JP2021535128A - 抗pd−1抗体に対して不応性のnsclc患者の治療 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2018年8月31日に出願された米国仮特許出願第62/725,976号および2018年9月4日に出願された米国仮特許出願第62/726,919号の優先権を主張し、これらは参照によりそれら全体が本明細書に組み込まれる。
本出願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出され、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる配列表を含む。2019年8月23日に作成された該ASCIIコピーは、116983−5043−WO_ST25.txtという名前で、サイズは168キロバイトである。
(a)外科的切除、針生検、コア生検、小生検、または複数の腫瘍断片もしくは生検からのものを含む、患者のNSCLC腫瘍からの腫瘍とTIL細胞との混合物を含有する試料を取得するための他の手段から第1のTIL集団を取得および/または受容するステップと、
(c)腫瘍断片を、第1の細胞培養培地と接触させるステップと、
(d)第1の細胞培養培地中で第1のTIL集団の初期拡張を行って、第2のTIL集団を取得するステップであって、第2のTIL集団が、第1のTIL集団よりも数が少なくとも5倍多く、第1の細胞培養培地が、IL−2を含む、ステップと、
(e)第2の細胞培養培地中で第2のTIL集団の急速拡張を行って、第3のTIL集団を取得するステップであって、第3のTIL集団が、急速拡張の開始から7日後に第2のTIL集団よりも数が少なくとも50倍多く、第2の細胞培養培地が、IL−2、OKT−3(抗CD3抗体)、および任意に照射された同種異系末梢血単核細胞(PBMC)を含み、急速拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、ステップと、
(f)第3のTIL集団を採取するステップと、
(g)第3のTIL集団の治療上有効な部分を、NSCLCを有する患者に投与するステップと、を含み、
NSCLCが、抗PD−1抗体による治療に対して不応性である、方法を提供する。
(a)患者から1つ以上の腫瘍を切除するステップであって、1つ以上の腫瘍が、第1のTIL集団を含む、ステップと、
(b)1つ以上の腫瘍を、腫瘍断片に断片化するステップと、
(c)腫瘍断片を、第1の細胞培養培地と接触させるステップと、
(d)第1の細胞培養培地中で第1のTIL集団の初期拡張を行って、第2のTIL集団を取得するステップであって、第2のTIL集団が、第1のTIL集団よりも数が少なくとも5倍多く、第1の細胞培養培地が、IL−2を含む、ステップと、
(e)第2の細胞培養培地で第2のTIL集団の急速拡張を行って、第3のTIL集団を取得するステップであって、第3のTIL集団が、急速拡張の開始から7日後に第2のTIL集団よりも数が少なくとも50倍多く、第2の細胞培養培地が、IL−2、OKT−3(抗CD3抗体)、および任意に照射された同種異系末梢血単核細胞(PBMC)を含み、急速拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、ステップと、
(f)第3のTIL集団を採取するステップと、
(g)第3のTIL集団の治療上有効な部分を、癌を有する患者に投与するステップと、を含み、
癌が、抗PD−1抗体による治療に対して不応性である、方法を提供する。
(a)対象から取得された1つ以上の腫瘍を複数の腫瘍断片に処理することによって、対象から切除された1つ以上の腫瘍から第1のTIL集団を取得および/または受容することと、
(b)腫瘍断片を閉鎖系に付加することと、
(c)IL−2を含む細胞培養培地中で第1のTIL集団を培養することによって第1の拡張を行って、第2のTIL集団を産生することであって、第1の拡張が、第1のガス透過性表面積を提供する密閉容器内で行われ、第1の拡張が、約3〜113〜14日間行われて、第2のTIL集団を取得し、第2のTIL集団が、第1のTIL集団よりも数が少なくとも50倍多く、ステップ(b)からステップ(c)への移行(transition)が、系を開くことなく起こる、第1の拡張を行うことと、
(d)第2のTIL集団の細胞培養培地を追加のIL−2、OKT−3、および抗原提示細胞(APC)で補足することによって第2の拡張を行って、第3のTIL集団を産生することであって、第2の拡張が、約7〜117〜14日間行われて、第3のTIL集団を取得し、第3のTIL集団が、第2のTIL集団と比較して、エフェクターT細胞および/またはセントラルメモリーT細胞の増加した亜集団を含む、治療的TIL集団であり、第2の拡張が、第2のガス透過性表面積を提供する密閉容器内で行われ、ステップ(c)からステップ(d)への移行が、系を開くことなく起こる、第2の拡張を行うことと、
(e)ステップ(d)から取得された治療的TIL集団を採取することであって、ステップ(d)からステップ(e)への移行が、系を開くことなく起こる、採取することと、
(f)ステップ(e)から採取されたTIL集団を注入バッグに移すことであって、ステップ(e)から(f)への移行(transfer)が、系を開くことなく起こる、移すことと、
(g)凍結保存プロセスを使用して、ステップ(f)から採取されたTIL集団を含む注入バッグを凍結保存することと、
(h)治療上有効な投与量の第3のTIL集団を、ステップ(g)の注入バッグから対象に投与することと、を含む、方法を提供する。
配列番号1は、ムロモナブの重鎖のアミノ酸配列である。
急速拡張プロトコル(REP)によってエクスビボで培養されたTILを利用した養子細胞療法は、黒色腫などの癌を有する患者の宿主免疫抑制後の養子細胞療法に成功している。現在の注入受容パラメーターは、TILの組成(例えば、CD28、CD8、またはCD4陽性)の読み取り値、ならびにREP産物の拡張の数値倍率および生存率に依存している。
他に定義されない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解される意味と同じである。本明細書で参照されるすべての特許および刊行物は、参照によりそれら全体が組み込まれる。
これらの特徴のうちのいくつかを含むプロセス2Aとして知られる例示的なTILプロセスが図2に示され、プロセス1Cに対する本発明のこの実施形態の利点のうちのいくつかが図FおよびGに記載される。プロセス2Aの実施形態が図1に示される。
一般に、TILは、最初に患者の腫瘍試料(「一次TIL」)から取得され、次いで本明細書に記載されるさらなる操作のためにより大きな集団に拡張され、任意に凍結保存され、本明細書に概説されるように再刺激され、任意にTIL健康の指標として表現型および代謝パラメーターについて評価される。
いくつかの実施形態では、本方法は、対象/患者への投与時に複製サイクルを増加させることができ、したがって、より古いTIL(すなわち、対象/患者への投与前により多くの複製ラウンドをさらに受けたTIL)よりも追加の治療上の利益を提供し得る、若いTILを取得することを提供する。若いTILの特徴は、文献、例えば、Donia,at al.,Scandinavian Journal of Immunology,75:157−167(2012)、Dudley et al.,Clin Cancer Res,16:6122−6131(2010)、Huang et al.,J Immunother,28(3):258−267(2005)、Besser et al.,Clin Cancer Res,19(17):OF1−OF9(2013)、Besser et al.,J Immunother 32:415−423(2009)、Robbins,et al.,J Immunol 2004;173:7125−7130、Shen et al.,J Immunother,30:123−129(2007)、Zhou,et al.,J Immunother,28:53−62(2005)、およびTran,et al.,J Immunother,31:742−751(2008)に記載されており、これらのすべては参照によりそれら全体が本明細書に組み込まれる。
場合によっては、例えば、図1に示されるような、例えばステップBから取得されるTIL集団を含む、第1の拡張から取得されるバルクTIL集団は、以下に論じられるプロトコルを使用して、直ちに凍結保存され得る。代替的に、第2のTIL集団と称される、第1の拡張から取得されるTIL集団は、第2の拡張(REPと称されることもある拡張を含み得る)に供され、次いで以下に論じられるように凍結保存され得る。同様に、遺伝子改変TILが療法に使用される場合、第1のTIL集団(バルクTIL集団と称されることもある)または第2のTIL集団(いくつかの実施形態では、REP TIL集団と称される集団を含み得る)は、拡張前または第1の拡張後、および第2の拡張前に、好適な治療のために遺伝子改変に供され得る。
本明細書に記載の拡張方法は、一般に、当該技術分野で知られているように、高用量のサイトカイン、特にIL−2を含む培養培地を使用する。
いくつかの実施形態では、TIL細胞集団は、採取および初期バルク処理後、例えば、ステップAおよびステップB、ならびに図1に示されるようにステップCと称される移行後に数が拡張される)。このさらなる拡張は、本明細書では第2の拡張と称され、これは、当該技術分野で一般に急速拡張プロセス(REP、および図1のステップDに示されるプロセス)と称される拡張プロセスを含み得る。第2の拡張は、一般に、フィーダー細胞、サイトカイン源、および抗CD3抗体を含むいくつかの成分を含む培養培地を使用して、ガス透過性容器内で達成される。
実施形態では、本明細書に記載される第2の拡張手順(例えば、図1のステップDに記載されるような拡張、ならびにREPと称されるものを含む)は、REP TIL拡張中および/または第2の拡張中に過剰のフィーダー細胞を必要とする。多くの実施形態では、フィーダー細胞は、健康な献血者からの標準的な全血単位から取得される末梢血単核細胞(PBMC)である。PBMCは、Ficoll−Paque勾配分離などの標準的な方法を使用して取得される。
本明細書に記載の拡張方法は、一般に、当該技術分野で知られているように、高用量のサイトカイン、特にIL−2を含む培養培地を使用する。
第2の拡張ステップ後、細胞を採取することができる。いくつかの実施形態では、TILは、例えば、図1に提供されるように、1、2、3、4、またはそれ以上の拡張ステップ後に採取される。いくつかの実施形態では、TILは、例えば、図1に提供されるように、2つの拡張ステップ後に採取される。
図1に例示的な順序で提供され、上記および本明細書に詳細に概説されるステップA〜Eが完了した後、細胞は、患者への投与に使用するために容器に移される。いくつかの実施形態では、治療上十分な数のTILが上記の拡張方法を使用して取得されると、それらは、患者への投与に使用するために容器に移される。
1.抗CD3抗体
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の拡張方法で使用される培養培地(REPと称されるものを含む、例えば、図1を参照)はまた、抗CD3抗体を含む。IL−2と組み合わせた抗CD3抗体は、TIL集団のT細胞活性化および細胞分裂を誘導する。この効果は、完全長抗体、FabおよびF(ab′)2断片で見られ、前者が一般的に好まれる。例えば、Tsoukas et al.,J.Immunol.1985,135,1719(参照によりその全体が本明細書に組み込まれる)を参照されたい。
