JP2019032329A - 広範囲の疎水性を有する被検成分の精製及び検出のためのｌｃ−ｍｓ構成 - Google Patents

Abstract

【課題】液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）による、広範囲の疎水性を有する被検成分の精製及び分析のためのシステム、装置、キット、及び方法を提供する。【解決手段】一組の液体クロマトグラフィーカラム、一組の移動相緩衝液、及び任意に単一のイオン化法（例えばエレクトロスプレーイオン化）を用いて、広範囲の被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムで精製及び分析する。広範囲の分配係数を有する被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び分析は、異なるクラスの被検成分に特別なＬＣ運転パラメーター及びＭＳシステムパラメーターを選択することによって、カラムもしくは緩衝液の変更又はＬＣ−ＭＳシステムに対する何らかのその他のハードウェア構成の変更をする必要なしに達成される。【選択図】図１７

Description

関連出願の相互参照
本願は、２０１０年１０月２９日出願の米国仮特許出願第６１／４０８，２６６号、発明の名称“広範囲の疎水性を有する被検成分の精製及び検出のためのＬＣ−ＭＳ構成(LC-MS CONFIGURATION FOR PURIFICATION AND DETECTION OF ANALYTES HAVING A BROAD RANGE
OF HYDROPHOBICITIES)”、発明者：Ｊｏｓｅｐｈ Ｌ．Ｈｅｒｍａｎ、Ｒｏｂｅｒｔ
ＤｅＷｉｔｔｅ、及びＤａｙａｎａ Ａｒｇｏｔｉに基づく利益及び優先権を主張し、その全文を引用によって本明細書に援用する。本願はまた、２０１０年１０月２９日出願の米国仮特許出願第６１／４０８，３８５号、発明の名称“ビタミンＤ代謝産物のＬＣ−ＭＳ分離及び検出(LC-MS SEPARATION AND DETECTION OF VITAMIN D METABOLITES)”、発明
者：Ｊｏｓｅｐｈ Ｌ．Ｈｅｒｍａｎ及びＤａｙａｎａ Ａｒｇｏｔｉも参照し、その全文を引用によって本明細書に援用する。

技術分野
本発明は、被検成分(analyte)のＬＣ−ＭＳ分離及び検出のための方法、システム、装
置、及びキットに関する。

液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）は有力な被検成分検出及び測定技術で、急速に診断目的で小分子被検成分を検出するための好適な方法になりつつある。しかしながら、ＬＣ−ＭＳに求められる計装(instrumentation)は技術的に複雑であるので、
それ自体、典型的にはあまり平均的な病院の臨床検査室又は医学研究所の技師向きではない。概して、これらの検査室はＬＣ−ＭＳ診断法を採用しておらず、代わりに、一般的には自動イムノアッセイなどの代替の診断技術を使用するか、又はサンプルを分析のためにレファレンス・ラボラトリー（基準研究所）に出している。さらに、レファレンス・ラボラトリー又はその他のタイプの試験研究所（工業又は環境サンプルを試験するための研究所などであるが、これらに限定されない）でさえ、手順が単純化され、実質的に自動化されれば、ＬＣ−ＭＳのより幅広い利用が進むであろう。

現在のＬＣ−ＭＳ法は、それぞれ異なる関心被検成分のために適切な液体クロマトグラフィーカラム及び移動相を注意深く選択する必要があるほか、関心被検成分を単離及び同定するために質量分析計の注意深い較正も必要とする。第二の異なる被検成分を同じ装置で分析するには、ＬＣ−ＭＳ技師が、カラム、移動相、又は質量分析計の設定のうちの一つ又は複数を一般的に変更し、最適化せねばならない。そのような変更の時間及び技術的複雑さのために、個別サンプルを順不同に受け付ける分析は、費用もかかり非効率的である。そこで、その代わりに、同一又は類似の被検成分の分析として旗印（識別）されたサンプルは一般的に大きなバッチにグループ分けされ、一緒に実験されている。この方式は、ＬＣ−ＭＳシステムのセットアップに対する実験ごとの変更の数を減らすかもしれないが、各サンプルの結果が出るまでの時間を著しく増大する。ＬＣ−ＭＳのセットアップ及び方法の高度な複雑さは、システムに対する調整、手動変更、及びハードウェアの再構成のために、熟練したＬＣ−ＭＳ技師を常に手近に置くことを求めている。

病院は、典型的には、そのような高度な分析化学実験を実施するための設備も人材もないので、ＬＣ−ＭＳシステムは今日の病院では一般的に利用されていない。代わりに、ＬＣ−ＭＳ分析と識別されたサンプルは、数少ない中央のレファレンスラボに出され、そこでサンプルは注文のアッセイタイプに従ってバッチ分けされる。この実践法は、時間浪費的かつ高価である。さらに、この状況は、同じサンプルに対して複数の分析を実施するこ
とを困難にしている。その結果、サンプルは、それらのバッチが分析されるまでに数時間又はさらには数日間も保持され、複数の関心被検成分を含有するサンプルは別個に分取されるか、又は異なる被検成分のアッセイのたびにバッチの待ち行列に戻されねばならない。病院がＬＣ−ＭＳ装置を所有している主要なレファレンスラボに近くなければ、サンプルをラボに輸送してやり取りせねばならず、さらにおそらくは数日の遅れが生じる。一刻を争う分析の場合（例えば、救急科の患者の場合、又は不安定な被検成分を含有するサンプルの場合）、そのような遅れは容認しがたい。より日常的な試験の場合、そのような遅延及び追加費用のゆえに、多くの有力なＬＣ−ＭＳ診断試験は単に今日多くの病院及び診断研究所で利用されなくなっている。

異なる特性を有する広範囲の化合物を精製及び分析するのに必要な異なるカラム及び移動相緩衝液の数を削減することによって、ＬＣ−ＭＳ分析を単純化するための努力がなされてきた。例えば、Ｈｅｒｍａｎは、診断目的ではないが、薬物スクリーニングアッセイのために、薬物化合物のライブラリーを、一組のカラム、一組の移動相緩衝液、及び一組の液体クロマトグラフィー条件（例えば、流速、アイソクラチック（定組成）溶離など）を用いて分析するためのＬＣ−ＭＳ法を報告した（Ｒａｐｉｄ Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ
Ｓｐｅｃｔｒｏｍ．１６：４２１−４２６，２００２）。Ｈｅｒｍａｎの方法は、確立された臨床参考範囲内での検出及び／又は臨床標準への準拠が必要とされない約４の対数分配係数（ｌｏｇＰ）単位にわたる疎水性を有する化合物には適用可能である。しかしながら、Ｈｅｒｍａｎの方法は、極めて親水性の化合物（すなわちｌｏｇＰが約１未満）又は極めて疎水性の化合物（すなわちｌｏｇＰが約５より大）には適用できない。

Ｈｅｒｍａｎ著、Ｒａｐｉｄ Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍ．１６：４２１−４２６，２００２

本発明は、液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）による、広範囲の疎水性を有する被検成分の精製及び検出のための方法、システム、装置、及びキットに関する。一組の液体クロマトグラフィーカラム、一組の移動相緩衝液、及び任意に単一のイオン化法（例えばエレクトロスプレーイオン化）を用いて、広範囲の被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムで精製及び分析することができる。広範囲の疎水性を有する被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び分析は、異なる被検成分に特別なＬＣ運転パラメーター（例えば、流速、一つの緩衝液対別の緩衝液の比率、温度など）及びＭＳシステムパラメーター（例えば、イオン化電圧、脱溶媒和温度など）を選択することによって、カラムもしくは緩衝液の変更又はＬＣ−ＭＳシステムに対する何らかのその他のハードウェア構成の変更をする必要なしに達成される。本明細書中に記載の方法、システム、装置、及びキットは、多数のサンプルを順不同で分析する場合の結果までの時間の実質的な短縮を提供する。また、本明細書中に記載の方法、システム、装置、及びキットは、これまでに報告された方法と比べて個別の被検成分に対する特異性に本質的な妥協をすることなく、広範囲の被検成分に対して順序及び使いやすさも提供する。

一態様において、広く異なる疎水性を有する少なくとも二つの被検成分を、液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）を用いて検出及び／又は定量するための方法を開示する。該方法は、（１）第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分を準備し、ここで、第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れており、（２）第一及び第二の群のそれぞれからの少なくとも一つの被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動
相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて精製し、そして（３）第一及び第二の群からの被検成分を質量分析計を用いて分析することを含む。一態様において、質量分析計は液体クロマトグラフィーシステムと流体連結されていてよい。別の態様において、質量分析計は、液体クロマトグラフィーシステムに対して“オフライン”であってもよい。

被検成分は、同じサンプルに含有されていても、又は異なるサンプルに含有されていてもよい。同様に、被検成分は、単一のＬＣ−ＭＳ実験で精製及び分析されても、又は異なるときに分析されてもよい。

約４．５以上のｌｏｇＰ単位離れている被検成分を連続的に精製及び分析するのに、ＬＣ−ＭＳシステムのハードウェアに対する変更は必要ない。すなわち、異なる被検成分を精製及び分析するのに、カラム及び移動相緩衝液のようなハードウェアパラメーターを変更する必要がない。その代わりに、これらに限定されないが、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、電極電圧、衝突ガス温度、衝突ガス圧、衝突エネルギー、及びそれらの組合せのようなＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを被検成分に応じて変更すればよい。

別の態様において、広く異なる疎水性を有する二つ以上の被検成分を、ＬＣ−ＭＳを用いて検出及び／又は定量するための方法を開示する。該方法は、（１）液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を準備し、ここで、ＬＣ−ＭＳシステムは、約−１．２〜約６の範囲にわたる対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有する複数の被検成分を、少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを変えることによって精製及び分析するように構成されており、（２）対数分配係数の範囲が約−１．２〜約６にわたる少なくとも二つの被検成分を選択し；（３）選択された被検成分に基づいて少なくとも一つの分析プロトコルを選択し、ここで、少なくとも一つの分析プロトコルの選択は、少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを変えることを含み、そして（４）選択された被検成分を、ＬＣ−ＭＳ及び選択された分析プロトコルを用いて、二つの被検成分それぞれについて診断品質基準が満たされるように精製及び分析することを含む。

さらに別の態様において、方法を開示する。該方法は、（１）ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチド、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート（アヘン剤）及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、又はそれらの代謝産物からなる群から選ばれる第一の被検成分及び第二の被検成分を準備することを含み、ここで、第一及び第二の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れている。方法はさらに、（２）第一の被検成分及び第二の被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて精製し、そして（３）第一の被検成分及び第二の被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムと流体連結されている質量分析計を用いて分析することを含む。

なおさらに別の態様において、広く異なる疎水性を有する三つ以上の被検成分を、ＬＣ−ＭＳを用いて検出及び／又は定量するための方法を開示する。該方法は、（１）第一の被検成分、第二の被検成分、及び第三の被検成分を準備することを含み、ここで、第一の被検成分は約−１．２〜約０の範囲の対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有し、第二の被検成
分は約０〜約５の範囲のｌｏｇＰを有し、第三の被検成分は約５より大きく、約６以下のｌｏｇＰを有している。全体として、これはほぼ全実用範囲のｌｏｇＰを表している。すなわち、第一の被検成分は非常に親水性であり、第三の被検成分は非常に疎水性であり、そして第二の被検成分は本質的にその間のどこかである。

方法はさらに、（２）液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液、及び質量分析計を準備し、そして（３）第一、第二、及び第三の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析することを含む。第一、第二、及び第三の被検成分は本質的に任意の順序で分析できることは理解されるであろう。

なおさらに別の態様において、関心被検成分をＬＣ−ＭＳによって精製及び分析するためのシステムを開示する。該システムは、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムから精製及び溶出された各被検成分に特異的な一つ又は複数の親イオン又はプロダクトイオンをイオン化、フラグメント化、及び検出できる質量分析計を含む。

液体クロマトグラフィーシステムは、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチド、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート（アヘン剤）及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せのそれぞれの精製及び溶出を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、一つの水性移動相緩衝溶液、及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて実行することができる。

なおさらに別の態様において、関心被検成分をＬＣ−ＭＳによって精製及び分析するためのキットを開示する。該キットは、少なくとも一つの分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムを用いて複数の被検成分を精製するための試薬（試薬は、少なくとも一つの水性移動相緩衝溶液及び少なくとも一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を含む）、及び質量分析計を用いて複数の被検成分を分析するためのプロトコルを含む。プロトコルは、約−１．２〜約６の範囲の分配係数（ｌｏｇＰ）を有する被検成分を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、単一の水性移動相緩衝液、及び単一の実質的に非水性の移動相緩衝液を用いて精製及び分析するための説明書を含む。一態様において、プロトコルはさらに、約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する被検成分を、約−１．２〜約６のｌｏｇＰ範囲の各被検成分について診断品質基準が満たされるように精製及び分析するための説明書を含む。

なおさらに別の態様において、広範囲の疎水性を有する関心被検成分を精製及び分析するための装置を開示する。該装置は、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を含み、ここで、液体クロマトグラフィーシステムは、約−１．２〜約６の対数分配係数（ｌｏｇＰ）範囲にわたる被検成分の精製及び溶出を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、一つの水性移動相緩衝溶液、及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を使用して実行することができる。

該装置はさらに、液体クロマトグラフィーシステムから精製及び溶出された各被検成分
に特異的な一つ又は複数の親イオン又はプロダクトイオンのイオン化、フラグメント化、及び検出ができる質量分析計と、複数のサンプルを管理するように構成されたサンプル管理装置(sample handling device)と、そして液体クロマトグラフィーシステム及び質量分析計のそれぞれに結合され、少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーター（すなわち、ソフトウェア制御パラメーターであってハードウェアパラメーターではない）を制御又は変化させるように構成された制御システムとを含む。

