JP2016210956A - 生体適合性材料、及び生体適合性コーティング剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】
ビニル系単量体から構成されるグラフト鎖を有し、表面占有率が0.1以上である、架橋されたグラフトポリマーを含む生体適合性材料
【選択図】図8
Description
下記式(1):
で定義される表面占有率(σ*)が0.1以上である、グラフトポリマーを含み、少なくとも一部のグラフトポリマー鎖間が架橋されてなる生体適合性材料。
下記式(1):
で定義される表面占有率(σ*)が0.1以上である、グラフトポリマーを含む主剤成分、及び
架橋剤を含む架橋成分
からなる生体適合性コーティング剤。
本発明では、表面占有率が0.1以上であるグラフトポリマーを用いる。
より求められる有効グラフト密度[鎖/nm2]を示す。グラフト鎖部分の単量体1個当たりの体積(v0[nm3])は、下記式(3):
により導き出される数値である。
により導き出される数値である。
濃厚ポリマーブラシは、表面占有率が0.1以上であれば、グラフトポリマーの製造方法として公知の方法により、製造することができる。グラフト密度及びグラフト鎖の重合度を比較的容易に調整できる観点より、主鎖を形成するポリマーに設けた複数の反応基を開始点にして、重合反応を行うことでグラフト鎖を形成する方法(グラフトフロム法)が好ましい。
本発明で規定される表面占有率(σ*)とは、下記式(1):
より求められる有効グラフト密度[鎖/nm2]を示す。グラフト鎖部分の単量体1個当たりの体積(v0[nm3])は、下記式(3):
により求められる。
により求められる。
として表すことができる(なお、n2個のPm1、n3個のPm2及びn4個のPm3は連続している必要はない)。ここで、グラフト鎖部分の重合度は、n1で示される。
本発明の生体適合性材料(特に生物及び/又は生体物質付着抑制用生体性適合材料)を得るために用いられるコーティング剤は、前記表面占有率が0.1以上である、グラフトポリマーを含む主剤成分、及び架橋剤を含む架橋成分からなる。
本発明のコーティング剤は、濃厚ポリマーブラシ同士が架橋されている。架橋は、末端にハロゲン原子が存在する場合、該ハロゲン原子同士を、架橋剤を介してカップリング反応により行うことができる。当該カップリング反応により、濃厚ポリマーブラシ同士が架橋することで濃厚ポリマーブラシのゲルを形成することができ、又、基板上に導入したハロゲン原子と濃厚ポリマーブラシが有するハロゲン原子とがカップリング反応を行うことで基板上に濃厚ポリマーブラシをコーティングすることができる。ハロゲン原子同士のカップリング反応の条件としては、例えば、Tetra.Letters, 2006, 47, 5565に記載されているようなテトラジエチルアミノエタンを用いて、一定時間反応させる方法を用いることができる。
濃厚ポリマーブラシが架橋基としてアジド基を有する場合、アジド基が基材と共有結合を形成して、基材上に濃厚ポリマーブラシをコーティングすることが可能である。
本発明の生体適合性材料は、前記のコーティング剤に含まれる主剤と架橋剤を、例えば加熱下で、反応させることによって製造することができる。生体適合性材料の具体例としては、前記のコーティング剤の人工関節へのコーティング;病気診断キット(イムノクロマトグラフィー等)のコーティング;人工補助心臓のコーティング;カテーテル、細胞培養用シャーレ、ソフトコンタクトレンズケース、注射器等のタンパク、細胞等による生物及び/又は生体物質付着を避けるべき材料へのコーティング等を行うことにより、得ることができる。また、例えば抗菌材料として適用することも可能である。
・DMF系GPC
カラム:Shodex社LF804 (300×80 mm; bead size = 6μm)、流速:0.8 ml/min(40℃)、溶出液:10mM LiCL ジメチルホルムアミド溶液、標準試料:PMMA。
・THF系GPC
