JP2019534012A - 筋緊張性ジストロフィーの治療のための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
sgRNA分子は、黄色ブドウ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼ(SaCas9)、またはSaCas9の機能的変異体であるCas9エンドヌクレアーゼの存在下、前記3’−UTR内で、前記ヌクレオチドリピート伸長の5’側または3’側のいずれかにおいて、2本鎖切断を誘導することができ;
sgRNA分子は、配列番号7〜11からなる群から選択される配列を含む、15〜40ヌクレオチドのガイド配列を含む。
特定の実施形態では、切除されるヌクレオチドリピート伸長は、DMPK遺伝子の3’−UTR内に位置する、ビ、トリ、テトラ、ペンタまたはヘキサヌクレオチドリピート伸長であり、好ましくはトリヌクレオチドリピート伸長である。
特定の実施形態では、ヌクレオチドリピート伸長は、20〜10000リピートなど、特に50〜5000リピートなどの、20以上のリピートを含み得る。
(i)第1のsgRNA分子;
(ii)配列番号11に示される配列を含む、15〜40ヌクレオチド長の第2のsgRNA分子;および
(iii)黄色ブドウ球菌由来のCRISPR/Cas9エンドヌクレアーゼ、または黄色ブドウ球菌由来のCRISPR/Cas9エンドヌクレアーゼの機能的変異体;
ここで、第1および第2のsgRNAは、それぞれ、DMPK遺伝子の3’−UTR内のヌクレオチドリピート伸長の5’側および3’側に位置する配列に相補的であり、それにより、DMPK遺伝子の3’−UTR内の、ヌクレオチドリピート伸長の5’側に、2本鎖切断を誘導することによって、および、DMPK遺伝子の3’−UTR内の、ヌクレオチドリピート伸長の3’側に、2本鎖切断を誘導することによって、ヌクレオチドリピート伸長を切除するのに適切である。
本発明者らは、本明細書において、黄色ブドウ球菌由来のCRISPR−Cas9システムが、DMPK遺伝子からヌクレオチドリピートを切り出すために効率的に用いられ、それによって1型筋緊張性ジストロフィー(DM1)の治療のための強力なツールを提供し得ることを、示す。
(i)DMPK遺伝子の3’UTR内に位置するヌクレオチドリピートの5’側に位置するゲノムDNAにおける標的配列(プロトスペーサー)に相補的な配列に、塩基対形成により結合することができる、第1のsgRNA分子。
(ii)DMPK遺伝子の3’UTR内に位置するヌクレオチドリピートの3’側に位置するゲノムDNAにおける標的配列(プロトスペーサー)に相補的な配列に、塩基対形成により結合することができる、第2のsgRNA分子。
(iii)DMPK遺伝子の3’UTR内に位置するヌクレオチドリピートの、それぞれ5’側および3’側に位置するゲノムDNAにおける標的配列に相補的な配列に、塩基対形成によりそれぞれ結合することができる、sgRNA分子の対。
クリスパー(Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)(CRISPR)タイプIIシステムは、近年有望なゲノム編集ツールとして浮上しているRNA誘導エンドヌクレアーゼ技術である。本システムには、2つの異なる構成要素がある:(1)ガイドRNA、および(2)エンドヌクレアーゼ、この場合CRISPR関連(Cas)ヌクレアーゼ、Cas9である。ガイドRNAは、細菌性CRISPR RNA(crRNA)およびトランス活性化型crRNA(tracrRNA)の組み合わせであり、シングルキメラガイドRNA(sgRNA)転写物として設計されている(Jinek et al., Science 2012 Aug 7; 337(6096):816-21)。sgRNAは、crRNAの標的特異性とtracrRNAの足場特性とを組み合わせて単一の転写物とされる。sgRNAおよびCas9が細胞内で発現されると、ゲノム標的配列は修飾され得るかまたは永久に破壊され得る。
タイプIICRISPR−CasシステムのDNAターゲティングメカニズムは、標的DNA上のプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)の存在に応じて、配列特異的な方法で、CAS9エンドヌクレアーゼが標的DNAを切断するように誘導する、ガイドRNAを包含する。
黄色ブドウ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼ、または黄色ブドウ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼの変異体を用いて、DMPKからトリヌクレオチドリピート伸長を切除するために、特異的に設計されたシングルガイドRNA(すなわちsgRNA)が、本明細書で開示される。
