JP2010063433A - エタノールの製造方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】操作が簡単で且つ製造効率に優れるエタノールの製造方法を提供する。
【解決手段】糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖化した固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか或いはデンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であり且つ前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であるエタノールの製造方法。
【選択図】なし
【解決手段】糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖化した固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか或いはデンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であり且つ前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であるエタノールの製造方法。
【選択図】なし
Description
本発明は、糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、該発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び該反応で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応の３つの反応が同一容器内で並行して進行することを特徴とする、操作が簡単で且つ製造効率に優れるエタノールの製造方法に関する。
特開平０７−０８７９８６号公報には、光合成により細胞内にデンプンを蓄積する微細藻を培養する“微細藻培養手段１”、該手段により培養した藻体を含む培養液を濃縮する“微細藻濃縮手段２”、該手段で得られるスラリーを、ｐＨ６．０〜９．０の範囲に保ちながら暗黒かつ嫌気性雰囲気に保持してエタノールを生成させる“保持手段３”を含むエタノールの製造方法が記載されている。
上記製造方法において、“微細藻培養手段１”及び“保持手段３”は、完全に独立した別工程であり、また、該２工程間には“微細藻濃縮手段２”という別工程を必要とするため、操作が煩雑であり、また、エタノールの製造方法として必ずしも効率が高いものとはいえなかった。
特に、エタノールを生成させる“保持手段３”は、暗黒かつ嫌気性雰囲気に保持する必要があるため、光照射を必要とする“微細藻培養手段１”と同一容器内で並行して行うことはできないものであった。
上記製造方法において、“微細藻培養手段１”及び“保持手段３”は、完全に独立した別工程であり、また、該２工程間には“微細藻濃縮手段２”という別工程を必要とするため、操作が煩雑であり、また、エタノールの製造方法として必ずしも効率が高いものとはいえなかった。
特に、エタノールを生成させる“保持手段３”は、暗黒かつ嫌気性雰囲気に保持する必要があるため、光照射を必要とする“微細藻培養手段１”と同一容器内で並行して行うことはできないものであった。
特開２００７−３２５５６４号公報には、穀物として米を出発原料としてエタノールを製造するために、特定処理を施した原料に対して麹菌を接種し糖化させると共に酵母を添加してエタノール発酵させる方法が記載されており、また、エタノール発酵の際、副産物として発生する二酸化炭素を単に大気に逃すことなく再利用して工業用メタノール等を合成して活用する方法が記載されている。
上記方法は、エタノール発酵の際に発生する二酸化炭素の再利用について記載するものの、該二酸化炭素を光合成によりエタノール発酵の原料である糖に変換すること、及び、該糖を上記のエタノール発酵とを同一容器内で並行して行うことに付いては何らの示唆も記載もなされていなかった。
上記方法は、エタノール発酵の際に発生する二酸化炭素の再利用について記載するものの、該二酸化炭素を光合成によりエタノール発酵の原料である糖に変換すること、及び、該糖を上記のエタノール発酵とを同一容器内で並行して行うことに付いては何らの示唆も記載もなされていなかった。
また、光合成の光源として発光ダイオードを用いて各種光合成生物に光合成を行わせ、これにより有用な有機物を製造する方法が報告されている（例えば、特開平１０−１１３１６４号公報、特開２００４−１４７６４１号公報、特開２００２−３１５５６９号公報、登録実用新案第３０７３９０８号公報、勝田知尚、フォトバイオリアクターによる有用物質生産のための生物化学工学的検討、第５９回日本生物工学会大会講演要旨集、２００７年８月２日、ｐ．１０７（講演番号：３Ｄ０９−１）、参照）。
しかし、上記方法は何れも、光合成により二酸化炭素から糖を生成する具体的な方法を記載するものではなかった。
特開平０７−０８７９８６号公報
特開２００７−３２５５６４号公報
特開平１０−１１３１６４号公報
特開２００４−１４７６４１号公報
特開２００２−３１５５６９号公報
登録実用新案第３０７３９０８号公報
勝田知尚、フォトバイオリアクターによる有用物質生産のための生物化学工学的検討、第５９回日本生物工学会大会講演要旨集、２００７年８月２日、ｐ．１０７（講演番号：３Ｄ０９−１）
しかし、上記方法は何れも、光合成により二酸化炭素から糖を生成する具体的な方法を記載するものではなかった。
本発明は、糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、該発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び該反応で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応の３つの反応が同一容器内で並行して進行することを特徴とする、操作が簡単で且つ製造効率に優れるエタノールの製造方法の提供を課題とする。
本発明者等は、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射するという簡単な操作により、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを見出し、またその際、特定の波長領域の光を照射することにより効率良くエタノールが製造されることを見出し、本発明を完成させた。
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを見出し、またその際、特定の波長領域の光を照射することにより効率良くエタノールが製造されることを見出し、本発明を完成させた。
即ち、本発明は、
（１）糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖化した固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか或いはデンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であり且つ前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であるエタノールの製造方法、
（２）前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加する請求項１記載のエタノールの製造方法、
（３）前記回収工程が、蒸留によるものである請求項１又は２記載のエタノールの製造方法、
に関する。
（１）糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖化した固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか或いはデンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であり且つ前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であるエタノールの製造方法、
（２）前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加する請求項１記載のエタノールの製造方法、
（３）前記回収工程が、蒸留によるものである請求項１又は２記載のエタノールの製造方法、
に関する。
