JP2898428B2 - 精子の受精能試験キットおよび試験法 - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】この発明は、ひとの精子の受精能
試験に用いる試験用顆粒（ビーズ）を含む試験用キット
および受精能試験法に関するものである。

【０００２】

【従来の技術】ほ乳類の精子は、射精された状態では受
精能をもたず、雌性の生殖路内において先体反応を受け
て生理的機能変化をとげ、受精能を獲得するに至ること
が知られている。先体反応に際しては、先体部分の細胞
膜と外先体膜との間に融合がおこり、先体内酵素を放出
するとともに、両膜は精子からはなれ、精子は内先体膜
を露出する。また受精能は、射精された精子をインキュ
ベーションすることによっても獲得されることが判明し
ている。

【０００３】従来、例えば不妊の診断または治療を目的
とした、ひとの精子の受精能測定法としては、古くから
行なわれている方法として、精液量、精子濃度、精子の
運動性等を測定する方法があるが、これは受精能そのも
のを観察する方法ではないから、全く不正確なものであ
る。また最近の方法として、インキュベーションした精
子がハムスター卵子（ひと精子と融合する能力をもつ）
と融合するかどうかを調べる方法（ハムスターテスト）
があるが、これは操作が繁雑であり、テストを行なう機
関ごとに異なった値が出るなど再現性が良好でないとい
う、欠点がある。そのほか、種々の染色法を組み合わせ
る方法（トリプルステイン）もあるが、これも操作が繁
雑であり、また結果の信頼性が充分でない。それ故、簡
便かつ再現性があり、理論的根拠を備えた、ひとの精子
の受精能測定法の開発が望まれていた。

【０００４】この発明者は、ひとの精子の受精能測定法
を改善するために、抗原抗体反応を利用することに着目
した。そして、受精能を獲得したひと精子に現われる抗
原性部位に特異性なポリクローナル抗体およびモノクロ
ーナル抗体の製造に成功し、またその抗体を標識抗体法
（蛍光または酵素抗体法）に用いて受精能をもつ精子を
特異的に染色することに成功した（特開平２−２４２６
９７号）。この方法は、正確で理論的根拠が確かなもの
であるが、蛍光顕微鏡を使用するので、簡便さにおいて
まだ改善の余地があった。

【０００５】

【課題を解決するための手段】そこで、さらに上記抗体
を結合した顆粒を開発し、また顆粒と精子の結合によっ
てビーズの凝集が起ることを見出し、その観察に便利な
器具を採用し、それによって男性不妊の診断を容易かつ
迅速に行なうことを可能にしたのである。

【０００６】

【発明の構成】すなわち、この発明は、 （１）先体反応を起こした精子の先体部位に露出する抗
原ＭＨ−６１とのみ特異的に反応するモノクローナル抗
体ＭＨ−６１を、このモノクローナル抗体ＭＨ−６１に
対して特異性を有する抗体を介して磁性材料含有ビーズ
に結合させ、このビーズを精子と共に培養し、この培養
によって先体反応を起こすことにより先体部位の抗原Ｍ
Ｈ−６１が露出した精子を上記ビーズに対してモノクロ
ーナル抗体ＭＨ−６１を介して結合させ、その後に精子
と結合しなかったビーズの存否を観察して、その結果か
ら精子の受精能を判定することを特徴とする、精子の受
精能検査法、および （２）モノクローナル抗体ＭＨ−６１を、このモノクロ
ーナル抗体ＭＨ−６１に対して特異性を有する抗体を介
して結合させて成る、請求項１の受精検査法で使用する
磁性材料含有ビーズを提供するものである。

【０００７】上記抗体は、ひと精子先体（膜を含む）上
の抗原性部位で免疫した哺乳類（ひとを除く）の抗体産
生細胞と永久増殖性を有する細胞との融合によるハイブ
リドーマを培養し、培養物からひと精子先体（膜を含
む）上の抗原性部位に対して特異性を有する抗体を分離
採取することによって製造される（特開平２−２４２６
９７号）。上記ウエルつき器具としては、少なくとも１
個のウエルを備えた器具は名称にかかわらずすべて含ま
れる。これには、マイクロプレート、マルチディッシ
ュ、マルチトレー、血清反応板、ＥＩＡ用プレート、イ
ムノアッセイ用プレート、マイクロタイトレーションプ
レート等の名称では市販されているものが含まれる。こ
れらの器具は、プラスチック製、磁製、ガラス製、ほう
ろう製等の何れであってもよい。ウエルは、平底、Ｕ
底、Ｖ底の何れでもよいが、平底が好ましい。垂直断面
形状は、浅、中、深形の何れでもよい。水平断面形状
は、通常円形である。１器具あたりのウエルの数は任意
であり、例えば６、１２、２４、４８、５４、９６、１
０８、１４４等であり得る。また、数個の器具を組合わ
せて用いることもできる。上記培地としては、精子が生
存できる培地はすべて含まれる。以下、上記の発明を詳
細に説明する。

