は、IL-1分子のN-末端ないしはC-末端のいずれかに負荷されているシステイン残基、又はIL-1分子内の天然のシステイン残基により、RNAバクテリオファージのVLPのコートタンパク質のリジン残基に、特にQβのコートタンパク質に結合する。
したがって、以下のQβコートタンパク質変異体:Qβ-240(Lys13-Arg;配列番号:16)、Qβ-250(Lys2-Arg、Lys13-Arg;配列番号:18)、Qβ-259(Lys2-Arg、Lys16-Arg;配列番号:20)、及びQβ-251;(Lys16-Arg、配列番号:19)において露出したリジン残基はアルギニンに置換した。さらに好適な実施態様では、本発明者等は、さらに高い密度の抗原アレイを得るために好適な、1つの更なるリジン残基を有するQβ変異体コートタンパク質であるQβ-243(Asn10-Lys;配列番号:17)を開示する。
好適な一実施態様では、さらに組成物は、VLPに結合した、好ましくはVLP内にパッケージ化ないしは封入された少なくとも一の免疫賦活性物質を含有する。よりさらに好適な実施態様では、免疫賦活性物質は核酸、好ましくはDNA、最も好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドである。
RNAの量を決定するための方法及びVLPによって包含されるRNAの量を減少する方法は、同出願人により2005年10月5日に出願した米国仮出願に開示されており、その出願全体は出典明記によって本明細書中に援用される。RNA、好ましくは核酸の量を少なくするかないしは除去することにより、IL-1に特異的な抗体応答が強いままで、炎症性T細胞応答及び障害性T細胞応答などの望ましくないT細胞応答や、発熱などの他の望ましくない副作用を最小限にするか、又は低減する。
好適な一実施態様では、ワクチン組成物はさらに少なくとも一のアジュバントを含有する。少なくとも一のアジュバントの投与は、本発明の組成物の投与の前、あるいはそれと同時、あるいはその後であってもよい。本明細書中で用いられる「アジュバント」なる用語は、本発明のワクチン及び薬剤組成物のそれぞれと組み合わせると、より亢進した免疫応答を供給しうる、宿主内の貯蔵所となる物質ないしは免疫応答の非特異的刺激因子を意味する。
本発明の有利な特性は、アジュバントを含まない場合でさえ、組成物の免疫原性が高いことである。さらにアジュバントを含んでいないので、自己抗原に対するワクチン接種上の安全上の問題を呈する所望されない炎症性T細胞反応の発生が最小となる。よって、本発明のワクチンの患者への投与は、好ましくはワクチンの投与前、投与と同時、又は投与後に同じ患者に少なくとも一のアジュバントを投与することなく、なされるであろう。
さらに、本発明は、本発明のワクチンが動物又はヒトに投与されることを含む免疫化方法を開示する。動物は、好ましくはネコ、ヒツジ、ブタ、ウマ、ウシ、イヌ、ラット、マウスなどの哺乳動物、特にヒトである。ワクチンは、当分野で公知の様々な方法によって動物又はヒトに投与されてもよいが、通常、注射、注入、吸入、経口投与又は他の適切な理学的方法によって投与されうる。コンジュゲートは、選択的に、筋肉内、静脈内、粘膜経由、経皮、鼻腔内、腹膜内又は皮下投与されてもよい。投与のためのコンジュゲート成分は、滅菌水(例えば、生理食塩液)又は非水溶液及び懸濁液などである。非水溶性溶媒の例として、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、植物油、例えばオリーブ油、及び注射可能な有機エステル、例えばオレイン酸エチルなどがある。担体又は密封包帯を、皮膚透過性を増やして、抗原吸収を上げるために用いてもよい。
他の態様では、本発明は、本発明で述べられる組成物と受容可能な製薬的担体を含有する薬剤組成物を提供する。本発明のワクチンが個体に投与される場合、コンジュゲートの有効性を改善するために望ましい他の物質、アジュバント、バッファー又は塩類を含有する形態でありうる。薬剤組成物の調整における使用に好適な材料の例は、REMINGTON’S PHARMACEUTICAL SCIENCES (Osol, A, ed., Mack Publishing Co., (1990))を含む多くの情報源に示される。
更なる好適な実施態様では、少なくとも一の第一付着部位を有するVLPを提供する工程は、(a) 該ウイルス様粒子を該RNAバクテリオファージのコートタンパク質、その変異体ないしはその断片に分解して;(b) 該コートタンパク質、その変異体ないしはその断片を精製して;(c) 該精製された該RNAバクテリオファージのコートタンパク質、その変異体ないしはその断片をウイルス様粒子に再集合体化させる工程をさらに含むものであり、このときの該ウイルス様粒子は宿主RNA、好ましくは宿主核酸を本質的に欠いているものである。より更なる好適な実施態様では、前記の精製したコートタンパク質の再集合体化は、少なくとも一のポリ陰イオン性高分子の存在下にてなされる。
さらに、本発明は、動物、好ましくはイヌ、ネコ、ウマ又はヒト、最も好ましくはヒトの疾患の治療のための医薬の製造における本発明の組成物又は本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物の使用であって、該疾患が好ましくは、(a) 血管系疾患、好ましくは冠状動脈疾患、アテローム性動脈硬化及び血管炎、最も好ましくはアテローム性動脈硬化;(b) 遺伝性IL-1依存性炎症性疾患、好ましくは家族性地中海熱(FMF)、家族性感冒自己炎症性症候群(FCAS)、新生児期発症多臓器性炎症性疾患(NOMID)及びマックル・ウェルズ症候群、最も好ましくは家族性地中海熱(FMF);(c) 慢性自己免疫性炎症性疾患、好ましくは関節リウマチ、全身発症性若年性特発性関節炎、成人発症性スティル病、乾癬、クローン病及び潰瘍性大腸炎、最も好ましくは関節リウマチ;(d) 骨及び軟骨変性疾患、好ましくは痛風、骨粗鬆症及び骨関節炎、最も好ましくは骨関節炎;(e) アレルギー性疾患、好ましくは接触過敏症、1型過敏症及びアレルギー、最も好ましくはアレルギー;及び、(f) 神経学的疾患、好ましくはアルツハイマー病、癲癇、パーキンソン病及び多発性硬化症、最も好ましくは多発性硬化症からなる群から選択される、使用を提供する。
さらに、本発明は、動物、好ましくはヒトの疾患の治療のための医薬の製造における本発明の組成物又は本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物の使用であって、該疾患が遺伝性IL-1依存性炎症性疾患、好ましくは家族性地中海熱(FMF)である使用を提供する。
さらに、本発明は、動物、好ましくはヒトの疾患の治療のための医薬の製造における本発明の組成物又は本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物の使用であって、該疾患が慢性自己免疫性炎症性疾患、好ましくは関節リウマチである使用を提供する。
さらに、本発明は、動物、好ましくはヒトの疾患の治療のための医薬の製造における本発明の組成物又は本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物の使用であって、該疾患が骨及び軟骨変性疾患、好ましくは骨関節炎である使用を提供する。
さらに、本発明は、動物、好ましくはヒトの疾患の治療のための医薬の製造における本発明の組成物又は本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物の使用であって、該疾患が神経学的疾患、好ましくは多発性硬化症である使用を提供する。
さらに、本発明は、疾患の治療方法であって、動物、好ましくはヒトに本発明の組成物、本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物を投与することを含み、該疾患が遺伝性IL-1依存性炎症性疾患、好ましくは家族性地中海熱(FMF)である方法を提供する。
さらに、本発明は、疾患の治療方法であって、動物、好ましくはヒトに本発明の組成物、本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物を投与することを含み、該疾患が慢性自己免疫性炎症性疾患、好ましくは関節リウマチである方法を提供する。
さらに、本発明は、疾患の治療方法であって、動物、好ましくはヒトに本発明の組成物、本発明のワクチン又は本発明の製薬的組成物を投与することを含み、該疾患が骨及び軟骨変性疾患、好ましくは骨関節炎である方法を提供する。
マウスIL1α117−270及びIL-1β119−269のクローニング、発現及び精製
