JP2010006801A - 乳酸菌配合物及びその製造方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】小麦発酵抽出物及び乳酸菌殺菌菌体が混合されている乳酸菌配合物。また、小麦発酵抽出物及び乳酸菌殺菌菌体を混合する乳酸菌配合物の製造方法。
【選択図】なし
Description
小麦発酵抽出物も乳酸菌殺菌菌体も、これらの作用発現は、自然免疫の中枢を担う細胞である貪食細胞(主にマクロファージ)によりまず認識されることで始まる。この認識にはマクロファージの細胞膜上にある受容体群、とりわけトル様受容体(TLR)の関与がよく知られている。受容体と選択的に結合するものをリガンドと呼ぶ。マクロファージ群はTLRのリガンドであるリポ多糖や乳酸菌のペプチドグリカンをTLRによって認識するが、認識するTLRがそれぞれ異なる。リポ多糖はTLR4経由であり、乳酸菌はTLR2経由であることが知られている。ところが、TLRの細胞質内のシグナル伝達分子はTLR4もTLR2も共通しており、MyD88経由であることが知られている。すなわち、リポ多糖からのシグナル伝達も、乳酸菌からのシグナル伝達も同じ情報を伝えると考えられる。実際、乳酸菌もリポ多糖も類似の生物反応を誘導することが知られている。従って、従来の知見に従えば、常識的にはリポ多糖と乳酸菌を加えても相加的な効果しか期待できないと考えられていた。そのため、併用は単に、価格の相加平均になると考えられた。
I:小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体混合物
本件において、我々は、乳酸菌殺菌菌体と小麦発酵抽出物の混合品が単独よりも明らかに少量で効果発現できることを見出し、ヒト、畜産・水産養殖の分野で環境に優しく、安全で感染予防に有効な医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飼料を提供できる。
(1)免疫賦活作用を持つ物質としての小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の組み合わせが新規である。
(2)免疫賦活作用を持つ物質としての小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の組み合わせた製剤を製造することが新しい。ただし、本発明はこれに限定されるものではない。
(1) 小麦発酵抽出物は定法に従い製造する(特許文献1)。例えば、小麦粉0.5gと塩類(リン酸水素二ナトリウム七水和物1.28g、リン酸二水素カリウム0.3g、塩化ナトリウム50mg、塩化アンモニウム100mg、1M硫酸マグネシウム水溶液0.2ml、1M塩化カルシウム水溶液0.01ml)と水を加え全量を100mlとし、これをオートクレーブで滅菌し、パントエア・アグロメランス(Pantoea agglomerans)の一つのコロニーを加え、37℃にて1日間振とうした。これにより小麦粉を発酵させ、パントエア・アグロメランスを培養した。この培養液から遠心分離機で固形分を回収し、この固形分に等量の蒸留水を加え、ヒーターを用い、90℃にて30分間加熱し、室温まで冷えた後、遠心機にて上清を分離した後、必要に応じて濃縮、乾燥することにより調製出来る。
小麦発酵抽出物と乳酸菌混合物の一酸化窒素(NO)産生能
小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の併用によるマクロファージ系細胞(RAW264.7細胞)に対するNO産生能を測定した。小麦発酵抽出物 (IP-PA1(登録商標:III.(1)により製造したパントエア菌由来のリポ多糖)を1%含量)、乳酸菌殺菌菌体(Enterococcus faecalis)を使用した。乳酸菌殺菌菌体は、重量濃度で取り扱った。小麦発酵抽出物はIP-PA1含量を基準に試験した。
マウスマクロファージ系の培養細胞であるRAW264.7細胞(1.6×105個/100μl/ウエル)を96穴平底プレートに播種し、6時間、37℃の5%CO2インキュベータ内で培養した。その後に各被検体の希釈液を各用量、穴当たり100μlずつ加えた。各被検体溶液は、細胞培養液中で終濃度が小麦発酵抽出物はIP-PA1量として0.1ng/mlから10ng/mlになるように、乳酸菌殺菌菌体は1μg/mlから100μg /mlになるように被検体を培養液(10%牛胎児血清、60μg/ml アンピシリンナトリウム、50μg/ml硫酸カナマイシンを含むRPMI 1640培地)にて系列希釈して調製した。試験の陰性対照にはこの培養液を用いた。各検体を添加し、20時間培養した後、培養上清を一部(50μl)回収し、グリエス氏の方法により、NOの代謝物である亜硝酸濃度を測定した。
