JP2014527084A - Hyr1由来組成物およびそれを使用する処置方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、公衆衛生局助成金R01 AI19990、R01 AI063382、R01 AI063503、R03 AI083251およびR21 AI082414のもとで政府支援を受けて行われた。合衆国政府は、本発明に一定の権利を有する。
本発明は一般に、被験体における感染性疾患を、検出、処置、および防止するための組成物および方法に関する。
医療に関連する血流感染のうちで3番目に一般的な原因であるCandida属種は、米国で毎年約60,000例の血行性播種性カンジダ症を引き起こし、結果として数十億ドルの医療費が費やされている。現行の抗真菌療法にも関わらず、死亡率は依然として容認できない程度に高い。致死性のカンジダ症の発症率が上昇し、処置の失敗率が高いために、より有効な予防的戦略および治療的戦略が必要とされている。
Candida属細胞の表面タンパク質であるHyr1の断片は、Candida属感染に対して被験体を免疫するのに有用であることが発見されている。また、Hyr1タンパク質が、Acinetobacter属感染に対抗することも同様に見出されている。
Candida albicansは、ヒトにおける一般的な病原体である。例えば、C.albicansは、通常は無害な片利共生生物であるが、膣カンジダ症および/または口腔咽頭カンジダ症などの表在性皮膚粘膜感染から、播種性カンジダ症における深部の器官病変までの範囲の多様な状態を引き起こしうる。Candida albicansは、疾患を引き起こす前に、消化管にコロニー形成し、場合によって、皮膚および粘膜にコロニー形成する。宿主の粘膜表面への接着が、この初期段階の鍵となる要件である。コロニー形成の後、C.albicansは、感染した血管内デバイスを介して、または化学療法またはストレス性潰瘍により損なわれた消化管粘膜を介する移入により血流に侵入する。次いで、Candida albicansは、血流を介して播種される。血管内皮に結合し、これを透過して、血管系から放出され、肝臓、脾臓、および腎臓など、深部器官に浸潤する。
本明細書で記載されるHYR1断片および他の組成物の同定は、例えば、カンジダ症だけでなく、また、Acinetobacter属感染の有効な処置およびこれらに対するワクチン接種を可能とする。
本発明は、例えば、HYR1またはHyr1p−Nに由来するポリペプチド、コンジュゲート、ワクチン、抗体、組成物、これらを用いるワクチン接種の方法、およびこれらを作製する方法であって、下記でさらに詳細に記載される方法を提供する。
本発明は、HYR1、例えば、配列番号3〜10のうちのいずれか1つのアミノ酸配列、または配列番号3〜10のうちのいずれか1つのアミノ酸配列に対して0、1、2、または3カ所の置換、欠失、または付加を有するそのバリアント配列を含む、例えば、Hyr1p(配列番号1)またはHyr1p−N(配列番号2)に由来するポリペプチド、例えば、単離ポリペプチドであって、配列番号2の20を超える連続アミノ酸を含まないポリペプチドを特徴とする。
本発明のポリペプチドは、別の部分または粒子にコンジュゲートすることができる。
場合によって、例えば、当技術分野で公知の二官能性薬剤または誘導体化剤、例えば、マレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル(システイン残基を介するコンジュゲーション)、N−ヒドロキシスクシンイミド(リシン残基を介する)、グルタルアルデヒド、またはコハク酸無水物を用いて、ポリペプチドを、免疫される種において免疫原性であるタンパク質、例えば、スカシガイヘモシアニン(KLH)、CRM197、破傷風トキソイド、ジフテリアトキソイド、血清アルブミン、ウシサイログロブリン、ダイズトリプシン阻害剤、またはポリカチオン(ポリ−L−リシンまたはポリ−L−アルギニン)にコンジュゲートするのが有用でありうる。
場合によって、ポリペプチドは、粒子、例えば、ファージ、酵母、ウイルス、ウィロソーム、または組換えウイルス様粒子にコンジュゲートするか、またはこれらの粒子上に提示する。
本発明は、本明細書で記載されるポリペプチドまたはコンジュゲートに結合するモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体を特徴とする。
モノクローナル抗体は、例えば、Kohlerら、Nature、256巻:495頁、1975年により最初に記載されたハイブリドーマ法を用いて作製することもでき、組換えDNA法(例えば、米国特許第4,816,567号を参照されたい)により作製することもできる。ハイブリドーマ法では、マウス、またはハムスターもしくはマカクザルなど、他の適切な宿主動物を、例えば、本明細書で記載されるポリペプチドまたはコンジュゲートを用いて免疫して、免疫に用いられるポリペプチドまたはコンジュゲートに特異的に結合する抗体を産生するかまたは抗体を産生することが可能なリンパ球を誘発する。代替的に、リンパ球は、in vitroにおいて免疫することもできる。次いで、ポリエチレングリコールなどの適切な融合剤を用いて、リンパ球を骨髄腫細胞と融合させて、ハイブリドーマ細胞を形成する(Goding、Monoclonal Antibodies: Principles and Practice、59〜103頁、Academic Press、1986年)。
