JP2011052019A

JP2011052019A - 血管破壊のターゲッティングに使用するための組成物および方法

Info

Publication number: JP2011052019A
Application number: JP2010278674A
Authority: JP
Inventors: Ronald W Pero; ダブリュペロロナルド; David Sherris; シェリスデイヴィド
Original assignee: Oxi Gene Inc
Current assignee: Oxi Gene Inc
Priority date: 1999-02-18
Filing date: 2010-12-14
Publication date: 2011-03-17
Also published as: WO2000048606A9; US6538038B1; CA2358925C; WO2000048606A1; EP2289521A3; AU776511B2; AU3597300A; JP2002537262A; US6956054B2; EP1152764A1; IL144508A0; EP1152764A4; EP2289521A2; CA2358925A1; US20030109500A1

Abstract

【課題】温血動物における、ガン、カポジ肉腫、および、その他悪性でない血管増殖疾患、例えば黄斑変性、乾癬、および再狭窄、および一般に血管増殖によって特徴付けられる炎症性疾患の治療のための微細血管破壊モデルをターゲッティングするのに有用な組成物および方法を提供すること。
【解決手段】微細血管ホスファターゼに対する基質特異性を有するリン酸塩プロドラッグ形態へ処方された細胞毒性試薬を充分な量で投薬することによる、腫瘍または悪性でない血管過多を有する温血動物を治療方法であり、それは細胞毒性が低いプロドラッグ形態は細胞毒性が高い脱ホスホリル化された形態へ変換されるので、他の正常な組織よりも微細血管が優先的に破壊される。
【選択図】なし

Description

〔関連発明の相互参照〕
本出願は、同時継続出願である１９９９年、２月１８日に出願された出願番号６０／１２０，４７８の米国仮特許出願の優先権の利益を主張する。

〔発明の背景〕
本発明は、ヒトを含む温血動物における標的化された血管破壊を達成するための方法および組成物、さらにそのような使用が可能であることを確認するための手法に関するものである。

腫瘍の成長に対する血管系の重要性は、調べられていない科学的事実である。ある血管は何千もの腫瘍細胞に栄養を与えるので、ガン化学療法に対する分子的なアプローチとして腫瘍血管を標的とすることは、最も高い科学的プライオリティの一つとなっている。
二つの薬剤モデルが現れており、すなわち一方の薬剤は腫瘍において新しい血管の形成を妨げるものであり（抗血管新生）、また他方は、腫瘍への栄養を制限し、および／または血管内皮細胞の管腔表面の、免疫療法としてのガン薬剤に対する不浸透性を制限する方法によって血管破壊を標的とするものである(New England Journal of Medicine 339:473-474,1998)。
抗血管新生モデルは、基本的に細胞分裂抑制的なアプローチであり、血管新生因子は一般的に腫瘍により生産され、例えば血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、および血小板由来増殖因子があり、これらは、新たな血管の成長を妨げるために、例えば天然ポリペプチドであるアンジオスタチンおよびエンドスタチンのような抗血管新生化合物によって、ブロックされる(The Cancer Journal Scientific American 4(4):209-216,1998; Cell 88:277-285,1997)。
他方、血管破壊モデルとは、細胞毒性的アプローチであり、腫瘍血管が、低酸素または直接作用的化学療法による腫瘍細胞の細胞毒性を高めるために、細胞毒性の標的とされるものである。

最も有力なガン治療薬類の部類の一つとしては、抗有糸分裂性チューブリン重合阻害剤類がある(Biochem. Molecular Biology Int. 25(6):1153-1159,1995; Br. Journal Cancer 71(4):705-711,1995; Journal Med. Chem. 34(8):2579-2588,1991; Biochemistry 28(17):6904-6991,1989)。
それらは特徴として、インビトロでの細胞の細胞毒性がｎＭ〜μＭの範囲であるＩＣ₅₀を有するが、しばしばそれらは、インビボでは正常な組織上の腫瘍を殺傷するための乏しい特異性を示し、そのような薬剤の例としては、コンブレタスタチン類、タキソール（および他のタキサン類）、ビンブラスチン（および他のビンカアルカロイド）、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類がある(Journal of Med. Chem. 41(16):3022-3032,1998; Journal Med. Chem.34(8):2579-2588, 1991; Anticancer Drugs 4(1):19-25,1993; Pharm. Res.8(6):766-781,1991; Expermentia 45(2):209-211,1989; Med. Res. Rev. 16:2067,1996;Tetrahedron Lett. 34:1035,1993; Mol. Pharmacol.49:288,1996;J.Med.Chem.41:1688-1695,1998;J.Med.Chem.33:1721,1990;J.Med.Chem.34:2579,1991;J.Md.Chem.40:3049,1997;Med.Chem.40:3525,1997; Bioorg.Med.Chem.Lett.9:1081-1086,1999; International (PCT) Application No.US98/04380; U.S.Provisional Patent Application No.60/154,639) 。
一般にチューブリン結合薬剤は、腫瘍血流で効果を発揮できるが、効果的な投薬量であるとしばしば他の普通の組織に対して毒性を示し、また特に腫瘍に対して毒性を示すわけではない(Br. J. Cancer 74(Suppl.27):586-88,1996)。

多くのチューブリン結合薬剤類、例えばコンブレタスタチン類およびタキソールらの類似体は、水に不溶性であり、診療所での評価の前に処方することを必要とする。
この臨床開発課題を克服するために首尾よく実施されるひとつのアプローチとしては、生物適応性のある水溶性プロドラッグがあり、例えばコンブレタスタチンＡ４およびタキソールのリン酸塩誘導体があり、それは水不溶性形態へもどる代謝変換を許容するものである(Anticancer Drug Des. 13 (3) : 183-191, 1998; U.S. patent No.5,561,122; Bioorganic Med. Chem. Lett. 3:1766, 1993 ; Bioorganic Med. Chem.Lett. 3:1357, 1993) 。
プロドラッグとは前駆体であり、それはインビボで代謝活性を経て活性薬剤となる。
前記リン酸塩誘導体について更に言及すると、その概念は、哺乳動物のアルカリホスファターゼのような非特異的ホスファターゼは、リン酸塩プロドラッグを脱ホスホリル化して、本来の生物学的に活性な形態にすることが可能である、といことである。
この先行技術は、水不溶性薬剤をより多くの最大吸収量、および水可溶性であり生物学的に適応性のある形態へ処方することによる生物学的利用能の状態での治療目的のために、どのようにして温血動物に投薬するのかを教授する(Krogsgaard-Larsen, P. and Bundegaard, H.,eds., A textbook of Drug Design and Drug Development,Harvard Academic Publishers, p. 148, 1991) 。

