JP2017501221A - がん治療におけるオリゴウロン酸塩の使用 - Google Patents
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Abstract
Description
アルギネートオリゴマーは、好ましくは直鎖オリゴマーである。
好ましさは劣るが、類似のオリゴガラクツロネートも、ガラクツロン酸残基のみ、または実質的にガラクツロン酸残基のみを含む(またはからなる)ものであればよく、すなわち、モノマー残基の少なくとも80%、より具体的には少なくとも85%、90%、95%または99%がガラクツロン酸残基である。
好ましくは、オリゴウロン酸塩またはアルギネートオリゴマーのモノマー残基の少なくとも60%、より具体的には少なくとも70%または75%、さらにより具体的には少なくとも80%、85%、90%、92%、95%または99%がグルロネートである。一実施形態において、アルギネートオリゴマーは、Gのホモオリゴマーまたは100%のGであり得る。
特に、G残基の少なくとも80%、85%または90%は、別のG残基に(1−4)結合している。より具体的には、アルギネートのG残基の少なくとも95%、より好ましくは少なくとも98%、最も好ましくは少なくとも99%が別のG残基に(1−4)結合している。
「予防」とは、がんの症状の発症を遅らせる、または予防することを意味する。
あるいは(またはさらに)、本発明は、対象、より具体的にはがん、またはがんの発症もしくは進行に及ぼすオリゴウロン酸塩および/または他の抗がん剤の投与の効果を評価または監視することを含んでもよい。抗がん作用を評価および/または監視する手順および手段は、当該技術分野において公知であり、例えば、症状、病態、(イメージング技術等による)腫瘍の大きさや広がり、または他のがんもしくは腫瘍の指標(がん/腫瘍マーカー等)を判断または監視することによって行われる。
抗がん薬または抗がん剤は、当該技術分野において公知の適切な抗がん剤であればよい。がんの治療用に幅広い様々な種類の薬剤が知られている、または提案されているが、化学的性質または作用様式に関わらず、これらのうちのどの薬剤を用いてもよい。従って、抗がん剤は、天然由来か合成的に調製されたかを問わず、化学分子(例えば、有機化学低分子(organic small chemical molecules))を含むとともに、タンパク質およびペプチド等の生体分子(例えば、後述の免疫療法剤)も含む。また、抗がん薬は、幅広い様々な化学的分類または機能的分類に当てはまると考えられる化学療法剤または化学療法薬に加えて、例えば、体内の様々な生理的過程または細胞(例えば、免疫応答および/または抗炎症反応または細胞)を促進、活性化または増強するように作用する抗体または抗体誘導体および他の生体分子を含む。
本発明は、様々な抗がん剤に対して有用であり、考えられる抗がん剤の例を以下に述べる。
(a)あらゆる動物、例えば、ヒツジ、ウサギ、ヤギもしくはマウスまたは卵黄等の従来用いられている動物のいずれかに由来する免疫グロブリンの種々のクラスまたはサブクラス(IgG、IgA、IgM、IgDまたはIgE等)のいずれかの抗体;
(b)モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体;
(c)モノクローナルまたはポリクローナルの完全抗体または抗体フラグメントであり、フラグメントは、抗体の結合領域を含有するフラグメント、例えば、Fc部が欠けているフラグメント(Fab、Fab’、F(ab’)2、Fv等)、すなわち、完全抗体の重鎖成分を結合しているジスルフィド結合の還元開裂により得られた、いわゆる「半分子(half molecule)」フラグメントである。Fvとは、二本鎖で表される軽鎖可変領域および重鎖可変領域を含有するフラグメントとして規定されることもある;
(d)組み換えDNA技術または他の合成技術により産生または修飾された抗体であり、モノクローナル抗体、抗体フラグメント、ヒト化抗体、キメラ抗体、または合成的に生成もしくは改変された抗体様構造を含む。
多くの場合、モノクローナル抗体とは、修飾されていない抗体であり、現在使用されている治療用抗体の大部分がこの部類に当てはまる。しかし、本発明の一実施形態では、抗体(モノクローナル抗体等)と、毒性物質または放射性物質等のさらなる付加分子(additional molecule)とを接合または融合させている。従って、接合抗体または融合抗体は、別の分子、すなわち、細胞に有毒な分子(薬物等)または放射性分子に結合している。抗体は、がん細胞の表面で特定の抗原に結合することにより、毒素または放射線を腫瘍に向ける。