GUUUUAGUACUCUGGAAACAGAAUCUACUAAAACAAGGCAAAAUGCCGUGUUUAUCUCGUCAACUUGUUGGCGAGAUUUUU
AGUCGAAGACAGUUC(配列番号7)
ACAACCGCUCCGAGC(配列番号8)
GGCGAACGGGGCUCG(配列番号9)
AGGGUCCUUGUAGCC(配列番号10)
AAUACCGAGGAAUGU(配列番号11)
GCCCCGGAGUCGAAGACAGUUC(配列番号1)
CAGUUCACAACCGCUCCGAGC(配列番号2)
GCGGCCGGCGAACGGGGCUCG(配列番号3)
GGCUCGAAGGGUCCUUGUAGCC(配列番号4)
GACAAUAAAUACCGAGGAAUGU(配列番号5)
―DMPK遺伝子の3’UTR内に位置するトリヌクレオチドリピート伸長領域の上流(すなわち5’側)に、2本鎖切断(DSB)を誘導するために用いられる第1のsgRNA分子であって、ここで、上流のDSBは3’−UTR内に誘導される;
―DMPKのトリヌクレオチドリピート伸長領域の下流(すなわち3’側)にDSBを誘導するために用いられる第2のsgRNA分子であって、ここで、下流のDSBは3’−UTR内に誘導され、ここで、第2のsgRNA分子は、15〜40ヌクレオチド長の、特に20〜30ヌクレオチド、特に20〜25ヌクレオチドの範囲であり、例えば20、21、22、23、24または25ヌクレオチドであり、特に21または24ヌクレオチドからなるガイド配列であって、かつ、配列番号11に示される配列を含むガイド配列を含む。
−配列番号1および配列番号5;
−配列番号2(または配列番号18)および配列番号5;
−配列番号3および配列番号5;
−配列番号4および配列番号5;
―5’から3’方向に、配列番号17、配列番号43および配列番号48の組み合わせ;
―5’から3’方向に、配列番号17、配列番号44および配列番号48の組み合わせ;
―5’から3’方向に、配列番号17、配列番号45および配列番号48の組み合わせ;
―5’から3’方向に、配列番号17、配列番号46および配列番号48の組み合わせ;または
―5’から3’方向に、配列番号17、配列番号47および配列番号48の組み合わせ。
本発明は、SaCas9エンドヌクレアーゼおよびsgRNA分子を用いて、DMPKの標的ゲノムDNA配列に到達する様々な方法を企図している。いくつかの実施形態では、SaCas9エンドヌクレアーゼは、ポリペプチド形態で、細胞内に導入される。一変異体では、SaCas9エンドヌクレアーゼは、細胞透過性ペプチド(細胞への分子の取り込みを促進するペプチドである)にコンジュゲートまたは融合する。sgRNA分子はまた、直接的に、または、脂質誘導体、リポソーム、リン酸カルシウム、ナノ粒子などのトランスフェクション試薬、マイクロインジェクション、またはエレクトロポレーションを用いて、単離オリゴヌクレオチドとして、細胞に投与され得る。SaCas9エンドヌクレアーゼおよびsgRNA分子はまた、インビトロでリボ核たんぱく質複合体として予め組み立てられて、その後、直接的に、またはトランスフェクション試薬を用いて、細胞に送達されてもよい。
の有効量を、それを必要とする対象に投与することを含む方法に関する。
プラスミド構築
黄色ブドウ球菌Cas9をコードするプラスミドは、プラスミドpX601−AAV−CMV::NLS−SaCas9−NLS−3xHA−bGHpA;U6::BsaI−sgRNA(MLS42)[Ran et al, 2015]に由来する。EFSプロモーターを、プライマーF−XhoI−MreI−EFS(MLS63)およびR−XmaI−NruI−EFS(MLS64)でPCR増幅し、プロモーターを欠いたpX601−AAV−::NLS−SaCas9−NLS−3xHA−bGHpA;U6::BsaI−sgRNAのXhoI/AgeI部位にクローニングして、pAAV−EFS::NLS−SaCas9−NLS−3xHA−bGHpA;U6::BsaI−sgRNA(MLS43)を得た。