本発明のこれら及びその他の目的及び特徴は、以下の説明及び添付の特許請求の範囲からさらに十分に明らかになるか、又は、以下に示す本発明の実施から学ぶことができるであろう。

本発明の上記及びその他の利点及び特徴をさらに明確にするために、本発明のさらに詳細な説明を、添付の図面に示されているその具体的な態様を参照することによって提供する。当然のことながら、これらの図面は本発明の例示的態様を図示しているだけであって、本発明の範囲の制限と見なされるべきでないことは理解されるはずである。添付の図面を使用しながら本発明をさらに具体的及び詳細に記載及び説明する。

図１は、広範囲の分配係数を有する被検成分を精製及び分析するためのシステムを概略的に示すブロック図である。 図２は、広範囲の分配係数を有する被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）によって精製及び分析するための方法を示すフロー図である。 図３は、広範囲の分配係数を有する被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）によって精製及び分析するための方法を示すフロー図である。 図４Ａは、ギ酸アンモニウムを用いた２５−ＯＨ Ｄ_２の分子イオン領域のＥＳＩフルスキャンスペクトルを示す。図４Ｂは、ギ酸を用いた２５−ＯＨ Ｄ_２の分子イオン領域のＥＳＩフルスキャンスペクトルを示す。 図５Ａは、ＥＳＩを用いて［Ｍ＋Ｈ］＋分子イオンを製造した２５−ＯＨ Ｄ_２の選択反応モニタリング（“ＳＲＭ”）信号を示す。図５Ｂは、ＡＰＣＩを用いて［Ｍ＋Ｈ−Ｈ_２Ｏ］＋脱水イオンを製造した２５−ＯＨ Ｄ_２のＳＲＭ信号を示す。 図６は、モルヒネ、ノルコデイン、ヒドロモルホン、及びノルヒドロコドンを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図７は、コデイン、オキシコドン、６−モノアセチルモルヒネ（６−ＭＡＭ）、及びヒドロコドンを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図８は、オキシモルホン及びノルオキシコドンを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図９は、タペンタドール(tapentadol)、ノルフェンタニル(norfentanyl)、メトプロロール(metoprolol)、フェンタニル、ベンゾイルエクゴニン(benzoylecgonline)、コカイン、及びフェンシクリジン（ＰＣＰ）を含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１０は、ジヒドロコデイン、ｄ^９−ＴＨＣ−ＣＯＯＨ、ｄ^９−ＴＨＣ、トラマドール(tramadol)、及びメタドン(methadone)を含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１１は、免疫抑制剤のタクロリムス(tacrolimus)、エベロリムス(everolimus)、シロリムス(sirolimus)、及びシクロスポリンＡを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１２は、ステロイド類のコルチゾン、プロゲステロン、プレドニゾン、アンドロステンジオン、コルチゾール（ヒドロコルチゾン）、ヒドロキシプロゲステロン、及びテストステロンを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１３は、２５−ヒドロキシビタミンＤ_２及びＤ_３を含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１４は、アンフェタミン類のアンフェタミン、ＭＤＭＡ、及びメタンフェタミンを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１５は、化学療法薬のメトトレキサート、ドセタキセル、及びブスルファンを含有する溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１６は、ノルフェンタニル、タペンタドール、トラマドール、コカイン、フェンタニル、ＰＣＰ、ＴＨＣ−ＣＯＯＨ、及びメタドンを含有する抗体処理血清溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１７は、ノルコデイン、コデイン、ジヒドロコデイン、アンフェタミン、ベンゾイルエクゴニン、ＭＤＡ、メタンフェタミン、ＭＤＭＡ、及びＭＤＥＡを含有する抗体処理血清溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１８は、モルヒネ、オキシモルホン、ヒドロモルホン、ノルオキシコドン、及びノルヒドロコドンを含有する抗体処理血清溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図１９は、６−ＭＡＭ、オキシコドン、及びヒドロコドンを含有する抗体処理血清溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図２０は、タクロリムス、エベロリムス、シロリムス、及びシクロスポリンＡを含有する抗体処理血清溶液の注入から得られたＭＲＭクロマトグラムを示す。 図２１は、免疫抑制剤のタクロリムス、エベロリムス、及びシロリムスを含有する全血溶液から作成した標準曲線を示す。 図２２は、２５−ヒドロキシビタミンＤ_２及びＤ_３を含有する血漿溶液から作成した標準曲線を示す。 図２３は、血漿中ドセタキセルの標準曲線を示す。 図２４は、血漿中ブスルファンの標準曲線を示す。 図２５は、抗体処理血清中シクロスポリンＡの標準曲線を示す。 図２６は、抗体処理血清中テストステロンの標準曲線を示す。

Ｉ．序論及び定義
本発明は、液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）による、広範囲の疎水性を有する被検成分の精製及び検出のための方法、システム、及びキットに関する。単一の液体クロマトグラフィーカラム（例えば、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム）又は単一組の液体クロマトグラフィーカラム（例えば、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムと、その上流にあってそれと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラム）、一組の移動相緩衝液、及び任意に単一のイオン化法（例えば、エレクトロスプレーイオン化（“ＥＳＩ”）、大気圧化学イオン化（“ＡＰＣＩ”）及び当該技術分野で公知のその他のイオン化法）を用いて、広範囲の被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムで精製及び分析することができる。広範囲の疎水性を有する被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び分析は、異なる被検成分に特別なＬＣ運転パラメーター（例えば、流速、一つの緩衝液対別の緩衝液の比率、温度など）及びＭＳシステムパラメーター（例えば、イオン化電圧、脱溶媒和温度など）を選択することによって、カラムもしくは緩衝液の変更又はＬＣ−ＭＳシステムに対する何らかのその他のハードウェア構成の変更をする必要なしに達成される。異なる被検成分タイプを用いる実験の間にカラム、緩衝液などを変更する必要がないという事実のために、本明細書中に記載の方法、システム、及びキットは、これまでに報告された方法と比べて、個別の被検成分に対する特異性に本質的な妥協をすることなく、広範囲の被検成分に対して実質的に増大された速度及び使いやすさを提供する。

本明細書において使用されている用語“分配係数”及び“ｌｏｇＰ”は、平衡状態で二つの非混和性溶媒（例えばオクタノールと水）間における化合物の濃度比のことを言う。
従って、第一の近似として、ＬｏｇＰは、化学物質がいかに親水性(hydrophilic又は"water loving")であるか又は疎水性(hydrophobic又は"water fearing")であるかの尺度とな
る。ｌｏｇＰは指数関数であるので、一般に、１単位の変化は疎水性における１０倍の差を表すことに注意すべきである。

広範囲の疎水性（ｌｏｇＰの測定によって推定される）を有する被検成分の精製及び分析は、現在のＬＣ−ＭＳ技術に特別な難題をもたらしている。これは、主にそのような広範囲の化合物のクロマトグラフィー分離の達成に関連する難題によるものである。典型的には、ＬＣ−ＭＳシステムは、質量分析計での分析のために高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）システムを用いて化合物を分離する。ＨＰＬＣは、固定相と移動相間の分配の変化を利用し、化合物をそれらの疎水性に基づいて分離する。疎水性に大きな差があると、ＨＰＬＣでのリテンション特性に大きな差をもたらしがちである。

一般的に、この結果、異なる化学クラス（例えば異なる及び広範囲のｌｏｇＰ）の化合物を用いて作業する場合に所望のクロマトグラフィー分離を達成するには、移動相（すなわち液体緩衝溶液）、固定相（カラムの選択）、又はその両方の変更が必要になる。つまり、液体クロマトグラフィーのハードウェア（例えばカラム）、消耗品（例えば移動相緩衝液）、ＭＳのセットアップ（例えばイオン化のタイプ）、及びシステムパラメーター（例えば流速、グラジエントなど）は、一般的にそれぞれ異なる被検成分のタイプ又は被検成分のクラスに対して最適化される。この場合のクラスは、それぞれ所与のクラス内でかなり狭い範囲のｌｏｇＰによって定義される。

その結果、分析されるサンプルは、現在、関心被検成分の特徴に従って一緒にグループ分けされ、類似のサンプルが、関心被検成分に特有のカラム、緩衝液、及び運転パラメーターの特別なセットを備えた装置でバッチ式に一緒に実験される。第二の異なる関心被検成分を含有するサンプルを実験するには、カラム、移動相緩衝液、又は運転パラメーターの一つ又は複数を、ＬＣ−ＭＳオペレーターが一般的に変更し、最適化せねばならない。この方式は、ＬＣ−ＭＳシステムのセットアップに対する実験ごとの変更の数を減らすかもしれないが、各サンプルの結果が出るまでの時間を著しく増大する。さらに、この状況は、同じサンプルに対して複数の分析を実施することを困難にしている。その結果、サンプルは、それらのバッチが分析されるまでに数時間又はさらには数日間も待たねばならず、複数の関心被検成分を含有するサンプルは別の分量（アリコート）に分割されるか、又は異なる被検成分のアッセイのたびに待ち行列に戻されねばならない。一刻を争う分析の場合（例えば、救急科の患者の場合、又は不安定な被検成分を含有するサンプルの場合）、そのような遅れは容認しがたい。

本発明は、複数の及び広範囲の化学クラス（例えば広範囲の対数分配係数）の被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び分析を、単一組の液体クロマトグラフィーカラム（例えば浄化カラム及び分析カラム）及び単一組の移動相緩衝液（例えば水性緩衝液及び非水性緩衝液）を用いて広範囲の疎水性を有する化合物をアッセイ（すなわち精製及び分析）するために構成された方法、システム、装置、及びキットを提供することによって単純化することを追求している。ＬＣ−ＭＳ精製及び分析は、一つの化学クラスから別のクラスに切り替える際に、カラム及び緩衝液を変更するのではなく、各異なる被検成分又は被検成分のクラスに特別なＬＣ運転パラメーター（例えば、流速、一つの緩衝液対別の緩衝液の比率、温度など）及びＭＳシステムパラメーター（例えば、イオン化電圧、脱溶媒和温度など）を選択することによって達成される。

ＬＣ−ＭＳによって広範囲のｌｏｇＰを有する化合物を精製及びアッセイするのに使用できる統合されたＬＣ−ＭＳ法を開発することの難しさは、表１（以下）を参照することによって示すことができる。

表１に掲載された化合物は、様々な臨床目的及び薬物モニター目的のために、ＬＣ−ＭＳによって分析されることがある。しかしながら、現在の慣例では、ＬＣ−ＭＳ分析は、異なる被検成分のクラスに特別なプロトコルを用いることに依拠している。表１に掲載された化合物は、約−１．２（ブスルファン）から約６（２５ＯＨビタミンＤ_２）の範囲のｌｏｇＰを有するが、これは疎水性に約７桁をわずかに上回る差があることを表している。これは非常に広範囲の疎水性なので、そのように広範囲の被検成分が、一組の液体クロマトグラフィーカラム、一組の移動相緩衝液、及び任意に単一のイオン化法を用いてＬＣ−ＭＳによって精製及び分析できることは驚くべきことであり、予期せぬことである。

本明細書において使用されている“精製”という用語は、サンプルから関心被検成分以外のすべての物質を除去することを意味しない。その代わりに、一側面において、精製は、サンプルの一つ又は複数の他の成分に比べて一つ又は複数の関心被検成分の量を富化する手順のことを意味しうる。別の側面において、精製は、一つ又は複数の妨害物質、例えば質量分析による被検成分イオンの検出を妨害するような一つ又は複数の物質を除去するのに使用することができる。

本明細書において“サンプル”とは、固体材料の抽出又は環境表面からの拭き取り物（スワブ）を含む任意の流体又は液体サンプルのことを言い、“生物学的サンプル”とは、生物源、例えば、これらに限定されないが、毛髪、体組織（例えば皮膚又は組織生検）、血液、血漿、除タンパク血漿、血清、除タンパク血清、痰、胆汁、唾液、尿、糞便、涙液、汗、身体部位からの拭き取り物（スワブ）、微生物懸濁液など由来の任意のサンプルのことを言う。

本明細書において“キット”とは、共通法を実施するための、試薬、デバイス、キャリブレーター、対照、標準、又はそれらのいずれかの組合せを含む二つ以上の構成要素のことを言う。二つ以上の構成要素が単一の包装内に提供されているか、複数の包装内に提供されているかどうかに関わりない。

本明細書において“クロマトグラフィー”とは、液体、ガス又は超臨界流体によって運ばれる化学混合物が、固定相の周囲を又はそれを越えて流れるにつれて又は液相もしくは固相と化学的に相互作用するにつれて、溶質の差別的分布の結果、成分に分離される過程のことを言う。

本明細書において“液体クロマトグラフィー”（ＬＣ）とは、流体が微粉砕物質のカラム又はキャピラリー通路に均一に浸透するにつれて流体溶液の一つ又は複数の成分が選択的にリテンションされる過程を意味する。リテンションは、この流体が固定相に対して移動するにつれて、一つ又は複数の固定相とバルク流体（すなわち移動相）との間で混合物の成分が分配される結果である。“液体クロマトグラフィー”は、逆相液体クロマトグラフィー（ＲＰＬＣ）、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、超高速液体クロマトグラフィー（ＵＨＰＬＣ）、超臨界流体クロマトグラフィー（ＳＦＣ）及びイオンクロマトグラフィーを含むが、これらに限定されない。

本明細書において使用されている“ＨＰＬＣ”又は“高速液体クロマトグラフィー”という用語は、分離の程度が、移動相を加圧下で強制的に固定相（典型的には密に充填されたカラム）に通すことによって増大されている液体クロマトグラフィーのことを言う。

本明細書において使用されている“ＵＨＰＬＣ”又は“超高速液体クロマトグラフィー”という用語は、運転圧がＨＰＬＣより高い（例えば約１００ＭＰａ対約４０ＭＰａ）、カラムの直径が典型的には小さい、充填剤料の粒子が一般的に小さい、及び分解能がおそらく高いという以外はＨＰＬＣに類似した液体クロマトグラフィー技術のことを言う。

