JP4785505B2 - Enzyme immobilized biosensor - Google Patents

Enzyme immobilized biosensor Download PDF

Info

Publication number
JP4785505B2
JP4785505B2 JP2005337908A JP2005337908A JP4785505B2 JP 4785505 B2 JP4785505 B2 JP 4785505B2 JP 2005337908 A JP2005337908 A JP 2005337908A JP 2005337908 A JP2005337908 A JP 2005337908A JP 4785505 B2 JP4785505 B2 JP 4785505B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
electrode
immobilized
alcohol
compound
enzyme
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP2005337908A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2007139729A (en
Inventor
泰彦 吉田
崇 東海林
クマール サクチ
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Japan Science and Technology Agency
National Institute of Japan Science and Technology Agency
Original Assignee
Japan Science and Technology Agency
National Institute of Japan Science and Technology Agency
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Japan Science and Technology Agency, National Institute of Japan Science and Technology Agency filed Critical Japan Science and Technology Agency
Priority to JP2005337908A priority Critical patent/JP4785505B2/en
Publication of JP2007139729A publication Critical patent/JP2007139729A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP4785505B2 publication Critical patent/JP4785505B2/en
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Description

本発明は、アルデヒド化合物もしくはアルコール化合物の検出測定用の酵素固定化バイオセンサーに関するものである。   The present invention relates to an enzyme-immobilized biosensor for detecting and measuring aldehyde compounds or alcohol compounds.

酵素を固定化したバイオセンサーについての検討が従来より進められてきており、たとえば、酵素を白金黒表面に固定化したバイオセンセー(EEE型センサー)が糖尿病患者らの血糖値を測定する簡易型グルコースセンサーとして実用化されている(特許文献1)。   Studies on biosensors with immobilized enzymes have been conducted in the past. For example, biosensors (EEE type sensors) with immobilized enzymes on platinum black surfaces measure the blood glucose level of diabetic patients. It has been put into practical use as a sensor (Patent Document 1).

しかしながら、従来の酵素固定化バイオセンサーの場合には、実際に使用できる酵素の種類は限られており、たとえばグルコースオキシターゼ、コレステロールオキシターゼ、ウレアーゼ等にすぎなかった。   However, in the case of a conventional enzyme-immobilized biosensor, the types of enzymes that can actually be used are limited, such as glucose oxidase, cholesterol oxidase, urease, and the like.

一方、近年では、「化学物質過敏症」の原因物質であるホルムアルデヒドに対しての関心が高まり、接着剤、化学資料、木材保存剤等に広く用いられているホルムアルデヒドについては水道水を消毒したり、不快な風味をもたらす鉄やマンガン成分を取り除くために前処理に使用されるオゾンがいくつかの有機物をオゾン化してホルムアルデヒドを発生させる等の知見の深まりともに、発ガン性、変態変異誘発性の観点からも、これを簡易な方法によって、気相、あるいは液相でも検出測定するための方法の実現が望まれている。   On the other hand, in recent years, interest in formaldehyde, which is a causative substance of “chemical sensitivity”, has increased, and tap water has been disinfected for formaldehyde widely used in adhesives, chemical materials, wood preservatives, etc. In addition to the deepening of knowledge that ozone used for pretreatment to remove iron and manganese components that cause unpleasant flavors, ozonize some organic substances to generate formaldehyde, it is carcinogenic and metamorphogenic. From the viewpoint, it is desired to realize a method for detecting and measuring the gas phase or the liquid phase by a simple method.

このようなホルムアルデヒドの分析、測定のための方法としては、従来より、DNPH(2,4−ジニトロフェニルヒドラジン)誘導体化固相吸着/溶媒抽出・高速液体クロマトグラフ法やガスクロマトグラフ法が用いられているが、その測定には時間がかかり、分析のための装置も複雑で高価なものとなっている。このため、その簡易な測定方法の実態が求められていた。   As methods for analyzing and measuring formaldehyde, DNPH (2,4-dinitrophenylhydrazine) derivatized solid-phase adsorption / solvent extraction / high performance liquid chromatography and gas chromatography have been used. However, the measurement takes time, and the apparatus for analysis is complicated and expensive. For this reason, the actual condition of the simple measuring method has been demanded.