あるいは、細胞は、ナチュラルキラー(NK)細胞でもよく、NK細胞は、必要に応じてCARを発現するように改変されてもよい。
マトリゲル特性に対するオリゴウロン酸塩の効果
製造業者から入手したマトリゲル(BDバイオサイエンス)を用いた。検査済みのGブロック(Dp10、炭濾過(charcoal filtered))を、生理食塩水(150mM、NaCl)に10mg/mLで溶解した。このGブロック溶液および生理食塩水を氷上で冷却し、エッペンドルフ(Ependorf)製のラックおよびピペットの先端も冷却した。また、マトリゲル(100μL、エッペンドルフ×4)を氷上で解凍した。
対照として、マトリゲルを入れた2本のエッペンドルフのぞれぞれに、100μLの生理食塩水を添加し、上下にピペッティングして完全に混合した。これらの2本のチューブの内容物を氷上で混合し、貯蔵した。
Gブロックを検査するために、2本のエッペンドルフのそれぞれに、100μLのGブロック溶液を添加し、上下にピペッティングして完全に混合した。これらの2本のチューブの内容物を氷上で混合し、貯蔵した。
300μLの上記対照(または検査)マトリゲル溶液を、10℃でレオメータのプレート(C40/1ジオメトリを使用)に塗布して、流動学測定を行った。10℃〜37℃の温度範囲、0.5℃/minで複素弾性率(G*(Pa))を測定した。G*は、被験材料の機械的特性を示す。図1に結果を示す。
下記の他のオリゴウロン酸塩を用いて、実験を繰り返した。
対照(上記参照);Gブロック10(Dp10、94%G:5mg/mL);Gブロック20(Dp20、90%G:5mg/mL);Mブロック(Dp20、100%M:5mg/mL);およびガラクツロネートオリゴマー(十分に分析されていないが、Dpは10〜20の範囲であり、ガラクツロネート(GalU)は80%を超えると考えられた:5mg/mL)。図2に結果を示す。
実験では、ゲル形成の動態のみを調査し、平衡状態の性質は調査していない。それにもかかわらず、上記図面からは、オリゴウロン酸塩、特にアルギネートオリゴマー、とりわけGブロックオリゴマー(オリゴグルロネート)がマトリゲルECM調製品のレオロジーに影響を及ぼし、特にG*を低下させるのに効果的であったことが分かる。これは、構造が影響を受けている(破壊されている)ため、ECMの固体様挙動が抑制されることを明らかに示している。言い換えれば、オリゴウロン酸塩により、ECMのゲル挙動またはゲル状挙動が抑制される。
Capan−2ヒト膵臓腫瘍異種移植モデルにおいて、Gブロックが単独で用いられた場合またはゲムシタビンと併用した場合のGブロックの効果
この試験の目的は、Capan−2ヒト膵臓腫瘍異種移植モデルにおいて、ゲムシタビンと併用したエンハンサーとしてGブロックの抗腫瘍活性を評価することにあった。ゲムシタビンは、治癒量ではなく、このモデルの概念評価の証拠となり得るようなレベルで添加された。効力は、11日目および74日目の処置群の腫瘍重量とビヒクル対照群の腫瘍重量とを比較し、さらに、11日目および74日目の併用群の腫瘍重量と各併用群のそれぞれの薬剤を単独で用いた場合の腫瘍重量とを比較することにより、評価した。
エヌティーエヌユー・テクノロジー・トランスファー・エーエス(NTNU Technology Transfer AS)(ノルウェー国トロンヘイム)から、白色吸湿性の非晶質粉末であるGブロック(ロット番号:PolyG230712−Dp10、95%G)を入手し、使用するまで室温で乾燥保存した。NTNUのGブロックをミリQ水に溶解して70mg/mLの濃度とし、原液として用いた。この溶液により、200μLの固定用量(fixed dose)で約560mg/kgの投与量を送達した。次に、70mg/mL溶液を、0.9%、150mMのNaCl溶液(ビー・ブラウンメディカル(B. Braun Medical)、カリフォルニア州アーバイン)に希釈し、200μLの一定投与容量(fixed dose volume)で約200mg/kg、約75mg/kg、約25mg/kgおよび約5mg/kgの投与量をそれぞれ送達した。全ての投与量計算は、25gの動物を前提としている。NTNUのGブロック70mg/mL原液は、試験の最初に作製された後、それぞれの投与前に希釈に用いられ、滅菌濾過されて、各投与間には4℃で保存された。未使用の全ての投与混合物は、試験終了後、TD2において適正に処分された。
ビヒクル対照に0.9%、150mMのNaCl溶液を10mL/kgの投与容量で投与した。ビヒクル対照は室温で保存した。