本明細書において“質量分析（法）”（ＭＳ）とは、化合物をそれらの質量電荷比、“Ｄａ／ｅ”（通常、記号“ｍ／ｚ”でも表記される）によって、フィルタリング、検出、識別及び／又は測定するための分析技術のことを言う。ＭＳ技術は、一般的に、（１）化合物のイオン化及び化合物の電位的フラグメント化；及び（２）荷電化合物及び／又はフラグメントイオンの分子量の検出及び質量電荷比（Ｄａ／ｅ）の計算を含む。化合物は任意の適切な手段によってイオン化及び検出できる。“質量分析計”は、一般的にイオン化装置及びイオン検出器を含む。

“ＥＳＩ”又は“エレクトロスプレーイオン化”という用語は、質量分析でイオンを製造するために使用される技術のことを言う。ＥＳＩは高分子からイオンを製造するのに特に有用である。なぜならば、ＥＳＩはこれらの分子がイオン化された場合にフラグメント化する傾向を克服するからである。ＥＳＩでは、流体のストリームがノズル、コーン又は
その他の指向性装置から放出される。これは帯電されていてもいなくてもよい。分子イオン（例えば［Ｍ＋Ｈ］＋）は、液相で、又は被検成分周囲の溶媒シェル(solvent shell)
の蒸発中に発生する物理化学的過程に応じて、又は気相で形成されうる。

本明細書において使用されている“イオン化”という用語は、正味電荷を有する被検成分イオンを発生させる過程のことを言う。負イオンは正味の負電荷を有するイオンで、正イオンは正味の正電荷を有するイオンである。

“負イオンモードで運転する”という用語は、負イオンを検出する質量分析法のことを言う。同様に、“正イオンモードで運転する”とは、正イオンを検出する質量分析法のことを言う。

本明細書において使用されている“脱離(desorption)”という用語は、表面からの被検成分の剥離及び／又は被検成分の気相への進入のことを言う。
本明細書において定量的測定に関連して使用されている“約”という用語は、表示値のプラス又はマイナス１０％を意味する。

II．広範囲の疎水性を有する被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び検出のためのシステム及び装置
図１を参照すると、広範囲の化学クラスからの被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び検出のためのシステム１００が図式的に示されている。システム１００は、広範囲の化学クラスからの被検成分の精製を実行できる液体クロマトグラフィーシステム１０２と、各関心被検成分に特異的な一つ又は複数のプリカーサーイオン又はプロダクトイオンのイオン化、フラグメント化、及び検出ができる質量分析計１５０を含む。

図１に図式的に示されている液体クロマトグラフィーシステム１０２は、サンプル１１０、サンプル１１０からの様々な関心被検成分を液体クロマトグラフィーによって精製するための試薬１２０、広範囲の疎水性を有する被検成分の分離を実行できる液体クロマトグラフィーカラム１４０、及びサンプル１１０、試薬１２０、及び液体クロマトグラフィーカラム１４０と流体連結されている流体管理(fluid handling)ポンプ１３０を含む。液体クロマトグラフィーカラム１４０は、単一の液体クロマトグラフィーカラム（例えば、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム）又は単一組の液体クロマトグラフィーカラム（例えば、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムと、その上流にあってそれと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラム）を含みうる。

一態様において、試薬１２０は、単一の液体クロマトグラフィー緩衝液を含む。別の態様において、試薬１２０は、単一の実質的に水性の緩衝液、単一の実質的に非水性の緩衝液、及び少なくとも一つの洗浄緩衝液を含みうる。一態様において、単一の実質的に水性の緩衝液及び単一の実質的に非水性の緩衝液は、アンモニウムイオン源を含む（例えばギ酸アンモニウム又は酢酸アンモニウム）。試薬１２０は、サンプル調製のための一つ又は複数の試薬を含んでいてもよい。例えば、関心被検成分のアッセイを妨害しうるタンパク質を除去するために選ばれるタンパク質沈殿剤などである。

図１に示されているように、システム１００はさらに、リンケージ１７０ａ〜１７０ｄを通じてシステム１００の様々な構成要素を連結できる任意の制御装置１６０を含む。例えば、制御装置１６０は、サンプルの適用を制御するためにサンプル１１０に、各種試薬の適用を制御するために試薬１２０に、流体の管理、流速などを制御するためにポンプ１３０に、そして質量分析のパラメーターを制御するために質量分析計１５０に連結できる。示された態様では、制御装置１６０は、例えば、質量分析計１５０からのデータを処理するためのデータ処理装置としての役割も果たしうる。

一部の態様において、システム１００は、サンプル調製、ＬＣ−ＭＳ操作、及び／又はＬＣ−ＭＳ法開発のすべての側面において必ずしも熟練者でない臨床医又は一般の検査技師によって使用されるように設計されている。従って、制御装置１６０は、サンプル１１０のアッセイの本質的にすべての側面を、使用者にシステム１００の全体的なハードウェア及び制御システムとの対話(interact)を求めることなく、開始及びモニターするために使用できる単純化された適用インターフェースを使用者に提供することによって、ＬＣ／ＭＳデータシステム環境をカプセル化するように設計できる。従って、制御装置１６０は、使用者と、デバイス、データファイル、及びデータを使用者可読形に翻訳するためのアルゴリズムを制御する基本的サービスとの間に、ある程度の分離を提供するように構成される。つまり、制御装置１６０は、使用者が臨床サンプルを分析するためのハードウェアを承知又は制御する必要性を排除し、質量分析計と情報をやり取りするだけの単純化されたインターフェースを提供する。

制御装置１６０は、各サンプルの分析リクエストを内部的にモニターするように構成できるので、システム１００を通じて開始から終了までの分析リクエストを追跡することができる。サンプル１１０のデータがシステム１００によって取得されたら、制御装置１６０は、使用者が選択したアッセイのタイプに基づいてデータの後処理を自動的に開始するように構成できる。さらに、制御装置１６０は、使用者が選択したアッセイのタイプに基づいて後処理パラメーターを自動的に選択するように構成することもできるので、アッセイが選択され、分析が開始されると、使用者がシステムと対話する必要性はさらに削減される。制御装置１６０は、取得のためのサンプルアッセイのセットアップに必要な複雑さを削減するために、ＬＣ／ＭＳシステム１００と使用者との間に適合する層(layer)とし
て設計できる。また、制御システム１６０は、使用者を無関係な情報で圧倒することを避けるために、最も関係のあるデータのみを使用者に戻すように構成することもできる。

制御装置１６０は、システム１００の情報の流れを制御するように構成することができる。以下のリストに、様々な態様におけるシステム１００の情報の流れの略式概要を提供する。

ｉ．使用者はサンプル１１０をシステム１００に提出する。システム１００は、使用者が次に制御システム１６０を通じてアッセイリクエストを提出するようにセットアップできる。あるいは、制御システム１６０を、サンプルの存在及び注文された分析のタイプを検出し、制御システム１６０を通じてアッセイリクエストを自動的に提出するサンプル検出装置（例えばバーコードスキャナ又はＲＦＩＤスキャナ）に連結することもできる。

ii．制御システム１６０は、アッセイデータを翻訳し、それをＬＣ−ＭＳシステム１００に提出する。特に、システム１００はこれを使用して、アッセイパラメーター（例えば、流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、様々な質量分析計の電極に印加される電圧のタイミング及び大きさ、衝突エネルギー、衝突ガス温度、衝突ガス圧など）を設定し、開始することができる。

iii．制御システム１６０は、ＬＣ／ＭＳシステムからのサンプル収集の状況をモニタ
ーでき、完了したら、データ処理を開始して、使用者が選択したアッセイタイプに特異的な結果を生み出す。

iv．アッセイ及びデータ分析が完了したら、制御システム１６０は、提出されたサンプルについて結果が完了したことを使用者に告知し、結果を使用者に送ることができる。次に、使用者は典型的にはアッセイされた化合物に関する結果を数値的に又はグラフ的に表
示することができる。

一態様において、システムはさらに、複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置１１５を含むことができる。サンプル管理装置１１５は、多数のサンプルラックを備えた回転棚又はトレイを含む。次に、各サンプルラックは、管などのサンプル容器を保持できる一つ又は複数のサンプル容器位置を含みうる。

一態様において、システム１００はさらに、サンプル管理装置１１５と動作的に結合された又は統合されたサンプル検出装置（図示せず）を含みうる。サンプル検出装置は、サンプル管理装置１１５と共に、又はサンプル管理装置１１５とは独立に動作して、以下の機能の少なくとも一つを実施することができる。

ｉ．システムに入るサンプルの識別；
ii．システムに入るサンプル中の関心被検成分の識別；
iii．関心被検成分に基づいてアッセイプロトコルの選択；
iv．サンプル管理装置及び／又は制御システムに、サンプル中の関心被検成分の分析を開始するよう指示；
ｖ．制御システムに、関心被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて一つ又は複数の試薬を選択するよう指示；
vi．制御システムに、関心被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて液体クロマトグラフィーの移動相条件を選択し、液体クロマトグラフィーシステムに関心被検成分を精製するよう指示；
vii．制御システムに、関心被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づい
て質量分析計の設定を選択し、質量分析計に選択された関心被検成分に関連する質量スペクトルデータを生み出すよう指示；又は
viii．制御システムに、関心被検成分の存在及び／又は濃度を同定するために、選択された関心被検成分に関連する質量スペクトルデータを分析するよう指示。

自動ＬＣ−ＭＳシステムの例に関する追加の解説は、２０１０年１０月２９日出願の米国仮特許出願第６１／４０８，１８０号、発明の名称“サンプル調製及び分析のための自動化システム(AUTOMATED SYSTEM FOR SAMPLE PREPARATION AND ANALYSIS)”、発明者：Ｒｏｂｅｒｔ ＤｅＷｉｔｔｅ、Ｊｕｈａｎｉ Ｓｉｉｄｏｒｏｖ、Ｖｅｓａ Ｎｕｏｔｉｏ、Ｒａｉｍｏ Ｓａｌｍｉｎｅｎ、Ｊａｒｍｏ Ｖｅｈｋｏｍａｋｉ、Ｊｕｋｋａ Ｓａｕｋｋｏｎｅｎ、Ｂｉｌｌ Ｏｓｔｍａｎ、Ｊｏｅ Ｓｅｎｔｅｎｏ、Ｊｏｈｎ Ｅｄｗａｒｄ Ｂｒａｎｎ ＩＩＩ、Ｊｏｓｅｐｈ Ｌ．Ｈｅｒｍａｎ、及びＪｅｆｆｒｅｙ
Ａ．Ｚｏｎｄｅｒｍａｎに見出すことができ、この全文は引用によって本明細書に組み込まれる。

適切なサンプル１１０は、関心被検成分を含有しうる任意のサンプル、例えば、生物学的サンプル及び適切な溶媒中に溶解された関心被検成分（一つ又は複数）を含有するいわゆる“純(neat)”サンプルなどであるが、これらに限定されない。例えば、被検成分の製造中に得られるサンプルを分析すれば、組成及び製造法の収率を決定することができる。環境由来のサンプルは、水、毒素、及び環境表面からの拭き取り物（スワブ）などであるが、これらに限定されない。一定の態様において、サンプルは生物学的サンプルである。すなわち、任意の生物源、例えば動物、細胞培養物、臓器培養物などから得られたサンプルである。特に好適なのは、ヒトから得られたサンプル、例えば、血液、血漿、除タンパク血漿、血清、痰、筋肉、尿、唾液、涙液、脳脊髄液、身体部位からの拭き取り物（スワブ）、微生物懸濁液又は組織サンプルである。そのようなサンプルは、例えば、患者、すなわち疾患又は状態の診断、予後、又は治療のために臨床施設に姿を見せる生きた人間から得ることができる。

サンプルは、所望タイプのクロマトグラフィー及び／又は質量分析による分析に適切な調製物(preparations)を得るために処理又は精製してよい。この目的のために、様々な手段がサンプルのタイプ又はクロマトグラフィーのタイプに応じて使用できる。例を挙げると、ろ過、抽出、沈殿、遠心分離、希釈、それらの組合せなどである。タンパク質沈殿は、血清又は血漿のような液体の生物学的サンプルをクロマトグラフィー用に調製するための一つの方法例である。一態様において、一定量の液体サンプルを十分な量のメタノールに加えることにより、サンプル中の大部分のタンパク質の沈殿を起こす一方で、関心被検成分は得られた上清中に残る。次いで、サンプルを遠心分離して、液体上清をペレットから分離する。得られた上清は、次に液体クロマトグラフィー及び質量分析に適用することができる。一部の態様において、システム１００は、関心被検成分の管理、分離、イオン化、フラグメント化、又は検出の少なくとも一つを追跡するために使用できる品質管理基準を含む。例えば、ヘキサジュウテリウム化２５−ＯＨ Ｄ_３（ｄ_６−２５−ＯＨ Ｄ_３）は、ビタミンＤ及びビタミンＤ代謝産物のアッセイにおける品質管理基準又は内部標準として使用できる。当業者であれば、本明細書中に記載の関心被検成分と共に使用するための適切な品質管理基準又は内部標準を選択することができる。

サンプル又は処理サンプルは、質量分析による分析の前に精製されてもよい。そのような精製又はサンプルの浄化は、一つ又は複数の関心被検成分をサンプルの一つ又は複数の他の成分と比べて富化する手段のことを言う。典型的には、これらに限定されないが、液体クロマトグラフィー、ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、沈殿、透析、アフィニティー・キャプチャー(affinity capture)、電気泳動、又は当該技術分野で公知のその他の適切な方法を含む一つ又は複数の方法が精製のために使用される。