ポリクローナル抗体は、関与的な抗原およびアジュバントの複数回の注射、例えば、皮下注射または腹腔内注射により、動物においてもたらされることが典型的である。場合によって、例えば、当技術分野で公知の二官能性薬剤または誘導体化剤、例えば、マレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル(システイン残基を介するコンジュゲーション)、N−ヒドロキシスクシンイミド(リシン残基を介する)、グルタルアルデヒド、またはコハク酸無水物を用いて、ポリペプチドを、免疫される種において免疫原性であるタンパク質、例えば、スカシガイヘモシアニン(KLH)、CRM197、破傷風トキソイド、ジフテリアトキソイド、血清アルブミン、ウシサイログロブリン、ダイズトリプシン阻害剤、またはポリカチオン(ポリ−L−リシンまたはポリ−L−アルギニン)にコンジュゲートするのが有用でありうる。
本明細書で記載されるワクチン調合および抗体を含有する医薬組成物(まとめて「組成物」)は、標準的な医薬調合化学および医薬調合法であって、当業者に容易に利用可能な医薬調合化学および医薬調合法を用いて調製することができる。例えば、本明細書で記載されるポリペプチド、コンジュゲート、または抗体は、1または複数の薬学的に許容される賦形剤または媒体と組み合わせることができる。賦形剤または媒体中には、保湿剤または乳化剤、pH緩衝物質などの補助物質を存在させることができる。これらの賦形剤、媒体、および補助物質は一般に、組成物を施された個体において免疫反応を誘導しない医薬剤であり、過度な毒性を伴わずに投与することができる。薬学的に許容される賦形剤には、水、生理食塩液、ポリエチレングリコール、ヒアルロン酸、グリセロール、およびエタノールなどの液体が含まれるがこれらに限定されない。薬学的に許容される賦形剤はまた、薬学的に許容される塩、例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、リン酸塩、硫酸塩などの鉱酸塩;および酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香酸塩などの有機酸塩も含むことができる。薬学的に許容される賦形剤、媒体、および補助物質についての完全な考察については、Remington’s Pharmaceutical Sciences(Mack Pub. Co.、N.J.、1991年)において入手可能である。
本発明は、哺乳動物に、カンジダ症に対してワクチン接種する方法を特徴とし、動物に本明細書で記載されるワクチンを投与し、これにより、哺乳動物に、カンジダ症に対してワクチン接種するステップを含む。加えて、本発明は、哺乳動物を、カンジダ症に対して受動免疫する方法も特徴とし、哺乳動物に、有効量の、本明細書で記載される医薬組成物を投与し、これにより、哺乳動物を、カンジダ症に対して受動免疫するステップを含む。カンジダ症には、例えば、播種性カンジダ症、例えば、血行性播種性カンジダ症、または粘膜性カンジダ症が含まれうる。場合によって、カンジダ症は、例えば、Candida albicans、Candida glabrata、Candida krusei、Candida parapsilosis、またはCandida tropicalisにより引き起こされる。他のCandida属種には、Candida lusitaniaeおよびCandida stellatoideaが含まれる。
本明細書で記載されるワクチンまたは抗体を含有する医薬組成物の適切な用量は、調製法、投与法、患者の年齢、体重、および性別、症状の重症度、投与回数、投与経路、排出速度、および応答性などの因子に応じて変化しうる。医療技術分野の当業者は、処置に有効な投与用量を容易に決定および診断するであろう。
本発明はまた、本発明の核酸を含有するベクターも提供する。当技術分野では、適切な発現ベクターが周知であり、核酸の発現を調節することが可能なプロモーター領域またはエンハンサー領域などの調節配列または調節エレメントに作動的に連結された核酸を発現させることが可能なベクターが含まれる。適切な発現ベクターには、真核細胞内および/または原核細胞内で複製可能なベクター、ならびにエピソーム性を維持するかまたは宿主細胞ゲノムに組み込まれるベクターが含まれる。
rHyr1−Nによる能動免疫および受動免疫は、血行性播種性カンジダ症に対して防御する
HYR1は、12のメンバーを含む、C.albicansのIFF遺伝子ファミリーに属する。HYR1は、菌糸形成時に発現する細胞表面グリコシルホスファチジルイノシトール(GPI)アンカータンパク質をコードする。Hyr1pは、in vitroにおける食細胞による殺滅に対するC.albicansの抵抗性を媒介し、食細胞に富む器官(例えば、肝臓および脾臓)における真菌負荷の上昇に寄与することが既に示されている。天然のHYR1は、転写因子であるBcr1pにより正に調節される。HYR1の自律的発現は、in vitroにおいて、C.albicansのbcr1ヌル変異体の食細胞介在性殺滅に対する感受性過剰を逆転させることが見出された。さらに、C.glabrataにおけるHYR1の異種発現は、C.glabrataの好中球による殺滅に対する抵抗性を高めた。かつての研究はまた、Hyr1pの組換えN末端(rHyr1p−N)に基づくワクチンが、アジュバントとしてのフロイントのアジュバントまたはアラムと混合されると、C.albicansで静脈内感作された免疫正常マウスの生存を顕著に改善することも示した。
Candida属株および成長条件