尚、“３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる”とは、使用する発光ダイオードの光の発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の合計を百分率で示した値が、７０％以上となることを意味する。
本発明のエタノールの製造方法は、糖の発酵反応で発生する二酸化炭素を原料として光合成反応により糖を産生するものであるため、二酸化炭素を排出せず、そのため、地球温暖化対策がなされたエタノールの製造方法といえる。
加えて、光合成反応により産生された糖を原料としてエタノールが製造されるため、通常のエタノール発酵と比べると、エタノールの回収割合が高いものであり、更に、１つの容器内で３つの反応を同時に行えるため、操作が簡便で且つ効率的である、非常に優れたエタノールの製造方法である。
また、本発明の好ましい態様においては、上記反応系内に、更なる二酸化炭素が添加されるが、それにより、更に効率よくエタノールを製造することができる。
加えて、光合成反応により産生された糖を原料としてエタノールが製造されるため、通常のエタノール発酵と比べると、エタノールの回収割合が高いものであり、更に、１つの容器内で３つの反応を同時に行えるため、操作が簡便で且つ効率的である、非常に優れたエタノールの製造方法である。
また、本発明の好ましい態様においては、上記反応系内に、更なる二酸化炭素が添加されるが、それにより、更に効率よくエタノールを製造することができる。
本発明のエタノールの製造方法は、糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含む。
本発明に使用する糖化した固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか或いはデンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化することにより調製される。
セルロース又はヘミセルロースとしては、木材等の植物体から得られるセルロース又はヘミセルロースが挙げられる。
熱分解によるセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特許第１４００００９号公報に記載の方法により行うことができる。
また、加水分解によるセルロース又はヘミセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特公昭６１−０４４４７９号公報に記載の希硫酸を用いて加水分解する方法により行うことができる。
また、糖化した固液混合物は、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを用い、必要に応じて外皮を取り除く工程、粉末化又は粉砕工程等を施し、これに麹、麦芽又は酵素剤を添加することにより調製することができる。
上記酵素剤としては、アミラーゼが挙げられる。
上記で調製された糖化した固液混合物は、必要に応じて滅菌工程等を行うことができる。
セルロース又はヘミセルロースとしては、木材等の植物体から得られるセルロース又はヘミセルロースが挙げられる。
熱分解によるセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特許第１４００００９号公報に記載の方法により行うことができる。
また、加水分解によるセルロース又はヘミセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特公昭６１−０４４４７９号公報に記載の希硫酸を用いて加水分解する方法により行うことができる。
また、糖化した固液混合物は、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを用い、必要に応じて外皮を取り除く工程、粉末化又は粉砕工程等を施し、これに麹、麦芽又は酵素剤を添加することにより調製することができる。
上記酵素剤としては、アミラーゼが挙げられる。
上記で調製された糖化した固液混合物は、必要に応じて滅菌工程等を行うことができる。
本発明に使用する酵母としては、エタノールを生成し得るものであれば特に限定されないが、具体的には、ワイン酵母、清酒酵母、ウィスキー酵母、ビール酵母等が挙げられる。
本発明に使用する植物葉緑体としては、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体が挙げられる。
種子植物としては、特に限定されないが、例えば、イチョウ、稲等が好ましい。
シダ植物としては、特に限定されないが、例えば、ソテツ等が好ましい。
藻類としては、特に限定されないが、例えば、カワモズク、灰色藻、クリプト藻、ワカメ、ユーグレナ藻、クロララクニオン藻、藍藻、ユレモ等が好ましい。
コケ植物としては、特に限定されないが、例えば、ミズゴケ、クロゴケ、スギゴケ、ウロコゴケ、ゼニゴケ、ツノゴケ等が好ましい。
細菌類としては、特に限定されないが、例えば、シアノバクテリア（アオコから抽出）等が好ましい。
好ましい植物葉緑体としては、細菌類の植物葉緑体が挙げられ、また、シアノバクテリアの植物葉緑体が挙げられる。
種子植物としては、特に限定されないが、例えば、イチョウ、稲等が好ましい。
シダ植物としては、特に限定されないが、例えば、ソテツ等が好ましい。
藻類としては、特に限定されないが、例えば、カワモズク、灰色藻、クリプト藻、ワカメ、ユーグレナ藻、クロララクニオン藻、藍藻、ユレモ等が好ましい。
コケ植物としては、特に限定されないが、例えば、ミズゴケ、クロゴケ、スギゴケ、ウロコゴケ、ゼニゴケ、ツノゴケ等が好ましい。
細菌類としては、特に限定されないが、例えば、シアノバクテリア（アオコから抽出）等が好ましい。
好ましい植物葉緑体としては、細菌類の植物葉緑体が挙げられ、また、シアノバクテリアの植物葉緑体が挙げられる。
本発明に使用する植物葉緑体は、光合成により生成した糖が溶液中の酵母により効率よ
く発酵されるように、通常、植物の細胞膜を破壊しておくことが好ましい。植物の細胞膜の破壊は、例えば、植物を粉砕することにより行われ得る。
しかし、細胞膜を破壊しなくても生成した糖が効率よく発酵される場合には、細胞膜を破壊しておく必要は無い。
く発酵されるように、通常、植物の細胞膜を破壊しておくことが好ましい。植物の細胞膜の破壊は、例えば、植物を粉砕することにより行われ得る。
しかし、細胞膜を破壊しなくても生成した糖が効率よく発酵される場合には、細胞膜を破壊しておく必要は無い。
密閉された系としては、密閉され且つ光照射が可能で、且つ、発生した気体（二酸化炭素、酸素）による体積変化に対応可能な容器であれば、特に限定されないが、例えば、ガラス容器、金属容器等が挙げられる。
ガラス容器の場合、光照射は、ガラス容器の外側から及び／又は内側から行うことができ、金属容器の場合は、容器の内側から光照射を行うことができる。
また、上記容器は、発生する気体に対応できるよう、発生した気体を一時的に収容できる伸縮可能な部位を備えていることが好ましい。
また、上記系は、攪拌可能であることが好ましい。
ガラス容器の場合、光照射は、ガラス容器の外側から及び／又は内側から行うことができ、金属容器の場合は、容器の内側から光照射を行うことができる。
また、上記容器は、発生する気体に対応できるよう、発生した気体を一時的に収容できる伸縮可能な部位を備えていることが好ましい。
また、上記系は、攪拌可能であることが好ましい。
また、上記ガラス容器は、例えば、発光ダイオードの周りに設置されたガラス管であって、糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む溶液をエタノール生成反応が可能な速度で流すことによる連続反応が可能な容器でもあり得る。
また、上記ガラス容器は、例えば、裏と表の両面から発光ダイオードの光照射が可能な、２枚のガラス板から構成され、該ガラス板の間に糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む溶液をエタノール生成反応が可能な速度で流すことによる連続反応が可能な容器でもあり得る。
また、上記ガラス容器は、例えば、裏と表の両面から発光ダイオードの光照射が可能な、２枚のガラス板から構成され、該ガラス板の間に糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む溶液をエタノール生成反応が可能な速度で流すことによる連続反応が可能な容器でもあり得る。
