JP3283272B2 - エンハンサ−核酸塩基配列 - Google Patents
エンハンサ−核酸塩基配列Info
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、新規なエンハンサー核
酸塩基配列に関する。
酸塩基配列に関する。
【０００２】
【従来の技術】近年、マウス及びヒトの免疫グロブリン
Ｈ鎖遺伝子のＪ−Ｃイントロン中のエンハンサー及びそ
の一部の特異的塩基配列に結合する様々な転写調節因子
について解析が行なわれてきた（Science、 227、 134 (1
985)、 EMBO J.、 6、 1323 (1987))。Ｊ−Ｃイントロン中
のエンハンサーは、再構成された免疫グロブリン遺伝子
の転写を制御するばかりでなく、Ｂ細胞特異的転写調節
因子と共働してＢ細胞が骨髄幹細胞から分化する機構に
おいて不可欠な核酸塩基配列である（EMBO J.、 9、 117
(1990)) 。マウスの免疫グロブリンＨ鎖遺伝子のＪ−Ｃ
イントロン中のエンハンサーモチーフのうちオクタマー
核酸塩基配列ＡＴＴＴＧＣＡＴに結合する非特異的因子
ＯＣＴ１及びＢ細胞特異的因子ＯＣＴ２Ａ、ＯＣＴ２Ｂ
は代表的な転写調節因子である(Nature (London)、 323、
640 (1986))。またその他に２つのサイレンサー核酸塩
基配列も見つかっており（Mol. Cell. Biol.、 7、 2558
(1987)) 、正と負の両方の制御によりＪ−Ｃイントロン
エンハンサー全体がＢ細胞特異的になっていることが分
かっている。一方、ヒトのＪ−Ｃイントロン中にはマウ
スで見られるオクタマー配列と全く同じ配列は存在しな
いが、一つの塩基だけ置換された３つのオクタマー様核
酸塩基配列が存在する（Nucleic Acids Res.、 15、 2851
(1987))。しかし、これらの３つの配列はオクタマー配
列結合タンパク質に対して親和性が低く、おそらくＪ−
Ｃイントロン中のエンハンサー中にこれに代わる配列が
存在するものと考えられる。マウスのＪ−Ｃイントロン
中のエンハンサーに存在するオクタマー核酸塩基配列の
ようなＢ細胞特異的モチーフがヒトのＪ−Ｃイントロン
中のエンハンサーで見つかれば、このモチーフがＢ細胞
の分化に果たす役割を解明できるだけでなく、このモチ
ーフを用いてＢ細胞系におけるより効率的な外来遺伝子
発現用ベクターとしての利用も可能である。また、Ｂ細
胞系以外の内在遺伝子の発現系を抑制することも可能で
ある。
Ｈ鎖遺伝子のＪ−Ｃイントロン中のエンハンサー及びそ
の一部の特異的塩基配列に結合する様々な転写調節因子
について解析が行なわれてきた（Science、 227、 134 (1
985)、 EMBO J.、 6、 1323 (1987))。Ｊ−Ｃイントロン中
のエンハンサーは、再構成された免疫グロブリン遺伝子
の転写を制御するばかりでなく、Ｂ細胞特異的転写調節
因子と共働してＢ細胞が骨髄幹細胞から分化する機構に
おいて不可欠な核酸塩基配列である（EMBO J.、 9、 117
(1990)) 。マウスの免疫グロブリンＨ鎖遺伝子のＪ−Ｃ
イントロン中のエンハンサーモチーフのうちオクタマー
核酸塩基配列ＡＴＴＴＧＣＡＴに結合する非特異的因子
ＯＣＴ１及びＢ細胞特異的因子ＯＣＴ２Ａ、ＯＣＴ２Ｂ
は代表的な転写調節因子である(Nature (London)、 323、
640 (1986))。またその他に２つのサイレンサー核酸塩
基配列も見つかっており（Mol. Cell. Biol.、 7、 2558
(1987)) 、正と負の両方の制御によりＪ−Ｃイントロン
エンハンサー全体がＢ細胞特異的になっていることが分
かっている。一方、ヒトのＪ−Ｃイントロン中にはマウ
スで見られるオクタマー配列と全く同じ配列は存在しな
いが、一つの塩基だけ置換された３つのオクタマー様核
酸塩基配列が存在する（Nucleic Acids Res.、 15、 2851
(1987))。しかし、これらの３つの配列はオクタマー配
列結合タンパク質に対して親和性が低く、おそらくＪ−
Ｃイントロン中のエンハンサー中にこれに代わる配列が
存在するものと考えられる。マウスのＪ−Ｃイントロン
中のエンハンサーに存在するオクタマー核酸塩基配列の
ようなＢ細胞特異的モチーフがヒトのＪ−Ｃイントロン
中のエンハンサーで見つかれば、このモチーフがＢ細胞