C.albicans 15663、C.glabrata 31028、C.parapsilosis 22019、およびC.tropicalis 4243は、Harbor−UCLA Medical Centerから回収された臨床血流単離株である。C.krusei 91−1159は、Michael Rinaldi、San Antonio、TXにより恵与された。C.albicans株であるCAAH−31およびTHE31は、我々のかつての研究で記載される通りに操作し、ドキシサイクリンを用いて、HYR1の発現を調節した[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]。全ての被験株は、YPD(2%のBacto Peptone、1%の酵母抽出物、2%のデキストロース)中で日常的に成長させた。細胞密度は、血球計でカウントすることにより決定した。
既に記載した[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]通りに、6×HisでタグづけされたrHyr1p−NをE.coli内で作製し、Ni−アガロースアフィニティーカラムにより精製した。ProteoSpin Endotoxin Removalキット(Norgen Bioteck Corporation、Ontario、Canada)を用いて、rHyr1p−Nから内毒素を除去し、製造元の指示書に従い、Limulus Amebocyte Lysate endochrome(Charles River Laboratories、Wilmington、MA)により内毒素レベルを決定した。この手順を用いて、内毒素を、ワクチンの投与1回当たり<0.1EUに軽減した。
市販用に合成されているrHyr1p−Nに由来する8つのペプチド(表1)を、抗Hyr1p抗体を発生させるのに用いた。HPLCおよび質量分析(GenScript、Piscataway、NJ)により決定されたペプチドは、>85%純粋であった。ウサギ抗血清をもたらす前に、標準的な免疫プロトコール(GenScript、Piscataway、NJ)を個別に用いて、これらのペプチドを、スカシガイヘモシアニン(KLH)にコンジュゲートした。受動免疫研究における投与するステップの前に、プールされた血清に由来する全IgGを、製造元の指示書に従い、Pierce Protein A plus Agarose(Thermo Scientific、Rockford、IL)を用いてアフィニティー精製した。
既に記載した通りに、プールされたr−Hyr1p−Nの8つのペプチドに対してもたらされたウサギ抗Hyr1p IgGを用いて、間接的免疫蛍光法を実施した[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]。略述すると、C.albicansの出芽胞子(1×107個)を、RPMI 1640中、37℃で90分間にわたりあらかじめ発芽させ、4ウェルのチャンバースライド(Nalge Nunc International)に移した。4℃で30分間にわたるインキュベーション後、1.5%のマウス血清300μlで細胞をブロッキングし、次いで、1)プールされた抗Hyr1 IgG、2)プールされた抗Hyr1p IgGであって、C.albicansの菌糸に取り込ませた抗Hyr1p IgG(プールされたIgGを、C.albicansの菌糸1×107本と共に、各回氷上で30分間ずつ4回にわたり繰り返しインキュベートすることにより)、または3)対照のウサギIgGの1:500希釈液で染色した。細胞は、Zeiss Axioskop蛍光顕微鏡で造影する前に、イソチオシアン酸フルオレセイン(FITC)で標識されたヤギ抗ウサギIgGにより、1:100の希釈率で対染色した。
全ての能動ワクチン接種は、既に記載した通り[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]に行った。略述すると、0日目に、若齢(10〜12週齢)のBalb/Cマウスに、リン酸緩衝生理食塩液(PBS)中で、アジュバントとしてのアラム(2%のAlハイドロゲル;Brenntag Biosector、Frederikssund、Denmark)と混合した30μgのrHyr1p−Nを、皮下ワクチン接種し、21日目に同じ投与を追加接種した、次いで、35日目に、尾静脈を介して感染させた[Ibrahimら、Infect. Immun.、73巻:999〜1005頁(2005年)]。対照マウスには、アラム単独をワクチン接種した。
rHyr1p−Nワクチンが、免疫反応を誘導したかどうかを調べるために、既に記載した通りに、ワクチン接種されたマウスおよび対照マウスから回収された血清試料の抗体力価を、96ウェルプレートによるELISAにより決定した[Ibrahimら、Infect. Immun.、73巻:999〜1005頁(2005年)]。ウェルを、ウェル1つ当たり、PBS中に5μg/mlのrHyr1p−N 100μlずつでコーティングした。マウス血清を、トリス緩衝生理食塩液(TBS;3%のウシ血清アルブミンを含有する0.01MのトリスHCl[pH7.4]、0.15MのNaCl)によるブロッキングステップの後、室温で1時間にわたりインキュベートした。ウェルを、0.05%のTween 20を含有するTBSで3回にわたり洗浄した後、TBSでさらに3回にわたり洗浄した。西洋ワサビペルオキシダーゼ(Sigma)と共にコンジュゲートされたヤギ抗マウス二次抗体を、1:5000の最終希釈率で添加し、プレートを、室温で1時間にわたりさらにインキュベートした。ウェルをTBSで洗浄し、0.1Mのクエン酸緩衝液(pH5.0)、50mgのo−フェニレンジアミン(Sigma)、および30%のH2O2 10μlを含有する基質と共にインキュベートした。30分間にわたり発色させ、その後、10%のH2SO4を添加することにより、反応を終了させ、490nmにおける光学濃度(OD)を、マイクロ滴定プレートリーダーにより決定した。陰性対照のウェルには、希釈剤だけを施し、被験ウェルからバックグラウンドの吸収を減じて、最終のODリーディングを得た。ELISA力価は、陽性ODリーディング(すなわち、陰性対照試料の平均ODに標準偏差の2倍を加えた値を超える)をもたらした最後の血清希釈率の逆数として測定した。