このような背景からは、酸素固定化によるEEE型バイオセンセーによってホルムアルデヒドをはじめとするアルデヒド化合物を検出測定することが考えられるが、これまでのところ、アルデヒド化合物の検出測定を簡易に、かつ精度良く可能にする酵素固定化バイオセンサーは実現されていない。   From such a background, it is conceivable to detect and measure aldehyde compounds such as formaldehyde with an EEE-type biosense using oxygen fixation. So far, detection and measurement of aldehyde compounds can be performed easily and accurately. An enzyme-immobilized biosensor that makes it possible has not been realized.

また、医療現場等からは、アルデヒド化合物とともに、アルコール化合物をも簡易に検出測定するための方策も求められていた。
特開平10−267888号公報
In addition, from the medical field, there has been a demand for a method for easily detecting and measuring alcohol compounds together with aldehyde compounds.
JP-A-10-267888

本発明は、以上のとおりの事情から、従来の問題点を解消し、気相中の、あるいは液相中のホルムアルデヒドをはじめとするアルデヒド化合物、そしてさらにはアルコール化合物をも簡易に検出測定することのできる、新しい酵素固定化バイオセンサーを提供することを課題としている。   The present invention eliminates the conventional problems from the circumstances as described above, and easily detects and measures aldehyde compounds such as formaldehyde in the gas phase or liquid phase, and further alcohol compounds. It is an issue to provide a new enzyme-immobilized biosensor that can be used.

本発明の酵素固定化バイオセンサーは、上記の課題を解決するものとして以下のことを特徴としている。   The enzyme-immobilized biosensor of the present invention is characterized by the following as a solution to the above problems.

第1:過酸化水素電極の表面にアルコール酸化酵素(AOX)が固定化され、最表面には高分子被覆として、ポリアリル化合物もしくはポリアクリル化合物の架橋膜が配設されて、過酸化水素の酸化電流値、またはその変化よりアルデヒド化合物もしくはアルコール化合物の存在を検出測定可能とする。 First: Alcohol oxidase (AOX) is immobilized on the surface of the hydrogen peroxide electrode, and a cross-linked film of polyallyl compound or polyacryl compound is disposed on the outermost surface as a polymer coating to oxidize hydrogen peroxide. The presence of an aldehyde compound or an alcohol compound can be detected and measured from the current value or a change thereof.

第2:過酸化水素電極は白金電極とその表面に析出された白金黒により少くともその一部が構成され、白金黒表面にアルコール酸化酵素(AOX)が固定化されている。   Second: At least a part of the hydrogen peroxide electrode is constituted by a platinum electrode and platinum black deposited on the surface thereof, and alcohol oxidase (AOX) is immobilized on the platinum black surface.

上記のとおりの特徴を有する本発明の酵素固定化バイオセンサーによれば、従来のような複雑で高価な装置を必要とすることなく、短時間で簡易にアルデヒド化合物やアルコール化合物の存在を検出測定することができる。そして、アルデヒド化合物、アルコール化合物は気相中の存在であっても、あるいは液相中の存在であっても検出測定可能とされている。   According to the enzyme-immobilized biosensor of the present invention having the features as described above, the presence of an aldehyde compound or an alcohol compound can be easily detected and measured in a short time without the need for a complicated and expensive apparatus as in the prior art. can do. The aldehyde compound and the alcohol compound can be detected and measured even in the gas phase or in the liquid phase.

また、本発明によればセンサーとしての製造も簡易、かつ容易である。   In addition, according to the present invention, manufacture as a sensor is simple and easy.

本発明は上記のとおりの特徴をもつものであるが、以下にその実施の形態について説明する。   The present invention has the features as described above, and an embodiment thereof will be described below.

本発明の酵素固定化バイオセンサーにおいては、過酸化水素電極の表面にアルコール酸化酵素(AOX)が固定化されていることを必須の要件としており、過酸化水素電極において、過酸化水素の酸化電流を検知することをその基本的原理としている。   In the enzyme-immobilized biosensor of the present invention, it is an essential requirement that alcohol oxidase (AOX) is immobilized on the surface of the hydrogen peroxide electrode. The basic principle is to detect this.

ホルムアルデヒドの場合について酵素AOXの反応と電極反応とを説明すると次のとおりである。   In the case of formaldehyde, the reaction of the enzyme AOX and the electrode reaction will be described as follows.

この反応において、定電位を印加したときの電流の変化量を測定する。すなわち、AOXの反応により発生した過酸化水素の酸化電流から、間接的にホルムアルデヒドの濃度を測定することができる。   In this reaction, the amount of change in current when a constant potential is applied is measured. That is, the concentration of formaldehyde can be indirectly measured from the oxidation current of hydrogen peroxide generated by the AOX reaction.