質量分析前のサンプル浄化のためにＨＰＬＣの使用を含む様々な方法が報告されている。例えば、Ｔａｙｌｏｒら、Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇ Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ ２２：６０８−１２（２０００）（血液サンプルの手動式沈殿、続いて手動式Ｃ１８固相抽出、Ｃ１８分析カラム上でのクロマトグラフィーのためにＨＰＬＣへの注入、及びＭＳ／ＭＳ分析(manual precipitation of blood samples, followed by manual C18 solid phase extraction, injection into an HPLC for chromatography on a C18 analytical column, and MS/MS analysis)）;及びＳａｌｍら、Ｃｌｉｎ．Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ ２２ Ｓｕｐｌ．Ｂ：Ｂ７１−Ｂ８５（２０００）（血液サンプルの手動式沈殿、続いて手動式Ｃ１８固相抽出、Ｃ１８分析カラム上でのクロマトグラフィーのためにＨＰＬＣへの注入、及びＭＳ／ＭＳ分析(manual precipitation of blood samples, followed by manual C18 solid phase extraction, injection into an HPLC for chromatography on a C18 analytical column, and MS/MS analysis)）参照。当業者であれば、本発明で使用するのに適切なＨＰＬＣ機器及びカラムを選ぶことができる。クロマトグラフィーカラムは、典型的には、化学部分の分離（すなわち分画）を容易にするための媒体（すなわち充填材料）を含む。媒体は微粒子を含んでいてもよい。粒子は、様々な化学部分と相互作用して関心被検成分の分離を容易にする結合表面を含みうる。一つの適切な結合表面は、アルキル結合表面のような疎水性結合表面である。アルキル結合表面は、Ｃ−４、Ｃ−８、又はＣ−１８結合アルキル基、好ましくはＣ−１８結合基を含みうる。クロマトグラフィーカラムは、サンプルを受容するための入口ポートと、分画されたサンプルを含む流出液を放出するための出口ポートを含む。例えば、試験サンプルは、入口ポートでカラムに適用され、溶媒又は溶媒混合物で溶出され、出口ポートで放出されうる。別の例では、二つ以上のカラムを使用してもよい。その場合、試験サンプルは入口ポートで第一のカラム（例えば、Ｃｙｃｌｏｎｅ Ｐカラムなどのような浄化カラム）に適用され、溶媒又は溶媒混合物で第二のカラム（例えば、Ｈｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ ＰＦＰ、Ａｃｃｕｃｏｒｅ ＰＦＰ（登録商標）、Ｈａｌｏなどのような分析カラム）上に溶出され、溶媒又は溶媒混合物で第二のカラムから出口ポートに溶出されうる。被検成分の溶出に異なる溶媒
モードを選択することもできる。例えば、液体クロマトグラフィーは、グラジエントモード、アイソクラチック（定組成）モード、又は多型(polytyptic)（すなわち混合）モードを用いて実施することができる。

近年、高速乱流液体クロマトグラフィー（“ＨＴＬＣ”）（高スループット液体クロマトグラフィーとも呼ばれる）が、質量分析による分析の前にサンプル調製物に適用されている。例えば、Ｚｉｍｍｅｒら、Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．Ａ ８５４：２３−３５（１９９９）参照；また、米国特許第５，９６８，３６７号；５，９１９，３６８号；５，７９５，４６９号；及び５，７７２，８７４号も参照。これらのそれぞれは、引用によってその全文を本明細書に援用する。従来のＨＰＬＣ分析は、カラムを通過するサンプルの層流が試験サンプルからの関心被検成分の分離の基礎となるカラム充填の上に成り立っている。当業者は、そのようなカラムにおける分離は拡散プロセスであることは理解しているであろう。これに対し、ＨＴＬＣのカラム及び方法によって提供されるような乱流は、物質移動の速度を増強しうるので、提供される分離特性を改良すると考えられている。一部の態様では、高速乱流液体クロマトグラフィー（ＨＴＬＣ）を、単独で又は一つもしくは複数の精製法と組み合わせて、関心被検成分の精製に使用することができる。そのような態様では、サンプルは、被検成分を捕獲するＨＴＬＣ抽出カートリッジを用いて抽出され、次いで溶出され、ＨＰＬＣ又はその他のカラム上でのクロマトグラフィーにかけられた後、イオン化される。これらの二つのカラム精製段階が関与する工程は自動的に連結できるので、被検成分精製中のオペレーター関与の必要性は最小化できる。

本明細書において使用されている“質量分析”又は“ＭＳ”という用語は、イオンを、それらの質量電荷比、又は“Ｄａ／ｅ”に基づいてフィルタリング、検出、及び測定する方法のことを言う。一般に、一つ又は複数の関心分子、例えばビタミンＤ代謝産物はイオン化され、そのイオンはその後、質量分析装置に導入され、そこで、磁場と電場の組合せにより、イオンは、質量（“ｍ”又は“Ｄａ”）及び電荷（“ｚ”又は“ｅ”）に応じた空間内の通路をたどる。

質量分析計１５０は、分画されたサンプルをイオン化し、更なる分析のために荷電分子を作り出すイオン源を含む。例えば、サンプルのイオン化はエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）によって実施できる。他のイオン化技術は、大気圧化学イオン化（ＡＣＰＩ）、光イオン化、電子衝撃イオン化、化学イオン化、高速原子衝突（ＦＡＢ）／液体二次イオン質量分析（ＬＳＩＭＳ）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）、電界イオン化、電界脱離、サーモスプレー／プラズマスプレーイオン化、及びパーティクルビームイオン化などであるが、これらに限定されない。当業者であれば、イオン化法の選択は、測定される被検成分、サンプルのタイプ、検出器のタイプ、正対負モードの選択などに基づいて決定できることは分かるであろう。

サンプルがイオン化されたら、それによって生成した正に帯電又は負に帯電したイオンを分析して質量電荷比（すなわちＤａ／ｅ）を決定できる。質量電荷比を決定するための適切な分析計は、四重極型分析計、イオントラップ型分析計、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）質量分析計、静電トラップ型分析計、磁場セクター型分析計及び飛行時間型分析計などである。イオンは、いくつかの検出モードを用いることによって検出できる。例えば、選択されたイオンが検出できる（すなわち選択イオンモニタリングモード（ＳＩＭ）を使用する）、あるいは、イオンは、選択反応モニタリング（ＳＲＭ）又は多重反応モニタリング（ＭＲＭ）を用いて検出することもできる（ＭＲＭとＳＲＭは本質的に同じ実験である）。イオンは、質量分析計をスキャンして、全プリカーサーイオンを同時に、又は特定プリカーサーイオンの全プロダクトイオンを同時に、又はその両方を検出することによって検出することもできる。

一態様において、質量電荷比は、四重極型分析計を用いて決定される。例えば、“四重極”又は“四重極イオントラップ”装置において、振動高周波電場(oscillating radio frequency field)内のイオンは、電極間に印加されるＤＣ電位、ＲＦ信号の振幅、及びＤ
ａ／ｅに比例する力を経験する。電圧及び振幅を、特定のＤａ／ｅを有するイオンのみが四重極の長さを通過し、他のすべてのイオンは屈折（偏向）するように選べばよい。こうして、四重極装置は、装置に注入されたイオンの“マス（質量）フィルター”、“マスセパレーター（質量分離器）”又はイオンレンズとして働くことができる。

ＭＳ技術の分解能は、例えばトリプル四重極型質量分析計の使用により“タンデム質量分析”又は“ＭＳ／ＭＳ”を採用することによって増強できることが多い。この技術では、関心分子から生成した第一、又は親、又はプリカーサーイオンはＭＳ装置でフィルターにかけられ、これらのプリカーサーイオンはその後フラグメント化されて、一つ又は複数の第二、又はプロダクト、又はフラグメントイオンになり、次いで第二のＭＳ手順で分析される。プリカーサーイオンの注意深い選択によって、一定の被検成分によって製造されたイオンのみがフラグメント化チャンバ（例えばコリジョンセル(衝突室、collision cell)）へと移動する。そこで不活性ガスの原子との衝突によって、これらのプロダクトイオンが製造される。プリカーサーイオンもプロダクトイオンも、所与セットのイオン化／フラグメント化条件下で再現可能な様式で製造されるので、ＭＳ／ＭＳ技術は極めて有力な分析ツールを提供できる。例えば、イオンの選択又はフィルタリングとその後のフラグメント化の組合せを使用すれば妨害物質が排除できるので、生物学的サンプルのような複合サンプルに特に有用となりうる。

例えば、おそらくは一つ又は複数の関心被検成分を含有しているクロマトグラフィーカラムからの液体溶媒流は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ分析計の加熱噴霧器インターフェースに入り、溶媒／被検成分混合物はインターフェースの加熱管内で蒸気に変換される。関心被検成分由来のイオンは液相で形成され、その後ＥＳＩ源での噴霧化によって、又は被検成分が気相に入るときに中性被検成分と反応性イオン（例えばアンモニウムイオン）間の反応によって、気相に放出されうる。

イオンは、装置のオリフィスを通過し、第一の四重極に入る。四重極１及び３（Ｑ１及びＱ３）は質量フィルターで、イオンをそれらの質量電荷比（Ｄａ／ｅ）に基づいて分離することができる。四重極２（Ｑ２）はコリジョンセルで、イオンはそこでフラグメント化される。質量分析計の第一の四重極（Ｑ１）は、分析される各関心被検成分に特異的なイオンの質量電荷比（“Ｄａ／ｅ”）を有する分子を選択する。選択された関心被検成分の正確なＤａ／ｅを有するイオンはコリジョンセル（Ｑ２）に入ることができるが、何らかのその他のＤａ／ｅを有する望まざるイオンは排出されるか又は四重極（Ｑ１）の側部と衝突して排除される。Ｑ２に入ったイオンは中性ガス分子（例えばアルゴン）と衝突し、フラグメント化する。この過程は衝突活性化解離（Collision Activated Dissociation，ＣＡＤ）と呼ばれる。生成したフラグメントイオンは四重極３（Ｑ３）に入り、そこで選択された関心被検成分のフラグメントイオンは選択されるが、他のイオンは排除される。イオンは検出器と衝突すると電子のパルスを生成し、それがデジタル信号に変換される。

質量分析装置は、所与の被検成分の質量の決定においてわずかに変動しうる。従って、イオンの質量又はイオンのＤａ／ｅの文脈において“約”という用語は、±０．２、±０．３、又は±０．５原子質量単位又はドルトン（Ｄａ）を意味する。

取得されたデータはコンピュータに送られ、電圧対時間がプロットされる。得られたマスクロマトグラムは、従来のＨＰＬＣ法で作成されたクロマトグラムと同様である。関心被検成分の濃度は、クロマトグラムのピーク下面積を計算することによって決定できる。
サンプル中の関心被検成分（一つ又は複数）の濃度は、典型的には、ピーク下面積を検量線と比較するか、又は内部標準（例えばジュウテリウム化２５−ヒドロキシビタミンＤ_３）対試験サンプルの比を比較するかのいずれかによって決定される。

III．広範囲の化学クラス由来の被検成分のＬＣ−ＭＳ精製及び検出のためのキット
一態様において、少なくとも一つの関心被検成分を含有するサンプルのＬＣ−ＭＳを実施するためのキットを開示する。該キットは、ＬＣ−ＭＳシステムを用いて複数の関心被検成分を精製、溶出及び分析するための試薬と、ＬＣ−ＭＳシステムを用いて約−１〜約６の範囲の分配係数（ｌｏｇＰ）を有する複数の関心被検成分を精製及び分析するための説明書を含むプロトコルとを含む。

本明細書中に記載の方法システム及びキットを用いて精製、溶出及び分析できる関心被検成分の適切な例は、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート（アヘン剤）及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せなどであるが、これらに限定されない。

一態様において、プロトコルは、サンプルの管理及び調製、液体クロマトグラフィー条件（例えば、流速、グラジエント、カラム、温度など）、ＬＣ−ＭＳ用緩衝液の組成、質量分析計の設定（例えば、スプレー電圧、脱溶媒和温度、シースガス圧、電圧及び質量分析器のスキャン設定など）に関する説明書を含みうる。

キットに含まれるプロトコルは、約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する被検成分を、約−１．２〜約６のｌｏｇＰ範囲の各被検成分について診断品質基準が満たされるように精製及び分析するための説明書も含みうる。

本明細書において使用されている“診断品質基準”という用語は、特定の検出限界内の各被検成分について、再現性のある定量を特定の精度で及び実質的にサンプルからサンプルへのキャリーオーバーなしに達成することを含む分析性能側面のことを言う。

本明細書において“検出限界”とは、所与の被検成分の参考範囲(reference range)に
少なくともまたがる限界のことを言い、定量下限は参考範囲の下限より高くなく、定量上限は参照範囲の上限より低くない。ここで言う参考範囲は、これらに限定されないが、臨床的、工業的及び環境的適用を含む特定の適用に関連している。

本明細書中に記載の多くの化合物の下限及び上限臨床参考範囲を表２（以下）の“低”及び“高”の欄にそれぞれ掲載する。大部分の臨床関連の関心被検成分の下限及び上限参考範囲の追加例は、Ｔｉｅｔｚ Ｔｅｘｔｂｏｏｋ ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ（Ｂｕｒｔｉｓら、Ｓａｕｎｄｅｒｓ；第４版（２００５年７月１日）、ＩＳＢＮ：０７２１６０１８９２）に見出すことができ、その全文を引用によって本明細書に援用する。しかしながら、表２及びＴｉｅｔｚには、臨床業務において現在認められている臨床参考基準が記載されているが、検出限界及び臨床参考範囲は絶えず進化していることに注意する。また、臨床参考範囲は、医療行為におけるケアの基準及び又は異なる国の規制機関（例えば米国対フランス）によって変動しうることにも注意する。同様に、異なる年齢集団、性別及び民族集団は、一部の薬物に対して異なる反応を示すことが知られているので、臨床参考範囲は試験される集団によっても変動しうる。