DMPKの3’−UTR内の全ての可能性のあるSaCas9標的を、手動で、およびプログラムCasBLASTR(http://www.casblastr.org/)およびCRISPOR(http://tefor.net/crispor)によって、スクリーニングした。PAM配列NNGRRTを、R=AまたはGで、スクリーニングに用いた(非コード鎖ではAYYCNN、Y=TまたはC[Ran et al, Nature 2015; Kleinstiver et al, Nat Biotech 2015].)。各sgRNAプロトスペーサーについて、潜在的オフターゲットの数を、ヒトゲノム「ホモサピエンス(Homo sapiens)(GRCh38/hg38)−ヒト(2014年4月2日更新)」に基づき、ミスマッチのカットオフの数≦4に設定して、プログラムCasOFFinder(http://www.rgenome.net/cas−offinder/)により計算した。潜在的オフターゲットはまた、ヒトゲノム「ホモサピエンス(Homosapiens)−ヒト−UCSC2013年12月(GRCh38/hg38)」に基づき、CRISPOR(http://tefor.net/crispor)によってもチェックした。
HeLa細胞を、10%ウシ胎仔血清(FBS、Invitrogen)を添加した、高グルコールおよびGlutaMAX(Invitrogen)を含むダルベッコ変法イーグル培地(DMEM)で培養した。DM1細胞(iPS由来MPC)を、20%FBS、1%MEM Non−Essential Amino Acids Solution(Thermo Fisher Scientific)および1%GlutaMAX(商標)Supplement(Thermo Fisher Scientific)を添加したKnockOut DMEM(Thermo Fisher Scientific)で増殖させた。
37℃の標準温度および5%CO2を用いて細胞を増殖させ、培養細胞を維持した。
細胞を、トランスフェクションの前日に、6または12ウェルプレートに播種し、70〜90%の培養密度でトランスフェクトした。トランスフェクション試薬FuGENE HD(FuGENE−DNA比率3:1;Promega)、およびリポフェクタミン3000(Thermo Fisher Scientific)を用いて、それぞれHeLa細胞およびDM1 iPS由来MPC細胞を、トランスフェクトした。細胞を、トランスフェクションの2〜3日後に遠心分離で回収し、細胞ペレットをゲノムDNA抽出まで−80℃で保管した。
レンチウイルスベクターを、以前に記載されているように(Cantore et al,2015)、リン酸カルシウム沈殿による293T細胞の一過性の4−プラスミドトランスフェクションによって生成した。ベクター力価[1ml当たりのベクターゲノム(vg/ml)]を、感染したHCT116細胞のゲノムDNAに対する定量的PCRにより、決定した(ウイルス生成および力価測定は、それぞれGenethon Vector CoreおよびQualityコントロール Servicesによる)。
ゲノムDNAを、HeLa細胞およびDM1 iPS由来MPC細胞から、GeneJet Genomic NA purification Kit(Thermo Fisher Scientific)またはQIAmp DNA Micro and Mini Kit QIAGEN)のいずれかを用いて、製造元の指示に従い抽出した。マウス筋肉由来の不死化DM1筋芽細胞からのgDNA抽出は同様に、MagNA Pure LC Total Nucleic Acid Isolation Kit(Roche)を用いたMagNA Pure 96システムによって行った。
FISH実験は、いくつかの修正を加えて、Taneja KL[Taneja KL, 1998]により記載されているように行った[Denis Furling laboratory,Institut de Miologie,Paris]。簡単に説明すると、チャンバースライド(Corning)中で培養した細胞をリン酸緩衝食塩水(PBS)で洗浄し、4%パラホルムアルデヒド(PFA)で固定した。固定後、細胞をPBSで洗浄し、70%エタノール中、4℃で保管した。細胞をPBS中で水和させ、ハイブリダイゼーションバッファー(40%ホルムアミド、2×食塩水−クエン酸ナトリウム(saline−sodium−citrate)(SSC)、0.2%BSA)中で、プローブCy3標識2’OMe(CAG)7(Sigma−Aldrich)と共にインキュベートした。ハイブリダイゼーション後、顕微鏡スライドガラスを数回洗浄した後、細胞膜をPBS/0.25%TritonX−100中で透過処理した。SaCas9を、たんぱく質のC末端に位置するHAタグエピトープに対する抗体によって検出した。精製マウスモノクローナル抗HAタグ(Covance)を、5%BSA中で1/400の希釈度で一次抗体として使用し、室温で1時間30分間インキュベートした。ヤギ抗マウス633二次抗体(Themo Fisher Scientific)を、5%BSA中で1/1000の希釈度で使用し、室温で1時間インキュベートした。DAPIを含むマウント液(Mounting solution)(Southern Biotech)を用いて、カバーガラス付き顕微鏡スライドガラスを組み立てた。顕微鏡画像を共焦点顕微鏡(Leica DM 18)で取得し、Leica Application Suite Xソフトウェアで分析し、Adobe PhotoshopまたはImageJソフトウェアで処理した。