実施形態では、TNFRSFアゴニストは、4−1BB(CD137)アゴニストである。4−1BBアゴニストは、当該技術分野で知られている任意の4−1BB結合分子であり得る。4−1BB結合分子は、ヒトまたは哺乳動物の4−1BBに結合することができるモノクローナル抗体または融合タンパク質であり得る。4−1BBアゴニストまたは4−1BB結合分子は、任意のアイソタイプ(例えば、IgG、IgE、IgM、IgD、IgA、およびIgY)、クラス(例えば、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1、およびIgA2)またはサブクラスの免疫グロブリン分子の免疫グロブリン重鎖を含み得る。4−1BBアゴニストまたは4−1BB結合分子は、重鎖および軽鎖の両方を有し得る。本明細書で使用される場合、結合分子という用語はまた、抗体(完全長抗体を含む)、モノクローナル抗体(完全長モノクローナル抗体を含む)、ポリクローナル抗体、多重特異性抗体(例えば、二重特異性抗体)、ヒト、ヒト化またはキメラ抗体、および抗体断片、例えば、Fab断片、F(ab′)断片、Fab発現ライブラリーによって産生された断片、上記のうちのいずれかのエピトープ結合断片、ならびに4−1BBに結合する操作された形態の抗体、例えば、scFv分子を含む。実施形態では、4−1BBアゴニストは、完全なヒト抗体である抗原結合タンパク質である。実施形態では、4−1BBアゴニストは、ヒト化抗体である抗原結合タンパク質である。いくつかの実施形態では、ここに開示される方法および組成物において使用するための4−1BBアゴニストには、抗4−1BB抗体、ヒト抗4−1BB抗体、マウス抗4−1BB抗体、哺乳動物抗4−1BB抗体、モノクローナル抗4−1BB抗体、ポリクローナル抗4−1BB抗体、キメラ抗4−1BB抗体、抗4−1BBアドネクチン、抗4−1BBドメイン抗体、一本鎖抗4−1BB断片、重鎖抗4−1BB断片、軽鎖抗4−1BB断片、抗4−1BB融合タンパク質、およびそれらの断片、誘導体、コンジュゲート、多様体、またはバイオシミラーが含まれる。アゴニスト抗4−1BB抗体は、強力な免疫応答を誘導することが知られている。Lee,et al.,PLOS One 2013,8,e69677。好ましい実施形態では、4−1BBアゴニストは、アゴニスト、抗4−1BBヒト化、または完全ヒトモノクローナル抗体(すなわち、単一の細胞株に由来する抗体)である。実施形態では、4−1BBアゴニストは、EU−101(Eutilex Co.Ltd.)、ウトミルマブ、もしくはウレルマブ、またはそれらの断片、誘導体、コンジュゲート、多様体、もしくはバイオシミラーである。好ましい実施形態では、4−1BBアゴニストは、ウトミルマブもしくはウレルマブ、またはそれらの断片、誘導体、コンジュゲート、多様体、もしくはバイオシミラーである。
実施形態では、TNFRSFアゴニストは、OX40(CD134)アゴニストである。OX40アゴニストは、当該技術分野で知られている任意のOX40結合分子であり得る。OX40結合分子は、ヒトまたは哺乳動物のOX40に結合することができるモノクローナル抗体または融合タンパク質であり得る。OX40アゴニストまたはOX40結合分子は、任意のアイソタイプ(例えば、IgG、IgE、IgM、IgD、IgA、およびIgY)、クラス(例えば、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1、およびIgA2)、またはサブクラスの免疫グロブリン分子の免疫グロブリン重鎖を含み得る。OX40アゴニストまたはOX40結合分子は、重鎖および軽鎖の両方を有し得る。本明細書で使用される場合、結合分子という用語はまた、抗体(完全長抗体を含む)、モノクローナル抗体(完全長モノクローナル抗体を含む)、ポリクローナル抗体、多重特異性抗体(例えば、二重特異性抗体)、ヒト、ヒト化またはキメラ抗体、および抗体断片、例えば、Fab断片、F(ab′)断片、Fab発現ライブラリーによって産生された断片、上記のうちのいずれかのエピトープ結合断片、ならびにOX40に結合する操作された形態の抗体、例えば、scFv分子を含む。実施形態では、OX40アゴニストは、完全なヒト抗体である抗原結合タンパク質である。実施形態では、OX40アゴニストは、ヒト化抗体である抗原結合タンパク質である。いくつかの実施形態では、ここで開示される方法および組成物において使用するためのOX40アゴニストには、抗OX40抗体、ヒト抗OX40抗体、マウス抗OX40抗体、哺乳動物抗OX40抗体、モノクローナル抗OX40抗体、ポリクローナル抗OX40抗体、キメラ抗OX40抗体、抗OX40アドネクチン、抗OX40ドメイン抗体、一本鎖抗OX40断片、重鎖抗OX40断片、軽鎖抗OX40断片、抗OX40融合タンパク質、およびそれらの断片、誘導体、コンジュゲート、多様体、またはバイオシミラーが含まれる。好ましい実施形態では、OX40アゴニストは、アゴニスト、抗OX40ヒト化、または完全ヒトモノクローナル抗体(すなわち、単一の細胞株に由来する抗体)である。
任意に、細胞生存率アッセイは、当該技術分野で知られている標準的なアッセイを使用して、第1の拡張(初期バルク拡張と称されることもある)の後に行うことができる。例えば、トリパンブルー排除アッセイは、死細胞を選択的に標識し、生存率の評価を可能にするバルクTILの試料上で行うことができる。生存率の試験に使用する他のアッセイには、アラマーブルーアッセイおよびMTTアッセイが含まれるが、これらに限定されない。
いくつかの実施形態では、細胞数および/または生存率が測定される。CD3、CD4、CD8、およびCD56などであるがこれらに限定されないマーカー、ならびに本明細書に開示または記載される任意の他のマーカーの発現は、例えば、BD Bio−sciences(BD Biosciences,San Jose,CA)から市販されているものに限定されない抗体を用いたフローサイトメトリーによって、FACSCanto(商標)フローサイトメーター(BD Biosciences)を使用して測定することができる。細胞は、使い捨てのcチップ血球計数器(VWR,Batavia,IL)を使用して手動でカウントすることができ、生存率は、トリパンブルー染色を含むがこれに限定されない当該技術分野で知られている任意の方法を使用して評価することができる。細胞生存率はまた、参照によりその全体が本明細書に組み込まれるUSSN 15/863,634に基づいてアッセイすることができる。
(i)第1のTIL集団を取得することと、
(ii)IL−2および任意にOKT−3を含む細胞培養培地中で第1のTIL集団を培養することによって第1の拡張を行い、第2のTIL集団を産生することと、
(iii)第2のTIL集団の細胞培養培地を追加のIL−2、OKT−3、および抗原提示細胞(APC)で補足することによって第2の拡張を行い、第3のTIL集団を産生することであって、第3のTIL集団は、第2のTIL集団より数が少なくとも50倍多い、第2の拡張を行うことと、
(iv)第3のTIL集団を採取、洗浄、および凍結保存することと、
(v)凍結保存されたTILを極低温で保存することと、
(vi)第3のTIL集団を解凍して、解凍された第3のTIL集団を提供することと、
(vii)少なくとも3日の追加の拡張期間(reREP期間と称されることもある)にわたって第3の集団の細胞培養培地をIL−2、OKT−3、およびAPCで補足することによって、解凍された第3のTIL集団の一部の追加の第2の拡張を行うことであって、第3の拡張を行って第4のTIL集団を取得し、第4のTIL集団中のTILの数を、第3のTIL集団中のTILの数と比較して比を求める、追加の第2の拡張を行うことと、
(viii)ステップ(vii)の比に基づいて、解凍されたTILの集団が患者への投与に適しているかどうかを判断することと、
(ix)第4のTIL集団中のTILの数と第3のTIL集団中のTILの数との比が、ステップ(viii)において5:1より大きいと判断された場合、治療上有効な投与量の解凍された第3のTIL集団を患者に投与することと、を含む。
(i)凍結保存された第1のTIL集団の一部を取得することと、
(ii)凍結保存された第1のTIL集団の一部を解凍することと、
(iii)IL−2、OKT−3、および抗原提示細胞(APC)を含む細胞培養培地中で第1のTIL集団の一部を、少なくとも3日の追加の拡張期間(reREP期間と称されることもある)培養することによって第1の拡張を行い、第2のTIL集団を産生することであって、第1のTIL集団からの部分を、第2のTIL集団と比較して、TILの数の比を求め、第2のTIL集団中のTILの数と第1のTIL集団の一部におけるTILの数との比が、5:1より大きい、第1の拡張を行うことと、
(iv)ステップ(iii)での比に基づいて、第1のTIL集団が、患者への治療的投与での使用に適しているかどうかを判断することと、
(v)第2のTIL集団中のTILの数と第1のTIL集団中のTILの数との比が、ステップ(iv)において5:1より大きいと判断された場合、第1のTIL集団が、治療的投与での使用に適していると判断することと、を含む、方法を提供する。
実施形態では、上記で論じられ、図1に例示されたものを含む、TILを拡張するための方法は、約5,000mL〜約25,000mLの細胞培地、約5,000mL〜約10,000mLの細胞培地、または約5,800mL〜約8,700mLの細胞培地を使用することを含み得る。いくつかの実施形態では、培地は、無血清培地である。いくつかの実施形態では、第1の拡張における培地は、無血清である。いくつかの実施形態では、第2の拡張における培地は、無血清である。いくつかの実施形態では、第1の拡張および第2の拡張における培地は、両方とも無血清である。実施形態では、TILの数を拡張することは、たった1種類の細胞培養培地を使用する。任意の好適な細胞培養培地、例えば、AIM−V細胞培地(L−グルタミン、50μMの硫酸ストレプトマイシン、および10μMの硫酸ゲンタマイシン)細胞培養培地(Invitrogen,Carlsbad CA)を使用することができる。これに関して、本発明の方法は、TILの数を拡張するために必要な培地の量および培地の種類の数を有利に低減する。実施形態では、TILの数を拡張することは、3日または4日に1回以下の頻度で細胞にフィードすることを含み得る。ガス透過性容器内の細胞の数を拡張することは、細胞を拡張するために必要なフィーディング頻度を低減することによって、細胞の数を拡張するために必要な手順を簡素化する。
いくつかの実施形態では、TILは、高親和性T細胞受容体(TCR)、例えば、MAGE−1、HER2、もしくはNY−ESO−1などの腫瘍関連抗原で標的されるTCR、または腫瘍関連細胞表面分子(例えば、メソセリン)もしくは系統制限細胞表面分子(例えば、CD19)に結合するキメラ抗原受容体(CAR)を含むがこれらに限定されない追加の機能を含むように任意に遺伝子操作される。
上で論じられるように、図1に示されるステップA〜Eで例示されるように、凍結保存は、TIL拡張プロセス全体の様々な時点で起こり得る。いくつかの実施形態では、第2の拡張後の拡張されたTIL集団(例えば、図1のステップDに従って提供される)を、凍結保存することができる。凍結保存は、一般に、TIL集団を凍結溶液、例えば85%補体不活化AB血清および15%ジメチルスルホキシド(DMSO)に入れることによって達成することができる。溶液中の細胞を極低温バイアルに入れ、−80℃で24時間保存し、任意に、凍結保存のためにガス状窒素冷凍庫に移す。Sadeghi,et al.,Acta Oncologica 2013,52,978−986を参照されたい。いくつかの実施形態では、TILは、5% DMSO中で凍結保存される。いくつかの実施形態では、TILは、5% DMSOを加えた細胞培養培地中で凍結保存される。いくつかの実施形態では、TILは、実施例FおよびGに提供される方法に従って凍結保存される。