また、臨床参考範囲の下端及び上端は、必ずしも検出限界及び定量限界を表していないことにも注意する。例えば、検出及び定量の限界は、下限臨床参考範囲より桁違いに低い
こともある。同様に、本明細書中に記載の方法及び装置によって提供できる濃度範囲の上限は、上限臨床参考範囲よりずっと高いこともある。

本明細書において使用されている“精度(precision)”という用語は、特定の測定の再
現性のことを言い、単一サンプルの繰り返し測定の変動係数によって測定される。精度は、慣例的にアッセイ開発の一段階として決定されており、変動係数は、同じ日における、異なる日にまたがる、などの繰り返し測定から誘導される。精度の要件は、現在の医療行為に応じて被検成分ごとに変動するが、一般的に１５％未満の変動係数が好適であると理解されている。

本明細書において使用されている“実質的にキャリーオーバーがない”という用語は、分析と分析の間で前の分析由来のサンプル汚染がシステム（すなわちＬＣ−ＭＳシステム）に本質的に残留していない状況のことを言う。分析装置におけるキャリーオーバーの程度は、いくつかの方法で査定することができる。一つの方法は、きれいなベースラインを確立するためにいくつかのブランクサンプルを実験し、高濃度の関心被検成分（例えば２５ＯＨビタミンＤ_３）を有するいくつかのサンプルを実験し、次いで、再度ブランクサンプルをアッセイしてベースラインへの戻りを保証することを含む。キャリーオーバーは、低及び高濃度の対照サンプル（例えば、定量の下限及び上限を表すサンプル）を連続的に分析することによって査定することもできる。一例において、“キャリーオーバー”は、高濃度の関心被検成分を有するサンプルの分析直後にブランクの０．１％以下である。別の例において、“キャリーオーバー”は、定量上限（ＵＬＯＱ）のサンプルの分析後に定量下限（ＬＬＯＱ）の２０％以下である。

一態様において、キットはさらに、生物学的マトリックス及び／又は“純”サンプルからのさまざまな被検成分の分離を実行できる単一の液体クロマトグラフィーカラム（例えば、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム）又は単一組の液体クロマトグラフィーカラム（例えば、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムと、その上流にあって使用時にそれと流体連結される単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラム）のいずれか、アンモニウムイオン源を含有する少なくとも一つの液体クロマトグラフィー緩衝溶液、及び少なくとも一つの関心被検成分の分離、イオン化、フラグメント化、又は検出の少なくとも一つを追跡するための少なくとも一つの品質管理基準又は内部標準を含む。

クロマトグラフィーカラムは、典型的には、サンプルを受容するための入口ポートと、分画されたサンプルを含む流出液を放出するための出口ポートを含む。例えば、試験サンプルは、入口ポートでカラムに適用され、溶媒又は溶媒混合物で溶出され、出口ポートで放出されうる。別の例では、二つ以上のカラムを使用してもよい。その場合、試験サンプルは入口ポートで第一のカラム（例えば浄化カラム）に適用され、溶媒又は溶媒混合物で第二のカラム（例えば分析カラム）上に溶出され、溶媒又は溶媒混合物で第二のカラムから出口ポートに溶出されうる。

多くのタイプのＨＰＬＣ及びＵＨＰＬＣカラムが市販されており、当業者に公知の様々な基準に基づいて選ぶことができる。例えば、市販のＨＰＬＣ及びＵＨＰＬＣカラムは、順相（極性の固定相及び非極性の移動相）、逆相（固定相が非極性で移動相が極性）、イオン交換（固定相上に荷電種及び移動相内に荷電種）、及びアフィニティークロマトグラフィー（被検成分とマトリックス結合リガンドとの間に鍵と鍵穴の理論的枠組(lock-and-key paradigm)の特定相互作用に基づく）を含む。一態様において、液体クロマトグラフ
ィーは逆相である。適切な逆相カラムは、Ｃ−４、Ｃ−８、Ｃ−１８、Ｈｙｐｅｒｓｉｌ
Ｇｏｌｄ ＰＦＰ、Ａｃｃｕｃｏｒｅ ＰＦＰ（登録商標）、Ｈａｌｏなどであるが、これらに限定されない。

一態様において、一つの水性移動相緩衝溶液及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液は、アンモニウムイオン源を含む。容認できるアンモニウムイオン源の例は、ギ酸アンモニウム及び／又は酢酸アンモニウムを含む。一態様において、ギ酸アンモニウム及び／又は酢酸アンモニウムは、移動相緩衝液中に、約２ｍＭ〜約１０ｍＭ、又は約４ｍＭ〜約８ｍＭの範囲、又は約１０ｍＭの量で含まれうる。それより少ない又は多い量のギ酸アンモニウム及び／又は酢酸アンモニウムも使用できるが（例えば、約０．１ｍＭ〜約２０ｍＭ、５０ｍＭ、又は１００ｍＭ）、約２ｍＭを下回ると、溶液及び／又は気相中のアンモニウムインの数は関心被検成分のイオン化を促進するのに不十分であり得；約１０ｍＭを上回る量は、溶液及び／又は気相中のアンモニウムイオンの電荷電荷反発が雑音(artifacts)を生じ、感度を低下させうるというリスクを増大させる。

ギ酸アンモニウム及び酢酸アンモニウムは、ＬＣ−ＭＳで使用するための容認できるアンモニウムイオン源である。ギ酸アンモニウムのｐＫａは、酢酸アンモニウムのそれより低いので、関心被検成分は緩衝溶液中でより十分にイオン化されることが期待され、このことは場合によっては望ましいことでありうる。ギ酸アンモニウムも酢酸アンモニウムも揮発性イオン源であり、質量分析の結果を妨害しないと予想されるので、容認可能である。これに対し、塩化アンモニウムは、これもアンモニウムイオン源であるが、一般的にＬＣ−ＭＳでの使用には容認できないと考えられている。なぜならば、塩化物は揮発性でないので、質量分析計を汚染することが予想されるからである。

一態様において、一つの水性移動相緩衝溶液は水溶液を含む（例えば、水、ギ酸アンモニウム、及びギ酸）。一態様において、一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液は非水性溶液を含む（例えば、メタノール、ギ酸アンモニウム、及びギ酸）。使用できるその他の有機相は、アセトニトリル、エタノール、イソプロパノール、及びそれらの組合せなどであるが、これらに限定されない。一つ又は複数の関心被検成分を含有するサンプルは、水性緩衝液を用いて充填及び洗浄され、水性から非水性へのグラジエント又はアイソクラチック（例えば１００％非水性緩衝液を用いて）溶離にて溶出できる。一態様において、キットに含まれる試薬はさらに、システムをサンプルの合間に洗浄するように構成されたクロマトグラフィー洗浄緩衝液を含んでいてもよい。一例において、洗浄緩衝液は、イソプロピルアルコール（“ＩＰＡ”）、アセトニトリル（“ＡＣＮ”）及びアセトンを含みうる。別の態様において、洗浄緩衝液は、ｐＨ約８．０〜１０の高ｐＨ水性洗浄緩衝液でありうる。任意に、洗浄緩衝液は、これに限定されないが、ＥＤＴＡのようなキレート剤を含有していてもよい。

IV．広範囲の疎水性を有する被検成分の精製及び分析法
次に図２を参照すると、広範囲の疎水性を有する被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）を用いて精製及び分析するための方法２００が図示されている。図示された方法２００は、第一の化学クラスから少なくとも第一の被検成分を準備する行為２１０及び第一の化学クラスとは異なる第二の化学クラスから少なくとも第二の関心被検成分を準備する行為２２０を含む。第一及び第二の関心被検成分は、約−１．２〜約６の範囲にわたる対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有している。方法はさらに、第一及び第二の関心被検成分のそれぞれを少なくとも部分的に精製するように構成された単一の分析カラムと、質量分析計（ＭＳ）と、単一の水性移動相緩衝溶液と、そして単一の実質的に非水性の移動相緩衝溶液とを含むＬＣ−ＭＳシステムを準備する行為２３０を含む。一態様において、移動相緩衝溶液は、それぞれアンモニウムイオン源を含有する。方法はさらに、ＭＳでの分析のために第一の関心被検成分を精製及び溶出する行為２４０と、ＭＳでの分析のために第二の関心被検成分を精製及び溶出する行為２５０を含む。

一態様において、第一の関心被検成分は第一のｌｏｇＰを有し、第二の関心被検成分は第一のｌｏｇＰとは異なる第二のｌｏｇＰを有する。一態様において、第一及び第二のｌ
ｏｇＰは、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れうる。方法２００を用いて精製及び分析できる関心被検成分の適切な例は、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート（アヘン剤）及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せなどであるが、これらに限定されない。これらの被検成分は、約−１．２（ブスルファン）から約６（２５−ＯＨビタミンＤ_２）の範囲のｌｏｇＰを有する（表１参照）。

一態様において、行為２１０及び２２０は、第一の群及び第二の群から選ばれる二つ以上の被検成分を準備することを含みうる。ここで、第一及び第二の群の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れている。別の態様において、行為２１０及び２２０は、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート（アヘン剤）及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、又はそれらの代謝産物からなる群から選ばれる第一の被検成分及び第二の被検成分を準備することを含みうる。ここで、第一及び第二の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れている。なおさらに別の態様において、行為２１０及び２２０は、第一の被検成分、第二の被検成分、及び第三の被検成分を準備することを含むことができ、ここで、第一の被検成分は約−１．２〜約０の範囲の対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有し、第二の被検成分は約０〜約５の範囲のｌｏｇＰを有し、そして第三の被検成分は約５より大きく約６以下のｌｏｇＰを有する。

第一の関心被検成分の精製及び分析（２４０）と、その後の第二の関心被検成分の精製及び分析（２５０）は、流速、移動相緩衝溶液の組成、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、レンズ振幅、衝突ガス温度、衝突ガス圧、衝突エネルギー、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを変えることによって達成される。注目すべきは、第一の関心被検成分の精製及び分析（２４０）と、その後の第二の関心被検成分の精製及び分析（２５０）は、カラム又は緩衝液の選択を変更する必要がないことである。

一態様において、移動相緩衝液に包含される添加剤は、アンモニウムイオン源を含む。一態様において、アンモニウムイオン源は、ギ酸アンモニウム又は酢酸アンモニウムである。一態様において、水性及び非水性移動相緩衝液中の添加剤は、約２ｍＭ〜約１５ｍＭのアンモニウム、約２ｍＭ〜約１０ｍＭのアンモニウム、又は約１０ｍＭのアンモニウムを、ギ酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、又は別の適切なアンモニウムイオン源の形態で含む。

一態様において、行為２３０で提供される液体クロマトグラフィーシステムは、高速液体クロマトグラフィー（“ＨＰＬＣ”）システム又は超高速液体クロマトグラフィー（“ＵＨＰＬＣ”）システムである。一態様において、行為２３０で提供される液体クロマトグラフィーシステムは、単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラム（例えば、Ｃｙｃｌｏｎｅ Ｐ カラム）及び分析用液体クロマトグラフィーカラム（例えば、Ｈｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ ＰＦＰ、Ａｃｃｕｃｏｒｅ ＰＦＰ（登録商標）、Ｈａｌｏ カラム）を含む。サンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムと分析用液体クロマトグラフィーカラムは互いに流体連結されており、サンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムは分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にある。一態様において、質量分析計はエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）及び／又はＡＰＣＩイオン源を含む。

ギ酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、又は別の適切なアンモニウムイオン源の形態の
アンモニウムイオンは、各関心被検成分に特異的なイオンの形成に関与できる。一部の被検成分の場合、アンモニウムイオンは、液相又は気相いずれかの被検成分にプロトンを供与することによって関心被検成分のプロトン化イオン形の形成を促進できる。一部の他の被検成分の場合（例えばステロイド）、アンモニウムイオンはアンモニア化イオンの形成を促進できる。一般に、プロトン化及び／又はアンモニア化分子イオンは、一部のイオン化技術によく見られる脱水イオン(water loss ions)よりも好ましい。なぜならば、関心
被検成分は、水を失う多くの可能性ある経路を有しているがゆえに、質量分析計で脱水イオンの追跡が困難になりうるからである。

一態様において、行為２３０で提供されるＬＣ−ＭＳシステムはさらに、複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置と、ＬＣ−ＭＳシステムに結合されて下記の少なくとも一つを制御又は変化させるように構成された制御システムを含む。すなわち、第一のサンプルと第二のサンプルの分析の優先順位、流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、レンズ振幅、衝突ガス温度、衝突ガス圧、及びそれらの組合せの少なくとも一つである。サンプル管理装置と制御システムは、本願の他の場所においてシステムとの関連でより詳細に解説されている。

次に図３を参照すると、広範囲の分配係数を有する被検成分を液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）を用いて検出及び／又は定量するための別の方法３００が図示されている。方法３００は、約−１〜約６の範囲にわたる分配係数（ｌｏｇＰ）を有する複数の関心被検成分を精製及び分析するように構成されたＬＣ−ＭＳシステムを準備する行為３１０、選択された関心被検成分を含有するサンプルを選択する行為３２０、選択された関心被検成分に基づいて分析プロトコルを選択する行為３３０、及び選択された関心被検成分をＬＣ−ＭＳによって精製、溶出、及び分析する行為３４０を含む。

一態様において、行為３００は、液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を準備することを含む。ＬＣ−ＭＳシステムは、約−１．２〜約６の範囲にわたる対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有する複数の被検成分を、少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを変化させることによって精製及び分析するように構成されている。ＬＣ−ＭＳシステムパラメーターは、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、電極電圧、衝突ガス温度、衝突ガス圧、衝突エネルギー、及びそれらの組合せなどであるが、これらに限定されない。