コンブレタスタチンＡ４リン酸塩プロドラッグを、インビボおよびインビトロの細胞および動物モデルで使用された時、それは血管毒性について注目すべき特異性を示した(Int. J. Radiat. Oncol. Boil. Phys. 42(4): 895-903, 1998; Cancer Res.57(10): 1829-1834, 1997)。
一般にリン酸塩プロドラッグが、アルカリホスファターゼの基質として利用できるが、それは如何なることであれ血管ターゲッティングと何らかの関係があるということは、このことからは当業者にとって明らかではなかった。
しかしながら、プロドラッグそれ自身が血管ターゲッティングの能力があるという事実の理解および正しい認識がなかったにもかかわらず、コンブレタスタチンＡ４のリン酸塩プロドラッグに関する報告データは、優先的な血管毒性の原理を開示している。
すなわち先行技術は、Ａ４およびＡ４でないプロドラッグは二つの形態間での血管毒性の違いはないものと仮定することによって血管毒性の能力がある、ということを教授するものである。
上記の明白でないところは、Ａ４リン酸塩プロドラッグおよび他のタキソールリン酸塩プロドラッグは、細胞毒性チューブリン結合形態へのホスファターゼ変換の作用を受けやすいので、促進されるにもかかわらず、この酵素は微細血管において高められ、従って、それらを細胞毒性に対してターゲッティングする、という事実によって実証される。

〔発明の要約〕
発明の目的は、ヒト（ただし、これに限定されない）を含む温血動物における、ガン、カポジ肉腫、および、その他悪性でない血管増殖疾患、例えば黄斑変性、乾癬、および再狭窄、および一般に血管増殖によって特徴付けられる炎症性疾患の治療のための微細血管破壊モデルをターゲッティングするのに有用な組成物および方法を提供することにある。

もう一つの目的は、そのような組成物の生産、およびそのような方法の実施において使用する薬剤としての可能性を確認するための手法を提供することにある。

これらおよび他の目的に対して、第一の観点として本発明は、動物に、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウム以外のプロドラッグを、血管系が増殖している場所で標的化された血管破壊を達成するために効果的な量で投薬することかなり、該プロドラッグは、実質上、非細胞毒性であるが、血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換され得る、血管増殖疾患を有する温血動物を治療する方法、を提供することを広く考慮するものである。

第二の観点として、本発明は、動物に、プロドラッグを、血管系が増殖している場所で標的化された血管破壊を達成するために効果的な量で投薬することかなり、該プロドラッグは、実質上、非細胞毒性であるが、血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換され得る、血管増殖疾患を有する温血動物を治療する方法、を提供することを広く考慮するものである。

更なる観点として、本発明は、コンブレタスタチンＡ４、パンクラチスタチンおよびタキソールのリン酸塩プロドラッグ以外のプロドラッグからなり、該プロドラッグは実質上、非細胞毒性であるが、血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換され得る、血管系が増殖している場所で標的化された血管破壊を達成するための、血管増殖疾患を有する温血動物を治療するための組成物、を提供することを考慮するものである。

また更なる観点として、本発明は、上記方法および組成物での使用に適するプロドラッグを確認するための手法であり、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウム以外のプロドラッグの存在下、制限時間内で、増殖内皮細胞および悪性でない他の細胞を培養する工程；その後それぞれの培養物において、増殖内皮細胞の培養物が、他の細胞の培養物よりも著しく大きな細胞毒性効果を示すかどうかを測定し；および、もしそのようであれば、プロドラッグ、および血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の存在下での上記他の細胞の培養が、最初の培養における他の細胞の細胞毒性効果と比較して、酵素存在下の他の細胞に関して細胞毒性が高められ、そのような方法および組成物としてのプロドラッグの適正を示唆する、ことからなる手法を提供するものである。
慣例的にまたは望ましくは、“その他の細胞”とは線維芽細胞、例えば通常のヒト線維芽細胞であればよい。

重要な特別の意味において、しかし本発明は、その最も広い観点において、限定されるものではないが、前述の方法、組成物および手法におけるプロドラッグは、一般構造式が有する化合物の類の範囲内にあるリン酸塩であればよく、

ＸはＯ、ＮＨ、またはＳであり；
ＹはＯ、ＮＨ、Ｓ、Ｏ^-、ＮＨ^-またはＳ^-であり；
ＺはＯまたはＳであり；
Ｒ²およびＲ³のそれぞれは、アルキル基、Ｈ、１価または２価の陽イオン塩、またはアンモニウム陽イオン塩であり、またＲ²およびＲ³は、同種または異種であってよく；および
Ｒ¹は、Ｘを含む基である少なくとも一つの基（Ｒ^aと表す）を有する化合物を表す構造式Ｒ¹−Ｒ^aによって定義され、該Ｒ^aは、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるリン酸塩または他の塩を形成することができ、またそれ故に、相対的に非細胞毒性のリン酸塩形態から細胞毒性のＲ¹−Ｒ^a形態へ変換される。

一般に、本発明の実施のために望ましいプロドラッグは、以下に示される構造式を有するものである。

さらに特別に、構造式Ｒ¹−Ｒ^aの化合物は、チューブリンバインダーでよい。
特別な観点として、それは、すでに予め記載されている、コンブレタスタチン類、タキサン類、ビンカアルカロイド類、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類のような既知のチューブリン結合薬剤類から選択されればよい。
また更なる特別な意味において、このチューブリンバインダーは、コンブレタスタチン類（コンブレタスタチンＡ４以外）、コルヒチン、および２−メトキシエストラジオールからなる群より選ばれる化合物であってもよい。