ゲノムDNAを、上述のWTおよびDM1不死化細胞株から抽出した。およそ5μgのgDNAを、EcoRI制限酵素により、37℃で一晩切断した。切断したDNAを、0.7%アガロースゲル上で、約16時間、50Vで分離した。移動後、アガロースゲルを1M NaOH溶液中で1時間インキュベートしてDNAを変性させ、次いで中和バッファー(1M Tris、3M NaCl pH8.5)中で2時間インキュベートした。ゲノムDNAフラグメントを、6×SSCバッファー中で、毛細管現象を介して、ゲルからGenescreen Plus Hybridization membrane(Perkin Elmer)に移し、Stratalinker UV架橋剤を用いてメンブレンを架橋した。DNAを、DMPK CTGリピートの領域をカバーする2×106 cpm/mLの1.4kb BamHIプローブ(B1.4)(Gourdon et al, 1997)と、ハイブリダイズさせた。プローブをHigh Prime DNA labeling Kit(Sigma)で予め標識し、50μg/ mLのHuman Cot−1 DNA(Thermo Fisher Scientific)を含むPerfectHyb Plus Hybridizationバッファー(Sigma)中で、68℃で一晩ハイブリダイゼーションを行った。シグナルは、Phosphorimagerを用いて出現させた。
製造元のプロトコールに従って、TRIzol試薬(Life Technologies)を用いて全RNAを単離した。RT−PCRは、Arandelおよび同僚によって記載されたように(Arandel et al, 2017)、行った。簡単に説明すると、1μgのRNAをM − MLV逆転写酵素(Life Technologies)によって逆転写し、1μlのcDNA調製物を、表2に列挙したプライマーと共にPCR(ReddyMix、Thermo Fisher Scientific)に使用した。PCR産物を、2%アガロースゲル電気泳動によって分離し、UV曝露時にGelRedDNA染色で可視化した。ImageJソフトウェアを使用して各PCRバンドの光学密度(optical density)を定量化し、エクソンインクルージョン(exon inclusion)の割合を[エクソンインクルージョンバンド/(エクソンインクルージョンバンド+エクソンエクスクルージョン(exclusion)バンドの合計)]×100として計算した。
DM1患者からクローニングした45kbのヒトゲノムDNAを有するDMSXLマウス(90% C57BL/6バックグラウンド)を、インビボ研究に使用した[Huguet et al, 2012]。トランスジェニック状態は、Gomes-Pereiraおよび共同研究者によって記載されているように[Gomes-Pereira et al,2007]、PCRによってアッセイした。マウスの飼育および取り扱いは、フランスの動物保護委員会によって定められたガイドライン「実験動物の管理および使用の手引き」に従って行われた:EEC86/609 Council Directive−Decree 2001−13。
SaCas9およびsgRNA発現カセット
本研究で調べたCas9は、黄色ブドウ球菌由来のCas9(SaCas9)である。SaCas9はサイズが小さく、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターに適合することができるので、本エンドヌクレアーゼは特に興味深い。SaCas9およびSasgRNA足場を含有する全てのプラスミドは、プラスミドpX601−AAV−CMV::NLS−SaCas9−NLS−3xHA−bGHpA;U6::BsaI−sgRNA(Feng Zhang Lab,Addegene番号61591、図1)に由来する。同じベクター内に、SaCas9と2つのsgRNAカセットを含めるために、当初のCMVプロモーターを、最初に、より小さいEFSに置き換えた(図1、MLS43)。SaCas9の発現およびその核局在化を、HAエピトープに対する抗体(Ab)を用いたウエスタンブロッティングおよび免疫蛍光によって検証した(データ不掲載)。次に、sgRNAについての第2のカセットを追加した。これは、既存のものと同じであるが、sgRNAプロトスペーサーのための異なるクローニング部位を伴う(図1、MLS47)。
