JP2012524907A - 検出可能なタンパク質を用いた細胞分析 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2009年4月24日に出願された米国仮出願61/172,680号の継続出願に基づくものであり、その内容の全てをここに参照して取り込む。
ここに開示する内容は、様々な細胞プロセスに関与するタンパク質の活性を調節する化合物のスクリーニングおよび同定を含む、タンパク質修飾の検出の分野に関する。
本出願は、分析に有用な、例えば細胞プロセスに関与するタンパク質の活性の測定に関する。いくつかの実施形態において、タンパク質の活性は核酸タグを用いて、特に核酸タグの存在を検出することによって評価される。前記分析は、例えば被験化合物のモジュレーター、例えばタンパク質活性の阻害剤、作用薬および拮抗剤としての効果を調査するために使用できる。
5.1 用語
本明細書で使用される「標的タンパク質」の用語は、細胞プロセス、例えば本明細書に記載される過程によって修飾された、目的のあらゆるタンパク質とする。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、酵素または触媒活性のあるタンパク質によって修飾される。
本明細書において開示する以下の実施形態は、例示的なものであり、これらに限定されるものではない。ここに開示される方法は、応用の範囲を有する。本明細書に開示する組成物および方法は、インビトロおよび/またはインビボとすることができる。
ある実施形態において、目的のタンパク質は、標的タンパク質と異種核酸相互作用モチーフの間のキメラ融合である。このようなキメラ融合において、それぞれ半分のキメラを示す少なくとも2つの遺伝子配列は、イン・フレームで融合することができ、適切なベクター中にクローニングして、選択した宿主細胞中に発現させてもよい。もしくは、標的タンパク質は、核酸相互作用モチーフと合成的に結合させてもよい(例えばポリペプチドリンカーを使用して)。ある実施形態において、標的タンパク質は、核酸相互作用モチーフ(例えばDNA結合タンパク質)のアミノ末端である。他の実施形態において、標的タンパク質は、核酸相互作用モチーフ(例えばDNA結合タンパク質)のカルボキシ末端である。結合は、直接的であっても、間接的であってもよい。ある実施形態において、標的タンパク質および/または核酸相互作用モチーフ(例えばDNA結合タンパク質)は、各野生型タンパク質の活性を保持している。ある実施形態において、核酸相互作用モチーフおよび標的タンパク質は、同じ生命体、例えばヒトから由来するものである。
本明細書における「標的タンパク質」の用語は、ここに記載される細胞プロセスによって修飾され得る、目的のあらゆるタンパク質を示す。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、酵素または触媒活性を有するタンパク質によって修飾される。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、キナーゼ、トランスフェラーゼ、酸化還元酵素、ヒドロラーゼ、リガーゼ、イソメラーゼまたはリアーゼの基質である。ある実施形態において、標的タンパク質は、ヒトのポリペプチドまたはタンパク質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、切断、官能基の付加もしくは除去、または異性化を経ることによって修飾できる。ある実施形態において、標的タンパク質は、アシルトランスフェラーゼ、グリコシルトランスフェラーゼ、アミドトランスフェラーゼまたはサルファトランスフェラーゼ等の活性を有するトランスフェラーゼの基質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、G結合タンパク質受容体、イオン・チャネルタンパク質、核内受容体タンパク質、転写制御因子、キナーゼ、サイトカイン、成長因子、ホルモン、酵素、抗体または短鎖型可変部(scFV)である。