本発明を理解するための、リン酸塩プロドラッグの参考文献についての話であるが、それには、血管内皮細胞は、(i) 血液循環による微細血管のストレス損傷応答(J.Invest. Dermatol. 109(4):597-603, 1997)、および(ii)傷治療中の炎症細胞によって、または侵襲性腫瘍細胞によって生産されるＩＬ−６による、血管内皮細胞におけるホスファターゼの誘導、のためにホスファターゼ活性が高いレベルにある、ということが説明されている（FEBS Lett.350(1): 99-103, 1994; Ann. Surg. Oncol. 5(3): 279-286, 1998）。
ホスファターゼ（例えば、アルカリ性）が高レベルにあることは、微細血管の通常の生理学の一部分であるが、それは血液凝固機構と共に、アルカリアルカリホスファターゼ活性により生成されるカルシウム沈殿物が、傷回復過程において助力するからである。
本発明は、リン酸塩または他の適当なプロドラッグ構造は、アルカリホスファターゼのようなホスファターゼの基質であるが、それらは微細血管毒性をターゲッティングするのに有用である、という発見を包含するものである。
この目的に適するホスファターゼの典型例には、リン酸化分子が細胞質膜を通過して吸収することが少ないので、外質細胞に位置することが要求される。
外質に位置する知られる脱ホスホリル化酵素には、非特異的アルカリホスファターゼ類、ＡＴＰアーゼ、ＡＤＰアーゼ、５’−ヌクレオチダーゼ、およびプリンヌクレオシドホスホリラーゼがある。
ホスファターゼが介する脱ホスホリル化による細胞毒性薬剤をターゲッティングするためのもう一つの必要な特性は、それらは基質としてのリン酸塩プロドラッグの幅広さが利用できる、ということである。
この点については、アルカリホスファターゼは、血管内皮細胞に対する毒性に選択的に到達するための魅力的な標的である。
本発明はまた、以下の項目を提供する。
（項目１）動物に、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウム以外のプロドラッグを含む、血管系が増殖している場所で標的化された血管破壊を達成するために効果的な量で投薬することを含み、該プロドラッグは、実質上、非細胞毒性であるが、血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換される、血管増殖疾患を有する温血動物を治療する方法。
（項目２）該プロドラッグは、以下の一般構造式を有する化合物の部類の範囲内のリン酸塩であり、

ＸはＯ、ＮＨ、またはＳであり；
ＹはＯ、ＮＨ、Ｓ、Ｏ ^- 、ＮＨ ^＋またはＳ ^- であり；
ＺはＯまたはＳであり；
Ｒ ² およびＲ ³ のそれぞれは、アルキル基、Ｈ、１価または２価の陽イオン塩、またはアンモニウム陽イオン塩であり、またＲ ² およびＲ ³ は、同種または異種であってよく；および
Ｒ ¹ は、Ｘを含む基である少なくとも一つの基（Ｒ ^a と表す）を有する化合物を表す構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって定義され、該Ｒ ^a は、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるリン酸塩または他の塩を形成することができ、またそれ故に、相対的に非細胞毒性のリン酸塩形態から細胞毒性のＲ ¹ −Ｒ ^a 形態へ変換される、
項目１に記載の方法。
（項目３）構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって表される化合物は、チューブリンバインダーである項目２に記載の方法。
（項目４）該チューブリンバインダーは、コンブレタスタチン類、タキサン類、ビンカアルカロイド類、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類からなる群より選択される化合物である項目３に記載の方法。
（項目５）該動物は、血管増殖の場所で微細血管細胞を有し、該動物は、また、悪性でない他の細胞を有し、および該実質上、細胞毒性の薬物は、該微細血管細胞に対するよりも該悪性でない他の細胞に対しては、実質上、より毒性でない、項目１に記載の方法。
（項目６）該プロドラッグは、多くて約３時間以内に内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換される項目５に記載の方法。
（項目７）該プロドラッグは、多くて約３時間以内に内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換される項目１に記載の方法。
（項目８）動物に、血管系が増殖している場所で標的化された血管破壊を達成するために効果的なプロドラッグの量で、投薬することを含み、該プロドラッグは、実質上、非細胞毒性であるが、血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物へ変換され得る、悪性でない血管増殖疾患を有する温血動物を治療する方法。
（項目９）該プロドラッグは、一般構造式を有する化合物の部類の範囲内のリン酸塩であり、

ＸはＯ、ＮＨ、またはＳであり；
ＹはＯ、ＮＨ、Ｓ、Ｏ ^- 、ＮＨ ^- またはＳ ^- であり；
ＺはＯまたはＳであり；
Ｒ ² およびＲ ³ のそれぞれは、アルキル基、Ｈ、１価または２価の陽イオン塩、またはアンモニウム陽イオン塩であり、またＲ ² およびＲ ³ は、同種または異種であってよく；および
Ｒ ¹ は、Ｘを含む基である少なくとも一つの基（Ｒ ^a と表す）を有する化合物を表す構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって定義され、該Ｒ ^a は、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるリン酸塩または他の塩を形成することができ、またそれ故に、相対的に非細胞毒性のリン酸塩形態から細胞毒性のＲ ¹ −Ｒ ^a 形態へ変換される、
項目８に記載の方法。
（項目１０）構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって表される化合物は、チューブリンバインダーである項目９に記載の方法。
（項目１１）該チューブリンバインダーは、コンブレタスタチン類、タキサン類、ビンカアルカロイド類、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類からなる群より選択される化合物である項目１０に記載の方法。
（項目１２）該動物は、血管増殖の場所で微細血管細胞を有し、該動物は、また、悪性でない他の細胞を有し、および実質上、細胞毒性の薬物は、該微細血管細胞に対するよりも該悪性でない他の細胞に対しては、実質上、毒性でない、項目８に記載の方法。
（項目１３）該プロドラッグは、多くて約３時間以内に内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性試薬に変換される項目１２に記載の方法。
（項目１４）該プロドラッグは、多くて約３時間以内に内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性試薬に変換される項目８に記載の方法。
（項目１５）コンブレタスタチンＡ４、パンクラチスタチンおよびタキソールのリン酸塩プロドラッグ以外のプロドラッグを含む、血管系が増殖している場所で標的化された血管破壊を達成するための、血管増殖疾患を有する温血動物を治療するための組成物であって、該プロドラッグは実質上、非細胞毒性であるが、血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換可能である、組成物。
（項目１６）該プロドラッグは、以下の一般構造式を有する化合物の部類の範囲内のリン酸塩であり、