の分化に果たす役割を解明できるだけでなく、このモチ
ーフを用いてＢ細胞系におけるより効率的な外来遺伝子
発現用ベクターとしての利用も可能である。また、Ｂ細
胞系以外の内在遺伝子の発現系を抑制することも可能で
ある。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の目的
は、マウスのＪ−Ｃイントロン中のエンハンサーに存在
するオクタマー核酸配列のようなＢ細胞特異的なモチー
フを新たにヒトのＪ−Ｃイントロン中のエンハンサー中
で同定し、このモチーフがＢ細胞の分化に果たす役割を
解明すると共により効率的なＢ細胞系を宿主とする外来
遺伝子の発現系及びＢ細胞系以外の内在遺伝子の抑制系
を提供することである。
は、マウスのＪ−Ｃイントロン中のエンハンサーに存在
するオクタマー核酸配列のようなＢ細胞特異的なモチー
フを新たにヒトのＪ−Ｃイントロン中のエンハンサー中
で同定し、このモチーフがＢ細胞の分化に果たす役割を
解明すると共により効率的なＢ細胞系を宿主とする外来
遺伝子の発現系及びＢ細胞系以外の内在遺伝子の抑制系
を提供することである。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、ヒト免疫
グロブリンＨ鎖遺伝子エンハンサーについて鋭意研究し
た結果、エンハンサー中のＢ細胞特異的なモチーフを取
得することができ、この発明を完成した。すなわち、本
発明は、ＤＮＡ塩基配列単位Ｉ（−ＡＡＣＴＧＡＡＡ
−）、II（−ＡＴＣＴＧＡＡＴ−）及びそれぞれに相補
的塩基配列より成る２種類のＤＮＡ塩基対をこの順序で
少なくとも含有し、総ＤＮＡ塩基対数が４０以下である
ＤＮＡから成るエンハンサーを提供する。また、本発明
は、図１に示すMnlI-AluI 断片６７塩基対から成るＤＮ
Ａから成るエンハンサーを提供する。
グロブリンＨ鎖遺伝子エンハンサーについて鋭意研究し
た結果、エンハンサー中のＢ細胞特異的なモチーフを取
得することができ、この発明を完成した。すなわち、本
発明は、ＤＮＡ塩基配列単位Ｉ（−ＡＡＣＴＧＡＡＡ
−）、II（−ＡＴＣＴＧＡＡＴ−）及びそれぞれに相補
的塩基配列より成る２種類のＤＮＡ塩基対をこの順序で
少なくとも含有し、総ＤＮＡ塩基対数が４０以下である
ＤＮＡから成るエンハンサーを提供する。また、本発明
は、図１に示すMnlI-AluI 断片６７塩基対から成るＤＮ
Ａから成るエンハンサーを提供する。
【０００５】本発明のエンハンサーは、上記単位Ｉ及び
IIをこの順序で少なくとも含み、総ＤＮＡ塩基対数が４
０以下であるものである。又は、図１に示すMnlI-AluI
断片６７塩基対から成るＤＮＡから成るものである。総
ＤＮＡ塩基対数が４０以下の本発明のエンハンサーとし
ては、特に、図１の(1) と(2) の間の配列、すなわち、
ＡＣＣＧＡＡＡＣＴＧＡＡＡＡＧＧＣＴＴＴＴＴＴＴＡ
ＡＣＴＡＴＣＴＧＡＡＴで示される配列から成るものが
好ましい。
IIをこの順序で少なくとも含み、総ＤＮＡ塩基対数が４
０以下であるものである。又は、図１に示すMnlI-AluI
断片６７塩基対から成るＤＮＡから成るものである。総
ＤＮＡ塩基対数が４０以下の本発明のエンハンサーとし
ては、特に、図１の(1) と(2) の間の配列、すなわち、
ＡＣＣＧＡＡＡＣＴＧＡＡＡＡＧＧＣＴＴＴＴＴＴＴＡ
ＡＣＴＡＴＣＴＧＡＡＴで示される配列から成るものが
好ましい。
【０００６】なお、本発明のエンハンサー配列は以下の
ようにして見出された。すなわち、ヒト免疫グロブリン
Ｈ鎖遺伝子エンハンサー中のＢ細胞特異的なモチーフを
取得するために、先ず最初にエンハンサーをいくつかの
断片に分け（特開昭60-120991 号）各々の断片単独であ
るいはそれらの組み合わせでの活性をＣＡＴアッセイ法
により決定した（Mol. Cell. Biol.、 2、 1044 (1982))
。作成した断片のいくつかについてＣＡＴアッセイを
行なった結果を図２に示したが、断片３、４、５につい
てエンハンサー活性が認められた。次に、これらの断片
についてＤＥＡＥ−dextran 法（Cell、 41、 885 (198
5)、Grosschedl、 R.、 etc)によりヒト培養細胞への導入
を行なった後、ＣＡＴ（クロラムフェニコールアセチル
トランスフェラーゼ）アッセイ法（ゴーマンら、Ｍｏ
ｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，２，１０４４（１９８