オリゴヌクレオチドIL1α1(5'-ATATATGCTAGCCCCTTACACCTACCAGAGTGATTTG-3';配列番号:24)及びIL1α2(5'-ATATATCTCGAGTGATATCTGGAAGTCTGTCATA GAG-3';配列番号:25)を用いて、TNFα活性化マウスのマクロファージのcDNAライブラリーから、PCRによってマウスIL-1αのアミノ酸117−270をコードするヌクレオチド配列を増幅した。同じcDNAライブラリーを用いて、オリゴヌクレオチドIL-1β1(5'-ATATATGCTAGCCCCCATTAGACAGCTGCACTACAGG-3';配列番号:26)及びIL-1β2(5'-ATATATCTCGAGGGAAGACACAGATTCCATGGTGAAG-3';配列番号:27)によりマウスIL-1β前駆体のアミノ酸119−269をコードするヌクレオチド配列を増幅した。両DNA断片を、NheI及びXhoIにて消化し、発現ベクターpModEC1(配列番号:29)にクローニングした。
ベクターpModEC1(配列番号:29)は、pET22b(+) (Novagen Inc.)の誘導体であって、2つの工程で構築した。第一の工程では、NheIとXhoI部位の間の元の配列をアニールしたオリゴプライマーMCS-1F(5'-TATGGATCCGGCTAGCGCTCGAGGGTTTA AACGGCGGCCGCAT-3';配列番号:30)及びプライマーMCS-1R(5'-TCGAATGCGGCCG CCGTTTAAACCCTCGAGCGCTAGCCGGATCCA-3';配列番号:31)(15mM トリスHCl pH8バッファ中でアニール)に置き換えることによって、pET22b(+)のマルチプルクローニングサイトを変えた。結果として生じるプラスミドをpMod00と称し、そのマルチクローニングサイトにNdeI、BamHI、NheI、XhoI、PmeI及びNotI制限部位を有した。オリゴBamhis6-EK-Nhe-F(5'-GATCCACACCACCACCACCACCACGG TTCTGGTGACGACGATGACAAAGCGCTAGCCC-3';配列番号:32)とBamhis6-EKNhe-R(5'-TCGAGGGCTAGCGCTTTGTCATCGTCGTCACCAGAACCGTGGT GGTGGTGGTGGTGTG-3';配列番号:33)とのアニールした対と、オリゴ1F-C-グリシン-リンカー(5'-TCGAGGGTGGTGGTGGTGGTTGCGGTTAATAAGTTTAAACGC-3';配列番号:34)とオリゴ1R-C-グリシン-リンカー(5'-GGCCGCGTTTAAACTTATTA ACCGCAACCACCACCACCACCC-3';配列番号:35)とのアニールした対を、BamHI-NotI消化のpMod00プラスミドに共にライゲーションして、pModEC1を得た。このpModEC1はN末端ヘキサヒスチジンタグ、エンテロキナーゼ切断部位及び1つのシステイン残基を含有するC末端グリシンリンカーをコードしている。
A.Qβウイルス様粒子へのマウスIL-1β119−269のカップリング
実施例1の精製されたマウスIL-1β119−269タンパク質(配列番号:66)を1.3mg/ml含むPBS pH7.2の溶液を、等モル量のTCEPとともに室温で60分間インキュベートして、C末端システイン残基の還元を行った。
次いで、PBS pH7.2に2mg/mlのQβキャプシドタンパク質を含む6mlの溶液を、131μlのSMPH溶液(DMSOに65mM)と室温で60分間反応させた。反応溶液を、24時間にわたって3lの20mM HEPES、150mM NaClpH7.2にて3回交換して、4℃で透析した。誘導体化して透析した75μlのQβ溶液を、117μlのH2Oと308μlの精製して予め還元したマウスIL-1β119−269タンパク質と混合し、15℃で終夜インキュベートして化学的な架橋を行った。300000Daの分子量カットオフを有するセルロースエステル膜を用いて、PBSに対するタンジェンシャルフロー濾過によって非カップリングタンパク質を除去した。
カップリングした生成物を、還元条件下の12%SDS-ポリアクリルアミドゲルにて分析した。クーマシー染色したゲルを図1に示す。Qβキャプシド単量体に関していくつかのバンドの増加した分子量が観察され、これによって、マウスIL-1β119−269タンパク質のQβキャプシドへの架橋結合の成功が明らかに示された。
5匹の雌balb/cマウスを、Qβ-mIL-1β119−269(配列番号:66)にて免疫化した。50μgの総タンパク質をPBSにて200μlに希釈し、第0及び第21日目に皮下に接種した(100μlを2か所の腹部に)。第0、第21及び第35日目にマウスの後眼窩から血液を採取し、血清をマウスIL-1β119−269特異的ELISAを用いて解析した。
ELISAプレートを1μg/ml濃度のマウスIL-1β119−269タンパク質にてコートした。プレートの反応を止めて、第0、第21及び第35日目のマウス血清の段階希釈液とともにインキュベートした。結合した抗体を酵素的に標識した抗マウスIgG抗体にて検出した。マウス血清の抗体力価を、450nmで最大半量の吸光度が得られる希釈液の平均として算出した。平均的な抗マウスIL-1β119−269力価は、第21日目に1:22262、第35日目に1:309276であった。これにより、マウスIL-1β119−269タンパク質にカップリングしたQβによる免疫化により免疫寛容が克服され、IL-1β119−269を特異的に認識する高力価の抗体が産生されうることが示唆される。
Qβ-mIL-1β119−269(配列番号:66)にて免疫化したマウスの血清を、それぞれのレセプターへのマウスIL-1βタンパク質の結合を阻害する能力について試験した。したがって、ELISAプレートを1μg/ml濃度の組み換えmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質にてコートし、QβキャプシドにカップリングしたマウスIL-1β119−269又はQβキャプシドにカップリングしたマウスIL-1α117−270のいずれかにて免疫化したマウス血清の段階希釈と100ng/mlのマウスIL-1β119−269とともにインキュベートした。固定したmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質に対するIL-1β119−269の結合をビオチン化抗マウスIL-1β抗体と西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートストレプトアビジンにて検出した。マウスIL-1β119−269に対して免疫化したマウスのすべての血清が0.4%以上の濃度でマウスIL-1β119−269のそのレセプターに対する結合を完全に阻害したのに対して、マウスIL-1α117−270に対して免疫化したマウスの血清は高濃度に用いても阻害効果を示さなかった(3.3%)。これらのデータから、QβキャプシドにカップリングしたマウスIL-1β119−269による免疫化によりマウスIL-1β119−269とそのレセプターとの相互作用を中和することができる抗体を得ることができることが示唆される。
次に、Qβ-mIL-1β119−269による免疫化により生じた抗体のインビボ中和能を調べた。したがって、4匹の雌balb/cマウスを、Qβ-mIL-1β119−269にて第0日目及び第14日目に2度免疫化し、4匹のマウスをQβキャプシド単独で同時に免疫化した。第21日目に、すべてのマウスの静脈内に1μgのフリーIL-1β119−269を注射した。注射したIL-1β119−269の炎症性活性の読み取り値として、血清試料を注射の3時間後に分析して、炎症誘発性サイトカインIL-6の濃度における相対的な増加として求めた。Qβ-免疫化マウスは1.01±0.61ng/mlの血清IL-6濃度において平均増加を示したのに対して、Qβ-mIL-1β119−269にて免疫化したマウスはたった0.11±0.30ng/mlの平均増加を示した。第28日目のコントロールとして、すべてのマウスに1μgのmIL-1αを注射した。注射の3時間後、Qβキャリア単独にて免疫化したマウスは40.24±8.06ng/mlの血清IL-6濃度において平均増加を示したのに対して、Qβ-mIL-1β119−269にて免疫化したマウスは57.98±29.92ng/mlの増加を示した(p=0.30)。これらのデータから、Qβ-mIL-1β119−269による免疫化によって生産される抗体がIL-1βの炎症誘発性活性を特異的かつ効果的に中和することが可能であったことが示された。