他の実施形態において、標的タンパク質は、ヒドロラーゼ、ペプダーゼまたはホスファターゼの基質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、キナーゼの基質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、脂質キナーゼ、例えばP13K族(例えばmTOR)の脂質キナーゼの基質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、プロテインキナーゼの基質である(例えばManning (2002) Science 298: 1912を参照のこと)。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、チロシンキナーゼまたはセリン/スレオニンキナーゼの基質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、ヒトの非受容体チロシンキナーゼ、例えばABL、ACK、CSK、MATK、FAK、PYK2、FES、FRK、JAK、SRC−A、SRC−B、TECおよび/またはSYK族の一員である非受容体チロシンキナーゼの基質である。他の実施形態において、標的タンパク質は、ヒトの受容体チロシンキナーゼ、例えばALK、AXL、DDR、EGFR、EPH、FGFR、INSR、MET、MUSK、PDGFR、PTK7、RET、ROR、ROS、RYK、TIE、TRK、VEGFR、AATYKおよび/またはSuRTK 106族の一員である受容体チロシンキナーゼの基質である。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、PIK3CA、FRAP1、PDPK1、AKT1、BRafまたはMEK1の基質である。ある実施形態において、標的タンパク質は、ヒストン(例えばヒストンH3)である。ある実施形態において、標的タンパク質は、プロアポトーシスタンパク質(例えばBAD)である。ある実施形態において、標的タンパク質は、転写因子(例えばSTAT5a、STAT6)である。ある実施形態において、標的タンパク質は、サイクリン(例えばサイクリンB1)である。ある実施形態において、標的タンパク質は、受容体(例えばアンドロゲン受容体)である。
核酸相互作用モチーフ、例えばDNA結合ドメインが従来技術において既知であり、本発明で開示する方法への使用に適した配列の例を表1に示す。核酸相互作用モチーフは、転写活性化因子およびレプレッサーを含む転写因子のDNA結合ドメインを包含する。適切なDNA結合ドメインの例としては、NF−κB(真核生物)、croリプレッサー(λバクテリオファージ)、lacリプレッサー(酵母)、GAL4(酵母)、GCN4(酵母)、Lex−A(大腸菌)、Opaque−2(トウモロコシ)およびTGA1a(タバコ)が挙げられる。適切なDNA結合ドメインとしては、合成ジンクフィンガー、ロイシンジッパー、ウィングドヘリックス、ヘリックス・ループ・ヘリックス、ホメオドメインおよびPOUドメイン等の、自然発生および/または工学的なDNA結合モチーフの異なる部位の組み合わせから構成される合成DNA結合ドメインも挙げられる。他の実施形態において、核酸相互作用モチーフは、DNAリガーゼ、DNA修復酵素、制限酵素またはDNAメチルトランスフェラーゼ等のDNA代謝酵素の全長、部分長または機能断片であってもよい。
ここに記載するように、検出可能なタンパク質は、核酸相互作用モチーフに結合した標的タンパク質を含み、任意に、標的タンパク質が膜タンパク質の場合、シグナルペプチドを含むことができる。本明細書に開示した検出可能なタンパク質は、当業者に既知のあらゆる様々な方法、例えば組み換えまたは合成のいずれを用いて作成してもよい。
ここに開示する方法およびキットに使用する抗体としては、ポリクローナル抗体、合成抗体、モノクローナル抗体、組み換えによって生成される抗体、多特異的な抗体(二重特異性抗体を含む)、ヒト抗体、ヒト化抗体、マウス抗体、ヤギ抗体、ラビット抗体、キメラ抗体、細胞内発現抗体、単鎖Fv(scFv)(例えば単一特異性、二重特異性等を含む)、ラクダ化抗体(camerized antibody)、Fabフラグメント、F(ab’)2、ジスルフィド結合したFvs(sdFv)、抗イディオタイプ(抗Id)抗体、およびこれらのいずれかのエピトープ結合断片が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