本発明のエタノールの製造方法における、エタノールを生成する生成工程は、上述の密閉された系内に発光ダイオードの光を照射することにより行われが、該生成工程において、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
の３つの反応が、前記密閉された系中で、並行して進行する。
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
の３つの反応が、前記密閉された系中で、並行して進行する。
上記ａ）の酵母による発酵により、エタノールと二酸化炭素が生成する。
生成した二酸化炭素は、植物葉緑体と発光ダイオードの光による光合成ｂ）により、糖に変換され、またこの際、酸素が発生する。
上記糖は、エタノール発酵に使用可能な糖であれば、特に限定されず、例えば、ショ糖、ブドウ糖等が挙げられる。
上記ｂ）で生成した糖は、酵母により発酵され（反応ｃ））、エタノールと二酸化炭素が生成するが、生成した二酸化炭素は、再度ｂ）の光合成、ｃ）のアルコール発酵を経由してエタノールと酸素に変換され、このサイクルを繰り返すことにより最終的に二酸化炭素はその殆ど全てが、エタノールと酸素に変換されることとなる。
従って、系中に存在する気体中の酸素濃度を測定することによって、反応の進行状況を把握することができる。
系中に存在する気体中の酸素濃度が９０％以上になるまで反応させることが好ましく、また、該濃度が９５％以上になるまで反応させることがより好ましい。
生成した二酸化炭素は、植物葉緑体と発光ダイオードの光による光合成ｂ）により、糖に変換され、またこの際、酸素が発生する。
上記糖は、エタノール発酵に使用可能な糖であれば、特に限定されず、例えば、ショ糖、ブドウ糖等が挙げられる。
上記ｂ）で生成した糖は、酵母により発酵され（反応ｃ））、エタノールと二酸化炭素が生成するが、生成した二酸化炭素は、再度ｂ）の光合成、ｃ）のアルコール発酵を経由してエタノールと酸素に変換され、このサイクルを繰り返すことにより最終的に二酸化炭素はその殆ど全てが、エタノールと酸素に変換されることとなる。
従って、系中に存在する気体中の酸素濃度を測定することによって、反応の進行状況を把握することができる。
系中に存在する気体中の酸素濃度が９０％以上になるまで反応させることが好ましく、また、該濃度が９５％以上になるまで反応させることがより好ましい。
光合成反応で使用する発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であり、好ましくは、８０％以上となる光であり、より好ましくは９０％以上となる光である。
上記％が７０未満である場合は、エタノールの製造効率が低下する。
また、３８０ｎｍよりも短い波長の光は、実質的に含まれない、即ち、発光量が５％以下、また、３％以下が好ましく、また、０％であるのが望ましい。
尚、“３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる”とは、使用する発光ダイオードの光の発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の合計を百分率で示した値が、７０％以上となることを意味する。
上記％が７０未満である場合は、エタノールの製造効率が低下する。
また、３８０ｎｍよりも短い波長の光は、実質的に含まれない、即ち、発光量が５％以下、また、３％以下が好ましく、また、０％であるのが望ましい。
尚、“３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる”とは、使用する発光ダイオードの光の発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の合計を百分率で示した値が、７０％以上となることを意味する。
本発明のエタノールの製造方法は、エタノールを生成する生成工程に加えて、生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含む。
回収工程は、反応系中からエタノールを分離し得る方法であれば、特に限定はしないが、例えば、蒸留法、膜分離法等の既知の方法を用いることができる。
また、蒸留法でエタノールを回収する場合、蒸留操作に使用する容器は、生成工程を行った容器をそのまま使用することができ、また、別容器に反応液を移し変えて使用することもできる。
本発明の好ましい態様は、前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加するエタノールの製造方法である。
更なる二酸化炭素の添加により、エタノールの製造効率を更に向上することができる。
上記更なる二酸化炭素の添加は、例えば、反応容器に、二酸化炭素の導入管を接続したり、二酸化炭素の雰囲気下に置くこと等により達成される。
尚、二酸化炭素を添加する際、二酸化炭素が外部に流出しないように、系全体として密閉されるようにする。
回収工程は、反応系中からエタノールを分離し得る方法であれば、特に限定はしないが、例えば、蒸留法、膜分離法等の既知の方法を用いることができる。
また、蒸留法でエタノールを回収する場合、蒸留操作に使用する容器は、生成工程を行った容器をそのまま使用することができ、また、別容器に反応液を移し変えて使用することもできる。
本発明の好ましい態様は、前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加するエタノールの製造方法である。
更なる二酸化炭素の添加により、エタノールの製造効率を更に向上することができる。
上記更なる二酸化炭素の添加は、例えば、反応容器に、二酸化炭素の導入管を接続したり、二酸化炭素の雰囲気下に置くこと等により達成される。
尚、二酸化炭素を添加する際、二酸化炭素が外部に流出しないように、系全体として密閉されるようにする。
本発明の好ましい態様において、前記回収工程は、蒸留により達成される。
蒸留法としては、要求されるエタノールの純度に応じて、単蒸留、共沸蒸留、ベンゼンを加えた共沸蒸留等の何れを選択することもできる。
蒸留法としては、要求されるエタノールの純度に応じて、単蒸留、共沸蒸留、ベンゼンを加えた共沸蒸留等の何れを選択することもできる。
製造例１：糖化した固液混合物（米）の製造
食品店より購入した米粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（米）６５１ｇを調製した。
食品店より購入した米粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（米）６５１ｇを調製した。
製造例２：糖化した固液混合物（小麦）の製造
食品店より購入した小麦粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて小麦粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（小麦）６５１ｇを調製した。
食品店より購入した小麦粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて小麦粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（小麦）６５１ｇを調製した。
製造例３：糖化した固液混合物（トウモロコシ）の製造
食品店より購入したトウモロコシ粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけてトウモロコシ粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（トウモロコシ）６５１ｇを調製した。
食品店より購入したトウモロコシ粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけてトウモロコシ粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（トウモロコシ）６５１ｇを調製した。
実施例１ないし１０及び比較例１
製造例１で製造した糖化した固液混合物（米）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１ないし１０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード１００個及び緑色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１ないし１０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例１で製造した糖化した固液混合物（米）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１ないし１０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード１００個及び緑色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１ないし１０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例１１ないし２０及び比較例２