Capan−2ヒト膵臓腫瘍異種移植細胞株は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC)(ヴァージニア州マナッサス)から入手した。培養物を、10%ウシ胎児血清(オメガ・サイエンティフィック(Omega Scientific)、カリフォルニア州ターザナ)を添加したマッコイ5A培地(McCoy's 5A medium)(ハイクローン(Hyclone)、ユタ州ローガン)で維持し、5%二酸化炭素雰囲気中に配置した。培養物は、十分な量の細胞が採取されるまで、分割比1:5で組織培養フラスコ内に増殖させた。
ハーラン(Harlan)(ニューヨーク州ジャーマンタウン)から、雌無胸腺ヌードマウス(Hsd: Athymic Nude-Foxn1nu)が供給された。4週齢のマウスを入手した。全てのマウスは、取り扱う前に気候順化させた。マイクロアイソレーター・ケージ(microisolator cages)(ラボプロダクツ(Lab Products)、デラウェア州シーフォード)にマウスを収容し、特定病原体を含まない条件下で維持した。マウスには、実験動物用照射飼料であるTeklad Global Diet(登録商標)2920x(ハーラン(Harlan)、インディアナ州インディアナポリス)を与えて飼育し、オートクレーブ滅菌水(autoclaved water)を自由に飲めるようにした。全ての手順は、TGen薬剤開発動物実験委員会(TGen Drug Development Institutional Animal Care and Use Committee)(プロトコル番号:13046)によるガイドラインに従って行われた。
Capan−2腫瘍細胞(約5.0×106細胞/マウス)の懸濁液を含有する50%RPMI/50%マトリゲル(登録商標)(BDバイオサイエンス、マサチューセッツ州ベッドフォード)混合物0.1mLを、雌マウスの右脇腹に皮下接種した。接種後7日間、キャリパーを用いて腫瘍を測定し、動物試験管理ソフトウェアStudy Director V.2.1.1 (Study Log)1を用いて腫瘍重量を算出した。Study Directorを用いて、約140mgを平均値とするランダム平衡化を行うことにより、腫瘍サイズが101mg〜194mgの80匹のマウスを1群10匹からなる8群に無作為に分けた(1日目)。マウスを無作為化した際に体重を記録し、その後は、腫瘍測定とともに週2回記録した。下記表1に示すように投与を行った。
全ての処置群において、試験の最初の数日後に体重の増加が示された。これは、治療レジメンが十分に許容されるものであったことを表している。数匹のマウスには、小さな腫瘍壊死が認められた。1匹のマウス(第2群マウス10)は、皮膚上の円板状丘疹(discoid papules)および塊を含む、特異的な臨床所見を呈した。ただし、この所見は、処置に関連したものとは判断されなかった。
図3(3AおよびB)および図4に結果をまとめて示す。これらの図に示されているように、驚くべきことに、単一の薬剤としてGブロックを用いた場合、ビヒクル対照と比較して、投与段階の最後に平均腫瘍重量が減少した。また、Gブロックとゲムシタビンとを併用した全ての処置において、ビヒクル対照と比較して、投与段階の最後に平均腫瘍重量が著しく減少した。単一の薬剤の場合、特にゲムシタビンだけの場合よりも、平均腫瘍重量の減少が見られた。
下記は、実施例2で報告された試験における腫瘍重量の統計分析に関する。これは、前臨床試験であり、マウス10匹ずつを、ビヒクル(偽薬)、Gブロック560mg(エンハンサー)、ゲムシタビン5mg(抗がん剤)またはゲムシタビン5mgとGブロック5mg、25mg、75mg、200mgもしくは560mgとの併用による8つの異なる処置に割り当てた。腫瘍重量および体重は、どちらも1日目に評価した後、74日目の最後の評価まで、週2回評価した。
処置を固定因子とし、1日目の腫瘍重量を共変量とした分散分析(ANOVA)モデルを用い、各評価の分散は等しい(共変量のない1日目のモデル)と仮定して、それぞれの処置を比較した。評価日ごとに異なるモデルが割り当てられた。動的処置(active treatments)とビヒクルとの対差(pairwise differences)を計算し、かつGブロック560mgと、ゲムシタビン5mgと、これらの併用との対比較(pairwise comparison)を行ったことにより、上記差についての95%信頼区間および関連するP値(P-value)が出力された。加重最小二乗回帰を用いた基本的なANOVAから得られた処置平均値(treatment means)に直線を近似させることにより、ゲムシタビン5mgに加えてGブロックを投与した処置の用量反応を評価した。曲線下面積(AUC)は、台形法則を用いて計算し、さらに積分区間長で割ることにより標準化した。その結果、平均腫瘍重量(Eav)が求められた。Eavは、処置を固定因子としたANOVAモデルによって分析した。さらなる腫瘍データは、均等目盛による主分析として対応するモデルを用いた対数目盛で分析した。