一方、酵素AOXはアルコール化合物とも同様の反応をし、たとえば次のように過酸化水素が発生する。   On the other hand, the enzyme AOX reacts with the alcohol compound in the same manner, and for example, hydrogen peroxide is generated as follows.

以上のように、本発明の原理である電極反応によれば、ホルムアルデヒドをはじめとするアルデヒド化合物の場合、そしてアルコール化合物の場合のいずれも酸化反応による酸化電流の検知によってこれら化合物の検出測定が可能になる。このことから、本発明においてはアルデヒド化合物の検出測定のためのセンサーと、アルコール化合物の検出測定のためのセンサーが実現されることになる。   As described above, according to the electrode reaction which is the principle of the present invention, detection and measurement of these compounds can be performed by detecting an oxidation current by an oxidation reaction in the case of aldehyde compounds including formaldehyde and alcohol compounds. become. Therefore, in the present invention, a sensor for detecting and measuring an aldehyde compound and a sensor for detecting and measuring an alcohol compound are realized.

ただ、以上のことから理解されるように、検知電流値にアルデヒド化合物由来の応答とアルコール由来の応答とが含まれることが想定される。このため、ホルムアルデヒド等のアルデヒド化合物を検出測定する場合には、アルコール化合物による応答を抑制すること等が必要になる場合がある。   However, as understood from the above, it is assumed that the detected current value includes a response derived from an aldehyde compound and a response derived from alcohol. For this reason, when detecting and measuring an aldehyde compound such as formaldehyde, it may be necessary to suppress a response due to the alcohol compound.

そこで、本発明の酵素固定化バイオセンサーでは、アルデヒド化合物もしくはアルコール化合物の応答の選択性を、最表面としての高分子被覆の配設によって高めることを可能としてもいる。   Therefore, in the enzyme-immobilized biosensor of the present invention, the selectivity of the response of the aldehyde compound or alcohol compound can be enhanced by disposing a polymer coating as the outermost surface.

本発明における最表面の被覆層としての高分子膜は、過酸化水素電極表面に固定化したアルコール酸化酵素(AOX)の固定化安定性を高め、気相、あるいは液相中での耐久性を実現するためにも必須のものであるが、この高分子膜として、アルコール化合物吸着性のものや、アルコール化合物を排斥することのできるもの、あるいはアルデヒド化合物吸着性等のものを用いることによって、上記の応答選択性を高めることも可能になる。一般的には、テルデヒド化合物とアルコール化合物の選択応答性については、高分子膜の親水性、疎水性の相異、あるいは立体的排除の有無によるが、高分子膜への被検物質の溶解性と高分子膜の透過性の違いに基づいて制御することができる。   The polymer film as the outermost coating layer in the present invention enhances the stability of immobilization of alcohol oxidase (AOX) immobilized on the surface of the hydrogen peroxide electrode, and improves durability in the gas phase or liquid phase. Although it is indispensable for realizing, the polymer film can be adsorbed by using an alcohol compound-adsorbing material, an alcohol compound-excluding material, or an aldehyde compound-adsorbing material. It is also possible to improve the response selectivity. In general, the selectivity of the terdehydride compound and alcohol compound depends on the hydrophilicity and hydrophobicity of the polymer membrane, or the presence or absence of steric exclusion, but the solubility of the test substance in the polymer membrane And can be controlled based on the difference in permeability of the polymer membrane.

例えばアルコール化合物による応答を制御するためにはPAAM(ポリアリルアミン)を高分子被覆とすること等が考慮される。   For example, in order to control the response by an alcohol compound, it is considered to use PAAM (polyallylamine) as a polymer coating.

本発明の酵素固定化センサーを構成する過酸化水素電極としては、上記のとおりの過酸化水の酸化電流を精度良く検知できるものであれば各種のものでよい。なかでも代表的なものとしては、白金電極とその上に析出させた白金黒とにより構成されたもの、あるいはこの構成を少くとも必須の一部としているものが好適に考慮される。この白金黒の析出された電極とその作製法については従来のEEE型センサーとしての公知の手段等が適宜に採用されてよい。また、白金黒だけでなく、金黒等の多孔質金属を用いることも考慮される。   As the hydrogen peroxide electrode constituting the enzyme-immobilized sensor of the present invention, various types may be used as long as the oxidation current of the peroxide water as described above can be accurately detected. Among them, a representative one that is constituted by a platinum electrode and platinum black deposited on the platinum electrode, or one that at least makes this constitution essential is preferably considered. As for the electrode on which platinum black is deposited and a method for producing the electrode, known means as a conventional EEE type sensor may be appropriately employed. Moreover, it is considered to use not only platinum black but also a porous metal such as gold black.