本発明で使用される核酸オリゴマーは、標的タンパク質の核酸相互作用モチーフに結合する。ある実施形態において、核酸オリゴマーは、(a)レポーター機能を有するPCR増幅産物(「アンプリコン」)である第1の核酸配列および(b)タンパク質を捕捉するか、「標識を付す」機能を有する核酸相互作用モチーフの第2核酸配列、を含む。ある実施形態において、第1の核酸配列は、異種であり、即ち、通常、第2の核酸配列に隣接している。標的タンパク質および核酸相互作用モチーフ、例えばDNA結合タンパク質を含む検出可能なタンパク質は、核酸オリゴマー、例えばDNAタンパク質の複合体形成によって捕捉するか、「標識を付す」ことができる。
ここに開示する方法に使用する細胞は、あらゆる細胞種および生物由来の初代細胞、二代目の細胞または不死化細胞とできる。いくつかの実施形態において、細胞は、ヒトを含む哺乳類由来である。いくつかの実施形態において、細胞は異なる細胞種である。他の実施形態において、細胞は、実質的に均一な集団の細胞である。本発明の方法は、例えば42、96、384または1536のウェルの分析プレートを含有する大量の細胞サンプルの分析を可能とする。
また、ここに開示されるキットは、候補分子または細胞プロセスを調節する被験化合物をスクリーニングするためのキットであり、細胞プロセスは、標的タンパク質を修飾する。係るキットは、細胞分析において、検出可能な基質としての役割を果たす、検出可能なタンパク質で形質転換された細胞株を含む。前記キットは、細胞プロセスの結果として修飾された、標的タンパク質に特異的に結合する抗体をさらに含む。抗体は、任意に固体支持体または容器、例えばマルチウェルプレートのウェルに固定される。いくつかの実施形態において、キットは、さらに検出可能な核酸オリゴマー、および核酸オリゴマーによって「標識を付す」ことができる標的タンパク質を含む。核酸オリゴマーをqPCRによって検出することができる場合、キットは、核酸オリゴマー内のPCR開始配列を認識することができるPCRプライマーをさらに含む。係るキットは、前記のように、細胞プロセスを調節する被験化合物を同定するための方法を実施するために使用することができる。
6.1 実施例1;NF−κBおよびキナーゼ融合タンパク質の構築
構成的発現のための発現ベクター
以下の遺伝要素は、標準の分子生物学技術を用いた遺伝子合成に続いて、制限酵素による消化、およびその後のライゲーションによって、一般的な細菌プラズミドであるpGEMのバックボーンにクローニングした。5’末端から3’末端まで記載すると、それらは下記の通りである:
多く細胞種にて、強い構成的発現を可能とするCMV(サイトメガロウイルス)エンハンサー/プロモーター領域;
ヒトβ−グロビン遺伝子の最初のイントロン、ならびにリーダー、および免疫グロブリン遺伝子の重鎖可変領域の主体から構成されるキメライントロン(形質転換の研究は、cDNA挿入に隣接するようなイントロンの存在が、しばしば遺伝子発現のレベルを上昇することを示した);
TEV(タバコエッチ病ウイルス)のタンパク分解酵素の認識配列に続いて、いくつかの固有な制限酵素部位を有する多重クローニング領域とイン・フレームで融合した酵母GAL4のDNA結合ドメインまたはヒトNF−κB転写活性因子(表1参照);
mRNAの安定性および翻訳を向上させるSV40(シミアンウイルス40)後期ポリアデニル化シグナル;
E.coliの増殖のためのpMBIの複製起点;および
E.coliの選択/増殖のためのアンピシリン耐性(AmpR)遺伝子。
細胞で検出可能なタンパク質の発現レベルを調節することで、細胞系を混乱させないよう、T−Rex(商標)系 (インビトロジェン カタログ番号 K 1020-02)と使用するために設計されたpcDNA(商標)5/TO(インビトロジェン カタログ番号K1020-01)を、5.1.1.に記載されたタンパク質のクローニングにも使用した。前記ベクターは、2つのテトラサイクリンオペレーター2(TetO2)部位を、テトラサイクリン調節発現を可能とするCMVプロモーターの内に有する。TetO2部位は、pcDNA(商標)6/TRに発現した4つのTetリプレッサー分子の結合部位の役割を果たす。Tetリプレッサーの結合は、検出可能なタンパク質の発現をテトラサイクリンの不存在下において抑制する。テトラサイクリンの添加により、検出可能なタンパク質の非抑制および発現が生じる。検出可能なタンパク質の発現は、細胞内に存在するテトラサイクリンの量を調整するか、または細胞内を共形質転換するpcDNA(商標)5/TOおよびpcDNA(商標)6/TRの比率を調整するかのいずれかによって制御することができる。