Qβ-m IL-1β119−269免疫化の有効性を、マウスコラーゲン誘発性関節炎モデル(CIA)において試験した。このモデルは、ヒト関節リウマチの免疫学的及び組織学的態様の多くを反映しているので、通常抗炎症剤の有効性のアッセイに用いられる。雄DBA/1マウスに、50μgのQβ-mIL-1β119−269(n=8)又はQβ単独(n=8)のいずれかを3回(第0、14及び28日目)、皮下に免疫化し、次いで、完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを第42日目に皮内に接種した。第63日目に不完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを追加投与した後、マウスの関節炎症状の発症について毎日試験した。
赤くなる程度及び観察される腫脹に基づいて、各々の肢に0から3までの範囲の臨床スコアを付け、すべての後肢の厚さを測定した。以下の定義:0 正常、1 指/肢の軽度の紅斑及び/又は腫脹、2 指/肢の全体にわたる紅斑及び腫脹、3 強度の腫脹、指/肢の変形、硬直に従って、連続する3週間にわたって各肢に臨床スコアを付けた。各マウスの累積的な臨床スコアを四肢すべての臨床スコアの合計として算出したところ、12匹のマウスにつき、可能な限り最大の累積スコアとなった。
2回目のコラーゲン注射の2週間後、Qβ免疫化マウスは4.44の平均累積臨床スコアを示したのに対して、Qβ-mIL-1β119−269免疫化マウスはたった1.06の平均スコアを示した。さらに、後ろ肢厚の平均増加は、Qβ免疫化マウスでは18%であり、Qβ-mIL-1β119−269にて免疫化したマウスでは1%であった。炎症反応の更なる読み取り値として、IL-6の血清レベルを2回目のコラーゲン注射の1週間後に決定した。Qβ免疫化マウスは1.92±0.36の平均IL-6血清濃度であったのに対して、Qβ-mIL-1β119−269免疫化マウスはたった0.79±0.16の平均IL-6濃度であった(p=0.01)。総して、これらのデータは、Qβ-mIL-1β119−269による免疫化が、CIAモデルマウスの炎症と関節炎の臨床徴候を防ぐことを示す。
A.Qβウイルス様粒子へのマウスIL-1α117−270のカップリング
実施例1の精製されたマウスIL-1α117−270タンパク質(配列番号:65)を1.8mg/ml含むPBS pH7.2の溶液を、等モル量のTCEPとともに室温で60分間インキュベートして、C末端システイン残基の還元を行った。
次いで、PBS pH7.2に2mg/mlのQβキャプシドタンパク質を含む6mlの溶液を、131μlのSMPH溶液(DMSOに65mM)と室温で60分間反応させた。反応溶液を、24時間にわたって3lの20mM HEPES、150mM NaClpH7.2にて3回交換して、4℃で透析した。誘導体化して透析した75μlのQβ溶液を、192μlのH2Oと233μlの精製して予め還元したマウスIL-1α117−270タンパク質と混合し、15℃で終夜インキュベートして化学的な架橋を行った。300000Daの分子量カットオフを有するセルロースエステル膜を用いて、PBSに対するタンジェンシャルフロー濾過によって非カップリングタンパク質を除去した。
カップリングした生成物を、還元条件下の12%SDS-ポリアクリルアミドゲルにて分析した。クーマシー染色したゲルを図2に示す。Qβキャプシド単量体に関していくつかのバンドの増加した分子量が観察され、これによって、マウスIL-1α117−270タンパク質のQβキャプシドへの架橋結合の成功が明らかに示された。
5匹の雌balb/cマウスを、Qβ-mIL-1α117−270にて免疫化した。50μgの総タンパク質をPBSにて200μlに希釈し、第0及び第21日目に皮下に接種した(100μlを2か所の腹部に)。第0、第21及び第35日目にマウスの後眼窩から血液を採取し、血清をマウスIL-1α117−270特異的ELISAを用いて解析した。
ELISAプレートを1μg/ml濃度のマウスIL-1α117−270タンパク質にてコートした。プレートの反応を止めて、第0、第21及び第35日目のマウス血清の段階希釈液とともにインキュベートした。結合した抗体を酵素的に標識した抗マウスIgG抗体にて検出した。マウス血清の抗体力価を、450nmで最大半量の吸光度が得られる希釈液の平均として算出した。平均的な抗マウスIL-1α117−270力価は、第21日目に1:9252、第35日目に1:736912であった。これにより、マウスIL-1α117−270タンパク質にカップリングしたQβによる免疫化により免疫寛容が克服され、IL-1α117−270を特異的に認識する高力価の抗体が産生されうる。
Qβ-mIL-1α117−270にて免疫化したマウスの血清を、マウスIL-1αタンパク質のそれぞれのレセプターへの結合を阻害する能力について試験した。したがって、ELISAプレートを1μg/ml濃度の組み換えmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質にてコートし、QβキャプシドにカップリングしたマウスIL-1α117−270又はQβキャプシドにカップリングしたマウスIL-1β119−269のいずれかにて免疫化したマウス血清の段階希釈と5ng/mlのマウスIL-1α117−270とともにインキュベートした。固定したmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質に対するIL-1α117−270の結合をビオチン化抗マウスIL-1α抗体と西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートストレプトアビジンにて検出した。マウスIL-1α117−270に対して免疫化したマウスのすべての血清が0.4%以上の濃度でマウスIL-1α117−270のそのレセプターに対する結合を完全に阻害したのに対して、マウスIL-1β119−269に対して免疫化したマウスの血清は高濃度に用いても阻害効果を示さなかった(3.3%)。これらのデータから、QβキャプシドにカップリングしたマウスIL-1α117−270による免疫化によりマウスIL-1α117−270とそのレセプターとの相互作用を中和することができる抗体を得ることができることが示唆される。
次に、Qβ-mIL-1α117−270による免疫化により生じた抗体のインビボ中和能を調べた。したがって、4匹の雌balb/cマウスを、Qβ-mIL-1α117−270にて第0日目及び第14日目に2回免疫化し、4匹のマウスをQβキャプシド単独で同時に免疫化した。第21日目に、すべてのマウスの静脈内に1μgのフリーIL-1α117−270を注射した。注射したIL-1α117−270の炎症性活性の読み取り値として、血清試料を注射の3時間後に分析して、炎症誘発性サイトカインIL-6の濃度における相対的な増加として求めた。Qβ-免疫化マウスは8.16±2.33ng/mlの血清IL-6濃度において平均増加を示したのに対して、Qβ-mIL-1α117−270にて免疫化したマウスはたった0.15±0.27ng/mlの平均増加を示した(p=0.0005)。第28日目のコントロールとして、すべてのマウスに1μgのmIL-1βを注射した。注射の3時間後、Qβキャリア単独にて免疫化したマウスは9.52±7.33ng/mlの血清IL-6濃度の平均増加を示したのに対して、Qβ-mIL-1α117−270にて免疫化したマウスは21.46±27.36ng/mlの増加を示した(p=0.43)。これらのデータから、Qβ-mIL-1α117−270による免疫化によって生産される抗体がIL-1αの炎症誘発性活性を特異的かつ効果的に中和することが可能であったことが示された。
Qβ-mIL-1α117−270免疫化の有効性を、マウスコラーゲン誘発性関節炎モデル(CIA)において試験した。このモデルは、ヒト関節リウマチの免疫学的及び組織学的態様の多くを反映しているので、通常抗炎症剤の有効性のアッセイに用いられる。雄DBA/1マウスに、50μgのQβ-mIL-1α117−270(n=8)又はQβ単独(n=8)のいずれかを3回(第0、14及び28日目)、皮下に免疫化し、次いで、完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを第42日目に皮内に接種した。第63日目に不完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを追加投与した後、マウスの関節炎症状の発症について毎日試験した。赤くなる程度及び観察される腫脹に基づいて、各々の肢に実施例2Fに定義したように臨床スコアを付け、すべての後肢の厚さを測定した。2回目のコラーゲン注射の2週間後、Qβ免疫化マウスは4.44の平均累積臨床スコアを示したのに対して、Qβ-mIL-1α117−270免疫化マウスはたった2.31の平均スコアを示した。さらに、後ろ肢厚の平均増加は、Qβ免疫化マウスでは18%であり、Qβ-mIL-1α117−270にて免疫化したマウスではたった7%であった。炎症反応の更なる読み取り値として、IL-6の血清レベルを2回目のコラーゲン注射の1週間後に決定した。Qβ免疫化マウスは1.92±0.36の平均IL-6血清濃度であったのに対して、Qβ-mIL-1α117−270免疫化マウスはたった0.94±0.48の平均IL-6濃度であった。総して、これらのデータは、Qβ-mIL-1α117−270による免疫化が、CIAモデルマウスの炎症と関節炎の臨床徴候を防ぐことを示す。