これは、まずデータのログが記録され、次に分析され、最後に結果が元の目盛に変換されることを意味する。このように作成された処置平均値は相乗平均になり、各処置間の差は、この相乗平均の比として表される。さらに、ログが記録されたデータの標準偏差を、元の目盛上のデータの変動係数(CV;相対標準偏差)に変換することができる。この分析において、特異点を避けるために、0mgの腫瘍重量(1匹のマウスが該当)は10mgに設定された。74日目までに、3つの値を除いてデータは完成した。これらは、分析においては欠落したままにされていたが、平均値曲線を形成する際には、延長された最終値に基づく帰属値(imputed values)が代わりに用いられた。
腫瘍重量−日ごとの分析
図5に日ごとおよび処置ごとの腫瘍重量の各曲線を示し、図6に対応する平均値のグラフを示す。かなり一般的な開始腫瘍重量から、腫瘍重量が急激に増加しているマウスもあれば、ほとんど変化していないマウスもあり、これは、全ての処置群で見られた。従って、得られた平均値曲線は増加傾向を示しており、ビヒクル処置の曲線は最も急速な増加を示している。6つの各曲線は、グラフのスケールを分かりやすくするために、2000mgで切り捨てられている(すなわち、ビヒクルで3、ゲムシタビン5mgで2およびゲムシタビン5mgとGブロック5mgとの併用で1)。最大の腫瘍重量は3321mgであった。3匹のマウスは、腫瘍重要が3000mgを超えたため、71日目以降に終結させた(すなわち、ビヒクルで各1、ゲムシタビン5mgで2およびゲムシタビン5mgとGブロック5mgとの併用で1)。表2に、評価日ごとに別々に適用された基本的なANOVAの結果をまとめて示す。図7に、ビヒクルに対する動的処置の差を示す(1日当たりの95%信頼区間の推定された処置差(treatment difference))。1日目の各処置間で、腫瘍重量のバランスがよく取れていた。全ての活性薬剤、Gブロック560mg、ゲムシタビン5mgならびにゲムシタビン5mgとGブロック5mg、25mg、75mg、200mgおよび560mgとの併用による処置を行った結果、8日目に、ビヒクルに対して統計的に有意な差に到達した。統計的に有意な効果は、Gブロック560mgで24日まで、ゲムシタビン5mgで36日まで、ゲムシタビンとGブロックとの併用の場合、43日まで(Gブロック5mgおよび560mg)、46日まで(Gブロック25mgおよび200mg)または50日まで(Gブロック75mg)、それぞれ一貫して示された。モデルの残差標準偏差は、4日目の22mgから71日目の625mgに増加している。処置差は、処置の開始後、約1か月まで増加したが、その後はサイズがかなり一定に保たれたので、統計的に有意な効果の損失は、主として、データにおける変動の増加の影響によるものである。
経時的な測定を組み合わせるために、腫瘍重量の曲線下面積(AUC)を計算した。0日〜60日、0日〜50日、0日〜39日および0日〜29日のそれぞれの時間間隔にわたって、異なるAUCを算出した。得られたACUを間隔の長さで割ることにより、各間隔にわたる平均腫瘍重量(Eav)として、さらに値を表した。
表3に、計算された各Eavパラメータについての基本的な分散分析の結果をまとめて示す。60日までの全ての間隔における組み合わせ(全てのGブロック投与量)、50日までの間隔におけるゲムシタビン5mgおよび39日までの間隔におけるGブロックに関して、ビヒクルに対する統計的に有意な効果を示すことができた。それぞれの日数を分析すると明らかなように、残差標準偏差は、間隔ごとに含まれる日数が増加するにつれて増加している。
時間とともに腫瘍重量は増加し、また、ANOVAモデルにおける残留変動(residual variability)も増加する。表4に、分散の安定化を図るために、ログされた腫瘍重量データに基づく対応するANOVAモデルの結果をまとめて示す。このような乗法モデルにより、推定値として相乗平均が得られるため、処置群間の差は、この相乗平均の比として表される。図8に、95%信頼区間のビヒクルに対する推定比を示す。変動係数(CV)で表される変動は、依然として増加傾向を示していることから、(対数(log-arithmation))変換によって、十分に変動を安定させることはできなかった。(ビヒクルに対する)統計的に有意な効果に関して、結果は、対応する付加的な分析の結果に非常によく似ている。
図6の平均値曲線を調査すると、指数関数による近似は、平均値データによく一致するようである。従って、Cを定数(共通の開始腫瘍重量)とし、処置iおよび試験中の時間t(日数−1)に対する腫瘍増殖率のy=C*exp(aj *t)で表されるモデルは、データに近似した。モデル化には、60日までのデータのみを用いた。