カラム:Shodex社KF804L (300×80 mm; bead size = 7μm)、流速:0.8 ml/min(40℃)、溶出液:テトラヒドロフラン、標準試料:PMMA。
<主鎖ポリマー(PBIEM[1])の製造>
アルゴン雰囲気下、2−(2−ブロモイソブチリルオキシ)エチル メタクリレート(BIEM) 5.0g(17.9mmol)、ジチオ安息香酸 α−クミル 48.8mg(1.79×10−1mmol)及び2,2’−アゾビスイソブチロニトリル(AIBN) 5.88mg(3.58×10−2mmol)をトルエンに溶解させ、トルエン溶液(溶液中の単量体含有量が50重量%)を得た。得られたトルエン溶液を60℃のオイルバスで加熱しながら、21時間攪拌した。反応後、反応混合物の平均分子量及び分子量分布をDMF系GPCにより測定したところ、数平均分子量(Mn)は11000、分子量分布(PDI)は1.19であった。また、NMR測定により重合率を求めたところ、36.1%であった(重合度で36)。
ポリ(エチレングリコール)メチルエーテルメタクリレート(PEGMA) 8.55g(18mmol)、PBIEM[1] 100mg(Mn=11000、 臭素末端換算で0.36mmol)、4,4’−ジノニル−2,2’−ビピリジル(dNbipy) 294.2mg(0.72mmol)、臭化銅(I) 41mg(0.29mmol)及び臭化銅(II) 16.8mg(0.07mmol)をグローブボックス内でアニソールに溶解させ、アニソール溶液 17.1g(溶液中の単量体含有量が33重量%)を得た。得られたアニソール溶液を65℃のオイルバスで加熱しながら1時間又は1.5時間攪拌した。反応後、数平均分子量及び分子量分布をDMF系GPCにより測定し、NMR測定により重合率を求めた。結果は下記表1の通りであった。アルミナカラムを用いて反応混合物から銅錯体を除去し、得られた溶液をジエチルエーテル/ヘキサン=2/7の混合溶媒で再沈回収することで、ボトルブラシポリマー(BBP1及びBBP2)を得た。
3−(2−ブロモ−2−イソブチリルオキシ)プロピルトリエトキシシラン (BPE)及びアンモニア水(アンモニア濃度:28重量%)をエタノールに溶解し、エタノール溶液(BPE 1.0重量%かつアンモニア水6.0重量%(アンモニア換算で1.68重量%))を得た。得られたエタノール溶液にシリコン基板(1cm×1cm)を18時間浸漬した後、エタノールで基板を超音波洗浄し、基板を乾燥させることで、BPEを固定化したシリコン基板を得た。
<細胞接着試験>
CPB基板を24ウェルマルチプレートに並べ、70%エタノール水溶液で滅菌した(1ウェル=約2cm2)。滅菌後、サンプルを滅菌水、リン酸緩衝食塩水(PBS)で十分に洗浄した。次に、ヒト臍帯血管内皮細胞(HUVEC) 2万個/ウェルを播種した。24時間後、PBSでサンプルを3回洗浄し、接着細胞を4%パラホルムアルデヒドにより固定化した。細胞核は4’,6−ジアミジノ−2−フェニルインドール(DAPI)で青色に蛍光染色し、細胞骨格はファロイジンで赤色に蛍光染色し、蛍光顕微鏡により観察した。観察の結果、細胞付着による蛍光は観測されなかった。CPB基板1の蛍光顕微鏡による観察結果を図5に、CPB基板2の蛍光顕微鏡による観察結果を図6に示した。
<主鎖ポリマー(PBIEM[2])の製造>
アルゴン雰囲気下、BIEM 10.0g(35.8mmol)、ジチオ安息香酸 α−クミル 97.58mg(3.58×10−1mmol)及びAIBN 11.7mg(7.16×10−2mmol)をトルエンに溶解させ、トルエン溶液(溶液中の単量体含有量が50重量%)を得た。得られたトルエン溶液を60℃のオイルバスで加熱しながら、21時間攪拌した。反応後、反応混合物の平均分子量及び分子量分布をTHF系GPCにより測定したところ、数平均分子量(Mn)は21000、分子量分布(PDI)は1.12であった。また、NMR測定により重合率を求めたところ、78%であった(重合度で78)。
(開始効率及び側鎖の重合度算出)