２）），によりＢ細胞特異的なエンハンサーモチーフを
同定することができる。その結果、断片３中の図１に示
すMnlI-AluI 断片６７bpに強力なエンハンサー活性が認
められた。次に新しいＢ細胞特異的なモチーフと考えら
れる部分についてＤＮaseIフットプリンティング法を行
ない、さらに転写調節因子が結合すると考えられる核酸
塩基対から合成プローブを作製し、ゲルシフト法を行な
うことによりＢ細胞特異的なモチーフを検索することが
できる。
ようにして見出された。すなわち、ヒト免疫グロブリン
Ｈ鎖遺伝子エンハンサー中のＢ細胞特異的なモチーフを
取得するために、先ず最初にエンハンサーをいくつかの
断片に分け（特開昭60-120991 号）各々の断片単独であ
るいはそれらの組み合わせでの活性をＣＡＴアッセイ法
により決定した（Mol. Cell. Biol.、 2、 1044 (1982))
。作成した断片のいくつかについてＣＡＴアッセイを
行なった結果を図２に示したが、断片３、４、５につい
てエンハンサー活性が認められた。次に、これらの断片
についてＤＥＡＥ−dextran 法（Cell、 41、 885 (198
5)、Grosschedl、 R.、 etc)によりヒト培養細胞への導入
を行なった後、ＣＡＴ（クロラムフェニコールアセチル
トランスフェラーゼ）アッセイ法（ゴーマンら、Ｍｏ
ｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，２，１０４４（１９８
２）），によりＢ細胞特異的なエンハンサーモチーフを
同定することができる。その結果、断片３中の図１に示
すMnlI-AluI 断片６７bpに強力なエンハンサー活性が認
められた。次に新しいＢ細胞特異的なモチーフと考えら
れる部分についてＤＮaseIフットプリンティング法を行
ない、さらに転写調節因子が結合すると考えられる核酸
塩基対から合成プローブを作製し、ゲルシフト法を行な
うことによりＢ細胞特異的なモチーフを検索することが
できる。
【０００７】
【発明の効果】本発明により、Ｂ細胞特異的な新規なエ
ンハンサーが提供された。本発明のエンハンサー塩基配
列は、Ｂ細胞系を宿主とする外来遺伝子の発現系の有用
なエンハンサーであると共に、Ｂ細胞系以外の内在遺伝
子の発現系の有用なサイレンサーともなりうるものであ
る。例えば、上記ＭｎＩとＡｌｕＩ間の６７塩基対のＤ
ＮＡ配列をいくつかつなぐことにより、この配列に適当
な遺伝子、例えばコナアルブミンプロモーターを接続し
てＢ細胞におけるより効率的な外来遺伝子発現用ベクタ
ーとして利用可能である。さらに、Ｂ細胞系以外の内在
遺伝子の上流域又は下流にこのモチーフを組み入れるこ
とでその発現系を抑制可能である。
ンハンサーが提供された。本発明のエンハンサー塩基配
列は、Ｂ細胞系を宿主とする外来遺伝子の発現系の有用
なエンハンサーであると共に、Ｂ細胞系以外の内在遺伝
子の発現系の有用なサイレンサーともなりうるものであ
る。例えば、上記ＭｎＩとＡｌｕＩ間の６７塩基対のＤ
ＮＡ配列をいくつかつなぐことにより、この配列に適当
な遺伝子、例えばコナアルブミンプロモーターを接続し
てＢ細胞におけるより効率的な外来遺伝子発現用ベクタ
ーとして利用可能である。さらに、Ｂ細胞系以外の内在
遺伝子の上流域又は下流にこのモチーフを組み入れるこ
とでその発現系を抑制可能である。
【０００８】
【実施例】以下、本発明を実施例により具体的に説明す
るが、本発明の実施例はこれらに限られるものではな
い。なお、本実施例で使用した制限酵素及びその他の遺
伝子操作用酵素は宝酒造又はNew England Biolab・Sの製
品を用い、これらの酵素の反応条件（ｐＨ、時間、塩濃
度等）は製品購入時に添付される説明書に従った。実施例１ ＣＡＴアッセイ法によるエンハンサー中の断片の活性測
定 ヒト免疫グロブリンＨ鎖遺伝子のエンハンサーのMnlI-H
paI 断片（９５８bp)をAluI、 BstEII、 Bgl IIの３種類
の酵素で消化し６つの断片を得た（図２参照）。消化は
ＤＮＡ１μg に対して3.0 〜5.0 Ｕの酵素量、反応は３
７℃で２〜１８時間行なった。なお、ＤＮＡの希釈等に
は、滅菌水又はＴＥ緩衝液（10mMトリス塩酸(pH8.0) 、
１mMＥＤＴＡ）を用いた。得られた各々の断片はクレノ