ＸはＯ、ＮＨ、またはＳであり；
ＹはＯ、ＮＨ、Ｓ、Ｏ ^- 、ＮＨ ^- またはＳ ^- であり；
ＺはＯまたはＳであり；
Ｒ ² およびＲ ³ のそれぞれは、アルキル基、Ｈ、１価または２価の陽イオン塩、またはアンモニウム陽イオン塩であり、またＲ ² およびＲ ³ は、同種または異種であってよく；および
Ｒ ¹ は、Ｘを含む基である少なくとも一つの基（Ｒ ^a と表す）を有する化合物を表す構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって定義され、該Ｒ ^a は、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるリン酸塩または他の塩を形成することができ、またそれ故に、相対的に非細胞毒性のリン酸塩形態から細胞毒性のＲ ¹ −Ｒ ^a 形態へ変換される、
項目１５に記載の組成物。
（項目１７）構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって表される化合物は、チューブリンバインダーである項目１６に記載の定義される組成物。
（項目１８）該チューブリンバインダーは、コンブレタスタチン類、タキサン類、ビンカアルカロイド類、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類からなる群より選択される化合物である項目１７に記載の組成物。
（項目１９）該動物は、血管増殖の場所で微細血管細胞を有し、該動物は、また、悪性でない他の細胞を有し、および該実質上、細胞毒性の薬物は、該微細血管細胞に対するよりも該悪性でない他の細胞に対しては、実質上、より毒性でない、項目１５に記載の組成物。
（項目２０）該プロドラッグは、多くて約３時間以内に内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換される項目１９に記載の組成物。
（項目２１）該プロドラッグは、多くて約３時間以内に内皮酵素の作用によって、実質上、細胞毒性の薬物に変換される項目１５に記載の方法。
（項目２２）上記方法および組成物での使用に適するプロドラッグを確認するための手法であり、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウム以外のプロドラッグの存在下、制限時間内で、増殖内皮細胞および悪性でない他の細胞を培養する工程；その後それぞれの培養物において、増殖内皮細胞の培養物が、他の細胞の培養物よりも著しく大きな細胞毒性効果を示すかどうかを測定し；および、もしそのようであれば、プロドラッグ、および血管増殖の箇所で高められたレベルで選択的に誘導される内皮酵素の存在下での上記他の細胞の培養が、最初の培養における他の細胞の細胞毒性効果と比較して、酵素存在下の他の細胞に関して細胞毒性が高められ、そのような方法および組成物としてのプロドラッグの適正を示唆する、ことからなる手法。
（項目２３）該プロドラッグは、一般構造式を有する化合物の部類の範囲内のリン酸塩であり、

ＸはＯ、ＮＨ、またはＳであり；
ＹはＯ、ＮＨ、Ｓ、Ｏ ^- 、ＮＨ ^- またはＳ ^- であり；
ＺはＯまたはＳであり；
Ｒ ² およびＲ ³ のそれぞれは、アルキル基、Ｈ、１価または２価の陽イオン塩、またはアンモニウム陽イオン塩であり、またＲ ² およびＲ ³ は、同種または異種であってよく；および
Ｒ ¹ は、Ｘを含む基である少なくとも一つの基（Ｒ ^a と表す）を有する化合物を表す構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって定義され、該Ｒ ^a は、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるリン酸塩または他の塩を形成することができ、またそれ故に、相対的に非細胞毒性のリン酸塩形態から細胞毒性のＲ ¹ −Ｒ ^a 形態へ変換される、
項目２２に記載の手法。
（項目２４）構造式Ｒ ¹ −Ｒ ^a によって表される化合物は、チューブリンバインダーである項目２３に記載の手法。
（項目２５）該チューブリンバインダーは、コンブレタスタチン類、タキサン類、ビンカアルカロイド類、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類からなる群より選択される化合物である項目２４に記載の手法。
（項目２６）該悪性でない他の細胞は、線維芽細胞である項目２２に記載の手法。
本発明の更なる特徴および利点は、付随する図面と共に、以下、説明する詳細な説明によって明らかにされよう。

図１（FIG.1A）は、リン酸塩プロドラッグの形態による微細血管細胞毒性をターゲッティング可能な分子の多様性の例として、様々な細胞毒性化合物およびそれの非細胞毒性プロドラッグの構造を示すものである。図２（FIG.1B）は、リン酸塩プロドラッグの形態による微細血管細胞毒性をターゲッティング可能な分子の多様性の例として、様々な細胞毒性化合物およびそれの非細胞毒性プロドラッグの構造を示すものである。図３（FIG.1C）は、リン酸塩プロドラッグの形態による微細血管細胞毒性をターゲッティング可能な分子の多様性の例として、様々な細胞毒性化合物およびそれの非細胞毒性プロドラッグの構造を示すものである。図４（FIG.2A）は、コンブレタスタチンＡ４プロドラッグの細胞毒性に関する接触時間の効果を示すグラフである。図５（FIG.2B）は、コンブレタスタチンＡ４プロドラッグの細胞毒性に関する接触時間の効果を示すグラフである。図６（FIG.3A）は、培養されたＨＭＶＥＣおよびＨＤＦでのアルカリホスファターゼ効果を示すグラフである。図７（FIG.3B）は、培養されたＨＭＶＥＣおよびＨＤＦでのアルカリホスファターゼ効果を示すグラフである。図８（FIG.4A）は、ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦのＡ４プロドラッグに対する細胞毒性についての、添加されたアルカリホスファターゼの投与量応答効果を示すグラフである。図９（FIG.4B）は、ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦのＡ４プロドラッグに対する細胞毒性についての、添加されたアルカリホスファターゼの投与量応答効果を示すグラフである。図１０（FIG.5）は、種々のチューブリン結合薬物によって誘導されるクローン原性毒性に関する接触時間の効果を示す一連のグラフである。