アテローム性動脈硬化のマウスモデルにおけるQβ-mIL-1α117−270の有効性
第0、14、28、56、105及び133日目に、7〜8週齢の雄Apoe−/−マウス(The Jackson Laboratory, Bar Harbor ME)の皮下に50μgのQβ-mIL-1α117−270ワクチン(n=13)又は50μgのQβ(n=12)のいずれかを注射した(5匹のうちQβ-mIL-1α117−270群の3匹に、Qβ群の2匹に、第33日目に2回目の追加免疫を与えた)。始めに通常の固形食餌をマウスに与え、第21日目に西洋型食餌(20%脂質、0.15%コレステロール、Provimi Kliba AG, Switzerland)に換えた。実験を通じて一定の間隔でマウスから採血し、血清中のIL-1αに対する抗体応答を測定した。第159日目に屠殺し、基本的には既に記載のあるように(Tangirala R.K.等 (1995) J. Lipid. Res. 36: 2320-2328)、大動脈を単離して、調製した。さらに、心臓を取り出し、基本的にはPaigen B.等 (Atherosclerosis 1987;68:231-240)及びZhou X.等 (Arterioscler Thromb Vasc Biol 2001;21:108-114)に記載のあるように、後の組織学的な調製のために液体窒素にて急激に凍結した。動物から心臓穿刺にて採血し、氷温PBSを注いだ。次いで、大動脈を曝し、できるだけインサイツに外膜を取り出し、最後に心臓から2mmの大動脈を切り出した。心臓を中央で切開し、上部をプラスチックチューブのハンク平衡塩類溶液中で液体窒素にてすぐに凍結した。連続切片(7μm厚)を、大動脈の元からクリオスタットにて切断し、少なくとも2つの弁尖端の出現から最後の弁尖端の消失まで収集した。切片をホルマリンで固定し、オイルレッドOにて染色し、量的画像分析によって1マウスにつき4〜7切片(Qβ群の1匹では3切片)にてプラーク負荷を評価した。平均的プラーク領域は、評価に用いた各切片のプラーク領域から、各々の動物について計算した。平均的群プラーク領域は、Qβ-mIL-1α117−270群及びQβ群のそれぞれについて計算した。スチューデントt検定にて統計学的な分析を行った。P<0.05は、統計学的に有意であるとする。
ELISAプレート上にコートした組み換えIL-1αを用いた典型的なELISAにて抗体応答を測定した。ヤギ抗マウスHRPコンジュゲートを用いて特異的抗体の結合を検出した。IL-1αに対する力価は、アッセイの最大半量の結合を示す血清希釈物の逆数として算出した。応答の特異性は免疫前血清を測定することによって評価した。免疫前力価は、アッセイに用いた最も低い血清希釈物より低く、この最も低い血清希釈値を割り当てた。Qβ-mIL-1α117−270免疫化動物における抗体応答の測定の結果を表1に示す。これは、免疫前(0日目)血清ではほとんど力価が検出されなかったので、QβにカップリングさせたマウスIL-1αに対する免疫化により、IL-1αに対して強力で持続性の特異的な抗体応答が生じたことを示す。さらに、IL-1αに特異的な抗体応答の誘導により、Qβ群と比較して、Qβ-mIL-1α117−270群では大動脈元でのプラーク領域が37%減少した(464694±36545μm2に対して292803±21272μm2、p=0.0005)。加えて、「エヌフェイス」に調製した大動脈全体では中央プラーク負荷の31%の減少(8.3に対して5.7、p=0.06)が観察された。
表1:Qβ-IL1αにより免疫化したApoe−/−マウスにおける相乗平均抗IL1α抗体力価(相乗平均力価±平均値の標準誤差)
* 5匹の動物について、33日目の値。
Qβ-mIL-1α117−270及び/又はQβ-mIL-1β119−269による免疫化によるTNBS-誘発性炎症性腸疾患の防止
50μgのQβ-mIL-1α117−270又は50μgのQβ-mIL-1β119−269、又はそれぞれ50μgのQβ-mIL-1α117−270とQβ-mIL-1β119−269の混合物を8週齢の雄SJLマウス(1群当たり5匹)の皮下に2週間の間隔で3回投与する。コントロールとして、5匹のマウスにQβ VLP単独を同じ投薬計画で投与する。最後の免疫化の2週後に、すべてのマウスをイソフルランにて僅かに麻酔をかけ、1mgのトリニトロベンゼンスルホン酸塩(TNBS)を含む100μlの50%エタノールを肛門から4cm離れた直腸にポリエチレンカテーテルにより投与する。疾患進行の読み取り値として体重を毎日記録し、TNBS投与の7日後にすべてのマウスを屠殺する。各マウスの大腸を摘出し、肛門に対して2cmの近位に位置する大腸の試料をPBS緩衝ホルマリンにて固定し、炎症の程度をNeurath M.F.等 (JEM (1995), 182:1281-1290)に従ってヘマトキシリン-及びエオシン-染色結腸横断切片上で半定量的に等級分けする。
Qβ-mIL-1α117−270単独又はQβ-mIL-1β119−269単独のいずれか、又はQβ-mIL-1α117−270及びQβ-mIL-1β119−269の組合せのいずれかによる免疫化により、Qβ-免疫化マウスと比較すると、TNBS誘発性の体重損失が減少する。さらに、結腸横断切片の組織学的試験から、Qβ-mIL-1α117−270及び/又はQβ-mIL-1β119−269-免疫化マウスは、Qβ-免疫化マウスと比較して結腸組織への炎症細胞の浸潤が顕著に減少していたことが明らかとなった。
MEFV遺伝子の切断型を有するマウスにおける、Qβ-mIL-1β119−269による免疫化によるエンドトキシン-過敏症の改善
家族性地中海熱は、回帰熱並びに腹膜炎、漿膜炎、関節炎、及び皮膚発疹に特徴を示す劣性遺伝性炎症性疾患である。罹患個体はMEFV遺伝子のミスセンス突然変異を有し、切断型のpyrinタンパク質を発現する。MEFV遺伝子に同種の突然変異を有するマウスはカスパーゼ-1活性の増加を示し、成熟したIL-1βの過剰発現及び低体温の増大及びLPS投与の後に致死となる。8週齢のホモ接合体pyrin切断マウス(1群当たり5匹)を、50μgのQβ-mIL-1β119−269単独又は50μgのQβ VLP単独にて2週間の間隔で3回免疫化する。最後の免疫化の2週後に、すべてのマウスの腹膜内に20mgのD-ガラクトサミンと0.01μg/gのLPSの混合を投与する。Qβ-mIL-1β119−269-免疫化マウスは、Qβ-免疫化コントロールと比較して、低体温の減少とLPS投与に対する致死率の減少を顕著に示す。
関節リウマチのマウスモデルにおけるKineret(登録商標)処置に対するQβ-mIL-1α117−270とQβ-mIL-1β119−269の免疫化の比較
Kineret(登録商標)(Anakinra, Amgen)は、ヒトの関節リウマチの治療の承認を得ているヒトIL-1レセプターアンタゴニストの組み換え型である。臨床的な有用性を満たすために、比較的高い用量(100mg)を皮下投与により毎日投与する。コラーゲン誘発性関節炎モデルを用いて、Qβ-mIL-1α117−270及びQβ-mIL-1β119−269の免疫化の有効性を異なる用量のKineret(登録商標)の毎日適用と比較した。雄のDBA/1マウスに、50μgのQβ-mIL-1α117−270(n=8)、Qβ-mIL-1β119−269(n=8)又はQβ単独(n=32)のいずれかを3回(第0、14及び28日目)皮下投与して免疫化し、次いで第42日目に完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを皮内に注射した。第42日目から、Qβ-mIL-1α117−270及びQβ-mIL-1β119−269にて免疫化したマウス、及び1群のQβ-免疫化マウス(n=8)に200μlのPBSを毎日腹腔内投与したのに対して、更なる3つのQβ-免疫化群に37.5μg(n=8)、375μg(n=8)又は3.75mg(n=8)のいずれかのKineret(登録商標)を毎日腹腔内投与した。1マウスにつき37.5μgのKineret(登録商標)の連日投与はおよそ1.5mg/kgの用量に相当し、これはヒトに推奨される効果的な量の範囲内である(100mg)。すべてのマウスに、不完全フロイントアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを63日目に皮内投与して追加免役し、関節炎症状の発達について毎日調べた。