本発明は、TIL培養プロセス中の閉鎖系の使用を提供する。かかる閉鎖系は、微生物汚染の防止および/または低減を可能にし、より少ないフラスコの使用を可能にし、かつコスト削減を可能にする。いくつかの実施形態では、閉鎖系は、2つの容器を使用する。
バルクTIL集団またはTILの拡張集団のいずれかを、任意に凍結保存することができる。いくつかの実施形態では、凍結保存は、治療的TIL集団上で起こる。いくつかの実施形態では、凍結保存は、第2の拡張後に採取されたTIL上で起こる。いくつかの実施形態では、凍結保存は、図1の例示的なステップFにおいて、TIL上で起こる。いくつかの実施形態では、TILは、注入バッグ内で凍結保存される。いくつかの実施形態では、TILは、注入バッグに入れる前に凍結保存される。いくつかの実施形態では、TILは、凍結保存され、注入バッグに入っていない。いくつかの実施形態では、凍結保存は、凍結保存培地を使用して行われる。いくつかの実施形態では、凍結保存培地は、ジメチルスルホキシド(DMSO)を含有する。これは一般に、TIL集団を凍結溶液、例えば85%補体不活化AB血清および15%ジメチルスルホキシド(DMSO)に入れることによって達成される。溶液中の細胞を極低温バイアルに入れ、−80℃で24時間保存し、任意に、凍結保存のためにガス状窒素冷凍庫に移す。Sadeghi,et al.,Acta Oncologica 2013,52,978−986を参照されたい。
実施形態では、本開示の方法を使用して拡張されたTILは、薬学的組成物として患者に投与される。実施形態では、薬学的組成物は、無菌緩衝液中のTILの懸濁液である。本開示のPBMCを使用して拡張されたTILは、当該技術分野で知られている任意の好適な経路によって投与することができる。いくつかの実施形態では、T細胞は、単一の動脈内または静脈内注入として投与され、これは好ましくは、およそ30〜60分続く。他の好適な投与経路には、腹腔内、髄腔内、およびリンパ内投与が含まれる。
治療の方法は、最初のTIL収集およびTILの培養から始まる。かかる方法は両方とも、例えば、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる、Jin et al.,J.Immunotherapy,2012,35(3):283−292によって当該技術分野で説明されている。治療方法の実施形態は、実施例を含む以下のセクション全体に記載されている。
本明細書に記載の組成物および方法は、非小細胞肺癌(NSCLC)を治療するための方法において使用することができ、NSCLCは、抗PD−1抗体による治療に対して不応性である。いくつかの実施形態では、抗PD−1抗体には、例えば、ニボルマブ(BMS−936558,Bristol−Myers Squibb;Opdivo(登録商標))、ペムブロリズマブ(ラムブロリズマブ、MK03475またはMK−3475、Merck;Keytruda(登録商標))、イピリムマブ(Yervoy(登録商標))、ヒト化抗PD−1抗体JS001(ShangHai JunShi)、モノクローナル抗PD−1抗体TSR−042(Tesaro,Inc.)、ピジリズマブ(抗PD−1 mAb CT−011、Medivation)、抗PD−1モノクローナル抗体BGB−A317(BeiGene)、および/または抗PD−1抗体SHR−1210(ShangHai HengRui)、ヒトモノクローナル抗体REGN2810(Regeneron)、ヒトモノクローナル抗体MDX−1106(Bristol−Myers Squibb)、および/またはヒト化抗PD−1 IgG4抗体PDR001(Novartis)が含まれるが、これらに限定されない。いくつかの実施形態では、PD−1抗体は、クローン:RMP1−14(ラットIgG)−BioXcellカタログ番号BP0146に由来する。本明細書に記載のステップA〜Fに従って産生されたTILとの同時投与方法での使用に適した他の好適な抗体は、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第8,008,449号に開示された抗PD−1抗体である。いくつかの実施形態では、抗体またはその抗原結合部分は、PD−L1に特異的に結合し、PD−1との相互作用を阻害し、それにより免疫活性を増加させる。PD−L1に結合し、PD−1とPD−L1との間の相互作用を破壊し、抗腫瘍免疫応答を刺激する当該技術分野で知られている任意の抗体が含まれる。例えば、PD−L1を標的とし、臨床試験中の抗体には、BMS−936559(Bristol−Myers Squibb)およびMPDL3280A(Genentech)が含まれる。PD−L1を標的とする他の好適な抗体は、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第7,943,743号に開示されている。PD−1またはPD−L1に結合し、PD−1/PD−L1相互作用を破壊し、抗腫瘍免疫応答を刺激する任意の抗体が含まれることは、当業者には理解されるであろう。
プログラム死1(PD−1)は、T細胞、B細胞、ナチュラルキラー(NK)T細胞、活性化単球、および樹状細胞によって発現される288アミノ酸の膜貫通免疫チェックポイント受容体タンパク質である。CD279としても知られるPD−1は、CD28ファミリーに属し、ヒトでは第2染色体上のPdcd1遺伝子によってコードされる。PD−1は、1つの免疫グロブリン(Ig)スーパーファミリードメイン、膜貫通領域、ならびに免疫受容体チロシンベースの阻害モチーフ(ITIM)および免疫受容体チロシンベースのスイッチモチーフ(ITSM)を含有する細胞内ドメインからなる。PD−1とそのリガンド(PD−L1およびPD−L2)は、Keir,et al.,Annu.Rev.Immunol.2008,26,677−704に記載されているように、免疫寛容において重要な役割を果たすことが知られている。PD−1は、T細胞の免疫応答を負に調節する阻害シグナルを提供する。PD−L1(B7−H1またはCD274としても知られる)およびPD−L2(B7−DCまたはCD273としても知られる)は、腫瘍細胞および間質細胞上に発現され、PD−1を発現する活性化T細胞が遭遇する可能性があり、T細胞の免疫抑制につながる。PD−L1は、ヒト第9染色体上のCd274遺伝子によってコードされる290アミノ酸の膜貫通タンパク質である。例えば、Topalian,et al.,N.Eng.J.Med.2012,366,2443−54に記載される最近の臨床研究で実証されているように、PD−1阻害剤、PD−L1阻害剤、および/またはPD−L2阻害剤の使用による、PD−1とそのリガンドPD−L1およびPD−L2との間の相互作用をブロックすることで、免疫抵抗を克服することができる。PD−L1は、多くの腫瘍細胞株上で発現されるが、PD−L2は、主に樹状細胞およびいくつかの腫瘍株上で発現される発現される。T細胞(活性化後にPD−1を誘導的に発現する)に加えて、PD−1は、B細胞、ナチュラルキラー細胞、マクロファージ、活性化単球、樹状細胞上でも発現される。
実施形態では、本発明は、TILの集団で癌を治療する方法を含み、患者は、本開示によるTILの注入の前に非骨髄破壊的化学療法で予め治療される。実施形態では、本発明は、非骨髄破壊的化学療法で予め治療された患者の癌の治療に使用するためのTILの集団を含む。実施形態では、TILの集団は、注入による投与用である。実施形態では、非骨髄破壊的化学療法は、シクロホスファミド60mg/kg/日で2日間(TIL注入の27日前および26日前)、ならびにフルダラビン25mg/m2/dで5日間(TIL注入の27日前〜23日前)である。実施形態では、本開示による非骨髄破壊的化学療法およびTIL注入(0日目)の後、患者は、生理学的許容範囲まで8時間ごとに720,000IU/kgで静脈内的にIL−2(PROLEUKINとして市販されている、アルデスロイキン)の静脈内注入を受ける。ある特定の実施形態では、TILの集団は、IL−2と組み合わせて癌を治療する際に使用するためのものであり、IL−2は、TILの集団の後に投与される。
実施形態では、IL−2レジメンは、高用量IL−2レジメンを含み、高用量IL−2レジメンは、治療的TIL集団の治療有効部分を投与した翌日から静脈内投与されるアルデスロイキン、またはそのバイオシミラーもしくは多様体を含み、アルデスロイキンまたはそのバイオシミラーもしくは多様体が、0.037mg/kgまたは0.044mg/kgIU/kg(患者の体重)の用量で、耐性まで8時間ごとに最大14用量にわたって15分間のボーラス静脈内注入を使用して投与される。9日間の休止後、さらに14用量、合計最大28用量にわたってこのスケジュールを繰り返すことができる。いくつかの実施形態では、IL−2は、1、2、3、4、5、または6用量で投与される。いくつかの実施形態では、IL−2は、最大6用量の最大投与量で投与される。
この実施例は、非小細胞肺癌(NSCLC)を含む様々な腫瘍タイプに由来する腫瘍浸潤リンパ球(TIL)の培養を含むプロトコルで使用するための組織培養培地の調製手順を説明する。この培地は、本出願および実施例に記載されているTILのうちのいずれかの調製に使用することができる。
次の試薬を冷蔵から取り出し、37℃の水浴中で温めた(RPMI1640、ヒトAB血清、200mM L−グルタミン)。ろ過される容量に適した0.2μmフィルターユニットの上部に各成分を添加することによって、以下の表18に従ってCM1培地を調製した。4℃で保存する。
調製したCM1を冷蔵庫から取り出すか、または上記のセクション7.3に従って新鮮なCM1を調製する。AIM−V(登録商標)を冷蔵庫から取り出し、調製したCM1を無菌培地ボトル内で等量のAIM−V(登録商標)と混合することによって、必要な量のCM2を調製した。使用日に3000IU/mLのIL−2をCM2培地に添加した。使用日に3000IU/mLのIL−2を含む十分な量のCM2を作製した。CM2培地ボトルにその名前、調製者のイニシャル、ろ過/調製日、2週間の有効期限をラベル付けし、組織培養に必要になるまで4℃で保存した。
使用が必要な日にCM3を調製した。CM3は、AIM−V(登録商標)培地と同じであり、使用日に3000IU/mLのIL−2で補足した。AIM−VのボトルまたはバッグにIL−2ストック溶液を直接添加することによって、実験のニーズに十分な量のCM3を調製した。軽く振ってよく混ぜた。AIM−Vに添加した直後に、ボトルに「3000IU/mL IL−2」のラベルを付ける。過剰のCM3が存在する場合は、培地名、調製者のイニシャル、培地の調製日、およびその有効期限(調製後7日)のラベルを付けたボトル内で4℃で保存した。4℃で7日間保存した後、IL−2で補足された培地を廃棄した。
CM4は、CM3と同じであり、2mM GlutaMAX(商標)(最終濃度)が追加で補足された。1LのCM3ごとに、10mLの200mM GlutaMAX(商標)を添加した。AIM−VのボトルまたはバッグにIL−2ストック溶液およびGlutaMAX(商標)ストック溶液を直接添加することによって、実験のニーズに十分な量のCM4を調製した。軽く振ってよく混ぜた。AIM−Vに添加した直後に、ボトルに「3000IL/nil IL−2およびGlutaMAX」のラベルを付けた。過剰のCM4が存在する場合は、培地名、「GlutaMAX」、およびその有効期限(調製後7日)のラベルを付けたボトル内で4℃で保存した。4℃で7日間保存した後、IL−2で補足された培地を廃棄した。
この実施例は、実施例A〜GのTILプロセスと組み合わせた、追加のT細胞成長因子として機能するIL−2、IL−15、およびIL−21サイトカインの使用を説明する。
この実施例は、本明細書に記載の例示的な方法において同種異系フィーダー細胞として使用するためのガンマ線照射末梢単核細胞(PBMC、MNCとしても知られる)の個々のロットを適格性確認するための新規の簡略化された手順を説明する。