白金黒等の過酸化水素電極上に固定化するアルコール酸化酵素(AOX)については、従来の他の酵素の場合と同様の各種の方法、手段によって固定化することができる。たとえば、グルタルアルデヒド(GA)を用いての固定化等が好適なものとして考慮される。本発明のセンサーの場合には、アルコール酸化酵素(AOX)の固定化量は、センサー最表面の高分子膜の種類や特性との組合せに応じて、センサーの使用目的、使用環境(条件)、望まれる検出感度等を考慮して適宜に定めることができる。   Alcohol oxidase (AOX) immobilized on a hydrogen peroxide electrode such as platinum black can be immobilized by various methods and means similar to those of other conventional enzymes. For example, immobilization with glutaraldehyde (GA) is considered suitable. In the case of the sensor of the present invention, the immobilized amount of alcohol oxidase (AOX) depends on the combination of the type and characteristics of the polymer film on the outermost surface of the sensor, It can be determined as appropriate in consideration of the desired detection sensitivity.

AOX酸素固定化後には、最表面層として高分子膜により被覆を行うが、この場合の高分子膜としてはアルコール酸化酵素(AOX)の保護、被検物質の応答選択性に係わる親水性や疎水性の度合、吸着あるいは透過性等の望まれる性質、特性を有しているものとする。このような高分子膜を形成するための高分子としては、たとえば好適なものとしてはポリアリルアミン(PAAM)をはじめとするポリアリル化合物や、ポリアクリルアミド等のポリアクリル化合物等が例示される。また、これらの高分子膜は架橋処理されていることが有効でもある。架橋のための手段としては、たとえばGA等のジアルデヒド化合物や、水溶性カルボジイミド化合物等が例示される。   After the AOX oxygen immobilization, the outermost surface layer is coated with a polymer membrane. In this case, the polymer membrane is protected by alcohol oxidase (AOX), hydrophilicity or hydrophobicity related to the response selectivity of the test substance. It has desired properties and characteristics such as degree of property, adsorption or permeability. Preferred examples of the polymer for forming such a polymer film include polyallyl compounds such as polyallylamine (PAAM), polyacryl compounds such as polyacrylamide, and the like. It is also effective that these polymer membranes are crosslinked. Examples of means for crosslinking include dialdehyde compounds such as GA and water-soluble carbodiimide compounds.

本発明の酵素固定化バイオセンサーにおける高分子被覆の膜厚も上記と同様に適宜に定めることができる。   The film thickness of the polymer coating in the enzyme-immobilized biosensor of the present invention can be determined appropriately as described above.

高分子被覆を構成する高分子膜の種類等によって、前記のとおりのアルデヒド化合物の選択的応答を可能とすることができる。   The selective response of the aldehyde compound as described above can be made possible depending on the type of the polymer film constituting the polymer coating.

本発明の酵素固定化バイオセンサーにおける電極への定電位の印加と酸化電流の検知のための電気回路については従来と同様に各種の構成とすることができる。たとえば、作用電極、参照電極、そして対電極の三電極系、もしくはニ極電系の構成とすることができ、電解質等は各種のものであってよい。   The electric circuit for applying a constant potential to the electrode and detecting the oxidation current in the enzyme-immobilized biosensor of the present invention can have various configurations as in the prior art. For example, a three-electrode system of a working electrode, a reference electrode, and a counter electrode, or a bipolar system can be used, and the electrolyte can be various.

そして実際のアルデヒド化合物やアルコール化合物の検出測定を行う際には、検知される電流値と濃度との検量線を作成しておくことで定量的な測定が可能となる。また、定性的には、検知される電流値の変化によって検出が可能とされる。   Then, when performing detection measurement of an actual aldehyde compound or alcohol compound, quantitative measurement is possible by creating a calibration curve between the detected current value and concentration. Further, qualitatively, detection is possible by a change in the detected current value.