ー断片（宝酒造社製）又はT4DNA ポリメラーゼ（宝酒造
社製）により消化され様々な欠失変異エンハンサーがプ
ラスミドpconaCAT(Kimura. et al.、 Cell、 44、 261 (19
86)) に塩化セシウム、エチジウムブロマイド（ＥｔＢ
ｒ）を加え、58000 rpm 、２０℃で６時間の超遠心を２
回繰り返した。イソアミルアルコールをＤＮＡ抽出液１
mlに対して500ml 加えて脱色を５回繰り返した後、ＴＥ
緩衝液を用いて４℃で２時間の透析を行なった。得られ
たプラスミド１０〜１５μg をDEAE-dextran法によりヒ
トリンパ芽球細胞(ARH-77)へ導入した。導入後、４８時
間経ったら細胞を回収し、ＰＢＳで２回洗浄し、さらに
lysate buffer (250mMトリス塩酸(pH7.8)、 ５mMＤＴ
Ｔ、１０％グリセロール）で懸濁し、凍結と融解を５回
繰り返して細胞を完全に破裂させた。この細胞を15000
rpm 、４℃で１０分間遠心して得られた上清をＣＡＴア
ッセイ法によりエンハンサー活性を測定した。平均の活
性値及び標準偏差は、オートラジオグラムをデンシトメ
ーターで走査することで決定した。以上のプラスミドの
導入を各々に対して４回繰り返した結果、図２に示すよ
うにオクタマー様核酸塩基配列を含む断片３、４、５に
エンハンサー活性が認められた。
るが、本発明の実施例はこれらに限られるものではな
い。なお、本実施例で使用した制限酵素及びその他の遺
伝子操作用酵素は宝酒造又はNew England Biolab・Sの製
品を用い、これらの酵素の反応条件（ｐＨ、時間、塩濃
度等）は製品購入時に添付される説明書に従った。実施例１ ＣＡＴアッセイ法によるエンハンサー中の断片の活性測
定 ヒト免疫グロブリンＨ鎖遺伝子のエンハンサーのMnlI-H
paI 断片（９５８bp)をAluI、 BstEII、 Bgl IIの３種類
の酵素で消化し６つの断片を得た（図２参照）。消化は
ＤＮＡ１μg に対して3.0 〜5.0 Ｕの酵素量、反応は３
７℃で２〜１８時間行なった。なお、ＤＮＡの希釈等に
は、滅菌水又はＴＥ緩衝液（10mMトリス塩酸(pH8.0) 、
１mMＥＤＴＡ）を用いた。得られた各々の断片はクレノ
ー断片（宝酒造社製）又はT4DNA ポリメラーゼ（宝酒造
社製）により消化され様々な欠失変異エンハンサーがプ
ラスミドpconaCAT(Kimura. et al.、 Cell、 44、 261 (19
86)) に塩化セシウム、エチジウムブロマイド（ＥｔＢ
ｒ）を加え、58000 rpm 、２０℃で６時間の超遠心を２
回繰り返した。イソアミルアルコールをＤＮＡ抽出液１
mlに対して500ml 加えて脱色を５回繰り返した後、ＴＥ
緩衝液を用いて４℃で２時間の透析を行なった。得られ
たプラスミド１０〜１５μg をDEAE-dextran法によりヒ
トリンパ芽球細胞(ARH-77)へ導入した。導入後、４８時
間経ったら細胞を回収し、ＰＢＳで２回洗浄し、さらに
lysate buffer (250mMトリス塩酸(pH7.8)、 ５mMＤＴ
Ｔ、１０％グリセロール）で懸濁し、凍結と融解を５回
繰り返して細胞を完全に破裂させた。この細胞を15000
rpm 、４℃で１０分間遠心して得られた上清をＣＡＴア
ッセイ法によりエンハンサー活性を測定した。平均の活
性値及び標準偏差は、オートラジオグラムをデンシトメ
ーターで走査することで決定した。以上のプラスミドの
導入を各々に対して４回繰り返した結果、図２に示すよ
うにオクタマー様核酸塩基配列を含む断片３、４、５に
エンハンサー活性が認められた。
【０００９】ＣＡＴアッセイ法によるＢ細胞特異的なエ
ンハンサー部位の同定 ＡＲＨ７７細胞における図２中の断片３、４、５を用い
て単独あるいはこれら３つの断片を２つづつ組合わせ
て、その方向性をも加味して各々のエンハンサー活性を
ＣＡＴアッセイ法により測定した。すなわち、大腸菌プ
ラスミド（pUC 、宝酒造社製）のポリリンカー中のHinc
II部位に断片３、４又は５を組み込み、続いてSphI及び
BamHI で消化し、新たにpconaCAT中のコナアルブミンプ
ロモーターの５’側に存在するSphI-BamHI部位へ組み込
んだ。また、これらの新しく作製されたプラスミド中の
BamHI 部位に２つめの断片３、４又は５を組み入れるこ
とによって合計９種類のプラスミドを作製し、平均のＣ
ＡＴ活性及び標準偏差が別々に独立してのＡＲＨ７７へ