全長ヒトキナーゼMek1(GenBank 登録番号NP_002746.1)(配列番号:22)、全長ヒトErk1(参照配列P27361)(配列番号:23)、全長ヒトキナーゼAkt1(GenBank登録番号NP_005154.2) (配列番号:24)、全長ヒト転写因子FKHR/FOXO1(GenBank登録番号NP_002006)(配列番号:25)、アミノ酸1−787のヒトのAck1/Tnk2(参照配列Q07912)(配列番号:26)、全長AuroraキナーゼA(参照配列014965)(配列番号:27)、全長ヒトSrc(参照配列P12931)(配列番号:28)、全長ヒトプロアポトーシスタンパク質BAD(参照配列CAG46757)(配列番号:29)、全長ヒトヒストンH3(参照配列P68431及びQ71DJ3)(配列番号:30)、アミノ酸142−540のヒトアンドロゲン受容体(AR)(参照配列P 10275)(配列番号:31)、全長ヒト転写因子STAT5A(P42229)(配列番号:32)、全長転写因子STAT6(P42226)(配列番号:33)および全長サイクリンB1(参照配列14635)(配列番号:34)をコード化する配列は、逆翻訳から取得でき、ヒトのDNA結合ドメインNF−κB(配列番号:5)のアミノ酸35−36(MetAla)およびアミノ酸41−359をコード化する配列とイン・フレームでそれぞれ融合して、また逆転写により取得した。対応する触媒的に不活性なキナーゼは、前記野生型配列、キナーゼドメインの触媒残基に突然変異を導入することによって、クローニングした。したがって、以下のミスセンス突然変異をコード化する配列(括弧内に記載した特定のアミノ酸置換)であって、全長ヒトMek1(K97A)、全長Erk1(K71R)、全長Akt1(K179A)、全長Ack1/Tnk2(K158R)、全長AuroraキナーゼA/AurKA(K162R)、全長Src(K298R)およびアミノ酸142−540のアンドロゲン受容体/AR(Y534F)をコード化する配列は、逆翻訳から得られ、配列番号:5をコード化する配列とイン・フレームでそれぞれ融合して、また逆翻訳から取得した触媒的に不活性なキナーゼが、下流効果を発揮しないリン酸基の受動的な受容体として構成され、宿主これにより、細胞系の混乱を最小限にすることができる。
任意の配列を生成して、ソフトウェアPrimer Express(登録商標)(ABI)を用いて、アンプリコンを設計するに使用した。アンプリコンは、ヒトのキノーム(kinome)に対して、および他のアンプリコンに対してBLAST検索して、BLAST検索の配列の最小類似性に基づいて選択した。選択されたアンプリコンを、ABIに送ることで、適切なプライマーおよびqPCR蛍光プローブが、ABIで調製された。アンプリコンを、GAL4またはNF−κB認識部位の添加によってさらに修飾し、完全な核酸オリゴマーを生成した。オリゴヌクレオチドは、細菌プラズミドにクローニングして、オリゴマーはPCRを用いて複製した。
この細胞分析において、化合物について、Brafの直接的なキナーゼ基質であるMek1のリン酸化を測定することによって、それらのBrafを阻害する能力に関して試験した。構成的に活性なBraf V600E突然変異を発現するA375細胞は、3e5細胞/mLの濃度で10cmプレートに播種して、40μLのリポフェクトアミン2000(インビトロジェン社)で1mLのOPTI−MEM緩衝剤(ギブコ社/インビトロジェン社)中で検出可能なタンパク質(16μg)をコード化する発現プラズミドに形質転換して、37℃で18−22時間インキュベートした。次の日に、培地を取り除き、細胞をPBSで洗浄し、トリプシン処理して、M3培地(10%FBSを含むDMEM)で停止させた。細胞は、計数し、M3完全培地中に濃度5e6細胞/mLまで再懸濁して、50,000細胞/ウェル/100μLで96ウェルプレートに播種して、37℃で3時間インキュベートした。その後、培地を取り除き、飢餓培地(0.5%FBS/DMEM)をウェルに添加し、一晩インキュベートした。翌日、細胞をM3飢餓培地中の化合物とともに、37℃で2時間インキュベートした。