〔詳細な説明〕
本発明は、腫瘍または悪性でない血管過多を有する温血動物に、細胞毒性が低いプロドラッグ形態が細胞毒性が高い脱ホスホリル化された形態へと変換されることで、微細血管が他の正常な組織よりも優先的に破壊されるために、微細血管ホスファターゼに対する基質特異性を有するプロドラッグ形態に処方される細胞毒性薬剤を十分な量で投薬することからなる、リン酸塩プロドラッグの使用を包含するものである。
血管ターゲッティングのために好まれる細胞毒性の薬剤の例としては、チューブリン結合薬剤があるが、それらはリン酸塩プロドラッグ処方によって、水不溶性から水可溶性へ、チューブリン結合薬剤から非チューブリン結合薬剤へ、および細胞毒性から非細胞毒性へ変換され得るからである(Anti-Cancer Drug Design 13: 183-191, 1998) 。
リン酸塩プロドラッグの形態による微細細胞毒性をターゲッティングするための多様性の例としては、図１〜図３（FIG.1A〜FIG.1C) に示されており、またそれらは、例えば、コンブレタスタチン類、タキサン類、ビンカアルカロイド類、コルヒチノイド類、ドラスタチン類、ポドフィロトキシン類、ステガナシン類、アンフェチニル類、フラボノイド類、リゾキシン類、クラシン類Ａ、エポチロン類ＡおよびＢ、ウェルウィスタチン類、フェンスタチン類、２−ストリルキナゾリン−４（３Ｈ）−オン類、スチルベン類、２−アリール−１，８−ナフチリジン−４（１Ｈ）−オン類、５，６−ジハイドロインドロ（２，１−ａ）イソキノリン類、２，３−ベンゾ（ｂ）チオフェン類、２，３−置換ベンゾ（ｂ）フラン類、２，３−置換インドール類および２−メトキシエストラジオール類のような、以前、既に掲載された既知のチューブリン結合薬剤から選択された。
図１〜図３（FIG.1A〜FIG.1C）に掲載される化合物は、リン酸塩を生産するための化学反応、および細胞毒性の薬物を非細胞毒性リン酸塩プロドラッグ構造への更なる変換の能力を与える芳香族水酸基またはアミノ基のいずれか一方を有するという構造的要件を満たすものである。
血管毒性をターゲッティングするために必要な他の特徴は：
１．チューブリン結合薬剤類または他の細胞毒性薬剤類（例えば、パンクラチスタチンはチューブリンポリマーに結合することは報告されていない）は、細胞毒性（チューブリン結合）形態の場合には、ヒト微細血管細胞、および線維芽細胞のような他の正常ヒト細胞共に、同様の毒性のレベルを誘導しなければならない、または、二者択一的に、チューブリン結合形態は、微細血管細胞よりも正常細胞に対する細胞毒性が本質的に少なくなければならない。
もしこれがそのような場合でなく、線維芽細胞（即ち、正常細胞）が細胞毒性形態に対して微細血管よりも、より影響を受け易すいのならば、非細胞毒性プロドラッグ形態の場合では、たとえ線維芽細胞には細胞毒性形態を活性化するためのホスファターゼが少なくても、結果として、線維芽細胞において細胞毒性を誘導することを必要とされることは少ないであろう。
最終的な結論は、プロドラッグは正常細胞でなく微細血管に対してよりいっそう毒性であるのは、それらの高められた、細胞毒性形態を生じさせるアルカリホスファターゼ活性のためである、ということである。

２．潜在的なリン酸塩プロドラッグのチューブリン結合または細胞毒性形態は、プロドラッグ形態では細胞毒性であってはならず、それは結果的に１〜３時間、好ましくは、１〜２時間以内で細胞毒性形態へ変換される必要がある。
チューブリン結合薬剤は、数時間以内に周辺の血液循環によって除かれる。
そこで、インビボで血管破壊をターゲッティングすることを効果的に行なうためにはリン酸塩プロドラッグの構造は、優先的な細胞の毒性を誘導するための微細血管におけるホスファターゼによって１〜３時間以内に細胞毒性形態へ変換されなければならない。
したがって、チューブリンに結合するための反応速度は、だいたい１〜３時間以内に結合が完了しなければならない。

アルカリホスファターゼが高レベルにあることは、チューブリン結合薬剤の血管破壊をターゲッティングするために有用であるけれども、本発明は、また、広い意味では、とりわけ微細血管において増幅され、また代謝的に非細胞毒性プロドラッグを細胞毒性薬剤へ変換する能力があり、血管破壊をターゲッティングするのに同等に有用である、いかなる酵素またはタンパク質を包含するものである。

血管破壊をターゲティングの使用を含む発明に関する組成物は、限定されることなく、一般構造式を有する化合物の部類の範囲に含まれる化合物によって、明らかにされ、

Ｒ¹は、フェノール性水酸基、または芳香族アミノ基、または、いかなる他の適当な水酸基またはアミノ基である少なくとも一つの基（Ｒ^aと表す）を含む化合物を表す構造式Ｒ¹−Ｒ^aによって定義され、該Ｒ^aは、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるＲ²−Ｒ³ホスフェート金属もしくはアミン塩もしくはリン酸エステルを形成でき、およびそれ故に、相対的に非細胞毒性のリン酸塩形態から細胞毒性の水酸基またはアミノ基形態へ変換される。

したがって、説明される実施例において、Ｒ¹は、少なくとも一つのフェノール性水酸基（Ｒ^aと表す）を含む化合物を表す構造式Ｒ¹−Ｒ^aによって定義され、該Ｒ^aは、非特異的血管内皮ホスファターゼの基質として利用できるリン酸ナトリウム、または他の適当な塩（例えば、Ｒ²、Ｒ³は、Ｌｉ，Ｎａ，Ｋ，Ｃａ，Ｃｓ，Ｍｇ，Ｍｎ，Ｚｎ，ピペラジン、ニコチンアミド、および国際特許出願（ＰＣＴ）番号９９／ＵＳ／５３６８に示される他の例であり、その全体の開示はこの文献によって、ここに合わせられる）を形成でき、またそれ故に、相対的に非細胞毒性の形態から細胞毒性のフェノール性水酸基形態へ変換される。

本発明は、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムによる増殖細胞の観察される明瞭で選択的なターゲッティングについての、これまで知られていない事実の確認をしたという発見、およびこれらの、コンブレタスタチンＡ４以外の薬剤の発見、および血管増殖を含む悪性疾患のみならず悪性でない疾患の治療法の発見の適応性の認識をしたという発見をも、特に、包含するものである。

コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムに関する関連研究は、これから、さらに説明する。

（化学物質）
ＧＭＰで製造されるコンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムは、OXiGENE, Inc. （ボストン）から購入され、細胞培地に添加するための生理食塩水に溶解される。
アルカリホスファターゼは、Sigma(P-6774) から緩衝液として購入され、直接、細胞培地に添加された。