製造例２で製造した糖化した固液混合物（小麦）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（小麦）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（小麦）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１１ないし２０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（小麦）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、黄色発光ダイオード１００個及び藍色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７７％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む小麦を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７７％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１１ないし２０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例２）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例２で製造した糖化した固液混合物（小麦）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（小麦）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（小麦）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１１ないし２０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（小麦）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、黄色発光ダイオード１００個及び藍色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７７％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む小麦を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７７％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１１ないし２０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例２）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例２１ないし３０及び比較例３
製造例３で製造した糖化した固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例２１ないし３０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例３）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、４．３ないし４．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２１ないし３０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例３）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例３で製造した糖化した固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例２１ないし３０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例３）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、４．３ないし４．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２１ないし３０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例３）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例３１ないし４０及び比較例４
製造例３で製造した糖化した固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例３１ないし４０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例４）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８
０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．３ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例３１ないし４０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４）に比して、約１．６倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例２１ないし３０に比して、約１．２４倍の収量増であった。
製造例３で製造した糖化した固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例３１ないし４０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（トウモロコシ）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例４）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８
０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．３ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例３１ないし４０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４）に比して、約１．６倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例２１ないし３０に比して、約１．２４倍の収量増であった。
製造例４：糖化した固液混合物（米）の製造
食品店より購入した米粉５３０ｇにアミラーゼ（アルファアミラーゼとグルコアミラーゼの混合）１０ｇ及び水５２５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（米）１０６５ｇを調製した。
食品店より購入した米粉５３０ｇにアミラーゼ（アルファアミラーゼとグルコアミラーゼの混合）１０ｇ及び水５２５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖化した固液混合物（米）１０６５ｇを調製した。
実施例４１ないし５７及び比較例５
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例４１ないし５７）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例５）。
上記で用意した１８本の注射器に白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻、ｋ：ミズゴケ、ｌ：クロゴケ、ｍ：スギゴケ、ｎ：ウロコゴケ、ｏ：ゼニゴケ、ｐ：ツノゴケ、ｑ：シアノバクテリア（アオコから抽出）