【０００８】（抗体の製造） １．免疫 この発明で用いる抗体を製造するには、まずひと精子先
体（膜を含む）上の抗原性部位で哺乳類の動物を免疫す
る。先体が露出したひと精子は、例えば射精された精子
を、例えばひと血清アルブミンを含有するメディウムで
前培養するか、デオキシコール酸ナトリウムのような陰
イオン界面活性剤、または陽イオン、非イオン、両性等
の界面活性剤で処理するか、Ａ２３１８７のようなイオ
ノフオアで処理することによって得られる。免疫は例え
ば次のように行なう。精子を集め、マウス、ラット等の
哺乳類動物に免疫する。哺乳類動物は、細胞融合する際
の相手の永久増殖性細胞と同系統の動物の方が望まし
い。動物の週齢は、例えばマウスでは５〜１０週齢がよ
い。性は雌雄どちらでもよい。免疫に用いるひと精子の
数は、例えばマウスの場合１匹あたり５×１０⁶〜２×
１０⁷個が好ましい。精子は例えばＰＢＳに懸濁させる
か、またはフロイントコンプリートアジュバントと１:
１の比で混合しエマルジョンにして動物の腹腔内、静脈
内、皮下等に投与するのが好ましい。この免疫操作を１
〜３週間隔で１〜５回行なう。最終免疫は、例えば精子
をＰＢＳに懸濁させ、動物の静脈内あるいは腹腔内に投
与して行なう。このようにして免疫した動物の体液また
は抗体産生細胞からは、ポリクローナル抗体が得られ
る。動物の抗体価を測定し、充分上昇したとき抗体また
は産生細胞を採取する。

【０００９】２．細胞融合 上記のようにしてひと精子で免疫した動物から抗体産生
細胞をとり出す。抗体産生細胞は、脾臓、リンパ節、末
梢血等から得られるが、脾臓が好ましい。例えば、脾臓
を最終免疫の２〜５日後に無菌的に摘出し、ダルベッコ
ーＭＥＭ培地中ではさみによって細切し脾臓細胞を浮遊
させた後、遠心分離することにより脾臓細胞を集めて用
いる。融合の相手の永久増殖性細胞としては、永久増殖
性を有する任意の細胞を用いることができるが、繁用さ
れるのは骨髄腫細胞である。永久増殖性細胞は抗体産生
細胞と同種の動物由来のものが好ましい。例えばマウス
の場合、Ｐ３Ｕ１Ｐ３Ｘ６３−Ａg８．Ｕ１（Ｐ３Ｕ
１）,Ｐ３／ＮＳ１／１−Ａg４−１（ＮＳ−１）,ＳＰ
２／０−Ａg１４（ＳＰ２）,Ｐ３Ｘ６３Ａg８（Ｘ６
３）,Ｐ３Ｘ６３−Ａg８.６５３（６５３）などが用い
られる。また、永久増殖性細胞としては、８−アザグア
ニン耐性細胞株、ヒポキサンチングアニンホスホリボシ
ルトランスフェラーゼ欠損細胞株のような、選別の際の
マーカーとなり得る特性を有するものが好ましい。これ
らの細胞株は、例えばアメリカンタイプカルチャーコレ
クション（ＡＴＣＣ）、藤沢薬品工業（株）または大日
本製薬（株）より入手可能である。融合に際しては、こ
れらの永久増殖性細胞のいずれかを増殖培地中で培養
し、融合の前に例えばダルベッコーＭＥＭ培地で洗浄後
遠心分離により集める。融合は、例えば次のように行な
う。抗体産生細胞（例えば脾臓細胞）と永久増殖性細胞
（例えば骨髄腫細胞）を細胞数比で２〜１０:１になる
ように混合し、３７℃に保ちつつポリエチレングリコー
ル（例えば平均分子量１３００〜７５００、２０〜４０
％）等の融合促進剤を徐々に加えるか、または電気パル
ス（例えば約１０００Ｖ／cmのような高電圧の直流）を
短時間作用させて細胞融合を起させる。培養液を加え融
合促進剤を希釈して融合を停止させ、遠心分離により細
胞を分離する。次に、例えば細胞をヒポキサンチン、ア
ミノプテリン、チミジンを増殖培地に加えたＨＡＴ培地
中に懸濁させ、９６ウェルマイクロテストプレートに２
００μl／ウェルずつ分注し、３７℃、ＣＯ₂５％、湿度
９５％のＣＯ₂インキュベータ中（以下、ＣＯ₂インキュ
ベータ中の培養条件は全て上記と同一とする）で培養す
る。培養液は２日間隔で半量ずつ新しいＨＡＴ培地と交
換する。約１週間培養後、交換する培地を増殖培地にヒ
ポキサンチン及びチミジンを添加したＨＴ培地に変え
る。

【００１０】３．ハイブリドーマのスクリーニング及び
クローニング 次に、ＨＴ培地中で数日間培養し、ハイブリドーマのコ
ロニーがマイクロテストプレートのウェルの半分程度ま
で広がってきた時点でどのウェルのハイブリドーマがひ
と精子に対するモノクローナル抗体を産生しているかを
スクリーニングする。スクリーニングは、例えば次のよ
うに行なう。ハイブリドーマが増殖して来ているウェル
の培養上清を一部とり、それがひと精子と反応するかど
うかを例えば酵素抗体法あるいは蛍光抗体法等の公知の
標識抗体法で調べる。次に、例えば限界希釈法や軟寒天
法等の公知の技術を用いて、ひと精子と反応するモノク
ローナル抗体を産生しているハイブリドーマをクローニ
ングして単一のモノクローナル抗体を産生するハイブリ
ドーマの集団を選択する。クローニング及びスクリーニ
ングは２回以上繰り返すことが望ましい。