PEGMA 1.24g(2.67mmol)、PBIEM[2] 21.8mg(Mn=21000、 臭素末端換算で7.81×10−2mmol)、2−ブロモイソ酪酸エチル(EBIB) 1.69mg(8.7×10−3mmol)、dNbipy 70mg(1.71×10−1mmol)、臭化銅(I) 10mg(6.97×10−2mmol)及び臭化銅(II) 3.74mg(1.67×10−2mmol)をグローブボックス内でアニソールに溶解させ、アニソール溶液 2.48g(溶液中の単量体含有量が33重量%)を得た。得られたアニソール溶液を65℃のオイルバスで加熱しながら1時間攪拌した。反応後、数平均分子量及び分子量分布をDMF系GPCにより測定し、NMR測定により重合率を求めた。結果は下記表2の通りであった。
PEGMA 10g(21.05mmol)、PBIEM[2] 0.1957g(Mn=21000、 臭素末端換算で0.7018mmol)、dNbipy 0.5736g(1.404mmol)、臭化銅(I) 0.1611g(1.123mmol)及び臭化銅(II) 0.0502g(0.2246mmol)をグローブボックス内でアニソールに溶解させ、アニソール溶液 20g(溶液中の単量体含有量が33重量%)を得た。得られたアニソール溶液を65℃のオイルバスで加熱しながら40分間攪拌した。反応後、数平均分子量及び分子量分布をDMF系GPCにより測定し、NMR測定により重合率を求めた。結果は下記表3の通りであった。
BPE及びアンモニア水(アンモニア濃度:28重量%)をエタノールに溶解し、エタノール溶液(BPE 1.0重量%かつアンモニア水1.0重量%(アンモニア換算で1.68重量%))を得た。得られたエタノール溶液にシリコン基板(1cm×1cm)を18時間浸漬した後、エタノールで基板を超音波洗浄し、基板を乾燥させることで、BPEを固定化したシリコン基板を得た。
<表面占有率が0.1未満であるボトルブラシポリマー(「準希薄ポリマーブラシ;SDPB」という)の製造>
<開始効率及び側鎖の重合度算出>
PEGMA 6.0g(12.6mmol)、PBIEM[2] 16.2mg(Mn=21000、 臭素末端換算で5.806×10−2mmol)、EBIB 1.03mg(8.7×10−3mmol)、dNbipy 43mg(1.053×10−1mmol)、臭化銅(I) 12.1mg(8.421×10−2mmol)及び臭化銅(II) 3.8mg(1.684×10−2mmol)をグローブボックス内でアニソールに溶解させ、アニソール溶液 5.0g(溶液中の単量体含有量が45.5重量%)を得た。得られたアニソール溶液を65℃のオイルバスで加熱しながら1〜3時間攪拌した。反応後、数平均分子量及び分子量分布をDMF系GPCにより測定し、NMR測定により重合率を求めた。結果は下記表6の通りであった。
PEGMA 18g(37.89 mmol)、PBIEM[2] 52.9mg(Mn=21000、 臭素末端換算で1.895×10−1mmol)、dNbipy 0.1549g(3.789×10−1mmol)、臭化銅(I) 43.5mg(3.032×10−1mmol)及び臭化銅(II) 13.5mg(6.063×10−2)をグローブボックス内でアニソールに溶解させ、アニソール溶液 15g(溶液中の単量体含有量が65.2重量%)を得た。得られたアニソール溶液を65℃のオイルバスで加熱しながら3時間攪拌した。反応後、数平均分子量及び分子量分布をDMF系GPCにより測定し、NMR測定により重合率を求めた。結果は下記表7の通りであった。
BPE及びアンモニア水(アンモニア濃度:28重量%)をエタノールに溶解し、エタノール溶液(BPE 1.0重量%かつアンモニア水1.0重量%(アンモニア換算で1.68重量%))を得た。得られたエタノール溶液にシリコン基板(1cm×1cm)を18時間浸漬した後、エタノールで基板を超音波洗浄し、基板を乾燥させることで、BPEを固定化したシリコン基板を得た。