の同じプラスミドの導入を４回行なうことにより決定し
た。また、断片３の２コピーの断片をＣＡＴ遺伝子の
３’側に組み入れても強いエンハンサー活性が認められ
た。これらのことより断片３に強力なエンハンサー活性
があることが明らかとなった。次に、断片３及びこれの
２コピーの断片３３をＡＲＨ７７、Ｔ細胞系のJurkat、
非リンパ球細胞系のＨｅＬａの３種類に別々に導入し、
ＣＡＴアッセイ法により解析した。なお、正のコントロ
ールにはpSconaCAT (pconaCAT の５’のBamHI部位にＳ
Ｖ４０のエンハンサーを挿入したもの）及びpSV2CAT
（ＣＡＴ遺伝子の５’側にＳＶ４０のエンハンサーとプ
ロモーターを含有するもの）を使用した。活性の平均値
と標準偏差は別々に３回行なわれたプラスミドの導入に
より求めた。その結果、断片３はＡＲＨ７７でのみ強力
なエンハンサー活性が認められたのでＢ細胞特異的と考
え、断片３をDdelI あるいはMnlIで消化して４つの小さ
な断片とした。各々の末端をT4DNA ポリメラーゼで消化
してＴ４リガーゼ（宝酒造社製）により１から６コピー
まで連結し、コナアルブミンプロモーターの５’側に組
み込んだ。また、断片３の一部に当たる２つの合成オリ
ゴ核酸塩基配列Ｓ３５、Ｓ４３と３つの合成オクタマー
様核酸塩基配列も合わせてＣＡＴアッセイ法を行なっ
た。導入の回数はＳ３５とオクタマー様核酸塩基配列の
４つの合成配列では２回、それ以外については４回行な
った。その結果、図３に示すように、MnlI-AluI 断片６
７bpに強力なエンハンサー活性が認められた。これはマ
ウスの場合のＢ細胞特異的エンハンサー活性を示す部位
の３’側に相当する。このことより得られた６７bp断片
を３コピー又は４コピーにしてpconaCATのBamHI 部位に
組み入れ、ＡＲＨ７７、Jurkat，ＨｅＬａ，マウスミエ
ローマ細胞Ｘ６３へ各々を３回ずつ導入したところ、Ｂ
細胞系のＡＲＨ７７及びＸ６３で強力なエンハンサー活
性が認められた。なお、正のコントロールにはpSconaCA
T を使用した。
ンハンサー部位の同定 ＡＲＨ７７細胞における図２中の断片３、４、５を用い
て単独あるいはこれら３つの断片を２つづつ組合わせ
て、その方向性をも加味して各々のエンハンサー活性を
ＣＡＴアッセイ法により測定した。すなわち、大腸菌プ
ラスミド（pUC 、宝酒造社製）のポリリンカー中のHinc
II部位に断片３、４又は５を組み込み、続いてSphI及び
BamHI で消化し、新たにpconaCAT中のコナアルブミンプ
ロモーターの５’側に存在するSphI-BamHI部位へ組み込
んだ。また、これらの新しく作製されたプラスミド中の
BamHI 部位に２つめの断片３、４又は５を組み入れるこ
とによって合計９種類のプラスミドを作製し、平均のＣ
ＡＴ活性及び標準偏差が別々に独立してのＡＲＨ７７へ
の同じプラスミドの導入を４回行なうことにより決定し
た。また、断片３の２コピーの断片をＣＡＴ遺伝子の
３’側に組み入れても強いエンハンサー活性が認められ
た。これらのことより断片３に強力なエンハンサー活性
があることが明らかとなった。次に、断片３及びこれの
２コピーの断片３３をＡＲＨ７７、Ｔ細胞系のJurkat、
非リンパ球細胞系のＨｅＬａの３種類に別々に導入し、
ＣＡＴアッセイ法により解析した。なお、正のコントロ
ールにはpSconaCAT (pconaCAT の５’のBamHI部位にＳ
Ｖ４０のエンハンサーを挿入したもの）及びpSV2CAT
（ＣＡＴ遺伝子の５’側にＳＶ４０のエンハンサーとプ
ロモーターを含有するもの）を使用した。活性の平均値
と標準偏差は別々に３回行なわれたプラスミドの導入に
より求めた。その結果、断片３はＡＲＨ７７でのみ強力
なエンハンサー活性が認められたのでＢ細胞特異的と考
え、断片３をDdelI あるいはMnlIで消化して４つの小さ
な断片とした。各々の末端をT4DNA ポリメラーゼで消化
してＴ４リガーゼ（宝酒造社製）により１から６コピー
まで連結し、コナアルブミンプロモーターの５’側に組
み込んだ。また、断片３の一部に当たる２つの合成オリ
ゴ核酸塩基配列Ｓ３５、Ｓ４３と３つの合成オクタマー
様核酸塩基配列も合わせてＣＡＴアッセイ法を行なっ
た。導入の回数はＳ３５とオクタマー様核酸塩基配列の
４つの合成配列では２回、それ以外については４回行な
った。その結果、図３に示すように、MnlI-AluI 断片６