2回目のコラーゲン投与の4週間後、Qβ-免疫化コントロールマウスは3.75の平均的累積臨床スコア(実施例2Fに定義する)を示したのに対して、Qβ-mIL-1α117−270及びQβ-mIL-1β119−269-免疫化マウスはそれぞれたった0.81及び1.44の平均スコアを示した(表2を参照)。37.5μg又は375μgのKineret(登録商標)にて処置したマウスはそれぞれ2.44及び2.63の平均スコアに達したのに対して、3.75mgのKineret(登録商標)にて処置したマウスは大部分が無症候性のままであり、たった0.19の最大スコアに達した。
結論として、発明者等は、驚くべきことに、Qβ-mIL-1α117−270又はQβ-mIL-1β119−269の3つの投与は、ヒトの用量又はヒトの用量の10倍に相当する量のKineret(登録商標)の連日投与よりもマウスの関節炎症状の発達を防いだことを明らかとした。ヒト用量の100倍のKineret(登録商標)量の投与のみ、Qβ-mIL-1α117−270又はQβ-mIL-1β119−269のワクチンに関して有益性が増加した。
表2:コラーゲン誘発性関節炎モデルにおける臨床疾患症状
A.マウスIL-1α117−270に遺伝的に融合したAP205コートタンパク質(AP205_mIL-1α117−270)からなるウイルス様粒子のクローニング、発現及び精製
インターロイキン-1αのサイズが大きく、立体の問題から、インターロイキン-1αに融合したAP205コートタンパク質並びにwtコートタンパク質サブユニットを含む、いわゆるモザイク粒子を産生する発現系を構築した。このシステムでは、停止コドンの抑制によりAP205-インターロイキン-1αコートタンパク質融合体が生じるのに対して、適当な終止によりwt AP205コートタンパク質が生じる。両タンパク質は細胞内で同時に生産され、モザイクウイルス様粒子内に集合する。サプレッサーコドンTAG(アンバー、pAP590)又はTGA(オパール、pAP592)により終止するAP205コートタンパク質遺伝子をコードする2つの中間プラスミドpAP590及びpAP592を作製した。トリペプチドGly-Ser-Gly(配列番号:189)をコードするリンカー配列をコートタンパク質遺伝子の下流とインフレームに付加した。Kpn2I及びHindIII部位を、AP205コートタンパク質のC末端であるGly-Ser-Glyアミノ酸リンカーのC末端に外来性のアミノ酸配列をコードする配列をクローニングするために付加した。結果として生じるコンストラクトは以下の通りであった。AP590(配列番号:117):AP205コートタンパク質遺伝子−アンバーコドン−GSG(Kpn2I − HindIII);及び、AP592(配列番号:118):AP205コートタンパク質遺伝子−オパールコドン−GSG(Kpn2I−HindIII)プラスミドpAP590の構築のために、オリゴヌクレオチドp1.44(5'-NNCCATGGCAAATAAGCCAATGCAACCG-3';配列番号:119)及びpINC-36(5'-GTAAGCTTAGATGCATTATCCGGA TCCCTAAGCAGTAGTATCAGACGATACG-3';配列番号:120)にて得たPCR断片をNcoIとHindIIIにて消化して、同じ制限酵素にて消化したベクターpQb185にクローニングした。pQb185はpGEMベクター由来のベクターである。このベクター内でのクローニングした遺伝子の発現は、trpプロモーターにて制御する(Kozlovska, T. M.等, Gene 137:133-37 (1993))。同様に、プラスミドpAP592は、オリゴヌクレオチドp1.44及びpINC-40(5'-GTAAGCTTAGATGCATTATCCGGATCCTCAAGCAGTAGTA TCAGACGATACG-3';配列番号:121)にて得たNcoI/HindIII消化PCR断片をクローニングすることによって構築した。
表面上にマウスIL-1αをディスプレイするモザイクAP205 VLPを発現させるために、プラスミドpISM579又はpISM3001を含む大腸菌JM109細胞をそれぞれプラスミドpAP594又はpAP596にて形質転換させた。制限エンドヌクレアーゼEcoRIにてpISM3001からtrpT176遺伝子を切り出し、アンバーtRNAサプレッサー遺伝子を含むプラスミドpMY579(Michael Yarusから贈与)のEcoRI断片に置換することによってプラスミドpISM579を生成した。このtRNAサプレッサー遺伝子はtrpT175の変異体であり(Raftery LA.等 (1984) J. Bacteriol. 158:849-859)、3つの位置:G33、A24及びT35がtrpTと異なる。20μg/mlアンピシリン及び10μg/mlカナマイシンを含む5mlのLB液体培地に、単一のコロニーを播いて、振盪せずに37℃で16〜24時間インキュベートした。調製された種菌は、20μg/mlアンピシリン及び10μg/mlカナマイシンを含むM9培地にて50倍に希釈し、振とう器上で37℃で終夜インキュベートした。細胞を遠心して回収した。
プラスミドpAP596からのAP205_mIL-1α117−270の精製は基本的に上記のpAP594についての記載のように行ない、最後のCL-4Bカラムの後に更なるショ糖勾配精製工程を行った。タンパク質は以下のショ糖液によって調製した勾配の上に重ねた。9ml 36%、3ml 30%、6ml 25%、8ml 20%、6ml 15%、6ml 10%及び3ml 5%のショ糖。UV分光法によって分画を同定し、キャプシドを含むプールした分画を上記のように遠心濾過ユニットにて濃縮し、バッファを10mM Hepes、pH7.5に交換した。最後にグリセロールを50%の終濃度まで加えた。
4匹の雌balb/cマウスをAP205_mIL-1α117−270にて免疫化した。25μgの総タンパク質をPBSにて200μlに希釈し、第0、第14及び第28日目に皮下に接種した(100μlを2か所の腹部に)。第0、第14、第28及び第35日目にマウスの後眼窩から血液を採取し、血清をマウスIL-1α117−270特異的ELISAを用いて解析した。
ELISAプレートを1μg/ml濃度のマウスIL-1α117−270タンパク質にてコートした。プレートの反応を止めて、第14、第28及び第35日目のマウス血清の段階希釈液とともにインキュベートした。結合した抗体を酵素的に標識した抗マウスIgG抗体にて検出した。マウス血清の抗体力価を、450nmで最大半量の吸光度が得られる希釈液の平均として算出した。平均的な抗マウスIL-1α117−270力価は、第14日目に1:4412、第28日目に1:27955、第35日目に1:34824であった。これにより、AP205_mIL-1α117−270による免疫化により免疫寛容が克服され、IL-1α117−270を特異的に認識する高力価の抗体が産生されうることが示唆される。
AP205_mIL-1α117−270にて免疫化したマウスの血清を、マウスIL-1αタンパク質のそれぞれのレセプターへの結合を阻害する能力について試験した。したがって、ELISAプレートを1μg/ml濃度の組み換えmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質にてコートし、AP205_mIL-1α117−270又はAP205単独のいずれかにて免疫化したマウス血清の段階希釈と100ng/mlのマウスIL-1α117−270とともにインキュベートした。固定したmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質に対するIL-1α117−270の結合をビオチン化抗マウスIL-1α抗体と西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートストレプトアビジンにて検出した。AP205_mIL-1α117−270免疫化マウスのすべての血清が3.3%以上の濃度でマウスIL-1α117−270のそのレセプターへの結合を完全に阻害したのに対して、AP205にて免疫化したマウスの血清は用いたいずれの濃度においても有意な阻害効果を示さなかった。これらのデータから、AP205_mIL-1α117−270による免疫化によりマウスIL-1α117−270とそのレセプターとの相互作用を特異的に中和することができる抗体を得ることができることが示唆される。