（細胞培養）
商業的に入手できる４種のヒト細胞系統は、ＣＯ₂が５％、湿度８０％、３７℃の条件で下に示される培地において増殖された。
１．ＨＬ６０ヒト白血病細胞、１０％子牛血清で栄養補強されたＲＰＭＩ１６４０で培養されたプロ−アポトーシス細胞系統。
２．Ｋ５６２ヒト白血病細胞、１０％子牛血清で強化されたＲＰＭＩ１６４０で培養されたアポトーシス耐性細胞系統。
３．ヒト新生児微細血管内皮細胞（HMVEC)、培地１３１(medium 131)＋微小血管成長補足剤（MVGS）＋付着因子（AF）＝５００ｍｌ＋２５ｍｌ（AFは２〜３ｍｌ／T−２５フラスコ；すべての試薬はCascade Biologics,Inc., ポートランド、オレゴン）で培養された。
４．ヒト新生児皮膚線維芽細胞 (HDF)、培地１０６(medium 106)＋低血清成長補足剤（LSGS）＝５００ｍｌ＋１０ｍｌ (Cascade Biologics,Inc.)で培養された。

すべての実施例において使用される細胞は、インビトロでの試験に先立ち、始めに２〜３日かけて２×１０⁵細胞／ｍｌの初濃度で継代培養された。
これは指数関数的増殖段階になり、また細胞生存能力は、トリパンブルー排除法によって９５％以上となった。

（クローン原性試験による細胞生存）
この試験は、若干修正が加えられたシュバイツアー等によって報告された説明(Ext. Haemetol. ２１：５７３−５７８、１９９３）に基づくものである。
簡単に説明すると、４．２×１０³/ml の濃度でＨＬ６０、Ｋ５６２、ＨＤＦ、ＨＭＶＥＣ細胞は、９６ウェルの平底微生物培養平板で、ウェルあたり１９０μlの量に、異なる濃度のコンブレタスタチンＡ４リン酸塩ナトリウムまたは他のチューブリン結合薬剤およびそれらのプロドラッグまたは１０μｌの分量で加えられるアルカリホスファターゼの単位量（ユニット）を加えて培養された。
上述した標準培養条件下での５日間のインキュベーションの後、コロニー（＞４０細胞）は、倒立光学顕微鏡によって数えられ、またはＭＴＴ試験によって見積もられた。
ＩＣ₅₀値は、薬剤濃度に対する百分率の曲線から得られた。

（高細胞毒性コンブレタスタチンＡ４に対するコンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムの、アルカリホスファターゼ代謝）
血管内皮細胞に対する毒性を標的とするための、Ａ４プロドラッグをＡ４に変換することの重要性を立証するために計画された３種類の実験がある。

（実験１）
ＨＬ６０、Ｋ５６２、ＨＤＦおよびＨＭＶＥＣ細胞は９６ウェル平板で、示される濃度（図４（FIG.2A）および図５（FIG.2B））で、５日間、Ａ４プロドラッグの存在下で、または２時間接触の後、薬剤を含む培地は取り除かれ、新しい培地が添加されて培養され、そして更に５日間細胞は培養された。
クローン原性増殖は、５日間のインキュベーションの後、すべての処置に関して記録された。

（実験２）
ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦは、最初に８００細胞／ウェルを含む、９６ウェルマイクロタイター平板で培養された。
その細胞は、１時間、示されるコンブレタスタチンＡ４プロドラッグ±１ユニットのアルカリホスファターゼの存在下で、培養された。
培地は取り除かれ、細胞は洗浄され、そして新しい培地が添加され、そして細胞は更に５日間、インキュベートされた。
クローン原性増殖はＭＴＴ試験によって見積もられた。

（実験３）
ＨＭＶＥＣは、最初に８００細胞／ウェルを含む、９６ウェルマイクロタイター平板で培養された。
その細胞は、１時間、示されるコンブレタスタチンＡ４プロドラッグ±示されるユニットのアルカリホスファターゼの存在下で、培養された。
培地は取り除かれ、その細胞は培地で洗浄され、そしてその培養物は更に新しい培地で５日間さらにインキュベートされた。
クローン原性増殖はＭＴＴ試験によって見積もられた。

図を参照すると、図４（FIG.2A）および図５（FIG.2B）は、Ａ４プロドラッグ細胞毒性についての接触時間の効果を示すグラフである。
５日目にクローン原性細胞毒性が見積もられる前に、ＨＭＶＥＣ、ＨＤＦ、ＨＬ６０、およびＫ５６２細胞は、２時間（図４（FIG.2A））または５日間（図５（FIG.2B））、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムに対して接触された。
ＩＣ₅₀値は、５日間の１．５〜２．５ｎＭでの接触後のすべての細胞類で似し、接触が２時間に制限された時、ＨＭＶＥＣだけがＩＣ₅₀細胞毒性を示した。

図６（FIG.3A）および図７（FIG.3B）は、培養されたＨＭＶＥＣおよびＨＤＦについてのアルカリホスファターゼの効果を示すグラフである。
投与量応答細胞毒性は、１ユニットのアルカリホスファターゼの存在下または存在無しの条件下で、様々さ濃度のコンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムに対する１時間の接触の後、見積もられた。
アルカリホスファターゼの添加されないＨＤＦの細胞毒性は無かったが、アルカリホスファターゼが加えられた場合、Ａ４プロドラッグの細胞毒性はＨＭＶＥＣとＨＤＦでは同じであった。

図８（FIG.4A）および図９（FIG.4B）は、ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦのＡ４プロドラッグに対する細胞毒性についての、添加されるアルカリホスファターゼの投薬量応答効果を示すグラフである。
ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦは、１時間、様々な示される濃度のコンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウム＋示され添加されるアルカリホスファターゼの存在下で培養された。
データは明らかに、より高いＡ４プロドラッグの濃度では、特に、細胞毒性に関するアルカリホスファターゼのさらなる依存性を示した。