C.albicansの食細胞介在性殺滅における、抗Hyr1p抗体を媒介する防御機構について研究するために、好中球様表現型に分化させたHL−60細胞を用いた[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]。以前に記載した通りに、抗Hyr1p IgGまたはF(ab’)2断片の存在下で殺滅アッセイを行った[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]。略述すると、HL−60細胞を、5%のCO2を伴う37℃で3日間にわたり、2.5μMのレチノイン酸および1.3%のDMSOにより誘導した。免疫抗Hyr1ペプチド(表1)血清をプールし、プロテインAアガロース(Thermo Scientific)を用いて全IgGを単離した。ペプチドによる免疫前に同じウサギから回収された血清が対照血清として用いられた。免疫IgGまたは対照IgGに由来するF(ab’)2断片を、製造元の指示書に従い、Pierce F(ab’)2 Preparation Kitで精製した。SDS−PAGE解析は、Fc断片のうちの>95%が、このキットにより消化されることを示した(データは示さない)。次に、Hyr1pを過剰発現させるかまたは抑制するC.albicans細胞[Luoら、J. Infect. Dis.、201巻:1718〜1728頁(2010年)]を、50μg/mlのワクチン接種用のF(ab’)2断片、または対照のF(ab’)2断片と共に、氷上で45分間にわたりインキュベートした。YPDプレート上における超音波処理および定量的培養の前に、F(ab’)2断片と共に共培養されたC.albicansを、HL−60に由来する好中球と共に、5%のCO2を伴う37℃で1時間にわたりインキュベートした。殺滅%は、HL−60に由来する好中球を伴う共培養後におけるCFUの数を、好中球様細胞を伴わずに培地と共にインキュベートされたC.albicansに由来するCFUの数で除することにより計算した。
ノンパラメトリックのログランク検定を用いて、マウスの生存期間の差違を決定した。好中球殺滅アッセイ、抗体の力価、および組織の真菌負荷を、対応のない比較について、マン−ホイットニーのU検定で比較した。スピアマンのランクサム検定で相関を計算した。<0.05のP値を有意と考えた。
rHyr1p−Nワクチンにより、C.albicansで静脈内感作された免疫正常マウスにおける生存が改善し、真菌負荷が減少した
免疫不全患者のうちのかなりの割合が、多様なワクチンに応答することが公知である[Dockrellら、Vaccine、17巻:2779〜2785頁(1999年);Chokephaibulkitら、Vaccine、22:2018〜2022頁(2004年);dos Santosら、AIDS Res.Hum. Retroviruses、20巻:493〜496頁(2004年);Kingら、Pediatrc. Infect. Dis.、15巻:192〜196頁(1996年)]。我々は、好中球減少性マウスを、播種性カンジダ症から防御するための、rHyr1p−Nワクチンの潜在的な使用法を規定しようと試みた。12日間にわたる30mgのrHyr1p−Nによる追加接種の後、免疫されたマウスから採血した。ワクチン接種は、抗rHyr1p−N抗体力価の増大の検出により決定されるマウスの免疫反応を著明に増大させた(図3A)。採血の1日後、マウスを、好中球減少性とした。ワクチン接種は、有意な生存の改善を結果としてもたらした(対照と対比されるログランク検定によるP=0.007)(図3B)。
患者によっては、能動ワクチン戦略に応答しない可能性があるので、我々は、Hyr1pを標的とする受動免疫療法を用いる可能性を評価した。我々は、ウサギに、rHyr1p−N領域内に位置する、8つの親水性で抗原性が高い14マーのペプチドをワクチン接種することにより、ポリクローナル抗体を発生させた(表1)。これらの8つの親水性のペプチドを標的とする精製IgGをプールし、致死量のC.albicansを感染させたナイーブマウスを処置するのに用いた。1または3mgの抗Hyr1p IgGを施されたマウスは、販売元による非特異的な対照IgGを施されたマウスと比較したところ、感染から実質的に防御された(しかし、0.3mgで投与したときは防御されなかった)(図4A、B、およびC)。
HYR1タンパク質断片は、Acinetobacter baumanniiによる感染を防止する
Candida albicansとは、酵母細胞および糸状細胞のいずれとしても成長する二倍体の真菌である。C.albicansは、米国内で1年間に約60,000例の播種性カンジダ症を引き起こす。C.albicansのHYR1タンパク質は、真菌の感染時において、真菌細胞に食細胞に対する抵抗性を付与する細胞表面タンパク質である。組換えHYR1タンパク質によるワクチン接種は、マウスを、Candidia属感染に対して防御することが示されている。さらに、抗HYR1タンパク質抗体による受動免疫も、血行性播種性カンジダ症に対して防御する。