次に、AP205_mIL-1α117−270による免疫化により生じた抗体のインビボ中和能を調べた。したがって、4匹の雌balb/cマウスを、AP205_mIL-1α117−270にて第0、14及び28日目に3度免疫化し、4匹のマウスをAP205単独で同時に免疫化した。第42日目に、すべてのマウスの静脈内に1μgのフリーIL-1α117−270を注射した。注射したIL-1α117−270の炎症性活性の読み取り値として、血清試料を注射の前と3時間後に回収して、炎症誘発性サイトカインIL-6の濃度における相対的な増加について分析した。AP205-免疫化マウスは12.92±3.95ng/mlの血清IL-6濃度の平均増加を示したのに対して、AP205_mIL-1α117−270にて免疫化したマウスはたった0.06±0.05ng/mlの平均増加を示した(p<0.01)。これらのデータから、AP205_mIL-1α117−270による免疫化によって生産される抗体がIL-1αの炎症誘発性活性を特異的かつ効果的に中和することが可能であったことが示される。
AP205_mIL-1α117−270免疫化の有効性を、マウスコラーゲン誘発性関節炎モデル(CIA)において試験した。雄DBA/1マウスに、50μgのAP205_mIL-1α117−270(n=8)又はAP205単独(n=8)のいずれかを3回(第0、14及び28日目)、皮下に免疫化し、次いで、完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを第42日目に皮内に接種した。第63日目に不完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを追加投与した後、マウスの関節炎症状の発症について毎日試験した。赤くなる程度及び観察される腫脹に基づいて、各々の肢に0から3までの範囲の臨床スコアを付け、すべての後肢の厚さを測定した。2回目のコラーゲン注射の4週間後、Qβ免疫化マウスは5.81の平均累積臨床スコアを示したのに対して、AP205_mIL-1α117−270免疫化マウスはたった2.06の平均スコアを示した。さらに、後肢厚の平均増加は、AP205免疫化マウスでは19%であり、AP205_mIL-1α117−270にて免疫化したマウスではたった9%であった。総して、これらのデータは、AP205_mIL-1α117−270による免疫化が、CIAモデルマウスの炎症と関節炎の臨床徴候を強く防ぐことを示す。
A.マウスIL-1β119−269に遺伝的に融合させたAP205コートタンパク質(AP205_mIL-1β119−269)からなるウイルス様粒子のクローニング及び発現
基本的には実施例8のAP205_mIL-1α117−270について記載したように、マウスIL-1β119−269に遺伝的に融合させたAP205コートタンパク質からなるウイルス様粒子のクローニング、発現及び精製を行った。プライマーpINC-75(5'-GATCCGGAGGTGGTGTCCCCATTAGACAGCT-3'、配列番号:192)及びpINC-77(5'-GTAAGCTTAGGAAGACACAGATTCCAT-3'、配列番号:193)を用いて、マウスインターロイキン1βをコードするプラスミドpModEC1-His-EK-mIL1(119−269からマウスインターロイキン1βの配列を増幅した。これらのプライマーは、5'のKpn2Iと3'のHind IIIの部位を有し、マウスインターロイキン1βのN末端にアミノ酸配列Gly-Glyをさらにコードするマウスインターロイキン-1β遺伝子を増幅する。得られたmur-IL-1β断片をKpn2I及びHindIIIにて消化し、プラスミドpAP630を作製するベクターpAP590(アンバー終止)内の同じ制限酵素部位にクローニングした。アンバー終止を示すプラスミドpISM579を含む大腸菌JM109を、プラスミドpAP630にて形質転換した。20μg/mlアンピシリン及び10μg/mlカナマイシンを含む5mlのLB液体培地に、単一のコロニーを播いて、振盪せずに37℃で16〜24時間インキュベートした。調製された種菌は、20μg/mlアンピシリン及び10μg/mlカナマイシンを含むM9培地にて50倍に希釈し、振とう器上で37℃で終夜インキュベートした。細胞を遠心して回収した。
それぞれ5'にKpn2I部位と3'にMph1103I部位を導入するプライマーpINC-74(5'- GA TCC GGA GGT GGT GCC CCT GTA CGA TCA CTG AAC TG -3'、配列番号:194)及びpINC-76(5'-GTATGCATTAGGAAGACACAAATTGCATGGTGAAGTC-3、配列番号:195)を用いて、ヒトインターロイキン1βをコードするプラスミドpET42T-hIL-1β116−269からヒトインターロイキン1βの配列を増幅した。得られたヒト-IL-1β断片をKpn2I及びMph1103Iにて消化し、プラスミドpAP649を作製するベクターpAP590(アンバー終止)内の同じ制限酵素部位にクローニングした。プラスミドpISM579(アンバー終止を示す)を含む大腸菌JM109を、プラスミドpAP649にて形質転換した。20μg/mlアンピシリン及び10μg/mlカナマイシンを含む5mlのLB液体培地に、単一のコロニーを播いて、振盪せずに37℃で16〜24時間インキュベートした。調製された種菌は、20μg/mlアンピシリン及び10μg/mlカナマイシンを含むM9培地にて50倍に希釈し、振とう器上で37℃で終夜インキュベートした。細胞を遠心して回収した。
4匹の雌balb/cマウスをAP205_mIL-1β119−269にて免疫化する。25μgの総タンパク質をPBSにて200μlに希釈し、第0、第14及び第28日目に皮下に接種する(100μlを2か所の腹部に)。第0、第14、第28及び第35日目にマウスの後眼窩から血液を採取し、血清をマウスIL-1β119−269特異的ELISAを用いて分析する。
ELISAプレートを1μg/ml濃度のマウスIL-1β119−269タンパク質にてコートする。プレートの反応を止めて、第0、14、28及び35日目のマウス血清の段階希釈液とともにインキュベートする。結合した抗体を酵素的に標識した抗マウスIgG抗体にて検出する。マウス血清の抗体力価を、450nmで最大半量の吸光度が得られる希釈液の平均として算出する。AP205_mIL-1β119−269による免疫化により高度に特異的な抗マウスIL-1β119−269力価が生じる。これにより、AP205_mIL-1β119−269による免疫化により免疫寛容が克服され、IL-1β119−269を特異的に認識する高力価の抗体が産生されうることが示唆される。
次いで、AP205_mIL-1β119−269にて免疫化したマウスの血清を、マウスIL-1βタンパク質のレセプターへの結合を阻害する能力について試験する。したがって、ELISAプレートを1μg/ml濃度の組み換えmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質にてコートし、AP205_mIL-1β119−269又はAP205単独のいずれかにて免疫化したマウス血清の段階希釈と100ng/mlのマウスIL-1β119−269とともにインキュベートする。固定したmIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質に対するIL-1β119−269の結合をビオチン化抗マウスIL-1β抗体と西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートストレプトアビジンにて検出する。AP205_mIL-1β119−269免疫化マウスのすべての血清がマウスIL-1β119−269のレセプターへの結合を強く阻害するのに対して、AP205単独にて免疫化したマウスの血清は全く阻害効果を示さない。これらのデータから、AP205_mIL-1β119−269による免疫化によりマウスIL-1β119−269とそのレセプターとの相互作用を中和することができる抗体を生じさせることができることが示唆される。