７bpに強力なエンハンサー活性が認められた。これはマ
ウスの場合のＢ細胞特異的エンハンサー活性を示す部位
の３’側に相当する。このことより得られた６７bp断片
を３コピー又は４コピーにしてpconaCATのBamHI 部位に
組み入れ、ＡＲＨ７７、Jurkat，ＨｅＬａ，マウスミエ
ローマ細胞Ｘ６３へ各々を３回ずつ導入したところ、Ｂ
細胞系のＡＲＨ７７及びＸ６３で強力なエンハンサー活
性が認められた。なお、正のコントロールにはpSconaCA
T を使用した。
【００１０】Ｂ細胞特異的転写調節因子の結合部位 フットプリンティング法用のプローブとして断片３を
［γ-32P] ＡＴＰとＴ４ポリヌクレオチドキナーゼ（宝
酒造社製）で５’末端を標識した。次に、フェノール・
クロロホルム・イソアミルアルコール（２５：２４：
１）で抽出し、エタノール沈殿を行なった。１２mM N-2
- ヒドロキシエチルピペラジン−Ｎ’−２−エタン−ス
ルフォン酸（ＨＥＰＥＳ、pH7.9)、６０mM KCl、４mM M
gCl2、１mMＥＤＴＡ、１mMＤＤＴ、１２％グリセロー
ル、0.5mM フェニルメチルスルフォニルフルオライド１
ml当たり１mgのPepstainA 、１ml当たり１０Ｕのアプロ
チニンを含んだ緩衝液４０μl に１０4cpmの標識プロー
ブ、３μg のpoly(dI-dC) 、適当量のＡＲＨ７７、Ｍａ
ｎｃａ（ヒトＢ細胞）、Jurkat、ＨｅＬａの核タンパク
質をそれぞれ加えて１５〜２０分氷上でインキュベート
した後、１分間、２０℃でＤＮase Ｉ処理し、２０mMＥ
ＤＴＡ（pH8.0)、0.2%ＳＤＳ、0.3M NaCl 、１ml当たり
２μg の酵母ｔＲＮＡを加えて反応を停止し、フェノー
ル抽出後、エタノール沈殿を行なった。得られたサンプ
ルは８％尿素ゲル上で電気泳動を行なった。マーカーと
してマキサムギルバート法(Methods Enzymol.、 65、 490
Maxam A.M. et al.)に従ってＧ（グアニン）とＡ（ア
デニン）の箇所で切断された断片３を用いた。その結
果、全ての核タンパク質により図１に示す１５核酸塩基
配列から成るＥ６モチーフがDNase Ｉによって切断され
なかった。このことからこのモチーフのＢ細胞特異性を
立証するためにゲルシフトアッセイを行なった。先ず、
合成されたＥ６核酸塩基配列とそれと４bp異なる変異Ｅ
６モチーフを各々［γ-32P] ＡＴＰとＴ４ポリヌクレオ
チドキナーゼで標識した。これに適当量のpoly(dI-dC)
、ＡＲＨ７７、Ｍａｎｃａ、Ｊｕｒｋａｔ、ＨｅＬａ
の４種類の細胞からの核抽出物を加えて、ＤＮase Ｉフ
ットプリンティング法で使用した緩衝液で２０μl に容
量を上げた。反応液は４℃で１５〜２０分間インキュベ
ートし、４％ＰＡＧＥ（アクリルアミド：ビスアクリル
アミド＝２９：１）上で３０分間予備電気泳動を行な
い、続いて２〜３時間、４℃、１１Ｖ/cm で泳動し、乾
燥した後、８０℃で強調スクリーンを用いてオートラジ
オグラムした。この結果、全ての細胞で共通のバンドが
見られたが、ＡＲＨ７７とＭａｎｃａではそれよりも低
分子側にさらにもう一つのバンドが見られた。これより
前者はＢ細胞特異的ではなく、後者がＢ細胞特異的転写
調節因子で、２つともＥ６モチーフに結合する。ちなみ
に、ＣＡＴアッセイ法によりこのＥ６モチーフ６コピー
でＢ細胞特異的エンハンサー活性を示すことも調べられ
た。
［γ-32P] ＡＴＰとＴ４ポリヌクレオチドキナーゼ（宝
酒造社製）で５’末端を標識した。次に、フェノール・
クロロホルム・イソアミルアルコール（２５：２４：
１）で抽出し、エタノール沈殿を行なった。１２mM N-2
- ヒドロキシエチルピペラジン−Ｎ’−２−エタン−ス
ルフォン酸（ＨＥＰＥＳ、pH7.9)、６０mM KCl、４mM M
gCl2、１mMＥＤＴＡ、１mMＤＤＴ、１２％グリセロー
ル、0.5mM フェニルメチルスルフォニルフルオライド１
ml当たり１mgのPepstainA 、１ml当たり１０Ｕのアプロ
チニンを含んだ緩衝液４０μl に１０4cpmの標識プロー
ブ、３μg のpoly(dI-dC) 、適当量のＡＲＨ７７、Ｍａ
ｎｃａ（ヒトＢ細胞）、Jurkat、ＨｅＬａの核タンパク
質をそれぞれ加えて１５〜２０分氷上でインキュベート
した後、１分間、２０℃でＤＮase Ｉ処理し、２０mMＥ