TILのREPには、γ線を照射し、成長を停止させたMNCフィーダー細胞が必要であった。フィーダーMNCの膜受容体は、抗CD3(クローンOKT3)抗体に結合し、REPフラスコ内のTILに架橋し、TILを刺激して拡張させる。フィーダーロットは、個々のドナーから採取した全血の白血球アフェレーシスから調製した。白血球アフェレーシス産物を、Ficoll−Hypaque上で遠心分離に供し、洗浄し、照射し、GMP条件下で凍結保存した。
フィーダーロットを、1)共培養でTILを100倍超拡張する能力、および2)複製不全の2つの基準で評価した。
実験プロトコル
−2/3日目、TIL株の解凍
CM2培地を調製した。37℃の水浴中でCM2を温めた。3000IU/mLのIL−2で補足された40mLのCM2を調製した。使用まで保温する。IL−2を含まない20mLの予熱したCM2を、使用したTIL株の名前のラベルが付いた2本の50mL円錐管の各々に入れた。LN2ストレージから2つの指定されたpre−REP TIL株を取り出し、バイアルを組織培養室に移した。少量の氷が残るまで、37℃の水浴内の密封されたジッパーストレージバッグ内にバイアルを入れて解凍した。
試験されるフィーダーロットの数に十分なCM2培地を調製した。(例えば、一度に4つのフィーダーロットを試験するために、800mLのCM2培地を調製した)。上記で調製したCM2の一部を分注し、それを細胞の培養のために3000IU/mLのIL−2で補足した。(例えば、一度に4つのフィーダーロットを試験するために、3000IU/mLのIL−2を含む500mLのCM2培地を調製する)。
OKT3のストック溶液(1mg/mL)を4℃の冷蔵庫から取り出し、BSCに入れた。mini−REPの培地では、最終濃度30ng/mLのOKT3を使用した。
フィーダー細胞を調製する前に、各フラスコにラベルを付け、フラスコにCM2培地を充填した。フラスコを37℃の加湿した5% CO2インキュベーターに入れ、残りの成分を添加するのを待つ間、培地を保温した。一旦フィーダー細胞が調製されると、各フラスコ内のCM2に成分が添加される。
このプロトコルについて試験されたロットあたり78×106フィーダー細胞の最小値が必要であった。SDBBによって凍結された各1mLバイアルには、凍結時に100×106個の生細胞を有していた。LN2ストレージからの解凍時の50%の回収率を仮定すると、ロットあたり少なくとも2つの1mLバイアルのフィーダー細胞を解凍して、各REPに推定100×106個の生細胞を与えることが推奨された。代替的に、1.8mLバイアルで供給された場合、1つのバイアルだけで十分なフィーダー細胞が提供された。
TIL細胞を1.3×106細胞/mLから1.3×105細胞/mLに希釈した。4.5mLのCM2培地を15mLの円錐管に添加した。インキュベーターからTIL細胞を取り出し、10mLの血清ピペットを使用して十分に再懸濁した。1.3×106細胞/mLのTIL懸濁液から0.5mLの細胞を取り出し、15mLの円錐管中の4.5mLの培地に添加した。TILストックバイアルをインキュベーターに戻した。よく混ぜた。第2のTIL株に対して繰り返した。
単一フィーダーロット用に予熱した培地を入れたフラスコを、インキュベーターからBSCに移した。1mLのピペットチップで数回上下にピペッティングすることによってフィーダー細胞を混合し、そのフィーダーロットの各フラスコに1mL(1.3×107細胞)を移した。60μLのOKT3作用ストック(10μg/mL)を各フラスコに添加した。2つの対照フラスコをインキュベーターに戻した。
5日目、培地変更
3000IU/mLのIL−2を含むCM2を調製した。各フラスコに10mLが必要である。10mLピペットを使用して、3000IU/mLのIL−2を含む10mLの温かいCM2を各フラスコに移した。フラスコをインキュベーターに戻し、7日目まで直立させてインキュベートした。試験したすべてのフィーダーロットについて繰り返した。
インキュベーターからフラスコを取り出し、BSCに移し、フラスコの底部の細胞層を乱さないように注意する。フラスコの底部で成長する細胞を乱すことなく、各試験フラスコから10mLの培地を取り出し、各対照フラスコから15mLの培地を取り出した。
フィーダー対照フラスコの7日目のカウントを完了した後、3000IU/mLのIL−2を含有する15mLの新鮮なCM2培地を対照フラスコの各々に添加した。対照フラスコをインキュベーターに戻し、14日目まで直立位置でインキュベートした。
インキュベーターからフラスコを取り出し、BSCに移し、フラスコの底部の細胞層を乱さないように注意した。フラスコの底部で成長する細胞を乱すことなく、各対照フラスコからおよそ17mLの培地を除去した。5mLの血清ピペットを使用して、残りの培地に細胞を再懸濁し、よく混合して細胞の塊をすべて破壊した。各フラスコの容量を記録した。
結果
γ線照射の線量は、フィーダー細胞を複製不全にするのに十分であった。すべてのロットは、評価基準を満たすことが予想され、また0日目と比較して、REP培養の7日目に残っているフィーダー細胞の総有効数の低減を示した。
フィーダー細胞の各ロットについて試験された各複製TIL株について、以下の承認基準が満たされた。
MNCフィーダーロットが上で概説された承認基準のうちのいずれかを満たさなかった場合は、以下のステップを実行してロットを再試験し、単純な実験者エラーを原因として除外する。
この実施例は、本明細書に記載の例示的な方法において同種異系フィーダー細胞として使用するためのガンマ線照射末梢単核細胞(PBMC)の個々のロットを適格性確認するための新規の簡略化された手順を説明する。この実施例は、TILの臨床ロットの産生に使用するための照射されたPBMC細胞ロットの評価のためのプロトコルを提供する。照射された各PBMCロットは、個々のドナーから調製した。100以上の適格性確認プロトコルの過程で、すべての場合において、SDBB(San Diego Blood Bank)からの照射されたPBMCロットは、REPの7日目にTILを100倍より多く拡張することが示された。この修正された適格性確認プロトコルは、SDBBから照射されたドナーPBMCロットに適用することを意図しており、これをさらに試験して、受け取ったガンマ線の線量がそれらを複製不全にするのに十分であることを検証した。14日間にわたって複製不全が維持されたことが実証されると、ドナーPBMCロットは、TILの臨床ロットを産生するための使用に「適格」であるとみなされた。
TILの現在の標準REPには、γ線を照射し、成長を停止させたPBMCが必要であった。PBMCの膜受容体は、抗CD3(クローンOKT3)抗体に結合し、培養中のTILに架橋し、TILを刺激して拡張させる。PBMCロットは、個々のドナーから採取した全血の白血球アフェレーシスから調製した。白血球アフェレーシス産物を、Ficoll−Hypaque上で遠心分離に供し、洗浄し、照射し、GMP条件下で凍結保存した。
7.2.1照射されたPBMCロットの評価基準は、それらの複製不全であった。
フィーダーロットは、直立したT25組織培養フラスコを使用して、TILと共培養するかのようにmini−REP形式で試験した。対照ロット:7.2.1の基準を満たすことが歴史的に示されている照射PBMCの1ロットを、対照として実験ロットと並行して実行した。試験した照射ドナーPBMCの各ロットについて、複製したフラスコを実行した。
0日目
試験されるドナーPBMCの各ロット用に約90mLのCM2培地を調製した。CM2を37℃の水浴中で保温した。6×106IU/mLのIL−2のアリコートを解凍した。CM2培地をBSCに戻し、フードに入れる前に70% EtOHで拭いた。試験したPBMCの各ロットについて、約60mLのCM2を別々の無菌ボトルに取り出した。解凍した6×106IU/mLストック溶液からのIL−2をこの培地に添加し、最終濃度を3000IU/mLにした。このボトルに「CM2/IL2」(または同様のもの)のラベルを付けて、補足されていないCM2と区別した。
抗CD3(OKT3)のストック溶液を4℃の冷蔵庫から取り出し、BSCに入れた。mini−REPの培地では、最終濃度30ng/mLのOKT3を使用した。1mg/mLのストック溶液から抗CD3(OKT3)の10μg/mLの作用溶液を調製した。必要になるまで冷蔵庫に入れた。
フラスコあたり19mLのCM2/IL−2をラベル付けされたT25フラスコに添加し、細胞を調製しながら37℃の加湿した5% CO2インキュベーターにフラスコを入れた。
LN2ストレージから試験されるPBMCロットのバイアルを回収した。これらを−80℃に置くか、または解凍する前にドライアイス上で保持した。解凍される各ロットについて、30mLのCM2(IL−2補足なし)を、50mLの円錐管に入れた。解凍されるPBMCの異なるロット番号で各管にラベルを付けた。管にキャップをしっかりと閉め、使用する前に37℃の水浴に入れた。必要に応じて、50mLの円錐管をBSCに戻し、フードに入れる前に70% EtOHで拭いた。
2つのラベル付きT25フラスコを、組織培養インキュベーターからBSCに戻した。抗CD3/OKT3の10μg/mLバイアルをBSCに戻した。各フラスコに1mLの1.3×107PBMC細胞懸濁液を添加した。各フラスコに60μLの10μg/mL抗CD3/OKT3を添加した。キャップをしたフラスコを組織培養インキュベーターに戻し、乱すことなく14日間成長させた。次のロットで必要になるまで、抗CD3/OKT3バイアルを冷蔵庫に戻した。評価されるPBMCの各ロットについて繰り返した。
複製したT25フラスコをBSCに戻した。各フラスコについて、新鮮な10mLの血清ピペットを使用して、各フラスコから約17mLを取り出し、残りの培地を注意深く引き上げて、フラスコに残っている容量を測定した。容量を記録した。
結果
γ線照射の線量は、フィーダー細胞を複製不全にするのに十分であると予想された。すべてのロットは、評価基準を満たすことが予想され、0日目と比較して、REP培養の14日目に残っているフィーダー細胞の総有効数の低減を示した。
試験された各照射ドナーPBMCロットについて、以下の承認基準が満たされた:「成長なし」−14日目の生細胞の総数が、REPの0日目に培養された最初の生細胞数よりも少なかったことを意味する。
照射ドナーPBMCロットが上記の承認基準を満たさなかった場合は、以下のステップを実行してロットを再試験し、単純な実験者エラーを失敗の原因として除外した。ロットの衛星試験バイアルが2つ以上残っている場合は、ロットを再試験した。ロットの衛星バイアルが1つ残っているか、まったく残っていない場合は、上記の承認基準に従ってロットが失敗した。
この実施例は、精製され、凍結乾燥された組み換えヒトインターロイキン−2を、本出願および実施例に記載されるものすべてを含む、さらなる組織培養プロトコルでの使用に適したストック試料に溶解するプロセスを記載し、rhIL−2を使用することを伴うものを含む。
0.2%酢酸溶液(HAc)を調製した。29mLの無菌水を、50mLの円錐管に移した。50mLの円錐管に1mLの1N酢酸を添加した。管を2〜3回反転させてよく混ぜた。Steriflipフィルターを使用したろ過によって、HAc溶液を滅菌した
この実施例では、CryoMed冷却速度制御フリーザー、モデル7454(Thermo Scientific)を使用して、実施例Gで説明した簡略化されたクローズド手順で調製されたTILの凍結保存プロセス方法について説明する。
患者集団:
治療ナイーブのNSCLCまたは化学療法後であるが抗PD−1/PD−L1ナイーブ
腫瘍断片は、最大4用量の抗PD−1/PD−L1で治療し、原発性不応性の患者を、凍結保存され、即時進行の際に使用する準備ができているTIL製品で治療する。原発性不応性の患者は、2用量後に進行した可能性がある。