次に、AP205_mIL-1β119−269による免疫化により生じた抗体のインビボ中和能を調べる。したがって、4匹の雌balb/cマウスを、AP205_mIL-1β119−269にて第0、14及び28日目に3度免疫化し、4匹のマウスをAP205単独で同時に免疫化する。第35日目に、すべてのマウスの静脈内に1μgのフリーIL-1β119−269を注射する。注射したIL-1β119−269の炎症性活性の読み取り値として、血清試料を注射の前と3時間後に回収して、炎症誘発性サイトカインIL-6の濃度における相対的な増加について分析する。AP205-免疫化マウスは血清IL-6濃度の強い増加を示すのに対して、AP205_mIL-1β119−269にて免疫化したマウスは非常にわずかな増加のみを示す。これらのデータから、AP205_mIL-1β119−269による免疫化によって生産される抗体がIL-1βの炎症誘発性活性を特異的かつ効果的に中和することが可能であることが示される。
AP205_mIL-1β119−269免疫化の有効性を、マウスコラーゲン誘発性関節炎モデル(CIA)において試験した。雄DBA/1マウスに、50μgのAP205_mIL-1β119−269(n=8)又はAP205単独(n=8)のいずれかを3回(第0、14及び28日目)、皮下に免疫化し、次いで、完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを第42日目に皮内に接種した。第63日目に不完全フロインドアジュバントと混合した200μgのウシタイプIIコラーゲンを追加投与した後、マウスの関節炎症状の発症について毎日試験した。赤くなる程度及び観察される腫脹に基づいて、各々の肢に0から3までの範囲の臨床スコアを付け、すべての後肢の厚さを測定した。2回目のコラーゲン注射の4週間後、AP205_mIL-1β119−269免疫化マウスはAP205免疫化マウスと比較して非常に減少した平均臨床スコアを示す。さらに、AP205_mIL-1β119−269免疫化マウスは後肢厚のわずかな増加を示すのに対して、AP205免疫化マウスは後肢厚の強い増加を示す。総して、これらのデータは、AP205_mIL-1β119−269による免疫化が、CIAモデルマウスの炎症と関節炎の臨床徴候を強く防ぐことを示す。
ヒトIL-1β116−269のクローニング、発現及び精製
オリゴヌクレオチドHIL-1(5'- ATATATGATATCCCTGTACGATCACTGAACTGCACG-3'、配列番号:124)及びHIL-2(5'-ATATATCTCGAGGGAAGACA CAAATTGCATGGTGAAG-3'、配列番号:125)を用いて、ヒト肝臓組織のcDNAライブラリからPCRにてヒトIL-1βのアミノ酸116−269(hIL-1β116−269)をコードするヌクレオチド配列を増幅し、XhoI及びEcoRVにて消化し、発現ベクターpET42T(+)にクローニングした。
pET-42a(+) (Novagen)のT7プロモーターとT7ターミネーターの間の全領域を新たなリンカー配列に2工程で置き換えて、プラスミドpET-42T(+)を構築し、His-タグ及びシステイン含有リンカーを含むC末端タグ(配列番号:190)を有する融合体として対象のタンパク質の発現を促した。第一工程では、プラスミドpET-42a(+)を制限酵素NdeI及びAvrIIにて消化し、GST-タグ、S-タグの2つのHis-タグとマルチクローニングサイトからなるT7プロモーターとT7ターミネーターとの間の958bpの断片を遊離させた。pET-42a(+)のベクターバックボーンを含む残りの4972bpの断片を単離し、アニールさせた相補的なオリゴヌクレオチド42-1(5´-TATGGATATCGAATTCAAGCTTCTGCAGCTGCTCGAGTAA TTGATTAC-3´;配列番号:126)及び42-2(5´-CTAGGTAATC AATTACTCGA GCAGCTGCAGAAGCTTGAATTCGATATCCA-3´;配列番号:127)にライゲーションしプラスミドpET-42S(+)を生じさせた。第二の工程では、プラスミドpET-42S(+)を制限酵素XhoI及びAvrIIにて消化して線状化し、相補的なアニールさせたオリゴヌクレオチド42T-1(5´-TCGAGCACCACCACCACCACCACGGTGGTT GCTAATAATAATTGATTAATAC-3´;配列番号:128)及び42T-2(5´-CTAGGTATTAATCAATTATTATTAGCAACCACCGTGGTGGTGGTGGTGGTGC-3´;配列番号:129)にライゲーションし、プラスミドpET-42T(+)を生じさせた。
上記の断片hIL-1β116−269をpET-42T(+)にクローニングしてプラスミドpET42T-hIL-1β116−269を生じさせた。このプラスミドは、成熟ヒトIL-1β及びHis-タグ及びC末端システイン含有リンカー(GGC、配列番号:178)に相当する融合タンパク質をコードする。ゆえに、融合タンパク質は、配列番号:165にC末端で融合させた配列番号:190からなる。ヒトIL-1βの位置117の元のアラニン残基をこの融合タンパク質ではイソロイシンに変更した。基本的には実施例1のマウスmIL1β119−269タンパク質についての記載のように、ヒトIL-1β116−269タンパク質の発現及び精製を行った。
プラスミドpET42T-hIL-1β116−269の部位特異的突然変異誘発によって、10の異なる変異体ヒトIL-1β116−269融合タンパク質のための発現ベクターを構築した。この目的のために、Quik-Change(登録商標)部位特異的突然変異誘発キット(Stratagene)を製造者の指示に従って用いた。変異体IL-1β119−269タンパク質の発現ベクターをその構築に用いたオリゴヌクレオチド対とともに表3に挙げる。実施例1に記載のように異なるヒトIL-1β116−269変異タンパク質の発現及び精製を行った。
ヒトIL-1β116−269とヒトIL-1β116−269変異タンパク質の生物学的な活性
1群につき3匹の雌C3H/HeJマウスに10μgの野生型ヒトIL-1β119−269タンパク質又は実施例10のヒトIL-1β119−269タンパク質変異体の1つのいずれかを静脈内投与する。血清試料を注射の前と3時間後に回収して、炎症誘発性サイトカインIL-6の濃度における相対的な増加について分析した。野生型ヒトIL-1β119−269タンパク質を投与したマウスは血清IL-6濃度の強い増加を示すのに対して、ヒトIL-1β119−269変異タンパク質のいずれかを投与したマウスはごくわずかな増加を示すか、全く増加を示さない。
A.Qβウイルス様粒子へのヒトIL-1β116−269及びヒトIL-1β116−269変異タンパク質のカップリング
Qβウイルス様粒子への野生型ヒトIL-1β119−269タンパク質及び実施例10のヒトIL-1β119−269変異タンパク質の化学的な架橋は基本的に実施例2Aに記載のように行った。
1群につき4匹の雌balb/cマウスを野生型hIL-1β116−269タンパク質又はhIL-1β116−269変異タンパク質のうちの1つのいずれかにカップリングさせたQβにて免疫化した。50μgの総タンパク質をPBSにて200μlに希釈し、第0、14及び28日目に皮下に接種した(100μlを2か所の腹部に)。第35日目にマウスの後眼窩から血液を採取し、抗原として用いたそれぞれのヒトIL-1β116−269変異タンパク質又は野生型ヒトIL-1β116−269タンパク質のいずれかに特異的なELISAを用いて血清を分析した。
ELISAプレートを1μg/ml濃度の野生型hIL-1β116−269タンパク質又はそれぞれのhIL-1β116−269変異タンパク質のいずれかにてコートした。プレートの反応を止めて、第35日目のマウス血清の段階希釈液とともにインキュベートした。結合した抗体を酵素的に標識した抗マウスIgG抗体にて検出した。マウス血清の抗体力価を、450nmで最大半量の吸光度が得られる希釈液の平均として算出し、表4に示す。
Qβ-hIL-1β116−269-免疫化によりhIL-1β116−269に対して高力価のIgG抗体が誘導された。さらに、いずれかのQβ-hIL-1β116−269変異タンパク質ワクチンによるワクチン接種により、抗原として用いたそれぞれのhIL-1β116−269変異タンパク質及び野生型hIL-1β116−269タンパク質の両方に対して高いIgG力価が誘導された。