上記製造例2及び3で得られた基板(基板2、4、5、6及び8)をファルコン24ウェルマルチプレート (1ウェル=約2cm2)に並べ、70%エタノール水溶液で滅菌した。滅菌後、サンプルは滅菌水、PBSで洗浄した。次にマウス繊維芽細胞(L929) 5万個/cm2を播種した。24時間後、PBSでサンプルを3回洗浄し、接着細胞を4%パラホルムアルデヒドで固定した。細胞核はDAPIで青色に蛍光染色し、細胞骨格はファロイジンで赤色に蛍光染色し、蛍光顕微鏡により観察した。蛍光顕微鏡による観察結果を図7に示す。なお、TCPS(和光純薬株式会社製; プラスチックシート、トルエン耐性)上に接着した細胞数は播種数とほぼ一致していたことを確認した。また、付着した細胞数をグラフにまとめ、図8に示す。
<ボトルブラシポリマーの表面占有率>
ボトルブラシポリマーBBP1〜BBP4に対して、下記式に基づき表面占有率(σ*)を求めた。σ*が0.1より大きい値のとき濃厚ポリマーブラシ(CPB)と定義される。
表面占有率:
グラフト効率は、主鎖が単一重合体の場合、開始効率に等しい。PEGMAでは、v0は0.73(nm3)あり、単量体の長さはビニル基の0.25nmである。
<架橋剤濃度と乾燥膜厚の評価>
ボトルブラシポリマー(BBP3)、TDAEをアニソールに溶解し、BPEを固定化したシリコン基板にスピンコートした(回転数4000rpm、30秒)。このとき、ボトルブラシポリマーの濃度は5wt%に固定し、ブラシ鎖末端の臭素に対してTDAE濃度を下記表10となるように変化させた。スピンコート後、基板は真空条件下、120℃で2時間置くことで、架橋処理を行った。架橋膜はクロロホルムに一晩浸漬して洗浄し、洗浄前後で膜厚がほとんど変化しないことを確認した(表10)。
上述の「架橋剤濃度と乾燥膜厚の評価」の条件で、BPE固定化シリコン基板に架橋膜を作製した。各膜の乾燥膜厚を表11に示す。得られた架橋膜はリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中、エリプソメーター測定によりその膨潤膜厚を評価した(表11)。図9にTDAE濃度に対する膨潤度(膨潤膜厚)をプロットしたグラフを示す。横軸は、ボトルブラシポリマーに対するTDAEのモル比を示し、縦軸は膨潤度を示す。また縦軸は乾燥膜厚で規格化している。表11及び図9の結果より、乾燥膜厚に対する膨潤度はTDAE濃度に依らず、およそ2.5倍であった。
前記「架橋剤濃度と乾燥膜厚の評価」で作製した架橋膜について、架橋膜表面に対する細胞接着特性を評価した。ボトルブラシ架橋膜をコートしたシリコン基板(1×1 cm2、各3枚)をファルコン24ウェルマルチプレート(1well=ca 2cm2)に並べ、70%エタノール水溶液で滅菌した。滅菌後、サンプルは滅菌水、PBSで洗浄した。次にマウス繊維芽細胞(L929)1万個/cm2を播種した。24時間後、PBSでサンプルを3回洗浄し、接着細胞を4%パラホルムアルデヒドで固定した。細胞核はDAPIで青色に、細胞骨格はファロイジンで赤色に蛍光染色し、蛍光顕微鏡により観察した。接着細胞数をプロットしたグラフを図10に示す。縦軸のL929細胞の接着数はTCPS上に接着した細胞数で規格化した。TDAE濃度によらず、細胞はほとんど接着しないことがわかった。
次に表10の架橋膜表面に対する抗菌性を評価した。ボトルブラシ架橋膜をコートしたシリコン基板(1x1 cm2, 各3枚)をファルコン24ウェルマルチプレート(1well=ca 2cm2)に並べ、70%エタノール水溶液で滅菌した。滅菌後、サンプルは滅菌水、PBSで洗浄した。次に濁度を1.0に調整した大腸菌を1ml播種した。37℃のインキュベーターに静置1時間後、PBSでサンプルを3回洗浄し、接着した大腸菌を4%パラホルムアルデヒドで固定した。凍結乾燥後、各表面のSEM観察を行った。図11に各表面のSEM画像を示す。TCPSの表面には大腸菌が著しく接着するのに対し、ボトルブラシ表面にはほとんど接着しないことがわかった。
<光反応性架橋剤の濃度と乾燥膜厚の評価>