【００１１】４．モノクローナル抗体の製造 上記のようにして得られたハイブリドーマをインビトロ
（培養器具内または栄養培地中）及びインビボ（生体内
または動物組織中）で培養することによりモノクローナ
ル抗体を産生させる。培養は、例えば次のように行な
う。インビトロでの培養では、増殖培地の様な適当な培
地を用い、例えばＣＯ₂インキュベータ中でハイブリド
ーマを培養する。ハイブリドーマが増殖限度まで増殖し
た時点で培養液を採取し、遠心分離のような固液分離手
段でハイブリドーマと培養上清を分離する。培養上清中
のモノクローナル抗体は目的によっては精製せずに用い
ることも可能であるが、分離する場合には例えば硫酸ア
ンモニウムで塩析し、０.０２Ｍりん酸緩衝液（pＨ７.
２）で透析後、ジエチルアミノエチルセルロースカラム
等に通して精製する。培養上清から分離したハイブリド
ーマは、例えばジメチルスルホキシド（５〜１０％v／
v）及び牛胎児血清（１０〜２０％v／v）を添加したダ
ルベッコーＭＥＭの様な適当な培地中に１〜１０×１０
⁶個／mｌの細胞密度で懸濁させ、適当なアンプルに入れ
て徐々に−８０℃以下に凍結させることにより、生きた
ままの状態で長期保存することが可能である。特に、例
えば液体窒素等の超低温下ではハイブリドーマを半永久
的に保存することができる。ハイブリドーマをインビボ
で培養する場合には、任意の動物にハイブリドーマを移
植するが、細胞融合に用いた脾臓細胞を採取した動物と
同種のものを使用するのが好ましい。例えばＢＡＬＢ／
ｃマウスの場合には、ハイブリドーマの移植の１〜３週
間前に２,６,１０,１４−テトラメチルペンタデカン
（プリスタン）０.５mｌを腹腔内に注射しておき、マウ
ス１匹あたり２〜１０×１０⁶個のハイブリドーマを腹
腔内に注射する。１〜２週間後にマウスの腹腔内にモノ
クローナル抗体を高濃度に含んだ腹水が貯留し腹部が肥
大してくるので、腹水を採取し培養上清の場合と同様に
精製する。

【００１２】５．モノクローナル抗体の特性 上記のようにして得られたモノクローナル抗体の特性の
検討は、例えば以下のようにして行なう。まず、モノク
ローナル抗体がひと精子のどの部位と反応するかを調べ
るために、公知の標識抗体法、例えば蛍光抗体法または
酵素抗体法を行なう。次にモノクローナル抗体の特異性
の検討を、ひと精しょう、マウス精子等との反応性を調
べる公知の標識免疫測定法（例えば酵素免疫測定法）に
よって行う。

【００１３】（試験用顆粒の製造）この発明で使用する
試験用顆粒を製造するには、適当な顆粒、例えばクロマ
ト用ゲルに、物理的または化学的にこの発明で用いる抗
体を結合させるが、好ましいのは顆粒にあらかじめこの
発明で用いる抗体に対して特異性を有する抗体（以下、
２次抗体という）、プロテインＡ、プロテインＧ等を化
学的に結合させておき、この第２抗体とこの発明で用い
る抗体との特異的結合により、この発明で用いる抗体を
結合させる方法である。顆粒としては、ガラス、アガロ
ース、セファロース、アガロース充填多孔性けいそう
土、親水性共重合アクリルゲル、ポリスチレン等からな
るビーズが用いられるが、好ましいのは可磁化物質（例
えばＦe₂Ｏ₃）を例えばコア内に含ませることにより超
常磁性をもたせたものである。顆粒の形状は球形、不定
破砕形等任意であるが、球形が好ましい。粒径は特に制
限されず、例えば数〜数十〜数百マイクロメートルであ
り得る。上記のような顆粒に２次抗体、プロテインＡま
たはプロテインＧを化学的に結合させるには、顆粒を活
性化してから結合させるのが好ましい。顆粒の活性化
は、この種の顆粒に蛋白質を結合させる際の任意の活性
化法で行なうことができる。このような活性化法には、
トシルクロリド法、ブロムシアン法、ブロムアセチル化
法、グルタールアルデヒド法等等がある。トシル活性化
顆粒の中には市販されているものもある。このような活
性化、および活性化した顆粒と２次抗体、プロテイン
Ａ、プロテインＧ等の蛋白質との結合は、常法によって
行なうことができる。

【００１４】また、既に２次抗体、プロテインＡ、プロ
テインＧ等を結合した顆粒が市販されている。このよう
な顆粒としては、日本ダイナル（株）輸入、（株）ベリ
タス販売のダイナビーズＭ−４５０、Ｍ−２８０のそれ
ぞれひつじ抗マウスＩgＧコートタイプ、やぎ抗マウス
ＩgＧコートタイプ、ひつじ抗ラットＩgＧコートタイ
プ、ひつじ抗家兎ＩgＧコートタイプ、ポリサイエンス
・インコーポレイテッドのやぎ抗マウスＩgＧ（Ｈ＆
Ｌ）カルボキシレートビーズ、やぎ抗家兎ＩgＧ（Ｈ＆
Ｌ）カルボキシレートビーズ、プロテインＡカルボキシ
レートビーズ、やぎ抗家兎ＩgＧ（Ｈ＆Ｌ）ミクロマグ
ネットパーテイクル、プロテインＡミクロマグネットパ
ーテイクル、ひつじ抗マウスＩgＧ（Ｈ＆Ｌ）ミクロマ
グネットパーテイクルが含まれる。上記のような顆粒に
この発明で用いる抗体を結合させるには、例えば緩衝液
のような適当な媒質中でけんだくした顆粒を好ましくは
非特異的吸着を除くため蛋白質溶液で処理後、抗体を含
む腹水または精製した抗体の溶液を混合する。