実施例１：２５−ＯＨビタミンＤ_２及び２５−ＯＨビタミンＤ_３の精製及び分析
２５−ヒドロキシビタミンＤ_３及び２５−ヒドロキシビタミンＤ_２をＳｉｇｍａ社（ミズーリ州セントルイス）から購入した。２５−ヒドロキシビタミンＤ_３及び２５−ヒドロキシビタミンＤ_２をメタノールに溶解することによって２ｍｇ／ｍＬのストック溶液を製造した。他のすべての濃度は、メタノール（原液）又は活性炭処理(charcoal-stripped)
ウシ胎仔血清（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ社、カタログ番号Ｆ６７６５）もしくは抗体処理(antibody-stripped)ヒト血清のような処理血清(stripped serum)（マトリックス）
中への連続希釈によって製造した。標準及びＱＣは処理血清中に製造した。標準は、１〜３００ｎｇ／ｍＬの範囲で、ＱＣは、２、１２０及び２４０ｎｇ／ｍＬで製造した。ヘキサジュウテリウム化２５−ヒドロキシビタミンＤ３（ｄ６−２５−ＯＨ Ｄ３）をＭｅｄｉｃａｌ Ｉｓｏｔｏｐｅｓ社（カタログ番号Ｄ２８３１）から購入し、内部標準（ＩＳ）として使用した。１ｍｇ／ｍＬのＩＳストック溶液をメタノール中に製造し、メタノールで１４０ｎｇ／ｍＬに希釈して、使用ＩＳストック溶液(working IS stock solution)とした。ストック溶液及び使用溶液(working solution)はすべて−８０℃で保管した。

サンプルは、２００μＬの使用内部標準を１００μＬのサンプルに加えた後、１５秒間最高速度で渦混合し、４０００ｒｃｆで２分間遠心分離することによって調製した。次に、１５０μＬの上清を分析のために自動サンプラーバイアルに移した。

ＨＰＬＣは、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｔｒａｎｓｅｎｄ ＴＸ システム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）にて、オンラインサンプル浄化用として０．５×５０ｍｍのＣｙｃｌｏｎｅ Ｐカラム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）及び２．１×５０ｍｍ、１．９μｍのＨｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ ＰＦＰ又は２．１×５０ｍｍ、２．６μｍのＡｃｃｕｃｏｒｅ ＰＦＰ（登録商標）分析カラム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いて実施した。このシステムは超高速液体クロマトグラフィー（ＵＨＰＬＣ）を実施できるデュアルカラムシステムで、オンライン浄化を実施するためにターボフロー(TurboFlow)技術
を利用している。質量スペクトルは、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｖａｎｔａｇｅトリプル四重極型質量分析計（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）で取得した。移動相Ａは、水中１０ｍＭギ酸アンモニウムと０．０１％ギ酸であった。移動相Ｂは、メタノール中１０ｍＭギ酸アンモニウムと０．０１％ギ酸であった。移動相Ｃは、カラムの洗浄に使用される４５：４５：１０のイソプロパノール：アセトニトリル：アセトンであった。

１０μＬのサンプルを乱流クロマトグラフィー（“ＴＦＣ”）カラムに８０％の移動相Ａを用いて１．５ｍＬ／分で注入した。タンパク質などの大型分子は洗浄廃棄されるが、小分子（＞１０００Ｄａ）はカラムに保持される。サンプルが大部分の生体マトリックスから分離されたら、バルブを切り替え、サンプルをＴＦＣカラムから１００％の移動相Ｂを用いて０．２ｍＬ／分で溶出する。ＴＦＣカラムからの流れは、８０％の移動相Ａが０．５ｍＬ／分で流れる第二のＵＨＰＬＣポンプにＴ字配管される。両ポンプからの混合流は分析カラムで見られる有機体の量を削減する結果、関心被検成分が分析カラムのヘッドに集まる。関心被検成分が分析カラムに移動したら、バルブを再度切り替え、二つのカラムを互いに分離する。ＴＦＣカラムは次のサンプルのために洗浄及び平衡化される。分析カラムには２０〜１００％の移動相Ｂグラジエントを流し、関心被検成分を分析のために質量分析計に溶出する。

質量分析計のパラメーターは次の通りである。スプレー電圧５０００、蒸発器（ベーパライザ）温度４００、シースガス圧６０、補助ガス圧３５、キャピラリー温度１９９、Ｓ−レンズ振幅５５。試験された方法の相対的イオン存在量(relative ion abundances)を
見るためにフルスキャンＱ１データを取得し、定量的比較のために選択反応モニタリング（ＳＲＭ）を用いた。

使用されたＳＲＭトランジションは次の通りである。２５−ヒドロキシビタミンＤ_３：４０１．３５２ 親、９１．１２２、１０５．１３３、１５９．１３９、３６５．４２５
プロダクトイオン。２５−ヒドロキシビタミンＤ_２：９１．０８９、９５．１５８、１０５．１０４、１５９．１４９ プロダクトイオン。ｄ_６−２５−ＯＨ Ｄ_３：４０７．３８０ 親、１０７．１１５、１３３．１０５、１４７．１９９、１５９．１９０ プロダクトイオン。四重極１（Ｑ１）（半値全幅、ＦＷＨＭ）を０．２に設定し、四重極３（Ｑ３）（ＦＷＨＭ）を０．７に設定した。スキャン幅（Ｄａ／ｅ）０．０１、スキャン時間（ｓ）０．０５。衝突ガス圧は１．５ｍＴｏｒｒに設定した。

移動相中にギ酸アンモニウムを用いた［Ｍ＋Ｈ］＋イオンと、例えば移動相中にギ酸を
用いたビタミンＤ_２の［Ｍ＋Ｈ−Ｈ_２Ｏ］＋イオンのフルスキャンデータの比較を図４Ａ〜４Ｂに示す。アンモニウム源の添加は検出の感度を著しく増大し、信号対雑音比を著しく改良することに注意する。また、［Ｍ＋Ｈ］＋イオンは、アンモニウムイオンなしでは検出されないことにも注意する。

ＭＳ／ＭＳを用いる定量にとってさらに重要なことは、プリカーサーイオンとして［Ｍ＋Ｈ］＋及び［Ｍ＋Ｈ−Ｈ_２Ｏ］＋を使用することによるＳＲＭデータの比較である。これらの比較を２５−ＯＨ Ｄ_２に関して図５Ａ及び５Ｂに示す。移動相中にアンモニウムイオンが存在することによってエレクトロスプレーによって形成される［Ｍ＋Ｈ］＋イオンの使用は、ＡＰＣＩによる［Ｍ＋Ｈ−Ｈ_２Ｏ］＋イオンを使用するよりも高感度を有することが明らかである。図５Ａ及び５Ｂのデータは、ＥＳＩによる［Ｍ＋Ｈ］＋イオンを用いた２５−ヒドロキシビタミンＤ_２の検出及び定量は、ＡＰＣＩによる［Ｍ＋Ｈ−Ｈ_２Ｏ］＋を用いた検出よりも約３．５倍高感度であることを示す。

ビタミンＤ代謝産物のＬＣ−ＭＳ精製及び分析に関する更なる解説は、２０１０年１０月２９日出願の米国仮特許出願第６１／４０８，３８５号、発明の名称“ビタミンＤ代謝産物のＬＣ−ＭＳ分離及び検出(LC-MS SEPARATION AND DETECTION OF VITAMIN D METABOLITES)”、発明者：Ｊｏｓｅｐｈ Ｌ．Ｈｅｒｍａｎ 及び Ｄａｙａｎａ Ａｒｇｏｔ
ｉに見出すことができる。その全文は引用によって本明細書に援用する。

実施例２：純サンプル及び血清中の関心被検成分の精製及び分析
図６〜１５に、純サンプル中の４０の別個の関心被検成分の、Ｃｙｃｌｏｎｅ Ｐ浄化カラムとその後のＨｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ ＰＦＰ分析カラムでの精製及び分析を示すＭＲＭクロマトグラムを示す。様々な量の有機移動相のアイソクラチック溶離を用いて、各被検成分のリテンション特性を特徴付けした。これらの結果に基づいて、選択された最終移動相は、溶液Ａ：１０ｍＭのギ酸アンモニウム、０．０１％のギ酸、水、及び溶液Ｂ：１０ｍＭのギ酸アンモニウム、０．０１％のギ酸、メタノールであった。図６〜１５に、約７ｌｏｇＰにわたる疎水性を有する化合物のベースライン分離が、本明細書中に記載の方法、システム、及びキットを用いて達成できることが示されている。ｌｏｇＰがこれほど広範囲の化合物を、本明細書中に記載の方法システム及びキットを用いて分離できたことは予期せぬことであった。様々な化合物によって変えたパラメーターは、ＬＣ運転パラメーター（例えば、流速、一つの緩衝液対別の緩衝液の比率、温度など）及びＭＳシステムパラメーター（例えば、イオン化電圧、脱溶媒和温度など）だけであった。カラムと緩衝液は変えなかった。

図１６〜２０に、ｌｏｇＰが約０．１（ノルコデイン）〜約５．０１（エベロリムス）の範囲のいくつかの別個の関心被検成分の精製及び分析を示すＭＲＭクロマトグラムを示す。関心被検成分を抗体処理ヒト血清中に溶解し、Ｃｙｃｌｏｎｅ Ｐ浄化カラムとその後のＡｃｃｕｃｏｒｅ ＰＦＰ（登録商標）分析カラムで精製した。これらの結果に基づいて、上記の最終移動相（すなわち、溶液Ａ：１０ｍＭのギ酸アンモニウム、０．０１％のギ酸、水、及び溶液Ｂ：１０ｍＭのギ酸アンモニウム、０．０１％のギ酸、メタノール）はこれらの条件下で有効であることが示された。図１６〜２０に示された関心被検成分の場合、リカバリー(recovery)又はマトリックス効果(matrix effect)（すなわち、“純”サンプルと比較した場合のマトリックス由来の干渉）は検出されなかった。さらに、例えば、図１１と２０を比較すると、抗体処理ヒト血清、Ｃｙｃｌｏｎｅ Ｐ浄化カラム、及びＡｃｃｕｃｏｒｅ ＰＦＰ（登録商標）分析カラムは、Ｃｙｃｌｏｎｅ Ｐ浄化カラムに続いてＨｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ ＰＦＰ分析カラムで分離された“純”サンプルで見られるより、良好な分離を提供できることが分かる。図６〜１５の場合と同様、図１６〜２０に示された様々な化合物によって変えたパラメーターは、ＬＣ運転パラメーター（例えば、流速、一つの緩衝液対別の緩衝液の比率、温度など）及びＭＳシステムパラメ
ーター（例えば、イオン化電圧、脱溶媒和温度など）だけであった。カラムと緩衝液は変えなかった。

次に表２を参照すると、関心被検成分に関する追加のデータが示されている。表２に示された化合物は、本明細書中に記載の方法、システム、及びキットを用いて、様々な臨床及び薬物モニタリング目的のためにＬＣ−ＭＳによって分析できる。表２に掲載された化合物は、約−１．２（ブスルファン）から約６（２５ＯＨビタミンＤ_２）の範囲のｌｏｇＰを有するが、これは疎水性に約７桁をわずかに上回る差があることを表している。

表２はまた、表２に掲載された化合物の多くの下限及び上限の臨床参考範囲をそれぞれ“低”及び“高”の欄に示すほか、本明細書中に記載の方法、システム、装置、及びキットを用いるおよその定量限界（ＬＯＱ）も示す。下限及び上限の臨床参考範囲は、臨床状況において化合物に予想される各化合物のダイナミックレンジを表す。しかしながら、本質的にすべての場合において、検出限界及びＬＯＱは下限臨床参考範囲よりずっと低い。

表２に掲載されたＬＯＱは、アンフェタミンの約５０ｎｇ／ｍＬという高さから一部のステロイドの約１０ｐｇ／ｍＬという低さにまで及ぶ。これは、各被検成分に対して最適化されている現行法のＬＯＱと少なくとも同等、場合によってはずっと良好である。しかしながら、それぞれ別個の被検成分に対して最適化されている方法は、疎水性に約７桁をわずかに上回る差を有する被検成分の精製及び分析には適応できない。すなわち、ビタミンＤ代謝産物のような被検成分又は被検成分のクラスに対して最適化されている典型的なＬＣ−ＭＳ法は、一般的に、その特定の被検成分又は被検成分のクラスの精製及び分析にしか使用することができない。これに対し、本明細書中に記載の方法、キット、システム、及び装置は、疎水性に約７桁をわずかに上回る差を有する被検成分の精製及び分析に有用である。さらに、極めて思いがけないことに、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）に比べて、本明細書中に記載の方法システム及びキットを用いて試験された被検成分の多くで感度を改良したことが観察された。ＡＰＣＩは、多くの一般的な関心被検成分の容認されたイオン化法として認識されている。

実施例３：生体マトリックス溶液中の免疫抑制剤、２５−ヒドロキシビタミンＤ_２及びＤ_３、並びに化学療法薬の結果
図２１〜２６に、マトリックス（例えば血液又は血清）中の免疫抑制剤、２５−ヒドロキシビタミンＤ_２及びＤ_３、並びに化学療法薬ドセタキセル及びブスルファンの結果を示す。生体マトリックス溶液中の免疫抑制剤、２５−ヒドロキシビタミンＤ_２及びＤ_３、ドセタキセル又はブスルファンに関し、リカバリー又はマトリックス効果（すなわち、“純”サンプルと比較した場合のマトリックス由来の干渉）は検出されなかった。ブスルファン（ｌｏｇＰ≒−１．１５）及び２５−ヒドロキシビタミンＤ_２（ｌｏｇＰ≒５．６９）は、本明細書中に記載の方法を用いて試験した被検成分の下限及び上限のｌｏｇＰ範囲を表していることに気付くのは興味深い。ブスルファンと２５−ヒドロキシビタミンＤ_２ほど異なる化合物を本明細書中に記載の方法システム及びキットを用いて分離できるとは予想外であった。ブスルファンから２５−ヒドロキシビタミンＤ_２までに変えたパラメーターは、ＬＣ運転パラメーター（例えば、流速、一つの緩衝液対別の緩衝液の比率、温度など）及びＭＳシステムパラメーター（例えば、イオン化電圧、脱溶媒和温度など）だけであった。カラムと緩衝液は変えなかった。