ＤＴＡ（pH8.0)、0.2%ＳＤＳ、0.3M NaCl 、１ml当たり
２μg の酵母ｔＲＮＡを加えて反応を停止し、フェノー
ル抽出後、エタノール沈殿を行なった。得られたサンプ
ルは８％尿素ゲル上で電気泳動を行なった。マーカーと
してマキサムギルバート法(Methods Enzymol.、 65、 490
Maxam A.M. et al.)に従ってＧ（グアニン）とＡ（ア
デニン）の箇所で切断された断片３を用いた。その結
果、全ての核タンパク質により図１に示す１５核酸塩基
配列から成るＥ６モチーフがDNase Ｉによって切断され
なかった。このことからこのモチーフのＢ細胞特異性を
立証するためにゲルシフトアッセイを行なった。先ず、
合成されたＥ６核酸塩基配列とそれと４bp異なる変異Ｅ
６モチーフを各々［γ-32P] ＡＴＰとＴ４ポリヌクレオ
チドキナーゼで標識した。これに適当量のpoly(dI-dC)
、ＡＲＨ７７、Ｍａｎｃａ、Ｊｕｒｋａｔ、ＨｅＬａ
の４種類の細胞からの核抽出物を加えて、ＤＮase Ｉフ
ットプリンティング法で使用した緩衝液で２０μl に容
量を上げた。反応液は４℃で１５〜２０分間インキュベ
ートし、４％ＰＡＧＥ（アクリルアミド：ビスアクリル
アミド＝２９：１）上で３０分間予備電気泳動を行な
い、続いて２〜３時間、４℃、１１Ｖ/cm で泳動し、乾
燥した後、８０℃で強調スクリーンを用いてオートラジ
オグラムした。この結果、全ての細胞で共通のバンドが
見られたが、ＡＲＨ７７とＭａｎｃａではそれよりも低
分子側にさらにもう一つのバンドが見られた。これより
前者はＢ細胞特異的ではなく、後者がＢ細胞特異的転写
調節因子で、２つともＥ６モチーフに結合する。ちなみ
に、ＣＡＴアッセイ法によりこのＥ６モチーフ６コピー
でＢ細胞特異的エンハンサー活性を示すことも調べられ
た。
【００１１】MnlI-AluI 断片によるＨｅＬａ細胞でのＳ
Ｖ４０エンハンサー活性の阻害 図４に示すようにMnlI-AluI 断片の１又は４コピー、図
２中の断片２が各々コナアルブミンプロモーターの５’
側のBamHI 部位に組み込まれ、さらにその上流のSphI部
位にＳＶ４０のエンハンサーが組み込まれ、各々のＡＲ
Ｈ７７又はＨｅＬａ中でのＣＡＴアッセイ法に従って行
なった。ただし、ＳＶ４０のエンハンサーだけを含んだ
プラスミドの活性を１００％とし、平均値と標準偏差は
別々に行なわれた３回の外来遺伝子導入実験から計算さ
れた。その結果を図４に示す。MnlI-AluI 断片は、Ｈｅ
ＬａにおいてＳＶ４０のエンハンサー活性を抑制した。
このようにＥ６モチーフを含むMnlI-AluI 断片６７bpは
４コピーでＢ細胞特異的エンハンサー活性を、そして１
コピーでＢ細胞系以外に対してサイレンサー活性を示す
ことが判明した。
Ｖ４０エンハンサー活性の阻害 図４に示すようにMnlI-AluI 断片の１又は４コピー、図
２中の断片２が各々コナアルブミンプロモーターの５’
側のBamHI 部位に組み込まれ、さらにその上流のSphI部
位にＳＶ４０のエンハンサーが組み込まれ、各々のＡＲ
Ｈ７７又はＨｅＬａ中でのＣＡＴアッセイ法に従って行
なった。ただし、ＳＶ４０のエンハンサーだけを含んだ
プラスミドの活性を１００％とし、平均値と標準偏差は
別々に行なわれた３回の外来遺伝子導入実験から計算さ
れた。その結果を図４に示す。MnlI-AluI 断片は、Ｈｅ
ＬａにおいてＳＶ４０のエンハンサー活性を抑制した。
このようにＥ６モチーフを含むMnlI-AluI 断片６７bpは
４コピーでＢ細胞特異的エンハンサー活性を、そして１
コピーでＢ細胞系以外に対してサイレンサー活性を示す
ことが判明した。
【図１】本発明のエンハンサー核酸塩基配列を含む６７
塩基対のＤＮＡ配列を示す図。なお、矢印は塩基配列単
位Ｉ及びIIを示し、アンダーライン様の印はＤＮase I
フットプリンティング法で切断されなかった部分を示
す。
塩基対のＤＮＡ配列を示す図。なお、矢印は塩基配列単
位Ｉ及びIIを示し、アンダーライン様の印はＤＮase I
フットプリンティング法で切断されなかった部分を示
す。
【図２】ヒト免疫Ｈ鎖エンハンサー（特開昭６０−１２
０９９１号）の制限酵素地図及びそれら酵素の消化によ
り得られた断片及びそれら断片のＣＡＴアッセイ法によ
る相対活性を示す図。
０９９１号）の制限酵素地図及びそれら酵素の消化によ
り得られた断片及びそれら断片のＣＡＴアッセイ法によ