抗HYR1抗体は、Acinetobacter baumanniiが発現させる特異的タンパク質に結合する
Acinetobacter baumanniiに由来する細胞壁抽出物を、二次元ゲル上で泳動させ、CLKNAVTYDGPVPNN(配列番号15)に対してもたらされたウサギIgGを用いるウェスタンブロットによりアッセイした。ブロットを、対照としての免疫前血清と比較した。抗HYR1 IgGは、細胞壁抽出物に由来する固有のバンドを認識した(図11)。選択されたスポットを抽出し、配列決定した。配列決定解析は、抗HYR1抗体が、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1(GI番号|126642014|GenBank参照番号|YP_001084998.1|)(配列番号19)、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2(GI番号|126640296|GenBank参照番号|YP_001083280.1|)(配列番号20)、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質(GI番号|126641700|GenBank参照番号|YP_001084684.1|(配列番号21);GI番号|126640547|GenBank参照番号|YP_001083531.1|(配列番号22);GI番号|126643331|GenBank参照番号|YP_001086315.1|を含む)(配列番号23)、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質(GI番号|126642981|GenBank参照番号|YP_001085965.1|)(配列番号24)、Acinetobacter baumanniiの伸長因子G(GI番号|126640918|GenBank参照番号|YP_001083902.1|)(配列番号25)、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体(GI番号|126641591|GenBank参照番号|YP_001084575.1|)(配列番号26)、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通(GI番号|126640689|GenBank参照番号|YP_001083673.1|)(配列番号27)、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)(GI番号|126642873|GenBank参照番号|YP_001085857.1|)(配列番号28)、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質(GI番号|126641797|GenBank参照番号|YP_001084781.1|)(配列番号29)、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質(GI番号|126643339|GenBank参照番号|YP_001086323.1|)(配列番号30)、およびAcinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZ(GI番号|126643338|GenBank参照番号|YP_001086322.1|)(配列番号31)を含めた複数のタンパク質と交差反応することを示した。
上記の明細書で言及されたGenBank番号およびGI番号の公開、特許、および特許出願を含めた全ての刊行物は、参照により本明細書に組み込まれる。当業者には、本発明の範囲および精神を逸脱しない限りにおける、本発明の記載される方法の多様な改変および変更が明らかであろう。本発明を、特定の実施形態との関連において記載してきたが、特許請求される本発明を、このような特定の実施形態に不必要に限定すべきではないことを理解されたい。実際に、当業者に明らかな本発明を実行するための記載された方式に対する多様な改変が、本発明の範囲内にあることを意図する。
Claims (63)
- 哺乳動物におけるAcinetobacter属感染を処置または防止する方法における使用のための、単離Candida属Hyr1タンパク質(配列番号1)またはその免疫原性断片を含むワクチン。
- 前記Candida属Hyr1タンパク質またはその断片が、Candida albicans、Candida krusei、Candida tropicalis、Candida glabrata、またはCandida parapsilosisに由来する、請求項1に記載の使用のためのワクチン。
- 前記感染が、Acinetobacter baumanniiから生じる、請求項1または2に記載の使用のためのワクチン。
- 前記免疫原性断片が、前記Candida属Hyr1タンパク質のN末端領域断片である、前記請求項のいずれかに記載の使用のためのワクチン。
- 前記免疫原性断片が、配列番号2に示されるアミノ酸配列または表1もしくは2に示されるHyr1p断片を含む、前記請求項のいずれかに記載の使用のためのワクチン。
- 前記免疫原性断片が、表1もしくは2に示されるHyr1p断片またはそれらの免疫原性断片のうちの1または複数である、前記請求項のいずれかに記載の使用のためのワクチン。
- 皮下投与されるか、追加投与として投与されるか、または免疫刺激性アジュバント(アラムなど)を含む、前記請求項のいずれかに記載の使用のためのワクチン。