●治療ナイーブのNSCLCまたは化学療法後であるが抗PD−1/PD−L1ナイーブ。
●治療ナイーブのNSCLCまたは化学療法後であるが、低いPD−L1の発現を有する抗PD−1/PD−L1ナイーブ。
●治療ナイーブのNSCLCまたは化学療法後であるが、低いPD−L1の発現を有する、および/またはベースラインで巨大腫瘤病変を有する抗PD−1/PD−L1ナイーブ。(例えば、横断面または冠状面のいずれかで測定された最大腫瘍径が7cmを超えるか、またはCTで短軸径が20mm以上の膨れたリンパ節が巨大腫瘤として定義された場合、巨大腫瘤病変が示される。例えば、参照により本明細書に組み込まれる、Samejima,J.,Japanese Journal of Clinical Oncology,45(11):1050−10541 2015を参照)。
研究設計
概要
この実施例では、本出願ならびにこの実施例に記載されるように調製されたTILを使用して、TILをペムブロリズマブと組み合わせて、またはTILを単剤療法として使用してACTを評価する、前向き、非盲検、マルチコホート、非ランダム化、多施設第2相試験について説明する。
一次:
治験責任医師が評価した固形腫瘍の奏効評価基準(RECIST 1.1)を使用して、客観的奏効率(ORR)によって決定されるように、MM、HNSCC、もしくはNSCLC患者におけるペムブロリズマブと組み合わせた自己TILの有効性、またはCPIによる治療中もしくは治療後に以前に進行した再発もしくは不応性(r/r)NSCLC患者における単剤療法としてのTILの有効性を評価すること。
完全奏効(CR)率、奏効期間(DOR)、疾患制御率(DCR)、治験責任医師によって評価されたRECIST 1.1を使用した無増悪生存期間(PFS)、および全生存期間(OS)を使用して、MM、HNSCC、およびNSCLC患者におけるペムブロリズマブと組み合わせた自己TILの有効性、またはr/r NSCLC患者における単剤療法としてのTILの有効性をさらに評価すること。
コホート1A:免疫療法を除く3つ以下の全身療法を伴う、切除不能なステージIIICもしくはステージIV、またはMMの患者におけるペムブロリズマブと組み合わせたTIL療法。以前に治療を受けた場合、患者は、最近の治療中または治療後にX線写真で進行が記録されていなければならない。
1.TIL細胞製品の供給源として機能する自己組織を提供するための腫瘍切除。
2.中央の適正製造基準(GMP)施設で産生されたTIL製品。
3.7日間のNMA−LDプレコンディショニングレジメン。
4.コホート1A、2A、および3A:患者は、TIL産生のために腫瘍切除およびベースライン走査の完了後であるが、NMA−LDレジメンの開始前にペムブロリズマブの単回注入を受ける。ペムブロリズマブの次の用量は、IL−2の完了後以降であり、その後Q3W±3日継続する。
5.自己TIL製品の注入(0日目)、ならびに
6.最大6用量までのIV IL−2投与。
患者はスクリーニングされ、腫瘍切除のための手術が予定された。その後、患者は1つ以上の腫瘍病変を切除し、TIL産生のために中央製造施設に送られた。
患者はスクリーニングされ、腫瘍切除のための手術が予定された。その後、患者は1つ以上の腫瘍病変を切除し、TIL産生のために中央製造施設に送られた。
腫瘍由来の自己TIL製品の注入は、フルダラビンの最後の用量から24時間以内に起こった。600,000IU/kgの用量でIVでのIL−2投与は、TIL注入の完了後3時間後、ただし24時間後までに開始された可能性がある。
TIL自己細胞製品は、患者の腫瘍/病変に由来する生存可能な細胞傷害性Tリンパ球で構成されており、中央のGMP施設でエクスビボで製造される。例えば、TIL産生プロセスを示す例示的なフロー図を図9に示す。
この研究で使用されたNMA−LDプレコンディショニングレジメン(すなわち、2日間のシクロホスファミドおよびメスナ、続いて5日間のフルダラビン)は、国立癌研究所によって開発および試験された方法に基づいていた(Rosenberg S.A.,et al.,Clin Cancer Res.2011;17(13):4550−7、Radvanyi L.G.,et al.,Clin Cancer Res.2012;18(24):6758−70、Dudley M.E.,et al.,J Clin Oncol.2008;26(32):5233−9、Pilon−Thomas S,et al.,J Immunother.2012;35(8):615−20、Dudley M.E.,et al.,J Clin Oncol.2005;23(10):2346−57、およびDudley M.E.,et al.,Science.2002;298(5594):850−4)。7日間のプレコンディショニングレジメンに続いて、患者にTIL細胞製品を注入した。
コホート1A:
患者は、切除不能なMMの確定診断を有した(ステージIIICまたはステージIV、米国癌合同委員会[AJCC]病期分類システムに従って組織学的に確認された)。眼内黒色腫患者は除外された。患者は、以前に免疫腫瘍学を標的とした薬剤を受けていてはならない。BRAF突然変異が陽性の場合、患者は、以前にBRAF/MEK標的療法を受けていた可能性があった。
患者は、進行性、再発性、および/または転移性のHNSCCを有しており、治療ナイーブであり得、病理学レポートを介した原発腫瘍の組織学的診断が必要である。患者は、以前に免疫療法レジメンを受けていてはならない。
患者は、ステージIIIまたはステージIVのNSCLC(扁平上皮癌、腺癌、大細胞癌)の確定診断を有した。有効な標的療法が利用可能な癌遺伝子駆動腫瘍を有する患者は、少なくとも1つの標的療法を受けていた。
患者は、ステージIIIまたはステージIVのNSCLC(扁平上皮癌、腺癌、大細胞癌)の確定診断を有しており、以前にCPI(例えば、抗PD−1/抗PD−L1)による全身療法を受けていた。有効な標的療法が利用可能な癌遺伝子駆動腫瘍を有する患者は、少なくとも1つの標的療法を受けていた。
患者は、研究に参加するために以下の包含基準をすべて満たしている必要がある。
1.すべての患者は、組織学的または病理学的にそれぞれの組織学的悪性腫瘍の確定診断を有した。
○切除不能または転移性黒色腫(コホート1A)
○頭頸部の進行性、再発性、または転移性扁平上皮癌(コホート2A)
○ステージIIIまたはステージIVのNSCLC(扁平上皮癌、非扁平上皮癌、腺癌、大細胞癌)(コホート3Aおよび3B)。
2.コホート1A、2A、および3Aのみ:患者は、免疫療法ナイーブであった。以前に治療された場合、患者は、最近の治療中または治療後に進行していた。コホート1A、2A、および3Aは、最大3つの全身性抗癌療法を以前に受けている可能性があり、具体的には以下のとおりである。
○コホート1A:切除不能または転移性黒色腫(ステージIIICまたはステージIV)を有する患者。BRAF突然変異陽性の場合、患者は、BRAF阻害剤を投与されている可能性がある。
○コホート2A:切除不能または転移性HNSCCの患者。最初の化学放射線療法を受けていた患者は許可された。
○コホート3A:ステージIIIまたはステージIVのNSCLC(扁平上皮癌、非扁平上皮癌、腺癌、または大細胞癌)を有し、免疫療法ナイーブであり、局所進行または転移の状況で3つ以下の以前の全身療法後に進行した患者。アジュバントもしくはネオアジュバントの設定で、または根治的化学放射線療法の一部として全身療法を受けた患者は適格であり、以前の全身療法の完了から12ヶ月以内に疾患が進行した場合、1つの治療を受けたとみなされた。標的療法に感受性のある突然変異を有する既知の癌遺伝子ドライバー(例えば、EGFR、ALK、ROS)を有する患者は、少なくとも1つの標的療法の後に進行したに違いない。
3.コホート3Bのみ:ステージIIIまたはステージIVのNSCLC(扁平上皮癌、非扁平上皮癌、腺癌、または大細胞癌)を有し、3つ以下の全身療法の一部として、CPI(例えば、抗PD−1/抗PD−L1)による全身療法を以前に受けていた患者。
○患者は、最近の治療中または治療後にX線写真で進行が確認されていた。
○アジュバントもしくはネオアジュバントの設定で、または根治的化学放射線療法の一部として全身療法を受けた患者は適格であり、以前の全身療法の完了から12ヶ月以内に疾患が進行していた場合、1つの治療を受けたとみなされた。
○標的療法に感受性のある突然変異を有する既知の癌遺伝子ドライバー(例えば、EGFR、ALK、ROS)を有する患者は、少なくとも1つの標的療法の後に進行したに違いない。
4.患者は、TIL治験薬(investigational product)産生のために、切除後に最少直径1.5cmの切除可能な病変(または凝集病変)を少なくとも1つ有していた。外科的切除が患者に追加のリスクをもたらさない限り、腫瘍組織を、複数の多様な転移性病変から取得することが奨励された。
○TIL生成のために切除が検討されている病変が、以前に照射された領域内にある場合、その病変は、切除前にX線写真で進行を示している必要がある。
○患者は、プロトコルが必要とする検査に適正な組織病理標本を有していなければならない。
5.患者は、TIL製造の腫瘍切除の後に、標準かつ周知のRECIST 1.1ガイドラインによって定義されているように、残留する測定可能な疾患を有していた(例えば、Eisenhauer,European Journal of Cancer 45:228−247(2009)を参照、www.project.eortc.org/recist/wp−content/uploads/sites/4/2015/03/RECISTGuidelines.pdfでも入手可能)。
○以前に照射された領域内の病変は、それらの病変で疾患の進行が示されていない限り、標的病変として選択されなかった。
○RECISTごとに依然として測定可能なTIL生成のために部分的に切除された病変を、非標的病変として選択することができるが、応答評価の標的病変としては機能することができなかった。
6.患者は、同意時に18歳以上であった。
7.患者の米国東海岸癌臨床試験グループ(Eastern Cooperative Oncology Group、ECOG)のパフォーマンスステータスは0または1であり、推定平均余命は3ヶ月以上であった。
8.出産の可能性のある患者または出産の可能性のあるパートナーを持つ患者は、治療中に非常に効果的な承認された避妊方法を実践する意志があり、すべてのプロトコル関連療法を受けた後12ヶ月間継続する必要があった(注記:生殖能力のある女性は、治療中、およびIL−2の最後の用量後12ヶ月間またはペムブロリズマブの最後の用量後4ヶ月のいずれか遅い方で、効果的な避妊を使用することとした)。男性は、研究中または治療中止後12ヶ月のいずれか遅い方で、精子を提供することができなかった。
9.患者は、以下の血液学的パラメーターを有していた:
○絶対好中球数(ANC)≧1000/mm3、
○ヘモグロビン≧9.0g/dL、
○血小板数≧100,000/mm3。
10.患者は、適正な臓器機能を有していた:
○血清アラニンアミノトランスフェラーゼ(ALT)/血清グルタミン酸ピルビン酸トランスアミナーゼ(SGPT)およびアスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ(AST)/SGOTが、正常上限(ULN)の3倍以下、肝転移がULNの5倍以下の患者。
○スクリーニング時にコッククロフト・ゴールト式を使用して推定されたクレアチニンクリアランス≧40mL/分。
○総ビリルビン≦2mg/dL。
○ジルベール症候群の患者は、総ビリルビン≦3mg/dLでなければならない。