〔実施例１〕
実施例１は、コンブレタスタチンＡ４プロドラッグのようなチューブリン結合薬剤への、血管内皮細胞の優先的な細胞毒性についての接触時間の重要性を開示する。
もしクローン原性試験が、５日間、ＨＭＶＥＣ、ＨＤＦ、Ｋ５６２、およびＨＬ６０細胞を処理するために、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウム（プロドラッグ）の濃度を増加させた条件で構成されると、すべての細胞系統はおよそ１．５〜２．５ｎＭのＩＣ₅₀値は類似するだろう（図５（FIG.2B））。
これらのデータは、もし接触時間が充分長ければ、それらの起源に関係なく、ヒト細胞系統の毒性には本質的な違いが無いということを教授する。
しかし、Ａ４プロドラッグは、他のチューブリン結合薬剤と同様、インビボでは数時間内に周辺の血管循環によって取り除かれ、他のチューブリン結合薬剤はこの能力を有することが示されていないが、またこれらの条件下では、Ａ４プロドラッグは、腫瘍における増殖する内皮細胞に対する優先的な毒性を示した(Cancer Res. 57(10):1892-1834, 1997)。
したがって、我々は、Ａ４プロドラッグに対する様々な細胞系統の接触を２〜３時間に制限し、Ａ４を有する培地を取り除き、それを新しい培地に取替え、そして更に５日間培養を続けた。
これらの条件は、ＨＭＶＥＣは、ＨＤＦ、Ｋ５６２、およびＨＬ６０細胞と比較してＡ４プロドラッグ誘導細胞毒性に対してまさに影響を受け易いこと、を示した（図４（FIG.2A））。
これらのデータは、(i) インビトロ細胞モデルでは、Ａ４プロドラッグのようなチューブリン結合薬剤による血管内皮細胞毒性の選択的な誘導を実施するのに使用することが可能であり、(ii)これは、インビボでの薬物動力学で調節された接触の制限をまねるインビトロでの条件下でのみ起こる、および(iii)細胞毒性を調節するチューブリン結合パラメータまたは代謝相違のどちらか、あるいは両方は、Ａ４プロドラッグの血管内皮細胞に対する選択的細胞毒性の原因である、ということを教授する。

〔実施例２〕
コンブレタスタチン類は、天然で、発生する、Ａ−，Ｂ−，Ｃ−およびＤ−系統の構造からなるチューブリン結合薬剤のファミリーである(U.S.patents Nos.4,940,726;4,996,237;5,409,953; および5,569,786)。
実施例２は、インビトロでのＨＤＦ、ＨＭＶＥＣおよびＨＬ６０の培養におけるこれらの化合物の選択物によって誘導されるクローン原性毒性のIＣ５０値を比較する。
その化合物は、ＤＭＳＯ（例えば、＜０．５％）中の微小培地に添加され、そして毒性は５〜７日後の培養物においてＭＴＴ試験によって評価された。
表１のデータは、コンブレタスタチン類似体が、様々な類似体と、評価される様々なヒト細胞種との間の、それらの総合的なクローン原性毒性において、かなり変化したことを示す。
Ａ４は、試験されたすべての細胞において、最も毒性なチューブリン結合の機構を有しており、そしてそれは細胞種の間のクローン原性毒性についての優先性がないことを示した。
しかし、他のコンブレタスタチン類の細胞毒性は一般的に、大きい毒性から小さい毒性の順にクローン原性毒性について、
ＨＬ−６０＞ＨＤＦ＞ＨＭＶＥＣ
と並べられよう。
これらのデータは、リン酸塩プロドラッグを、抗有糸分裂毒性の血管ターゲッティングにおいて使用することができるかどうかについて、正常細胞に対する毒性はＨＭＶＥＣに対するよも大きくない、という特性を有するためのチューブリン結合薬剤の必要条件を、確立するものである。

コンブレタスタチン類は、親切にもアリゾナ州立大学のＧ．Ｒ．Ｐｅｔｔｉｔ教授により提供された。ＨＤＦ＝ヒト二倍体線維芽細胞；ＨＭＶＥＣ＝ヒト微細血管内皮細胞；ＨＬ−６０＝ヒト骨髄性白血病細胞

〔実施例３〕
様々な種類のチューブリン結合薬剤によって誘導されるクローン原性毒性についての接触時間の効果が、図１０（FIG.5）に示されている。
タキソール、タキソテール、ビンクリスチン、およびコンブレタスタチンＡ１およびＡ４は、１時間目と６時間目に、ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦの微小培養物に加えられ、食塩水で洗浄され、およびＭＴＴ試験によるクローン原性毒性を評価する前に３日以上完全培地でのインキュベーションが継続された。
この実施例におけるデータは、様々なチューブリン結合薬剤の結合速度は、インビボでの接触と同様の条件（即ち、１時間）下での、それらの細胞毒性に影響を与えること、を示す。
例えば、タキソール、タキソテールおよびコンブレタスタチンＡ１は、１時間接触後ＨＭＶＥＣに対する最大毒性を誘導せず、６時間要求したが、また加えて、速度論的に調節された細胞毒性の応答の程度は、またＨＭＶＥＣと比較してＨＤＦでは異なった。

従って、ヒトにおける微小血管毒性を標的とするためにチューブリン結合細胞毒性機構は、ＨＤＦまたは他の正常細胞に匹敵するＨＭＶＥＣへの毒性を許容するという方法での処置後、１〜３時間以内に完全に達成されることが必要とされる。
この場合、リン酸塩プロドラッグは微細血管毒性を標的とすることが可能である。なぜならばそれらは、正常細胞と比較して、プロドラッグをその細胞毒性形態へ変換する、アルカリホスファターゼが増加したからである。

〔実施例４〕
ストレス障害および侵襲性腫瘍細胞の存在の双方は、アルカリホスファターゼのレベルを５０倍にするために、微細血管を誘導することができる（J. Invest. Dermatol. 109(4): 597-603, 1997; FEBS lett.350(1):99-103, 1994 ）。
アルカリホスファターゼは、細胞膜内に存在し、また血液循環では、リン酸塩を含む化合物を加水分解して、有機分子部分からリン酸塩部分を分離しまたは取り除くことが出来る。
アルカリホスファターゼを高めることによる、それら自身の損傷を修復するための微細血管の生理学的要求は、傷の箇所におけるカルシウム沈殿物の増加された沈殿物を導く、通常の傷治療過程の一部分である。
この代謝の特異性の結論は、リン酸塩に修飾された細胞毒性チューブリン結合薬剤（例えば、Ａ４プロドラッグ）は、やはり、アルカリホスファターゼの基質である、と言う事であろう。
この過程は、また、その結果として、微細血管のチューブリン結合薬剤に対する高められた細胞毒性の感度を導き、チューブリンに結合し、細胞毒性である脱ホスホリル化された形態に対して、ホスホリル化された形態ではチューブリンに結合せず、細胞毒性ではない。
この実施例はこの事実が確かであることを示す。
インビトロにおいて、２時間、高められたＡ４プロドラッグの濃度に、アルカリホスファターゼが１単位存在あるいは存在しない状態で、培地に接触されたＨＤＦおよびＨＭＶＥＣは、アルカリホスファターゼが添加されていないＨＭＶＥＣに対する高い選択的な細胞毒性の程度を示すが、ＨＤＦはアルカリホスファターゼの存在下でのＡ４プロドラッグに対してＨＭＶＥＣと同一の細胞毒性となる（図６（FIG.3A）および図７（FIG.3B））。
血管破壊をターゲッティングすることは、直接的に、ＨＭＶＥＣにおける高レベルのアルカリホスファターゼの存在に依存し、およびその他の正常細胞およびＨＤＦのような腫瘍細胞においては、それを欠くと、結論付けられた。
従って、この実施例は微細血管の増殖破壊をターゲッティングするための方法を教授し、それによって、チューブリン結合化合物のような細胞毒性薬剤は、例えば、血管内皮細胞においてのみ大量に存在し、細胞毒性形態へ戻すアルカリホスファターゼによって選択的に代謝されることが可能であり、細胞毒性を誘導できない、フェノール性ヒドロキシリン酸塩の形態をとることにより、プロドラッグ形態へ変換される。