- 前記Hyr1p、またはその免疫原性断片が、組換えにより作製される(Saccharomyces cerevisiaeなどにおいて)か、または化学合成される、前記請求項のいずれかに記載の使用のためのワクチン。
- 配列番号3〜10のうちのいずれか1つのアミノ酸配列、または配列番号3〜10のうちのいずれか1つのアミノ酸配列に対して最大で3カ所の置換、欠失、または付加を有するそのバリアント配列を含む単離ポリペプチドであって、配列番号2の20を超える連続アミノ酸を含まない単離ポリペプチド。
- 配列番号3〜10のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項9に記載のポリペプチド。
- 前記ポリペプチドのアミノ酸配列が、14〜20の間のアミノ酸からなる、請求項9または10に記載のポリペプチド。
- 前記ポリペプチドのN末端のアミノ酸残基またはC末端のアミノ酸残基がシステインであり、前記ポリペプチドのアミノ酸配列が、配列番号11〜18のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含むか、または前記ポリペプチドのアミノ酸配列が、配列番号11〜18のうちのいずれか1つのアミノ酸配列からなる、請求項9から12のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- 担体にコンジュゲートされた、請求項9から12のいずれか一項に記載のポリペプチドを含む単離コンジュゲート。
- 前記担体が、スカシガイヘモシアニン(KLH)、CRM197、または破傷風トキソイドである、請求項14に記載のコンジュゲート。
- 前記担体が、ファージ、酵母、ウイルス、ウィロソーム、または組換えウイルス様粒子であるか、または前記コンジュゲートが、組換え融合タンパク質である、請求項14に記載のコンジュゲート。
- 免疫原性量の、請求項9から12のいずれか一項に記載のポリペプチドまたは請求項13から15のいずれか一項に記載のコンジュゲートと、薬学的に許容される賦形剤とを含むワクチン。
- 請求項9から12のいずれか一項に記載の異なるポリペプチドの混合物または請求項13から15のいずれか一項に記載のコンジュゲートを含む、請求項16に記載のワクチン。
- 前記ポリペプチドもしくはコンジュゲートが、合成により作製されるか、または前記ポリペプチドもしくはコンジュゲートが、組換えにより作製される、請求項16から17のいずれか一項に記載のワクチン。
- カンジダ症に対する哺乳動物(例えば、ヒト)のワクチン接種における使用のためであるか、またはAcinetobacter属に対する哺乳動物(例えば、ヒト)へのワクチン接種における使用のための、請求項16から18のいずれか一項に記載のワクチン。
- 筋内投与、皮下投与、または皮内投与により投与されるものである、請求項19に記載のワクチン。
- カンジダ症に対して哺乳動物にワクチン接種する方法であって、該哺乳動物に、請求項16から20のいずれか一項に記載のワクチンを投与し、これにより、カンジダ症に対して該哺乳動物(例えば、ヒト)をワクチン接種するステップを含む方法。
- Acinetobacter属に対して哺乳動物をワクチン接種する方法であって、該哺乳動物に、請求項16から20のいずれか一項に記載のワクチンを投与し、これにより、Acinetobacter属感染に対して該哺乳動物(例えば、ヒト)にワクチン接種するステップを含む方法。
- キメラワクチンを作製する方法であって、
(a)ファージ、酵母、またはウイルスを用意するステップと、
(b)該ファージ、酵母、またはウイルスに、請求項9から12または13から15のいずれか一項に記載のポリペプチドをコードする核酸分子を挿入するステップと、
(c)該ポリペプチドを、該ファージ、酵母、またはウイルスにおいて発現させるステップと、
(d)該発現させたポリペプチドを含む、ステップ(c)の該ファージ、酵母、またはウイルスを単離するステップと、
(e)薬学的に許容される賦形剤を、ステップ(d)の該単離されたファージ、酵母、またはウイルスに添加するステップと
を含む方法。 - ステップ(c)に続いて、前記ポリペプチドが、前記ファージ、酵母、またはウイルスの表面において提示される、請求項23に記載の方法。
- 請求項9から12のいずれか一項に記載のポリペプチドまたは請求項13から15のいずれか一項に記載のコンジュゲートに結合する、単離モノクローナル抗体。
- 請求項25に記載の抗体を含む診断用組成物。
- 請求項25に記載の抗体を含む医薬組成物。
- 請求項9から12のいずれか一項に記載のポリペプチドもしくは請求項13から15のいずれか一項に記載のコンジュゲートに結合するポリクローナル抗体、または請求項9から12のいずれか一項に記載の異なるポリペプチドもしくは請求項13から15のいずれか一項に記載のコンジュゲートの混合物に結合するポリクローナル抗体を含む医薬組成物。
- カンジダ症に対する哺乳動物の受動免疫における使用のための、請求項27または28に記載の医薬組成物。
- Acinetobacter属に対する哺乳動物の受動免疫における使用のための、請求項27または28に記載の医薬組成物。
- カンジダ症に対して哺乳動物を受動免疫する方法であって、該哺乳動物に、有効量の、請求項27または28のいずれか一項に記載の医薬組成物を投与し、これにより、該カンジダ症に対して該哺乳動物を受動免疫するステップを含む方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項31に記載の方法。