ボトルブラシポリマー(BBP3)、光反応性架橋剤(PhAz-linker:(2,2’-ethan-1,2-diylbis(oxy))bis(ethane-2,1-diyl)bis(4-azidobenzoate))をエタノールに溶解し、アミノプロピルトリエトキシシラン(AMP)を固定化したシリコン基板にスピンコートした(回転数4000rpm、30秒)。このとき、ボトルポリマーブラシの濃度を3wt%に固定し、架橋剤濃度を表12に示すように変化させた。スピンコート後、紫外線を20秒照射し、架橋処理を行った。架橋膜はクロロホルムに一晩浸漬して洗浄し、洗浄前後で膜厚がほとんど変化しないことを確認した。
上述の条件で、AMP固定化シリコン基板に架橋膜を作成した。各膜の乾燥膜厚を表13に示す。得られた架橋膜はPBS中、エリプソメーター測定によりその膨潤膜厚を評価した(表13)。図12に架橋剤濃度に対する膨潤膜厚の図を示す。縦軸は乾燥膜厚で規格化している。架橋剤濃度1.0wt%以上では、PBSにほとんど膨潤しないことがわかった。架橋剤濃度1.0wt%以下においても、膨潤度は1.25程度とあまり膨潤しないことがわかった。これは、架橋剤がボトルブラシ同士だけでなく、グラフト鎖の隙間に入り、グラフト鎖間でも架橋反応するためだと考えられる。
次に表13のボトルブラシ架橋膜に対する細胞接着特性を評価した。架橋膜をコートしたシリコン基板(1x1 cm2, 各3枚)をファルコン24ウェルマルチプレート(1well=ca 2 cm2)に並べ、70%エタノール水溶液で滅菌した。滅菌後、サンプルは滅菌水、PBSで洗浄した。次にマウス繊維芽細胞(L929)1万個/cm2を播種した。24時間後、PBSでサンプルを3回洗浄し、接着細胞を4%パラホルムアルデヒトで固定した。細胞核はDAPIで青色に、細胞骨格はファロイジンで赤色に蛍光染色し、蛍光顕微鏡により接着細胞を観察した。接着細胞数を図13に示す。縦軸のL929細胞の接着数はTCPS上に接着した細胞数で規格化した。膨潤度が異なるにも関わらず、いずれのボトルブラシ表面にも細胞はほとんど接着しないことがわかった。
次に表13の架橋膜表面に対する抗菌性を評価した。ボトルブラシ架橋膜をコートしたシリコン基板(1x1 cm2, 各3枚)をファルコン24ウェルマルチプレート(1well=ca 2 cm2)に並べ、70%エタノール水溶液で滅菌した。滅菌後、サンプルは滅菌水、PBSで洗浄した。次に濁度を1.0に調整した大腸菌を1ml播種した。37℃のインキュベーターに静置1時間後、PBSでサンプルを3回洗浄し、接着した大腸菌を4%パラホルムアルデヒトで固定した。凍結乾燥後、各表面のSEM観察を行った(図13)。TCPSの表面には大腸菌が著しく接着するのに対し、ボトルブラシ表面にはほとんど接着しないことがわかった。
Claims (7)
- ビニル系単量体から構成されるグラフト鎖を有し、
下記式(1):
で定義される表面占有率(σ*)が0.1以上である、グラフトポリマーを含み、少なくとも一部のグラフトポリマー鎖間が架橋されてなる生体適合性材料。 - 前記表面占有率が0.1以上1.0以下である、請求項1に記載の生体適合性材料。
- 生物及び/又は生体物質付着抑制用に用いられる、請求項1又は2に記載の生体適合性材料。
- 前記グラフトポリマーの主鎖がビニル系ポリマーである、請求項1〜3のいずれかに記載の生体適合性材料。
- 前記グラフトポリマー鎖間がグラフト鎖の端部において架橋されており、その架橋密度が1未満である、請求項1〜4のいずれかに記載の生体適合性材料。
- 前記架橋密度が0.2〜0.7である、請求項5に記載の生体適合性材料。
- ビニル系単量体から構成されるグラフト鎖を有し、
下記式(1):
で定義される表面占有率(σ*)が0.1以上である、グラフトポリマーを含む主剤成分、及び
架橋剤を含む架橋成分
からなる生体適合性コーティング剤。
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