る相対活性を示す図。
【図３】断片３をさらに細かく分けた断片とそれら断片
のＣＡＴアッセイによる相対活性を示す図。
のＣＡＴアッセイによる相対活性を示す図。
【図４】コナアルブミンのプロモーター上流に様々な断
片を挿入したときのＣＡＴアッセイ法による相対活性を
示す図。
片を挿入したときのＣＡＴアッセイ法による相対活性を
示す図。
フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭62−296879（ＪＰ，Ａ) 特開 昭63−160587（ＪＰ，Ａ) 特開 昭60−120991（ＪＰ，Ａ) Ｎａｔｕｒｅ（1984），Ｖｏｌ．307, Ｎｏ．5949，ｐ．334−340 Ｎａｔｕｒｅ（1983），Ｖｏｌ．306, Ｎｏ．5945，ｐ．806−809 (58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名) C12N 15/12 C12N 15/11 ＤＤＢＪ／ＧｅｎＢａｎｋ／ＥＭＢＬ／Ｇ ｅｎｅＳｅｑ ＭＥＤＬＩＮＥ（ＳＴＮ)
Claims (3)
- 【請求項１】 ＤＮＡ塩基配列単位Ｉ（−ＡＡＣＴＧＡ
ＡＡ−）、II（−ＡＴＣＴＧＡＡＴ−）及びそれぞれに
相補的塩基配列より成る２種類のＤＮＡ塩基対をこの順
序で少なくとも含有し、総ＤＮＡ塩基対数が４０以下で
あるＤＮＡから成るエンハンサー。 - 【請求項２】 ＤＮＡ塩基対がＡＣＣＧＡＡＡＣＴＧＡ
ＡＡＡＧＧＣＴＴＴＴＴＴＴＡＡＣＴＡＴＣＴＧＡＡＴ
から成る塩基配列及びそれに相補的な塩基配列より成る
ＤＮＡから成る請求項１記載のエンハンサー。 - 【請求項３】 図１に示すMnlI-AluI 断片６７塩基対か
ら成るＤＮＡから成るエンハンサー。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12842191A JP3283272B2 (ja) | 1991-04-30 | 1991-04-30 | エンハンサ−核酸塩基配列 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12842191A JP3283272B2 (ja) | 1991-04-30 | 1991-04-30 | エンハンサ−核酸塩基配列 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0686677A JPH0686677A (ja) | 1994-03-29 |
| JP3283272B2 true JP3283272B2 (ja) | 2002-05-20 |
Family
ID=14984351
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP12842191A Expired - Fee Related JP3283272B2 (ja) | 1991-04-30 | 1991-04-30 | エンハンサ−核酸塩基配列 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3283272B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR100945321B1 (ko) * | 2001-02-09 | 2010-03-08 | 도쿄엘렉트론가부시키가이샤 | 성막 장치 |
-
1991
- 1991-04-30 JP JP12842191A patent/JP3283272B2/ja not_active Expired - Fee Related
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Ｎａｔｕｒｅ（１９８３），Ｖｏｌ．３０６，Ｎｏ．５９４５，ｐ．８０６−８０９ |
| Ｎａｔｕｒｅ（１９８４），Ｖｏｌ．３０７，Ｎｏ．５９４９，ｐ．３３４−３４０ |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0686677A (ja) | 1994-03-29 |
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Legal Events
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