〔実施例５〕
実施例５では、さらに、実施例４において説明された開示を立証し、証明する。
ここでは、Ａ４プロドラッグの細胞毒性を基準としてアルカリホスファターゼの投薬量の依存を明らかにするという実験計画が計画された。
そのデータは、明白に、どれぐらいのアルカリホスファターゼの量が、ＨＭＶＥＣおよびＨＤＦ（図８（FIG.4A）および図９（FIG.4B））双方に対するコンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムのクローン原性細胞毒性を決定することを示す。
その結果は、高レベルのアルカリホスファターゼが加えられると、毒性は双方の細胞系統で等しくなるが、直接的に低レベルのアルカリホスファターゼを添加無しない、または添加後のＡ４プロドラッグに対するクローン原性毒性を、ＨＭＶＥＣは直接的に発現するのであるが、ＨＤＦがＡ４プロドラッグによって殺傷され得る前に多くのアルカリホスファターゼを加えなければならない、ことを教授する。

それ故に、インビボでの腫瘍血管破壊をターゲッティングすることは、直接的に、アルカリホスファターゼに依存し、またこの認識は、ガンおよび悪性でない、血管増殖疾患の治療に関する薬剤および方法を計画するのに有用であろう、ということが立証される。

〔実施例６〕
表２に示される化合物は、どのようにして毒性が細胞毒性形態を、増殖している微細血管内皮細胞において他の正常細胞よりも５０倍以上の濃度となっている、アルカリホスファターゼのような細胞性ホスファターゼによって細胞毒性形態へ戻されるという変換がなされるまでは結果として細胞毒性はない、リン酸塩プロドラッグへ変換することによって微細血管細胞へ標的とされ得るのか、の例を示す。
一般に、チューブリン結合薬剤はリン酸塩形態ではチューブリンに結合できないので、それらは、血管ターゲッティングのための細胞毒性機構として、好まれる細胞毒性機構を示す。
その化合物のすべてについて、１時間微小培地中で接触させた後、毒性の評価がなされ、そしてさらに培養物を５日間インキュベーションした後、ＭＴＴ試験によって細胞毒性の試験が行なわれた。
これらの条件下では、チューブリン結合速度は、正常な増殖性ＨＤＦおよびＨＭＶＥＣの双方における毒性をもたらすのに充分速いものであった。
表２に報告されるデータは、
(i) ＨＭＶＥＣではそうでないが、ＨＤＦにおいてプロドラッグに対する高いＩＣ₅₀値によって示されるＨＭＶＥＣに対する毒性の作用がない間、リン酸塩プロドラッグは、一般に、正常ＨＤＦに毒性を与えない、(ii)もし細胞毒性薬剤がＨＭＶＥＣに対するよりもＨＤＦに対する毒性が大きいのなら、そしてたとえプロドラッグがＨＤＦに毒性を与えないとしても、それはＨＤＦとＨＭＶＥＣの間の本質的な毒性における違いを埋め合わせることは出来なく、(iii)コンブレタスタチンＡ１ピペラジンリン酸塩は、細胞毒性からＨＤＦを保護することにおいて，唯一わずかに効果的であるので、ホスファターゼプロドラッグのすべての金属またはアミン塩は、同等に効果的ではなく、および(iv)パンクラチスタチンはチューブリンに結合することは知られていないが、他の細胞毒性機構を有する化合物もまたホスファターゼ機構によって標的とされ得る、
ことを立証する。
総括として、これらのデータは、もし、１時間の接触の内に、リン酸塩プロドラッグをその細胞毒性形態へ代謝するのに充分なアルカリホスファターゼを殆ど有しない正常細胞に対する保護があるのならば、細胞毒性薬剤はリン酸塩プロドラッグ構造による微細血管細胞破壊を標的とすることができる、ということを示す（即ちインビボの条件を模倣する）。

細胞毒性化合物を非細胞毒性リン酸プロドラッグ変換による微細血管細胞毒性をターゲッティングの証拠（注：左方の縦の行における”FIG.1中の番号”は、図１（FIG.1A）、図２（FIG.1B）、および図３（FIG.1C）における構造認識番号について言及するものである。化合物I〜VIIIは、アリゾナ州立大学のＧ．Ｒ．Ｐｅｔｔｉｔ教授より供給され、また化合物X 〜XVI は、テキサス、ウエイコのＢａｙｌｏｒ大学のＤｒ．ＫｅｖｉｎＧ．Ｐｉｎｎｅｙより供給された）。

〔実施例７〕
病原性の眼に関する血管新生を模擬実験するために、液体ヒドロペルオキシド（ＬＨＰ）を３０μｇの投薬量で、ウサギの眼の角膜内に注射で投薬することによって、眼に関する新生血管形成を行なった。
７日〜１４日後、ＬＨＰが注射された眼において、眼の血管が形成された。
実験対象は二つのグループに分けられ、一方のグループは、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムが、５日間、１日に一度４０ｍｇ／ｋｇの投薬量で静脈注射によって投薬され、もう一方は、コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムを含まない賦形剤として、その他のグループに同じ期間に、水が静脈注射によって投与された。
双方の眼のグループは、７日後に検査された。コンブレタスタチンＡ４リン酸二ナトリウムで治療されたグループにおいて、４０％もしくはそれ以上の血管の縮小が確認されたが、他のグループでは確認されなかった。

本発明が、ここに特別に示された特徴と実施例に限定されず、本来の精神から離れることなく、他の方法で行なわれ得ることが理解されるべきである。

Claims

明細書中に記載の発明。