図2に示すように、PIK3CAキナーゼは、2つの独立した経路、例えば共にAktをリン酸化するキナーゼ基質FRAP1(mTORのキナーゼドメイン)の直接活性、または「PDK2」として文献公知のものおよびPDPK1といった他のあまり研究されていないキナーゼによるシグナリングを媒介する。FRAP1およびPDPK1は、それぞれ固有のリン酸化部位においてAkt1を活性化するため(FRAP1はAkt1キナーゼのアミノ酸473のセリンをリン酸化して、PDPK1はAktキナーゼのアミノ酸308のスレオニンをリン酸化する)、それぞれの経路の活性化は、それぞれのリン酸化部位に特異的な抗リン酸化抗体を用いて、分離して試験することができる。したがって、この細胞分析を用いて、Aktのリン酸化特異的部位を測定し、PIK3CAに対するもののみでなく、FRAP1またはPDPK1に対するものについても、化合物の阻害機構に関して調査した。細胞株Hek293を使用して、密度5e5/mLで播種される以外は、実施例1に記載されたプロトコルに従った。リン酸化Akt1検出工程のため、抗リン酸化Akt(Ser473)抗体(Akt1キナーゼのアミノ酸473でリン酸化されるセリン抗体を含むペプチドに対する抗体)を、FRAP経路からの阻害を測定するために使用し、抗リン酸化Akt1(Thr308)抗体(Akt1キナーゼのアミノ酸308でリン酸化されるスレオニン抗体を含むペプチドに対する抗体)は、PDPK1経路からの阻害を測定するために使用した。抗トータルAkt1抗体を用いた結合分析は、またウェルに亘って測定されたリン酸化Akt1の量を正常化するのと並行して実行した。
この細胞分析において、Akt1の直接的なキナーゼ基質である転写因子FOXO1(別名FKHR)のリン酸化を測定することによって、化合物のAkt1を阻害する能力に関して試験した。細胞株Hek293を使用して、濃度5e5/mLで播種した以外は、実施例1に記載されたプロトコルに従った。リン酸化FOXO1検出工程に関して、抗リン酸化FOXO(Thr24)抗体(FOXO1転写因子のアミノ酸24でリン酸化されたスレオニンに対する抗体)を使用し、また、NF−κBに対する抗体を、ウェルに亘って測定されたリン酸化FOXO1の量を正常化して完全に捕らえるために使用した。
この分析で、化合物のAurora Aの自己リン酸化能力への阻害能力について試験した。HeLa細胞を、5e6/mLの濃度で10cmプレートに播種し、40μLリポフェクトアミン2000(インビトロジェン社)を含む2mLのOPTI−MEM緩衝剤中(ギブコ社/インビトロジェン社)の検出可能なタンパク質(8μg)をコード化する発現プラズミドで形質転換して、37℃で18−22時間インキュベートした。翌日、培地を除去し、細胞をPBSで洗浄し、トリプシン処理して、M3培地(10%FBSを含むDMEM)で停止させた。細胞を計数して、M3完全培地中に濃度5e6mLとなるように再懸濁し、50,000細胞/ウェル/50μLとなるように96ウェルプレートに播種し、37℃で4時間インキュベートした。
この分析において、化合物のMek1を阻害する能力に関して、実施例4に記載のプロトコルに従い、Erk1のリン酸化を測定することによって試験した。触媒的に不活性なErk1−NFκBの検出可能なタンパク質をコード化するベクターで、A375細胞を形質転換し、また、抗リン酸化Erk1(Thr202/Tyr204)抗体を結合分析に使用した。結合分析は、ウェル全体に亘って測定されるリン酸化Erk1の量を正常化するため、抗トータルErk1抗体を用いて実施した。IC50曲線は、CI−1040(PD0325901)を等の文献公知のErk1阻害剤に関するIC50曲線を得た。