Capan−2ヒト膵臓腫瘍異種移植モデルにおける、Gブロック単独の効果についてのさらなる試験
この実験の目的は、用量反応を調査して、異なる投与レジメンを比較することにあった。Gブロック単独に関して、材料および方法は、実施例2に記載された通りである。2つの異なるGブロックの投与レジメンが検査された。第1のレジメン(Q3×4)は、実施例2と同様に、Gブロックを2日おきに計4回注入した。第2のレジメン(Q3×10)は、Gブロックを2日おきに計10回注入した。図11に結果を示す。各実験において、5つの動物群(n=10)に、ビヒクルまたは3つの濃度のGブロック(0.5mg/kgb.w.、25mg/kgb.w.または560mg/kgb.w.)を静脈内注射した。
ECM構造に対するGブロックの効果
試験終了後、組織学的分析により、実施例2の腫瘍を分析した。剖検により、全ての群の全動物から腫瘍を切除し、二分して、ホルマリンの瓶(アゼル・サイエンティフィック/VWR(Azer Scientific/VWR)、ニュージャージー州フランクリンレイクス)に入れた後、約24時間固定してからエタノールに移した。ホルマリン固定された組織は、パラフィンに包埋され、加工され、さらにヘマトキシリン・エオシン(HE)染色された。図12の組織学的結果により、エオシン染色された領域における白い領域の割合が高いことから実証されるように、Gブロックで処置された動物は、細胞外マトリクスが低密度になることが示された。
SK−OV−3ヒト卵巣腫瘍異種移植モデルにおいて、Gブロックが単一の薬剤として用いられた場合およびハーセプチンと併用した場合のGブロックの抗腫瘍活性の評価
この試験の目的は、SK−OV−3ヒト卵巣腫瘍異種移植モデルにおいて、ハーセプチンと併用したエンハンサーとしてのGブロックの抗腫瘍活性を評価することにある。
エヌティーエヌユー・テクノロジー・トランスファー・エーエス(NTNU Technology Transfer AS)(ノルウェー国トロンヘイム)から、白色吸湿性の非晶質粉末であるGブロック(ロット番号:PolyG230712−Dp10、95%G)を入手し、使用するまで室温で乾燥保存する。NTNUのGブロックをミリQ水に溶解して70mg/mLの濃度とし、原液として用いる。この溶液により、60μLの固定用量(fixed dose)で約25g/kg体重の投与量を送達する。70mg/mL溶液を、0.9%、150mMのNaCl溶液に希釈し、60μLの一定投与容量(fixed dose volume)で25mg/kgまたは0.5mg/kgの投与量を含む他の投与溶液を調製する。全ての投与量計算は、25gの動物を前提としている。NTNUのGブロック70mg/mL原液は、試験の最初に作製された後、それぞれの投与前に希釈に用いられ、滅菌濾過されて、各投与間には4℃で保存される。未使用の全ての投与混合物は、試験終了後、TD2において適正に処分される。
トラスツマブ(ハーセプチン)は、使用するまで室温で保存される。トラスツマブは、10mL/kgの容量で10mg/kg投与される。
ビヒクル対照に0.9%、150mMのNaCl溶液を60μLの一定投与容量で投与した。ビヒクル対照は室温で保存した。
SK−OV−3ヒト卵巣腫瘍異種移植細胞株は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC)(ヴァージニア州マナッサス)から入手される。培養物を、10%ウシ胎児血清を添加した培地で維持し、5%二酸化炭素雰囲気中に配置する。培養物は、十分な量の細胞が採取されるまで、組織培養フラスコ内に増殖させた。
ハーラン(Harlan)(ニューヨーク州ジャーマンタウン)から、雌無胸腺ヌードマウスが供給される。5〜8週齢のマウスを入手する。マウスは、特定病原体を含まない条件下で維持される。マウスには、実験動物用照射飼料であるTeklad Global Diet(登録商標)2920x(ハーラン(Harlan)、インディアナ州インディアナポリス)を与えて飼育し、オートクレーブ滅菌水(autoclaved water)を自由に飲めるようにする。
SK−OB−3腫瘍細胞(約5.0×106細胞/マウス)の懸濁液を含有する50%培地/50%マトリゲル(登録商標)(BDバイオサイエンス、マサチューセッツ州ベッドフォード)混合物0.1mLを、雌マウスの右脇腹に皮下接種する。下記表7に従い、処置は1日目に開始する。腫瘍重量および体重を週2回測定する。また、下記表7にしめすように投与を行う。
Student t−検定およびパーセントT/C計算(% T/C calculation)が行われる。成長曲線およびマウスの体重変化のグラフ(パーセント)を作成して、各療法の用量耐性(dose tolerance)を評価する。