【００１５】（試験法）この発明の試験法を実施するに
は、被検者から精液を採取し、精子けんだく液とする。
ウエルつき器具（例えば９６ウエルマイクロプレートま
たは類似のプレート）のウエル内に精子懸濁液の希釈系
列を作製する。この中に上記のように製造した試験用顆
粒を加えた後、混和等により顆粒を均一に分散させる。
例えば６時間および２４時間インキュベーション後に顕
微鏡のような手段により顆粒の状態を観察する。受精能
を有する精子（抗原性部位が露出した精子）が一定数以
上存在すると顆粒と精子の多結合が誘発され、やがて顆
粒が凝集し、かつ精子結合のない顆粒または顆粒群が存
在しなくなる。一定数の顆粒を凝集させることができる
精子濃度を調べることにより受精能獲得精子の比率を調
べることができる。例えば凝集の判定にはウエル内の中
央、上、下、左、右の５視野を鏡検（×１００）し、３
視野以上に精子結合のない顆粒もしくは顆粒群が存在し
ない場合を凝集があるとする判定を行うことができる。

【００１６】（キット）上記の試験を実施するには、実
施に必要な材料をキットにしておくのが便利である。こ
のようなキットは、前述した（イ）の試験用顆粒、
（ロ）ウエルつき器具および（ハ）の精子インキュベー
ション培地を含み得る。インキュベーション培地は、無
機塩、有機酸塩、糖、血清アルブミン、抗生物質、指示
薬等を含み得る。そのほか、キットには、（ニ）試験
管、遠心管、その他類似のガラス容器、（ホ）ピペット
または類似の吸引器具、（ヘ）顕微鏡等を含ませること
ができる。なお、上記試験用顆粒の代りに、その製造原
料となる固体顆粒と抗体を組合わせることができる。

【００１７】

【効果】この発明によると、抗体を固体顆粒に結合させ
て試験用顆粒とし、これに精子を結合させて、一定量の
固体顆粒を凝集させるのに必要な精子量を求めることに
より、受精能を評価できるようにしたので、放射能、蛍
光等の繁雑な測定を必要としない。また、ウエル中で精
子の結合・凝集から観察まで行なうので、一旦結合した
精子が脱離するおそれがない。それ故、短時間で容易・
確実に受精能の試験ができる。また、低倍率の顕微鏡下
に直接観察できるので、結果の信頼性が高い。さらに、
凝集を観察するので、計数のようなわずらわしさがな
い。したがって、この発明は、不妊の診断の迅速化およ
び客観化に大きく寄与するものである。

【００１８】

【実施例】以下、この発明を、参考例および実施例によ
りさらに詳細に説明する。

【００１９】 参考例１（抗ヒト精子モノクローン抗体の作成）ひと精子懸濁液の調製 実験に使用したメディウムは、上口らの方法[上口勇次
郎他：日本不妊学会雑誌，３０，５７(1985)]に従い、
０.３％ひと血清アルブミン（以下ＨＳＡと略す。シグ
マ社、Ｆr．Ｖ）を添加した変法ビッガース・ホワイト
ン・ホワイテインガム培地（以下m−ＢＷＷと略す）を
用いた。成人男子より用手法で採取した精液を３７℃、
５％ＣＯ₂含有空気で３０〜６０分間液化させた。この
各０.５mｌを小試験管にとり、この上にm−ＢＷＷ２mｌ
を重層した。精液との接触面を増すため、小試験管を約
３０゜に傾け、パラフィルムで蓋をして３７℃、５％Ｃ
Ｏ₂含有空気中で６０分間精子の遊出を待った。上清を
マイクロピペッター（ギルソン社、ピペットマンp−１
０００）で吸い取り、精子をm−ＢＷＷで２回洗浄し
た。得られた精子にm−ＢＷＷ（ＨＳＡ濃度３.５％を１
mｌ加えて精子懸濁液とした。得られた精子はＡ２３１
８７処理をほどこして受精能獲得、またはＩＡＭを露出
させる処理を行なった。

【００２０】Ａ２３１８７による処理 Ａ２３１８７により処理を施した精子は先体反応を起こ
す割合が高くなることが電顕的に観察されている。そこ
で上口らの方法(前記に同じ。)に従い、メディウム中に
最終濃度１０μＭとなるようにＡ２３１８７（シグマ
社、遊離酸）を加え、１０分間反応させた後m−ＢＷＷ
で２回洗浄して免疫に使用した。

【００２１】マウスへの免疫 上記処理を施したひと精子をそれぞれ１回当り１×１
０⁷個用意し、Ｃ５７ＢＬ／６マウスに対して免疫を行
なった。免疫は第０日、第２１日、第２８日行ない、以
降抗体価が上昇するまで２週間おきに免疫を行なった。
１回目はフロイント完全アジュバント、２回目はフロイ
ント不完全アジュバントとエマルジョンを作成してか
ら、３回目以降はＰＢＳで懸濁したままで投与した。２
回目以降は投与後３日目に眼底採血により血清を採取し
抗体価を間接蛍光抗体法（後述）により測定した。十分
抗体価が上昇したところで最終投与後３日目に脾臓を摘
出し、融合に使用した。