野生型hIL-1β116−269タンパク質又はhIL-1β116−269変異タンパク質のうちの1つのいずれかにカップリングさせたQβにて免疫化したマウスの血清を、マウスIL-1βタンパク質のレセプターへの結合を阻害する能力について試験した。したがって、ELISAプレートを1μg/ml濃度の組み換えヒトIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質にてコートし、上記の血清の段階希釈と100ng/mlのhIL-1β116−269タンパク質とともにインキュベートした。固定したヒトIL-1レセプターI-hFc融合タンパク質に対するhIL-1β116−269の結合をビオチン化抗ヒトIL-1β抗体と西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートストレプトアビジンにて検出した。Qβ-hIL-1β116−269変異タンパク質ワクチンに対して生じたすべての血清が、3.3%以上の血清濃度で100ng/mlの野生型hIL-1β116−269のhIL-1RIへの結合を完全に阻害した。
野生型hIL-1β116−269タンパク質又はhIL-1β116−269変異タンパク質のうちの1つのいずれかにカップリングさせたQβによる免疫化により生じた抗体のインビボ中和能を調べる。したがって、1群につき3匹の雌C3H/HeJマウスを、50μgのいずれかのワクチンにて第0、14及び28日目に3度免疫化する。第35日目に、すべての免疫化したマウスの静脈内に1μgのフリー野生型hIL-1β116−269を注射する。コントロールとして3匹のナイーブマウスに同量の野生型hIL-1β116−269を同時に投与する。注射したhIL-1β116−269の炎症性活性の読み取り値として、血清試料を注射の直前と3時間後に回収して、炎症誘発性サイトカインIL-6の濃度における相対的な増加について分析した。ナイーブマウスはhIL-1β116−269の投与の3時間後に血清IL-6濃度の強い増加を示すのに対して、野生型hIL-1β116−269タンパク質又はhIL-1β116−269変異タンパク質のうちの1つにカップリングさせたQβにて免疫化したすべてのマウスは血清IL-6の増加を全く示さない。このことから、投与したhIL-1β116−269はワクチンに誘導される抗体によって効果的に中和されることが示唆される。
Qβ-mIL-1β119−269による免疫化によるMSU-誘発性炎症の寛解
痛風は関節及び関節周囲組織での一ナトリウム尿酸塩(MSU)結晶の沈殿によって生じる痛みを伴う炎症性疾患である。MSU結晶はいわゆるNALP3インフラマソーム(inflammasome)を活性化してその結果、活性なIL-1βを産生することが示されており、このIL-1βが疾患に特徴的な炎症性応答を開始し、促す役割を主に担う。C57BL/6マウス(1群につき5匹)を、50μgのQβ-mIL-1β119−269又は50μgのQβ VLP単独を2週間の間隔で3回皮下投与して免疫化する。最後の免疫化の1週間後、1.5mgのMSU結晶にてすべてのマウスを腹腔内投与により抗原刺激する。抗原刺激の6時間後にマウスを屠殺し、腹膜浸出液中の好中球数並びに好中球化学誘引物質であるKC及びMIP-2の濃度を測定する。Qβ-mIL-1β119−269免疫化マウスは、Qβ免疫化コントロールと比較して、好中球及びMIP-2及びKC濃度の顕著な現象を示す。
Qβ-mIL-1β119−269による免疫化による実験的自己免疫性脳炎の寛解
多発性硬化症のマウスモデルにおいて、C57BL/6マウス(1群につき8匹)を、50μgのQβ-mIL-1β119−269又は50μgのQβ VLP単独を2週間の間隔で3回皮下投与して免疫化する。最後の免疫化の1週間後に、完全フロイトアジュバントと混合した100μgのMOGペプチド(MEVGWYRSPFSRVVHLYRNGK、配列番号:191)をすべてのマウスの皮下に投与する。同日及び2日後に、400ngの百日咳毒素をすべてのマウスの腹腔内に投与する。以下のスキーム:0、臨床的に疾患なし;0.5、尾部端の跛行;1、尾部の完全な跛行;1.5、尾部跛行及び後肢虚弱(後肢の不安定な歩調及び弱い握力);2、片側の部分的な後肢麻痺;2.5、左右相称の部分的な後肢麻痺;3、完全な左右相称の後肢麻痺;3.5、完全な左右相称の後肢麻痺及び片側前肢の麻痺;4、前後の四肢の総麻痺に従って、マウスの神経学的な症状の発達を毎日スコア付けする。Qβ-mIL-1β119−269免疫化マウスは、Qβ免疫化マウスと比較して明らかな臨床症状の減少を示す。
Claims (17)
- (a) 少なくとも1の第一付着部位を有するウイルス様粒子(VLP);と、
(b) 少なくとも1の第二付着部位を有する少なくとも1の抗原
とを含んでなる組成物であり、
このとき、該VLPがRNAバクテリオファージQβ又はAP205であるか、又は該RNAバクテリオファージQβ又はAP205の組み換えコートタンパク質を含み、
該少なくとも1の抗原が、配列番号:63、65及び163に示すIL−1α成熟断片、配列番号:64、66、164及び165に示すIL−1β成熟断片、及び配列番号:131−140に示すIL−1β変異タンパク質からなる群から選択されるIL-1分子であり、
(a)と(b)が該少なくとも1の第一付着部位と少なくとも1の第二付着部位を介して結合しており、前記第一付着部位が少なくとも1の共有結合により前記第二付着部位に結合している、組成物。 - 前記IL-1β変異タンパク質がhIL-1β116−269(D145K)(配列番号:136)である、請求項1に記載の組成物。
- 前記VLPが、RNAバクテリオファージQβ又はAP205の組み換えコートタンパク質からなる、請求項1に記載の組成物。
- 前記RNAバクテリオファージがバクテリオファージQβである、請求項1に記載の組成物。
- 前記RNAバクテリオファージQβのコートタンパク質が配列番号:3に示すアミノ酸配列を含む、請求項4に記載の組成物。
- 前記共有結合が非ペプチド結合である、請求項1に記載の組成物。
- 前記第一付着部位がアミノ基を含み、前記第二付着部位がスルフヒドリル基を含む、請求項1から6のいずれか一に記載の組成物。
- 前記第一付着部位がリジンのアミノ基であり、前記第二付着部位がシステインのスルフヒドリル基である、請求項1から7のいずれか一に記載の組成物。
- 前記第二付着部位のただ1つが、前記IL-1分子の前記ウイルス様粒子への単一及び均一なタイプの結合を生じさせる少なくとも1の非ペプチド共有結合を介して、前記第一付着部位に付随し、このとき該第一付着部位に付随する該ただ1つの第二付着部位がスルフヒドリル基であり、該IL-1分子と該ウイルス様粒子が該付随を介して相互作用して、規則正しく反復した抗原アレイを形成する、請求項1から8のいずれか一に記載の組成物。
- 前記抗原がバクテリオファージAP205のコートタンパク質、その変異体又はその断片のN-末端又はC-末端に融合している、請求項1から5のいずれか一に記載の組成物。
- さらにリンカーを含み、該リンカーが少なくとも1の共有結合によりIL-1分子に付随し、該リンカーが前記第二付着部位を含む、請求項1から10のいずれか一に記載の組成物。
- 前記IL−1分子がヘテロ二官能性架橋剤によって前記ウイルス様粒子に結合している、請求項1から9及び11のいずれか一に記載の組成物。
- 前記ヘテロ二官能性架橋剤がSMPHである、請求項12に記載の組成物。
- 請求項1から13のいずれか一に記載の組成物を含むワクチンであり、アジュバントを欠いているワクチン。
- (a) 請求項1から13のいずれか一に記載の組成物又は請求項14に記載のワクチン;と、
(b) 製薬的に許容される担体
とを含有してなる製薬的組成物。 - 請求項1から13のいずれか一に記載の組成物又は請求項14に記載のワクチンの製造方法であって、
(a) 少なくとも1の第一付着部位を有するVLPを供給すること;
(b) 少なくとも1の第二付着部位を有する少なくとも1の抗原を供給すること、このとき該抗原が、配列番号:63、65及び163に示すIL−1α成熟断片、配列番号:64、66、164及び165に示すIL−1β成熟断片、及び配列番号:131−140に示すIL−1β変異タンパク質からなる群から選択されるIL-1分子であり;そして、
(c) 該組成物又は該ワクチンを製造するために該VLPと該少なくとも1の抗原を結合させること、このとき該少なくとも1の抗原と該VLPが該少なくとも1の第一付着部位と該少なくとも1の第二付着部位を介して結合するものである、
を含んでなる方法。 - 疾患の治療のための医薬であって、請求項1から13のいずれか一に記載の組成物、請求項14に記載のワクチン又は請求項15に記載の製薬的組成物を含み、該疾患が、
(a) アテローム性動脈硬化;
(b) 家族性地中海熱(FMF);
(c) 全身性若年性特発性関節炎又は関節リウマチ;
(d) 痛風又は骨関節炎;
(e) アレルギー性疾患;及び、
(f) 多発性硬化症;
からなる群から選択されるものである、医薬。
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