そこで以下に実施例を示し、さらに詳しく説明する。もちろん以下の例によって発明が限定されることはない。   Therefore, an example will be shown below and will be described in more detail. Of course, the invention is not limited by the following examples.

<1>酵素固定化センサー電極の作製
ガラス管に封入した0.1mm径の白金電極の端部の白金露出表面を研磨し、塩化白金酸溶液中で定電位(−80mV)を印加して研磨した表面に白金黒を電析した。次いで、リン酸緩衝中で定電位(1200mV)を印加してアノード処理をした。
<1> Preparation of enzyme-immobilized sensor electrode The platinum exposed surface at the end of a 0.1 mm diameter platinum electrode sealed in a glass tube is polished and polished by applying a constant potential (−80 mV) in a chloroplatinic acid solution. Platinum black was electrodeposited on the surface. Next, anodization was performed by applying a constant potential (1200 mV) in phosphate buffer.

800unit/mlアルコール酸化酵素(AOX)(SIGMA−ALDRICH Co.;Alcohl Oxidase from Hanseula sp)溶液に10分、1%グルタルアルデヒド(GA)水溶液へ5分という浸漬処理を白金黒電極に対して2回繰り返してその表面にアルコール酸化酵素(AOX)を固定化した。   Immersion treatment of 800 units / ml alcohol oxidase (AOX) (SIGMA-ALDRICH Co .; Alcohl Oxidase from Hanseula sp) for 10 minutes, 1% glutaraldehyde (GA) aqueous solution for 5 minutes twice for platinum black electrode Repeatedly, alcohol oxidase (AOX) was immobilized on the surface.

その後、ポリアリルアミン(PAAM)溶液(0.1g/20ml)に10分、1%グルタルアルデヒド(GA)水溶液に5分、ポリアリルアミン(PAAM)溶液に10分の順に交互に浸漬して膜処理を施した。これをPAAM膜処理(1回)とした。また、さらにGA水溶液に5分、PAAM溶液に10分浸漬した電極をPAAM膜処理(2回)とした。最表面層としての高分子被膜を形成した。
<2>センサーの構成と測定条件
上記において作製されたセンサー電極(SP)を作用電極(W)として、図1の構成のようにセンサーを形成した。この図1の三電極系の構成例においては、参照電極(R)はAg/AgCl電極とし、対電極(C)は白金電極とした。なお、図中のALS601Sは、電気化学分析器を示しており、電圧の制御、電流量・クローン量の測定をコンピュータの作動により行っている。
Then, membrane treatment was performed by alternately immersing in a polyallylamine (PAAM) solution (0.1 g / 20 ml) for 10 minutes, in a 1% glutaraldehyde (GA) aqueous solution for 5 minutes, and in a polyallylamine (PAAM) solution in order of 10 minutes. gave. This was designated as a PAAM film treatment (once). Further, an electrode immersed in an aqueous GA solution for 5 minutes and in a PAAM solution for 10 minutes was subjected to PAAM film treatment (twice). A polymer film was formed as the outermost layer.
<2> Sensor configuration and measurement conditions The sensor electrode (SP) produced above was used as a working electrode (W) to form a sensor as in the configuration of FIG. In the configuration example of the three-electrode system in FIG. 1, the reference electrode (R) is an Ag / AgCl electrode, and the counter electrode (C) is a platinum electrode. In addition, ALS601S in a figure has shown the electrochemical analyzer, and controls the voltage and the measurement of the amount of electric current and the amount of clones by operation | movement of a computer.

また、このセンサーを用いての検出測定条件は次の表1のとおりとした。   The detection measurement conditions using this sensor were as shown in Table 1 below.

[表1]
測定方法:三電極系
印加電位:600mV
温 度:25℃
セル容量:10mL
(攪拌下)
<3>測定結果
1)上記の条件下での測定において、上記のPAAM膜の処理(1回)の場合のセンサーへのホルムアルデヒド滴下後の電流値の変化を時間観察した。その結果を例示したものが図2である。滴下(P)後の電流値の顕著な変化としてセンサー応答が確認される。
[Table 1]
Measurement method: Three-electrode system Applied potential: 600 mV
Temperature: 25 ° C
Cell capacity: 10 mL
(Under stirring)
<3> Measurement Results 1) In the measurement under the above conditions, the change in the current value after the formaldehyde was dropped on the sensor in the case of the treatment of the PAAM film (one time) was observed over time. An example of the result is shown in FIG. The sensor response is confirmed as a significant change in the current value after dropping (P).