【００２２】細胞融合とクローニング 融合、クローニングは定法に従った。得られた脾細胞
をポリエチレングリコール４０００（半井特級）存在下
でＰ３Ｕ１マウスミエローマ細胞株（藤沢薬品工業
（株））と融合させてハイブリドーマを作成した。この
中からひと精子と反応する抗体を産生するものをスクリ
ーニングし、陽性株を限界希釈法によりクローニングし
て、モノクローナル抗体産生株として樹立した（ＭＨ６
１、ＦＥＲＭＢＰ−２２５７）。

【００２３】間接蛍光抗体法による染色 抗体のスクリーニングや抗体価の測定には間接蛍光抗
体法を用いた。１×１０⁶精子／mｌの精子懸濁液５０μ
ｌに対し培養上清又は抗血清のＰＢＳによる２０倍希釈
液５０μｌを加え、室温で２時間反応させた。ＰＢＳで
２回洗浄後、第２抗体として５％うし新生児血清（以下
ＮＢＣＳと略す）を含むＰＢＳで１２５倍に希釈したＦ
ＩＴＣ標識やぎ抗マウスＩg（Ａ＋Ｍ＋Ｇ）（カッペル
社）１０μｌを加え室温で１時間反応させた。その後Ｐ
ＢＳで２回洗浄し、蛍光顕微鏡で観察した。

【００２４】抗体産生細胞の増殖（インビボ） 対数増殖期にあるハイブリドーマを集めこれをプリス
タン（シグマ社、p−１４０３）を予め（１０〜２０日
前）０.５mｌ投与してあるＣＢＦl（Ｂalb／c×Ｃ５７
ＢＬ／６）雄性マウスに、１匹当り１−２×１０⁷細胞
投与する。細胞は約２週間をかけて腹水型癌細胞として
増殖してくるので、体重が４０g以上となったところで
腹水を採取し、−８０℃で凍結した後液体窒素中に保存
した。

【００２５】参考例２（抗ヒト精子モノクローナル抗体
の認識する抗原の存在部位） （１）精漿との交叉反応の検討ヒト精漿の調製 成人男子より得た精液を３７℃、５％ＣＯ₂含有空気
中で３０〜６０分間静置して液化させる。この精液にm
−ＢＷＷ溶液を当量加え、１５００×gで５分間遠心し
精子を取り除く。上清をもう一度遠心して完全に精子を
取り除いたものを精漿として実験に用いた。

【００２６】精漿と抗体との反応性 精漿との反応性はＥＬＩＳＡ（固相酵素免疫測定法）
法を用いて測定した。陽性コントロールとしてはひと精
子をプレート上にグルタールアルデヒド（和光純薬）で
固定したものを、陰性コントロールとしてはm−ＢＷＷ
溶液を用いた。抗原を含む溶液５０μｌをＥＬＩＳＡプ
レート（ファルコン、３９１１）上にのせ、３７℃で一
晩放置して乾燥させ、抗原を吸着させた。０.０５％ツ
イーン２０（半井一級）を含むトリス緩衝液食塩水（p
Ｈ７.４以下ツイーン−ＴＢＳと略す）で３回洗浄後５
％ミルク（森永スキムミルク）を含むＰＢＳ２００μｌ
をのせ、１時間室温で放置してブロックを行なった。ツ
イーン−ＴＢＳで３回洗浄後、第一抗体として各抗体腹
水１％ＢＳＡ−ＰＢＳで１０００倍希釈したものを５０
μｌ加えて２時間反応させ、洗浄後１％ＢＳＡ−ＰＢＳ
で１０００倍希釈したペルオキダーゼ標識やぎ抗マウス
Ｉg（Ａ＋Ｍ＋Ｇ）（カッペル）５０μｌを加え、室温
で２時間反応させた。洗浄後、基質を用いて発色させ
た。基質溶液としては、o−フェニレンジアミン（半井
一級）を、０.１％、Ｈ₂Ｏ₂を１.２％含む０.１Ｍくえ
ん酸緩衝液（pＨ４.５）を１００μｌプレートに加えて
遮光しながら３０分間反応させた。その後１２.５％Ｈ₂
ＳＯ₄ ５０μｌで反応を停止させ、４５０nmの吸光度を
測定した。ひと精漿に対してＭＨ６１の抗体は反応性を
示さなかった。

【００２７】（２）Ａ２３１８７処理による人工的な受
精能の獲得に伴う精子の抗体との反応性の変化ひと精子懸濁液の調製 参考例１の方法に従った。Ａ２３１８７をこの懸濁液
中に最終濃度１０μＭとなるように加え１０分間反応さ
せた。その後５００×gで遠心分離してＡ２３１８７を
除き、m−ＢＷＷで２回洗浄したものをＡ２３１８７精
子とした。

【００２８】ひと精子との反応様式の検討 間接蛍光抗体法により精子を染色した。この精子を蛍
光顕微鏡で観察し、精子の染色パターンと、その存在割
合を計測した。

【００２９】計測結果を表１に示す。

【表１】 表１（部位、％） 洗浄 Ａ２３１８７処理 抗体 Ｗ T H A M AT Ｎ Ｗ T Ｈ Ａ E M P TE AT Ｎ ＤＥ 98 2 - - - − − 90 8 − − - - - ２ − − MH61 − - 3 1 - − 96 11 - 45 22 - 2 1 − ２ 13 （但し、Ｗは全体、Ｔは尾部、Ｈは頭部、Ａは先体、Ｅ
は赤道部、Ｍは中片、Ｐは後域、ＴＥは尾部及び赤道
部、ＡＴは先体及び尾部、Ｎは無染色を示す）