11.患者は、ヒト免疫不全ウイルス(HIV1およびHIV2)に対して血清陰性であった。B型肝炎ウイルス表面抗原(HBsAg)、B型肝炎コア抗体(抗HBc)、または急性もしくは慢性感染を示すC型肝炎ウイルス(抗HCV)の血清学が陽性の患者は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に基づくウイルス量およびある特定のウイルス曝露の局所有病率に応じて登録した。
12.患者は、最初の試験治療(すなわち、NMA−LDまたはペムブロリズマブの開始)の前に、以下に詳述されるように、最小期間の以前の抗癌療法(複数可)からのウォッシュアウト期間を有していた。
○標的療法:ウォッシュアウトが治療の開始の最低14日前であれば、上皮成長因子受容体(EGFR)、MEK、BRAF、ALK、ROS1または他の標的薬剤(例えば、エルロチニブ、アファチニブ、ダコミチニブ、オシメルチニブ、クリゾチニブ、セリチニブ、ロラチニブ)による以前の標的療法が許可された。
○化学療法:ウォッシュアウトが治療の開始の最低21日前であれば、アジュバント、ネオアジュバント、または根治的化学療法/化学放射線療法が許可された。
○コホート3Bのみの免疫療法、抗PD−1、他のmAb、またはワクチンによる以前のチェックポイント標的療法は、NMA−LDの開始前21日以上のウォッシュアウト期間で許可された。
○緩和的放射線療法:脱毛症、皮膚色素沈着の変化、または他の臨床的に重要でない事象、例えば小領域放射線皮膚炎または直腸もしくは尿意切迫感を除いて、すべての放射線関連毒性がグレード1またはベースラインに解決された場合、以前の外部ビーム放射線療法が許可された
○RECIST 1.1を介して応答のターゲットとして評価されている腫瘍病変(複数可)は、放射線ポータルの外側にあったが、ポータル内の場合は、進行が実証されていなければならない(上記の包含基準を参照)。
○手術/事前に計画された手順:創傷治癒が起こり、すべての合併症が解消され、腫瘍切除の前に少なくとも14日が経過している場合(主要な手術手順の場合)、以前の外科的手順(複数可)が許可された。
13.患者は、コホートの割り当て前に、脱毛症または白斑を除いて、以前のすべての抗癌治療関連有害事象(TRAE)からグレード1以下(有害事象の一般用語基準[CTCAE]による)に回復していた。
14.以前の抗癌療法から安定したグレード2以上の毒性を有する患者は、医療モニターと相談した後、ケースバイケースで検討された。
15.ペムブロリズマブによる治療によって悪化すると合理的に予想されない不可逆的毒性を有するコホート1A、2A、および3Aの患者は、医療モニターとの協議後にのみ含まれた。コホート3Bの患者のみ、免疫チェックポイント阻害剤CPI(複数可)による以前の治療の結果として、グレード2以上の下痢または大腸炎が記録されている患者は、少なくとも6ヶ月間無症候性であったか、または治療後腫瘍切除前の目視評価による結腸内視鏡検査で正常でなければならない。
16.患者は、保護された健康情報の使用および開示について、書面による承認を提供していなければならない。
以下の基準のうちのいずれかを満たす患者は、研究から除外した。
1.ブドウ膜/眼起源の黒色腫を有する患者
2.過去20年以内に非骨髄破壊的または骨髄破壊的化学療法レジメンを含む、臓器同種移植または以前の細胞移植療法を受けていた患者。(注記:この基準は、以前のTIL治療で以前のNMA−LDレジメンがあったことを除いて、TILによる再治療を受けている患者に適用可能であった。)
3.症候性および/または未治療の脳転移を有する患者。
○脳転移が確実に治療された患者は、
治療の開始前に患者が2週間以上にわたって臨床的に安定し、治療後の磁気共鳴画像法(MRI)による新たな脳病変がなく、患者が継続的なコルチコステロイド治療を必要としない場合、医療モニターと話し合った後に登録が検討される。
4.登録から21日以内に全身ステロイド療法を受けている患者。
5.妊娠中または授乳中の患者。
6.治験責任医師の意見では、研究参加のリスクが高い、活動性の医学的疾患(複数可)、例えば全身性感染症(例えば、梅毒もしくは抗生物質を必要とする他の感染症)、凝固障害、または心臓血管系、呼吸器系、もしくは免疫系の他の活動性の主要な医学的疾患を有していた患者。
7.患者は、活動性または以前に記録された自己免疫または炎症性障害(肺炎、炎症性腸疾患[例えば、大腸炎もしくはクローン病]、憩室炎[憩室症を除く]、全身性紅斑性狼瘡、サルコイドーシス症候群、またはウェゲナー症候群[多発血管炎を伴う肉芽腫症、グレイブス病、関節リウマチ、下垂体炎、ブドウ膜炎など])を有しない場合がある。以下は、この基準の例外であった。
○白斑または脱毛症を有する患者。
○甲状腺機能低下症(例えば、橋本症候群に続く)が安定している患者
○ホルモン補充療法。
○全身療法を必要としない任意の慢性皮膚疾患。
○食事療法だけで制御されるセリアック病の患者。
8.治療の開始前28日以内に生ワクチン接種または弱毒化ワクチン接種を受けていた患者。
9.任意の形態の原発性免疫不全症(重症複合免疫不全症[SCID]および後天性免疫不全症候群[AIDS]など)を有していた患者。
10.治験薬(study drug)の任意の成分に対する過敏症の病歴を有する患者。TILは、以下のうちのいずれかを含むがこれらに限定されない、TIL製品製剤の任意の成分に対する既知の過敏症を有する患者には投与されなかった。
○・NMA−LD(シクロホスファミド、メスナ、およびフルダラビン)
○・Proleukin(登録商標)、アルデスロイキン、IL−2
○・アミノグリコシド系抗生物質(すなわち、ストレプトマイシン、ゲンタマイシン[ゲンタマイシン過敏症の皮膚検査陰性者を除く])
○・ジメチルスルホキシドを含むTIL製品製剤の任意の成分
○[DMSO]、HSA、IL−2、およびデキストラン−40
○・ペムブロリズマブ
11.左心室駆出率(LVEF)が45%未満の患者、またはニューヨーク心臓協会クラスII以上の患者。60歳以上の患者、あるいは虚血性心疾患、胸痛、または臨床的に重大な心房性および/もしくは心室性不整脈の病歴のある患者において、不可逆的な壁運動異常を示す心臓ストレス試験。
○スポンサーの医療モニターの承認を得て、駆出率および心臓病クリアランスが十分であれば、心臓ストレス試験に異常がある患者を登録することができた。
12.閉塞性または拘束性肺疾患があり、予測正常値の60%以下のFEV1(1秒の強制呼気量)が記録されている患者。
○・患者が上気道の解剖学的構造の異常(すなわち、気管切開)のために信頼できる肺活量測定を行うことができなかった場合は、6分間の歩行試験を使用して呼吸機能を評価した。年齢および性別に対して予測される少なくとも80%の距離を歩くことができなかった患者、または試験中の任意の時点で低酸素症の証拠を示した患者(SpO2<90%)は除外される。
13.過去3年以内に別の原発性悪性腫瘍があった患者(治療を必要としなかった、または1年以上前に治癒的に治療された患者を除き、治験責任医師の判断では、非黒色腫皮膚癌、DCIS、LCIS、前立腺癌グリーソンスコア≦6または膀胱癌を含むが、これらに限定されない重大な再発リスクをもたらさなかった)。
14.治療の開始から21日以内に治験薬を用いた別の臨床試験への参加。
一次エンドポイントおよび二次エンドポイントは、コホートによって別々に分析した。
ORRは、有効性分析セットの中でRECIST1.1に従って治験責任医師が評価した最良の応答として確認されたPRまたはCRのいずれかを達成した患者の割合として定義された。
有効性:
二次有効性エンドポイントは、次のように定義された。
Claims (124)
- 非小細胞肺癌(NSCLC)を腫瘍浸潤リンパ球(TIL)の集団で治療する方法であって、
(a)外科的切除、針生検、コア生検、小生検、または複数の腫瘍断片もしくは生検からのものを含む、患者のNSCLC腫瘍からの腫瘍とTIL細胞との混合物を含有する試料を取得するための他の手段から第1のTIL集団を取得および/または受容するステップと、
(c)前記腫瘍断片を、第1の細胞培養培地と接触させるステップと、
(d)前記第1の細胞培養培地中で前記第1のTIL集団の初期拡張を行って、第2のTIL集団を取得するステップであって、前記第2のTIL集団が、前記第1のTIL集団よりも数が少なくとも5倍多く、前記第1の細胞培養培地が、IL−2を含む、ステップと、
(e)第2の細胞培養培地中で前記第2のTIL集団の急速拡張を行って、第3のTIL集団を取得するステップであって、前記第3のTIL集団が、前記急速拡張の開始から7日後に前記第2のTIL集団よりも数が少なくとも50倍多く、前記第2の細胞培養培地が、IL−2、OKT−3(抗CD3抗体)、および任意に照射された同種異系末梢血単核細胞(PBMC)を含み、前記急速拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、ステップと、
(f)前記第3のTIL集団を採取するステップと、
(g)前記第3のTIL集団の治療上有効な部分を、前記NSCLCを有する患者に投与するステップと、を含み、
前記NSCLCが、抗PD−1抗体による治療に対して不応性である、方法。 - 前記第1のTIL集団を取得することが、多病変サンプリング法を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1および/または抗PD−L2抗体で以前に治療されている、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されていない、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されている、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、化学療法剤で以前に治療されている、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、化学療法剤で以前に治療されている、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されていない、請求項5〜7に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、低いPD−L1の発現を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、低いPD−L1の発現を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、低いPD−L1の発現を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されており、低いPD−L1の発現を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されておらず、低いPD−L1の発現を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されており、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されておらず、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項1に記載の方法。