ホルムアルデヒド濃度(mM)と応答電流(nA)との関係を示したものが図3である。これを検量線とすることで、験体試料のホルムアルデヒド濃度の定量的な検出測定が可能となる。   FIG. 3 shows the relationship between formaldehyde concentration (mM) and response current (nA). By using this as a calibration curve, quantitative detection and measurement of the formaldehyde concentration of the test sample becomes possible.

たとえば以上のようなホルムアルデヒドの検出測定の検証から、次の表2のセンサー性能を有するホルムアルデヒドの検出測定を可能とするセンサーが実現されたことが確認された。   For example, from the verification of formaldehyde detection measurement as described above, it was confirmed that a sensor capable of formaldehyde detection measurement having the sensor performance shown in Table 2 below was realized.

[表2]
濃度範囲:0.1〜100mM
応答時間:10〜30s
連続使用時間:8hr
また、この場合のセンサーについては、0.1mMリン緩衝液中、4℃の温度での冷蔵保存によって1ケ月間はセンサー性能の低下がないことも確認された。性能の持続耐久性に優れていることがわかる。
[Table 2]
Concentration range: 0.1-100 mM
Response time: 10-30s
Continuous use time: 8hr
Moreover, about the sensor in this case, it was also confirmed that there is no deterioration in sensor performance for one month by refrigerated storage at a temperature of 4 ° C. in a 0.1 mM phosphate buffer. It can be seen that the durability of the performance is excellent.

2)一方、メチルアルコールに対する応答性についても評価したところ、最表面層のPAAM膜の有無により図4の結果が得られた。   2) On the other hand, when the responsiveness to methyl alcohol was also evaluated, the results shown in FIG. 4 were obtained depending on the presence or absence of the outermost PAAM film.

PAAM膜の存在によってメチルルコールへの応答が抑制されることが確認された。なお、ホルムアルデヒドについては、このような膜の有無による応答の変化は見られず、膜の有無は、経時的な性能保持の耐久性に影響を及ぼすことが確認された。 For responses to the methyl A alcohol is suppressed it has been confirmed by the presence of PAAM film. Regarding formaldehyde, no change in response was observed depending on the presence or absence of such a film, and it was confirmed that the presence or absence of the film affects the durability of maintaining the performance over time.

本発明のセンサーの構成例を示した概要図である。It is the schematic which showed the structural example of the sensor of this invention. 実施例としてのホルムアルデヒド滴下後の電流値の変化を例示した図である。It is the figure which illustrated the change of the electric current value after formaldehyde dropping as an example. ホルムアルデヒド濃度と応答電流との関係を例示した図である。It is the figure which illustrated the relationship between formaldehyde concentration and response current. メチルアルコール濃度と電流との関係を例示した図である。It is the figure which illustrated the relationship between a methyl alcohol concentration and an electric current.

Claims (2)

過酸化水素電極の表面にアルコール酸化酵素(AOX)が固定化され、最表面には高分子被覆として、ポリアリル化合物もしくはポリアクリル化合物の架橋膜が配設されて、過酸化水素の酸化電流値、またはその変化よりアルデヒド化合物もしくはアルコール化合物の存在を検出測定可能としていることを特徴とする酵素固定化バイオセンサー。 Alcohol oxidase (AOX) is immobilized on the surface of the hydrogen peroxide electrode, and a cross-linked film of a polyallyl compound or a polyacryl compound is disposed on the outermost surface as a polymer coating , and the oxidation current value of hydrogen peroxide, Alternatively, an enzyme-immobilized biosensor that can detect and measure the presence of an aldehyde compound or an alcohol compound based on the change. 過酸化水素電極は白金電極とその表面に析出された白金黒により少くともその一部が構成され、白金黒表面にアルコール酸化酵素(AOX)が固定化されていることを特徴とする請求項1記載の酵素固定化バイオセンサー。   2. The hydrogen peroxide electrode comprises at least a part of a platinum electrode and platinum black deposited on the surface thereof, and an alcohol oxidase (AOX) is immobilized on the surface of the platinum black. The enzyme-immobilized biosensor described.
JP2005337908A 2005-11-23 2005-11-23 Enzyme immobilized biosensor Expired - Fee Related JP4785505B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2005337908A JP4785505B2 (en) 2005-11-23 2005-11-23 Enzyme immobilized biosensor