【００３０】ＭＨ６１抗体は、新鮮な精子とはほとんど
反応せず、精子をＡ２３１８７で処理した場合に反応を
示した。ＭＨ６１抗体は洗浄精子とはほとんど反応しな
いが、Ａ２３１８７で処理した精子とは高率で反応し
た。また、その結合部位はアクロソーム部分や頭部に限
局されていた。このような結果は、マウス精子において
報告されている受精能獲得精子に特異的なＯＢＦ１３抗
原とよく類似していた。もしも、ＭＨ６１により認識さ
れる抗原が、受精に関与する物質であれば、抗体の添加
によって受精は阻害されるはずである。そこで、ＭＨ６
１抗体の精子機能に及ぼす影響を検討した。

【００３１】参考例３（各モノクローナル抗体の精子機
能に及ぼす影響）ひと精子懸濁液の調製 参考例１の方法に従った。採取した精子は１０μＭの
Ａ２３１８７と１０分間反応させ、実験に使用した。

【００３２】抗体の精子凝集活性の観察 活性をマイクロタイター法により、測定した。１％Ｂ
ＳＡ（シグマ社、Ｆr．Ｖ）を含むＰＢＳ（ＢＳＡ−Ｐ
ＢＳ）で５００倍希釈した抗体腹水を、血球凝集反応用
プレートの小孔でＢＳＡ−ＰＢＳで２倍連続希釈を行な
った。それぞれの抗体希釈液５０μｌに５０μｌの精子
懸濁液（１×１０⁶精子／mｌ）を加えて２倍希釈し、３
７℃、５％ＣＯ₂含有空気中で１時間反応させた。小孔
中の精子について位相差顕微鏡（×１６０）で凝集性を
観察した。なお、陰性コントロールとしてＰ３Ｕ１マウ
スミエローマ細胞株の腹水を同様に希釈して用いた。抗
体の精子凝集活性を第２表に示す。

【００３３】

【表２】 第２表 希釈率 腹水 １０００ ２０００ ４０００ ８０００ １６０００ ３２０００ Ｐ３Ｕ１ − − − − − − ＹＰ ＋＋＋ ＋＋＋ ＋＋＋ ＋＋＋ ＋＋ ＋＋ ＭＨ６１ − − − − − −

【００３４】陽性コントロールとして用いた抗ひと精子
抗体ＹＰには強い精子凝集活性が認められたが、陰性コ
ントロールとして用いたＰ３Ｕ１やＭＨ６１には全く精
子凝集活性は認められなかった。

【００３５】実施例１（試験用顆粒の製造）ビーズへのＩgＧ共有結合法 （１） ビーズの活性化法（p−トルエンスルホニルク
ロリドによるトシル活性化） １）無希釈のダイナビーズＭ−４５０アンコーテッド
（３０ｍｇ／ｍｌ）適量をドライアセトンに加え、連続
洗浄を行なう（２１０〜１０００ｍｇのビーズの場合
は、容量を７.０ｍｌする。）。 ステップ１：水／アセトン＝７／３ １０ｍｌ ステップ２： 水／アセトン＝６／４ １０ｍｌ ステップ３： 水／アセトン＝２／８ １０ｍｌ ステップ４−６：水／アセトン＝０／１０ １０ｍｌ ステップ７： アセトンに再懸濁 各ステップごと磁石でビーズを集め（１分間）、上清を
捨てる。試験管に次の水／アセトン混液を加え、５分間
懸濁する。 ２） ０.７５ミリモルのピリジンと０.３ミリモルのp−
トルエンスルホニルクロリドを無希釈のダイナビーズＭ
−４５０アンコーテッド１ｍｌ当たりに加える。（１０
００ｍｇを用いる場合は、２ｍｌのピリジンと２ｇ p−
トルエンスルホニルクロリド／８ｍｌアセトンを使
用。）操作はドラフト内で行なう。 ３） 撹拌しながら室温で２０時間インキュベーション
する。 ４） 磁石でビーズを集めアセトンに再懸濁する。ビー
ズを集め、アセトンで３回洗浄する。 ５） １）のステップ１〜３を遡り（３→２→１）水に
戻す。 ６） ビーズを集め、上清を捨て、１mＭ ＨＣｌ １０ｍ
ｌに再懸濁する。以上のようにして調製された活性ビー
ズは、１mＭ ＨＣｌ中４℃保存で１２ケ月間安定であ
る。 （注） 以上の方法で活性化してある製品（１４００３
／１４００４ダイナビーズＭ−４５０トシルアクテイベ
イテッド）が市販されている。

【００３６】（２） ビーズへの共有結合法 １） 活性ビーズの１mＭ ＨＣｌ懸濁液を無菌蒸留水で
１回洗浄する。 ２） 必要なら簡単に撹拌して、活性ビーズの均一な懸
濁液にする。 ３） 精製済抗体を０.２Ｍほう酸緩衝液（pＨ９.５）に
１５０μｇ／ｍｌの濃度に溶かす。 ４） 等容量の活性ビーズ懸濁液を上記ＩgＧ溶液に加え
る（抗体／ビーズ＝７５μｇ／１５ｍｇ）。 ５） ゆっくり撹拌しながら２２℃で２４時間インキュ
ベーションする。 ６） 磁石でビーズを集め、磁石を付けたまま上清を捨
てる。 ７） 以下の方法で洗浄する。 ０.１Ｍ ＰＢＳ ５ｍｌ、１０分間。 ０.１％ツイーン２０含有１Ｍエタノールアミン−
ＨＣｌ（pＨ９.５） ５ｍｌ、２時間（ツイーン２０は使用直前に緩衝液に加
える）。 ０.１Ｍ ＮaＣｌ、０.１％ＢＳＡ、０.０１％メル
チオレート、０.１％ツイーン２０含有０.０５Ｍトリス
（pＨ７.５）５ｍｌ、１２時間。 ツイーン２０のないの緩衝液５ｍｌ、２時間。 ８） 磁石でビーズを集める。上清を捨て、ＰＢＳ／Ｂ
ＳＡに約４×１０⁸ビーズ／ｍｌ（３０ｍｇ／ｍｌ）
か、希望の濃度に懸濁する。得られたＩgＧ標識ビーズ
は４℃保存で少なくとも６ケ月間は安定である。保存緩
衝液は０.１Ｍ ＮaＣｌ、０.１％ＢＳＡ含有０.０５Ｍ
トリス。