- 前記医薬組成物が、筋内投与、皮下投与、または皮内投与により投与される、請求項31または32に記載の方法。
- Acinetobacter属に対して哺乳動物を受動免疫する方法であって、該哺乳動物に、有効量の、請求項27または28のいずれか一項に記載の医薬組成物を投与し、これにより、該Acinetobacter属に対して該哺乳動物を受動免疫するステップを含む方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項34に記載の方法。
- 前記医薬組成物が、筋内投与、皮下投与、または皮内投与により投与される、請求項34または35に記載の方法。
- CGPSAPESESDLNTP(配列番号11)、CGNRDHFRFEYYPDT(配列番号12)、CGYDSKLFRIVNSRG(配列番号13)、CKIKGTGCVTADEDT(配列番号14)、CLKNAVTYDGPVPNN(配列番号15)、NSKSSTSFSNFDIGC(配列番号16)、CEPTHNFYLKDSKSS(配列番号17)、およびTSRIDRGGIQGFHGC(配列番号18)から選択されるアミノ酸配列を含むHYR1ポリペプチドをコードする単離核酸であって、前記ポリペプチドが、930未満の長さのアミノ酸残基を含む単離核酸。
- 前記アミノ酸配列が、配列番号11〜18のうちのいずれか1つに示されるアミノ酸配列からなる、請求項37に記載の単離核酸。
- 前記ポリペプチドが、900未満、800未満、700未満、600未満、500未満、400未満、300未満、200未満、100未満、90未満、80未満、70未満、60未満、50未満、40未満、30未満、または20未満の長さのアミノ酸残基を含む、請求項37に記載の単離核酸。
- 請求項37に記載の核酸を含有するベクター。
- 請求項37に記載の核酸を含有する組換え細胞。
- 試料中のAcinetobacter属の存在を検出するためのキットであって、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質、Acinetobacter baumanniiの伸長因子G、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質、またはAcinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZをコードする15〜300の間の連続ヌクレオチドを含む少なくとも1つのオリゴヌクレオチドを含むキット。
- CGPSAPESESDLNTP(配列番号11)、CGNRDHFRFEYYPDT(配列番号12)、CGYDSKLFRIVNSRG(配列番号13)、CKIKGTGCVTADEDT(配列番号14)、CLKNAVTYDGPVPNN(配列番号15)、NSKSSTSFSNFDIGC(配列番号16)、CEPTHNFYLKDSKSS(配列番号17)、およびTSRIDRGGIQGFHGC(配列番号18)から選択されるアミノ酸配列を含む単離HYR1ポリペプチドであって、930未満の長さのアミノ酸残基を含む単離HYR1ポリペプチド。
- 前記ポリペプチド断片が、900未満、800未満、700未満、600未満、500未満、400未満、300未満、200未満、100未満、90未満、80未満、70未満、60未満、50未満、40未満、30未満、または20未満の長さのアミノ酸残基を含む、請求項43に記載の単離HYR1ポリペプチド。
- 抗HYR1抗体によって結合されうる、請求項43に記載の単離HYR1ポリペプチド。
- 免疫原性である、請求項43に記載の単離HYR1ポリペプチド。
- 前記免疫原性ポリペプチドが、被験体における抗HYR1抗体の産生を誘発することができる、請求項46に記載の単離HYR1ポリペプチド。
- 担体タンパク質、アフィニティータグ、またはリンカー配列に融合させたポリペプチドを含む融合タンパク質であって、該ポリペプチドが、請求項43から47のいずれか一項に記載のHYR1ポリペプチドを含む融合タンパク質。
- 請求項43から47のいずれか一項に記載のHYR1ポリペプチド、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質、Acinetobacter baumanniiの伸長因子G、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質、またはAcinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZに対する特異的反応性を有する、単離抗Acinetobacter属タンパク質抗体。
- モノクローナル抗体である、請求項49に記載の抗体。
- ポリクローナル抗体である、請求項49に記載の抗体。
- 請求項50に記載のモノクローナル抗体を産生する細胞系。
- 試料中のAcinetobacter属の存在を検出するためのキットであって、請求項43から47に記載の単離抗Acinetobacter属タンパク質抗体を含むキット。
- 試料中のAcinetobacter属の核酸分子を検出する方法であって、該試料を、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質、Acinetobacter baumanniiの伸長因子G、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質、またはAcinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZの一部分をコードする15〜300の間の連続ヌクレオチドを含む2つ以上のオリゴヌクレオチドと接触させるステップと、核酸分子を増幅するステップと、該増幅を検出するステップとを含む方法。