この分析において、化合物のTnk2の(Ack1としても知られる)自己リン酸化を阻害する能力に関して、実施例4に記載のプロトコルに従って試験した。Tnk2−NFκBの検出可能なタンパク質をコード化するベクターで、Hek293細胞を形質転換して、結合反応において、抗リン酸化チロシン抗体をTyr284でTnk2のリン酸化を検出するために使用した。結合反応は、ウェル全体に亘って測定されるリン酸化Tnk2の量を正常化するため、抗トータルNFκB抗体を用いて実施した。
この分析において、化合物のSrcの自己リン酸化を阻害する能力に関して、実施例4に記載されたプロトコルに従って試験した。Src−NFκBの検出可能なタンパク質をコード化するベクターで、Hek293細胞を形質転換して、結合反応において、抗リン酸化チロシン抗体を、Tyr416でSrcのリン酸化を検出するために使用した。結合反応は、ウェル全体に亘って測定されるリン酸化Src1の量を正常化するため、抗トータルSrc抗体を用いて実施した。SKI606(bosutinib)、CGP−52421、PD−180970およびBMS−354825(dasatinib)を含む既知のSrc阻害剤に関するIC50曲線を得た。
Claims (60)
- a)標的タンパク質および核酸相互作用モチーフを含む検出可能なタンパク質を;
i)目的の細胞プロセスによって修飾された標的タンパク質に結合する抗体;および
ii)核酸相互作用モチーフに結合する核酸配列を含む核酸オリゴマー;
と接触させる工程;ならびに
b)抗体を結合した検出可能なタンパク質に結合した、核酸オリゴマーの存在を検出する工程;を具え:
工程(b)における核酸オリゴマーの存在は、目的の細胞プロセスによるタンパク質の修飾の存在を示す、
目的の細胞プロセスによって修飾されたタンパク質を検出する方法。 - 検出可能なタンパク質を工程(a)の核酸オリゴマーと接触させる前に、検出可能なタンパク質を抗体と接触させる、請求項1記載の方法。
- 検出可能なタンパク質を工程(a)の核酸オリゴマーと接触させた後、検出可能なタンパク質を抗体と接触させる、請求項1記載の方法。
- 検出可能なタンパク質を、抗体および工程(a)の核酸オリゴマーに同時に接触させる、請求項1記載の方法。
- 細胞プロセスは、アシル化、アセチル化、脱アセチル、ホルミル化、アルキル化、メチル化、リン酸化、脱リン酸化、硫酸化、酸化、還元、ヒドロキシル化、脱アミド化、カルボキシル化、ジスルフィド形成、プレニル化、糖化、グリコシル化、ユビキチン化、SUMO化、タンパク質分解、ラセミ化および異性化から選択される、請求項1記載の方法。
- 細胞プロセスはリン酸化である、請求項1記載の方法。
- 標的タンパク質はキナーゼ基質である、請求項1記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上の残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸抗体である、請求項7記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上のチロシン残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸化チロシン抗体である、請求項7記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上のセリン残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸化セリン抗体である、請求項7記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上のスレオニン残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸化スレオニン抗体である、請求項7記載の方法。
- 標的タンパク質はG、結合タンパク質受容体、イオン・チャネルタンパク質、核内受容体タンパク質、転写制御因子、キナーゼ、サイトカイン、成長因子、ホルモン、酵素、抗体または短鎖型可変部(scFV)である、請求項1記載の方法。
- 核酸相互作用モチーフはDNA結合ドメインである、請求項1記載の方法。
- DNA結合ドメインは、NF−κB DNA結合ドメイン、croリプレッサーDNA結合ドメイン、lacリプレッサーDNA結合ドメイン、GAL4 DNA結合ドメイン、GCN4 DNA結合ドメイン、Lex−A DNA結合ドメイン、Opaque−2 DNA結合ドメインまたはTGA1a DNA結合ドメインである、請求項1記載の方法。