腫瘍組織へのリンパ球の浸潤
死後のマウスから、実施例2で得られたような腫瘍組織のサンプルを摘出し、パラフィンに包埋し、HE染色を用いた光学顕微鏡検査のために調製した。
対照群およびGブロック処置群のそれぞれのマウスから採取された組織切片内のリンパ球を観察し、その違いを確認した(図13Aおよび図13B参照)。Gブロック処置を施されていない対照群のマウスからの腫瘍組織と比較して、Gブロック処置を施されたマウスからの腫瘍組織では、リンパ球浸潤の程度がより大きいことが判明した。浸潤しているリンパ球の集団を示す(赤い矢印)。マウスは無胸腺ヌードマウスであり、Tリンパ球(キラーT細胞)が欠如しているが、ナチュラルキラー細胞(NK細胞)を有している。
光退色後蛍光回復によって測定される、マトリゲル内のALEXA488で標識したIgGの移動性
解凍したマトリゲル(BDバイオサイエンス)から、濃度75%の細胞外マトリクスゲルを冷却して調製した。細胞外マトリクスゲルには、2μg/mLのALEXA488IgG(ヤギ抗ヒト、ライフテクノロジーズ(Life technologies))および5mL/mLのGブロック(DPn12、93%G)またはイオン強度を適合させた食塩水(対照)を含有させた。200μLのサンプルをピペットでカバーガラスチャンバーに移して密封した後、37℃で30分間加熱してゲル化を引き起こした。高強度レーザー光(波長488のアルゴンレーザー)を用いて、関心領域の蛍光標識されたIgGを退色させ、この領域における蛍光回復(すなわち、退色していない標識IgGが退色領域の外側から関心領域内に拡散することによって蛍光が回復すること)を監視した。
対照およびGブロックで処置されたマトリゲルに対する測定を20回行った場合に、完全な蛍光回復を達成するまでの時間(秒)を以下に示す(平均値±標準偏差)。図14に結果を示す。各群間の差は、Student t−検定(p=0.0005)により、統計的に有意であることが分かる。
Claims (28)
- 対象のがんの治療または予防において、抗がん剤として用いられるオリゴウロン酸塩であって、最大100個までのモノマー残基を含有し、前記モノマー残基の少なくとも70%はグルロネート残基である、オリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩は、2mer〜75mer、2mer〜70mer、2mer〜50mer、2mer〜35mer、2mer〜30mer、3mer〜35mer、3mer〜28mer、4mer〜25mer、6mer〜22mer、8mer〜20merまたは10mer〜15merである、請求項1に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩の数平均重合度(DPn)は、2〜100、好ましくは2〜75、2〜50、2〜35または2〜30である、請求項1または2に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩は、少なくとも75%、80%、85%または90%のG残基を有する、請求項1〜3のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩は、全身投与または腫瘍に直接投与される、請求項1〜4のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩は、静脈内投与される、請求項1〜5のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩は、陽イオン性高分子材料と錯体を形成せず、陽イオン性高分子材料に含有されず、および/または小胞もしくは粒子の表面に含有されることも、存在することもなく、および/または微小粒子と錯体を形成せず、微小粒子に含有されず、または微小粒子の形をとらない、請求項1〜6のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記オリゴウロン酸塩は水溶性である、請求項1〜7のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記がんは、1つ以上の固形腫瘍として提示される、請求項1〜8のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記がんは、改変された細胞外マトリクス(ECM)を伴う、請求項1〜9のいずれかに記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記ECMは、非がん性組織の対応するECMと比較して、厚くなる、および/または硬くなる、および/または密度が高くなる、請求項10に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記がんは、間質の関与または線維形成性腫瘍を示す、請求項10に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記がんは、乳がん、卵巣がんおよび膵がんから選択される、請求項1〜12に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記対象はヒトである、請求項1〜13に記載のオリゴウロン酸塩。