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2005337908A JP4785505B2 (en) 2005-11-23 2005-11-23 Enzyme immobilized biosensor

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2007139729A JP2007139729A (en) 2007-06-07
JP4785505B2 true JP4785505B2 (en) 2011-10-05

Family

ID=38202760

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2005337908A Expired - Fee Related JP4785505B2 (en) 2005-11-23 2005-11-23 Enzyme immobilized biosensor

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP4785505B2 (en)

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS56163447A (en) * 1980-05-22 1981-12-16 Matsushita Electric Ind Co Ltd Enzyme electrode
US4671288A (en) * 1985-06-13 1987-06-09 The Regents Of The University Of California Electrochemical cell sensor for continuous short-term use in tissues and blood
JP2569404B2 (en) * 1987-03-12 1997-01-08 国立身体障害者リハビリテ−シヨンセンタ− Method for immobilizing biofunctional substance and electrode using the same
EP0771867A3 (en) * 1995-10-30 1998-09-02 Ciba-Geigy Japan Limited Enzyme electrode
JPH09257742A (en) * 1996-03-19 1997-10-03 Toa Denpa Kogyo Kk Alcohol sensor
JP3102356B2 (en) * 1996-07-30 2000-10-23 日本電気株式会社 Biosensor
JP2002221508A (en) * 2001-01-29 2002-08-09 Toyota Central Res & Dev Lab Inc Biosensor
JP3698312B2 (en) * 2001-05-25 2005-09-21 株式会社タニタ Biosensor and biosensor manufacturing method

Also Published As

Publication number Publication date
JP2007139729A (en) 2007-06-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nakatani et al. Biosensor based on xanthine oxidase for monitoring hypoxanthine in fish meat
Wang Selectivity coefficients for amperometric sensors
Palleschi et al. Ideal hydrogen peroxide-based glucose sensor
Mizutani et al. Glucose oxidase/polyion complex-bilayer membrane for elimination of electroactive interferents in amperometric glucose sensor
JPWO2008102639A1 (en) Method for electrochemical determination of glucose, glucose dehydrogenase composition, and electrochemical sensor for glucose measurement
Özcan et al. Selective and sensitive voltammetric determination of dopamine in blood by electrochemically treated pencil graphite electrodes
JP4910155B2 (en) Biosensor and manufacturing method thereof
Zen et al. Voltammetric determination of serotonin in human blood using a chemically modified electrode
Shimomura et al. An electrochemical biosensor for the determination of lactic acid in expiration
Chen et al. Sensitive electrochemical detection of creatinine at disposable screen-printed carbon electrode mixed with ferrocenemethanol
WO1994002842A1 (en) Analytical method for the detection and measurement of paracetamol
Lähdesmäki et al. Interferences in a polypyrrole-based amperometric ammonia sensor
Demirkiran et al. Immobilization of glucose oxidase in silica sol-gel film for application to biosensor and amperometric determination of glucose
JP6128578B2 (en) Endotoxin concentration measuring method and endotoxin concentration measuring apparatus
Chen et al. On‐Line Monolithic Enzyme Reactor Fabricated by Sol‐Gel Process for Elimination of Ascorbic Acid While Monitoring Dopamine
Achmann et al. Amperometric enzyme‐based biosensor for direct detection of formaldehyde in the gas phase: dependence on electrolyte composition
JP4785505B2 (en) Enzyme immobilized biosensor
Liu et al. Os-complex-based amperometric bienzyme biosensor for continuous determination of lactate in saliva
Ravi Shankaran et al. Electrochemical Sensor for Sulfite and Sulfur Dioxide Based on 3‐Aminopropyltrimethoxysilane Derived Sol‐Gel Composite Electrode
Yamaoka et al. A disposable electrochemical glucose sensor using catalytic subunit of novel thermostable glucose dehydrogenase
JP2002221508A (en) Biosensor
CA2499527A1 (en) An analyzer for the simultaneous enzymatic detection of closely related analytes
WO2012011798A2 (en) Detection of formaldehyde
JP2004024254A (en) Method for simply measuring myoinositol
Piedras et al. Electrochemical Biosensor Development for Uric Acid Detection

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20081024

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20081114

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20081226

A711 Notification of change in applicant

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711

Effective date: 20090213

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20090213

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20101207

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20110405

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20110531

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20110621

A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20110712

R150 Certificate of patent (=grant) or registration of utility model

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140722

Year of fee payment: 3

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees