JP3771502B2 - Methods for analyzing nucleic acids that regulate genes whose expression levels change due to schizophrenia - Google Patents

Methods for analyzing nucleic acids that regulate genes whose expression levels change due to schizophrenia Download PDF

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Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸の発現量が、統計学的に健常人の発現量の範囲内にあるかを解析する方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
精神分裂病は、人口の約0.8%が青年期に発症する精神疾患であり、病歴も長期にわたるために、精神分裂病による社会的損失は計り知れないものとなっている。
このため、これまでに、世界中の多くの研究室で、精神分裂病の治療法及び診断法が盛んに研究されており、治療については、クロルプロマジン等のドーパミン受容体拮抗薬が開発されて以来、長足の進歩を遂げている。
これに対して、精神分裂病の診断法は、最新のアメリカでの診断基準であるDSMIV においても、妄想型、解体型、緊張型、鑑別不能型といった心理症候学でのみ規定されているので、最終的な診断は担当医の主観に依存せざるを得ず、診断の精度は十全ではない。
このような現状の下、現在、精神分裂病の原因遺伝子の染色体マッピング、及びその同定が盛んに繰り広げられているが、確定的な報告はない。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、上記課題を解決するためになされたものであり、核酸を測定することにより、遺伝子発現を指標とした精神分裂病の客観的診断に資することを目的とする。
【0004】
【課題を解決するための手段】
前記課題を解決するために、本発明は被験者において精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸の発現量が、統計学的に健常人の発現量の範囲内にあるかを解析する方法を提供する。本方法は、被験者から採取した試料において、精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸及び/又は前記精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸がコードするタンパク質の発現量を定量する工程を含む。
【0005】
【発明の実施の形態】
本発明は、精神分裂病患者において、下記の表1に記載された14種のタンパク質の遺伝子、つまりメッセンジャーRNA の発現量が、統計学的に有意に変化しているという本発明者らの発見に基いてなされたものである。下記実験例で詳述されているように、本発明者らは、精神分裂病患者と正常者の剖検脳における約3000種の遺伝子の発現量を比較することによって、これらの遺伝子を見出した。尚、本願明細書において、「精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸」とは、表1に示す遺伝子を規定する核酸を意味する。
【0006】
【表1】
核酸がコードする蛋白質 GenBank No
(1)蛋白質チロシンホスファターゼシグマ U35234
(protein tyrosine phosphatase sigma)
(2)インターロイキン10前駆体 M57627
(interleukin-10 precursor (IL-10))
(3)チロシン蛋白質キナーゼレセプターTIE-2 L06139
(tyrosine-protein kinase receptor TIE-2)
(4)EPH-関連レセプターチロシンキナーゼリガンド5 L38734
(EPH-related receptor tyrosine kinase ligand 5 )
(5)1型インターフェロンレセプター X77722
(type I interferon receptor (IFN-R))
(6)プロテインキナーゼATR U49844
(protein kinase ATR)
(7)STAT2 U18671
(signal transducer and activator of transcription 2)
(8)高親和性神経成長因子レセプター前駆体 X03541
(high-affinity nerve growth factor receptor precursor)
(9)OX40L レセプター前駆体 X75962
(OX40L receptor precursor)
(10)STAT4 L78440
(signal transducer and activator of transcription 4)
(11)KIAA0096 D43636
(12)プリンリッチ一本鎖DNA 結合蛋白質アルファ M96684
(purine-rich single-stranded DNA-binding protein alpha )
(13)OX2 膜糖蛋白質前駆体 X05323
(OX2 membrane glycoprotein precursor )
(14)CDC25B M81934
(15)グアニンヌクレオチド結合蛋白質 G(I)/G(S)/G(O) U31383
ガンマ-10 サブユニット
(guanine nucleotide-binding protein G(I)/G(S)/G(O) gamma-10 subunit)
(16)PKU-alpha AB004884
(17)上皮成長因子レセプター M34309
(epidermal growth factor receptor)
(18)Wnt-8B X91940
(19)グリシルtRNA合成酵素 D30658
(glycyl tRNA synthetase)
(20)メラノーマ抗原P15 U19796
(melanoma antigen P15)
(21)転写開始因子eIF-2 アルファサブユニット U26032
(translation initiation factor eIF-2 alpha subunit )
(22)キュリンホモログ2 U83410
(cullin homolog 2 (CUL2) )
(23)膜貫通蛋白質性前駆体 X87852
(transmembrane protein sex precursor )
(24)GTP 結合核蛋白質RAN M31469
(GTP-binding nuclear protein RAN (TC4) )
(25)アデニレートキナーゼイソ酵素1 J04809
(adenylate kinase isoenzyme 1 (AK1))
(26)細胞周期蛋白質 P38-2G4ホモログ U59435
(cell cycle protein P38-2G4 homolog)
(27)インターフェロンガンマレセプター J03143
(interferon-gamma receptor (IFNR-gamma; IFNGR1))
(28)ニューロフィブリマトーシス2 L27133
(neurofibromatosis 2 (NF2) )
(29)カドヘリン6前駆体(CDH6) D31784
(cadherin 6 precursor (CDH6) )
(30)二重特異性蛋白質ホスファターゼ8 U27193
(dual-specificity protein phosphatase 8)
(31)アルギニン/セリンリッチスプライシング因子7 L22253
(arginine/serine-rich splicing factor 7)
(32)PIRIN Y07867
(33)RAD51C切断蛋白質 AF029670
(RAD51C truncated protein)
(34)血管内皮成長因子レセプター1 X51602
(vascular endothelial growth factor receptor 1 )
(35)DNA トポイソメラーゼ1 J03250
(DNA topoisomerase I (TOP1))
(36)塩基性繊維芽細胞成長因子前駆体 M34186
(basic fibroblast growth factor receptor precursor )
(37)ラミニンアルファ4サブユニット前駆体 X70904
(laminin alpha 4 subunit precursor )
(38)蛋白質キナーゼ DYRK4 Y09305
(protein kinase DYRK4)
(39)ソマトスタチンレセプター2型 M81830
(somatostatin receptor type 2 (SS2R) )
(40)トランスフェリンレセプター X01060
(transferrin receptor (TFRC) )
【0007】
表1に記載の遺伝子は、 (1) シグナル強度、(2)遺伝子発現変化率(「患者群の平均発現量/正常群の平均発現量」と「正常群の平均発現量/患者群の平均発現量」のうち何れか大きい方、実験例参照)、及び(3)患者群と正常群における遺伝子の平均発現量の差の検定で得られたp 値を全て参酌することによって、精神分裂病の診断指標として特に有用であると判断された遺伝子である。なお、「p 値」とは、帰無仮説の下で、ある統計量が計測される確率のことをいう。
しかしながら、診断の精度によっては、かかる厳密な基準(詳細については、実験例を参照)以外の基準を用いて指標遺伝子を選定してもよい。
具体的には、p 値のみ、又は遺伝子発現変化率のみを基準にして、指標とすべき核酸を選定してもよい。
【0008】
p 値のみを基準にする場合、p 値が0.5 以下、好ましくは0.4 以下、より好ましくは0.3 以下、より好ましくは0.25以下、より好ましくは0.2 以下、より好ましくは0.15以下、より好ましくは0.10以下、より好ましくは0.05以下である遺伝子を指標として選定し得る。さらに好ましくは、p 値が0.02以下、0.01以下、0.005 以下、0.025 以下、0.002 以下、又は0.001 以下の遺伝子を指標として選定してもよい。
遺伝子発現変化率のみを基準にする場合、遺伝子発現変化率が1.1 以上、好ましくは1.2 以上、より好ましくは1.25以上、より好ましくは1.3 以上、より好ましくは1.4 以上、より好ましくは1.5 以上、より好ましくは1.6 以上、より好ましくは1.7 以上、より好ましくは1.75以上、より好ましくは1.8 以上、より好ましくは1.9 以上、より好ましくは2.0 以上の遺伝子を指標として選択し得る。さらに、好ましくは、遺伝子発現変化率が2.1 以上、2.2 以上、2.25以上、2.5 以上、3 以上、4 以上、5 以上、6 以上、7 以上、7.5 以上、8 以上、9 以上、10以上、15以上、20以上、25以上、30以上、40以上、50以上、60以上、70以上、75以上の遺伝子を指標として選択し得る。
例えば、診断精度によっては、表1に記載の遺伝子に代えて、又はこれらの遺伝子と共に、下表2の遺伝子の発現量も指標とし得る。
【0009】
【表2】
核酸がコードする蛋白質 GenBank No
(1)蛋白質ホスファターゼ2A B56ベータ(PP2A) L42374
(protein phosphatase 2A B56-beta (PP2A) )
(2)蛋白質ホスファターゼ2A B56アルファ L42373
(protein phosphatase 2A B56-alpha)
(3)ジャヌスキナーゼ2 (JAK2) AF005216
(Janus kinase 2 (JAK2) )
(4)シグナルトランスデューシングアダプター分子 U43899
(signal transducing adaptor molecule (STAM))
(5)CDC37 ホモログ U63131
(CDC37 homolog )
(6)MAP キナーゼ活性化デスドメイン蛋白質 U77352
(MAP kinase-activating death domain protein)
(7)セリン/スレオニン蛋白質ホスファターゼ2B S46622
触媒サブユニットガンマ
(serine/threonin protein phosphatase 2B
catalytic subunit gamma)
(8)蛋白質キナーゼAアンカーイング蛋白質 AF037439
(protein kinase A anchoring protein)
(9)エフリンA3前駆体(EFNA3) U14187
(ephrin A3 precursor (EFNA3) )
(10)ナトリウム依存性プロリントランスポーター S80071
(sodium-dependent proline transporter)
(11)CD45抗原 Y00638
(CD45 antigen)
(12)リソソーマルアルファグルコシダーゼ前駆体 Y00839
(lysosomal alpha-glucosidase precursor )
(13)ヘルペスウイルスエントリーメディエーター U70321
(Herpes virus entry mediator (HVEM))
(14)セリン/スレオニン蛋白質キナーゼレセプターR4前駆体 L11695
(serine/threonine-protein kinase receptor R4 precursor (SKR4))
(15)ARG2(アルギナーゼII) U82256
(ARG2 (Arginase II))
(16)細胞障害性T-リンパ球プロテイナーゼ M36118
(cytotoxic T-lymphocyte proteinase )
(17)アクチビン受容体I型前駆体 Z22534
(ACTIVIN RECEPTOR TYPE I PRECURSOR (EC 2.7.1.-)
(ACTR-1) )
(18)フェニルエタノールアミンN-メチルトランスフェラーゼ J03727
(phenylethanolamine N-methyltransferase (PNMTase))
【0010】
本発明の方法は、かかる基準に合致する遺伝子若しくはその断片、及び/又はこれらの遺伝子がコードするタンパク質若しくはその断片の発現量を指標とすることにより、被験者が精神分裂病に罹患しているか否かを客観的に診断する目的にも使用する事ができる。
本発明の方法を実施するためには、まず、精神分裂病に罹患しているか否かを診断すべき被験者から核酸又はタンパク質を含有する試料を採取する。
本明細書において、「精神分裂病」なる語には、妄想型精神分裂病、解体型精神分裂病、緊張型精神分裂病、及び鑑別不能型精神分裂病を含む任意の型の精神分裂病が含まれる。
本明細書において、「被験者」とはヒトであり、特に本発明の方法の診断対象である患者を意味する。
本明細書において、「被験動物」とはヒト以外の動物であり、特に実験動物として好適なマウス、ラット、モルモット、イヌ、ウサギ、サル、チンパンジー等を意味する。
【0011】
本発明の方法では、上記表1及び表2に記載のタンパク質、最も好ましくは上表1に記載のタンパク質若しくはその断片、及び/又はこれらのタンパク質若しくはその断片をコードする核酸若しくは該核酸の断片から選択される少なくとも1つのタンパク質及び/又は核酸を定量する。
「表1に記載のタンパク質をコードする遺伝子を規定する核酸及び該核酸と相補的な核酸」とは、典型的には、これらのタンパク質のメッセンジャーRNA 及びcDNAを意味する。また、これらのメッセンジャーRNA 又はcDNAの翻訳領域の末端及び/又は内部に調節配列やポリアデニル配列等の任意のポリヌクレオチドが含まれていてもよい。表1に記載のタンパク質が複数の対立遺伝子によってコードされ得る場合には、全ての対立遺伝子、それらの転写産物及びcDNAが「表1に記載のタンパク質をコードする遺伝子を規定する核酸及び該核酸と相補的な核酸」に含まれる。
核酸の「断片」とは、タンパク質をコードする遺伝子を規定する核酸又は該核酸の一部を含むポリヌクレオチドを意味し、典型的には、表1に記載のタンパク質のメッセンジャーRNA 又はcDNAの制限断片であり得る。
指標とすべき遺伝子の発現量を定量するためには、まず、被験者から、「核酸又はタンパク質を含有する試料」を採取する。核酸及びタンパク質は体内に広く含まれており、また、同一遺伝子である限り、同じ制御を受けていることが多いので、脳以外にも、被験者から採取した組織、細胞、体液を含む任意の試料が「核酸又はタンパク質を含有する試料」になり得る。好ましい試料は、生検脳、剖検脳、脳脊髄液、血液が含まれる。
【0012】
本発明の方法において使用するのに好ましい試料は、辺縁系の脳部位から採取した生検試料であり、好ましくは帯状回の生検試料である。ただし、上記の遺伝子はその他の脳部位や、血液等の末梢組織にも発現しているため、これらの組織もまた生検試料として本発明の方法で使用することが可能であり、帯状回の生検試料のみならず、これら種々の組織を用いる方法もまた、本発明の範囲内であると解されるべきである。
本明細書において、「核酸」なる語には、任意の単純ヌクレオチド及び/又は修飾ヌクレオチドからなるポリヌクレオチド、例えばcDNA、メッセンジャーRNA、全RNA 、hnRNA 、等が含まれる。「修飾ヌクレオチド」には、イノシン、アセチルシチジン、メチルシチジン、メチルアデノシン、メチルグアノシンを含むリン酸エステルの他、紫外線や化学物質の作用で後天的に発生し得るヌクレオチドも含まれる。
核酸を定量する場合、被験者から試料を採取した後、通常は、該試料から核酸を抽出する操作を行う。生体成分から核酸を抽出する方法としては、例えばフェノール抽出、エタノール沈殿の他、任意の抽出方法を使用し得る。メッセンジャーRNA を抽出する場合には、オリゴdTカラムにかけてもよい。
核酸の量が少ないときには、必要に応じて、核酸を増幅する操作を行ってもよい。増幅操作は、例えば、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)等のポリメラーゼ連鎖反応( 以下PCR と略記する) によって行い得る。また、以下に記載するように、増幅操作は、定量操作として、又は定量操作を兼ねて行ってもよい。
【0013】
必要に応じて、抽出操作及び/又は増幅操作を行った後には、表1又は表2に記載のタンパク質をコードする遺伝子を規定する核酸からなる群から選択される少なくとも1つの核酸又はその断片を定量する。
核酸を定量するためには、定量的PCR 、サザンブロット法、ノーザンブロット法、RNA 消化酵素保護マッピング法及びそれらの組み合わせを含む本分野で周知の任意の方法を使用し得る。
定量的PCR としては、典型的には、放射性物質、例えば32P でラベルされたヌクレオチドを用いて増幅産物を内部標識する方法を使用し得る。また、放射性物質でラベルされたプライマーを用いて増幅産物をエンドラベルする方法も使用し得る。標識された増幅産物は、ゲル濾過、アルコール沈澱、トリクロロ酢酸沈澱、グラスフィルター等への物理的吸着を含む周知の方法を用いて、遊離の放射性ヌクレオチド又はプライマーと分離することができる。続いて、電気泳動やハイブリダイゼーションを行って、又は行わずに、液体シンチレーション、オートラジオグラフィー、イメージングプレート(バイオイメージングアナライザー(BAS; 富士写真フィルム) 等)等の操作によって、増幅産物を定量する。放射性物質の代わりに、蛍光物質や発光物質を標識物質として使用し、分光蛍光光度計、蛍光用マイクロプレートリーダー、CCD カメラを用いて増幅産物を定量してもよい。また、PCR 操作中に標識物質を取り込ませない場合には、エチジウムブロマイド、SYBR Green ITM、PicoGreenTM (Molecular Probes社)等のインターカレート蛍光色素を用いて増幅産物を検出することもできる。
【0014】
定量的PCR を行わない場合、最も一般的には、核酸を含む試料を電気泳動にかけ、サザンブロットやノーザンブロットを行った後、検出可能な標識物質でラベルされたプローブを用いて定量する。
また、多種類の核酸を同時に定量する場合には、これらの手法と共に、又はこれらの手法に代えて、DNA チップやDNA マイクロアレイを用いてもよい。
核酸の定量に代えて、又は核酸の定量と共に、メッセンジャーRNA (遺伝子)から産生されるタンパク質を定量することにより、遺伝子の発現量を間接的に推定してもよい。本発明の方法によって、精神分裂病を診断するには、核酸よりも、核酸がコードするタンパク質を定量することが有用であることも多いであろう。
【0015】
タンパク質を組織から抽出する方法、及びタンパク質を定量する方法としては、本分野において周知である任意の方法を使用し得る。タンパク質を定量する場合には、ウエスタンブロット法、固相酵素免疫検定法を含む酵素免疫検定法、免疫細胞化学法、免疫組織化学法を使用し得る。
なお、本明細書では、最も一般的な操作の概略を例示したにすぎないので、上記方法の様々な変法や全く異なる方法も使用できる。
現在、電気泳動装置やPCR 装置等を組み合わせて、核酸の抽出、増幅、分離、定量を全自動で行う装置が市販されているので、このような装置を用いることも好ましい。このような装置を用いれば、通常の臨床検査と同じように、精神分裂病の診断を行うことが可能となる。
所定の核酸の定量及び/又はタンパク質の定量に続いて、その定量値を指標として、被験者が精神分裂病に罹患しているか否かを判定する。
単一の核酸及び/又はタンパク質の定量値を指標として診断する場合、正常値を参考にして適切な閾値を設定し、該閾値を上回っているか、又は下回っていれば、精神分裂病である可能性が高い。例えば、精神分裂病患者内で量が増加する場合には、設定した閾値を上回っていれば、精神分裂病である可能性が高いと判定し得る。
【0016】
以下のように、閾値は、所望の診断精度に応じて選定すればよい。
非精神分裂病健常者群(以下、正常群と称する)と精神分裂病患者群(以下、単に患者群と称する)における遺伝子発現量の分布が何れも明らかになっているときには、例えば、定量すべき核酸又はタンパク質を採取した個体が正常群に属する確率が10% 、5%、又は1%であるように閾値を設定する。
正常群の遺伝子発現量の分布のみが明らかになっているときには、定量すべき核酸又はタンパク質を採取した個体が正常群に属するという仮定の下で、該核酸又はタンパク質についてそのような定量値が得られる確率(以下p 値という、典型的には両側確率であるが、片側確率でもよい)が、10% 、又は5%、又は1%であるような核酸又はタンパク質の量又は濃度を閾値として設定し得る。
患者群の遺伝子発現量の分布のみが明らかなときにも、同様の統計手法によって解析し得る。
p 値の計算は、例えば、t 検定やノンパラメトリック検定等の検定手法によって算出することができる。
正常群及び/又は患者群における遺伝子の発現量の統計学的分布を明らかにするには、典型的には、少なくとも5 個体、好ましくは10個体、より好ましくは20個体、さらに好ましくは50個体、最も好ましくは100 個体の発現量を測定すべきである。
【0017】
また、必要に応じて、任意の様々な統計手法を用いて、被験者が精神分裂病に罹患しているか否かをさらに正確に判定することも可能であるが、そのような手法を用いた診断方法も、当然、本発明の方法の範囲に属する。本願明細書において、「定量値が正常群の範囲内であるかを統計学的に解析する工程」とは、以下に具体的に記載する様な統計学的な工程を意味する。
単一の核酸及び/又はタンパク質の定量値を指標として判定する場合には、以下の実験例で詳述されているように、患者群の発現量が多く(シグナルが10以上;実験例参照)、両者の絶対遺伝子発現変化率(実施例参照)が1.5 倍以上で、且つ平均の差の検定におけるp 値が5%以下である核酸及び/又はタンパク質を指標とすることが好ましい。
複数の核酸及び/又はタンパク質の定量値を指標として判定する場合には、それぞれの核酸及び/又はタンパク質について適切な閾値を設定し、単一の核酸及び/又はタンパク質を指標とする場合と同様に、各遺伝子の発現量が閾値を上回っているか、又は下回っているかを調べる。
所望の判定精度に応じて、1つの核酸及び/又はタンパク質の定量値が閾値を上回っているか、又は下回っていれば、精神分裂病の可能性があると判定し得る。2以上の核酸及び/又はタンパク質の定量値が閾値を上回っているか、又は下回っていれば、精神分裂病の可能性がさらに高いと判定し得る。確定的な判定を下したい場合には、より多くの核酸及び/又はタンパク質の定量値が閾値を上回っているか、下回っているときに、精神分裂病であると判定する。
さらに、本発明の判定方法は、従来の主観的診断方法と併用することもできる。
【0018】
また、何らかの方法によって、確定的に精神分裂病であることが明らかな患者から、本発明の診断方法において指標として使用し得る核酸及び/又はタンパク質の定量値についてのデータを収集することができれば、本発明の診断方法のみによって確定的な判定を下すことも可能となる。
本発明の主題は、精神分裂病の客観的診断方法を提供することに存するのであって、本明細書に具体的に記載した個々の抽出操作、増幅操作、及び解析操作に存するのではない。従って、上記各操作以外の操作を用いた診断方法も本発明の範囲に属することに留意しなければならない。
以上のごとく、本発明の方法を用いれば、核酸(遺伝子)の発現量及び核酸(遺伝子) に由来する生物学的産物( タンパク質) を指標とすることにより、被験者が精神分裂病に罹患しているか否かを客観的に診断することができる。
それ故、本発明の方法は、ヒトを除く精神分裂病のモデル動物の有用性を判定する方法、及びこのようなモデル動物を用いた薬物スクリーニングにおいて、薬物の有効性を判定する方法に応用し得る。
精神分裂病のモデル動物の有用性を判定するには、前記診断方法と同様に、所定の遺伝子の発現に基いて、被験動物が精神分裂病を発症しているか否かを診断し、該動物が精神分裂病を発症していれば、精神分裂病のモデル動物として有用であると判定する。
【0019】
「被験動物」には、マウス、ラット、及びサルが含まれるが、ヒト以外の動物であれば、任意の動物が「被験動物」になり得る。
ヒト以外の動物では、精神分裂病の診断は、さらに困難であったので、該方法は極めて有用である。
さらに、このようなモデル動物に、抗精神分裂病薬の候補物質を投与した後、上記のごとく所定の核酸及び/又はタンパク質を定量し、精神分裂病が治癒又は改善されていれば、前記候補物質は抗精神分裂病作用を有していると判断し得る。すなわち、本発明の診断方法を応用すれば、抗精神分裂病薬の候補物質を容易且つ正確にスクリーニングすることができる。
「抗精神分裂病薬の候補物質」は、試験者が所望する任意の物質であり得る。
【0020】
また、本発明の診断方法は、法的責任能力の有無を調べる目的で、又はその他の目的で行われる精神鑑定に適用することも可能である。
以下、実験例及び実施例により、本発明をさらに詳細に説明するが、いかなる意味においても本発明の範囲を限定するものではない。
【0021】
【実施例】
本発明者らによって同定された、診断指標となり得る遺伝子について説明する。
本研究では、精神分裂病患者の死後の帯状回の剖検脳(サンプル群S)と精神疾患を持たない人の帯状回の剖検脳(サンプル群C)を用いて、組織からRNA を抽出し、まずその品質を検定した。
【0022】
高品質と判定されたRNA を各群6 サンプル選定し、個々のRNA より( 計12例)逆転写反応で放射化リンのラベルを入れ、これをプローブとして用いて、クローンテック社のDNA マイクロアレイ、3 種類と反応させることで、複数の遺伝子の発現量の一括測定とパターン化(分子発現プロファイリング)を行った。用いた3 種類のDNA マイクロアレイは、アトラスヒト1.2 アレイ、アトラスヒト1.2 アレイII、及びアトラスヒト癌1.2 アレイで(各アレイ共、1176遺伝子を含有)ある。これら3種類のアレイを用いることで、合計約3000にも及び遺伝子の発現変化が評価、検定される。
【0023】
高温摂氏65度で低温濃度(0.3xSSC) 下、1時間以上に及ぶ洗浄により、非特異的なハイブリダイゼーションシグナルを用いたDNA アレイより除去した。その後、各遺伝子スポットに対応する放射能シグナルは、富士写真フィルム社のBAS5000 イメージアナライザーで測定、定量した。各サンプルに対応するDNA マイクロアレイのシート間に生ずる実験手技によるシグナル強度のばらつきを補正するために、アレイ上の全ての遺伝子発現シグナルの総和を計算し、その総和がアレイ、サンプルRNA によらず一定(総計30000)と仮定することで、シグナルの標準化を行った(通称、グローバルノーマライゼーションと呼ばれる)。
【0024】
各遺伝子スポットに対応するシグナルは、富士写真フィルム社のBAS5000 イメージアナライザーで測定、定量した。各RNA サンプルに対応するDNA マイクロアレイのシート間のシグナル強度のばらつきを補正するために、シート上の全ての遺伝子発現シグナルの総和を計算し、その総和がシート、サンプルRNA によらず一定と仮定することで、シグナル強度の標準化を行った。
【0025】
複数の精神分裂病患者に共通性をもって量的変化を示す遺伝子を確定するために、精神分裂病患者(サンプル群S;N=6 )と非精神患者(サンプル群C;N=6)から得られた発現シグナルのデータを解析した。また、スチューデントのt 検定による有意差検定を用いて、シグナル強度のデータの統計解析を行った。
【0026】
本実験例では、精神分裂病群のシグナル強度の平均値が10を超える遺伝子については、遺伝子発現変化率(「S群の平均発現量/C群の平均発現量」と「C群の平均発現量/S群の平均発現量」のうち何れか大きい方)が1.5 倍以上で、且つp 値が0.05以下のもの、10以下の中程度シグナルについては、遺伝子発現変化率が2.0 倍以上で、p 値が0.01以下の値をもって、該当遺伝子の発現量が、精神分裂病で有意に変化していると判定した。上記の表1は前者の遺伝子を記載したリストであり、上記の表2は後者の遺伝子を記載したリストである。この基準で選定された表1に記載の遺伝子は、精神分裂病の診断指標として特に有用であり、表2に記載の遺伝子もまた、精神分裂病の診断指標として有用である。表1の遺伝子について、遺伝子発現変化率やp 値等の詳細な統計学的データを示したものが表3である。また、表2の遺伝子について、遺伝子発現変化率やp 値等の詳細な統計学的データを示したものが表4である。
【0027】
【表3】

Figure 0003771502
【0028】
【表4】
Figure 0003771502
【0029】
例えば、ここではアトラスヒト癌1.2 アレイの位置E-14-fに存在して、以下の解析で有意に精神分裂病に伴って遺伝子発現が変化していた、インターロイキン10前駆体(Interleukin-10 precursor : GenBank No.M57627)mRNAの定量とその処理、診断可能性について解説する。
【0030】
(1)複数の精神分裂病患者に共通性をもって量的変化を示す遺伝子を確定するために、精神分裂病患者(サンプル群S;N=6 )と非精神患者(サンプル群C;N=6 )から得られた発現シグナルのデータを以下の例に従い解析した。この遺伝子シグナルを含む本DNA アレイ上のすべての遺伝子RNA シグナルをBAS5000 イメージアナライザーで測定、定量した。ハイブリダイゼーションによって得た、発現シグナルのデータを図1に示す。結果、インターロイキン10前駆体(Interleukin-10 precursor : GenBank No.M57627)mRNAの測定シグナル強度は各サンプルで;
精神分裂病患者(サンプル群S;N=6 );S1=9.0, S2=8.3, S3=13.0, S4=14.4,S5=17.6, S6=23.4
非精神病者(サンプル群C;N=6 );C1=0.0, C2=1.7, C3=0.8, C4=5.6, C5=7.0, C6=15.8
となった。
【0031】
(2)グローバルノーマライゼーションにより、遺伝子発現シグナルの総和がアレイ、サンプルによらず一定(総計30000)と仮定することで、アレイ間のシグナル強度の標準化を行うと、インターロイキン10前駆体mRNAの補正シグナル強度は各サンプルで;
精神分裂病患者(サンプル群S);S1=27.7, S2=36.9, S3=23.2, S4=37.9, S5=36.0, S6=57.4
非精神病者(サンプル群C);C1=0.0, C2=4.2, C3=4.6, C4=18.3, C5=9.0, C6=19.9
となった。
【0032】
(3)スチューデントのt 検定による有意差検定を用いて、シグナルデータ強度に関する解析を精神分裂病患者(群S1からS6)6例と非精神病患者(群C1からC6)6例に対して行うと平均値と標準偏差は;
精神分裂病患者(サンプル群S);36.4±12.0
非精神病患者(サンプル群C); 8.8±8.6
でスチューデントt検定によるとこれら2群の平均値が異なることが判明する(P<0.001 )。実際、本実施例では、シグナル強度20.0以下のものは全て精神分裂病のもので、20.0以下のものは非精神分裂病となり、この基準で判定してよいことがわかる。マン−ホイットニーの検討によっても、これらの群に順位関係にかたよりがあることが判明した(pは0.05以下)。
【0033】
(4)実際に、未知の検体から上記DNA アレイ解析によって得られたインターロイキン10前駆体(Interleukin-10 precursor : GenBank No.M57627)mRNAの標準化シグナル強度が36.4-12.0x1.64=16.72以下である場合、正規分布を仮定した精神分裂病患者(サンプル群S)の分布と対照して95%以上の統計学的有意性をもって、精神分裂病患者群に属すると見做せず、結果「正常」と判定される。また、標準シグナル強度が8.8+8.6x1.64=22.904 以上である場合、正規分布を仮定した非精神分裂病患者(サンプル群C)の分布と対照して95%以上の統計学的有意性をもって正常群に属さない、つまり「精神分裂病」と判定される。22.904未満、16.72 以上のシグナルが得られた場合は、擬陽性と判定される。
【0034】
同様の基準で選定された表1に記載の遺伝子は、上記のように精神分裂病の診断指標として特に有用であり、ここに得られた複数の遺伝子発現量を検定することで、精神分裂病に対する診断の信頼性は更に向上する。
【0035】
【発明の効果】
本発明の方法によれば、被験者が精神分裂病に罹患しているか否かを客観的に診断することができる。該方法は、従来の主観的な診断方法に比べて、極めて精度が高い。
【図面の簡単な説明】
【図1】図1は、インターロイキン10前駆体の発現パターンを、精神分裂病患者と非精神病者において比較を行った結果を示す、BAS5000 により検出したハイブリダイゼーション後のシグナルの写真である。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for analyzing whether the expression level of a nucleic acid defining a gene whose expression level changes due to schizophrenia is statistically within the range of the expression level of a healthy person.
[0002]
[Prior art]
Schizophrenia is a mental illness that occurs in about 0.8% of the population in adolescence and has a long history, making social losses due to schizophrenia immeasurable.
For this reason, many laboratories around the world have been actively investigating the treatment and diagnosis of schizophrenia since the development of dopamine receptor antagonists such as chlorpromazine. Has made great strides.
On the other hand, the diagnosis method of schizophrenia is prescribed only in psychological symptomology such as delusion type, dismantling type, tension type, and indistinguishable type in DSMIV which is the latest diagnostic standard in the United States. The final diagnosis must depend on the subjectivity of the attending physician, and the accuracy of the diagnosis is not perfect.
Under such circumstances, chromosomal mapping and identification of schizophrenia causative genes are currently being actively pursued, but there is no definitive report.
[0003]
[Problems to be solved by the invention]
The present invention has been made to solve the above-described problems, and an object thereof is to contribute to an objective diagnosis of schizophrenia using gene expression as an index by measuring a nucleic acid.
[0004]
[Means for Solving the Problems]
In order to solve the above problems, the present invention analyzes whether the expression level of a nucleic acid that defines a gene whose expression level changes in a subject due to schizophrenia is statistically within the range of the expression level of a healthy person. Provide a method. In the method, the expression level of a nucleic acid that regulates a gene whose expression level changes due to schizophrenia and / or a protein encoded by a nucleic acid that regulates a gene whose expression level changes due to schizophrenia is measured in a sample collected from a subject A step of quantifying.
[0005]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
The present inventors have found that the expression levels of the genes of 14 proteins listed in Table 1 below, that is, messenger RNA, are statistically significantly changed in schizophrenic patients. It was made based on. As described in detail in the experimental examples below, the present inventors found these genes by comparing the expression levels of about 3000 genes in autopsy brains of schizophrenic patients and normal individuals. In the present specification, “a nucleic acid that defines a gene whose expression level changes due to schizophrenia” means a nucleic acid that defines a gene shown in Table 1.
[0006]
[Table 1]
Nucleic acid encoded protein GenBank No
(1) Protein tyrosine phosphatase Sigma U35234
(Protein tyrosine phosphatase sigma)
(2) Interleukin 10 precursor M57627
(Interleukin-10 precursor (IL-10))
(3) Tyrosine protein kinase receptor TIE-2 L06139
(Tyrosine-protein kinase receptor TIE-2)
(4) EPH-related receptor tyrosine kinase ligand 5 L38734
(EPH-related receptor tyrosine kinase ligand 5)
(5) Type 1 interferon receptor X77722
(Type I interferon receptor (IFN-R))
(6) Protein kinase ATR U49844
(Protein kinase ATR)
(7) STAT2 U18671
(Signal transducer and activator of transcription 2)
(8) High affinity nerve growth factor receptor precursor X03541
(High-affinity nerve growth factor receptor precursor)
(9) OX40L receptor precursor X75962
(OX40L receptor precursor)
(10) STAT4 L78440
(Signal transducer and activator of transcription 4)
(11) KIAA0096 D43636
(12) Purine-rich single-stranded DNA binding protein alpha M96684
(Purine-rich single-stranded DNA-binding protein alpha)
(13) OX2 membrane glycoprotein precursor X05323
(OX2 membrane glycoprotein precursor)
(14) CDC25B M81934
(15) Guanine nucleotide binding protein G (I) / G (S) / G (O) U31383
Gamma-10 subunit
(Guanine nucleotide-binding protein G (I) / G (S) / G (O) gamma-10 subunit)
(16) PKU-alpha AB004884
(17) Epidermal growth factor receptor M34309
(Epidermal growth factor receptor)
(18) Wnt-8B X91940
(19) Glycyl tRNA synthetase D30658
(Glycyl tRNA synthetase)
(20) Melanoma antigen P15 U19796
(Melanoma antigen P15)
(21) Transcription initiation factor eIF-2 alpha subunit U26032
(Translation initiation factor eIF-2 alpha subunit)
(22) Curin homolog 2 U83410
(Cullin homolog 2 (CUL2))
(23) Transmembrane proteinaceous precursor X87852
(Transmembrane protein sex precursor)
(24) GTP-binding nuclear protein RAN M31469
(GTP-binding nuclear protein RAN (TC4))
(25) Adenylate kinase isoenzyme 1 J04809
(Adenylate kinase isoenzyme 1 (AK1))
(26) Cell cycle protein P38-2G4 homolog U59435
(Cell cycle protein P38-2G4 homolog)
(27) Interferon gamma receptor J03143
(Interferon-gamma receptor (IFNR-gamma; IFNGR1))
(28) Neurofibrosis 2 L27133
(Neurofibromatosis 2 (NF2))
(29) Cadherin 6 precursor (CDH6) D31784
(Cadherin 6 precursor (CDH6))
(30) Bispecific protein phosphatase 8 U27193
(Dual-specificity protein phosphatase 8)
(31) Arginine / Serine-rich splicing factor 7 L22253
(Arginine / serine-rich splicing factor 7)
(32) PIRIN Y07867
(33) RAD51C cleavage protein AF029670
(RAD51C truncated protein)
(34) Vascular endothelial growth factor receptor 1 X51602
(Vascular endothelial growth factor receptor 1)
(35) DNA topoisomerase 1 J03250
(DNA topoisomerase I (TOP1))
(36) Basic fibroblast growth factor precursor M34186
(Basic fibroblast growth factor receptor precursor)
(37) Laminin alpha 4 subunit precursor X70904
(Laminin alpha 4 subunit precursor)
(38) Protein kinase DYRK4 Y09305
(Protein kinase DYRK4)
(39) Somatostatin receptor type 2 M81830
(Somatostatin receptor type 2 (SS2R))
(40) Transferrin receptor X01060
(Transferrin receptor (TFRC))
[0007]
The genes listed in Table 1 are: (1) signal intensity, (2) gene expression change rate (“average expression level of patient group / average expression level of normal group” and “average expression level of normal group / average of patient group” The larger of “expression level” (see experimental example)), and (3) schizophrenia by taking into account all p-values obtained by testing the difference in the average expression level of genes in patient and normal groups It is a gene that is judged to be particularly useful as a diagnostic index. The “p value” refers to the probability that a certain statistic is measured under the null hypothesis.
However, depending on the accuracy of diagnosis, the indicator gene may be selected using a standard other than the strict standard (for details, refer to the experimental example).
Specifically, a nucleic acid to be used as an index may be selected based on only the p value or only the gene expression change rate.
[0008]
When only the p value is used as a reference, the p value is 0.5 or less, preferably 0.4 or less, more preferably 0.3 or less, more preferably 0.25 or less, more preferably 0.2 or less, more preferably 0.15 or less, more preferably 0.10 or less, More preferably, a gene that is 0.05 or less can be selected as an index. More preferably, genes having a p value of 0.02 or less, 0.01 or less, 0.005 or less, 0.025 or less, 0.002 or less, or 0.001 or less may be selected as an index.
When only the gene expression change rate is used as a reference, the gene expression change rate is 1.1 or more, preferably 1.2 or more, more preferably 1.25 or more, more preferably 1.3 or more, more preferably 1.4 or more, more preferably 1.5 or more, more preferably Can be selected as an index using a gene of 1.6 or more, more preferably 1.7 or more, more preferably 1.75 or more, more preferably 1.8 or more, more preferably 1.9 or more, more preferably 2.0 or more. Further preferably, the gene expression change rate is 2.1 or more, 2.2 or more, 2.25 or more, 2.5 or more, 3 or more, 4 or more, 5 or more, 6 or more, 7 or more, 7.5 or more, 8 or more, 9 or more, 10 or more, 15 As described above, 20 or more, 25 or more, 30 or more, 40 or more, 50 or more, 60 or more, 70 or more, 75 or more genes can be selected as an index.
For example, depending on the diagnostic accuracy, the expression levels of the genes in Table 2 below may be used as an index instead of or together with the genes listed in Table 1.
[0009]
[Table 2]
Nucleic acid encoded protein GenBank No
(1) Protein phosphatase 2A B56 beta (PP2A) L42374
(Protein phosphatase 2A B56-beta (PP2A))
(2) Protein phosphatase 2A B56 alpha L42373
(Protein phosphatase 2A B56-alpha)
(3) Janus kinase 2 (JAK2) AF005216
(Janus kinase 2 (JAK2))
(4) Signal transducing adapter molecule U43899
(Signal transducing adaptor molecule (STAM))
(5) CDC37 homolog U63131
(CDC37 homolog)
(6) MAP kinase activation death domain protein U77352
(MAP kinase-activating death domain protein)
(7) Serine / threonine protein phosphatase 2B S46622
Catalytic subunit gamma
(Serine / threonin protein phosphatase 2B
catalytic subunit gamma)
(8) Protein kinase A anchoring protein AF037439
(Protein kinase A anchoring protein)
(9) Ephrin A3 precursor (EFNA3) U14187
(Ephrin A3 precursor (EFNA3))
(10) Sodium-dependent proline transporter S80071
(Sodium-dependent proline transporter)
(11) CD45 antigen Y00638
(CD45 antigen)
(12) Lysosomal alpha glucosidase precursor Y00839
(Lysosomal alpha-glucosidase precursor)
(13) Herpesvirus entry mediator U70321
(Herpes virus entry mediator (HVEM))
(14) Serine / threonine protein kinase receptor R4 precursor L11695
(Serine / threonine-protein kinase receptor R4 precursor (SKR4))
(15) ARG2 (Arginase II) U82256
(ARG2 (Arginase II))
(16) Cytotoxic T-lymphocyte proteinase M36118
(Cytotoxic T-lymphocyte proteinase)
(17) Activin receptor type I precursor Z22534
(ACTIVIN RECEPTOR TYPE I PRECURSOR (EC 2.7.1.-)
(ACTR-1))
(18) Phenylethanolamine N-methyltransferase J03727
(Phenylethanolamine N-methyltransferase (PNMTase))
[0010]
The method of the present invention can determine whether or not a subject suffers from schizophrenia by using as an index the expression level of genes or fragments thereof that meet such criteria and / or proteins or fragments thereof encoded by these genes. It can also be used for the purpose of objective diagnosis.
In order to carry out the method of the present invention, first, a sample containing nucleic acid or protein is collected from a subject to be diagnosed as to whether or not he / she suffers from schizophrenia.
As used herein, the term “schizophrenia” includes any type of schizophrenia, including delusional schizophrenia, dismantle schizophrenia, tension schizophrenia, and indistinguishable schizophrenia. included.
In the present specification, the “subject” means a human, particularly a patient who is a diagnostic target of the method of the present invention.
In the present specification, the “test animal” refers to animals other than humans, and particularly means mice, rats, guinea pigs, dogs, rabbits, monkeys, chimpanzees and the like suitable as experimental animals.
[0011]
In the method of the present invention, the protein described in Table 1 and Table 2 above, most preferably the protein described in Table 1 above or a fragment thereof, and / or nucleic acid encoding these protein or fragment thereof or a fragment of the nucleic acid. Quantifying at least one selected protein and / or nucleic acid.
“Nucleic acids defining genes encoding the proteins listed in Table 1 and nucleic acids complementary to the nucleic acids” typically mean messenger RNAs and cDNAs of these proteins. Moreover, arbitrary polynucleotides, such as a regulatory sequence and a polyadenyl sequence, may be contained in the terminal and / or inside of the translation region of these messenger RNAs or cDNAs. When the protein described in Table 1 can be encoded by a plurality of alleles, all the alleles, their transcripts and cDNAs are “the nucleic acids defining the genes encoding the proteins listed in Table 1 and the nucleic acids Included in “complementary nucleic acids”.
A “fragment” of a nucleic acid means a nucleic acid that defines a gene encoding a protein or a polynucleotide containing a part of the nucleic acid, and is typically a restriction fragment of the messenger RNA or cDNA of the protein described in Table 1. It can be.
In order to quantify the expression level of a gene to be used as an indicator, first, a “sample containing nucleic acid or protein” is collected from a subject. Nucleic acids and proteins are widely contained in the body, and as long as they are the same gene, they are often subject to the same control, so in addition to the brain, any sample containing tissues, cells, or body fluids collected from the subject Can be a “sample containing nucleic acid or protein”. Preferred samples include biopsy brain, autopsy brain, cerebrospinal fluid, blood.
[0012]
A preferred sample for use in the method of the present invention is a biopsy sample taken from a limbic brain region, preferably a zonal biopsy sample. However, since the above genes are also expressed in other brain regions and peripheral tissues such as blood, these tissues can also be used as biopsy samples in the method of the present invention. It should be understood that not only biopsy samples but also methods using these various tissues are within the scope of the present invention.
In the present specification, the term “nucleic acid” includes polynucleotides composed of any simple nucleotide and / or modified nucleotide, such as cDNA, messenger RNA, total RNA, hnRNA, and the like. “Modified nucleotides” include inosin, acetylcytidine, methylcytidine, methyladenosine, and methylguanosine, as well as nucleotides that can be generated by the action of ultraviolet light or chemical substances.
When quantifying a nucleic acid, after a sample is collected from a subject, an operation for extracting the nucleic acid from the sample is usually performed. As a method for extracting a nucleic acid from a biological component, for example, any extraction method other than phenol extraction and ethanol precipitation can be used. When extracting messenger RNA, it may be applied to an oligo dT column.
When the amount of nucleic acid is small, an operation of amplifying the nucleic acid may be performed as necessary. The amplification operation can be performed, for example, by a polymerase chain reaction (hereinafter abbreviated as PCR) such as reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Further, as described below, the amplification operation may be performed as a quantitative operation or also as a quantitative operation.
[0013]
After performing an extraction operation and / or an amplification operation, if necessary, at least one nucleic acid selected from the group consisting of nucleic acids defining genes encoding the proteins listed in Table 1 or Table 2 or a fragment thereof Quantify.
Any method known in the art can be used to quantify nucleic acids, including quantitative PCR, Southern blotting, Northern blotting, RNA digestive enzyme protection mapping methods, and combinations thereof.
Quantitative PCR typically involves radioactive materials, such as 32 A method of internally labeling the amplification product with nucleotides labeled with P can be used. In addition, a method in which an amplification product is end-labeled using a primer labeled with a radioactive substance can be used. Labeled amplification products can be separated from free radioactive nucleotides or primers using well known methods including gel filtration, alcohol precipitation, trichloroacetic acid precipitation, glass filter, and the like. Subsequently, the amplification product is quantified by operations such as liquid scintillation, autoradiography, imaging plate (bioimaging analyzer (BAS; Fuji Photo Film), etc.) with or without electrophoresis and hybridization. Instead of radioactive substances, fluorescent substances or luminescent substances may be used as labeling substances, and amplification products may be quantified using a spectrofluorometer, a fluorescent microplate reader, or a CCD camera. When the labeling substance is not incorporated during the PCR operation, the amplification product can be detected using an intercalating fluorescent dye such as ethidium bromide, SYBR Green ITM, PicoGreenTM (Molecular Probes).
[0014]
When quantitative PCR is not performed, most commonly, a sample containing a nucleic acid is subjected to electrophoresis, subjected to Southern blot or Northern blot, and then quantified using a probe labeled with a detectable labeling substance.
In addition, when quantifying many kinds of nucleic acids at the same time, a DNA chip or a DNA microarray may be used together with these methods or instead of these methods.
The expression level of the gene may be estimated indirectly by quantifying the protein produced from the messenger RNA (gene) instead of or together with the nucleic acid quantification. To diagnose schizophrenia by the method of the present invention, it will often be useful to quantify the protein encoded by the nucleic acid rather than the nucleic acid.
[0015]
As a method for extracting protein from tissue and a method for quantifying protein, any method known in the art can be used. For protein quantification, Western blotting, enzyme immunoassay including solid phase enzyme immunoassay, immunocytochemistry, and immunohistochemistry can be used.
In the present specification, only the outline of the most general operation is illustrated, and various modifications of the above method and completely different methods can be used.
At present, there are commercially available devices for performing full-automatic extraction, amplification, separation, and quantification of nucleic acids in combination with an electrophoresis device, a PCR device, etc., and it is also preferable to use such a device. If such an apparatus is used, it becomes possible to diagnose schizophrenia as in the case of a normal clinical test.
Following a predetermined nucleic acid quantification and / or protein quantification, whether or not the subject suffers from schizophrenia is determined using the quantified value as an index.
When diagnosing with the quantitative value of a single nucleic acid and / or protein as an index, an appropriate threshold is set with reference to the normal value, and if it is above or below this threshold, it may be schizophrenia High nature. For example, when the amount increases in a schizophrenic patient, it can be determined that the possibility of schizophrenia is high if the amount exceeds a set threshold.
[0016]
As described below, the threshold value may be selected according to the desired diagnostic accuracy.
When the distribution of gene expression levels in the group of healthy non-schizophrenic patients (hereinafter referred to as normal group) and the group of patients with schizophrenia (hereinafter simply referred to as patient group) is clear, for example, quantification The threshold is set so that the probability that the individual from whom the nucleic acid or protein to be collected belongs to the normal group is 10%, 5%, or 1%.
When only the distribution of gene expression levels in the normal group is known, such quantitative values are obtained for the nucleic acid or protein under the assumption that the individual from whom the nucleic acid or protein to be quantified is collected belongs to the normal group. The threshold value is the amount or concentration of nucleic acid or protein that has a probability of being 10%, 5%, or 1%. Can do.
Even when only the distribution of gene expression levels in the patient group is clear, the same statistical method can be used for analysis.
The p value can be calculated by a test method such as t test or nonparametric test.
In order to clarify the statistical distribution of the expression level of the gene in the normal group and / or patient group, typically, at least 5 individuals, preferably 10 individuals, more preferably 20, more preferably 50 individuals, Most preferably, the expression level of 100 individuals should be measured.
[0017]
In addition, if necessary, it is possible to more accurately determine whether or not a subject suffers from schizophrenia using a variety of statistical methods. Diagnosis using such methods The method naturally also belongs to the scope of the method of the present invention. In the present specification, the “step of statistically analyzing whether the quantitative value is within the range of the normal group” means a statistical step as specifically described below.
When the quantitative value of a single nucleic acid and / or protein is used as an index, the expression level of the patient group is large as shown in detail in the following experimental example (signal is 10 or more; see the experimental example) It is preferable to use as an index a nucleic acid and / or protein having an absolute gene expression change rate of both (see Examples) of 1.5 times or more and a p value of 5% or less in an average difference test.
When determining the quantitative value of a plurality of nucleic acids and / or proteins as an index, an appropriate threshold is set for each nucleic acid and / or protein, as in the case of using a single nucleic acid and / or protein as an index. Then, it is examined whether the expression level of each gene is above or below the threshold value.
Depending on the desired determination accuracy, if the quantitative value of one nucleic acid and / or protein is above or below a threshold value, it can be determined that there is a possibility of schizophrenia. If the quantitative values of two or more nucleic acids and / or proteins are above or below a threshold, it can be determined that the possibility of schizophrenia is even higher. When it is desired to make a definitive determination, it is determined that the subject has schizophrenia when more nucleic acid and / or protein quantification values are above or below a threshold value.
Furthermore, the determination method of the present invention can be used in combination with a conventional subjective diagnosis method.
[0018]
Moreover, if it is possible to collect data on quantitative values of nucleic acids and / or proteins that can be used as an index in the diagnostic method of the present invention from a patient who is clearly determined to have schizophrenia by any method, It is also possible to make a definitive determination only by the diagnostic method of the present invention.
The subject of the invention resides in providing an objective diagnostic method for schizophrenia, not in the individual extraction, amplification and analysis operations specifically described herein. Therefore, it should be noted that diagnostic methods using operations other than the above operations also belong to the scope of the present invention.
As described above, according to the method of the present invention, a subject suffers from schizophrenia by using the expression level of a nucleic acid (gene) and a biological product (protein) derived from the nucleic acid (gene) as an index. It can be objectively diagnosed whether or not it exists.
Therefore, the method of the present invention is applied to a method for determining the usefulness of model animals for schizophrenia other than humans, and a method for determining the effectiveness of drugs in drug screening using such model animals. obtain.
In order to determine the usefulness of a model animal for schizophrenia, as in the above-described diagnosis method, based on the expression of a predetermined gene, it is diagnosed whether the test animal has developed schizophrenia, and the animal If it develops schizophrenia, it determines with it being useful as a model animal of schizophrenia.
[0019]
“Test animals” include mice, rats, and monkeys, but any animal other than humans can be a “test animal”.
Diagnosis of schizophrenia has been more difficult in animals other than humans, so the method is very useful.
Furthermore, after administering a candidate substance for an anti-schizophrenic drug to such a model animal, the predetermined nucleic acid and / or protein is quantified as described above, and if the schizophrenia is cured or improved, the candidate It can be judged that the substance has an anti-schizophrenic action. That is, if the diagnostic method of the present invention is applied, a candidate substance for an anti-schizophrenia drug can be easily and accurately screened.
The “candidate substance for anti-schizophrenic drug” may be any substance desired by the examiner.
[0020]
In addition, the diagnostic method of the present invention can be applied to a psychiatric test performed for the purpose of examining the presence or absence of legal responsibility or for other purposes.
EXAMPLES Hereinafter, although an experiment example and an Example demonstrate this invention further in detail, it does not limit the scope of the present invention in any meaning.
[0021]
【Example】
A gene that can be a diagnostic index identified by the present inventors will be described.
In this study, RNA was extracted from tissues using postmortem autopsy brains (sample group S) after death of schizophrenic patients and autopsy brains (sample group C) of people with no mental illness, First, the quality was tested.
[0022]
Select 6 samples of RNA judged to be of high quality for each group, label activated radioactive phosphorus from individual RNAs (total 12 cases) by reverse transcription reaction, and use this as a probe, DNA microarray from Clontech, By reacting with the three types, we performed batch measurement and patterning (molecular expression profiling) of the expression levels of multiple genes. The three types of DNA microarrays used are Atlas Human 1.2 Array, Atlas Human 1.2 Array II, and Atlas Human Cancer 1.2 Array (each array contains 1176 genes). By using these three types of arrays, a total of about 3000 changes in gene expression are evaluated and tested.
[0023]
It was removed from the DNA array using a non-specific hybridization signal by washing for 1 hour or more under a low temperature (0.3xSSC) at a high temperature of 65 ° C. Thereafter, the radioactivity signal corresponding to each gene spot was measured and quantified with a BAS5000 image analyzer of Fuji Photo Film. To correct for signal intensity variability due to experimental techniques occurring between the DNA microarray sheets corresponding to each sample, the sum of all gene expression signals on the array is calculated, and the sum is constant regardless of the array or sample RNA. The signal was standardized by assuming (total 30000) (commonly called global normalization).
[0024]
The signal corresponding to each gene spot was measured and quantified with a BAS5000 image analyzer from Fuji Photo Film. To correct for signal intensity variability between the DNA microarray sheets corresponding to each RNA sample, calculate the sum of all gene expression signals on the sheet and assume that the sum is constant regardless of the sheet or sample RNA. Thus, the signal intensity was standardized.
[0025]
Obtained from schizophrenic patients (sample group S; N = 6) and non-psychotic patients (sample group C; N = 6) to establish genes that show quantitative changes in common to multiple schizophrenic patients The obtained expression signal data was analyzed. In addition, statistical analysis of signal intensity data was performed using a significant difference test by Student's t test.
[0026]
In this experimental example, the gene expression change rate (“average expression level of group S / average expression level of group C” and “average expression level of group C” and “average expression level of group C” for genes whose average signal intensity of schizophrenia group exceeds 10 For the medium signal with a p value of 0.05 or less and a moderate signal of 10 or less, the gene expression change rate is 2.0 times or more. When the p value was 0.01 or less, it was determined that the expression level of the relevant gene was significantly changed in schizophrenia. Table 1 above is a list describing the former genes, and Table 2 above is a list describing the latter genes. The genes listed in Table 1 selected according to this criterion are particularly useful as diagnostic indicators for schizophrenia, and the genes listed in Table 2 are also useful as diagnostic indicators for schizophrenia. Table 3 shows detailed statistical data such as gene expression change rate and p-value for the genes in Table 1. Table 4 shows detailed statistical data such as gene expression change rate and p-value for the genes in Table 2.
[0027]
[Table 3]
Figure 0003771502
[0028]
[Table 4]
Figure 0003771502
[0029]
For example, the interleukin-10 precursor (Interleukin-10), present here at position E-14-f of the Atlas human cancer 1.2 array and significantly altered gene expression with schizophrenia in the following analysis. precursor: GenBank No.M57627) Explains the quantification of mRNA, its processing, and the possibility of diagnosis.
[0030]
(1) In order to establish a gene that shows a quantitative change in common with a plurality of schizophrenic patients, schizophrenic patients (sample group S; N = 6) and non-psychotic patients (sample group C; N = 6). The expression signal data obtained from (1) was analyzed according to the following example. All gene RNA signals on this DNA array containing this gene signal were measured and quantified with a BAS5000 image analyzer. The expression signal data obtained by hybridization is shown in FIG. As a result, the measurement signal intensity of interleukin-10 precursor (GenBank No. M57627) mRNA is different for each sample;
Schizophrenic patients (sample group S; N = 6); S1 = 9.0, S2 = 8.3, S3 = 13.0, S4 = 14.4, S5 = 17.6, S6 = 23.4
Non-psychotic (sample group C; N = 6); C1 = 0.0, C2 = 1.7, C3 = 0.8, C4 = 5.6, C5 = 7.0, C6 = 15.8
It became.
[0031]
(2) By assuming that the sum of gene expression signals is constant regardless of the array and sample (total 30000) by global normalization, and standardizing the signal intensity between arrays, the correction signal of interleukin 10 precursor mRNA Intensity for each sample;
Schizophrenic patients (sample group S); S1 = 27.7, S2 = 36.9, S3 = 23.2, S4 = 37.9, S5 = 36.0, S6 = 57.4
Non-psychotic (sample group C); C1 = 0.0, C2 = 4.2, C3 = 4.6, C4 = 18.3, C5 = 9.0, C6 = 19.9
It became.
[0032]
(3) Using a significant difference test by Student's t-test, signal data intensity analysis is performed on 6 schizophrenic patients (groups S1 to S6) and 6 nonpsychotic patients (groups C1 to C6). Mean value and standard deviation are;
Schizophrenic patients (sample group S); 36.4 ± 12.0
Non-psychotic patients (sample group C); 8.8 ± 8.6
The Student t test reveals that the mean values of these two groups are different (P <0.001). In fact, in this example, it is understood that all signals with a signal intensity of 20.0 or less are schizophrenia, and those with a signal intensity of 20.0 or less are non-schizophrenia, which may be determined based on this criterion. The Mann-Whitney study also revealed that these groups have a ranking relationship (p is 0.05 or less).
[0033]
(4) Actually, the standardized signal intensity of interleukin-10 precursor (GenBank No. M57627) mRNA obtained from the unknown specimen by the above DNA array analysis is 36.4-12.0x1.64 = 16.72 or less. In some cases, the distribution of patients with schizophrenia (sample group S) assuming a normal distribution is not considered to belong to the schizophrenic patient group with a statistical significance of 95% or more. Is determined. In addition, when the standard signal intensity is 8.8 + 8.6x1.64 = 22.904 or more, it has a statistical significance of 95% or more in contrast to the distribution of non-schizophrenic patients (sample group C) assuming a normal distribution. It is determined not to belong to the normal group, that is, “schizophrenia”. If a signal less than 22.904 or greater than 16.72 is obtained, it is determined as a false positive.
[0034]
The genes listed in Table 1 selected according to the same criteria are particularly useful as a diagnostic index of schizophrenia as described above. By testing the expression levels of a plurality of genes obtained here, schizophrenia The reliability of the diagnosis is further improved.
[0035]
【The invention's effect】
According to the method of the present invention, it can be objectively diagnosed whether or not a subject suffers from schizophrenia. The method is extremely accurate compared to conventional subjective diagnostic methods.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a photograph of a signal after hybridization detected by BAS5000, showing the result of comparison of the expression pattern of interleukin-10 precursor in schizophrenic patients and non-psychotic patients.

Claims (6)

被験者において精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸の発現量が、統計学的に健常人の発現量の範囲内にあるかどうかを解析する方法であって、
被験者から採取した試料において、蛋白質キナーゼ DYRK4 GenBank No.Y09305 )の遺伝子を規定する核酸(その断片及びその核酸と相補的な核酸を含む)及び/又は前記遺伝子を規定する核酸がコードするタンパク質(その断片を含む)の発現量を測定して定量値を求める工程、及び前記定量値が正常群の範囲内であるかを統計学的に解析する工程を含む、上記方法
A method of analyzing whether the expression level of a nucleic acid that defines a gene whose expression level changes due to schizophrenia in a subject is statistically within the range of the expression level of a healthy person,
In a sample collected from a subject, a nucleic acid (including a fragment thereof and a nucleic acid complementary to the nucleic acid ) that defines the gene for protein kinase DYRK4 ( GenBank No. Y09305 ) and / or a protein encoded by the nucleic acid that defines the gene ( The method as described above , comprising the step of measuring the expression level (including fragments thereof) to obtain a quantitative value, and the step of statistically analyzing whether the quantitative value is within the range of the normal group.
請求項1記載の方法であって、更に、前記試料中に含有される下記の精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸(その断片及びその核酸と相補的な核酸を含む)及び/又は前記精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸がコードするタンパク質(その断片を含む)の発現量を測定して定量値を求める工程、及び前記定量値が正常群の範囲内であるかを統計学的に解析する工程を含み、The method according to claim 1, further comprising a nucleic acid (including a fragment thereof and a nucleic acid complementary to the nucleic acid) that defines a gene whose expression level is changed by the following schizophrenia contained in the sample: Measuring the expression level of a protein (including a fragment thereof) encoded by a nucleic acid that defines a gene whose expression level changes due to the schizophrenia, and determining the quantitative value, and the quantitative value is within the range of the normal group Including statistically analyzing whether or not
前記精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸が、以下のタンパク質群:  Nucleic acids defining genes whose expression levels are changed by schizophrenia are the following protein groups:
(1)蛋白質チロシンホスファターゼシグマ((1) Protein tyrosine phosphatase sigma ( GenBank No.U35234 GenBank No. U35234 )
(2)チロシン蛋白質キナーゼレセプター(2) Tyrosine protein kinase receptor TIE-2 TIE-2 ( GenBank No.L06139 GenBank No.L06139 )
(3)(3) EPH-EPH- 関連レセプターチロシンキナーゼリガンド5(Related receptor tyrosine kinase ligand 5 ( GenBank No.L38734 GenBank No.L38734 )
(4)1型インターフェロンレセプター((4) Type 1 interferon receptor ( GenBank No.X77722 GenBank No.X77722 )
(5)プロテインキナーゼ(5) Protein kinase ATR ATR ( GenBank No.U49844 GenBank No. U49844 )
(6)(6) STAT2 STAT2 ( GenBank No.U18671 GenBank No. U18671 )
(7)高親和性神経成長因子レセプター前駆体((7) High affinity nerve growth factor receptor precursor ( GenBank No.X03541 GenBank No.X03541 )
(8)(8) OX40L OX40L レセプター前駆体(Receptor precursor ( GenBank No.X75962 GenBank No.X75962 )
(9)(9) STAT4 STAT4 ( GenBank No.L78440 GenBank No.L78440 )
( 10Ten ) KIAA0096KIAA0096 ( GenBank No.D43636 GenBank No.D43636 )
( 1111 )プリンリッチ一本鎖) Purin rich single chain DNA DNA 結合蛋白質アルファ(Binding protein alpha ( GenBank No.M96684 GenBank No.M96684 )
( 1212 ) OX2 OX2 膜糖蛋白質前駆体(Membrane glycoprotein precursor ( GenBank No.X05323 GenBank No.X05323 )
( 1313 ) CDC25BCDC25B ( GenBank No.M81934 GenBank No.M81934 )
( 1414 )グアニンヌクレオチド結合蛋白質) Guanine nucleotide binding protein G(I)/G(S)/G(O)  G (I) / G (S) / G (O) ガンマgamma -10 -Ten サブユニット(Sub unit ( GenBank No.U31383 GenBank No. U31383 )
( 1515 ) PKU-alpha PKU-alpha ( GenBank No.AB004884 GenBank No. AB004884 )
( 1616 ) Wnt-8BWnt-8B ( GenBank No.X91940 GenBank No.X91940 )
( 1717 )グリシル) Glycyl tRNAtRNA 合成酵素(Synthetic enzyme ( GenBank No.D30658 GenBank No.D30658 )
( 1818 )メラノーマ抗原) Melanoma antigen P15 P15 ( GenBank No.U19796 GenBank No. U19796 )
( 1919 )転写開始因子) Transcription initiation factor eIF-2 eIF-2 アルファサブユニット(Alpha subunit ( GenBank No.U26032 GenBank No. U26032 )
( 2020 )キュリンホモログ2() Curin homolog 2 ( GenBank No.U83410 GenBank No. U83410 )
( 21twenty one )膜貫通蛋白質性前駆体() Transmembrane proteinaceous precursor ( GenBank No.X87852 GenBank No.X87852 )
( 22twenty two ) GTP GTP 結合核蛋白質Binding nucleoprotein RAN RAN ( GenBank No.M31469 GenBank No.M31469 )
( 23twenty three )アデニレートキナーゼイソ酵素1() Adenylate kinase isoenzyme 1 ( GenBank No.J04809 GenBank No.J04809 )
( 24twenty four )細胞周期蛋白質) Cell cycle proteins P38-2G4 P38-2G4 ホモログ(Homolog ( GenBank No.U59435 GenBank No. U59435 )
( 25twenty five )インターフェロンガンマレセプター() Interferon gamma receptor ( GenBank No.J03143 GenBank No.J03143 )
( 2626 )ニューロフィブリマトーシス2() Neurofibrosis 2 ( GenBank No.L27133 GenBank No.L27133 )
( 2727 )カドヘリン6前駆体() Cadherin 6 precursor ( CDH6CDH6 )() ( GenBank No.D31784 GenBank No.D31784 )
( 2828 )二重特異性蛋白質ホスファターゼ8() Bispecific protein phosphatase 8 ( GenBank No.U27193 GenBank No. U27193 )
( 2929 )アルギニン/セリンリッチスプライシング因子7() Arginine / Serine-rich splicing factor 7 ( GenBank No.L22253 GenBank No.L22253 )
( 3030 ) PIRIN PIRIN ( GenBank No.Y07867 GenBank No.Y07867 )
( 3131 ) RAD51CRAD51C 切断蛋白質(Cleavage protein ( GenBank No.AF029670 GenBank No.AF029670 )
( 3232 )血管内皮成長因子レセプター1() Vascular endothelial growth factor receptor 1 ( GenBank No.X51602 GenBank No.X51602 )
( 3333 ) DNA DNA トポイソメラーゼ1(Topoisomerase 1 ( GenBank No.J03250 GenBank No.J03250 )
( 3434 )ラミニンアルファ4サブユニット前駆体() Laminin alpha 4 subunit precursor ( GenBank No.X70904 GenBank No.X70904 )
( 3535 )ソマトスタチンレセプター2型() Somatostatin receptor type 2 ( GenBank No.M81830 GenBank No.M81830 )
( 3636 )トランスフェリンレセプター() Transferrin receptor ( GenBank No.X01060 GenBank No.X01060 )
をコードして上記括弧内にIn the brackets above GenBank GenBank 受付番号が示された核酸群に含まれる核酸であることを特徴とする、上記方法。The method as described above, which is a nucleic acid contained in the nucleic acid group indicated by the accession number.
被験動物が精神分裂病に罹患しているか否かを診断する診断方法であって、
核酸及び/又はタンパク質を含有する試料を前記被験動物から採取する工程と、
前記試料中における、蛋白質キナーゼ DYRK4 GenBank No.Y09305 )の遺伝子を規定する核酸(その断片及びその核酸と相補的な核酸を含む)、及び/又は前記核酸がコードするタンパク質(その断片を含む)の含量を定量する工程と、
前記蛋白質キナーゼ DYRK4 GenBank No.Y09305 )の遺伝子を規定する核酸、及び/又は前記蛋白質キナーゼ DYRK4 GenBank No.Y09305 )の遺伝子を規定する核酸によりコードされるタンパク質の定量値を指標として、前記被験動物が精神分裂病に罹患しているか否かを診断する工程とを具備する、上記方法
A diagnostic method for diagnosing whether or not a test animal suffers from schizophrenia,
Collecting a sample containing nucleic acid and / or protein from the subject animal;
A nucleic acid (including a fragment thereof and a nucleic acid complementary to the nucleic acid) defining a gene of protein kinase DYRK4 ( GenBank No. Y09305 ) and / or a protein encoded by the nucleic acid (including a fragment thereof) in the sample Quantifying the content of
The protein kinase DYRK4 nucleic defining a gene (GenBank No.Y09305), and / or the quantitative value of the protein kinase DYRK4 protein encoded by a nucleic acid defining gene of (GenBank No.Y09305) as an index, the subject animal you and a step of diagnosing whether suffering from schizophrenia, the method described above.
請求項3記載の方法であって、更に、前記試料中における、精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸(その断片及びその核酸と相補的な核酸を含む)である少なくとも1つの核酸、及び/又は前記核酸がコードするタンパク質(その断片を含む)である少なくとも1つのタンパク質の含量を定量する工程と、The method according to claim 3, further comprising at least one nucleic acid (including a fragment thereof and a nucleic acid complementary to the nucleic acid) that defines a gene whose expression level is changed by schizophrenia in the sample. Quantifying the content of at least one protein that is a nucleic acid and / or a protein (including fragments thereof) encoded by the nucleic acid;
前記精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸、及び/又は前記精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸によりコードされるタンパク質の定量値を指標として、前記被験動物が精神分裂病に罹患しているか否かを診断する工程とを具備し、  Using the nucleic acid that defines a gene whose expression level changes due to the schizophrenia and / or the quantitative value of the protein encoded by the nucleic acid that regulates the gene whose expression level changes as a result of the schizophrenia as an indicator, Comprising diagnosing whether or not schizophrenia is affected,
前記精神分裂病により発現量が変化する遺伝子を規定する核酸が、以下のタンパク質群:  Nucleic acids defining genes whose expression levels are changed by schizophrenia are the following protein groups:
(1)蛋白質チロシンホスファターゼシグマ((1) Protein tyrosine phosphatase sigma ( GenBank No.U35234 GenBank No. U35234 )
(2)チロシン蛋白質キナーゼレセプター(2) Tyrosine protein kinase receptor TIE-2 TIE-2 ( GenBank No.L06139 GenBank No.L06139 )
(3)(3) EPH-EPH- 関連レセプターチロシンキナーゼリガンド5(Related receptor tyrosine kinase ligand 5 ( GenBank No.L38734 GenBank No.L38734 )
(4)1型インターフェロンレセプター((4) Type 1 interferon receptor ( GenBank No.X77722 GenBank No.X77722 )
(5)プロテインキナーゼ(5) Protein kinase ATR ATR ( GenBank No.U49844 GenBank No. U49844 )
(6)(6) STAT2 STAT2 ( GenBank No.U18671 GenBank No. U18671 )
(7)高親和性神経成長因子レセプター前駆体((7) High affinity nerve growth factor receptor precursor ( GenBank No.X03541 GenBank No.X03541 )
(8)(8) OX40L OX40L レセプター前駆体(Receptor precursor ( GenBank No.X75962 GenBank No.X75962 )
(9)(9) STAT4 STAT4 ( GenBank No.L78440 GenBank No.L78440 )
( 10Ten ) KIAA0096KIAA0096 ( GenBank No.D43636 GenBank No.D43636 )
( 1111 )プリンリッチ一本鎖) Purin rich single chain DNA DNA 結合蛋白質アルファ(Binding protein alpha ( GenBank No.M96684 GenBank No.M96684 )
( 1212 ) OX2 OX2 膜糖蛋白質前駆体(Membrane glycoprotein precursor ( GenBank No.X05323 GenBank No.X05323 )
( 1313 ) CDC25BCDC25B ( GenBank No.M81934 GenBank No.M81934 )
( 1414 )グアニンヌクレオチド結合蛋白質) Guanine nucleotide binding protein G(I)/G(S)/G(O)  G (I) / G (S) / G (O) ガンマgamma -10 -Ten サブユニット(Sub unit ( GenBank No.U31383 GenBank No. U31383 )
( 1515 ) PKU-alpha PKU-alpha ( GenBank No.AB004884 GenBank No. AB004884 )
( 1616 ) Wnt-8BWnt-8B ( GenBank No.X91940 GenBank No.X91940 )
( 1717 )グリシル) Glycyl tRNAtRNA 合成酵素(Synthetic enzyme ( GenBank No.D30658 GenBank No.D30658 )
( 1818 )メラノーマ抗原) Melanoma antigen P15 P15 ( GenBank No.U19796 GenBank No. U19796 )
( 1919 )転写開始因子) Transcription initiation factor eIF-2 eIF-2 アルファサブユニット(Alpha subunit ( GenBank No.U26032 GenBank No. U26032 )
( 2020 )キュリンホモログ2() Curin homolog 2 ( GenBank No.U83410 GenBank No. U83410 )
( 21twenty one )膜貫通蛋白質性前駆体() Transmembrane proteinaceous precursor ( GenBank No.X87852 GenBank No.X87852 )
( 22twenty two ) GTP GTP 結合核蛋白質Binding nucleoprotein RAN RAN ( GenBank No.M31469 GenBank No.M31469 )
( 23twenty three )アデニレートキナーゼイソ酵素1() Adenylate kinase isoenzyme 1 ( GenBank No.J04809 GenBank No.J04809 )
( 24twenty four )細胞周期蛋白質) Cell cycle proteins P38-2G4 P38-2G4 ホモログ(Homolog ( GenBank No.U59435 GenBank No. U59435 )
( 25twenty five )インターフェロンガンマレセプター() Interferon gamma receptor ( GenBank No.J03143 GenBank No.J03143 )
( 2626 )ニューロフィブリマトーシス2() Neurofibrosis 2 ( GenBank No.L27133 GenBank No.L27133 )
( 2727 )カドヘリン6前駆体() Cadherin 6 precursor ( CDH6CDH6 )() ( GenBank No.D31784 GenBank No.D31784 )
( 2828 )二重特異性蛋白質ホスファターゼ8() Bispecific protein phosphatase 8 ( GenBank No.U27193 GenBank No. U27193 )
( 2929 )アルギニン/セリンリッチスプライシング因子7() Arginine / Serine-rich splicing factor 7 ( GenBank No.L22253 GenBank No.L22253 )
( 3030 ) PIRIN PIRIN ( GenBank No.Y07867 GenBank No.Y07867 )
( 3131 ) RAD51CRAD51C 切断蛋白質(Cleavage protein ( GenBank No.AF029670 GenBank No.AF029670 )
( 3232 )血管内皮成長因子レセプター1() Vascular endothelial growth factor receptor 1 ( GenBank No.X51602 GenBank No.X51602 )
( 3333 ) DNA DNA トポイソメラーゼ1(Topoisomerase 1 ( GenBank No.J03250 GenBank No.J03250 )
( 3434 )ラミニンアルファ4サブユニット前駆体() Laminin alpha 4 subunit precursor ( GenBank No.X70904 GenBank No.X70904 )
( 3535 )ソマトスタチンレセプター2型() Somatostatin receptor type 2 ( GenBank No.M81830 GenBank No.M81830 )
( 3636 )トランスフェリンレセプター() Transferrin receptor ( GenBank No.X01060 GenBank No.X01060 )
をコードして上記括弧内にIn the brackets above GenBank GenBank 受付番号が示された核酸群に含まれる核酸であることを特徴とする方法。A method characterized in that it is a nucleic acid contained in the nucleic acid group indicated by the receipt number.
被験動物が精神分裂病のモデル動物として有用であるか否かを判定する方法であって、
請求項3または請求項4に記載の方法により、前記被験動物が精神分裂病に罹患しているか否かを診断する過程と、
前記被験動物が精神分裂病に罹患していれば、前記被験動物が精神分裂病のモデル動物として有用であると判定する過程を備えることを特徴とする方法。
A method for determining whether a test animal is useful as a model animal for schizophrenia, comprising:
The process of diagnosing whether or not the subject animal suffers from schizophrenia by the method according to claim 3 or claim 4 ,
A method comprising determining that the subject animal is useful as a model animal for schizophrenia if the subject animal suffers from schizophrenia.
抗精神分裂病薬の候補物質をスクリーニングを行う方法であって、
精神分裂病のモデル動物に前記被験物質を与える過程と、
請求項3または請求項4に記載の方法により、前記モデル動物の精神分裂病が治癒又は改善されたか否かを診断する過程と
前記モデル動物の精神分裂病が治癒又は改善していれば、前記被検物質が抗精神分裂病薬の候補物質であると判定する過程を備えることを特徴とする方法。
A method for screening candidate substances for anti-schizophrenic drugs,
Providing the test substance to a model animal of schizophrenia,
The method according to claim 3 or 4 , wherein the process of diagnosing whether the schizophrenia of the model animal has been cured or improved, and if the schizophrenia of the model animal has been cured or improved, A method comprising determining that a test substance is a candidate substance for an anti-schizophrenia drug.
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