- がんを治療または予防するための治療製品の製造における、請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩の使用であって、
前記がんは、請求項1または9〜13のいずれかに規定されている、オリゴウロン酸塩の使用。 - がんを治療または予防するために抗がん剤とともに用いられる、請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩であって、
前記がんは、請求項1または9〜13のいずれかに規定されている、オリゴウロン酸塩。 - 前記抗がん剤は、分子量が2000Da未満、好ましくは1000Da未満の低分子である、請求項16に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記抗がん剤は化学療法薬である、請求項16または17に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記抗がん剤は免疫療法剤であり、好ましくは抗体、サイトカインおよびチェックポイント阻害剤から選ばれる、請求項16に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記抗がん剤と毒性化合物または放射性化合物とを接合または融合させている、請求項19に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記サイトカインは、インターロイキン−2およびインターフェロンαから選択される、請求項19に記載のオリゴウロン酸塩。
- 前記チェックポイント阻害剤は、PD−L1またはCTLA4を標的とする、請求項19に記載のオリゴウロン酸塩。
- 対象のがんを治療または予防する方法であって、
請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩を、単独で、または別の抗がん剤と組み合わせて患者に投与することを含み、
前記別の抗がん剤は、請求項17〜22のいずれかに規定されている、方法。 - がんの治療または予防において、抗がん剤の対象への送達を増強するのに用いられる、請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩であって、
前記抗がん剤は、請求項17〜22のいずれかに規定されており、
前記がんは、請求項1または9〜13のいずれかに規定されている、オリゴウロン酸塩。 - 抗がん剤をさらに含む治療製品の製造における、前記抗がん剤の送達を増強するための、請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩の使用であって、
前記抗がん剤は、請求項17〜22のいずれかに規定されており、
前記がんは、請求項1または9〜13のいずれかに規定されている、オリゴウロン酸塩の使用。 - 請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩と、
さらに請求項17〜22のいずれかに規定された抗がん剤とを含むキットであって、
請求項1または9〜13のいずれかに規定されたがんの治療または予防に用いるための、および/または抗がん剤を必要としている対象への送達を増強するためのキット。 - 請求項1〜8のいずれかに規定されたオリゴウロン酸塩と、
さらに請求項17〜22のいずれかに規定された抗がん剤とを含む、複合調整品としての製品であって、
請求項1または9〜13のいずれかに規定されたがんの治療または予防において、別々に、連続的にまたは同時に用いるための、および/または抗がん剤を必要としている対象への送達を増強するための製品。 - 抗がん剤の送達を増強する方法であって、
前記抗がん剤を必要としている対象に、前記抗がん剤とオリゴウロン酸塩とを同時投与することを含み、
前記オリゴウロン酸塩は、請求項1〜8のいずれかに規定されており、
前記抗がん剤は、請求項17〜22のいずれかに規定されている、方法。
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