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例４１ないし５７）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例５）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例４１ないし５７）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例５）。
上記で用意した１８本の注射器に白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻、ｋ：ミズゴケ、ｌ：クロゴケ、ｍ：スギゴケ、ｎ：ウロコゴケ、ｏ：ゼニゴケ、ｐ：ツノゴケ、ｑ：シアノバクテリア（アオコから抽出）
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例４１ないし５７）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例５）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例５８ないし７４及び比較例６
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例５８ないし７４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード２００個及び緑色発光ダイオード２００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７４％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７４％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例５８ないし７４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例６）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例５８ないし７４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード２００個及び緑色発光ダイオード２００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７４％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７４％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例５８ないし７４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例６）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例７５ないし９１及び比較例７
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例７５ないし９１）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例７）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び青色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表７に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例７５ないし９１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例７）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例７５ないし９１）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例７）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び青色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表７に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例７５ないし９１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例７）に比して、約１．３倍の収量増であった。
比較例８ないし２５
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８ないし２４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２５）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表８に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例２４）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．３ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例８ないし２３）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例２５）に比して、約１．１倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例２４）は、比較例２５に比して、約１．２３倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８ないし２４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２５）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表８に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例２４）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．３ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例８ないし２３）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例２５）に比して、約１．１倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例２４）は、比較例２５に比して、約１．２３倍の収量増があった。
比較例２６ないし４３
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２６ないし４２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４３）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表９に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例４２）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．３ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例２６ないし４１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４３）に比して、約１．１倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例４２）は、比較例４３に比して、約１．２２倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２６ないし４２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４３）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表９に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例４２）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．３ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例２６ないし４１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４３）に比して、約１．１倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例４２）は、比較例４３に比して、約１．２２倍の収量増があった。