実施例４：関心被検成分の精製及び分析に関する方法の詳細
表３〜１１に、本明細書中に記載された各種関心被検成分の精製及び分析に関する様々な方法詳細を示す。

表４〜７を参照すると、バルブ１の移送(transfer)ループ内の有機体の量を選択するこ
と（化合物を乱流カラムから妥当な時間枠で得るために必要なこと）は、ループは最適に予備充填されているので、移送に顕著な効率をもたらしたことが分かった。この値は、各化合物のクラスに特有であることも分かった。

同様に表４〜７を参照すると、浄化溶出段階（すなわち乱流クロマトグラフィーの溶出段階）と分析カラム充填段階（全部を移送段階と呼ぶことができる）との間の流速比は、浄化カラムから溶出する全てが確実に分析カラムのヘッドに集まるように（すなわち移送段階中に分析溶出はない）、各化合物クラスごとに最適化されていることも分かる。このことは、リカバリー及び分析ピークの形状を著しく改良することが分かった。

同様に表４〜７を参照すると、分析溶出段階は、同重体干渉、化合物間のクロストーク、及びマトリックス妨害を分離するために、各化合物クラスについて最適化できることも分かった。

本発明は、その精神又は本質的特徴から逸脱することなく、他の特定の形態で実施することもできる。記載された態様は、全ての点において単なる例示であって、制限ではないと見なされるべきである。従って、本発明の範囲は、前述の説明によってではなく添付の特許請求の範囲によって示される。特許請求の範囲の意味及び等価の範囲内に入るすべての変更は、本発明の範囲内に包含されるものとする。

１００ システム
１０２ 液体クロマトグラフィーシステム
１１０ サンプル
１１５ サンプル管理装置
１２０ 試薬
１３０ ポンプ
１４０ カラム
１５０ 質量分析計
１６０ 制御装置
１７０ａ リンケージ
１７０ｂ リンケージ
１７０ｃ リンケージ
１７０ｄ リンケージ
２００ 方法
２１０ 第一の被検成分を準備する行為
２２０ 第二の被検成分を準備する行為
２３０ ＬＣ−ＭＳシステムを準備する行為
２４０ 第一の被検成分を精製及び溶出する行為
２５０ 第二の被検成分を精製及び溶出する行為
３００ 方法
３１０ 複数の被検成分を精製及び分析するように構成されたＬＣ−ＭＳシステムを準備する行為
３２０ 被検成分を選択する行為
３３０ 選択された被検成分に基づいて分析プロトコルを選択する行為
３４０ 選択された被検成分をＬＣ−ＭＳによって精製及び分析する行為

本発明の態様
態様１ 方法であって、
第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分を準備し、ここで、第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れており；
第一及び第二の群のそれぞれからの少なくとも一つの被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて精製し；そして
第一及び第二の群からの被検成分を質量分析計を用いて分析する
ことを含む方法。
態様２ 二つ以上の被検成分が異なるサンプルに含有されている、態様１に記載の方法。
態様３ 二つ以上の被検成分が単一のサンプルに含有されている、態様１に記載の方法。
態様４ 二つ以上の被検成分が異なる時間に精製及び分析される、態様１に記載の方法。
態様５ 二つ以上の被検成分が単一の実験で精製及び分析される、態様１に記載の方法。
態様６ 液体クロマトグラフィーシステムが、二つ以上の被検成分のそれぞれを、各選択被検成分に特別な一つ又は複数の液体クロマトグラフィーシステムパラメーターを変えることによって精製するように構成されている、態様１に記載の方法。
態様７ 液体クロマトグラフィーシステムパラメーターが、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様６に記載の方法。
態様８ 液体クロマトグラフィーシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、態様１に記載の方法。
態様９ 第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分が、約４．５〜６ｌｏｇＰ単位離れている、態様１に記載の方法。
態様１０ 第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分が、約６〜７ｌｏｇＰ単位離れている、態様１に記載の方法。
態様１１ 一つの水性移動相緩衝溶液及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液がそれぞれアンモニウムイオン源を含む、態様１に記載の方法。
態様１２ アンモニウムイオン源がギ酸アンモニウム又は酢酸アンモニウムである、態様９に記載の方法。
態様１３ 質量分析計が、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）又は大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）のイオン源を含む、態様１に記載の方法。
態様１４ 液体クロマトグラフィーが高速液体クロマトグラフィー（“ＨＰＬＣ”）である、態様１に記載の方法。
態様１５ 液体クロマトグラフィーが超高速液体クロマトグラフィー（“ＵＨＰＬＣ”）である、態様１に記載の方法。
態様１６ 液体クロマトグラフィーシステムが、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せの少なくとも一つを制御又は変化させるように構成された制御システムをさらに含む、態様１に記載の方法。
態様１７ 方法であって、
液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を準備し、
ここで、ＬＣ−ＭＳシステムは、約−１．２〜約６の範囲にわたる対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有する複数の被検成分を、下記からなる群から選ばれる少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーター：すなわち
移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、電極電圧、衝突ガス温度、衝突ガス圧、衝突エネルギー、及びそれらの組合せ
を変えることによって精製及び分析するように構成され；
対数分配係数の範囲が約−１．２〜約６にわたる少なくとも二つの被検成分を選択し；
選択された被検成分に基づいて少なくとも一つの分析プロトコルを選択し、ここで、少なくとも一つの分析プロトコルの選択は、少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを変えることを含み；そして
選択された被検成分を、ＬＣ−ＭＳ及び少なくとも一つの選択された分析プロトコルを用いて、二つの被検成分それぞれについて診断品質基準が満たされるように精製及び分析する
ことを含む方法。
態様１８ 少なくとも二つの被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様１７に記載の方法。
態様１９ ＬＣ−ＭＳシステムが、
ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、ＨＴＬＣ、及びそれらの組合せからなる群から選ばれるＬＣシステム、及び
シングル四重極型、トリプル四重極型、イオントラップ型、飛行時間型（ＴＯＦ）、四重極−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）、静電トラップ型、磁場セクター型及びそれらの組合せからなる群から選ばれる質量分析計
を含む、態様１７に記載の方法。
態様２０ ＬＣ−ＭＳシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、態様１７に記載の方法。
態様２１ ＬＣ−ＭＳシステムが、複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置をさらに含む、態様１７に記載の方法。
態様２２ ＬＣ−ＭＳシステムが、ＬＣ−ＭＳシステムに結合され、ＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを制御又は変化させるように構成された制御システムをさらに含む、態様１７に記載の方法。
態様２３ 方法であって、
ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、又はそれらの代謝産物からなる群から選ばれる第一の被検成分及び第二の被検成分を準備し、ここで、第一及び第二の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れており；
第一の被検成分及び第二の被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて精製し；そして
第一の被検成分及び第二の被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムと流体連結されている質量分析計を用いて分析する
ことを含む方法。
態様２４ 液体クロマトグラフィーシステムが、第一の被検成分及び第二の被検成分を、第一の被検成分及び第二の被検成分に特別な一つ又は複数の液体クロマトグラフィーシステムパラメーターを変えることによって精製するように構成されており、ここで液体クロマトグラフィーシステムパラメーターは、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様２３に記載の方法。
態様２５ ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、及びそれらの代謝産物からなる群が約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する、態様２３に記載の方法。
態様２６ 質量分析計が、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）又は大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）のイオン源を含む、態様２３に記載の方法。
態様２７ 液体クロマトグラフィーが高速液体クロマトグラフィー（“ＨＰＬＣ”）である、態様２３に記載の方法。
態様２８ 液体クロマトグラフィーが超高速液体クロマトグラフィー（“ＵＨＰＬＣ”）である、態様２３に記載の方法。
態様２９ 方法であって、
第一の被検成分、第二の被検成分、及び第三の被検成分を準備し、ここで、第一の被検成分は約−１．２〜約０の範囲の対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有し、第二の被検成分は約０〜約５の範囲のｌｏｇＰを有し、そして第三の被検成分は約５より大きく、約６以下のｌｏｇＰを有しており；
液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液、及び質量分析計を準備し；
第一の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析し；
第二の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析し；そして
第三の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析する
ことを含む方法。
態様３０ 液体クロマトグラフィーシステムが、第一、第二、及び第三の被検成分を、各選択被検成分に特別な一つ又は複数の液体クロマトグラフィーシステムパラメーターを変えることによって精製するように構成されており、ここで液体クロマトグラフィーシステムパラメーターは、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様２９に記載の方法。
態様３１ 第一及び第二の被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様２９に記載の方法。
態様３２ ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、及びそれらの代謝産物からなる群が約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する、態様２９に記載の方法。
態様３３ 関心被検成分をＬＣ−ＭＳによって精製及び分析するためのシステムであって、
液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を含み、
ここで、液体クロマトグラフィーシステムは、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せのそれぞれの精製及び溶離を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、一つの水性移動相緩衝溶液、及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて実行することができるシステム。
態様３４ 液体クロマトグラフィーシステムが、ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、ＨＴＬＣ、及びそれらの組合せからなる群から選ばれ、
システムはさらに、
液体クロマトグラフィーシステムから精製及び溶出された各被検成分に特異的な一つ又は複数の親イオン又はプロダクトイオンをイオン化、フラグメント化、及び検出することができる質量分析計を含み、
質量分析計は、シングル四重極型、トリプル四重極型、イオントラップ型、飛行時間型（ＴＯＦ）、四重極−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）、静電トラップ型、磁場セクター型及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様３３に記載のシステム。
態様３５ 液体クロマトグラフィーシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、態様３３に記載のシステム。
態様３６ 被検成分が約−１．２〜約６の範囲の対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有する、態様３３に記載のシステム。
態様３７ 複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置と；
液体クロマトグラフィーシステム及び質量分析計のそれぞれに結合され、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、レンズ振幅、衝突ガス温度、衝突ガス圧、及びそれらの組合せの少なくとも一つを制御又は変化させるように構成された制御システムとをさらに含む、態様３３に記載のシステム。
態様３８ サンプル管理装置及び／又は制御システムと動作的に結合されたサンプル検出装置をさらに含み、サンプル検出装置は、
ｉ．システムに入るサンプルの識別；
ii．システムに入るサンプル中の被検成分の識別；
iii．被検成分に基づいてアッセイプロトコルの選択；
iv．サンプル管理装置及び／又は制御システムに、サンプル中の被検成分の分析を開始するよう指示；
ｖ．制御システムに、被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて一つ又は複数の試薬を選択するよう指示；
vi．制御システムに、被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて液体クロマトグラフィーの移動相条件を選択し、液体クロマトグラフィーシステムに被検成分を精製するよう指示；
vii．制御システムに、被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて質量分析計の設定を選択し、質量分析計に選択された被検成分に関連する質量スペクトルデータを生み出すよう指示；又は
viii．制御システムに、被検成分の存在及び／又は濃度を同定するために、選択された被検成分に関連する質量スペクトルデータを分析するよう指示
の少なくとも一つを行うように構成されている、態様３７に記載のシステム。
態様３９ 関心被検成分を液体クロマトグラフィー-質量分析（ＬＣ−ＭＳ）によって精製及び分析するためのキットであって、
少なくとも一つの分析用液体クロマトグラフィーカラムと；
液体クロマトグラフィーシステムを用いて複数の被検成分を精製するための試薬（試薬は、少なくとも一つの水性移動相緩衝溶液及び少なくとも一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を含む）と；そして
質量分析計を用いて複数の被検成分を分析するためのプロトコルと
を含み、
プロトコルは、約−１．２〜約６の範囲の分配係数（ｌｏｇＰ）を有する被検成分を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、単一の水性移動相緩衝液、及び単一の実質的に非水性の移動相緩衝液を用いて精製及び分析するための説明書を含むキット。
態様４０ プロトコルが、約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する被検成分を、約−１．２〜約６のｌｏｇＰ範囲の各被検成分について診断品質基準が満たされるように精製及び分析するための説明書をさらに含む、態様３９に記載のキット。
態様４１ 単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流に、それと流体連結して配置されるように構成された単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、態様３９に記載のキット。
態様４２ 複数の被検成分の精製及び／又は質量分析を追跡するための少なくとも一つの品質管理基準をさらに含む、態様３９に記載のキット。
態様４３ 一つの水性移動相緩衝溶液及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液がそれぞれアンモニウムイオン源を含む、態様３９に記載のキット。
態様４４ アンモニウムイオン源がギ酸アンモニウム又は酢酸アンモニウムである、態様４３に記載のキット。
態様４５ 複数の被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様３９に記載のキット。
態様４６ 関心被検成分を精製及び分析するための装置であって、
液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液と、
ここで、液体クロマトグラフィーシステムは、約−１．２〜約６の対数分配係数（ｌｏｇＰ）範囲にわたる被検成分の精製及び溶出を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、一つの水性移動相緩衝溶液、及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて実行することができ；
液体クロマトグラフィーシステムから精製及び溶出された各被検成分に特異的な一つ又は複数の親イオン又はプロダクトイオンをイオン化、フラグメント化、及び検出することができる質量分析計と；
複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置と；そして
液体クロマトグラフィーシステム及び質量分析計のそれぞれに結合され、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、レンズ振幅、衝突ガス温度、衝突ガス圧、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを制御又は変化させるように構成された制御システムと
を含む装置。
態様４７ 液体クロマトグラフィーシステムが、ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、ＨＴＬＣ、及びそれらの組合せからなる群から選ばれ、
質量分析計が、シングル四重極型、トリプル四重極型、イオントラップ型、飛行時間型（ＴＯＦ）、四重極−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）、静電トラップ型、磁場セクター型及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様４６に記載の装置。
態様４８ 液体クロマトグラフィーシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、態様４６に記載の装置。
態様４９ 約−１．２〜約６のｌｏｇＰ範囲にわたる被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、態様４６に記載の装置。
本発明は、その精神又は本質的特徴から逸脱することなく、他の特定の形態で実施することもできる。記載された態様は、全ての点において単なる例示であって、制限ではないと見なされるべきである。従って、本発明の範囲は、前述の説明によってではなく添付の特許請求の範囲によって示される。特許請求の範囲の意味及び等価の範囲内に入るすべての変更は、本発明の範囲内に包含されるものとする。