- 核酸相互作用モチーフは、配列番号:5または配列番号:6に示すアミノ酸配列を含む、請求項1記載の方法。
- 前記オリゴマーは、約50〜500ヌクレオチドの長さを有する、請求項1記載の方法。
- 細胞プロセスを調節する被験化合物を同定する方法であって、
前記細胞プロセスは標的タンパク質を修飾するものであり、
前記方法は、
a)検出可能なタンパク質を含む細胞または細胞溶解物を、被験化合物と接触させる工程であって、前記検出可能なタンパク質は、標的タンパク質および核酸相互作用モチーフを含む、工程;
b)検出可能なタンパク質を、
i)細胞プロセスにより修飾された標的タンパク質に特異的に結合する抗体;および
ii)核酸相互作用モチーフと結合する核酸配列を含む核酸オリゴマー;
と接触させる工程;ならびに
c)抗体と結合した検出可能なタンパク質に結合した、核酸オリゴマーの量を検出する工程;
を具え、
前記被験化合物の存在下で検出された、工程(c)の結合核酸オリゴマー量の増加または減少は、前記化合物の不存在下において検出された結合核酸オリゴマーの量との比較により、被験化合物が細胞プロセスを調節していることを示す、細胞プロセスを調節する被験化合物を同定する方法。 - 検出可能なタンパク質を工程(b)の核酸オリゴマーと接触させる前に、検出可能なタンパク質を抗体と接触させる、請求項17記載の方法。
- 検出可能なタンパク質を工程(b)の核酸オリゴマーと接触させた後、検出可能なタンパク質を抗体と接触させる、請求項17記載の方法。
- 検出可能なタンパク質を、抗体および工程(b)の核酸オリゴマーに同時に接触させる、請求項17記載の方法。
- 工程(a)は、検出可能なタンパク質を含む細胞の接触を具える、請求項17記載の方法。
- 細胞は、検出可能なタンパク質を一時的に発現する、請求項21記載の方法。
- 細胞は、検出可能なタンパク質を安定的に発現する、請求項21記載の方法。
- 細胞は、検出可能なタンパク質を構成的に発現する、請求項21記載の方法。
- 細胞は、検出可能なタンパク質を誘導発現する、請求項21記載の方法。
- 細胞プロセスは、アシル化、アセチル化、脱アセチル、ホルミル化、アルキル化、メチル化、リン酸化、脱リン酸化、硫酸化、酸化、還元、ヒドロキシル化、脱アミド化、カルボキシル化、ジスルフィド形成、プレニル化、糖化、グリコシル化、ユビキチン化、SUMO化、タンパク質分解、ラセミ化および異性化から選択される、請求項17記載の方法。
- 細胞プロセスはリン酸化である、請求項17記載の方法。
- 標的タンパク質はキナーゼ基質である、請求項27記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上のチロシン残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸化チロシン抗体である、請求項28記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上のセリン残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸化セリン抗体である、請求項28記載の方法。
- 修飾された標的タンパク質は、1以上のスレオニン残基でリン酸化されていて、抗体は抗リン酸化スレオニン抗体である、請求項28記載の方法。
- 標的タンパク質は、G結合タンパク質受容体、イオン・チャネルタンパク質、核内受容体タンパク質、転写制御因子、キナーゼ、サイトカイン、成長因子、ホルモン、酵素、抗体または短鎖型可変部(scFV)である、請求項17記載の方法。
- 核酸相互作用モチーフはDNA結合ドメインである、請求項17記載の方法。
- DNA結合ドメインは、NF−κB DNA結合ドメイン、croリプレッサーDNA結合ドメイン、lacリプレッサーDNA結合ドメイン、GAL4 DNA結合ドメイン、GCN4 DNA結合ドメイン、Lex−A DNA結合ドメイン、Opaque−2 DNA結合ドメインまたはTGA1a DNA結合ドメインである、請求項17記載の方法。