実施例９２ないし１０８及び比較例４４
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例９２ないし１０８）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４４）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１０に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例９２ないし１０８）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４４）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例９２ないし１０８）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４４）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１０に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例９２ないし１０８）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４４）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例１０９ないし１２５及び比較例４５
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１０９ないし１２５）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４５）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１０９ないし１２５）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４５）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１０９ないし１２５）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４５）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１０９ないし１２５）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４５）に比して、約１．３倍の収量増であった。
比較例４６ないし６３
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４６ないし６２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６３）。
上記で用意した１８本の注射器に緑色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、２０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が２０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例６２）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例４６ないし６１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例６３）に比して、約１．１５倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例６２）は、比較例６３に比して、約１．２７倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各
溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例４６ないし６２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６３）。
上記で用意した１８本の注射器に緑色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、２０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が２０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例６２）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例４６ないし６１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例６３）に比して、約１．１５倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例６２）は、比較例６３に比して、約１．２７倍の収量増があった。
比較例６４ないし８１
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６４ないし８０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８１）。
上記で用意した１８本の注射器に黄色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例８０）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例６４ないし７９）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例８１）に比して、約１．１倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例８０）は、比較例８１に比して、約１．２２倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６４ないし８０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８１）。
上記で用意した１８本の注射器に黄色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例８０）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例６４ないし７９）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例８１）に比して、約１．１倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例８０）は、比較例８１に比して、約１．２２倍の収量増があった。
実施例１２６ないし１４２及び比較例８２
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１２６ないし１４２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８２）。
上記で用意した１８本の注射器に紫色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１４２）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし４．０ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１２６ないし１４１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例８２）に比して、約１．３倍の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１４２）は、比較例８２に比して約１．４７倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１２６ないし１４２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８２）。