結果を表1に示した。例えば、乳酸菌殺菌菌体の1μg/mlと、IP-PA1の1ng/mlを併用すると亜硝酸濃度は12.2μMになる。この亜硝酸濃度を得るために、乳酸菌殺菌菌体単独では4.0μg/ml、IP-PA1単独では5.0ng/mlが必要なことが推測される。この推測値は対数グラフでの検量線から得た。これは、乳酸菌殺菌菌体では4分の1、IP-PA1では5分の1の用量であっても、これらを併用することにより、それぞれの単独の用量と同等のNOを誘導できることを示している。なお、試験をしたすべての範囲において併用効果が得られており、その組合せの(表1の肩文字aで示したデータ)量比としては乳酸菌殺菌菌体1部に対してIP-PA1量として0.01-0.000001になる(乳酸菌殺菌菌体1μg/ml、IP-PA1 0.01μg /mlの場合の量比が0.01、乳酸菌殺菌菌体100μg/ml、IP-PA1 0.0001μg /mlの場合の量比が0.000001)。
小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の混合物のマクロファージ系細胞(RAW264.7細胞)に対するTNFα産生能を測定した。小麦発酵抽出物(IP-PA1を1%含量)、乳酸菌殺菌菌体を使用した。乳酸菌殺菌菌体は、重量濃度で取り扱った。小麦発酵抽出物はIP-PA1含量を基準に試験した。
マウスマクロファージ系の培養細胞であるRAW264.7細胞(1.6×105個/100μl/穴)を96穴平底プレートに播種し、6時間、37℃の5%CO2インキュベータ内で培養した。その後に各被検体の希釈液を穴当たり100μlずつ加えた。各被検体溶液は、細胞培養液中で終濃度が小麦発酵抽出物はIP-PA1量として0.1ng/mlから10ng/mlになるように、乳酸菌殺菌菌体は1μg/mlから100μg /mlになるように被検体を培養液(10%ウシ胎児血清、60μg/ml アンピシリンナトリウム、50μg/ml硫酸カナマイシンを含むRPMI 1640培地)にて系列希釈して調製した。試験の陰性対照には培養液を用いた。各検体を添加し、4時間培養の検体を用い、エンドジェン社、マウス TNFα ELISAキットを用いてTNFα濃度を測定した。
TNFαの測定
結果を表2に示した。例えば、乳酸菌殺菌菌体の10μg/mlと、IP-PA1の1ng/mlを併用するとTNFα濃度は3040pg/mlになる。このTNFα濃度を得るために、乳酸菌殺菌菌体単独では25μg/ml、IP-PA1単独では5ng/mlが必要なことが推測される。この推測値は対数グラフでの検量線から得た。これは、乳酸菌殺菌菌体では2.5分の1、IP-PA1では5分の1の用量であっても、これらを併用することにより、それぞれの単独の用量と同等のTNFαを誘導できることを示している。なお、試験をしたすべての範囲において併用効果が得られており、その組合せの(表2の肩文字aで示したデータ)量比としては乳酸菌殺菌菌体1部に対してIP-PA1量として0.01-0.00001になる(乳酸菌殺菌菌体1μg/ml、IP-PA1 0.01μg /mlの場合の量比が0.01、乳酸菌殺菌菌体100μg/ml、IP-PA1 0.001μg /mlの場合の量比が0.00001)。
小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の混合物のマクロファージ系細胞(J774.1細胞)に対するIL-12産生能を測定した。小麦発酵抽出物(IP-PA1を1%含量)、乳酸菌殺菌菌体を使用した。乳酸菌殺菌菌体は、重量濃度で取り扱った。小麦発酵抽出物はIP-PA1含量を基準に試験した。
マウスマクロファージ系の培養細胞であるJ774.1細胞(5×105個/100μl/穴)を96穴平底プレートに播種し、4時間、37℃の5%CO2インキュベータ内で培養した。その後に各被検体の希釈液を穴当たり100μlずつ加えた。各被検体溶液は、細胞培養液中で終濃度が小麦発酵抽出物はIP-PA1として10ng/mlになるように、乳酸菌殺菌菌体は10μg/mlになるように被検体を培養液(10%ウシ胎児血清、60μg/ml アンピシリンナトリウム、50μg/ml硫酸カナマイシンを含むRPMI 1640培地)にて系列希釈して調製した。試験の陰性対照には培養液を用いた。各検体を添加し、20時間培養の検体を用い、バイオソース社、マウス IL-12 ELISAキットを用いてIL-12濃度を測定した。
IL-12の測定