- 前記増幅を、ポリメラーゼ連鎖反応を用いて実施する、請求項54に記載の方法。
- 試料中のAcinetobacter属の存在を検出するための方法であって、試料を、請求項49に記載の抗Acinetobacter属タンパク質抗体と接触させるステップと、該抗体の該試料への特異的結合の存在を検出し、これにより、該試料中のAcinetobacter属の存在を検出するステップとを含む方法。
- 薬学的に許容される担体と、請求項49から51のいずれか一項に記載の抗Acinetobacter属タンパク質抗体またはHYR1タンパク質(配列番号9)もしくはその断片に対する特異的反応性を有する抗HYR1タンパク質抗体とを含む医薬組成物。
- Acinetobacter属感染に対して被験体を免疫するためのワクチン組成物であって、薬学的に許容される担体と、免疫原性量の、請求項43から47のいずれか一項に記載のHYR1ポリペプチド、請求項48に記載の融合タンパク質、HYR1タンパク質(配列番号9)またはその断片、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1またはその断片、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2またはその断片、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質またはその断片、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質またはその断片、Acinetobacter baumanniiの伸長因子Gまたはその断片、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体またはその断片、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通またはその断片、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)またはその断片、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質またはその断片、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質またはその断片、またはAcinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZまたはその断片とを含むワクチン組成物。
- アジュバントをさらに含む、請求項58に記載のワクチン組成物。
- Acinetobacter属感染を処置または防止を必要とする被験体におけるAcinetobacter属感染を処置または防止する方法であって、治療有効量の、請求項28に記載の医薬組成物または請求項57に記載のワクチン組成物を投与するステップを含む方法。
- 抗生物質の共投与をさらに含む、請求項60に記載の方法。
- 被験体におけるAcinetobacter属感染を診断する方法であって、
(a)該被験体に由来する被験試料を用意するステップと、
(b)該試料を、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質、Acinetobacter baumanniiの伸長因子G、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZをコードする単離核酸、または請求項41に記載の前記HYR1ポリペプチドに結合しうる薬剤と、適切な条件下で接触させるステップであって、前記条件により、前記薬剤の前記核酸またはポリペプチドへの特異的結合が可能となるステップと、
(c)前記被験試料中の前記特異的結合の量を、対照試料中の特異的結合の量と比較するステップであり、前記被験試料中の前記特異的結合の、前記対照試料と比較した増加量または減少量により、Acinetobacter属感染が診断されるステップとを含む方法。 - 前記薬剤が、請求項48に記載の抗Acinetobacter属タンパク質抗体、またはAcinetobacter baumanniiの外膜タンパク質1、Acinetobacter baumanniiの外膜タンパク質2、Acinetobacter baumanniiの鉄シデロホア受容体タンパク質、Acinetobacter baumanniiのDnak熱ショックタンパク質、Acinetobacter baumanniiの伸長因子G、Acinetobacter baumanniiの有機溶媒耐性タンパク質前駆体、Acinetobacter baumanniiの推定リポタンパク質前駆体(VacJ)膜貫通、Acinetobacter baumanniiの推定グルコース感受性ポリン(OprB様)、Acinetobacter baumanniiのAdeA膜融合タンパク質、Acinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質、もしくはAcinetobacter baumanniiの細胞分裂タンパク質FtsZの一部分をコードする15〜300の間の連続ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドである、請求項62に記載の方法。
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