【００３７】モノクロナール抗体精製法 腹水原液に飽和硫安を加えて最終濃度２０％硫安溶液
とし、１時間静置する（４℃）。１００００ｇ、１５分
間、４℃で遠心する。沈澱を捨て、上清に飽和硫安を加
えて最終濃度４０％硫安溶液とする（４℃）。１時間静
置する。１００００ｇ、１５分間、４℃で遠心する。上
清を捨て、沈澱を腹水原液の２倍容量のプロテインＡカ
ラム用吸着緩衝液（ＰＩＥＲＣＥ社）に溶解させる。１
００００ｇ、１５分間、４℃で遠心する。上清をとり、
プロテインＡアフイニテイクロマトグラフィにかける。
腹水原液１ｍｌ当たり約３〜４ｍｇのＩgＧがとれる。
溶出液は脱塩（Ｇ２５カラムを通した後、透析する）後
凍結乾燥させる。こうして、精製をモノクロナール抗体
を得る。

【００３８】脱脂粉乳によるビーズの前処理法 ダイナビーズＭ−４５０シープ・アンテイマウスＩg
Ｇ₁（Ｆc）の４×１０⁸／ｍｌ懸濁液を使用前によく懸
濁させる。１０００ｇで５分間遠心する。上清を捨て、
同量の５％脱脂粉乳入ＰＢＳ液（ＰＢＳに最終濃度５％
となるように脱脂粉乳を加え、６０℃で１時間加温溶解
後−２０℃で凍結保存する）（約２ｍｌ）に懸濁させ、
３７℃で１時間振盪加温する。１０００ｇで５分間遠心
し、ＰＢＳで３回洗浄後、ＰＢＳで約４×１０⁸／ｍｌ
に調整する。

【００３９】試験用ビーズの調製 前処理したビーズ５０μｌをとり、同量のＭＨ６１１
抗体（腹水原液）を加える。抗体（腹水原液）を加え
る。３７℃で１時間振盪しながらビーズに抗体を結合さ
せた後に、これにＰＢＳ（−）を１ｍｌ加えて１０００
ｇ、５分間、４℃で遠心する。沈澱をＰＢＳ（−）でさ
らに２回洗浄する。このようにして得られたＭＨ６１−
ビーズを４×１０⁸／ｍｌとなるように５％うし新生児
血清を含むＰＢＳ（−）に懸濁する。使用前に３×１０
⁶／ｍｌにm−ＢＷＷに希釈する。ビーズは４℃で保存す
るが、なるべく１週間以内に使い切るようにする。

【００４０】実施例２（試験法） （用意するもの） 滅菌管（a） （５０ｍｌ、住友ベークライト）（精液を
入れるため） m−ＢＷＷ（別記） 滅菌管（b） （１５ｍｌ、住友ベークライト）精液量を
量るため） ガラス試験管（c） （直径１２.５ｍｍ、１０ｍｌ）
（精子の遊出用） ガラス遠心管（d） （１０ｍｌ）（精子の遠心濃縮用） ９６ウエルマイクロプレート（ビーズテスト用） トーマの血球盤 試験管立て ピペットマン（Ｐ−１０００、Ｐ−２００、Ｐ−２０） 遠心器（１０００ｇの出るもの） 顕微鏡（×１００、観察用） ＭＨ６１ビーズ（３×１０⁶ｍｌ、m−ＢＷＷ中）

【００４１】

【表３】 抗生物質はペニシリンＧカリウム５０００ＩＵ／ｍｌ
および硫酸ストレプトマイシン５ｍｇ／ｍｌ。 乳酸ナトリウムはＤＬ、６０％シロップ中。 ひと血清アルブミンはフラクションＶ（シグマ社）。

【００４２】１〜１０までを加えた溶液をストック液と
して４０〜５０ｍｌずつ分注し、−２０℃にて凍結保存
しておく。実験前日に必要量を室温に戻し、ＮaＨＣ
Ｏ₃、ＨＳＡを加え、濾過滅菌後３７℃、５％ ＣＯ₂で
一晩平衡化する。