- 核酸相互作用モチーフは、配列番号:5または配列番号6に示すアミノ酸配列を含む、請求項17記載の方法。
- 前記オリゴマーは、約50〜500ヌクレオチドの長さを有する、請求項17記載の方法。
- キナーゼ基質はMek1であり、工程(a)が陽性コントロールサンプルの調製をさらに具え、検出可能なタンパク質を含む細胞または細胞溶解物を、被験化合物の代わりにBraf阻害剤と接触させる、請求項28記載の方法。
- Braf阻害剤は、BAY−43−9006、PLX−4720、Chir−265から選択される、請求項37記載の方法。
- キナーゼ基質はAkt1であり、抗体はリン酸化したAktに結合する、請求項28記載の方法。
- 抗体はSer473またはThr308でリン酸化したAkt1に結合する、請求項39記載の方法。
- 抗体はThr308でリン酸化したAkt1に結合する、請求項40記載の方法。
- 抗体はSer473でリン酸化したAkt1に結合する、請求項40記載の方法。
- キナーゼ基質はFRAP1またはPDPK1であり、工程(a)は陽性コントロールサンプルの調製をさらに具え、検出可能なタンパク質を含む細胞または細胞溶解物を、被験化合物の代わりにPIK3CA阻害剤と接触させる、請求項28記載の方法。
- PIK3CA阻害剤はPI103、ZSTK−474、ワートマニンおよびPIK−93からから選択される、請求項43記載の方法。
- キナーゼ基質はAKT1であり、工程(a)は陽性コントロールサンプルの調製をさらに具え、検出可能なタンパク質を含む細胞または細胞溶解物を、被験化合物の代わりにPDPK1、FRAP1またはmTOR阻害剤と接触させる、請求項28記載の方法。
- PDPK1阻害剤はBX−795である、請求項45記載の方法。
- キナーゼ基質はFOXO1であり、抗体はリン酸化したFOXO1と結合する、請求項28記載の方法。
- 抗体はThr24でリン酸化したFOXO1と結合する、請求項47記載の方法。
- 工程(a)は陽性コントロールサンプルの調製をさらに具え、検出可能なタンパク質を含む細胞または細胞溶解物を、被験化合物の代わりにAKT1阻害剤と接触させる、請求項28記載の方法。
- Akt1阻害剤はGSK−690693である、請求項49記載の方法。
- 少なくとも2種類の濃度の被験化合物と、検出可能なタンパク質を含む細胞または細胞溶解物を接触させて、被験化合物のIC50を算出する工程をさらに具える、請求項17記載の方法。
- 前記被験化合物の存在下において検出した工程(c)の結合核酸オリゴマーの量の、前記被験化合物の不存在下において検出した結合核酸オリゴマーの量に対する増加は、被験化合物が細胞プロセスに悪影響を及ぼしたことを示す、請求項17記載の方法。
- 被験化合物の存在下において検出した工程(c)の結合核酸オリゴマーの量の、前記被験化合物の不存在下において検出した結合核酸オリゴマーの量に対する減少は、被験化合物が細胞プロセスを阻害したことを示す、請求項17記載の方法。
- 核酸オリゴマーは(a)PCR増幅配列である第1の核酸配列、および(b)核酸相互作用モチーフに結合する第2の核酸配列を含み、第1の核酸配列は第2の核酸配列と非相同性である、請求項1〜53のいずれか1項に記載の方法。
- 検出可能なタンパク質に結合する核酸オリゴマーのqPCR増幅をさらに具える、請求項1〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 核酸オリゴマーは、放射性標識、蛍光標識またはビオチン化される、請求項1〜55のいずれか1項に記載の方法。
- 抗体は、マルチウェルプレート上に固定される、請求項1〜56のいずれか1項に記載された方法。
- (a)検出可能なタンパク質を含む細胞であって、前記検出可能なタンパク質が細胞プロセスによって修飾されたタンパク質および核酸相互作用モチーフを含む、細胞;ならびに
(b)核酸相互作用モチーフに結合する核酸配列を含む核酸オリゴマー、
を含むキット。 - (c)目的の細胞プロセスによって修飾された標的タンパク質に結合する抗体をさらに含む、請求項58記載のキット。
- 細胞プロセスはリン酸化である、請求項58記載のキット。
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