- 最大腫瘍直径が、横断面もしくは冠状面のいずれかで測定して7cmより大きいか、または腫れたリンパ節が20mm以上の短軸直径を有する場合、巨大腫瘤病変が示される、請求項14〜17に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ネオアジュバント療法またはアジュバント療法を含まない、少なくとも2つの以前の全身治療過程に対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ニボルマブ、ペムブロリズマブ、イピリムマブ、JS001、TSR−042、ピジリズマブ、(BGB−A317、SHR−1210、REGN2810、MDX−1106、PDR001、クローン由来の抗PD−1:RMP1−14、および米国特許第8,008,449号に開示されている抗PD−1抗体、デュルバルマブ、アテゾリズマブ、アベルマブ、ならびにそれらの断片、誘導体、多様体、およびバイオシミラーからなる群から選択される抗PD−1抗体に対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ペムブロリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ニボルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーおよびペムブロリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーおよびニボルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、デュルバルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、アテゾリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、アベルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項1に記載の方法。
- 前記初期拡張が、21日以内の期間にわたって行われる、請求項1〜28のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、請求項1〜29のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、約11日の期間にわたって行われ、前記急速拡張が、約11日の期間にわたって行われる、請求項1〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2が、1000IU/mL〜6000IU/mLの間の初期濃度で前記第1の細胞培養培地中に存在する、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2が、1000IU/mL〜6000IU/mLの間の初期濃度で存在し、前記OKT−3抗体が、約30ng/mLの初期濃度で前記第2の細胞培養培地中に存在する、請求項1〜32のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、ガス透過性容器を使用して行われる、請求項1〜33のいずれか一項に記載の方法。
- 前記急速拡張が、ガス透過性容器を使用して行われる、請求項1〜34のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第1の細胞培養培地が、IL−4、IL−7、IL−15、IL−21、およびそれらの組み合わせからなる群から選択されるサイトカインをさらに含む、請求項1〜35のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第2の細胞培養培地が、IL−4、IL−7、IL−15、IL−21、およびそれらの組み合わせからなる群から選択されるサイトカインをさらに含む、請求項1〜36のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第3のTIL集団を前記患者に投与する前に、非骨髄破壊的リンパ球枯渇レジメンで前記患者を治療するステップをさらに含む、請求項1〜37のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非骨髄破壊的リンパ球枯渇レジメンが、60mg/m2/日の用量で2日間のシクロホスファミドの投与に続いて、25mg/m2/日の用量で5日間のフルダラビンを投与するステップを含む、請求項38に記載の方法。
- 前記患者への前記第3のTIL集団の投与の翌日に開始して、IL−2レジメンで前記患者を治療するステップをさらに含む、請求項1〜39のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2レジメンが、許容範囲まで8時間ごとに15分間のボーラス静脈内注入として投与される、600,000もしくは720,000IU/kgのアルデスロイキン、またはそのバイオシミラーもしくは多様体を含む高用量IL−2レジメンである、請求項40に記載の方法。
- 非小細胞肺癌(NSCLC)を腫瘍浸潤リンパ球(TIL)の集団で治療する方法であって、
(a)患者から1つ以上の腫瘍を切除するステップであって、前記1つ以上の腫瘍が、第1のTIL集団を含む、ステップと、
(b)前記1つ以上の腫瘍を、腫瘍断片に断片化するステップと、
(c)前記腫瘍断片を、第1の細胞培養培地と接触させるステップと、
(d)前記第1の細胞培養培地中で前記第1のTIL集団の初期拡張を行って、第2のTIL集団を取得するステップであって、前記第2のTIL集団が、前記第1のTIL集団よりも数が少なくとも5倍多く、前記第1の細胞培養培地が、IL−2を含む、ステップと、
(e)第2の細胞培養培地中で前記第2のTIL集団の急速拡張を行って、第3のTIL集団を取得するステップであって、前記第3のTIL集団が、前記急速拡張の開始から7日後に前記第2のTIL集団よりも数が少なくとも50倍多く、前記第2の細胞培養培地が、IL−2、OKT−3(抗CD3抗体)、および任意に照射された同種異系末梢血単核細胞(PBMC)を含み、前記急速拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、ステップと、
(f)前記第3のTIL集団を採取するステップと、
(g)前記第3のTIL集団の治療上有効な部分を前記NSCLCを有する患者に投与するステップと、を含み、
前記NSCLCが、抗PD−1抗体による治療に対して不応性である、方法。 - 前記腫瘍が、1つ以上の腫瘍引用から切除される、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1および/または抗PD−L2抗体で以前に治療されている、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されていない、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されている、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、化学療法剤で以前に治療されている、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、化学療法剤で以前に治療されている、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されていない、請求項46〜48に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、低いPD−L1の発現を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、低いPD−L1の発現を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、低いPD−L1の発現を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されており、低いPD−L1の発現を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されておらず、低いPD−L1の発現を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されており、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されておらず、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項42に記載の方法。
- 前記最大腫瘍直径が、横断面もしくは冠状面のいずれかで測定して7cmより大きいか、または腫れたリンパ節が20mm以上の短軸直径を有する場合、前記巨大腫瘤病変が示される、請求項55〜58に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ネオアジュバント療法またはアジュバント療法を含まない、少なくとも2つの以前の全身治療過程に対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ニボルマブ、ペムブロリズマブ、イピリムマブ、JS001、TSR−042、ピジリズマブ、(BGB−A317、SHR−1210、REGN2810、MDX−1106、PDR001、クローン由来の抗PD−1:RMP1−14、および米国特許第8,008,449号に開示されている抗PD−1抗体、デュルバルマブ、アテゾリズマブ、アベルマブ、ならびにそれらの断片、誘導体、多様体、およびバイオシミラーからなる群から選択される抗PD−1抗体に対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ペムブロリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ニボルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーおよびペムブロリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーおよびニボルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、デュルバルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、アテゾリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、アベルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項42に記載の方法。
- 前記初期拡張が、21日以内の期間にわたって行われる、請求項42〜69のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、請求項42〜70のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、約11日の期間にわたって行われ、前記急速拡張が、約11日の期間にわたって行われる、請求項42〜71のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2が、1000IU/mL〜6000IU/mLの間の初期濃度で前記第1の細胞培養培地中に存在する、請求項42〜72のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2が、1000IU/mL〜6000IU/mLの間の初期濃度で存在し、前記OKT−3抗体が、約30ng/mLの初期濃度で前記第2の細胞培養培地中に存在する、請求項42〜73のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、ガス透過性容器を使用して行われる、請求項42〜74のいずれか一項に記載の方法。