Claims (49)

1. 方法であって、
   第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分を準備し、ここで、第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れており；
   第一及び第二の群のそれぞれからの少なくとも一つの被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて精製し；そして
   第一及び第二の群からの被検成分を質量分析計を用いて分析する
   ことを含む方法。
2. 二つ以上の被検成分が異なるサンプルに含有されている、請求項１に記載の方法。
3. 二つ以上の被検成分が単一のサンプルに含有されている、請求項１に記載の方法。
4. 二つ以上の被検成分が異なる時間に精製及び分析される、請求項１に記載の方法。
5. 二つ以上の被検成分が単一の実験で精製及び分析される、請求項１に記載の方法。
6. 液体クロマトグラフィーシステムが、二つ以上の被検成分のそれぞれを、各選択被検成分に特別な一つ又は複数の液体クロマトグラフィーシステムパラメーターを変えることによって精製するように構成されている、請求項１に記載の方法。
7. 液体クロマトグラフィーシステムパラメーターが、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項６に記載の方法。
8. 液体クロマトグラフィーシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、請求項１に記載の方法。
9. 第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分が、約４．５〜６ｌｏｇＰ単位離れている、請求項１に記載の方法。
10. 第一の群及び第二の群から選ばれた二つ以上の被検成分が、約６〜７ｌｏｇＰ単位離れている、請求項１に記載の方法。
11. 一つの水性移動相緩衝溶液及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液がそれぞれアンモニウムイオン源を含む、請求項１に記載の方法。
12. アンモニウムイオン源がギ酸アンモニウム又は酢酸アンモニウムである、請求項９に記載の方法。
13. 質量分析計が、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）又は大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）のイオン源を含む、請求項１に記載の方法。
14. 液体クロマトグラフィーが高速液体クロマトグラフィー（“ＨＰＬＣ”）である、請求項１に記載の方法。
15. 液体クロマトグラフィーが超高速液体クロマトグラフィー（“ＵＨＰＬＣ”）である、請求項１に記載の方法。
16. 液体クロマトグラフィーシステムが、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せの少なくとも一つを制御又は変化させるように構成された制御システムをさらに含む、請求項１に記載の方法。
17. 方法であって、
    液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を準備し、
    ここで、ＬＣ−ＭＳシステムは、約−１．２〜約６の範囲にわたる対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有する複数の被検成分を、下記からなる群から選ばれる少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーター：すなわち
    移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、電極電圧、衝突ガス温度、衝突ガス圧、衝突エネルギー、及びそれらの組合せ
    を変えることによって精製及び分析するように構成され；
    対数分配係数の範囲が約−１．２〜約６にわたる少なくとも二つの被検成分を選択し；
    選択された被検成分に基づいて少なくとも一つの分析プロトコルを選択し、ここで、少なくとも一つの分析プロトコルの選択は、少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを変えることを含み；そして
    選択された被検成分を、ＬＣ−ＭＳ及び少なくとも一つの選択された分析プロトコルを用いて、二つの被検成分それぞれについて診断品質基準が満たされるように精製及び分析する
    ことを含む方法。
18. 少なくとも二つの被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項１７に記載の方法。
19. ＬＣ−ＭＳシステムが、
    ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、ＨＴＬＣ、及びそれらの組合せからなる群から選ばれるＬＣシステム、及び
    シングル四重極型、トリプル四重極型、イオントラップ型、飛行時間型（ＴＯＦ）、四重極−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）、静電トラップ型、磁場セクター型及びそれらの組合せからなる群から選ばれる質量分析計
    を含む、請求項１７に記載の方法。
20. ＬＣ−ＭＳシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、請求項１７に記載の方法。
21. ＬＣ−ＭＳシステムが、複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置をさらに含む、請求項１７に記載の方法。
22. ＬＣ−ＭＳシステムが、ＬＣ−ＭＳシステムに結合され、ＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを制御又は変化させるように構成された制御システムをさらに含む、請求項１７に記載の方法。
23. 方法であって、
    ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、又はそれらの代謝産物からなる群から選ばれる第一の被検成分及び第二の被検成分を準備し、ここで、第一及び第二の被検成分の対数分配係数（ｌｏｇＰ）は、少なくとも約４．５ｌｏｇＰ単位離れており；
    第一の被検成分及び第二の被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて精製し；そして
    第一の被検成分及び第二の被検成分を、液体クロマトグラフィーシステムと流体連結されている質量分析計を用いて分析する
    ことを含む方法。
24. 液体クロマトグラフィーシステムが、第一の被検成分及び第二の被検成分を、第一の被検成分及び第二の被検成分に特別な一つ又は複数の液体クロマトグラフィーシステムパラメーターを変えることによって精製するように構成されており、ここで液体クロマトグラフィーシステムパラメーターは、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項２３に記載の方法。
25. ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、及びそれらの代謝産物からなる群が約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する、請求項２３に記載の方法。
26. 質量分析計が、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）又は大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）のイオン源を含む、請求項２３に記載の方法。
27. 液体クロマトグラフィーが高速液体クロマトグラフィー（“ＨＰＬＣ”）である、請求項２３に記載の方法。
28. 液体クロマトグラフィーが超高速液体クロマトグラフィー（“ＵＨＰＬＣ”）である、請求項２３に記載の方法。
29. 方法であって、
    第一の被検成分、第二の被検成分、及び第三の被検成分を準備し、ここで、第一の被検成分は約−１．２〜約０の範囲の対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有し、第二の被検成分は約０〜約５の範囲のｌｏｇＰを有し、そして第三の被検成分は約５より大きく、約６以下のｌｏｇＰを有しており；
    液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、ＬＣ−ＭＳシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及びＬＣ−ＭＳの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液、及び質量分析計を準備し；
    第一の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析し；
    第二の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析し；そして
    第三の被検成分をＬＣ−ＭＳシステムで精製及び分析する
    ことを含む方法。
30. 液体クロマトグラフィーシステムが、第一、第二、及び第三の被検成分を、各選択被検成分に特別な一つ又は複数の液体クロマトグラフィーシステムパラメーターを変えることによって精製するように構成されており、ここで液体クロマトグラフィーシステムパラメーターは、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項２９に記載の方法。
31. 第一及び第二の被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項２９に記載の方法。
32. ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、及びそれらの代謝産物からなる群が約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する、請求項２９に記載の方法。
33. 関心被検成分をＬＣ−ＭＳによって精製及び分析するためのシステムであって、
    液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を含み、
    ここで、液体クロマトグラフィーシステムは、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せのそれぞれの精製及び溶離を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、一つの水性移動相緩衝溶液、及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて実行することができるシステム。
34. 液体クロマトグラフィーシステムが、ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、ＨＴＬＣ、及びそれらの組合せからなる群から選ばれ、
    システムはさらに、
    液体クロマトグラフィーシステムから精製及び溶出された各被検成分に特異的な一つ又は複数の親イオン又はプロダクトイオンをイオン化、フラグメント化、及び検出することができる質量分析計を含み、
    質量分析計は、シングル四重極型、トリプル四重極型、イオントラップ型、飛行時間型（ＴＯＦ）、四重極−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）、静電トラップ型、磁場セクター型及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項３３に記載のシステム。
35. 液体クロマトグラフィーシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、請求項３３に記載のシステム。
36. 被検成分が約−１．２〜約６の範囲の対数分配係数（ｌｏｇＰ）を有する、請求項３３に
    記載のシステム。
37. 複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置と；
    液体クロマトグラフィーシステム及び質量分析計のそれぞれに結合され、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、レンズ振幅、衝突ガス温度、衝突ガス圧、及びそれらの組合せの少なくとも一つを制御又は変化させるように構成された制御システムとをさらに含む、請求項３３に記載のシステム。
38. サンプル管理装置及び／又は制御システムと動作的に結合されたサンプル検出装置をさらに含み、サンプル検出装置は、
    ｉ．システムに入るサンプルの識別；
    ii．システムに入るサンプル中の被検成分の識別；
    iii．被検成分に基づいてアッセイプロトコルの選択；
    iv．サンプル管理装置及び／又は制御システムに、サンプル中の被検成分の分析を開始するよう指示；
    ｖ．制御システムに、被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて一つ又は複数の試薬を選択するよう指示；
    vi．制御システムに、被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて液体クロマトグラフィーの移動相条件を選択し、液体クロマトグラフィーシステムに被検成分を精製するよう指示；
    vii．制御システムに、被検成分のために選択されたアッセイプロトコルに基づいて質
    量分析計の設定を選択し、質量分析計に選択された被検成分に関連する質量スペクトルデータを生み出すよう指示；又は
    viii．制御システムに、被検成分の存在及び／又は濃度を同定するために、選択された被検成分に関連する質量スペクトルデータを分析するよう指示
    の少なくとも一つを行うように構成されている、請求項３７に記載のシステム。
39. 関心被検成分を液体クロマトグラフィー-質量分析（ＬＣ−ＭＳ）によって精製及び分析
    するためのキットであって、
    少なくとも一つの分析用液体クロマトグラフィーカラムと；
    液体クロマトグラフィーシステムを用いて複数の被検成分を精製するための試薬（試薬は、少なくとも一つの水性移動相緩衝溶液及び少なくとも一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を含む）と；そして
    質量分析計を用いて複数の被検成分を分析するためのプロトコルと
    を含み、
    プロトコルは、約−１．２〜約６の範囲の分配係数（ｌｏｇＰ）を有する被検成分を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、単一の水性移動相緩衝液、及び単一の実質的に非水性の移動相緩衝液を用いて精製及び分析するための説明書を含むキット。
40. プロトコルが、約−１．２〜約６の範囲のｌｏｇＰを有する被検成分を、約−１．２〜約６のｌｏｇＰ範囲の各被検成分について診断品質基準が満たされるように精製及び分析するための説明書をさらに含む、請求項３９に記載のキット。
41. 単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流に、それと流体連結して配置されるように構成された単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、請求項３９に記載のキット。
42. 複数の被検成分の精製及び／又は質量分析を追跡するための少なくとも一つの品質管理基準をさらに含む、請求項３９に記載のキット。
43. 一つの水性移動相緩衝溶液及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液がそれぞれアンモニウムイオン源を含む、請求項３９に記載のキット。
44. アンモニウムイオン源がギ酸アンモニウム又は酢酸アンモニウムである、請求項４３に記載のキット。
45. 複数の被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、タンパク質ホルモン、タンパク質、ペプチドホルモン、ペプチド、細菌毒素、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項３９に記載のキット。
46. 関心被検成分を精製及び分析するための装置であって、
    液体クロマトグラフィーシステムの単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、液体クロマトグラフィーシステムの一つの水性移動相緩衝溶液、及び液体クロマトグラフィーシステムの一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液と、
    ここで、液体クロマトグラフィーシステムは、約−１．２〜約６の対数分配係数（ｌｏｇＰ）範囲にわたる被検成分の精製及び溶出を、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラム、一つの水性移動相緩衝溶液、及び一つの実質的に非水性の移動相緩衝溶液を用いて実行することができ；
    液体クロマトグラフィーシステムから精製及び溶出された各被検成分に特異的な一つ又は複数の親イオン又はプロダクトイオンをイオン化、フラグメント化、及び検出することができる質量分析計と；
    複数のサンプルを管理するために構成されたサンプル管理装置と；そして
    液体クロマトグラフィーシステム及び質量分析計のそれぞれに結合され、移動相緩衝液の流速、水性移動相緩衝溶液対非水性移動相緩衝溶液の比率、水性及び非水性移動相緩衝溶液のグラジエント変動比率、イオン化電圧、脱溶媒和温度、レンズ振幅、衝突ガス温度、衝突ガス圧、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる少なくとも一つのＬＣ−ＭＳシステムパラメーターを制御又は変化させるように構成された制御システムと
    を含む装置。
47. 液体クロマトグラフィーシステムが、ＨＰＬＣ、ＵＨＰＬＣ、ＨＴＬＣ、及びそれらの組合せからなる群から選ばれ、
    質量分析計が、シングル四重極型、トリプル四重極型、イオントラップ型、飛行時間型（ＴＯＦ）、四重極−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型（ＦＴＩＣＲ）、静電トラップ型、磁場セクター型及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項４６に記載の装置。
48. 液体クロマトグラフィーシステムが、単一の分析用液体クロマトグラフィーカラムの上流にあって、それと流体連結されている単一のサンプル浄化用液体クロマトグラフィーカラムをさらに含む、請求項４６に記載の装置。
49. 約−１．２〜約６のｌｏｇＰ範囲にわたる被検成分が、ビタミンＤ、ステロイドホルモン、免疫抑制剤、化学療法薬、三環系抗うつ薬、アゾール系抗真菌薬、抗てんかん薬、抗レトロウィルス薬、オピエート及び／又はオピオイド、乱用薬物、バルビツレート、ベンゾジアゼピン、それらの代謝産物、及びそれらの組合せからなる群から選ばれる、請求項４６に記載の装置。

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