【００４３】（精子懸濁液の調製）健常成人男子より、
用手法により精液を予め滅菌したチューブに集める。精
液は精子、前立腺液、精嚢腺液等の混合したものであ
り、射精直後はこれらが均一になっていない。そこで、
３７℃で３０〜６０分間放置しておく（液化）。滅菌済
試験管（c）４本（精液量による異なる）を３０℃に寝
かせ、m−ＢＷＷ（０.３％ＨＳＡ）２ｍｌを入れる。次
に、この下層に液化の終わった精液を０.５ｍｌずつゆ
っくり注入する。アルミキャップをして３７℃、５％
ＣＯ₂で６０分間静置する。運動性の良い精子がm−ＢＷ
Ｗ中に遊出してくるので上清約１.５ｍｌずつをゆっく
り吸い取り遠心管（d）に移す。５００ｇ、５分間室温
で遠心し上清を吸い、沈澱した精子をm−ＢＷＷ（０.３
％ＨＳＡ）に懸濁して遠心する。この操作をもう１度繰
り返す。２回目の沈澱にm−ＢＷＷ（３.５％ＨＳＡ）１
ｍｌを加え、懸濁する。そのうちの１０μｌを取り、ト
ーマの血球盤にのせ精子数を計測する。精子数に応じて
もう１度遠心し、沈澱にm−ＢＷＷ（３.５％ＨＳＡ）を
加え、最終濃度４×１０⁶／ｍｌになるように精子懸濁
液を調製する。

【００４４】（検査方法）市販の９６ウエルプレート
（滅菌済）の５つのウエルを用いて検査を行なう。２番
目から５番目のウエルにｍ−ＢＷＷ（３.５％ＨＳＡ
中）培養液を各々１００μｌずつ加え、次いで遊出によ
り得られた洗浄精子（４×１０⁶精子／ｍｌ）懸濁液１
００μｌを１番目および２番目のウエルに加える。２番
目のウエル内の液を採取したピペットを用いて２回液を
出し入れすることにより混和し、２番目のウエル内の液
を１００μｌ３番目のウエル内に加える。３番目のウエ
ル内の液を採取したピペットを用いて２回液を出し入れ
することにより混和し、３番目のウエル内の液を４番目
のウエル内に加える。この操作を順次行い、５番目のウ
エル内から１００μｌを取り除き捨てる。この様にして
５つのウエルに精子懸濁液４×１０⁶精子／ｍｌの×
１、×２、×４、×８および×１６の希釈系列を作成す
る。次いでＭＨ６１抗体結合ビーズ懸濁液（１.５×１
０⁶ビーズ／ｍｌ）を５つのウエルに１０μｌずつ加
え、ウエル内でビーズが均等に分散する様に直ちにピペ
ットの先端で各ウエル内を混和する。この９６ウエルプ
レートを３７℃、５％ＣＯ₂条件下で培養し、６時間後
および２４時間後に倒立型顕微鏡を用いて鏡検（×１０
０）し、ビーズと精子の反応の状態を観察する。反応系
に添加したビーズに対し、一定量の以上の先体反応精子
が存在するとビーズは強く凝集するため、ウエル内で精
子結合のないビーズあるいはビーズ群は存在しないが、
先体反応精子が少ない時には精子結合のないビーズまた
はビーズ群が存在する。ウエル内の中央、上、下、左、
右の５視野を鏡検し、５視野中３視野以上に精子結合の
ないビーズまたはビーズ群が存在しない時、凝集がある
と判定する。結果は次に示す６段階の評価を行う。 ５：×１６までの希釈系列において凝集が認められる。 ４：× ８までの希釈系列において凝集が認められる。 ３：× ４までの希釈系列において凝集が認められる。 ２：× ２までの希釈系列において凝集が認められる。 １：× １のウエルのみに凝集が認められる。 ０：× １においても凝集が認められない。

【００４５】

【００４６】実施例３（キット） 滅菌管（５０ｍｌ） 滅菌管（１５ｍｌ） ガラス試験管（直径１２.５ｍｍ、１０ｍｌ） ガラス遠心管（１０ｍｌ） ９６ウエルマイクロプレート トーマの血球盤 試験管立て ピペットマン（Ｐ−１０００、Ｐ−２００、Ｐ−２０） ＭＨ６１ビーズ（３×１０⁷ｍｌ、０.３ｍｌ） ｍ−ＢＷＷ原液（２２ｍｌ／バイアル、１０バイアル） ＮａＨＣＯ₃液（２ｍｌ／アンプル、１０アンプル） ヒト血清アルブミン（０.３３３ｇ／バイアル、１０バ
イアル） ｍ−ＢＷＷ（３.５％ＨＳＡ中）の調製法： ｍ−ＢＷＷ原液が入っているバイアルに市販滅菌注射筒
を用いてＮａＨＣＯ₃液を加え、混和する。正確に４ｍ
ｌを分取し、ヒト血清アルブミン液に加える。 ｍ−ＢＷＷ（０.３％ＨＳＡ中）の調製法： ｍ−ＢＷＷ（３.５％ＨＳＡ中）から正確に１.６ｍｌを
分取し、ｍ−ＢＷＷ原液が入っているバイアルに加え
る。

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 先体反応を起こした精子の先体部位に露
   出する抗原ＭＨ−６１とのみ特異的に反応するモノクロ
   ーナル抗体ＭＨ−６１を、このモノクローナル抗体ＭＨ
   −６１に対して特異性を有する抗体を介して磁性材料含
   有ビーズに結合させ、このビーズを精子と共に培養し、
   この培養によって先体反応を起こすことにより先体部位
   の抗原ＭＨ−６１が露出した精子を上記ビーズに対して
   モノクローナル抗体ＭＨ−６１を介して結合させ、その
   後に精子と結合しなかったビーズの存否を観察して、そ
   の結果から精子の受精能を判定することを特徴とする、
   精子の受精能検査法。
2. 【請求項２】 モノクローナル抗体ＭＨ−６１を、この
   モノクローナル抗体ＭＨ−６１に対して特異性を有する
   抗体を介して結合させて成る、請求項１の受精検査法で
   使用する磁性材料含有ビーズ。