結果を表3に示した。乳酸菌殺菌菌体の単独用量が10μg/mlの場合のIL-12濃度は892.75±236.60pg/ml、小麦発酵抽出物の単独用量が10ng/mlでは306.04±84.51pg/mlとなる。これらを併用すると2790.39±599.21pg/mlになる。これは、併用によって得られると通常想定される範囲を著しく超える効果を示している。併用効果が得られる量比としては乳酸菌殺菌菌体1部に対してIP-PA1量として0.001になる。
使用成分を表4に示した。A組を70℃で加熱溶解し、これに1/4量の精製水で溶き70℃で加熱溶解したB組と、1/4量の精製水で溶き70℃で加熱溶解したC組を加え、ホモジナイザーで充分混合した後40℃まで冷却し、D組を加えてpHを6.8まで調整した後、精製水と小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体を適量加え、充分混合して乳液を得る。なお、小麦発酵エキスは、0.5mg/mlになるように、乳酸菌殺菌菌体は、50mg/mlになるように予め精製水に溶解しておき、乳液100gに対しては、それぞれ0.1mlを添加する。
香料0.6%、ブドウ糖液糖果糖適量、クエン酸適量と水を基材として、これに、小麦発酵抽出物0.021%、乳酸菌殺菌菌体0.208%を混ぜた。ドリンクAには小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体を加えた。ドリンクBには小麦発酵抽出物のみを加えた。ドリンクCには乳酸菌殺菌菌体のみを加えた。ドリンクDには基材のみを加えた。
小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の混合物のマクロファージ系細胞(J774.1細胞)に対するIL-12産生能を測定した。小麦発酵抽出物(IP-PA1を1%含量)、Enterococcus faecalis以外の各種乳酸菌殺菌菌体(Enterococcus faecium、Lactococcus lactis、Lactobacillus paracasei、Lactobacillus plantarum、Lactobacillus acidophilus、Bifidobacterium breve、Bifidobacterium adolescentis、Streptococcus thermophilus)を使用した。乳酸菌殺菌菌体は、重量濃度で取り扱った。小麦発酵抽出物はIP-PA1含量を基準に試験した。結果を表5にまとめた。いずれも、小麦発酵抽出物と乳酸菌殺菌菌体の併用により単独使用の場合の単純加算値より著しく高いIL-12産生能を示した。
小麦発酵抽出物と実施例6で使用した各種乳酸菌殺菌菌体混合物を添加した飼料(CE-2、日本クレア)をBALB/cA Jcl雄マウス(日本クレア)に2週間与えた。飼育はSPF環境で行った。2週間後にマウスの脾臓を摘出し、脾臓細胞をセルストレイナーで回収した。脾臓細胞は赤血球溶解液(塩化アンモニウム−炭酸水素ナトリウム緩衝液)で処理し、赤血球を除去後に、カルセインで標識下ヤックワン(Yac-1)細胞と共培養した。カルセイン標識は1×106cells/mlのYac-1細胞、3mlを用いて、2mg/mlのカルセインAM DMSO溶液を15μl加え、良く混ぜ、37℃の5%CO2 インキュベータ中で30分間培養して調製した。
% Lysis=(experiment-Spontaneous)/(Maximum-Spontaneous)
ただし、
Experiment:試験群の脾細胞とカルセイン標識Yac-1の共培養によって放出された蛍光強度
Spontaneous:カルセイン標識Yac-1を単独培養したときに放出された蛍光強度
Maximum:2% Triton X-100でカルセイン標識Yac-1を完全に溶解したときに得られた蛍光強度
Claims (5)
- 小麦発酵抽出物及び乳酸菌殺菌菌体が混合されていることを特徴とする乳酸菌配合物。
- 免疫賦活活性を持つことを特徴とする請求項1記載の乳酸菌配合物。
- 前記乳酸菌配合物が動物用医薬品、医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飼料、植物用肥料、植物用医薬品又は浴用剤であることを特徴とする請求項1記載の乳酸菌配合物。
- 抗炎症性腸疾患効果、抗アレルギー疾患効果、鎮痛効果、制がん効果、コレステロール低下効果、血糖低下効果、抗炎症作用、便通改善効果、絨毛萎縮抑制効果、自然治癒力増強効果又は免疫増強効果を示すことを特徴とする請求項3記載の乳酸菌配合物。
- 小麦発酵抽出物及び乳酸菌殺菌菌体を混合することを特徴とする乳酸菌配合物の製造方法。
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