上記で用意した１８本の注射器に紫色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１４２）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし４．０ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１２６ないし１４１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例８２）に比して、約１．３倍の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１４２）は、比較例８２に比して約１．４７倍の収量増であった。
比較例８３ないし１００
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８３ないし９９）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１００）。
上記で用意した１８本の注射器に橙色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、５０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が５０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例９９）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例８３ないし９８）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１００）に比して、約１．１５倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例９９）は、比較例１００に比して、約１．２６倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８３ないし９９）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１００）。
上記で用意した１８本の注射器に橙色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、５０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が５０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（比較例９９）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（比較例８３ないし９８）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１００）に比して、約１．１５倍程度の収量増しかなかった。ｑのシアノバクテリアの場合（比較例９９）は、比較例１００に比して、約１．２６倍の収量増があった。
実施例１４３ないし１５９及び比較例１０１
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例１４３ないし１５９）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例１０１）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１５９）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．５ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１４３ないし１５８）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１０１）に比して、約１．７倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例
４１ないし５７に比して、約１．４倍の収量増であった。また、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１５９）は、更なる二酸化炭素を添加していない実施例５７に比して約２倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖化した固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖化した固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖化した固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例１４３ないし１５９）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖化した固液混合物（米）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例１０１）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１５９）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．５ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１４３ないし１５８）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１０１）に比して、約１．７倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例
４１ないし５７に比して、約１．４倍の収量増であった。また、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１５９）は、更なる二酸化炭素を添加していない実施例５７に比して約２倍の収量増であった。
本発明のエタノールの製造方法は、二酸化炭素を排出しないため、ＣＯ2削減の観点に
おいて有用な方法とえいる。また、本発明のエタノールの製造方法は、副生成物として酸素が得られるため、これを有効な資源として活用することもできる。
また、本発明のエタノールの製造方法は、外部からの二酸化炭素を取り込んでエタノールに変換し得るものであるため、二酸化炭素を固定化するという観点からも有用なエタノールの製造方法となり得るものである。
おいて有用な方法とえいる。また、本発明のエタノールの製造方法は、副生成物として酸素が得られるため、これを有効な資源として活用することもできる。
また、本発明のエタノールの製造方法は、外部からの二酸化炭素を取り込んでエタノールに変換し得るものであるため、二酸化炭素を固定化するという観点からも有用なエタノールの製造方法となり得るものである。
Claims (3)
- 糖化した固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖化した固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖化した固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか或いはデンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であり且つ前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であるエタノールの製造方法。 - 前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加する請求項１記載のエタノールの製造方法。
- 前記回収工程が、蒸留によるものである請求項１又は２記載のエタノールの製造方法。
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