- 前記急速拡張が、ガス透過性容器を使用して行われる、請求項42〜75のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第1の細胞培養培地が、IL−4、IL−7、IL−15、IL−21、およびそれらの組み合わせからなる群から選択されるサイトカインをさらに含む、請求項42〜76のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第2の細胞培養培地が、IL−4、IL−7、IL−15、IL−21、およびそれらの組み合わせからなる群から選択されるサイトカインをさらに含む、請求項42〜77のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第3のTIL集団を前記患者に投与する前に、非骨髄破壊的リンパ球枯渇レジメンで前記患者を治療するステップをさらに含む、請求項42〜78のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非骨髄破壊的リンパ球枯渇レジメンが、60mg/m2/日の用量で2日間のシクロホスファミドの投与に続いて、25mg/m2/日の用量で5日間のフルダラビンを投与するステップを含む、請求項79に記載の方法。
- 前記患者への前記第3のTIL集団の投与の翌日に開始して、IL−2レジメンで前記患者を治療するステップをさらに含む、請求項42〜80のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2レジメンが、許容範囲まで8時間ごとに15分間のボーラス静脈内注入として投与される、600,000もしくは720,000IU/kgのアルデスロイキン、またはそのバイオシミラーもしくは多様体を含む高用量IL−2レジメンである、請求項81に記載の方法。
- 非小細胞肺癌(NSCLC)を有する対象を治療するための方法であって、前記癌が、抗PD−1抗体による治療に対して不応性であり、拡張した腫瘍浸潤リンパ球(TIL)を投与することを含む前記方法が、
(a)対象から取得された1つ以上の腫瘍を複数の腫瘍断片に処理することによって、前記対象から切除された1つ以上の腫瘍から第1のTIL集団を取得および/または受容することと、
(b)前記腫瘍断片を閉鎖系に付加することと、
(c)IL−2を含む細胞培養培地中で前記第1のTIL集団を培養することによって第1の拡張を行って、第2のTIL集団を産生することであって、前記第1の拡張が、第1のガス透過性表面積を提供する密閉容器内で行われ、前記第1の拡張が、約3〜14日間行われて、前記第2のTIL集団を取得し、前記第2のTIL集団が、前記第1のTIL集団よりも数が少なくとも50倍多く、ステップ(b)からステップ(c)への移行が、前記系を開くことなく起こる、第1の拡張を行うことと、
(d)前記第2のTIL集団の細胞培養培地を追加のIL−2、OKT−3、および抗原提示細胞(APC)で補足することによって第2の拡張を行って、第3のTIL集団を産生することであって、前記第2の拡張が、約7〜14日間行われて、前記第3のTIL集団を取得し、前記第3のTIL集団が、前記第2のTIL集団と比較して、エフェクターT細胞および/またはセントラルメモリーT細胞の増加した亜集団を含む、治療的TIL集団であり、前記第2の拡張が、第2のガス透過性表面積を提供する密閉容器内で行われ、ステップ(c)からステップ(d)への移行が、前記系を開くことなく起こる、第2の拡張を行うことと、
(e)ステップ(d)から取得された治療的TIL集団を採取することであって、ステップ(d)からステップ(e)への移行が、前記系を開くことなく起こる、採取することと、
(f)ステップ(e)から採取された前記TIL集団を注入バッグに移すことであって、前記ステップ(e)から(f)への移行が、前記系を開くことなく起こる、移すことと、
(g)凍結保存プロセスを使用して、ステップ(f)から採取された前記TIL集団を含む前記注入バッグを凍結保存することと、
(h)治療上有効な投与量の前記第3のTIL集団を、ステップ(g)の前記注入バッグから前記対象に投与することと、を含む、方法。 - 前記腫瘍試料が、多病変サンプリング法に由来する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されている、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されていない、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されている、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、化学療法剤で以前に治療されている、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、化学療法剤で以前に治療されている、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されていない、請求項87〜89に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、低いPD−L1の発現を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、低いPD−L1の発現を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、低いPD−L1の発現を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されており、低いPD−L1の発現を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されておらず、低いPD−L1の発現を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されておらず、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、抗PD−1および/または抗PD−L1抗体で以前に治療されており、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されており、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、化学療法剤で治療されているが、現在は化学療法剤で治療されておらず、ベースラインで巨大腫瘤病変を有する、請求項83に記載の方法。
- 前記最大腫瘍直径が、横断面もしくは冠状面のいずれかで測定して7cmより大きいか、または腫れたリンパ節が20mm以上の短軸直径を有する場合、巨大腫瘤病変が示される、請求項96〜99に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ネオアジュバント療法またはアジュバント療法を含まない、少なくとも2つの以前の全身治療過程に対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ニボルマブ、ペムブロリズマブ、イピリムマブ、JS001、TSR−042、ピジリズマブ、(BGB−A317、SHR−1210、REGN2810、MDX−1106、PDR001、クローン由来の抗PD−1:RMP1−14、および米国特許第8,008,449号に開示されている抗PD−1抗体、デュルバルマブ、アテゾリズマブ、アベルマブ、ならびにそれらの断片、誘導体、多様体、およびバイオシミラーからなる群から選択される抗PD−1抗体に対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ペムブロリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、ニボルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーおよびペムブロリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、イピリムマブまたはそのバイオシミラーおよびニボルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、デュルバルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、アテゾリズマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記不応性NSCLCが、アベルマブまたはそのバイオシミラーに対して不応性である、請求項83に記載の方法。
- 前記初期拡張が、21日以内の期間にわたって行われる、請求項83〜110のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、14日以内の期間にわたって行われる、請求項83〜111のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、約3〜11日の期間にわたって行われ、前記第2の拡張が、約7〜11日の期間にわたって行われる、請求項83〜112のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、約11日の期間にわたって行われ、前記急速拡張が、約11日の期間にわたって行われる、請求項83〜113のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2が、1000IU/mL〜6000IU/mLの間の初期濃度で前記第1の細胞培養培地中に存在する、請求項83〜114のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2が、1000IU/mL〜6000IU/mLの間の初期濃度で存在し、前記OKT−3抗体が、約30ng/mLの初期濃度で前記第2の細胞培養培地中に存在する、請求項83〜115のいずれか一項に記載の方法。
- 前記初期拡張が、ガス透過性容器を使用して行われる、請求項83〜116のいずれか一項に記載の方法。
- 前記急速拡張が、ガス透過性容器を使用して行われる、請求項83〜117のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第1の細胞培養培地が、IL−4、IL−7、IL−15、IL−21、およびそれらの組み合わせからなる群から選択されるサイトカインをさらに含む、請求項83〜118のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第2の細胞培養培地が、IL−4、IL−7、IL−15、IL−21、およびそれらの組み合わせからなる群から選択されるサイトカインをさらに含む、請求項83〜119のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第3のTIL集団を前記患者に投与する前に、非骨髄破壊的リンパ球枯渇レジメンで前記患者を治療するステップをさらに含む、請求項83〜120のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非骨髄破壊的リンパ球枯渇レジメンが、60mg/m2/日の用量で2日間のシクロホスファミドの投与に続いて、25mg/m2/日の用量で5日間のフルダラビンを投与するステップを含む、請求項121に記載の方法。
- 前記患者への前記第3のTIL集団の投与の翌日に開始して、IL−2レジメンで前記患者を治療するステップをさらに含む、請求項83〜122のいずれか一項に記載の方法。
- 前記IL−2レジメンが、許容範囲まで8時間ごとに15分間のボーラス静脈内注入として投与される、600,000もしくは720,000IU/kgのアルデスロイキン、またはそのバイオシミラーもしくは多様体を含む高用量IL−2レジメンである、請求項123に記載の方法。
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