次に、病的CTG伸長の存在下で、ヒトDMPK遺伝子座において適切なsgRNAと組み合わせてSaCas9を用いた、CRISPR−Cas9システムの有効性を試験した。CTGリピート伸長を欠失させるために、同一のプラスミド内に、SaCas9および2つのsgRNAを有するコンストラクトを構築し、sgRNAの一つはCTGリピートより上流の領域を標的とし、もう一つはCTGリピートより下流の領域を標的とした(それぞれ、プラスミドMLS47のBbsIおよびBsaI部位にクローニングされている、図1参照)。
長いCTGリピート伸長の欠失におけるCRISPR−Cas9の能力を試験するために、2600CTGリピートを有する患者由来の、不死化DM1細胞を使用した(Arandel et al, 2017)。SaCas9およびsgRNAについてのレンチウイルスベクターを構築した。これらのウイルスは、筋芽細胞を、高効率で形質導入することが知られている。レンチウイルスコンストラクトの図を、図6Aに図示する:SaCas9は、CMVプロモーターの制御下にあり、2つのsgRNAの対(CTGリピートの上流および下流の領域を標的とする。UPおよびDW)は、タンデムであり、共にU6プロモーターの制御下にある。細胞内のsgRNA発現を追跡するために、GFP発現カセットもsgRNAレンチウイルスベクターに含めた。
サザンブロットによりCTG切除について解析したのと同じ細胞およびDM1クローン(図7)を、DM1患者の骨格筋、並びに患者の不死化DM1筋芽細胞において、調節解除されていることが知られているいくつかの転写産物(Arandel et al, 2017)の、選択的スプライシングプロファイルを解析するために使用した。細胞を筋管で分化させ(材料と方法を参照)、その後RNA抽出のために回収した。解析した転写産物に特異的なプライマーを、表2に挙げる。RT−PCRの結果を、図8に示している:各転写産物について、RT−PCRゲルの代表的画像を左側に報告し(図8A)、エクソンインクルージョンの定量化を右側に表している(図8B)。解析した6つの転写産物全てが、DM1デルタクローンにおいて、スプライシング異常の修正を示した。特に、転写産物LDB3、SERCA1、MBNL1およびDMDは、野生型(WT)と同じレベルに達する復帰(reversion)を示した。IRとBIN1の復帰はそれほど顕著ではなかったが、それでもDM1コントロールクローンCtrl1および2とは統計的に差があった。全体的に見て、これらの結果は、DM1細胞におけるCTG伸長の切除が、DM1スプライシング異常症(splicopathy)を復帰させることを示している。
我々のsgRNA対が、インビボで、CTGリピート欠失を誘導する能力を確認するために、DM1疾病の動物モデルとして、DMSXLマウスを選択する(Huguet et al, 2012)。DMSXLマウスは、約1200CTGリピートを有するヒトDMPK遺伝子の1コピーを有し、核内フォーカスの存在、スプライシングの欠陥、および筋力低下などの、ヒトの病態の多くの特徴を再現している。CRISPR−Cas9システムを、DMSXLマウスの筋肉組織に送達するために、SaCas9およびsgRNAについてのアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターを、構築した。AAVは効率的に筋肉に感染することが知られているが、約4.7kbの限られたパッケージング能力を有する(Warrington et al, 2006; Buj-Bello et al, 2008)。この理由により、2つのAAVを設計した。1つは、Cas9用であり、もう1つは、2つのタンデムなsgRNA用である。SaCas9は、筋肉内の導入遺伝子の良好な発現を推進する合成小型プロモーターである、SPc5−12の制御下にある(Li et al, 1999)。sgRNA対4−23およびそれらのU6プロモーターに関する配列を、図6に示す対応するレンチウイルスコンストラクトからPCR増幅し、AAVプラスミドの、デスミンプロモーター駆動eGFP−K発現カセット(Kは、核膜局在のためのKashペプチドである)のポリアデニル化配列の下流に、クローニングした(図9A)。
Claims (15)
- 標的ゲノムDNA配列に相補的な配列に、塩基対形成により結合することができる第1および第2のsgRNA分子を含む、sgRNA分子の対であって、第1および第2のsgRNA分子は、DMPK遺伝子の3’非翻訳領域(3’−UTR)内に位置するヌクレオチドリピート伸長の、それぞれ5’側および3’側に位置し、
第1のsgRNA分子は、Cas9エンドヌクレアーゼの存在下、3’−UTR内で、ヌクレオチドリピート伸長の5’側において、2本鎖切断を誘導することができ;
第2のsgRNA分子は、Cas9エンドヌクレアーゼの存在下、3’−UTR内で、ヌクレオチドリピート伸長の3’側において、2本鎖切断を誘導することができ;
Cas9エンドヌクレアーゼは、黄色ブドウ球菌に由来するか(SaCas9)、またはCas9エンドヌクレアーゼはSaCas9の機能的変異体であり;
第2のsgRNA分子は、配列番号11に示されるヌクレオチド配列を含む、15〜40ヌクレオチドのガイド配列を含む、sgRNA分子の対。 - 第1のsgRNAが、配列番号7、配列番号8、配列番号9、または配列番号10に示されるヌクレオチド配列を含む、15〜40ヌクレオチド長のガイド配列を含む、請求項1に記載のsgRNA対。
- 第1のsgRNAのガイド配列が、配列番号1〜4および配列番号18から選択されるヌクレオチドからなる、請求項1または2に記載のsgRNA対。
- 第2のsgRNAのガイド配列が、配列番号5に示されるヌクレオチド配列からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載のsgRNA対。
- DMPK遺伝子の3’−UTR内の、ヌクレオチドリピート伸長の5’側または3’側に位置する標的ゲノムDNA配列に相補的な配列に、塩基対形成により結合することができる配列を含む、sgRNAであって;
sgRNA分子が、黄色ブドウ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼ(SaCas9)、またはSaCas9の機能的変異体であるCas9エンドヌクレアーゼの存在下、前記3’−UTR内で、前記ヌクレオチドリピート伸長の5’側または3’側のいずれかにおいて、2本鎖切断を誘導することができ;
sgRNA分子が、配列番号7〜11からなる群から選択される配列を含む、15〜40ヌクレオチドのガイド配列を含む、sgRNA。 - 前記sgRNAが、配列番号1〜5および配列番号18からなる群から選択されるガイド配列を含む、請求項5に記載のsgRNA。
- 請求項1〜6のいずれか一項に記載のsgRNAまたはsgRNA分子の対をコードするベクターであって、好ましくは、プラスミドまたは、rAAVベクターまたはレンチウイルスベクターなどのウイルスベクターである、ベクター。
- 請求項7に記載のベクターをトランスフェクトまたは形質導入した標的細胞。
- 請求項8に記載の標的細胞を、前記sgRNAまたはsgRNA対の生成を可能にする条件下で培養すること、および前記培養ステップからsgRNAまたはsgRNA分子の対を回収することを含む、sgRNAまたはsgRNA対の生成方法。
- 細胞内で、DMPK遺伝子の非翻訳領域内に位置するヌクレオチドリピートを切除するためのインビトロ法であって、細胞内に、請求項1〜4のいずれか一項に記載のsgRNA分子の対、または請求項7に記載のベクター、および黄色ブドウ球菌由来のCRISPR/Cas9エンドヌクレアーゼを導入することを含む、方法。
- 医薬として、黄色ブドウ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼと組み合わせて用いるための、請求項1〜4のいずれか一項に記載のsgRNA、または請求項7に記載のベクター。
- 1型筋緊張性ジストロフィーを治療するための方法において、黄色ブドウ球菌由来のCas9エンドヌクレアーゼと組み合わせて使用するための、請求項1〜4のいずれか一項に記載のsgRNA、または請求項7に記載のベクター。
- ヌクレオチドリピート伸長が、DMPK遺伝子の3’−UTR内に位置する、ビ、トリ、テトラ、ペンタまたはヘキサヌクレオチドリピート伸長であり、特にトリヌクレオチドリピート伸長である、請求項12に記載の使用のための、sgRNA対。
- ヌクレオチドリピート伸長が、20〜10000リピートなど、より具体的には50〜5000リピートなどの、20以上のリピートを含む、請求項13に記載の使用のための、sgRNA対。
- 請求項1〜6のいずれか一項に記載のsgRNAもしくはsgRNA分子対、または請求項7に記載のベクター、または黄色ブドウ球菌由来のCRISPR/Cas9エンドヌクレアーゼ、または請求項8に記載の細胞を含む、医薬組成物。
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